SU1554382A1 - Способ конструировани гена интерлейкина-2 человека - Google Patents

Способ конструировани гена интерлейкина-2 человека Download PDF

Info

Publication number
SU1554382A1
SU1554382A1 SU884382438A SU4382438A SU1554382A1 SU 1554382 A1 SU1554382 A1 SU 1554382A1 SU 884382438 A SU884382438 A SU 884382438A SU 4382438 A SU4382438 A SU 4382438A SU 1554382 A1 SU1554382 A1 SU 1554382A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
dna
gene
units
buffer
restriction
Prior art date
Application number
SU884382438A
Other languages
English (en)
Inventor
А.Н. Синяков
Н.К. Данилюк
О.И. Серпинский
М.А. Урманова
Original Assignee
Всесоюзный Научно-Исследовательский Институт Молекулярной Биологии
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Всесоюзный Научно-Исследовательский Институт Молекулярной Биологии filed Critical Всесоюзный Научно-Исследовательский Институт Молекулярной Биологии
Priority to SU884382438A priority Critical patent/SU1554382A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU1554382A1 publication Critical patent/SU1554382A1/ru

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

(46) 07.05.91. Ьюл. I 17
(21)4382438/ 13
(22)19.02.88
(71)Всесоюзный научно-исследователь ский институт молекул рной биологии
(72)А.Н.Син ков, Н.К.Данилюк, О.И.Серпинский и М.А.Урм нова
(53)575.224.2; 577.2/048(088.8)
(56)ЕР 017000, С 12 N 15/00, 1987.
(54)СПОСОБ КОНСТРУИРОВАНИЯ ГЕНА ИН- ТЕРЛЕЙКИНА-2 ЧЕЛОВЕКА
(57)Изобретение относитс  к молекул рной биологии и генетической инженерии . Целью эобретени   вл етс  упрощение способа. Разработан химико-ферментативный способ синтеза гена ннтерлейкина-2 человека, заключающийс  в том, что синтезируют 16 частично комЬ-J лементарных пол иуклеотмдов длиной 30-40 нуклеотидных звеньев, которые затем попарно достраивают до полных дуплексов с помощью ДОК полинеразы (фрагмент Кленова) с последующим клонированием каждого из четырех фрагментов в плаэмидах pFHI23 н pFHI24, способных давать субфрагменты с произвольно эапланмрованшмчм липкими концами после гидролиза рекомбинантмой ДНК эндонуклеазой рестрикции Рок I, направленно собирают полученные фрагменты ДНК гена- IL-2   плазмнде pFHI25.. 1 табл.
г
V)
Иэобретение относитс  к молекул р-, ной биологии и биотехнологии, конкрег- но к получению рекомбинантньЬс ДНК, содержащих полные гены биологически активных веществ, методами генети-- четкой инженерии, и может найти применение в биотехнологии при создании , и аммов - продуцентов целевых продуктов .
Целью изобретени   вл етс  упрощение способа.
Дл  достижени  цели разработан способ синтева гена интерлейкина-2 человека , заключающийс  в синтезе 16 частично комплементарных полинуклеоти- дов длиной 30-40 нуклеотидных звеньев, попарной репаративной достройке их до полных дуплексов с помощью ДНК- полимеразы (фрагмент Кленова) с последующим клонированием каждого из четырех фрагментов в.плаэмидах pFHI23
липкими концами после гидролиза ре- комбинантной ДНК эндонуклеазой рестрикции Fok I, последующей сборке полученных субфрагментов в плаэмнде pFH125.
Существенным отличием в предложенном конструировании  вл етс  использование синтетических частично плементарных поликуклеотидо в длиной 30-40 нуклеотидных звеньев, позвол ющих не(синтезировать полный дуплекс гена IL-2 и тем самым предоставл ющих возможность экономить 30Z работы по химическому синтезу целевого газа. Существенным отличием  вл етс  также использование дл  клонировани  и получени  субфрагментов плаэмнд рРН123 и pFH124, что позвол ет однозначно собрать целевой ген из субфраги pFHI24, способных давать субфр г- менты с произвольно запланированными -
СЛ
сл
00
00
ю
ментов с паранее запланированными липкими копи ми.
Пример I . Химический синтез нолинуклептмдов.
Синтез провод т твердофазным фос- фотрнэфнрным методом. В качестве носител  используют модифицированное стекло пористое СРП-10ОП. Наращивание олнгонуклеотидной цепи прово- д т от 3- к 5 -концу с помощью динуклеоэнддифосфатных производных (MeO)7TrNp (PhCI)Np(PhCT). Выделение нолевого продукта после деблокировани  реакционной смеси провод т путем последовательных хроматографии на T.ichrosoTb RP18 сначала п 0,1 М триэтиламмопийацетате в градиенте ацетонитрило 15-40%. Затем раст-. вор выделенного триэтилполинуклео- тнда упаривают досуха, раствор ют в 2,5 мл 80%-ной водной уксусной кислоты и выдерживают при комнатной температуре 45 мин. Раствор упаривают досуха, раствор ют остаток в 1 мл дистиллированной воды и хромато- графируют на Lichrosorb RP18 в 0,05 М триэтиламмонийацетате в градиенте ацетоннтрила 5-20%.
,
Дуплексы дл  клонировани  фрагмента Т. получают из полинуклеотидов (T-IV) (таблица). Дл  этого реакционную смесь, содержащую по 100 пмоль меченного у-Р 37АТР полннуклеотида (I) и фосфорйлированного холодным АТР полинуклеотида (II) в 100 мкл буфера 1 (60 мМ трис-HCl, рН 7,5, 10 мМ MgCli, 10 мМ 2-меркаптоэтанол) нагревают 10 мин при 50°С, охлаждают до 20°С, добавл ют dNTP до концентрации 250 мкМ и 10 ед. ДНК-полимеразы 1 (фрагмент Кленова). Реакционную смесь инкубируют 30 мин при 20 С. ДНК-дуплекс осаждают ацетоном, со- держащим 2% LiCIO, промывают спиртом , сушат на воздухе, осадок раствор ют в воде. Полученный дуплекс расщепл ют 50 ед, эндонуклеазы рестрикции PstI в 200 мкл буфера 2 (20 мМ трис-HCl, рН 7,8, 10 мМ MgCl 10 мМ 2-меркаптоэтанол), содержащего 50 мМ NaCl, в течение 3 ч при 37°С. Аналогично получают дуплекс из ло- линуклеотидов (III и IV), который расщепл ют обработкой 60 ед, эндо- нуклеаэы рестрикции Bam HI в 200 мкл буфера 2, содержащего 100 мМ NaCl, в течение 12 ч при , Оба рестрик
5
0
та втигел ют г помощью ггль-члсктрофо- реза в 8% ИААГ.
Реакционную гмесь, содержащую по 2 пмоль приготовленных дуплексов и 0,25 пмоль векторной ЛИК, полученной из pFH124 совместным р пчеплением эндонуклеаз рестрикции Ram HT(50 мкл раствора, содержащего буфер 2 и 100 мМ М{;С10, при 37°Г 1 ч) и Pst Т (50 мкл буфера 2 и 50 мМ NaCl при 37°Г I ч), обрабатывают 8 ед. ДИК ли- газы ф,-1га-Т4 в 30 мкл буфера 3 (20 мМ трис-НС. рН 7,5, 10 мМ MgCl,, 10 мМ 2-меркаптоэтанол и 0,25 мМ АТФ) в течение 16 ч при 10°С. Реакционную смесь используют дл  трансформации клеток E.coli JM103. Суспензию клеток после трансформации высевают на 1,5%- ный агар, содержащий 50 мкг/мл ампициллина и 50 мкг/мл X-gal. Из колоний L имеющих lac г -фенотип и гибридизую- щихс  с Рзг-меченными зондами, выдел ют щелочным методом ДНК, которую дополнительно анализируют с помощью Bsp I, Eco RI и Pst I-гидролиэа. Структуру рекомбинантной ДНК pFLlAI подтверждают модифицированным методом Максама-Гилберта о
Бактерии E.coli JMI03, содержащие плазмиды рРЫ41 со вставкой требуемого размера, выращивают в 100 мл LBJ среды. Дл  получени  целевого субфрагмента I, кодирующего часть гена человеческого IL-2 с заранее запланированными липкими концами, 60 мкг ДНК плазмиды pFL141 в 300 мкл буфера 1 и 50 мМ NaCl обрабатывают 30 ед. эндонуклеаэы рестрикции Pst I 1 ч при 37°С, а затем 30 ед. эндонуклеазы рестрикции Fok NI в тех же услови х- Целевой фрагмент длиной 100 нуклео- тидных пар выдел ют с помощью электрофореза в 5% ПААГ.
Пример 2, Получение ДНК субфрагме нта II, кодирующего аминокислотную последовательность, соответствующую 32-60 аминокислотам человеческого IL-2.
Аналогично примеру 1 из полинуклеотидов (V-VIII) фрагмента II получают дуплексы дл  клонировани . После репаратнвной достройки полинуклеотидов (V и VI) в описанных выше услови х полученный дуплекс обрабатывают 50 ед. эндонуклеазы рестрикции Sal GI в 200 мкл буфера 1, содер дщего 150 мМ NaCl в течение 12 ч при 37°Г:.
Bsp If Eco RI и Pst эндонуклеаэ рестрикции . Структуру полученной реком- бинатной ДНК pFL137 подтверждают методом Максама-Гилберта.
Колонии,, имеющие плаэмиды со вставкой требуемого размера, выращивают в 100 мл LB-среды. Дл  получени  целевого субфрагмента IV с эаранее запланированными липкими конца jg эондами на 1I.-2, выдел ют ДНК, обо20
м 60 мкг ДНК плаэмиды pFL137 в 300 мкл буфера 1, содержащего 150 мМ NaС1, обрабатывают 60 ед„ эндонуклеа- эы рестрикции Sal GI 3 ч при 37 °С. Реакционную смесь осаждают 2%-ннм раствором LiCLO, Лромывают этиловым спиртом, сушат. Остаток раствор ют в 100 мкл буфера I, содержащего 50 мМ NaCl и гидролиэуют 40 ед. эндонукле- азы рестрикции Fok I 1 ч гтри , Целевой фрагмент длиной I20 нуклео- тидных пар выдел ют с помощью электрофореза в 5% ПААГ.
Пример 5. Получение гена человеческого IL-2 в составе плазмиды 25 pFH12i.
5 мкг плаэмиды pFHI25 гидролиэуют последовательно рестриктазой Sal GI в 50 мкл буфера 2, содержащего 150 мМ NaCl, 1 ч при 37°С, затем рестрик- таэой Pet I.B 50 мкл буфера 2 и 50 мМ NaCl в тех же услови х. Смесь из 0,5 пмоль Pet I - Sal. GI векторной ДНК и по 5 пмоль I, II, III, IV субфрагмента (примеры 2, 3, Л, 5 соответ-,- ственно), вз тых в эквимол рных соотношени х , обрабатывают 15 ед. Т4 ДНК- лига зы в описанных выше услови х
эначенную pEXIL-2,- которую анализируют с помощью Bsp I, Pst I-гидролнэа,
Активность рекомбинантного IL-2 была оценена по количеству включенj5 ного С3Н тимидина в ДНК первичной культуры клеток мышинных лимфоцитов, в соответствии с известным методом. Клетки E.coli JM83, содержащие pEXIL-2,выращивают в 5 мл LB-cpe- ды при 37 °С до . Клетки собирают центрифугированием, затем ре- суспендируют в 7 мл среды ХЕНКС, содержащей 1.мг/мл лизоцима, и выдерживают 30 мин при 5°С. Смесь трижды замораживают, озвучивают и центрифугируют о Супернатант фильтруют через Millipore11 фильтр (0,2 мкм) 100 мкл клеточного супернатанта 2-го разведени , добавл ют к 100 мкл ин30 ДУЦированной клеточной культуры (по- сева  концентраци  5-8 клеток (мл) и термостатируют 24 ч при в Атмосфере 5Z С04 0,25 мкКи Н-тими- дина ввод т в реакционную смесь и термостатируют еще 4 ч в тех же услови х . Клетки собираютс  на фильтре Millipore (0,45 мкм), промывают 0,01 М KtHP04 (рН 7,5) с 0,1 М NaCl. Количество включенного 3Н-гимндииа
10 мкл смеси используют дл  трансформации компетентных клеток E.coli ЛМЮЗдд измер ют по Черепкову, используют Из колоний, гнбридиэующихс  с Р а-ме- счетчик Mark III. ченными олигонуклеотидами II и IV фрагментов, выдел ют ДНК и анализируют ее с помощью Bsp I, Pst I, Eco
Лизаты клеток E.coli JM83, содержащие pFXIL, достоверно вызывают пролиферацию мышиных лимфоцитов, т.е. об50
RI эндонуклеаэ рестрикции. Структуру ладают активностью IL-2, Полученные рекОмбннантной ДНК, содержащей синтезированный ген IL-2 и обозначенной pIL-2, подтверждают модифицированным методом Максама-Гилберта.
Пример 6. Определение биоло- гической активности синтезированного гена IL-2.
1 мкг ДНК плаэмиды pIL-2 гидролиэуют рестриктазой Pet I в описанных выше услови х. ДНК осаждают ацетоном, содержащим 27. LiCLA, , высуиенный осадок раствор ют в 30 мкл буфера I, добавл ют 5 ед..ДНК-полимеразы 1 (фраг- мент Кленова) и выдерживают 15 мин
55
данные свидетельствуют о биологической полноценности синтезированного гена человеческого IL-2,
Предложенный способ получени  ген IL-2 имеет существенные преимущества . Вследствие применени  на.стадии получени  субфрагментов длинных частично комплементарных полинуклеотидо и использовани  репаративной дострой , ки их до полных дуплексов, удаётс  значительно сократить работу по хими ческому синтезу и выделению нуклео- тндного материала. Разбивка гена на субфрагменты дает возможность отдель
при 20°С. Реакционную смесь прог( - вают 2 мин при 70°С, добавл ют АТФ . до концентрации 100 мкМ, 5 ед. ЛПК ( лигаэы и инкубируют 12 ч при 5°С, 2 мкл реакционной смеси используют дл  трансформации клеток E.coli JM83.
Из колоний, имеющих lac /.-фенотип и гибридиэующихс  с Рл -меченными
измер ют по Черепкову, используют счетчик Mark III.
Лизаты клеток E.coli JM83, содержащие pFXIL, достоверно вызывают пролиферацию мышиных лимфоцитов, т.е. обладают активностью IL-2, Полученные
данные свидетельствуют о биологической полноценности синтезированного гена человеческого IL-2,
Предложенный способ получени  ген IL-2 имеет существенные преимущества . Вследствие применени  на.стадии получени  субфрагментов длинных частично комплементарных полинуклеотидов и использовани  репаративной дострой ,ки их до полных дуплексов, удаётс  значительно сократить работу по химическому синтезу и выделению нуклео- - тндного материала. Разбивка гена на субфрагменты дает возможность отдель515543826
Дуплекс, полученный из полннукле-ч и 0,25 пмоль векторной ДНК, полу- отндов (VII и VIII), расщепл ют рбра- ценной из pFH123 совместным расщепле- боткой 50 ед, эндонуклеазы рестрикции нием эндонуклеаэами рестрикции Ват И1 Bgl II в 200 мкл буфера 1, содержащего, и Sal GI (услови  приведены выше), 50 мМ NaCl, в течение 12 ч при 37°С. обрабатывают 10 ед. ДНК-лнгазы в опи- Оба рестрнкта выдел ют с помощью гель- санных выше услови х. Лигаэной электрофореза в 8% ПААГ,
Реакционную смесь, содержащую по 2 пмоль приготовленных дуплексов и IQ 0,25 пмоль векторной ДИК, полученной из pFH124 совместным расщеплением эндонуклеаэами рестрикции Ват I и Sal GI (услови  приведены выше) обрабатывают 8 ед. ДНК-лизагы в описанных выше 15 тверждают модифицированным методом услови х Лигазной смесью трансфер- Максама-Гилберта.
мируют клетки E.coli JM103. Из коло- Колонии, имеющие плаэмиды pFL912 ний, имеющих lac Z фенотип, гибриди- со вставкой требуемого размера, выра- зующихс  с 3 Р-меченными зондами, щивают в 100 мл LB-среды. Дл  получе- выдел ют ДНК и дополнительно анализи- 20 ни  целевого субфрагмента III с эара руют ее с помощью Bsp I, Eco RI и нее запланированными липкими конца- Pst I-гидролиза. Структуру рекомби- ми 60 мкг ДНК ллазмиды в . нантной ДНК pFL подтверждают модифи- 300 мкл буфера I, содержащего 50 мМ цированным методом Максама-Гилберта. NaCl, обрабатывают АО ед. .эндонуклеа- Бактерии E.coli, содержащие плаз- 25 зы рестрикции Fok I 1 ч при 37°С. Цег
левой фрагмент длиной 118 нуклеотид- ных пар выдел ют с помощью электрофореза в 5% ПААГ.
смесью трансформируют клетки Е.со li JM103. Из колоний, имеющих lac 7,-фенотип, гибридиэующихс  с Р-ме- ченными зондами, выдел ют ДНК и дополнительно анализируют ее с помощью-. Bsp I, Eco RI и Pst-гидролиза. Структуру рекомбинантной ДНК pFL912 подПример 4. Получение ДНК сув35
миды pFL581 со вставкой требуемого размера, выращивают в 100 мл LB-среды . Дл  получени  целевого субфрагмента II с заранее запланированными липкими концами 60 мкг ДНК плазмн- 30 Фрагмента IV, котора  имеет аминокис- ды pFL581 в 300 мкл буфера 1, содер- лотную последовательность, соответствующую 98-133 аминокислотам человеческого IL-2.
Аналогично примеру 2 из полинукле- отидов (XIII-XVI) субфрагмента IV получают дуплексы дл  клонировани . После репаративной достройки полинук- леотидов (XIII и XIV) в описанных выте услови х полученный дуплекс ствующую 60-98 аминокислотам челове- п обрабатывают 40 ед. эндонуклеазы ре- ческого .стрикции Sau ЗА в 200 мкл буфера 1,
Аналогично примеру 2 из полинукле- содержащего 50 мМ NaCl, в течение отидов (IX-XII) субфрагмента III 12 ч при 37 С. Дуплекс, полученный из получают дуплексы дл  клонировани , полинуклеотипов (XV и XVI), расщеп- Поспе репаративной достройки полинук- 45 л гот эндонуклеазой рестрикции Sal GI леотидов (IX и X) в описанных выше в описанных выше услови х, услови х полученный дуплекс обраба- Реакционную смесь, содержащую по тывают 50 ед. эндонуклеазы Bgl II в 2 пмоль приготовленных дуплексов н 200 мкл буфера 1, содержащего 50 мМ 0,25 пмоль векторной ДНК, полученной NaCl, в течение 12 ч при 37°С. Дул- из pFH123 совместным расщеплением
жащего 50 мМ NaCl, обрабатывают 40 ед, эндонуклеазы рестрикции Fok I 1 ч при 37°С. Целевой фрагмент дли- ., ной 87 нуклеотидных пар выдел ют с помощью электрофореза в 6% ПААГ.
Пример 3, Получение ДНК субфрагмента III, кодирующего аминокислотную последовательность, соответлекс , полученный из полинуклеотидов (XI и XII), расщепл ют обработкой 100 ед. эндонуклеаэы рестрикции Sal GI в 200мкл буфера I, содержащего 150 мМ NaCl, в течение 12 ч при 55 37еС. Оба рестрикта выдел ют с помощью гель-электрофореза в 8Z ПААГ. .1. Реакционную смесь, содержащую по 2 пмоль приготовленных дуплексов
эндонуклеаэами рестрикции Bam HI и ASal GI (услови  приведены выше), обрабатывают 3 ед. Т4 ДНК-лигазы в описанных выше услови х. Лигазной смесью трансформируют клетки. E.coli JMT03. Из колоний, имеющих lac Z -фенотип , гибридиэующихс  с Р 1-меченными зондами, выдел ют ДНК и дополнительно анализируют ее с помощью
и 0,25 пмоль векторной ДНК, полу- ценной из pFH123 совместным расщепле- нием эндонуклеаэами рестрикции Ват И1 и Sal GI (услови  приведены выше), обрабатывают 10 ед. ДНК-лнгазы в опи- санных выше услови х. Лигаэной
тверждают модифицированным методом Максама-Гилберта.
смесью трансформируют клетки Е.со li JM103. Из колоний, имеющих lac 7,-фенотип, гибридиэующихс  с Р-ме- ченными зондами, выдел ют ДНК и дополнительно анализируют ее с помощью-. Bsp I, Eco RI и Pst-гидролиза. Структуру рекомбинантной ДНК pFL912 подПример 4. Получение ДНК сувгмента IV, котора  имеет аминокис- ную последовательность, соответующую 98-133 аминокислотам человекого IL-2.
35
п
содержащего 50 мМ NaCl, в течение 12 ч при 37 С. Дуплекс, полученный и полинуклеотипов (XV и XVI), расщеп- л гот эндонуклеазой рестрикции Sal GI в описанных выше услови х, Реакционную смесь, содержащую по 2 пмоль приготовленных дуплексов н 0,25 пмоль векторной ДНК, полученной из pFH123 совместным расщеплением
эндонуклеаэами рестрикции Bam HI и ASal GI (услови  приведены выше), обрабатывают 3 ед. Т4 ДНК-лигазы в описанных выше услови х. Лигазной смесью трансформируют клетки. E.coli JMT03. Из колоний, имеющих lac Z -фенотип , гибридиэующихс  с Р 1-меченными зондами, выдел ют ДНК и дополнительно анализируют ее с помощью
но очистить их методом молекул рного клонировани  и плаэмидах и pFMI24, наработать в достаточном количестве и после гидролиза эндонук- леазой рестрикции Fok I выделить субфрагменты с уникальными липкими
10
Способ конструировани  гена интер- лейкина-2 человека, предусматривающий синтез гена интерлейкина-2 человека путем ферментативной сгаивки составл ющих его фрагментов и субклонирова- нне гена в составе пл змидной ДНК, отличающийс  тем, что, с целью упрощени  способа, фрагменты
концами, способными направленно собиратьс  в целевой ген IL-2. Такой прием позвол ет избежать трудоемкого и ненадежного последовательного лигиро- вани  коротких олигонуклеотидов в полный дуплекс гена IL-2.
Такой подход не накладывает ограничений на использование определенных j получают из частично комплементарных кодов аминокислот. Это  вл етс  допол- полинуклеотидов при попарной их нительным преимуществом способа, поз- репаративной достройке до полных дуп- вол ющим осуществить направленную за-лексов с помощью ДНК-полимеразы
мену кодонов аминокислот, редко ис-I E.coli-фрагмента Кленова с последуюпользуеных у прокариот. Синтезирован- рд шим клонированием полученных дуплек- ный ген может эффективно экспресси-сов в составе плазмид рРН123 и pFH124
роватьс  как в прокариотических, так и и выделением фрагментов с эапланиро- в эукариотнческих векторах. Наличие
ванными несимметричными липкими
промежуточных субфрагментов гена
IL-2 с уникальными липкими концами 25
важно само, по себе, так как открываРекомбинлнтна  плазмидна  ДНК pTL-2...
концами с помо рикции Fok I, ведут в состав
3 к- б1554382
РТ возможность получени  разнообразных аналогов природного гена IL-2.

Claims (1)

  1. Формула изобретени 
    Способ конструировани  гена интер- лейкина-2 человека, предусматривающий синтез гена интерлейкина-2 человека путем ферментативной сгаивки составл ющих его фрагментов и субклонирова- нне гена в составе пл змидной ДНК, отличающийс  тем, что, с целью упрощени  способа, фрагменты
    получают из частично комплементарных полинуклеотидов при попарной их репаративной достройке до полных дуп- лексов с помощью ДНК-полимеразы
    и выделением фрагментов с эапланир
    ванными несимметричными липкими
    концами с помощью эндонуклеазы рестрикции Fok I, а субклонирование гена ведут в составе плазмиды pFHI25.
SU884382438A 1988-02-19 1988-02-19 Способ конструировани гена интерлейкина-2 человека SU1554382A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU884382438A SU1554382A1 (ru) 1988-02-19 1988-02-19 Способ конструировани гена интерлейкина-2 человека

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU884382438A SU1554382A1 (ru) 1988-02-19 1988-02-19 Способ конструировани гена интерлейкина-2 человека

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1554382A1 true SU1554382A1 (ru) 1991-05-07

Family

ID=21357264

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU884382438A SU1554382A1 (ru) 1988-02-19 1988-02-19 Способ конструировани гена интерлейкина-2 человека

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1554382A1 (ru)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Bahl et al. A general method for inserting specific DNA sequences into cloning vehicles
JPS6019493A (ja) 組換え体プラスミド,形質転換体微生物,ポリデオキシリボヌクレオチド断片,生物学的に活性な蛋白質およびその製法
Ishino et al. Nucleotide sequence of the lig gene and primary structure of DNA ligase of Escherichia coli
US5024943A (en) Regulatory region cloning and analysis plasmid for bacillus
Meinhardt et al. Highly efficient expression of homologous and heterologous genes in Bacillus megaterium
US20240301374A1 (en) Systems and methods for transposing cargo nucleotide sequences
US4987078A (en) Plasmid vectors for expression in Escherichia coli and/or Bacillus subtilis
AU2021350637A9 (en) Systems and methods for transposing cargo nucleotide sequences
SU1554382A1 (ru) Способ конструировани гена интерлейкина-2 человека
Hu et al. Functional analysis of the 14 kDa protein of insertion sequence 2
JP3549210B2 (ja) プラスミド
US4711847A (en) Preparation of secretin
EP0182383A1 (en) Process for the preparation of oligo- and polydeoxyribonucleotides
SU1446159A1 (ru) Вектор рМВ 123 дл получени фрагментов ДНК с произвольными липкими концами и способ его конструировани
RU1438241C (ru) Рекомбинантная плазмидная днк ртnf 33, кодирующая полипептид со свойствами фактора некроза опухоли человека, и штамм бактерий escherichia coli - продуцент полипептида со свойствами фактора некроза опухоли человека
JPS6322190A (ja) ヒトリゾチ−ムの遺伝子発現による製法
Parish et al. Chemical and biochemical manipulation of DNA and the expression of foreign genes in micro-organisms
RU1445193C (ru) РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК pGA 23 - ПРОМЕЖУТОЧНЫЙ ПРОДУКТ ДЛЯ КОНСТРУИРОВАНИЯ РЕКОМБИНАНТНОЙ ПЛАЗМИДНОЙ ДНК pTNF 311Δ,-/,, РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК pTNF 311Δ,-/,, КОДИРУЮЩАЯ ПОЛИПЕПТИД СО СВОЙСТВАМИ ФАКТОРА НЕКРОЗА ОПУХОЛИ ЧЕЛОВЕКА И ШТАММ БАКТЕРИЙ ESCHERICHIA COLI - ПРОДУЦЕНТ ПОЛИПЕПТИДА СО СВОЙСТВАМИ ФАКТОРА НЕКРОЗА ОПУХОЛИ ЧЕЛОВЕКА
WO2023164590A2 (en) Fusion proteins
KR0165907B1 (ko) 아미노글라이코사이드계 항생제에 대해 다제내성을 지정하는 dna 단편
JPS6178387A (ja) ヒトリゾチ−ム遺伝子、対応する組換えプラズミド及び組換え体
JPS6356288A (ja) ヒトリゾチ−ムの微生物学的製造法
JPS6352881A (ja) ヒトリゾチ−ム遺伝子を有する組み換えプラズミド及び組み換え体
CN111088234A (zh) 一种双链DNA肽连接酶dDPlaseII及使用方法
CN116615547A (zh) 用于对货物核苷酸序列转座的系统和方法

Legal Events

Date Code Title Description
REG Reference to a code of a succession state

Ref country code: RU

Ref legal event code: MM4A

Effective date: 20070220