RU2610361C2 - Method for experimental modelling of autotransplantation of splenic tissue into liver - Google Patents
Method for experimental modelling of autotransplantation of splenic tissue into liver Download PDFInfo
- Publication number
- RU2610361C2 RU2610361C2 RU2015121159A RU2015121159A RU2610361C2 RU 2610361 C2 RU2610361 C2 RU 2610361C2 RU 2015121159 A RU2015121159 A RU 2015121159A RU 2015121159 A RU2015121159 A RU 2015121159A RU 2610361 C2 RU2610361 C2 RU 2610361C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- liver
- splenic tissue
- tissue
- splenic
- autotransplantation
- Prior art date
Links
Images
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G09—EDUCATION; CRYPTOGRAPHY; DISPLAY; ADVERTISING; SEALS
- G09B—EDUCATIONAL OR DEMONSTRATION APPLIANCES; APPLIANCES FOR TEACHING, OR COMMUNICATING WITH, THE BLIND, DEAF OR MUTE; MODELS; PLANETARIA; GLOBES; MAPS; DIAGRAMS
- G09B23/00—Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes
- G09B23/28—Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes for medicine
Abstract
Description
Изобретение относится к области медицины и найдет применение в экспериментальной хирургии для моделирования аутотрансплантации селезеночной ткани в печень, изучения патогенеза и возможности определения жизнеспособности аутолиентрансплантата под капсулу печени.The invention relates to medicine and will find application in experimental surgery for modeling autologous transplantation of spleen tissue into the liver, studying the pathogenesis and the possibility of determining the viability of an autoglant transplant under a liver capsule.
Единственным способом профилактики синдрома послеоперационного гипоспленизма является аутотрансплантация селезеночной ткани. Большинство существующих на сегодняшний день способов аутолиентрасплантации доступны при широкой лапаротомии. Тогда как активное развитие лапароскопии заставляет искать новые оперативные решения, доступные миниинвазивной хирургии. Спорным остается вопрос об оптимальной массе аутолиентрансплантата, позволяющей купировать развитие синдрома послеоперационного гипоспленизма.The only way to prevent postoperative hyposplenism syndrome is autologous splenic tissue transplantation. Most of the current methods for autolient transplantation are available with wide laparotomy. While the active development of laparoscopy makes us look for new surgical solutions that are available for minimally invasive surgery. The controversial question remains about the optimal mass of the autolient transplant, which allows to stop the development of postoperative hyposplenism syndrome.
Известен способ профилактики постспленэктомического синдрома в эксперименте (патент РФ №2247567, опубликован 10.03.2005), при котором осуществляют забор селезенки у эмбриона, которую отмывают в питательной среде №199, помещают в свежую среду №199, и получают гомогенат в тефлоновом гомогенизаторе, который подвергают центрифугированию; выделяют верхний, средний и нижний слои; отсасывают средний слой и верхнюю часть нижнего слоя; полученную смесь клеток разводят в питательной среде №199, которую затем вводят инъекционно в брыжейку тонкой кишки или прямую мышцу живота. Известный способ трудоемок, не применим в экстренной хирургии.A known method of preventing post-splenectomy syndrome in an experiment (RF patent No. 2247567, published March 10, 2005), in which the spleen is collected from an embryo, which is washed in nutrient medium No. 199, placed in fresh medium No. 199, and a homogenate are obtained in a Teflon homogenizer, which centrifuged; the upper, middle and lower layers are distinguished; sucking off the middle layer and the upper part of the lower layer; the resulting mixture of cells is diluted in nutrient medium No. 199, which is then injected into the mesentery of the small intestine or rectus abdominis muscle. The known method is time-consuming, not applicable in emergency surgery.
Известен способ аутотрансплантации селезеночной ткани в печень (патент РФ №2305502, опубликован 10.09.2007), при котором производят аутотрансплантацию перфорированного фрагмента селезеночной ткани в рану печени с последующей фиксацией этого фрагмента П-образными швами через сохраненную в периферической части капсулу селезеночного трансплантата. Однако данный способ доступен только при одномоментном повреждении селезенки и печени и широком лапаротомном доступе.There is a method of autologous transplantation of spleen tissue into the liver (RF patent No. 2305502, published September 10, 2007), in which autotransplantation of a perforated fragment of the splenic tissue into the wound of the liver is carried out, followed by fixation of this fragment with U-shaped sutures through the capsule of the splenic transplant stored in the peripheral part. However, this method is only available with simultaneous damage to the spleen and liver and wide laparotomic access.
Известен способ моделирования очагов диссеминированного постспленэктомического спленоза (патент РФ №2481645, опубликован 10.05.2013), при котором выполняют открытую спленэктомию и обсеменение органов брюшной полости кровью из удаленной селезенки. При этом создаются условия, схожие с излитием крови селезенки в брюшную полость при ее повреждении, и условия для активации механизмов роста «неоселезеночной» ткани, наиболее приближенные к имеющим место при патологии у человека. Недостатком известного способа является неконтролируемый спленолиз, который может привести к развитию гиперспленизма, спаечной кишечной непроходимости.A known method of modeling foci of disseminated post-splenectomy splenosis (RF patent No. 2481645, published 05/10/2013), in which open splenectomy and contamination of the abdominal organs with blood from a removed spleen is performed. At the same time, conditions are created that are similar to the outflow of blood of the spleen into the abdominal cavity when it is damaged, and the conditions for activating the growth mechanisms of “non-spleen” tissue, which are closest to those occurring in human pathology. The disadvantage of this method is uncontrolled splenolysis, which can lead to the development of hypersplenism, adhesive intestinal obstruction.
Задачей заявляемого изобретения является моделирование способа аутотрансплантации селезеночной ткани в печень, применимого в лапароскопической хирургии.The objective of the invention is the modeling of the method of autotransplantation of splenic tissue into the liver, applicable in laparoscopic surgery.
Задача достигается тем, что после лапароскопической спленэктомии и фрагментации декапсулированной селезеночной ткани до 0,2 см приготавливают гомогенат путем добавления физиологического раствора к измельченной селезеночной ткани в соотношении 2:1. Затем полученный гомогенат вводят субкапсулярно в передненаружную поверхность правой доли печени в объеме от 1/14 до 1/20 первоначальной массы селезеночной ткани, позволяющем профилактировать развитие послеоперационного гипоспленизма.The task is achieved in that after laparoscopic splenectomy and fragmentation of the decapsulated splenic tissue up to 0.2 cm, homogenate is prepared by adding physiological solution to the crushed splenic tissue in a ratio of 2: 1. Then, the obtained homogenate is introduced subcapsularly into the anteroposterior surface of the right lobe of the liver in a volume of 1/14 to 1/20 of the initial mass of the spleen tissue, which allows preventing the development of postoperative hyposplenism.
Изобретение иллюстрируется фотографиями.The invention is illustrated by photographs.
На фото 1 изображен этап иммобилизации селезенки.
На фото 2 изображен этап спленэктомии.
На фото 3 изображен этап аутолиентрансплантации под капсулу печени.Photo 3 shows the stage of autolient transplantation under the liver capsule.
На фото 4 - вид печени с зоной аутолиентрансплантата.On a photo 4 - a view of a liver with a zone of an autolient transplant.
Нa фото 5 - гистологический препарат печени кролика с участком аутолиентрансплантата через 30 суток после операции, увеличение 1×100.In photo 5, a histological preparation of the rabbit liver with an autolient transplant 30 days after surgery, an increase of 1 × 100.
На фото 6 - гистологический препарат печени кролика с участком аутолиентрансплантата через 60 суток после операции, увеличение 1×40.Photo 6 shows a histological preparation of the rabbit liver with an autolient transplant site 60 days after surgery, an increase of 1 × 40.
На фото 7 - гистологический препарат печени кролика с участком аутолиентрансплантата через 30 суток после операции, увеличение 1×100.Photo 7 shows a histological preparation of a rabbit liver with an autolient transplant 30 days after surgery, an increase of 1 × 100.
На фото 8 - гистологический препарат печени кролика с участком аутолиентрансплантата через 60 суток после операции, увеличение 1×40.Photo 8 shows a histological preparation of the rabbit liver with an autolient transplant site 60 days after surgery, an increase of 1 × 40.
Способ экспериментального моделирования аутотрансплантации селезеночной ткани в печень осуществляется следующим образом. The method of experimental modeling of autologous transplantation of splenic tissue into the liver is as follows.
Измельченную после лапароскопической спленэктомии (фото 1, фото 2), селезеночную ткань до 0,2 см в объеме от 1/14 до 1/20 первоначальной массы селезеночной ткани помещают в цилиндр системы для пункционной биопсии печени с внутренним диаметром просвета иглы 1,8 мм (может быть использован одноразовый стерильный шприц для инъекций и игла с внутренним диаметром просвета 2 мм, углом среза иглы 45°). Фрагменты селезеночной ткани в цилиндре (шприце) смешиваются с физиологическим раствором в соотношении 2:1, перемешиваются легким покачиванием до однородной массы. Затем выполняется пункционное введение полученного гомогената селезеночной ткани в передненаружную часть правой доли печени субкапсулярно следующим образом. После введения иглы на глубину 0,1 см-0,2 см на протяжении 3,0 см-5,0 см (фото 3) под капсулу печени начинают извлечение иглы с одновременным введением гомогената. Таким образом, субкапсулярно получается трансплантат селезеночной ткани длиной (3-5) см, шириной (1,0-1,5) см, (фото 4). Подобным образом вводится оставшаяся часть гомогената селезеночной ткани.Crushed after laparoscopic splenectomy (
Пример из практики №1.Case study No. 1.
Кролик, 6 месяцев, масса 3500 г.Rabbit, 6 months old, weight 3500 g.
После медикаментозной седации препаратами, разрешенными в ветеринарии, и соответствующей обработки операционного поля выполнена срединная лапаротомия длиной 10,0 см, сосуды селезенки взяты на зажимы, пересечены. Селезеночная ткань измельчена и помещена в цилиндр устройства для пункционной биопсии печени. После чего по вышеописанной методике выполнено пункционное введение гомогената в передненаружную поверхность печени. Контроль гемостаза. Лапаротомная рана ушита наглухо.After drug sedation with veterinary medicine and appropriate treatment of the surgical field, a median laparotomy was performed with a length of 10.0 cm, the spleen vessels were clamped and crossed. The splenic tissue is crushed and placed in the cylinder of a device for puncture biopsy of the liver. Then, according to the above method, puncture introduction of homogenate into the anteroposterior surface of the liver was performed. Control of hemostasis. Laparotomic wound sutured tightly.
Гистологическое исследование зоны аутотрансплантации:Histological examination of the autotransplantation zone:
через 1 месяц определяется слабовыраженная граница аутотрансплантата выраженная фибробластами, разрастание лимфоидной ткани, единичные синусы (фото 5).after 1 month, a weakly defined border of the autograft expressed by fibroblasts, proliferation of lymphoid tissue, single sinuses is determined (photo 5).
Через 2 месяца определяются новообразованные синусы с небольшим просветом и умеренным кровенаполнением (фото 6).After 2 months, newly formed sinuses with a small clearance and moderate blood filling are determined (photo 6).
Пример из практики №2.Case study No. 2.
Кролик, 6 месяцев, 3750 гр.Rabbit, 6 months old, 3750 gr.
После соответствующей обработки операционного поля через разрез 1,0 см в средней точке передней брюшной стенки и наложения карбоперитонеума наложены дополнительные доступы в типичных для спленэктомии точках. После спленэктомии, помещении в резервуар и удалении селезенки из брюшной полости выполнено ее размельчение и приготовление гомогената путем добавления 0,9% физиологического раствора в соотношении 2:1. Под видеоконтролем в проекции передненаружной поверхности печени системой для пункционной биопсии печени выполнен прокол передней брюшной стенки, гомогенат введен субкапсулярно на протяжении 3,0 см, пункционная система удалена. Контроль гемостаза. Троакары удалены из брюшной полости. Швы на кожу.After appropriate treatment of the surgical field through a 1.0 cm incision at the midpoint of the anterior abdominal wall and the application of carboperitoneum, additional accesses were applied at points typical of splenectomy. After splenectomy, placement in the reservoir and removal of the spleen from the abdominal cavity, it was crushed and the homogenate prepared by adding 0.9% saline in a 2: 1 ratio. Under video control in the projection of the anterior external surface of the liver, a puncture of the anterior abdominal wall was performed by the system for puncture biopsy of the liver, the homogenate was introduced subcapsularly over 3.0 cm, the puncture system was removed. Control of hemostasis. The trocars are removed from the abdominal cavity. Stitches to the skin.
Гистологическое исследование зоны аутотрансплантации:Histological examination of the autotransplantation zone:
через 1 месяц определяется слабовыраженная граница аутотрансплантата, выраженная фибробластами, разрастание лимфоидной ткани, единичные синусы (фото 7).after 1 month, a weakly defined border of the autograft, expressed by fibroblasts, proliferation of lymphoid tissue, single sinuses is determined (photo 7).
Через 2 месяца определяются новообразованные синусы с небольшим просветом и умеренным кровенаполнением (фото 8).After 2 months, newly formed sinuses with a small clearance and moderate blood filling are determined (photo 8).
Таким образом, данный способ имеет существенные преимущества перед существующими способами аутолиентрансплантации, заключающиеся в возможности выполнения лапароскопически. Так, после спленэктомии лапароскопическим способом и приготовлением гомогената из спленэктомированной ткани под видеоконтролем выполняется прокол передней брюшной стенки в проекции передненаружной поверхности печени и введение гомогената вышеописанным способом, что позволяет минимизировать инвазивность оперативного вмешательства, снизить риск развития гнойно-септических осложнений, облегчить течение послеоперационного периода.Thus, this method has significant advantages over existing autolient transplantation methods, consisting in the possibility of performing laparoscopically. So, after splenectomy by the laparoscopic method and preparation of a homogenate from splenectomized tissue under video control, the anterior abdominal wall is punctured in the projection of the anterior external surface of the liver and the homogenate is injected in the manner described above, which minimizes the invasiveness of surgical intervention, reduces the risk of purulent-septic complications, and facilitates the postoperative period.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2015121159A RU2610361C2 (en) | 2015-06-03 | 2015-06-03 | Method for experimental modelling of autotransplantation of splenic tissue into liver |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2015121159A RU2610361C2 (en) | 2015-06-03 | 2015-06-03 | Method for experimental modelling of autotransplantation of splenic tissue into liver |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2015121159A RU2015121159A (en) | 2016-12-27 |
RU2610361C2 true RU2610361C2 (en) | 2017-02-09 |
Family
ID=57759251
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2015121159A RU2610361C2 (en) | 2015-06-03 | 2015-06-03 | Method for experimental modelling of autotransplantation of splenic tissue into liver |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2610361C2 (en) |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6018096A (en) * | 1993-05-03 | 2000-01-25 | Surrogen, Inc. | Animal model for engraftment, proliferation and differentiation of human hematopoietic stem cells |
RU2162659C2 (en) * | 1998-05-05 | 2001-02-10 | Афендулов Сергей Алексеевич | Method for performing splenic tissue autotransplantation |
RU2232550C2 (en) * | 2002-07-22 | 2004-07-20 | Плеханов Александр Николаевич | Method for postresectional hepatic regeneration in an experiment |
RU2310416C2 (en) * | 2005-12-29 | 2007-11-20 | Алексей Маркович Цигельник | Method for surgical access at laparoscopic splenectomy |
-
2015
- 2015-06-03 RU RU2015121159A patent/RU2610361C2/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6018096A (en) * | 1993-05-03 | 2000-01-25 | Surrogen, Inc. | Animal model for engraftment, proliferation and differentiation of human hematopoietic stem cells |
RU2162659C2 (en) * | 1998-05-05 | 2001-02-10 | Афендулов Сергей Алексеевич | Method for performing splenic tissue autotransplantation |
RU2232550C2 (en) * | 2002-07-22 | 2004-07-20 | Плеханов Александр Николаевич | Method for postresectional hepatic regeneration in an experiment |
RU2310416C2 (en) * | 2005-12-29 | 2007-11-20 | Алексей Маркович Цигельник | Method for surgical access at laparoscopic splenectomy |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
KARAHAN O et al. Evaluating the effectiveness of spleen autotransplantation into the liver and the omentum. Bratisl Lek Listy. 2013;114(11):610-5, abstr. * |
САМОХОДОВ С. Ю. Аутотрансплантация ткани селезенки в комплексе хирургического лечения больных циррозом печени, осложненным спленомегалией с явлениями гиперспленизма. Автореф. дис. на соиск. учен. степ. канд. мед. наук, 2003. HAN B et al. Regeneration of splenic autotransplants attached on liver by a tissue adhesive. Transplant Proc. 2010 Jun;42(5):1944-8, abstr. * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2015121159A (en) | 2016-12-27 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Rotellar et al. | Totally laparoscopic Roux-en-Y duct-to-mucosa pancreaticojejunostomy after middle pancreatectomy: a consecutive nine-case series at a single institution | |
Albanese et al. | Use of a barbed knotless suture for laparoscopic ablation of the nephrosplenic space in 8 horses | |
Bozkurt et al. | Is laparoscopic appendectomy going to be standard procedure for acute appendicitis; a 5-year single center experience with 1,788 patients | |
Pakyari et al. | A new method for skin grafting in murine model | |
RU2503419C1 (en) | Method of ovariohysterectomy in cats and ferrets with videoendoscopic control | |
RU2593236C1 (en) | Method for surgical treatment of females of reproductive age with intramural subserous hysteromyoma | |
RU2610361C2 (en) | Method for experimental modelling of autotransplantation of splenic tissue into liver | |
RU2482807C1 (en) | Method of laparoscopic myomectomy | |
RU2597320C1 (en) | Method of treating postradiation rectovaginal fistulas | |
Zhang et al. | Laparoscopic left hemihepatectomy combined with right lateral hepatic lobectomy in pigs: surgical approach and comparative study of the inflammatory response versus open surgery | |
Spagnolo et al. | Nephrosplenic space ablation in horses after homologous pericardium implant using a laparoscopic stapler | |
RU2506955C1 (en) | Method for making dura mater biograft for endoscopic operations in reconstructive surgery | |
RU2355436C1 (en) | Method of surgical liver echinococcosis treatment | |
RU2129735C1 (en) | Method for modeling traumatic osteomyelitis | |
RU2578818C1 (en) | Method for simulating osteomyelitis | |
RU2222052C2 (en) | Method for modeling solitary hepatic echinococcosis | |
RU2547697C1 (en) | Method for simulating acute destructive infected pancreonecrosis | |
RU2816989C1 (en) | Method for experimental simulation of hepatic echinococcosis | |
Monteiro et al. | Clinical and surgical approach to umbilical disorders in calves-literature review | |
Consten et al. | Perioperative outcome of laparoscopic left lateral liver resection is improved by using a bioabsorbable staple line reinforcement material in a porcine model | |
RU2725273C1 (en) | Method of human pancreatic neuroendocrine tumor fragment transplantation into immunodeficiency mice pancreatic gland | |
RU2785942C1 (en) | Method for modeling reversible mechanical jaundice | |
RU2758241C1 (en) | Method for transgastric ovariectomy in dogs and cats | |
US20220047687A1 (en) | Chemical scalpel | |
Jing et al. | A causal analysis of intra-abdominal hemorrhage after reduced-size liver transplantation in rat |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
HE9A | Changing address for correspondence with an applicant | ||
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20170604 |