RU2813045C1 - Method of laparoscopic modeling of small intestinal perforation in laboratory animals - Google Patents
Method of laparoscopic modeling of small intestinal perforation in laboratory animals Download PDFInfo
- Publication number
- RU2813045C1 RU2813045C1 RU2023131638A RU2023131638A RU2813045C1 RU 2813045 C1 RU2813045 C1 RU 2813045C1 RU 2023131638 A RU2023131638 A RU 2023131638A RU 2023131638 A RU2023131638 A RU 2023131638A RU 2813045 C1 RU2813045 C1 RU 2813045C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- layer
- intestinal
- intestinal wall
- modeling
- needle
- Prior art date
Links
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 title claims description 13
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 10
- 238000010171 animal model Methods 0.000 title claims description 9
- 206010041103 Small intestinal perforation Diseases 0.000 title claims description 6
- QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N Acetic acid Chemical compound CC(O)=O QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 30
- 210000000683 abdominal cavity Anatomy 0.000 claims abstract description 13
- 239000007924 injection Substances 0.000 claims abstract description 12
- 238000002347 injection Methods 0.000 claims abstract description 12
- 230000000968 intestinal effect Effects 0.000 claims abstract description 12
- 239000000243 solution Substances 0.000 claims abstract description 6
- 210000000936 intestine Anatomy 0.000 claims description 2
- 210000000056 organ Anatomy 0.000 abstract description 9
- 210000003815 abdominal wall Anatomy 0.000 abstract description 6
- 230000003187 abdominal effect Effects 0.000 abstract description 5
- 239000003814 drug Substances 0.000 abstract description 2
- 231100000915 pathological change Toxicity 0.000 abstract description 2
- 230000036285 pathological change Effects 0.000 abstract description 2
- 230000000007 visual effect Effects 0.000 abstract description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract 1
- 206010052428 Wound Diseases 0.000 description 6
- 208000027418 Wounds and injury Diseases 0.000 description 6
- 238000002350 laparotomy Methods 0.000 description 6
- 230000002421 anti-septic effect Effects 0.000 description 4
- 230000007547 defect Effects 0.000 description 4
- 210000000510 mesogastrium Anatomy 0.000 description 4
- 210000000813 small intestine Anatomy 0.000 description 4
- 206010002091 Anaesthesia Diseases 0.000 description 3
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 description 3
- 230000037005 anaesthesia Effects 0.000 description 3
- 210000002151 serous membrane Anatomy 0.000 description 3
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 description 3
- WZUVPPKBWHMQCE-UHFFFAOYSA-N Haematoxylin Chemical compound C12=CC(O)=C(O)C=C2CC2(O)C1C1=CC=C(O)C(O)=C1OC2 WZUVPPKBWHMQCE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 210000003743 erythrocyte Anatomy 0.000 description 2
- 238000007689 inspection Methods 0.000 description 2
- 238000002357 laparoscopic surgery Methods 0.000 description 2
- 238000005303 weighing Methods 0.000 description 2
- 241000700112 Chinchilla Species 0.000 description 1
- 206010018910 Haemolysis Diseases 0.000 description 1
- 206010061218 Inflammation Diseases 0.000 description 1
- 208000022559 Inflammatory bowel disease Diseases 0.000 description 1
- PIWKPBJCKXDKJR-UHFFFAOYSA-N Isoflurane Chemical compound FC(F)OC(Cl)C(F)(F)F PIWKPBJCKXDKJR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 206010062049 Lymphocytic infiltration Diseases 0.000 description 1
- 206010051606 Necrotising colitis Diseases 0.000 description 1
- 206010030113 Oedema Diseases 0.000 description 1
- 208000037273 Pathologic Processes Diseases 0.000 description 1
- 206010040844 Skin exfoliation Diseases 0.000 description 1
- 208000007107 Stomach Ulcer Diseases 0.000 description 1
- 208000002847 Surgical Wound Diseases 0.000 description 1
- 208000025865 Ulcer Diseases 0.000 description 1
- 229940064004 antiseptic throat preparations Drugs 0.000 description 1
- 238000013459 approach Methods 0.000 description 1
- 238000011888 autopsy Methods 0.000 description 1
- 210000004204 blood vessel Anatomy 0.000 description 1
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000006378 damage Effects 0.000 description 1
- 230000035618 desquamation Effects 0.000 description 1
- 208000007784 diverticulitis Diseases 0.000 description 1
- 208000000718 duodenal ulcer Diseases 0.000 description 1
- 210000001198 duodenum Anatomy 0.000 description 1
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 1
- YQGOJNYOYNNSMM-UHFFFAOYSA-N eosin Chemical compound [Na+].OC(=O)C1=CC=CC=C1C1=C2C=C(Br)C(=O)C(Br)=C2OC2=C(Br)C(O)=C(Br)C=C21 YQGOJNYOYNNSMM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 210000000981 epithelium Anatomy 0.000 description 1
- 210000003238 esophagus Anatomy 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 230000002496 gastric effect Effects 0.000 description 1
- 238000002695 general anesthesia Methods 0.000 description 1
- 230000008588 hemolysis Effects 0.000 description 1
- 238000010562 histological examination Methods 0.000 description 1
- 238000005470 impregnation Methods 0.000 description 1
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 1
- 230000008595 infiltration Effects 0.000 description 1
- 238000001764 infiltration Methods 0.000 description 1
- 230000004054 inflammatory process Effects 0.000 description 1
- 208000014674 injury Diseases 0.000 description 1
- 229960002725 isoflurane Drugs 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 1
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 1
- 210000003205 muscle Anatomy 0.000 description 1
- 208000004995 necrotizing enterocolitis Diseases 0.000 description 1
- 210000000440 neutrophil Anatomy 0.000 description 1
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 description 1
- 230000009054 pathological process Effects 0.000 description 1
- 201000006195 perinatal necrotizing enterocolitis Diseases 0.000 description 1
- 230000002980 postoperative effect Effects 0.000 description 1
- 230000029058 respiratory gaseous exchange Effects 0.000 description 1
- 230000002269 spontaneous effect Effects 0.000 description 1
- 210000002784 stomach Anatomy 0.000 description 1
- 238000011477 surgical intervention Methods 0.000 description 1
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 1
- 230000008733 trauma Effects 0.000 description 1
- 230000000472 traumatic effect Effects 0.000 description 1
Abstract
Description
Изобретение относится к области медицины, а именно к лапароскопическому моделированию перфорации тонкой кишки у лабораторных животных.The invention relates to the field of medicine, namely to laparoscopic modeling of small intestinal perforation in laboratory animals.
Наиболее близким к предлагаемому способу является способ моделирования язвы желудка и двенадцатиперстной кишки у мелких лабораторных животных, который предложил В.Н. Никитин и соавт. [Патент N 2 689 865 Российская Федерация, МПК G09B 23/28 (2006.01). N 2018124365, 02.07.2018: опубликовано 29.05.2019 Бюл. № 16 / Никитин В.Н., Полуэктов В.Л., Храмых Т.П., Барская Л.О., Путинцев В.А. — 12 с. : ил. — Текст : непосредственный]. Способ заключается в том, что под наркозом крысе выполняли мини-лапаротомию (длина разреза 1-1,5 см), затем в операционную рану выводили желудок или двенадатиперстную кишку. В пасть животного и далее по пищеводу до органа-мишени вводили тубус устройства для интраорганных внутрипросветных инъекций, разработанный авторами, через который вводили 0,01 мл раствора 70% уксусной кислоты, с помощью специального инъектора осуществляли инъекцию на глубину 0,5 мм. Целостность серозной оболочки органа-мишени контролировали визуально из мини-лапаротомной раны. В результате описанных манипуляций образовывался язвенный дефект необходимого размера и локализации. The closest to the proposed method is the method of modeling gastric and duodenal ulcers in small laboratory animals, which was proposed by V.N. Nikitin et al. [Patent N 2 689 865 Russian Federation, IPC G09B 23/28 (2006.01). N 2018124365, 07/02/2018: published on 05/29/2019 Bulletin. No. 16 / Nikitin V.N., Poluektov V.L., Khramykh T.P., Barskaya L.O., Putintsev V.A. — 12 s. : ill. - Text: direct]. The method consists of performing a mini-laparotomy (incision length 1-1.5 cm) under anesthesia on a rat, then the stomach or duodenum was removed into the surgical wound. A tube of a device for intraorgan intraluminal injections, developed by the authors, was inserted into the animal’s mouth and further along the esophagus to the target organ, through which 0.01 ml of a solution of 70% acetic acid was injected; using a special injector, the injection was carried out to a depth of 0.5 mm. The integrity of the serous membrane of the target organ was monitored visually from a mini-laparotomy wound. As a result of the described manipulations, an ulcerative defect of the required size and location was formed.
Основными недостатками указанного выше способа является травматичный доступ (лапаротомия), который усугубляет течение послеоперационного периода ввиду повреждения тканей передней брюшной стенки, и в данном случае служит лишь для контроля целостности серозной оболочки травмируемого органа. Также выведение органов в рану сопровождается дополнительной травмой их стенки в результате мануального воздействия и тракции, а также повышает вероятность инфицирования брюшной полости. При выполнении лапаротомии требуется большое количество расходных материалов (перевязочных и антисептических средств), инструментов, а также увеличивается время операции, которое затрачивается на послойное ушивание лапаротомной раны. Помимо этого, для выполнения способа, предложенного В.Н. Никитиным и соавторами, требуется специальное устройство, которое может затруднять дыхание лабораторного животного (вводят в пасть) и привести к его остановке, тем самым – повысить летальность.The main disadvantages of the above method are traumatic access (laparotomy), which aggravates the course of the postoperative period due to damage to the tissue of the anterior abdominal wall, and in this case serves only to control the integrity of the serous membrane of the injured organ. Also, removal of organs into the wound is accompanied by additional trauma to their walls as a result of manual pressure and traction, and also increases the likelihood of infection of the abdominal cavity. When performing laparotomy, a large number of consumables (dressings and antiseptics), instruments are required, and the operation time, which is spent on layer-by-layer suturing of the laparotomy wound, increases. In addition, to carry out the method proposed by V.N. Nikitin and co-authors require a special device that can impede the breathing of a laboratory animal (introduced into the mouth) and lead to its stop, thereby increasing mortality.
Техническим результатом изобретения является разработка легко воспроизводимого способа моделирования перфорации тонкой кишки у лабораторных животных, характеризующегося минимальной инвазивностью операционного доступа к органам брюшной полости, не требующего специально сконструированного для этого оборудования или изделия, высокой унификацией патологических изменений в кишечной стенке ввиду мануального и визуального контроля введения объема повреждающего раствора и глубины укола.The technical result of the invention is the development of an easily reproducible method for modeling small intestinal perforation in laboratory animals, characterized by minimal invasiveness of surgical access to the abdominal organs, which does not require specially designed equipment or products, high unification of pathological changes in the intestinal wall due to manual and visual control of volume administration damaging solution and injection depth.
Технический результат достигается тем, что после наложения карбоксиперитонеума кролику, установки лапароскопа и одного эндоскопического диссектора диаметром 3 мм, выполняют ревизию органов брюшной полости. Фиксируют петлю тонкой кишки эндоскопическим диссектором. Затем шприцем с инъекционной иглой пунктируют переднюю брюшную стенку, вводят иглу в брюшную полость. После определения места моделирования перфоративного отверстия послойно в толщу стенки кишки вводят 0,1 мл 70%-ной уксусной кислоты. После чего тут же формируется перфоративное отверстие диаметром 1-2 мм, с неровными краями. После оценки изменений в брюшной полости выполняют десуфляцию, удаляют лапароскоп, инструмент, троакары, раны в местах стояния троакаров ушивают узловыми швами. The technical result is achieved by the fact that after applying carboxyperitoneum to a rabbit, installing a laparoscope and one endoscopic dissector with a diameter of 3 mm, an inspection of the abdominal organs is performed. The loop of the small intestine is fixed with an endoscopic dissector. Then the anterior abdominal wall is punctured with a syringe with an injection needle, and the needle is inserted into the abdominal cavity. After determining the location of the perforated hole, 0.1 ml of 70% acetic acid is injected into the thickness of the intestinal wall layer by layer. After which a perforation hole with a diameter of 1-2 mm, with uneven edges, is immediately formed. After assessing the changes in the abdominal cavity, desufflation is performed, the laparoscope, instrument, and trocars are removed, and the wounds at the sites of the trocars are sutured with interrupted sutures.
Изобретение поясняется фигурами. The invention is illustrated by figures.
На фиг. 1 изображен момент лапароскопической операции – прокол передней брюшной стенки;In fig. Figure 1 shows the moment of laparoscopic surgery - puncture of the anterior abdominal wall;
На фиг. 2 изображен момент лапароскопической операции – пункция кишечной стенки;In fig. Figure 2 shows the moment of laparoscopic surgery - puncture of the intestinal wall;
На фиг. 3 изображена интраоперационная картина через 2 минуты после введения 0,1 мл 70%-ной уксусной кислоты, стрелкой указана зона перфорации;In fig. Figure 3 shows the intraoperative picture 2 minutes after the injection of 0.1 ml of 70% acetic acid, the arrow indicates the perforation zone;
На фиг. 4 изображен микропрепарат тонкой кишки, в которую вводили 0,1 мл 70%-ной уксусной кислоты, увеличение 40 крат, окрашен гематоксилином и эозином, стрелкой указана зона перфорации.In fig. Figure 4 shows a microslide of the small intestine, into which 0.1 ml of 70% acetic acid was injected, magnification 40x, stained with hematoxylin and eosin, the arrow indicates the perforation zone.
СПОСОБ ОСУЩЕСТВЛЯЕТСЯ СЛЕДУЮЩИМ ОБРАЗОМTHE METHOD IS CARRIED OUT AS THE FOLLOWING WAY
Моделирование перфорации тонкой кишки у лабораторных животных (кролик, массой 2-2,5 кг) осуществляют с соблюдением мер асептики и антисептики при выполнении хирургических манипуляций. Перед началом оперативного вмешательства животное фиксируют на операционном столе в положение на спине, под общим наркозом выполняют обработку операционного поля, в мезогастрии по средней линии производят разрез длиной до 5 мм, обнажают апоневроз, затем осуществляют наложение карбоксиперитонеума иглой по типу Veresh. Устанавливают 5 мм троакар, в который вводят лапароскоп, производят ревизию органов брюшной полости. Справа или слева в мезогастрии устанавливают 3 мм эндоскопический диссектор. Затем шприцем с инъекционной иглой пунктируют переднюю брюшную стенку, вводят иглу в брюшную полость. После определения места моделирования перфоративного отверстия послойно в толщу стенки кишки вводят 0,1 мл 70%-ной уксусной кислоты. После чего оценивают сформировавшееся перфоративное отверстие. Выполняют десуфляцию, удаляют лапароскоп, инструмент, раны ушивают узловыми швами, обрабатывают растворами антисептиков.Modeling of perforation of the small intestine in laboratory animals (rabbit, weighing 2-2.5 kg) is carried out in compliance with aseptic and antiseptic measures when performing surgical procedures. Before the start of surgery, the animal is fixed on the operating table in a supine position, the surgical field is treated under general anesthesia, an incision up to 5 mm long is made in the mesogastrium along the midline, the aponeurosis is exposed, then carboxyperitoneum is applied with a Veresh-type needle. A 5 mm trocar is installed, into which a laparoscope is inserted, and the abdominal organs are inspected. A 3 mm endoscopic dissector is installed on the right or left in the mesogastrium. Then the anterior abdominal wall is punctured with a syringe with an injection needle, and the needle is inserted into the abdominal cavity. After determining the location of the perforated hole, 0.1 ml of 70% acetic acid is injected into the thickness of the intestinal wall layer by layer. Then the formed perforation hole is assessed. Desufflation is performed, the laparoscope and instrument are removed, the wounds are sutured with interrupted sutures, and treated with antiseptic solutions.
ПРИМЕР КОНКРЕТНОГО ИСПОЛЬЗОВАНИЯCASE STUDY
Лапароскопическое моделирование перфорации тонкой кишки у лабораторных животных было произведено 5 кроликам-самцам породы «Советская шиншилла» массой 2-2,5 кг. Для обеспечения анестезиологического пособия использовали ингаляционный масочный наркоз (концентрация изофлурана во вдыхаемой газовой смеси – 3%, поток воздуха – 0,8 л/мин). Манипуляция осуществлялась с соблюдением всех международных и российских норм гуманного обращения с лабораторными животными, животное фиксировали на операционном столе в положении на спине. Оперативное вмешательство выполняли с помощью видеоэндоскопического комплекса. Обрабатывали и отграничивали операционное поле стандартным способом, в мезогастрии производили разрез длиной до 5 мм, а затем – пункцию брюшной полости иглой по типу Veresh. Выполняли наложение карбоксиперитонеума с предварительно установленными параметрами инсуфляции: давление – 7 мм рт. ст., поток – 1 л/мин. В брюшную полость устанавливали оптическую канюлю диаметром 5 мм для лапароскопа, после чего производили ревизию органов брюшной полости. Справа в мезогастрии выполняли разрез 3 мм, вводили эндоскопический диссектор. Затем шприцем с инъекционной иглой пунктировали переднюю брюшную стенку, вводили иглу в брюшную полость. Послойно в толщу стенки кишки вводили 0,1 мл 70%-ной уксусной кислоты. Оценивали изменения в брюшной полости. Затем выполняли десуфляцию, удаляли лапароскоп, инструмент, раны в местах стояния троакаров ушивали узловыми швами, обрабатывали растворами антисептиков.Laparoscopic modeling of small intestinal perforation in laboratory animals was performed on 5 male rabbits of the “Soviet Chinchilla” breed weighing 2-2.5 kg. To provide anesthesia, inhalation mask anesthesia was used (isoflurane concentration in the inhaled gas mixture - 3%, air flow - 0.8 l/min). The manipulation was carried out in compliance with all international and Russian standards for the humane treatment of laboratory animals; the animal was fixed on the operating table in a supine position. The surgical intervention was performed using a video endoscopic complex. The surgical field was processed and delimited in a standard way, an incision up to 5 mm long was made in the mesogastrium, and then a puncture of the abdominal cavity was made with a Veresh-type needle. Carboxyperitoneum was applied with preset insufflation parameters: pressure – 7 mm Hg. art., flow – 1 l/min. An optical cannula with a diameter of 5 mm for a laparoscope was installed in the abdominal cavity, after which an inspection of the abdominal organs was performed. A 3 mm incision was made in the right mesogastrium, and an endoscopic dissector was inserted. Then, the anterior abdominal wall was punctured with a syringe with an injection needle, and the needle was inserted into the abdominal cavity. 0.1 ml of 70% acetic acid was injected layer by layer into the thickness of the intestinal wall. Changes in the abdominal cavity were assessed. Then desufflation was performed, the laparoscope and instrument were removed, the wounds at the trocar sites were sutured with interrupted sutures, and treated with antiseptic solutions.
Через 6 часов выполняли лапаротомию и ревизию брюшной полости. По вскрытии брюшной полости обнаруживали мутный светло-желтый гноевидный выпот объемом до 10 мл с характерным запахом. В области введения уксусной кислоты – перфоративный дефект, к нему фиксированы петли тонкой кишки. Пораженный участок резецировали для гистологического исследования. Животных выводили из эксперимента.After 6 hours, laparotomy and exploration of the abdominal cavity were performed. Upon opening the abdominal cavity, a cloudy light yellow purulent effusion with a volume of up to 10 ml with a characteristic odor was discovered. In the area of acetic acid injection there is a perforated defect, loops of the small intestine are fixed to it. The affected area was resected for histological examination. Animals were removed from the experiment.
При морфологическом исследовании аутопсийного материала кишки было выявлены наличие «ползучих» и щелевидных дефектов с признаками гангренозного воспаления. Края дефекта выполнены бесструктурными массами с диапедезным пропитыванием и выраженной диффузной полиморфноклеточной инфильтрацией. В серозной оболочке определяются множественные паретически расширенные кровеносные сосуды с эритроцитарными стазами, а сами эритроциты с очаговым гемолизом. На относительно сохранных участках определяется десквамация поверхностного эпителия, интерстициальных отек, распространяющийся до мышечного слоя и умеренно выраженная лимфоцитарная инфильтрация с примесью нейтрофилов.A morphological study of autopsy material from the intestine revealed the presence of “creeping” and slit-like defects with signs of gangrenous inflammation. The edges of the defect are made of structureless masses with diapedetic impregnation and pronounced diffuse polymorphic cell infiltration. In the serous membrane, multiple paretically dilated blood vessels with erythrocyte stasis are detected, and the erythrocytes themselves with focal hemolysis. In relatively intact areas, desquamation of the surface epithelium, interstitial edema extending to the muscle layer and moderate lymphocytic infiltration with an admixture of neutrophils are detected.
Описанный способ позволяет моделировать перфорацию тонкой кишки любой локализации и распространенности с помощью эндовидеохирургических технологий, характеризующийся высокой воспроизводимостью, технической простотой. Подобный вариант моделирования позволяет отрабатывать разные подходы к лечению спонтанных единичных перфораций или перфораций на фоне течения патологического процесса (воспалительных заболеваний кишечника, дивертикулита, некротического энтероколита и пр.), развивающихся остро и требующих экстренного оперативного лечения. The described method makes it possible to simulate small intestinal perforation of any location and extent using endovideosurgical technologies, characterized by high reproducibility and technical simplicity. This type of modeling allows us to work out different approaches to the treatment of spontaneous single perforations or perforations against the background of a pathological process (inflammatory bowel disease, diverticulitis, necrotizing enterocolitis, etc.), developing acutely and requiring emergency surgical treatment.
Claims (1)
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2813045C1 true RU2813045C1 (en) | 2024-02-06 |
Family
ID=
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN108210513A (en) * | 2017-12-12 | 2018-06-29 | 浙江海洋大学 | A kind of oligomeric glycosaminoglycan of selenizing influences ulcerative colitis mouse the method for building up of model |
RU2689865C1 (en) * | 2018-07-02 | 2019-05-29 | федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Омский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО ОмГМУ Минздрава России) | Method for simulating gastric and duodenal ulcers in small laboratory animals |
RU2798718C1 (en) * | 2022-12-13 | 2023-06-23 | федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Приволжский исследовательский медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method of modeling ulcerative defects of the intestinal mucosa in crohn's disease on minipigs |
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN108210513A (en) * | 2017-12-12 | 2018-06-29 | 浙江海洋大学 | A kind of oligomeric glycosaminoglycan of selenizing influences ulcerative colitis mouse the method for building up of model |
RU2689865C1 (en) * | 2018-07-02 | 2019-05-29 | федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Омский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО ОмГМУ Минздрава России) | Method for simulating gastric and duodenal ulcers in small laboratory animals |
RU2798718C1 (en) * | 2022-12-13 | 2023-06-23 | федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Приволжский исследовательский медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method of modeling ulcerative defects of the intestinal mucosa in crohn's disease on minipigs |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
АЛИПОВ В.В. и др. "Экспериментальное моделирование и комбинированная эндоскопическая коррекция гастродуоденальной перфорации", Медицинский альманах, 2014, no. 3 (33), с. 120-124. OKABE S. et al. An overview of acetic acid ulcer models--the history and state of the art of peptic ulcer research. Biol Pharm Bull. 2005 Aug;28(8):1321-1341. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
RU2813045C1 (en) | Method of laparoscopic modeling of small intestinal perforation in laboratory animals | |
RU2803635C1 (en) | Method of laparoscopic modeling of necrotizing enterocolitis | |
RU2308238C1 (en) | Method for suturing duodenal stump | |
Li et al. | Investigation for acceptance of natural orifice translumenal endoscopic surgery by inpatients with digestive diseases | |
RU2661080C1 (en) | Method of manual assisted laparoscopic surgery with open abdominal injury | |
Huang et al. | Ultrasonic scalpel combined with internal oxygen assisted sodium nitroprusside in laparoscopic cholecystectomy for elderly patients with acute cholecystitis | |
RU2801037C1 (en) | Method of stimulating the regeneration of intestinal anastomoses using autogenous growth factors | |
RU2565096C1 (en) | Method for fistula closure in dehiscence of duodenal stump | |
RU2811266C1 (en) | Method of forming urethrovesical anastomosis during radical prostatectomy | |
RU2689865C1 (en) | Method for simulating gastric and duodenal ulcers in small laboratory animals | |
RU2734274C1 (en) | Laparoscopic method for purulent mediastinal drainage in case of injured lower oesophagus | |
RU2807395C1 (en) | Method for forming intracorporeal colorectal anastomosis when performing robot-assisted anterior rectal resection | |
RU2813035C1 (en) | Method of surgical treatment of morbid obesity in patients with type 2 diabetes mellitus | |
RU2781349C1 (en) | Method for active wound drainage after carotid endarterectomy | |
RU2777237C1 (en) | Method for treatment of urethrorectal fistula | |
RU2739129C1 (en) | Method for surgical management of perforated tuberculosis ulcers of the small intestine complicated by peritonitis | |
RU2610361C2 (en) | Method for experimental modelling of autotransplantation of splenic tissue into liver | |
RU182779U1 (en) | Device for intraorgan intraluminal injection | |
RU2456676C1 (en) | Method for simulating action of different concentrations of ozone-oxygen mixture introduced in abdominal cavity in experiment | |
RU2132656C1 (en) | Method for treating cysts and ovarian cystoma | |
UA140232U (en) | METHOD OF SIMULATION OF PYELONEPHRITIS | |
RU2113178C1 (en) | Method to close duodenal stump at failure of its sutures after gastroresection and gastrectomy | |
RU2143850C1 (en) | Method for suturing duodenum stump | |
RU2297800C2 (en) | Method for two-stage development of large intestine-large intestinal anastomosis | |
RU2386411C1 (en) | Method of endoscopic adhesiolysis in surgical interventions |