SU1720492A3 - Способ ферментативной изомеризации глюкозы во фруктозу - Google Patents

Способ ферментативной изомеризации глюкозы во фруктозу Download PDF

Info

Publication number
SU1720492A3
SU1720492A3 SU853938656A SU3938656A SU1720492A3 SU 1720492 A3 SU1720492 A3 SU 1720492A3 SU 853938656 A SU853938656 A SU 853938656A SU 3938656 A SU3938656 A SU 3938656A SU 1720492 A3 SU1720492 A3 SU 1720492A3
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
enzyme
fructose
glucose
isomerase
column
Prior art date
Application number
SU853938656A
Other languages
English (en)
Inventor
Е.Ллойд Норман
Л.Антрим Ричард
Original Assignee
Стабра А.Г. (Фирма)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Стабра А.Г. (Фирма) filed Critical Стабра А.Г. (Фирма)
Application granted granted Critical
Publication of SU1720492A3 publication Critical patent/SU1720492A3/ru

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N11/00Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P1/00Preparation of compounds or compositions, not provided for in groups C12P3/00 - C12P39/00, by using microorganisms or enzymes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/24Preparation of compounds containing saccharide radicals produced by the action of an isomerase, e.g. fructose

Landscapes

  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Charge And Discharge Circuits For Batteries Or The Like (AREA)
  • Circuits Of Receivers In General (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к биотехнологии , в частности к способам ферментативной изомеризации глюкозы, и может быть использовано в пищевой промышленности дл  получени  фруктозы. Целью изобретени   вл етс  удешевление способа. Способ заключаетс  в пропускании раствора глюкозы через колонку с адсорбированной на гранулированной DEAE - целлюлозой (GDC) глюкозоизомеразы с последующим получением содержащих фруктозу растворов. На колонке сначала адсорбируют 10-50% фермента от максимальной емкости анионооб- менника, а дл  поддержани  посто нной активности глюкозоизомеразы в колонке периодически провод т добавление новых порций фермента до тех пор, пока общее количество введенного фермента не достигнет максимальной емкости сорбента. Использование изобретени  позвол ет удешевить способ на 50-62%. 2 табл, СП С

Description

Изобретение относитс  к биотехнологии , в частности к способам ферментативной изомеризации глюкозы, и может быть использовано в пищевой промышленности дл  получени  фруктозы.
Целью изобретени   вл етс  удешевление способа.
Способ заключаетс  в пропускании раствора глюкозы через колонку с адсорбцион- но-иммобилизованной на гранулированной DEAE-целлюлозе GDC глюкозоизомеразой с последующим получением содержащих фруктозу растворов. Дл  поддержани  посто нной активности глюкозоизомеразы в колонке необходимо периодически добавл ть новые порции растворимого фермента,
так как в противном случае содержание фруктозы в растворе снижаетс . С целью эффективного св зывани  этих порций фермента с анионообменником на нем сначала адсорбируют фермент в количестве 10-50% от максимальной емкости DEAE-целлюло- зы, а затем периодически добавл ют глюко- зоизомеразу до тех пор, пока общее количество введенного фермента не достигнет максимальной емкости DEAE-целлюлозы. Изобретение позвол ет удешевить способ на 50-62%, так как при одинаковой мощности установки дл  изомеризации глюкозы в предлагаемом способе используютс  3 колонки вместо 6-8 колонок по известному способу.
vi ю о N
SO
го
со
Пример 1. Дл  осуществлени  способа используют гранулированную DEAE-цел- люлоэу марки GDC, а также микробную глюкозоизомеразу. Определение адсорбционной емкости целлюлозы в отношении глюкозоизомеразы показывает, что на 1 г сухого сорбента сорбируетс  около 584 международных единиц (межд.ед.) фермента.
Начальное фиксирование фермента нз гранулированной DEAE-целлюлозе GDC,
Носитель GDC частично загружают растворимой изомераэой примерно до 25% до пустимой нагрузки. Готов т суспензию GDC (14,8 г сухой основы) в деионизированной воде и значение рН устанавливают равным до 6,0-7,1. Суспензию деаэрируют в услови х вакуума вод ного аспиратора при комнатной температуре в течение 60 мин и затем заливают в стекл нную колонку с двойными стенками Glass AdjustachromK размером один дюйм в диаметре на 12 дюймов длины, имеющую стекл нное дно. Слой уплотн ют на глубину 3,54 дюймов (90 мм). Стекл нные бусинки помещают на верх сло  (4 дюйма или 101 мм) дл  распределе- ни  потока. Гранулированную DEAE-целлю- лозу загружают посредством накачки 145 мл (2600 межд.ед. глюкозоизомера) растворимой изомеразы, проход щей вниз через слой со скоростью 1 мл/мин при комнатной температуре.
Температуру вод ной рубашки на колонке устанавливают равной 61 °С. 50% -ный раствор кристаллической целлюлозы при значении рН 7,8, содержащим 5 мМ МдЗСм и 5 мМ NaHSOa, пропускают вниз через слой фиксированной изомеразы со скоростью потока 0,4 мл/мин. Колонка работает 16 ч. Дл  анализа берут пробу выход щего материала и активность фиксированной изомеразы определ ют по следующему уравнению:
с R . е -lom
.(1)
где Et - обща  активность фиксированной изомеразы, межд.ед.;
R - скорость потока, мл/ч,1
С - концентраци  моносахарида, г/мл;
Кг - посто нна  скорости реакции при 61°С (0,019 г/межд.ед. изомеразы глюкозы /ч);
I - Степень изомеризации выход щего потока оавна концентраци  фруктозы
концентраци  моносахарида
10 - вход щего потока равно 0 дл  кристаллической декстрозы;
U - I при равновесии равно 0,510 при 61°С.
Степень ио еризации I измер ют по- л риметрией снедающим образом. Образцы вход щего в колонку потока и выход щего потока разбавпч ог 20-кратно деионизированной водой и выдерживают в течение 1 ч до достижение, равновеси  при вращении. Измерени  на вращение провод т на пол риметре модели Перкин Элмер 241 при25°С при длине волны ртутного источника 576 нм. Прибор устанавливают на нуль с водой в  чейке и получают показани  в градусах вращени  разбавленного вход щего и выход щего потоков.
Активность иммобилизованной изомеразы , определенную данным методом анализа , составл ет 1548 межд.ед. глюкозоизомеразы и это указывает на то, что 60% от 2600 межд.ед. растворимой глю- козоизомерэзы, загруженной на носитель, составл ет активность фиксированной изомеразы .
50%-ный растсюр гидролиза кукурузного крахмала, содержащий 95% декстрозы на сухой основе твердых веществ, 5 мМ MgS04 и 5 мМ NaHSOa, довод т до рН 7,8 и пропускают в нижнем потоке через слой фиксированной изомеразы при 64°С. Начальный поток через колонку вычисл ют по уравнению (1), Конверси  во фруктозу составл ет примерно 4 %. Этот поток со скоростью примерно 17 мл/ч поддерживают посто нным за исключением времени анализа активности иммобилизованной изомеразы. Содержание фруктозы в выход щем потоке измер ют в основном методом, который примен ют дл  определени  степени изомеризации .
% фруктозы 100 Id,
где d - содержание моносахарида в выход щем потоке, выраженное как дол  твердых частиц на сухой основе.
Уровень фруктозы постепенно уменьшаетс  в течение 16 дней до примерно 40%, после чего осуществл ют первую добавку растворимого фермента. Анализ активности показывает, что дл  компенсировани  потер нной активности и увеличени  конверсии фруктозы до 44% требуетс  примерно 800 межд.ед. изомеразы глюкозы.
Соответственно 40 мл фермента (720 межд.ед. изомеразы глюкозы) добавл ют в 126 мл 50%-ного раствора кристаллической декстрозы, содержащего указанные соли. Подачу в колонку переключают на раствор декстрозы, содержащий фермент, и пропускают раствор со скоростью 0,3 мл/мин до истощени . Обнаружено , что выход щий из колонны поток во врем  процесса адсорбции фермента не со- лержит растворимую изомеразу (определено путем выдерживани  в термостате выход щего материала в течение 16 ч при 61 °С и измерени  повышенного содержани  фруктозы ). Раствор кристаллической декстрозы продолжают примен ть как питающий рас- твор дл  анализа дополнительной активности фиксированной изомеразы. Затем снова переключают на подачу гидролизата из кукурузного крахмала и уровень фруктозы в выход щем потоке восстанавливаетс  до 44%.
Така  последовательность постепенного снижени  уровн  фруктозы в выход щем потоке до примерно 40%, затем переключение на подачу раствора кристаллической де- кстрозы дл  анализа фиксированной изомеразы, добавка растворимого фермента через питающий поток декстрозы, повторный анализ активности фиксированной изомеразы и переключение на подаму гидролизата кукурузного крахмала продолжаетс  в течение 17 недель, В течение остальных 10 недель испытаний последовательность измен етс , исключа  анализ активности фиксированной изоме- разы до и после добавки фермента. Затем периодически добавл ют посто нное количество растворимого фермента. Уровень содержани  фруктозы в течение этого времени измен етс  только между произ- вольно установленными пределами 40- 44%, при этом скорость потока поддерживают посто нной.
Через 7,5 недель работы активность фермента в колонке удваиваетс  без значи- тельного вли ни  на работу системы, за исключением увеличени  скорости потока дл  достижени  выхода 40-44% фруктозы. После 13 недель работы уровень солей в питающем потоке гидролизата кукурузного крахмала снижают до 1 мМ МдЗОз (с 5 мМ) и 2 мМ NaHSOa (с 5 мМ).
Анализ дл  24 недель испытани  выход щего потока, вз того во врем  загрузки фермента, показывает, что по- следн   добавка фермента дает значение поглощенного общего фермента 649 межд.ед. изомеразы глюкозы/г, близкое к его способности, измеренной вначале как 684 межд.ед. изомеразы глюкозы/г.
Во врем  последующих загрузок потер  активности увеличиваетс , хот  адсорбируетс  достаточное количество свежего фермента дл  поддерживани  свыше 40% конверсии фруктозы. Тот факт, что фермент все же адсорбируетс  после превышени  начально измеренной способности, указывает на то, что некотора  часть инертного фермента может де- сорбироватьс .
В табл. 1 представлены данные по производству фруктозы и добавке фермента в 27-недельных испытани х. Количество полученной фруктозы выражено в граммах от 43% сиропа фруктозы на сухой основе.
П р и м е р 2. Осуществл ют загрузку колонки, в результате которой растворима  глюкозоизомераза, примен ема  дл  частичной загрузки носител  в начале и во врем  последующих добавок, имеет высокую чистоту. Операции, осуществл емые в колонке , аналогичны примеру 1, т.е. скорость потока гидролизата кукурузного крахмала поддерживаетс  посто нной, а периодические добавки растворимого фермента в растворе кристаллизованной декстрозы осуществл ют через питающий трубопровод .
Таким образом, в течение 14 недель поддерживают конверсию фруктозы в пределах 40-44%. Загрузка рафинированного гидролизата кукурузного крахмала с 45% твердых веществ содержит примерно 95% декстрозы, 1,5 мМ MgS04 и 2,0 мМ NaHSOa. Значение рН вход щего материала довод т до 7,8 дл  получени  выход щего потока с рН 7,5, температура сло  фиксированного фермента равн лась 60°С.
Как описано в примере 1, в стекл нную колонку добавл ют носитель GDC (на сухой основе 7,75 г). Носитель загружают очищенным ферментом примерно до 25% допустимой нагрузки посредством накачки нисход щего потока 50%-ным раствором кристаллической декстрозы (рН 7.8; 5 мМ MgS04, 5 мМ NaHSOa), содержащим 136 мл очищенного фермента, разработанного 1:40 (2720 межд.ед. изомеразы глюкозы) со скоростью потока 0,4-0,7 мл/мин. В выход щем потоке растворимый фермент не обнаружен. Поток раствора кристаллической декстрозы (рН 7,8; 5 мМ MgS04, 5 мМ №Н50з) используют дл  анализа, а рубашку колонки снабжают водой, так что температура сло  колонки равна 60°С.
Активность иммобилизованного фермента , определенна  методом анализа, который описан в примере 1, равна 1686 межд.ед. глюкозоизомеразы.
Гидролизат кукурузного крахмала пропускают через слой фиксированного фермента , при этом поток регулируют таким образом, чтобы можно было получить 40- 44% конверсии фруктозы. Скорость потока поддерживают посто нной, т.е. примерно 0,35 мл/мин на прот жении всего испытани . Так как уровень фруктозы уменьшаетс  со временем из-за инактивации фермента,
то в 50%-ный раствор кристаллической декстрозы (рН 7,8; 5 г-моль MgS04, 5 г-моль Май 50з) добавл ют примерно 20 мл аликво- ты разбавленной и очищенной растворимой изомеразы, содержащей 434 межд.ед. глю- козойзомеразы, причем раствор накачивают через слой со скоростью примерно 0,4 мл/мин. После адсорбции подачу переключают снова на гидролизат кукурузного кразмала.
В табл. 2 представлены данные по изомеризации и добавке фермента. Как и в примере 1, посто нную конверсию фруктозы поддерживают при посто нной скорости потока посредством периодической добав- ки растворимой изомеразы.
П р и м е р 3. Осуществл ют чагрузку колонки, при этом использованэ растворима  глюкозоизомераза высокой чистоты с тем, чтобы первоначально загруз-пи носи- тель на 10% его полной емкости и дл  последующих добавлений. Растворимый фермент, носитель и операции с колонкой такие, как в примере 2, однако используетс  друга  степень начальной загрузки.
В 7,75 г носител  из примера 2 добавл ют растворимый фермент в количестве примерно 10% его емкости при помощи нагнетани  по переточной трубе 50%-но- го раствора кристаллической декстрозы (рН 7,8; 5 мМ MgS04, 5 мМ №НЗОз), содержащего 55 мл очищенного фермента из примера 2, разбавленного в пропорции 1:40 (1088 межд.ед. активности) с объемной скоростью 0,4-0,7 мл/мин. Активность им- мобилизованного фермента составл ет 762 межд.ед, в пересчете на активность при абсорбировании 70% фермента.
Гидролизат кукурузного крахмала пропускают через слой фиксированного фер- мента и поток регулируют таким образом, чтобы обеспечить степень превращени  фруктозы 40-44%. Объемную скорость поддерживают посто нной на уровне примерно 0,14 мл/мин на прот жении всего испыта- ни . Когда содержание фруктозы снижаетс  со временем из-зй распада фермента, порцию примерно в 20 мл разбавленного очищенного фермента, содержащего 434 межд.ед., добавл ют в 50%-ный раствор кристаллической декстрозы (рН 7,8; 5 мМ MgSO4, 5 мМ NaHSOa) и этот раствор нагнетают через слой со скоростью примерно 0,4 м /мин. После адсорбции колонку снова переключают на посто нный гидроли- зат. Посто нную степень превращени  фруктозы поддерживают при посто нной объемной скорости при помощи периодических добавлений растворимой изомеразы.
П р и м е р 4, Осуществл ют загрузку колонки, при этом используют растворимую г юкозоизомеразу высокой чистоты дл  начальной загрузки носител  до 50% полной емкости и дл  последующего добавлени . Растворимый фермент, носитель и операции с колонкой те же, что в примере 2 за исключением степени начальной загрузки.
В 7,75 г носител  из примера 2 добавл ют растворимый фермент в количестве примерно 50% его емкости при помощи нагнетани  по переточной трубе 50%-но- го раствора кристаллической декстрозы (рН 7,8; 5 мМ MgS04, 5 мМ NaHSOa), содержащего 270 мл очищенного фермента из примера 2, разбавленного в отношении 1:40 (5440 межд.ед.) с объемной скоростью 0,4- 0,7 мл/мин. Активность иммобилизованного фермента составл ет 3264 межд.ед..при выражении активности в пересчете на адсорбирование 60% фермента.
Гидролизат кукурузного крахмала пропускают через слои фиксированного фермента , а объемную скорость регулируют таким образом, чтобы обеспечить степень превращени  фруктозы 40-44%. Объемную скорость поддерживают посто нной на уровне примерно 0,70 мл/мин в течение всего испытани . Когда уровень фруктозы падает со временем из-за разрушени  фермента , порцию в примерно 20 мл разбавленного , очищенного фермента из примера 2, содержащего 434 межд.ед., добавл ют в 50%-ный раствор кристаллической декстрозы (рН 7,8; 5 мМ МаНЗОз) и раствор нагнетают через указанный слой со скоростью примерно 0,4 мл/мин. После адсорбции сырье снова переключают на посто нный гадролизат. Посто нную степень превращени  фруктозы поддерживают при посто нной объемной скорости при помощи периодического добавлени  растворимой изомеразы.
При мощности установки 200 т/день дл  получени  42%-ного раствора фруктозы используют 3 колонки.
Таким образом, использование предложенного изобретени  позвол ет значительно удешевить способ получени  фруктозы за счет применени  3 колонок вместо 6-8 (т.е. удешевление на 50-62%) при одинаковой мощности установки (200 т/день).

Claims (1)

  1. Формула изобретени 
    Способ ферментативной изомеризации глюкозы во фруктозу, заключающийс  в пропускании раствора глюкозы через колонку , содержащую глюкозоизомеразу, им- мобилизованную адсорбцией на ачионообменнике, причем растворимую глюкозоизомеразу добавл ют периодически по мере снижени  выхода фруктозы, о т- личающийс  тем, что, с целью удешевлени  способа, в качестве энионооб- менника используют гранулированную ОЕАЕ-целлюллозу-ООС, содержание адсор- бированной иммобилизованной глкжозои- зомеразы устанавливают равным
    10-50% от максимальной емкости DEAE- целлюлозы-GDC, а периодическое давление глюкозоизомеразы провод т до величины, при которой общее количество фермента, добавленного на носитель, не превышает максимальную емкость DEAE-целлюлозы- GDC.
    Таблица 1
    Данные изомеризации и добавки фермента
    б л и ц а 2
SU853938656A 1984-08-02 1985-08-01 Способ ферментативной изомеризации глюкозы во фруктозу SU1720492A3 (ru)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US63687984A 1984-08-02 1984-08-02

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1720492A3 true SU1720492A3 (ru) 1992-03-15

Family

ID=24553722

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU853938656A SU1720492A3 (ru) 1984-08-02 1985-08-01 Способ ферментативной изомеризации глюкозы во фруктозу

Country Status (13)

Country Link
EP (1) EP0171258B1 (ru)
JP (1) JPH0611234B2 (ru)
AT (1) ATE71142T1 (ru)
BE (1) BE903010A (ru)
CA (1) CA1248896A (ru)
CH (1) CH664973A5 (ru)
DE (1) DE3585060D1 (ru)
FI (1) FI91279C (ru)
FR (1) FR2568586B1 (ru)
HU (1) HU194304B (ru)
IT (1) IT1187722B (ru)
LU (1) LU86030A1 (ru)
SU (1) SU1720492A3 (ru)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS62248487A (ja) * 1986-04-22 1987-10-29 Dentaru Kagaku Kk グルカナーゼを固定化したアパタイトおよびその製造法
CA2778095A1 (en) * 2012-05-17 2013-11-17 Co2 Solutions Inc. Activity replenishment and in situ activation for enzymatic co2 capture packed reactor

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AU467493B2 (en) * 1973-09-13 1975-12-04 Cpc Internationalinc Method of dextrose isomerization
JPS571997B2 (ru) * 1973-09-13 1982-01-13
DE2821890A1 (de) * 1978-05-19 1979-11-22 Dynamit Nobel Ag Verfahren zur regenerierung von enzym-immobilisaten
CA1143308A (en) * 1980-03-10 1983-03-22 Guan-Huei Ho High performance immobilized enzyme compositions by multi-layering immobilization offering a high amount of activity per unit volume
US4411996A (en) * 1982-06-30 1983-10-25 Nabisco Brands, Inc. Process for isomerizing glucose

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Иммобилизованные форменты/Под ред. И.В.Березина и др. М., 1976, т. 1, с. 127-140. Патент US № 3960663. кл. 195/31, опублик.. 1979. *

Also Published As

Publication number Publication date
CA1248896A (en) 1989-01-17
FI852989L (fi) 1986-02-03
FR2568586B1 (fr) 1990-04-13
HUT39206A (en) 1986-08-28
EP0171258A3 (en) 1989-04-12
EP0171258B1 (en) 1992-01-02
FI91279B (fi) 1994-02-28
LU86030A1 (fr) 1986-02-12
EP0171258A2 (en) 1986-02-12
DE3585060D1 (de) 1992-02-13
ATE71142T1 (de) 1992-01-15
CH664973A5 (fr) 1988-04-15
IT1187722B (it) 1987-12-23
IT8521816A0 (it) 1985-08-01
HU194304B (en) 1988-01-28
BE903010A (fr) 1986-02-03
FI852989A0 (fi) 1985-08-02
FR2568586A1 (fr) 1986-02-07
FI91279C (fi) 1994-06-10
JPH0611234B2 (ja) 1994-02-16
JPS6140791A (ja) 1986-02-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US5437993A (en) Preparation of cross-linked glucose isomerase crystals
Nakanishi et al. Long-term continuous synthesis of aspartame precursor in a column reactor with an immobilized thermolysin
JPS6215198B2 (ru)
JPH0361420B2 (ru)
SU1720492A3 (ru) Способ ферментативной изомеризации глюкозы во фруктозу
CN110049991A (zh) 用于纯化阿洛酮糖转化产物的方法
Oestergaard et al. Use of sweetzyme in industrial continuous isomerization various process alternatives and corresponding product types
Antri et al. A new regenerable immobilized glucose isomerase
OKOS et al. Hydrolysis of lactose in acid whey using β‐galactosidase adsorbed to a phenol formaldehyde resin
US5204251A (en) Process of enzymatic interesterification maintaining a water content of 30-300 ppm using Rhizopus
FR2563234A1 (fr) Procede de preparation du d-glucose et d'hydrolysats d'amidon
EP0112147A2 (en) Continuous enzymatic process for producing maltose from starch and starch hydrolysates
US5177005A (en) Method for maintaining immobilized glucose isomerase activity during continuous isomerization of glucose to fructose
US5512464A (en) Method of producing high fructose corn syrup from glucose using noble gases
JPH0342880B2 (ru)
Furui et al. A bioreactor-crystallizer for L-malic acid production
AU618277B2 (en) Production of organic acid esters
Antrim et al. New isomerization technology for high fructose syrup production
JPH057999B2 (ru)
JPH029022B2 (ru)
KR830002846B1 (ko) 덱스트로오스를 함유하는 시럽 제조방법
GB2205850A (en) Process of enzymatic interesterification in a low water content condition
JPH0545236B2 (ru)
JPS60188090A (ja) イングルコースの製造方法
JPH034779A (ja) 酵素固定化カラム製造装置