TW201925463A - 神經保護組成物、其製備方法及其醫療用途 - Google Patents

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Abstract

本發明涉及一種源自間充質幹細胞的神經保護組合物，特別是一種源自於牙髓間充質幹細胞初代培養物的神經保護組合物。本發明還涉及一種製備所述神經保護組合物的方法，以及所述神經保護組合物在治療與神經元損傷相關的神經系統疾病中的醫藥用途，所述疾病包括蛛網膜下腔出血和帕金森氏症。

Description

神經保護組合物、其製備方法及其醫學用途
本發明涉及一種源自間充質幹細胞的神經保護組合物，特別是一種源自於牙髓間充質幹細胞初代培養物的神經保護組合物，其製備方法，及其在治療與神經元損傷相關的神經系統疾病中的醫藥用途，所述疾病包括蛛網膜下腔出血和帕金森氏症。
蛛網膜下腔出血（SAH）是指血液外滲至蛛網膜與腦周圍的軟腦脊膜之間的蛛網膜下腔中。它出現在多種臨床環境中，最常見的是頭部創傷；非創傷性（或自發性）蛛網膜下腔出血通常出現在破裂的腦動脈瘤或動靜脈畸形的情況中。自發性病例的危險因素包括高血壓、吸煙、家族史、酗酒和可卡因使用。
動脈瘤型SAH帶來顯著的患病率和死亡率。患有動脈瘤型SAH的人有近半數在30天內死亡，三分之一的存活者遭受長期的身體、神經認知、精神和/或心理上的症狀，例如偏癱、情緒障礙、經常性頭痛、認知和記憶缺陷。SAH患者在年老時罹患阿茲海默症或失智症的可能性也增加。除了原始的出血之外，多種因素，例如缺氧、低血壓、腦水腫、再出血、遲發性缺血性神經功能缺損（DIND）和/或由夾扼或線圈栓塞期間的腦動脈操作引起的缺血，都會導致繼發性腦損傷。如果沒有及時給予正確的醫學治療，第一次出血後存活的患者可能在3周內再次出血，其死亡率高達80%。
一旦紅細胞進入蛛網膜下區域並發生紅細胞裂解，就會誘發化學性腦膜炎，其進而會引起一系列複雜的病理生理過程，包括顱內壓升高、腦血流量和腦灌注壓降低、血腦屏障（BBB）損傷、腦水腫、急性腦血管痙攣、微血管功能障礙和神經元凋亡機制。上述過程可能繼發性地引起鈣超載、自由基累積、線粒體功能障礙和免疫炎症反應。雖然腦血管痙攣被認為是在SAH存活者中最常見的失能和死亡原因，但其他影響(例如皮層傳播抑制引起的早期腦損傷、血腦屏障破壞、微循環功能受損、神經炎症和凋亡性神經元細胞死亡)也可能促成SAH引發的病變。本領域已知，SAH的發病與其他神經障礙和神經損傷有一些共同的病理學特徵。
儘管SAH及其相關併發症具有高嚴重性，但目前治療SAH的措施相對而言是低效的。因此，需要一種為神經組織提供保護的治療性組合物。
幹細胞對神經障礙的旁分泌效應已被注意了幾十年（見例如Torrente D.等人，Hum Exp Toxicol. 2014, 33(7): 673-84；以及下述綜述性文獻：Martínez-Garza D.M.等人，Medicina Universitaria 2016, 18(72):169-180; Im W.S. and Kim M.H.,J. Mov. Disord . 2014, 7(1):1-6; Turgeman G.,Neural. Regen. Res. 2015 May, 10(5): 698–699; Hasan A.等人,Front. Neurol . 8: 28, 2017, DOI: 10.3389/fneur.2017.00028）。已經有人提出假說：幹細胞可以分泌多種生長因子、細胞因子和趨化因子，這些因子可以增強細胞存活、增加神經生成、減少炎症和線粒體功能，並且所有這些效應都導致神經保護和修復。因此，將幹細胞分泌蛋白組（secretome）而非整個幹細胞引入受損組織被認為是克服基於細胞移植局限性的有前景的安全治療措施。雖然已鑑定出由幹細胞釋放的一些旁分泌分子，包括Scurfin、腦源性神經營養因子（BDNF）和CC趨化因子配體2 （CCL2），但所鑑定的全部蛋白的分子量都大於10 kDa。令人驚訝和出乎意料的是，本發明人發現，源自於間充質幹細胞（MSC）的初代培養物的條件培養基（例如源自牙髓間充質幹細胞（DPMSC）的初代培養物的條件培養基）的≤5 kDa級分表現出優異的神經保護活性。該培養基級分顯然可用於治療神經障礙，例如SAH和帕金森氏症。
因此，在第一方面，本文提供了一種神經保護組合物，其可以藉由包含下列步驟的方法獲得：
(i)在無血清基礎培養基中培養間充質幹細胞，歷時至少3小時，以獲得一細胞培養物；以及
(ii)處理步驟(i)中獲得的細胞培養物，以得到分子量不超過約5 kDa的水性級分做為該神經保護組合物。
在第二方面，本文提供了一種神經保護組合物的製備方法，其包含下列步驟：
(i)在無血清基礎培養基中培養間充質幹細胞至少3小時以獲得細胞培養物；以及
(ii)處理步驟(i)中獲得的細胞培養物以得到分子量不超過約5 kDa的水性級分作為所述神經保護組合物。
在第三方面，本文提供了一種神經保護組合物在製造一供用於治療一個體體內與神經元損傷相關的神經障礙的醫藥品上的用途，其中，所述神經保護組合物可以藉由上述方法獲得。
在第四方面，本文提供了一種治療個體的與神經元損傷相關的神經障礙的方法，所述方法包括向所述個體施用有效量的神經保護組合物以抑制神經元損傷；其中，所述神經保護組合物可以藉由上述方法獲得。
在第五方面，本文提供了一種神經保護組合物在製造一供用於保護患有或有風險患有神經功能喪失的個體免受神經元損傷的醫藥品上的用途，其中，所述神經保護組合物可以藉由上述方法獲得。
在第六方面，本文提供了一種提供保護免於神經元損傷的方法，所述方法包括向患有或有風險患有神經功能喪失的個體施用一有效量的神經保護組合物，從而保護所述個體免於神經元損傷；其中，所述神經保護組合物可以藉由上述方法獲得。
在第七方面，本文提供了一種神經保護組合物在製造一供用於抑制有需要的個體的腦神經炎症的醫藥品上的用途，其中所述神經保護組合物可以藉由上述方法獲得。
在第八方面，本文提供了一種抑制有需要的個體的腦神經炎症的方法，所述方法包括施用一有效量的神經保護組合物，從而抑制所述個體的腦神經炎症；其中，所述神經保護組合物可以藉由上述方法獲得。
在較佳的具體例中，處理步驟(ii)包括通過分子量截留值為5 kDa的膜來超濾步驟(i)中獲得的細胞培養物，從而收集通過該膜的濾液作為所述神經保護組合物。
在較佳的具體例中，該間充質幹細胞是牙髓間充質幹細胞。
在較佳的具體例中，與神經元損傷相關的神經障礙選自於由肌萎縮側索硬化症、阿茲海默症、帕金森氏症、亨廷頓氏症、肌營養不良症、多發性硬化、缺血性中風、出血性中風、短暫性腦缺血發作（TIA）和創傷性腦損傷（TBI）組成的群組。在更佳的具體例中，與神經元損傷相關的神經障礙選自於由阿茲海默症、帕金森氏症、亨廷頓氏症、缺血性中風、原發性SAH、繼發性SAH、創傷性SAH和腦內出血（ICH）、短暫性腦缺血發作（TIA）和創傷性腦損傷（TBI）組成的群組。在又更較佳的具體例中，與神經元損傷相關的神經障礙選自於由帕金森氏症、原發性SAH和繼發性SAH組成的群組。
除非另外說明，否則本申請說明書和申請專利範圍中所使用的下列用語具有下文給予的定義。請注意，本申請說明書和申請專利範圍中所使用的單數形用語「一」意欲涵蓋在一個以及一個以上的所載事項，例如至少一個、至少二個或至少三個，而非意味著僅僅具有單一個所載事項。此外，申請專利範圍中使用的「包含」、「具有」等開放式連接詞是表示請求項中所記載的元件或成分的組合中，不排除請求項未載明的其他組件或成分。亦應注意到用語「或」在意義上一般也包括「及/或」，除非內容另有清楚表明。本申請說明書和申請專利範圍中所使用的用語「約(about)」，是用以修飾任何可些微變化的誤差，但這種些微變化並不會改變其本質。
本發明基於以下發現：源自於間充質幹細胞(MSC)的條件培養基的≤5 kDa水性級分，特別是源自於牙髓間充質幹細胞(DPMSC)的≤5 kDa水性級分，具有神經保護活性，其增強神經元存活率、改善腦微循環、減少神經炎症並減輕血管收縮，指出該培養基級分在治療與神經元損傷相關的神經障礙中具有治療效果。
本申請所使用的用語「間充質幹細胞」或縮寫「MSC」在本文中用於指源自於成體基質組織的多能幹細胞，其具有廣泛的自我更新性質和分化為間充質譜系細胞的能力；所述成體基質組織包括但不限於骨髓、脂肪組織、肌肉組織、牙髓、臍帶血、羊水、骨骼肌、滑膜和華通氏膠。在較佳具體例中，本文使用的MSC源自於牙髓組織。本發明中使用的MSC可以從人類、大鼠、小鼠、綿羊、牛、豬、狗、貓、馬和非人類靈長類動物（例如猴、大猩猩和黑猩猩）中收集。MSC的優勢在於來源豐富、易於分離、無痛採集以及法律和倫理接受度高。這些特徵使得MSC在治療方面受到巨大的關注，因為它們是具有治療多種急性和退化性疾病的潛力的細胞群。
在本發明中，MSC可以藉由本領域已知的方法從各種來源收集。例如，在收集骨髓來源的MSC的情況下，可以在適當的麻醉下用針從人類或非人類動物個體的髂脊獲得骨髓，然後進行密度梯度離心並選擇貼壁細胞。或者，當需要從牙髓中收集MSC時，可以使用活檢裝置從人類或非人類動物個體的牙齦中撿取組織樣本，然後進行膠原酶消化。在較佳具體例中，MSC的收集還可以包括利用表面抗原標誌物的差異從細胞培養物中分離出MSC。分離方法的非限制性實例包括磁性細胞分選（MACS）、螢光啟動細胞分選（FACS）和流式細胞術分選（FCS）。
用於培養MSC的細胞培養基可以是為細胞提供充分營養的任何標準細胞培養基。合適的培養基包括但不限於：Dulbecco氏改良的Eagle氏培養基（DMEM）、α最低限度必需培養基（α-MEM）、Iscove氏改良的Dulbecco氏培養基（IMDM）、營養混合物F-12 （Ham's F12）、RPMI 1640、McCoy氏5A培養基、MesenPRO RSTM 培養基及其組合，以及對本領域技術人員而言顯而易見的其他培養基製劑。這些培養基可以容易地製備或從商業來源獲得。細胞培養基及方法的詳細內容可參見Methods For Preparation of Media, Supplements and Substrate For Serum-Free Animal Cell Culture Alan R. Liss, 紐約 (1984)和Cell & Tissue Culture: Laboratory Procedures, John Wiley & Sons Ltd., Chichester, 英國英格蘭1996。細胞培養基中可以補充組分，例如維生素、蛋白質和糖、生長因子（例如FGF和EGF）、抗生素（例如青黴素、鏈黴素和四環素）、殺真菌劑、激素、抗氧化劑等。如果需要，可以加入血液組分，例如胎牛血清、人血漿和富含血小板的血漿（PRP），以支持所培養的細胞的生長。
通常，MSC在培養幾代後會表現出細胞生長逐漸減少並最終衰老，從而導致分泌蛋白組內容物的潛在下降。因此，為了獲得最大的旁分泌效應，初代培養的MSC用於產生在第1代和第10代之間、較佳為在第2代和第6代之間的條件培養基。根據本發明，通過標準方法使用無菌處理和操作來培養MSC，並且在無血清基礎培養基中條件化MSC。本申請所使用的用語「基礎培養基」可以指涉含有支持無特定營養需求的哺乳動物細胞的生長通常所需的無機鹽、胺基酸和維生素的任何液體培養基。在一些較佳具體例中，無血清基礎培養基不含生長因子。基礎培養基的實例包括但不限於基礎培養基Eagles （BME）、最低限度必需培養基（MEM）、Dulbecco氏改良的Eagle氏培養基（DMEM）、營養混合物F-10（HAM's F10）和營養混合物F-12（HAM's F12）。無血清基礎培養基可以補充有血清替代培養基，例如可從Invitrogen-Gibco （Grand Island, NY, 美國）商購獲得的血清替代培養基。
在一個具體例中，在培養物中達到10%-90%匯合度、較佳在培養物中為30%-80%匯合度、例如在培養物中為50%-80%匯合度的MSC可通過在無血清基礎培養基中培養細胞來條件化。當無血清基礎培養基中的分泌蛋白組，例如細胞外蛋白，已達到所需位準時，收穫細胞培養物。在較佳的具體例中，在培育了3小時至120小時之間的任何時間或甚至更久時，較佳為在無血清基礎培養基中開始培養後的第3、6、12、18、24、30、36、42、48、60、72、84、96、108、120小時，例如在開始培養後的第72小時和第96小時以及其間的所有時刻，收穫細胞培養物。在另一個較佳具體例中，一旦細胞超過50%匯合度、較佳70%-100%匯合度、例如80%-90%匯合度，即可以收穫MSC培養物。
根據本發明，進一步處理收穫的細胞培養物以得到分子量不超過約5 kDa的水性級分。這種處理可以藉由能夠基於分子量來分離分子的任何常規方法來進行，其實例可以包括凝膠過濾、密度梯度純化、膜過濾、超濾、離心、超速離心和本領域已知的其他類似方法。在一個具體例中，可以首先對細胞培養物進行膜過濾、離心或其組合，以除去大部分細胞碎片和其他不溶性物質，從而以獲得條件培養基，然後通過分子量截留值為5 kDa的濾膜對該條件培養基進行超濾。在另一個具體例中，直接使細胞培養物接受通過分子量截留值為5 kDa的膜進行超濾，其實例包括但不限於分子量截留值為5 kDa的切向流過濾(TFF)。如此獲得的≤5 kDa級分表現出下文所述的所希望的神經保護活性，可以對其進行額外的純化工序以除去不需要的物質，例如蛋白酶和有毒化學物質。純化方法包括凝膠層析法、離子交換層析法、親和層析法、HPLC純化等。
已顯示MSC在許多涉及神經元死亡的病症，例如創傷性腦損傷（TBI）、SAH、阿茲海默症和亨廷頓氏症，具有強效治療作用（Im W.S. and Kim M.H.同上；Ghonim H.T.等人，J.V.I.N., 2016 January, 8(5): 30–37；Martínez-Garza D.M.等人，同上；Turgeman G.,同上；Hasan A.等人，同上）。如本案所揭露者，本發明從MSC培養物獲得的≤5 kDa培養基級分，具有神經保護作用並且在活體外增強神經元的存活（如下文實施例5所示）。從實施例4所示的SAH大鼠模式和實施例6所示的D-gal誘導的大鼠肝性腦病模式的結果測量可以看到，鞘內遞送所述≤5 kDa培養基級分改善了腦組織氧合作用、使腦血管痙攣和血管收縮降低、以及減少活體內神經炎症，所有這些都是導致或促成腦神經元損傷的關鍵因素，並且發現得到了改善。在本文中，在實施例7-9中進一步證明，≤5 kDa培養基級分在斑馬魚和大鼠模式中增強了運動性並且還增加了神經元活性。總之，本文展示的結果證明≤5 kDa培養基級分能夠做為神經保護組合物。
本案所使用的用語「神經保護」是指藥物組合物能夠維持神經元細胞的存活和活性或者維持或甚至恢復其神經元功能、或者緩解或減輕可能導致神經元損傷的一種或多種因素（例如神經炎症、血管痙攣、血管收縮、微血管功能障礙和氧化壓力），甚至在病理或有害條件下也是如此。本案所使用的用語「神經保護」可以涵蓋預防個體的神經元細胞受損和/或在個體中出現神經元損傷後治療神經元損傷。在這方面，本申請所使用的用語「預防」包括降低神經元損傷的嚴重性/強度或減少神經元損傷的引發。本申請所使用的用語「治療」包括在神經元損傷出現後減輕神經元損傷、改善由神經元損傷引起或導致神經元損傷的一種或多種症狀、或減緩神經元損傷的進程。在一些具體例中，本申請所使用的用語「治療」可以意指，與具有相同病症但未接受治療或接受不同的治療的對照個體中的神經元死亡率相比，使患有與神經元死亡相關的神經障礙的個體中的神經元死亡減少。然而，本申請所使用的用語「神經保護」不應被理解為針對神經元損傷始終有100%的保護。本申請所使用的用語「神經元損傷」可以意指由於疾病或受傷而對任何細胞類型（例如神經元、星形膠質細胞、神經膠質細胞）產生的損傷，其進而可以導致細胞死亡或細胞功能喪失。神經元損傷的程度可以用本領域已知的任何神經元功能視覺化方法來確定，例如腦電描記法、磁共振成像、電腦斷層掃描、對比血管造影術和多普勒超聲檢查。
在一方面，本發明涵蓋了此處所揭露的神經保護組合物用於治療個體的與神經元損傷相關的神經障礙的醫藥用途，以及治療個體的與神經元損傷相關的神經障礙的治療方法，該方法包括向個體施用一有效量的所述神經保護組合物。本案所使用的用語「與神經元損傷相關的神經障礙」可以意指神經系統疾病，其特徵在於神經元損傷或具有涉及神經元損傷的病因。通常，如果個體患有本領域已知的與神經元損傷相關的病症，則本案所揭露的醫藥用途和治療方法不需要在治療前於個體體內檢測到細胞損傷。與神經元損傷相關的神經障礙的非限制性實例包括：肌萎縮側索硬化症、阿茲海默症、帕金森氏症、亨廷頓氏症、肌營養不良症、多發性硬化、缺血性中風、出血性中風（例如原發性蛛網膜下腔出血（原發性SAH）、繼發性SAH、創傷性SAH和腦出血（ICH））、短暫性腦缺血發作（TIA）和創傷性腦損傷（TBI）。與神經元損傷相關的神經障礙可由醫生、獸醫或其他臨床醫師診斷。
下文實施例中所示的資料指出，本案所揭露的神經保護組合物在腦組織中可以特別有效地維持腦神經細胞的存活和活性。在一個較佳具體例中，神經障礙與神經炎症引起的神經元損傷有關。已知腦出血，例如SAH，會導致神經炎症反應級聯，其中，晚期糖基化終產物受體（RAGE）相關的細胞內信號傳導在絲裂原活化蛋白激酶（MAPK）和核因子-κB（NF-κB）的啟動中起重要作用。經報導，外源施用重組sRAGE作為誘騙劑以與膜結合的RAGE競爭與配體的結合，改善了小鼠I/R損傷的結果並進一步保護了神經元免於神經元死亡（Wang KC等人，J. Cereb. Blood Flow Metab. 2017 Feb 20; 37(2): 435-443），指出神經炎症的減弱或緩解可能是治療腦出血的有效措施。此外，許多神經系統退行性病症已被證實與神經炎症相關或由其引起，例如阿茲海默症、帕金森氏症和亨廷頓氏症（McManus R.M. and Heneka M.T., Alzheimer's Research & Therapy 2017, 9:14, DOI 10.1186/s13195-017-0241-2; Gagne J.J. and Power M.C., Neurology 2010 Mar 23, 74(12): 995-1002; Im W.S. and Kim M.H.，同上）。在較佳的具體例中，與神經元損傷相關的神經障礙選自於由阿茲海默症、帕金森氏症、亨廷頓氏症、缺血性中風、原發性SAH、繼發性SAH、創傷性SAH和腦內出血(ICH)、短暫性腦缺血發作(TIA)和創傷性腦損傷(TBI)組成的群組。在更佳的具體例中，與神經元損傷相關的神經障礙選自於由帕金森氏症、原發性SAH和繼發性SAH組成的群組。
本申請所使用的用語「個體」意欲涵蓋人類或非人類脊椎動物，例如非人類哺乳動物。非人類哺乳動物包括家畜、伴侶動物、實驗動物和非人類靈長類動物。非人類個體還包括但不限於馬、牛、豬、山羊、狗、貓、小鼠、大鼠、豚鼠、沙鼠、倉鼠、水貂、兔和魚。應理解的是，較佳的個體是人，尤其是患有或有風險患有與神經元損傷相關的神經障礙的人類患者，例如患有或有風險患有帕金森氏症、原發性SAH和繼發性SAH的人類患者。
為了研究的目的，本案所使用的用語「個體」可以指本文定義的生物學樣品，其包括但不限於細胞、組織或器官。因此，本發明意欲應用於活體內和活體外。
根據本發明，用語「施用」包括通過任何合適的途徑將處在合適的藥物製劑中的所述神經保護組合物分配、遞送或施加給個體，以將所述神經保護組合物或其代謝物組（metabolome）遞送至個體中的所需位置，從而使所述神經保護組合物或其代謝物組與靶細胞或組織接觸。在一個具體例中，神經保護組合物在損傷事件或神經障礙發作之前、期間和/或之後施用給個體。在一個具體例中，可以將一種或多種治療劑與神經保護組合物一起施用給個體。神經保護組合物可以在施用所述一種或多種治療劑之前（例如0.5小時、1小時、2小時、4小時、6小時、12小時、18小時、24小時、36小時、2天、3天、4天、5天、 6天、7天或更長時間）、同時或之後（例如0.5小時、1小時、2小時、4小時、6小時、12小時、18小時、24小時、36小時、2天、3天 、4天、5天、6天、7天或更長時間）施用。神經保護組合物和所述治療劑可以藉由不同的攝取方案（例如不同的計畫）、不同的施用途徑或不同的劑量來施用。
本文公開的神經保護組合物可以藉由任何合適的途徑施用給個體，例如局部、腸內或胃腸外途徑，例如口服、靜脈內、動脈內、皮下、肌肉內、腹膜內、透皮、經粘膜（例如鼻、舌下、陰道、頰、直腸）、鞘內、顱內或腦內途徑。施用可以像注射那樣快速進行，也可以像緩慢輸注或緩釋製劑施用那樣持續一段時間進行。
在一個較佳具體例中，神經保護組合物為鼻內施用，並以鼻內施用製劑的形式製備。用於鼻內施用的製劑是本領域已知的，並且可以是鼻滴劑、鼻噴霧劑或氣溶膠製劑的形式。氣溶膠製劑可以採用凍乾粉末、懸浮液或溶液的形式。在另一個較佳具體例中，神經保護組合物通過口腔和咽喉粘膜施用，並以經粘膜施用製劑的形式製備。
在另一個較佳具體例中，本文公開的神經保護組合物被製備成注射劑，其為液體溶液或懸浮液，較佳為在帶有藥學上可接受的載劑時與受體的血液等滲。作為替代，可以製備適於在注射前溶解或懸浮在液體中的固體形式。可注射製劑還可以包含一或多種藥學上可接受的載劑。合適的賦形劑可包括例如水、生理食鹽水、右旋糖、甘油、乙醇、潤濕劑、乳化劑和pH緩衝劑。在一些具體例中，組合物是凍乾形式，在這種情況下它可以包含穩定劑，例如BSA。在一些具體例中，可能需要用防腐劑，例如硫柳汞或疊氮化鈉，來配製組合物，以利於長期儲存。載劑還可以含有其它藥學上可接受的賦形劑，用於改變或維持製劑的pH值、滲量、黏度、透明度、顏色、無菌性、穩定性、溶解速率或氣味。類似地，載劑可以含有其他藥學上可接受的賦形劑，用於改變或維持穿過血腦屏障的釋放、吸收或滲透。
神經保護組合物以治療有效量施用給個體，以引發研究人員、獸醫、醫生或其他臨床醫師所尋求的在細胞、組織、系統、動物或人類中的生物學或藥物反應，且較佳為穩定、改善或緩解個體中疾病狀況的一或多種症狀，例如穩定、改善或緩解神經炎症、血管痙攣、血管收縮、偏癱、反射亢進、肌肉虛弱、顫搐、言語問題、呼吸問題、吞咽困難、記憶喪失、意識錯亂、定向障礙、書寫困難、抑鬱、焦慮、回避社交、情緒波動、攻擊性、睡眠習慣改變、震顫、運動遲緩、肌肉僵硬、平衡受損、面部不自主運動、四肢麻木或虛弱、部分或完全喪失視力、疲勞、眩暈、身體或面部一側癱瘓、以及頭痛。因此，本申請所使用的用語「有效量」是指當向個體施用有效量的組合物時產生觀察到的上述任何一個症狀減輕的藥效的神經保護組合物的用量。儘管有效量通常通過將它們與不存在本案所揭神經保護組合物時觀察到的效果（即，對照組）相比較的效果來確定，但實際劑量根據所選擇的特定施用途徑來計算。可以根據所選擇的特定施用途徑來計算實際劑量。習於此藝者可以例行性地進一步細化確定適當的施用劑量所需的計算。因此，當施用給人類個體時，較佳為每天、每週或一周兩次以0.01 mg/kg體重/天至100 mg/kg體重/天、更佳以0.1 mg/kg/天至10 mg/kg/天的量施用所述神經保護組合物。可以根據所用的劑量製劑和施用途徑的藥代動力學參數來重複進行劑量施用。
如本文所公開的，本發明還涵蓋了所述神經保護組合物在抑制有需要的個體中的腦神經炎症上的醫藥用途，以及在有需要的個體中抑制的腦神經炎症的治療方法。本申請所使用的用語「神經炎症」可以指出現在神經組織中的炎症反應，其可以涉及小膠質細胞啟動、星形膠質細胞增生和許多炎症介質的釋放。在本案說明書的上下文中所使用的用語「抑制」是指降低特定活性的量、質或效果，並且是指例如對於個體施用有效量的神經保護組合物，致使發生在腦組織中的炎症反應的嚴重性降低，例如實施例4和6中展示的結果。
以下實施例僅出於說明目的，並不意圖限制本發明的範圍。應當注意的是，在下述實施例中，通過分級來呈現動物模式的資料。通過Logistic回歸將臨床結果與分級關聯起來。細胞培養的數據將以平均值±SE表示。獲得了針對不同濃度CSF的累積濃度-回應曲線。通過雙因素ANOVA進行統計學分析。統計學顯著性定義為p＜0.05。
實施例 1 ：分離和培養牙髓幹細胞 (DPSC)
從3周齡雄性Wistar大鼠完整地採集上牙，而後使用注射器針頭提取組織，並轉移到25 cm2 燒瓶（Corning, Inc., 美國紐約州）中。將牙髓用磷酸鹽緩衝鹽水洗滌兩次，並用第II型膠原酶（50-100 U/ml）處理1小時。隨後將組織以200 rpm離心4分鐘以獲得細胞團塊，隨後用磷酸鹽緩衝鹽水洗滌細胞團塊兩次。在補充有10% FBS（Gibco®, Grand Island, 美國紐約州）的Dulbecco氏改良的Eagle培養基（DMEM）營養混合物F12（DMEM/F12; Life Technologies, Karlsruhe, 德國）中培養細胞數天，直至細胞數達到超過1×106 個。用胰蛋白酶處理細胞以使其脫落，並用磷酸鹽緩衝鹽水洗滌兩次，然後重新懸浮於0.5 ml磷酸鹽緩衝鹽水中。通過在磁活化細胞分離器中與抗成纖維細胞抗體偶聯的磁珠一起在4℃下培育15分鐘，以耗盡細胞懸浮液中的成纖維細胞。將來自細胞分離器的洗脫物以200 rpm離心4分鐘，以獲得間充質幹細胞（MSC）。當MSC達到匯合時，用胰蛋白酶（Sigma Chemical Co., St. Louis, MO, 美國）使MSC脫離，並在75 cm2 燒瓶（Corning, Inc. 美國紐約州）中以2×103 個細胞/cm2 的密度進行繼代培養，然後在150 cm2 燒瓶（Corning, Inc. 美國紐約州）中以5×104 DPSC的密度進行第3代繼代培養。
實施例 2 ：製備具有生物活性的培養基級分
條件培養基產生如下：向150 cm2 細胞培養瓶（Corning, Inc. 美國紐約州）中的80%匯合度的第2-5代MSC，依據20 mL/瓶的用量添加無血清DMEM/F12（Life Technologies, Karlsruhe, 德國），然後培育72小時，所述DMEM/F12中補充有10 ml Hank平衡鹽溶液（HBSS; Life Technologies, Carlsbad, 美國加利福尼亞州）和300 μl青黴素-鏈黴素（1%）。為了進行下文所述的活體外和活體內實驗，使用配備有5 kDa截留膜（Millipore Co., Billerica, 美國麻塞諸塞州）的切向流過濾（TFF）系統（Millipore Co., St. Charles, 美國密蘇里州），按照製造商的說明書進一步濃縮條件培養基，由此得到標稱分子量等於和小於5 kDa的培養基級分。
實施例 3 ：大鼠 SAH 模式
在本實施例中使用了雄性Wistar大鼠（250至300克）。所有外科手術程式均按照美國國立衛生研究所實驗動物護理和使用指南進行，並且動物實驗獲得了當地動物護理和使用委員會的批准。麻醉劑為2.5%異氟烷以及70%一氧化二氮和27.5%氧氣。通過氣管造口管給藥以確保深度鎮靜，此通過後缺乏肢和前肢疼痛反射以及缺乏角膜反射來確認。在整個手術過程中保持正常、不費力的呼吸。將動物置於熱毯上，用直腸探針監測溫度，並將體溫保持在37℃。監測血壓並使其維持在100-120 mmHg。
將動物隨機分成三組，即：SAH組，其中，在將動物保持在頭部向下20度的位置的同時，歷時5分鐘將0.3 ml新鮮自體血液注射至小腦池中，從而在大鼠中引發SAH；對照組，對照組接受了給予生理鹽水而不是自體血液的假手術；以及治療組，其中在引發SAH前1小時，將實施例2中製備的培養基級分鞘內施用給大鼠。
實施例 4 ： SAH 後大鼠大腦膜的微脈管系統
在SAH引發後24小時，檢查大鼠模式的腦表面上的微循環脈管系統。在大鼠額縫後進行5×5 mm的開顱術。用微型剪刀打開硬腦膜。使用具有高解析度（752×582個像素）單色電荷耦合器件（CCD）攝像機的CAM1鐳射多普勒微血管監測儀（KK Technology, 英國）來使微循環脈管系統視覺化，並測量皮質血管中的血流速度。將解剖顯微鏡附接到重物上，以允許在三個維度中調整而不接觸到腦表面。視野為684×437 μm，放大圖像以提供大約0.91 μm/像素的整體放大率。結果顯示於圖1A-1C中。如圖1A和1B所示，其中大鼠腦中的小動脈和小靜脈分別用字母A和V標記，在SAH組中觀察到次級小動脈（由箭頭指示）和末端小動脈（由三角頭指示）的彌漫性血管收縮，這與對照組相反。然而，在治療組中血管收縮減輕，如圖1C所示。
進一步測量微循環參數，包括血流量和氧分壓。使用鐳射檢測器（OxyLite 2000E和OxyFlow 2000E系統，Oxford Optronic Ltd.，英國英格蘭）來確定大鼠腦中的血流量和氧分壓。如圖2A和圖2B所示，在距離腦表面＜4 mm的深度處，與對照組相比，SAH組中的腦表面處的局部血流和腦組織氧壓顯著地比較低，而在治療組中，則觀察到了局部血流和腦組織氧壓的劑量相依性增加。
在SAH引發後第24小時，另經由小腦延髓池從SAH組收集了腦脊髓液（CSF）。
在SAH引發後第24小時犧牲動物，並將它們的腦在含4%甲醛的PBS （由多聚甲醛粉末新鮮製備）中於4℃固定過夜，然後轉移至4℃的連續的20%蔗糖溶液和30%蔗糖溶液（w/v）中，直至腦沉到溶液底部。在Tissue-Tek®包埋中心儀（Sakura, Torrance, 美國加利福尼亞州）中將腦包埋，而後在冠狀解剖平面中進行切片（使用低溫恒溫器製作10 μm的切片）。先將切片暴露於含有0.1% Triton X-100（Amresco, Santa Cruz, 美國加利福尼亞州）和10%正常山羊血清（Sigma Chemical Co., St. Louis, 美國密蘇里州）的PBS中，歷時至少30分鐘，以阻斷非專一性抗體結合，然後與抗Iba1抗體培育。離子化鈣結合接頭分子1（Iba1）是在小神經膠質細胞中專一性表達的鈣結合蛋白，在神經炎症、神經損傷和中樞神經系統缺血後，其在小神經膠質細胞中的表現被往上調控。圖2C顯示，與SAH組相比，治療組中Iba1陽性小神經膠質細胞的數量顯著下降，這指出治療組中的發炎情形較低。
本實施例中揭露的所有資料都指出，鞘內注射實施例2中製備的培養基級分，改善了腦組織氧合作用並且減少了腦血管痙攣和發炎，因此在所述動物模式中提供了神經元保護。
實施例 5 ：神經元細胞活力測定
經顯示，來自於患者和大鼠的SAH後腦脊髓液，會引發神經元細胞死亡（Wang K.C.等，同上）。進行本實施例是為了確認在實施例4的治療組中觀察到的組織損傷減少，是否歸因於實施例2中製備的培養基級分對於皮質神經元的直接有益效應。
從胎齡15天（E15）的大鼠胚胎建立了大腦皮質的解離細胞神經元富化培養物。將細胞平舖在位於聚乙烯亞胺基底上的60 mm直徑塑膠皿或35 mm玻璃底皿中，並且置於0.8 ml含有Earle鹽且補充有10%熱滅活FBS（Gibco® , Grand Island, 美國紐約州）、1 mM L-穀胺醯胺、1 mM丙酮酸鹽、20 mM KCl、26 mM碳酸氫鈉的最小限度必需培養基（pH 7.2）中。在細胞貼壁後，將培養基更換為含有B27補充物（Gibco® , Grand Island, 美國紐約州）的Neurobasal培養基。在7至9日齡的培養物中進行實驗。培養物中約有95%的細胞是神經元，其餘細胞是星形膠質細胞。將培養的神經元與在實施例4中從SAH大鼠收集的0.25 ml腦脊髓液（CSF）和5 ml Locke緩衝液一起培育。將對照培養物在含有10 mM葡萄糖的Locke緩衝液中培育。
用Alamar藍染料評價細胞活力。對解離的細胞進行計數，並將其平舖於24孔平盤中，並且暴露於預定時間的處理。除去培養基，並且更換為每孔300 μl經稀釋於Locke溶液中的0.5% Alamar藍，並且在37℃、5% CO2 培養箱中培育1-2小時。使用HTS 7000 Plus Bio Assay Reader （540 nm的激發波長和590 nm的發射波長；購自Perkin-Elmer Inc.，Wellesley，美國麻塞諸塞州）測量Alamar藍反應產物的位準。以未經處理的對照培養物的平均值的百分比，來表示暴露於實驗處理的培養物的數值。
如圖3所示，從SAH組大鼠採集的腦脊髓液引發了神經元死亡，而將實施例2中製備的培養基級分（2μg/ ml和10 μg/ ml）外源施用給暴露於CSF的培養的神經元時，顯示出顯著下降的死亡趨勢。該結果指出，實施例2中製備的培養基級分，針對由SAH患者取得的CSF內的某些細胞毒性分子，展現出了防禦作用。
實施例 6 ： D-gal 誘導的肝性腦病
將雄性Wistar大鼠（250至300克）隨機分為3組，即：對照組，其中對大鼠腹腔內注射D-半乳糖胺（D-gal）（1000 mg/kg）一次，以引發急性肝衰竭；治療組，其中在D-gal注射後3小時對大鼠鞘內注射實施例2中製備的培養基級分；和假試（Sham）組，其中大鼠既未用D-gal處理也未用實施例2中製備的培養基級分處理。
按照實施例4中所述的程式，在D-gal注射後第24小時，觀察並測量大鼠大腦膜的微循環脈管系統。如圖4A和4B所示，與假試組相比，對照組中腦表面處的局部血流和腦組織氧壓顯著降低，而在治療組中則觀察到局部血流和腦組織氧壓的恢復。該結果指出，鞘內注射實施例2中製備的培養基級分，逆轉了由D-gal誘導的肝性腦病引起的大腦微循環病損。
在D-gal注射後第48小時犧牲動物，並將它們的腦在含有4%甲醛的PBS（由多聚甲醛粉末新鮮製備）中於4℃固定過夜，然後轉移至4℃的連續的20%蔗糖溶液和30%蔗糖溶液（w/v）中，直至腦沉到溶液底部。在Tissue-Tek®包埋中心儀（Sakura, Torrance, 美國加利福尼亞州）中將腦包埋，而後在冠狀解剖平面中進行切片（使用低溫恒溫器製作10 μm的切片）。先將切片暴露於含有0.1% Triton X-100（Amresco，Santa Cruz，美國加利福尼亞州）和10%正常山羊血清（Sigma Chemical Co.，St. Louis，美國密蘇里州）的PBS中，歷時至少30分鐘，以阻斷非專一性抗體結合。根據製造商的說明書，使用TUNEL Assay（Calbiochem/EMD Chemicals，Gibbstown，美國新澤西州）評估神經膠質細胞的凋亡。圖4C顯示，與對照組相比，治療組中的TUNEL陽性神經膠質細胞的數量顯著下降，這指出所注射的培養基級分在該動物模式中提供了神經元保護。
實施例 7 ：神經元活性的增強
將30隻野生型AB斑馬魚（Danio rerio ）轉移到6孔微孔平盤中。通過肌肉注射，用實施例2中製備的培養基級分來處理斑馬魚（22、67和200 ng/魚），注射體積為20 nL/魚。培養基級分梯度是被稀釋在生理鹽水中，而生理鹽水則做為載劑對照組。處理後，用自動視頻跟蹤系統監測來自每組的10隻斑馬魚，以測量斑馬魚移動的總距離（S）。使用下述等式來計算運動性的降低：
運動性降低（%） = （1 - （S（樣品）/S（載劑）） × 100%。
結果總結在下表1中。

表1. 斑馬魚（n=10）中的運動性降低
上表1中所示的資料指出，實施例2中製備的培養基級分的處理以劑量相依性的方式增強了斑馬魚的運動性，並因此增強了斑馬魚的神經元活性。
在一個單獨的實驗中，將30隻野生型AB斑馬魚幼體轉移到6孔微孔平盤中。通過卵黃囊注射，用實施例2中製備的培養基級分處理斑馬魚幼體（44、133和400 ng/魚），注射體積為40 nL/魚。培養基級分梯度是被稀釋在生理鹽水中，而生理鹽水則做為載劑對照組。處理後，用吖啶橙對斑馬魚染色，在螢光顯微鏡下對來自每組的10隻斑馬魚拍照，以量化斑馬魚皮膚螢光強度（S）。使用以下等式計算樣品引發的皮膚毒性：
皮膚毒性 = [S（樣品）/S（載劑） – 1] × 100%。
結果示於圖5A和5B中，並進一步列於下表2中。
表2. 斑馬魚（n=10）中的皮膚毒性
表2指出，實施例2中製備的培養基級分對斑馬魚皮膚不具毒性。圖5A和5B顯示，在用實施例2中製備的培養基級分處理的斑馬魚中，既未觀察到異常的皮膚和肌肉泛型交替，也沒有觀察到異常的色素沉著。
實施例 8 ：抗帕金森氏症功效測試
將30隻野生型AB斑馬魚幼體轉移到6孔微孔平盤中。用神經毒素6-羥基多巴胺（6-OHDA）處理斑馬魚，以引發帕金森氏症模式。將諾米芬辛（一種市售的去甲腎上腺素-多巴胺重攝取抑制劑）使用做為陽性對照藥物，並且藉由在1.5 μg/mL的最終濃度下進行浸泡來投藥。以44、133和400 ng/魚的濃度來測試實施例2中製備的培養基級分，其藉由卵黃囊注射來給予。諾米芬辛和培養基級分均與6-OHDA共處理。處理後，將魚幼體從6孔平盤轉移到96孔平盤中，每孔中一條魚和200 μL溶液，然後將平盤載入到斑馬魚特用的行為分析系統（Viewpoint, 法國）中，並記錄每隻幼體的運動性30分鐘，每組記錄10隻幼體。測量幼體的總游泳距離（D，單位mm）做為評估帕金森氏症治療功效的終點。使用下述等式來計算抗帕金森氏症功效：
功效 = {[D (樣品) – D (模式)] / D (對照) – D (模式)]} × 100 %。
結果示於圖5A和5B中，並進一步列於下表3中。


表3. 斑馬魚模式(n=10)中的抗帕金森氏症功效
與模式組相比，*p ＜ 0.05, *** p ＜ 0.001。
在6-OHDA引發的帕金森氏症樣斑馬魚幼體模式測定中，實施例2中製備的培養基級分，在三個測試濃度下都顯著地挽救了帕金森氏症樣運動障礙，這指出該培養基級分展現出了對暴露於6-OHDA的斑馬魚胚胎的神經保護效應。
實施例 9 ：帕金森氏症大鼠模式
將雄性Lewis大鼠（8周齡）隨機分為4組。對照組的大鼠每天腹腔內注射二甲亞碸，而三個治療組中的大鼠持續兩周腹腔內注射溶於二甲亞碸中的魚藤酮（2 mg/kg/天）。使用配備有直徑3.1 cm的旋轉棒的旋轉棒裝置（Ugo Basile model 7700，Veresi，義大利），在魚藤酮處理之前和之後評估各組中動物的運動協調性。在旋轉棒測試中，首先使動物暴露於3天的預訓練程序，以在第4天的實際評估前使它們適應處於旋轉棒上。圖6中所示的動物從旋轉棒上跌落的平均延遲期指出，受魚藤酮損傷的大鼠顯示出了帕金森氏症的典型症狀，因此與對照相比具有顯著更低的表現。在魚藤酮處理後，治療組中的大鼠持續兩周每天顱內注射0.6 mg實施例2中製備的培養基級分，或持續兩周每天靜脈內注射30 mg實施例2中製備的培養基級分，或持續兩周每天靜脈內注射100 mg實施例2中製備的培養基級分。在各組中再次進行旋轉棒測試，並記錄動物從旋轉棒上跌落的平均延遲期。如圖6所示，施用本案所揭露的培養基級分，改善了大鼠模式中的魚藤酮引發的運動協調性病損。
儘管本發明已參照以上較佳具體例說明，應認知到較佳具體例僅為例示目的給予而非意圖限制本發明的範疇，可進行對熟習相關技藝者而言極為明顯的各種更動與改變，而無逸離本發明精神與範疇。
本文提及的所有論文、出版物、文獻、專利、專利申請、網頁和其他印刷或電子檔，包括但不限於下面列出的參考文獻，都通過援引將其整體併入。在出現衝突時，以包括定義在內的本說明書為準。
無
本發明的上述與其他目的、特徵與效應在參照下列較佳具體例之說明連同隨附圖式將變得顯明，其中：
圖1A-1C是顯示對照組（圖1A）、SAH組（圖1B）和治療組（圖1C）中大鼠腦表面上的微循環脈管系統的圖像，其中大鼠腦中的小動脈和小靜脈分別用字母A和V標記；
圖2A和2B是柱狀圖，顯示出SAH大鼠模式中腦表面處的局部血流和腦組織氧壓；
圖2C是組織學圖像，顯示出SAH大鼠模式的腦組織中的Iba1陽性小神經膠質細胞；
圖3是柱狀圖，顯示出本發明的神經保護組合物對神經元細胞活力的增強作用；
圖4A和4B是柱狀圖，顯示出D-gal誘導的大鼠肝性腦病模式中腦表面處的局部血流和腦組織氧壓；
圖4C是組織學圖像，顯示出D-gal誘導的大鼠肝性腦病模式的腦組織中TUNEL陽性神經膠質細胞；
圖5A和5B是用本發明的神經保護組合物處理的斑馬魚的螢光顯微圖像；以及
圖6是柱狀圖，顯示出本文所揭露的培養基級分對魚藤酮損傷大鼠模式中的旋轉棒活動量的影響，其中在用魚藤酮處理之前（預測試組）、用魚藤酮處理之後（損傷組）和施用培養基級分之後，對各組中的大鼠進行旋轉棒試驗。

Claims (10)

  1. 一種製備神經保護組合物的方法，該方法包含以下步驟： (i)在無血清基礎培養基中培養間充質幹細胞，歷時至少3小時，以獲得一細胞培養物；和 (ii)處理步驟(i)中獲得的細胞培養物，以得到分子量不超過約5 kDa的水性級分做為該神經保護組合物。
  2. 如請求項1所述的方法，其中該處理步驟(ii)包含通過分子量截留值為5 kDa的膜來超濾步驟(i)中獲得的細胞培養物，從而收集通過該膜的濾液。
  3. 如請求項1所述的方法，其中該間充質幹細胞是牙髓間充質幹細胞。
  4. 一種可以藉由請求項1至3中任一項所述的方法獲得的神經保護組合物。
  5. 一種神經保護組合物在製造一供用於治療個體體內與神經元損傷相關的神經障礙的醫藥品上的用途，其中，所述神經保護組合物可以藉由請求項1至3中任一項所述的方法獲得。
  6. 如請求項5所述的用途，其中該與神經元損傷相關的神經障礙選自於由肌萎縮側索硬化症、阿茲海默症、帕金森氏症、亨廷頓氏症、肌營養不良症、多發性硬化、缺血性中風、出血性中風、短暫性腦缺血發作（TIA）和創傷性腦損傷（TBI）組成的群組。
  7. 如請求項6所述的用途，其中該與神經元損傷相關的神經障礙選自於由阿茲海默症、帕金森氏症、亨廷頓氏症、缺血性中風、原發性蛛網膜下腔出血（SAH）、繼發性SAH、創傷性SAH和腦內出血（ICH）、短暫性腦缺血發作（TIA）和創傷性腦損傷（TBI）組成的群組。
  8. 如請求項7所述的用途，其中該與神經元損傷相關的神經障礙選自於由帕金森氏症、原發性SAH和繼發性SAH組成的群組。
  9. 一種神經保護組合物在製造一供用於抑制有需要的個體的腦神經炎症的醫藥品上的用途，其中該神經保護組合物可以藉由請求項1至3中任一項所述的方法獲得。
  10. 如請求項5所述的用途，其中該個體選自於由人類和非人類脊椎動物組成的群組。
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