RU2810308C1 - Способ культивирования морских гетеротрофных динофлагеллят oxyrrhis marina - Google Patents
Способ культивирования морских гетеротрофных динофлагеллят oxyrrhis marina Download PDFInfo
- Publication number
- RU2810308C1 RU2810308C1 RU2023114095A RU2023114095A RU2810308C1 RU 2810308 C1 RU2810308 C1 RU 2810308C1 RU 2023114095 A RU2023114095 A RU 2023114095A RU 2023114095 A RU2023114095 A RU 2023114095A RU 2810308 C1 RU2810308 C1 RU 2810308C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- marina
- cells
- culture
- microalgae
- days
- Prior art date
Links
- 241000200171 Oxyrrhis marina Species 0.000 title claims abstract description 103
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 26
- 230000012010 growth Effects 0.000 claims abstract description 21
- 241000199914 Dinophyceae Species 0.000 claims abstract description 19
- 239000000725 suspension Substances 0.000 claims abstract description 19
- 239000013535 sea water Substances 0.000 claims abstract description 18
- 230000004060 metabolic process Effects 0.000 claims abstract description 11
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims abstract description 11
- 241000196321 Tetraselmis Species 0.000 claims abstract description 10
- 241001501873 Isochrysis galbana Species 0.000 claims abstract description 9
- 238000005286 illumination Methods 0.000 claims abstract description 7
- 241000195634 Dunaliella Species 0.000 claims abstract description 6
- 238000012546 transfer Methods 0.000 claims abstract description 6
- 241001501882 Rhodomonas Species 0.000 claims abstract description 5
- 241000206731 Phaeodactylum Species 0.000 claims abstract description 4
- 230000003213 activating effect Effects 0.000 claims abstract description 4
- 230000004936 stimulating effect Effects 0.000 claims abstract description 4
- 230000006978 adaptation Effects 0.000 claims abstract description 3
- 230000019522 cellular metabolic process Effects 0.000 claims abstract description 3
- 238000005457 optimization Methods 0.000 claims abstract 2
- 238000002955 isolation Methods 0.000 claims description 5
- 235000008935 nutritious Nutrition 0.000 claims 1
- 241000239250 Copepoda Species 0.000 abstract description 20
- 235000013305 food Nutrition 0.000 abstract description 17
- 239000002028 Biomass Substances 0.000 abstract description 8
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 abstract description 5
- 229930182558 Sterol Natural products 0.000 abstract description 4
- 238000009360 aquaculture Methods 0.000 abstract description 4
- 244000144974 aquaculture Species 0.000 abstract description 4
- 230000008569 process Effects 0.000 abstract description 4
- 235000003702 sterols Nutrition 0.000 abstract description 4
- 150000003432 sterols Chemical class 0.000 abstract description 4
- 230000003203 everyday effect Effects 0.000 abstract description 3
- 235000021122 unsaturated fatty acids Nutrition 0.000 abstract description 3
- 150000004670 unsaturated fatty acids Chemical class 0.000 abstract description 3
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract description 2
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 abstract 1
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract 1
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 59
- 230000002354 daily effect Effects 0.000 description 8
- 230000001186 cumulative effect Effects 0.000 description 7
- 235000020660 omega-3 fatty acid Nutrition 0.000 description 7
- 241000251468 Actinopterygii Species 0.000 description 6
- 235000014113 dietary fatty acids Nutrition 0.000 description 6
- 229930195729 fatty acid Natural products 0.000 description 6
- 239000000194 fatty acid Substances 0.000 description 6
- 150000004665 fatty acids Chemical class 0.000 description 6
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 6
- 235000020669 docosahexaenoic acid Nutrition 0.000 description 4
- 239000012535 impurity Substances 0.000 description 4
- 238000011160 research Methods 0.000 description 4
- 230000007704 transition Effects 0.000 description 4
- 230000001228 trophic effect Effects 0.000 description 4
- 230000007774 longterm Effects 0.000 description 3
- 238000012423 maintenance Methods 0.000 description 3
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 3
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 3
- 230000000384 rearing effect Effects 0.000 description 3
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 2
- 241001339134 Calanoides Species 0.000 description 2
- 241001501885 Isochrysis Species 0.000 description 2
- 206010057249 Phagocytosis Diseases 0.000 description 2
- 230000001133 acceleration Effects 0.000 description 2
- 230000004913 activation Effects 0.000 description 2
- 230000001651 autotrophic effect Effects 0.000 description 2
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 2
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 2
- 239000000306 component Substances 0.000 description 2
- 238000012136 culture method Methods 0.000 description 2
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 2
- 150000002632 lipids Chemical class 0.000 description 2
- 238000009364 mariculture Methods 0.000 description 2
- 239000000463 material Substances 0.000 description 2
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 2
- 230000008782 phagocytosis Effects 0.000 description 2
- 230000000243 photosynthetic effect Effects 0.000 description 2
- 230000001932 seasonal effect Effects 0.000 description 2
- UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N streptomycin Chemical compound CN[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@](C=O)(O)[C@H](C)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@H]1O UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N 0.000 description 2
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000963673 Acartia tonsa Species 0.000 description 1
- 241000239266 Calanus finmarchicus Species 0.000 description 1
- 241000182930 Calanus glacialis Species 0.000 description 1
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000238424 Crustacea Species 0.000 description 1
- 229930182566 Gentamicin Natural products 0.000 description 1
- CEAZRRDELHUEMR-URQXQFDESA-N Gentamicin Chemical compound O1[C@H](C(C)NC)CC[C@@H](N)[C@H]1O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O[C@@H]2[C@@H]([C@@H](NC)[C@@](C)(O)CO2)O)[C@H](N)C[C@@H]1N CEAZRRDELHUEMR-URQXQFDESA-N 0.000 description 1
- 241000206757 Heterosigma akashiwo Species 0.000 description 1
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 1
- 229920000426 Microplastic Polymers 0.000 description 1
- 241001155215 Nitokra lacustris Species 0.000 description 1
- 241001150972 Oithona davisae Species 0.000 description 1
- 229930182555 Penicillin Natural products 0.000 description 1
- JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N Penicillin G Chemical compound N([C@H]1[C@H]2SC([C@@H](N2C1=O)C(O)=O)(C)C)C(=O)CC1=CC=CC=C1 JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N 0.000 description 1
- 241000206744 Phaeodactylum tricornutum Species 0.000 description 1
- 241000196317 Platymonas Species 0.000 description 1
- 241000252582 Pseudocalanus Species 0.000 description 1
- 241000512224 Rhodomonas salina Species 0.000 description 1
- 241001123267 Tisbe furcata Species 0.000 description 1
- 230000032683 aging Effects 0.000 description 1
- 230000003698 anagen phase Effects 0.000 description 1
- 239000003242 anti bacterial agent Substances 0.000 description 1
- 229940088710 antibiotic agent Drugs 0.000 description 1
- 239000000935 antidepressant agent Substances 0.000 description 1
- 229940005513 antidepressants Drugs 0.000 description 1
- 230000003816 axenic effect Effects 0.000 description 1
- 238000010170 biological method Methods 0.000 description 1
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000032823 cell division Effects 0.000 description 1
- 230000010261 cell growth Effects 0.000 description 1
- 239000003653 coastal water Substances 0.000 description 1
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 1
- 230000001276 controlling effect Effects 0.000 description 1
- 238000012364 cultivation method Methods 0.000 description 1
- 238000012258 culturing Methods 0.000 description 1
- 238000005520 cutting process Methods 0.000 description 1
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 1
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 1
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 1
- 230000002526 effect on cardiovascular system Effects 0.000 description 1
- 210000002969 egg yolk Anatomy 0.000 description 1
- 230000013020 embryo development Effects 0.000 description 1
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 1
- 235000012041 food component Nutrition 0.000 description 1
- 239000005428 food component Substances 0.000 description 1
- 235000012631 food intake Nutrition 0.000 description 1
- 239000012737 fresh medium Substances 0.000 description 1
- 229960002518 gentamicin Drugs 0.000 description 1
- 238000003306 harvesting Methods 0.000 description 1
- 230000036512 infertility Effects 0.000 description 1
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 1
- 230000001418 larval effect Effects 0.000 description 1
- 235000020978 long-chain polyunsaturated fatty acids Nutrition 0.000 description 1
- 244000000010 microbial pathogen Species 0.000 description 1
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 1
- 239000007003 mineral medium Substances 0.000 description 1
- 238000012544 monitoring process Methods 0.000 description 1
- 229940049954 penicillin Drugs 0.000 description 1
- 230000000737 periodic effect Effects 0.000 description 1
- 235000020777 polyunsaturated fatty acids Nutrition 0.000 description 1
- 230000002265 prevention Effects 0.000 description 1
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 1
- 239000002994 raw material Substances 0.000 description 1
- 230000014493 regulation of gene expression Effects 0.000 description 1
- 230000001105 regulatory effect Effects 0.000 description 1
- 239000013049 sediment Substances 0.000 description 1
- 241000894007 species Species 0.000 description 1
- 230000000638 stimulation Effects 0.000 description 1
- 229960005322 streptomycin Drugs 0.000 description 1
- 230000004083 survival effect Effects 0.000 description 1
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 1
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 1
- 230000035899 viability Effects 0.000 description 1
Abstract
Изобретение относится к области морской аквакультуры и предназначено для получения массы высококачественных живых кормовых организмов для использования в качестве промежуточных живых кормов для морских копепод, для проведения экспериментальных работ, а также в качестве источника ценных химических соединений, таких как высоконенасыщенные жирные кислоты и стеролы. Выделяют клетки Oxyrrhis marina из природных резервуаров и осуществляют адаптацию к условиям культивирования. В процессе адаптации отбирают наиболее быстрорастущие клетки при культивировании в течение 7-14 суток с использованием стерильной морской воды, при исходной плотности О. marina 0.5 кл/мл, с кормлением один раз в течение 3 суток нанопланктонными микроводорослями при концентрации ~104 кл/мл и постоянном освещении 500 лк, а затем рекультивируют культуру О. marina в условиях пониженного метаболизма при 15°С с минимальным освещением ~100-500 люкс, при кормлении 1-2 раза в месяц суспензией ~104 кл/мл зеленых микроводорослей Tetraselmis или Dunaliella. Для получения массовой культуры гетеротрофных динофлагеллят О. marina их переводят в условия активации метаболизма клеток и стимуляции ускоренного деления путем повышения температуры до оптимальной 24±1°С и оптимизацией кормления микроводорослями Isochrysis galbana 105 кл/мл и в течение 3 сут с постепенным увеличением объема культуры динофлагеллят от 20 до 200 мл при плотности клеток О. marina ~300 кл/мл и средней скорости роста численности популяции 1.4 сут-1, затем в течение 5 суток при скорости роста численности 0.7-1.4 сут-1 производят постепенное увеличение плотности клеток от 300 до ~40000 кл/мл при одновременном наращивании объема до 1000 мл, добавляя питательную суспензию клеток I. galbana в стерильной морской воде. Для перевода полученной маточной культуры в полупромышленную ежесуточно производят изъятие 0.5 объема интенсивной культуры О. marina, восполняя изъятие до полного объема суспензией стерильной морской воды с добавлением смеси микроводорослей Tetraselmis, Rhodomonas, Phaeodactylum, а через сутки повторяют процедуру изъятия. Изобретение обеспечивает возможность получения биомассы Oxyrrhis marina. 4 ил., 1 табл., 1 пр.
Description
Изобретение относится к области морской аквакультуры и предназначено для получения массы живых кормовых одноклеточных организмов - гетеротрофных динофлагеллят, для проведения экспериментальных работ в области научных исследований по аквакультуре, морской биологии, биохимии, молекулярной биологии и биологического тестирования.
Известно, что морскими микроводорослями (фотосинтезирующим фитопланктоном) питаются копеподы, для которых именно фитопланктон является источником незаменимых компонентов, таких как длинноцепочечные полиненасыщенные жирные кислоты, в частности, высоконенасыщенные жирные кислоты (ВНЖК, омега-3), и эти планктонные ракобразные передают омега-3 далее вверх по пищевой цепи личинкам и планктоноядным рыбам. Незаменимые ПНЖК играют важную роль в разнообразных метаболических процессах высших животных, не только морских, но и наземных, они участвуют в регуляции экспрессии генов, начиная с эмбрионального развития, играют значительную роль в процессах воспроизводства и замедления старения, и используются в фармацевтической промышленности в качестве антидепрессантов и профилактики сердечно-сосудистых и нервных заболеваний.
Однако, во-первых, многие фотосинтезирующие и производящие ВНЖК микроводоросли меньше оптимальных размеров (менее 5 мкм) для питания взрослых стадий каланоидных копепод. Во-вторых, планктонные циклопоидные копеподы, играющие роль в переходе на внешнее питание мелкоразмерных ранних пелагических личинок морских рыб, не потребляют некоторые микроводоросли, имеющие высокое содержание омега-3. В-третьих, некоторые технологически легко культивируемые нанопланктонные микроводоросли (например, p. Dunaliella) не содержат омега-3, и, соответственно, их нельзя использовать для культивирования копепод, или как источник ВНЖК для промышленности.
Гетеротрофные протесты оказываются промежуточным звеном между микроводорослями и копеподами, являясь важными консументами автотрофного фитопланктона различного размерного и таксономического состава, и в то же время оптимальным кормовым организмом для копепод, а, следовательно, - критическим звеном для направления питательных веществ от основы пелагической пищевой сети к более высоким трофическим уровням. Некоторые гетеротрофные протесты ассимилируют/переупаковывают питательные вещества из фитопланктона (включая нано- и пико- фракции) и повышают эффективность переноса углерода на границе между фитопланктоном и зоопланктоном. В результате усвоения и переработки ассимилированного фитопланктона гетеротрофные протесты могут накапливать незаменимые вещества, отсутствующие в потребляемых ими микроводорослях, которые могут быть использованы на более высоких трофических уровнях. Соответственно, копеподы, питающиеся гетеротрофными протестами, обеспечивают незаменимыми компонентами питающихся ими личинок морских рыб.
Гетеротрофные динофлагелляты Oxyrrhis marina (Dujardin, 1841) являются космополитами и с определенной периодичностью встречаются в прибрежных водах Черного моря (Сеничкина. 1983). Динофлагелляты О. marina могут периодически образовывать внезапные кратковременные «цветения», возникающие в разных прибрежных акваториях Мирового океана, которые связаны с быстрым ростом численности их популяций, достигающих концентрации 4.4 105 кл мл-1 в «пятнах цветения» (Бегун и др., 2014). Быстрое размножение этих динофлагеллят связано с их основным способом питания - фагоцитозом, в результате которого они могут поглощать нанопланктонные микроводоросли и другие пищевые частицы с максимальной избыточной скоростью потребления от 10 до 50 кл экз-1 час-1 (1.5 - 3.9 нг С экз-1 сут-1) в зависимости от их размерных характеристик (Ханайченко и др., 2023 подано в печ.).
Одна из особенностей гетеротрофных динофлагеллят Oxyrrhis marina состоит в том, что они могут накапливать в клетке стеролы (Chu et ah, 2008) и незаменимые ВНЖК (Parrish et al., 2013), отсутствующие в некоторых микроводорослях, в результате десатурации жирных кислот из потребляемых ими микроводорослей, или ре-синтеза de novo. Известно, что жирнокислотный состав О. marina, независимо от состава микроводорослей, которыми они питаются, остается практически неизменным, и содержание омега-3, в частности докозагексаеновой жирной кислоты (ДГК, 20:6n-3) составляет 30-43% от общего содержания жирных кислот, что значительно выше содержания ДГК у микроводорослей, которыми они питаются (Parrish et al., 2013).
Второе преимущество О. marina заключается в быстром усвоении материала микроводорослей, и, в результате, высокой скорости роста численности (превышающей скорость роста численности микроводорослей) и достижении высокой концентрации (не менее 5⋅104 кл мл-1) (Ханайченко и др., 2023 подано в печ.). Еще одним преимуществом О. marina является способность фагоцитировать/отфильтровывать/седиментировать практически любые планктонные взвеси, включая бактериальную взвесь или мелкие жгутиковые. Это позволяет использовать его в аквакультурной практике в бассейнах выращивания для редуцирования вспышек численности нежелательных микроорганизмов.
Известно, что О. marina в отличие от разных видов нанопланктонных микроводорослей, селективность к которым значимо отличается у разных видов копепод (Ханайченко и др., 2016), является универсальным кормом для морских планктонных копепод как каланоидных (Acartia tonsa), так и циклопоидных (Oithona davisae), которые активно потребляют О. marina, и в результате, получают необходимые для интенсивного воспроизводства количество и соотношение незаменимых эссенциальных компонентов пищи, таких как ВНЖК и стеролы. Таким образом, О. marina могут быть использованы для культивирования всех видов планктонных копепод, обеспечивая выход качественной продукции в условиях массового производства в марикультуре.
Известен способ культивирования О. marina на аксеничной органико-минеральной среде (Droop, 1959). Однако, во-первых, этот способ требует абсолютной стерильности, которую нереально поддерживать в условиях масового культивирования, а, во-вторых, высокая плотность О. marina не достижима.
Известен способ кормления О. marina культурами бактерий Eischerihia coli (Lowe et al., 2011), но он требует добавления нежелательных антибиотиков - смеси стрептомицина, пенициллина и гентамицина) для подавления роста нежелательных бактерий.
Известен способ накопительного культивирования гетеротрофных динофлагеллят (Patent, 2016 «Baits and simple culture method for sea Oxyrrhis marina», CN 201610070619.9A 2016-02-01 Application filed by Hebei Agricultural University2016-02-01 Priority to CN201610070619.9A 2016-07-06 Publication of CN105733952A), по которому О. marina помещают в 1 л колбы и при 2000-4000 люкс со световым периодом 10-12 час, при температуре 18-25°С, желтка 10-50 мг/л, и культивируют в течение 10 сут до приобретения культивационной суспензии молочно-розовато-опалесцирующего оттенка (обычно наблюдаемом при достижении окзирисом максимальной плотности при полном истощении пищи) до достижения плотности 1.5 - 5.5 × 105 экз/л (то есть 1.5 - 5.5 × 102 экз/мл). Недостатками вышеприведенного метода накопительного культивирования О. marina является невозможность контроля обеспеченности динофлагеллят пищей, неконтролируемый биохимический состав и возможность бактериального загрязнения кормов. При этом известно, что качество пищи влияет как на уровень воспроизводства копепод, пригодных для кормления личинок рыб. При использовании данного способа культивирования конечная плотность культуры - невысока, и качество клеток О. marina - непредсказуемо, а также ее рост занимает слишком длительный период времени. При использовании этого метода в бассейны для выращивания личинок могут быть занесены патогенные микроорганизмы, влияющие на выживаемость личинок рыб.
В связи с недостаточной изученностью популяций О. marina в естественной среде, несмотря на их частое использование в качестве модельных объектов в морской экспериментальной биологии, методы их культивирования до настоящего времени не регламентированы. Однако, как в технологическом цикле выращивания копепод для ларвикультуры морских рыб, так и в фармацевтической промышленности можно успешно использовать морских гетеротрофных динофлагеллят, О. marina (Daday, 1888), для которых характерен широкий размерный и таксономический спектр объектов питания фагоцитозом при высокой скорости потребления пищевых частиц в оптимальных условиях, и ускоренное воспроизводство, максимальная скорость роста численности которых может варьировать в зависимости от трофических и температурных условий от 0.7 до 1.4 сут-1, приводя к быстрому увеличению численности популяции, соответствуя 1-2 делениям клеток О. marina в сутки.
Задачей изобретения является разработка технологии культивирования морских гетеротрофных динофлагеллят О. marina
Технический результат от решения поставленной задачи заключается в том, что сочетание технических приемов позволяет выделять клетки О. marina из естественной среды, получать чистую линию лабораторной популяции гетеротрофных динофлагеллят, рекультивировать чистые маточные культуры О. marina, и, при необходимости, быстро активировать метаболизм гетеротрофных динофлагеллят, наращивать их массовую культуру, и производить длительную эксплуатацию массовой моновидовой популяции (культуры) гетеротрофных динофлагеллят О. marina в экспоненциальной фазе роста в полу-проточном режиме при ежесуточном получении урожая запрограммированной биомассы качественных живых клеток О. marina с высоким содержанием омега-3 и стеролов, а в отсутствии необходимости использования динофлагеллят сокращать популяцию О. marina до маточных культур и длительно содержать их искусственную популяцию (маточную культуру) в условиях пониженного метаболизма.
Заявленный технический результат достигается тем, что в Способе культивирования морских гетеротрофных динофлагеллят Oxyrrhis marina, выделяют клетки О. marina из природных резервуаров и осуществляют адаптацию к условиям культивирования. В процессе адаптации отбирают наиболее быстрорастущие клетки при культивировании в течение 7-14 сут с использованием стерильной морской воды, при исходной плотности О. marina 0.5 кл/мл, с кормлением один раз в течение 3 суток нанопланктонными микроводорослями при концентрации ~104 кл/мл и постоянном освещении 500 лк, а затем рекультивируют культуру О. marina в условиях пониженного метаболизма при 15°С с минимальным освещением ~100-500 люкс, при кормлении 1-2 раза в месяц суспензией ~104 кл/мл зеленых микроводорослей Tetraselmis или Dunaliella. Для получения массовой культуры гетеротрофных динофлагеллят О. marina их переводят в условия активации метаболизма клеток и стимуляции ускоренного деления путем повышения температуры до оптимальной 24±1°С и оптимизацией кормления микроводорослями Isochrysis galbana 105 кл/мл и в течение 3 сут с постепенным увеличением объема культуры динофлагеллят от 20 мл до 200 мл при плотности клеток О. marina ~300 кл/мл и средней скорости роста численности популяции 1.4 сут-1, затем в течение 5 суток при скорости роста численности 0.7-1.4 сут-1 производят постепенное увеличение плотности клеток от 300 до ~40000 кл/мл при одновременном наращивании объема до 1000 мл, добавляя питательную суспензию клеток I.galbana в стерильной морской воде. Для перевода полученной маточной культуры в полупромышленную ежесуточно производят изъятие 0.5 объема интенсивной культуры О. marina, восполняя изъятие до полного объема суспензией стерильной морской воды с добавлением смеси микроводорослей TRP Tetraselmis+Rhodomonas+Phaeodactylum, а через сутки повторяют процедуру изъятия.
Отличительные признаки изобретения, совокупное осуществление которых позволяет достигнуть заявленный технический результат, включают:
- изолирование клеток Oxyrrhis marina из местного природного резервуара;
- очистка клеток О. marina в культуральных условиях от посторонних организмов;
- создание лабораторной популяции О. marina в условиях регулярного пересева в стерильных условиях с внесением чистых культур морских микроводорослей;
- постоянное содержание маточных культур О. marina в условиях пониженной скорости роста с периодическим пересевом культуры;
- создание комплексных условий для активации/стимуляции высокой скорости роста численности О. marina;
- наращивание объема накопительной культуры О. marina при постоянной плотности и скорости роста численности до эксплуатационного объема массовой культуры;
- эксплуатация определенного объема культуры О. marina в условиях полу-проточного культивирования, включающей ежесуточный отбор части объема культуры О. marina и последующее добавление равнозначного объема суспензии стерильной морской воды с добавлением определенной концентрации микроводорослей для поддержания экспоненциального роста;
- соблюдение стабильных стандартизованных условий длительного содержания динофлагеллят для поддержания жизнеспособности их популяции;
- перевод в условия пониженного метаболизма отвивок культуры О. marina по истечении срока ее эксплуатации и создание стандартных условий для длительного содержания живой культуры О. marina в условиях пониженного метаболизма.
Заявляемый способ соответствует критериям «новизна» и «изобретательский уровень», т.к. впервые предложены оптимальные температурные, трофические и плотностные условия для синхронизации и стандартизации процессов продуцирования постоянной биомассы, стандарной скорости воспроизводства гетеротрофных динофлагеллят с эквивалентным сферическим диаметром (ESD)~23±3 мкм, с высоким содержанием омега-3. Заявленный способ соответствует критерию «промышленная применимость», т.к. может быть осуществлен промышленным способом с использованием известного стандартного оборудования.
Способ поясняется описанием, рисунками, представленными на Фиг. 1 - Фиг. 4 и Таблицей 1:
Фиг. 1.1. Клетки Oxyrrhis marina из природной пробы.
Фиг. 1.2. Клетка Oxyrrhis marina и микроводорослей, которыми она питается в цикле 1.
Фиг. 2. Клетки Oxyrrhis marina с массой фагоцитированных клеток Isochrysis galbana в начале цикла 2.
Фиг. 3. Лабораторная популяция Oxyrrhis marina на промежуточном этапе накопительного культивирования (цикла 2) в 100 мл колбах с только что внесенным кормом - колбы слева направо: с микроводорослями Rhodomonas, Tetraselmis, Isochrysis
Фиг 4. Динамика численности (N, 103 кл/мл) Oxyrrhis marina при культивирования в течение 4 сут при температуре 20±2°С: в отсутствие микроводорослей (Ох-Ох) и при единоразовом внесении разных нанопланктонных микроводорослей (Ph - Phaeodactylum tricornutum, Rh - Rhodomonas salina, PI - Platymonas viridis, Is - Isochrysis galbana)
Таблица 1. Параметры наращивания объема (от 200 до 1000 мл) культуры Oxyrrhis marina в накопительном режиме (цикл 2) и эксплуатации культуры в объеме 1000 мл в полу-проточном режиме (цикл 3).
Способ культивирования О. marina включает следующие циклы.
Цикл 1 (выделение клеток О. marina из природных резервуаров, проведение очистки и рекультивация маточной культуры О. marina).
Клетки О. marina, найденные и изъятые из пробы морской воды из прибрежных заплесковых водоемов, очищают от примесей, адаптируют к условиям культивирования в течение 2 суток, под микроскопом, в лунках Multidish, проверяют чистоту отобранных клеток со стерильной морской водой при исходной плотности О. marina 0.5 кл/мл, осуществляя их кормление (раз в 3 суток) нанопланктонными микроводорослями, при концентрации ~104 мл и постоянном освещении 500 лк.
После 7-14 сут культивирования в лунках, отбирают отвивки наиболее быстро растущих клеток О. marina, и переносят ее для культивирвания в колбы 50 мл с суспезией микроводорослей в стерильной морской воде.
Затем полученные чистые отвивки О. marina рекультивируют в небольших объемах маточной культуры (несколько повторностей по 50 мл) с периодичностью пересева 1-2 раза в месяц до перехода к циклу производства биомассы О. marina.
Цикл 2: производство биомассы О. marina включает несколько этапов:
1) Переход к циклу производства биомассы О. marina - активация культуры;
2) Ускоренная «разгонка» - перевод от маточной культуры к массовому культивированию;
3) Интенсивное накопительное культивирование - наращивание объема культуры при поддержании постоянной максимальной плотности О. marina;
Конечный объем культуры для массового культивирования зависит от цели и рассчитывается согласно массы необходимой продукции в единицу времени, например, для одноразового получения биомассы клеток О. marina для экспериментальных работ, или для постоянного использования их в качестве сырья для получения определенной липидной фракции); или для длительного периода ежесуточного получения определенного количества клеток О. marina для кормления массовой культуры копепод.
4) При достижении необходимого объема культуры с соответствующей оптимальной плотностью гетеротрофных динофлагеллят, производят переход к Циклу 3.
Цикл 3. Эксплуатация полу-проточной культуры постоянного объема при ежесуточном изъятии определенного объема.
Трех-ступенчатый перевод культуры из маточной в полу-промышленный вариант
Пример реализации способа.
Цикл 1: выделение клеток О. marina из природных резервуаров, проведение очистки клеток от примесей, выявление быстрорастущих клеток и рекультивация маточной культуры О. marina.
1) Для получения культуры морских гетеротрофных динофлагеллят производили поиск возможных прибрежных временных водоемов, в которых могут обитать естественные популяции О. marina, отбирали из них и доставляли в лабораторию живые пробы. Живые клетки О. marina (Фиг. 1.1) были найдены в заплесковых временных водоемах на скальном берегу Гераклейского полуострова (Севастополь, Крым), характеризующихся частыми изменениями солености (4-25%) и температуры (15-29°С) в летнее время.
2) В день доставки в лабораторию производили просмотр живых проб под микроскопом, и, при обнаружении интактных клеток О. marina, каждую из них с помощью стекляной пипетки переносили в небольшое количество (~2 мл) стерилизованной морской воды и производили «проводку» выделенной клетки через не менее 7 смен стерильной морской воды для отделения от ненужных примесей в «живой капле».
3) Отмытые от примесей клетки О. marina помещали по-одиночке в стерильные лунки культурального планшета с 2 мл стерильной морской воды (т.е. 0.5 кл/мл) и добавляли 2 раза в неделю зеленые нанопланктонные микроводоросли {Tetraselmis или Dunaliella, выращенные на среде Уолна в условиях постоянного освещения 500 лк и температуре ~20°С) до концентрации 104 кл/мл.
4) В течение двух недель пересевов при содержании в стандартных условиях (3) выбирали самые быстрорастущие отвивки, полученные от «диких» клеток О. marina (Фиг. 1.2) и использовали его для инициации маточных культур.
5) Отвивки (по 1 мл) О. marina инокулировали в стерильные стеклянные колбы (20 мл среды в 50 мл колбах) с суспензией разных нанопланктонных микроводорослей (Фиг. 2) из экспоненциальных культур и стерильной морской воды (соленость 18%) и содержали в условиях освещения 1000 лк (12 час день: 12 час ночь) при температуре 21±1°С) при концентрации 104-105 кл/мл, проверяли скорость роста численности популяции О. marina на разных микроводорослях (Фиг. 3), и в течение 2 недель проверяли на чистоту культуры в живых каплях-аликвотах, отобранных из культуральных емкостей.
6) Отвивки О. marina в нескольких (3-5) повторностях рекультивировали в течение длительного времени в небольших объемах маточной культуры (по 20 мл в 50 мл колбах) в условиях пониженного метаболизма при 15°С с минимальным освещением (~100-500 люкс), при кормлении 1-2 раза в месяц суспензией ~ 104 кл/мл зеленых микроводорослей (например, Tetraselmis или Dunaliella) при небольшой скорости роста численности популяции с периодичностью пересева (переноса в новую стерильную колбы), сопровождаемого контролем чистоты отвивок культуры под микросокпом, 1-2 раза в месяц до перехода к циклу 2.
Для получения массовой культуры гетеротрофных динофлагеллят О. marina производили их накопительное культивирование (наращивание от начальной до максимальной плотности в разбавляемой по мере нарастания численности их популяции среде с ежедневным внесением корма.
Цикл 2 («разгонка» популяции О. marina - интенсивное накопительное культивирование - наращивание объема культуры при поддержании роста численности клеток в экспоненциальной фазе роста популяции).
1) Ускоренную «разгонку» - быстрый переход от маточной культуры (20 мл к массовому культивированию производили в результате перевода искусственной популяции динофлагеллят в условия активации метаболизма их клеток и стимуляции их ускоренного деления путем повышения температуры до оптимальной 24±1° и оптимизации кормления микроводорослями Isochrysis galbana 105 кл/мл;
2) В вышеуказанных условиях повышенного метаболизма О. marina (Фиг. 2) в течение 3 сут производили постепенное увеличение объема культуры динофлагеллят от 20 мл до 200 мл (Фиг. 3) при поддержании относительно постоянной плотности клеток О. marina (~ 300 кл/мл) и средней скорости роста численности популяции 1.4 сут-1.
3) При достижении объема культуры О. marina 200 мл в течение 5 суток при скорости роста численности 0.7-1.4 сут-1 производили постепенное увеличение плотности клеток (от 300 до ~ 40000 кл/мл) при одновременном наращивании объема до 1000 мл за счет добавления питательной суспензии клеток Isochrysis galbana в стерильной морской (Табл. 1, цикл 2, 1-5 сутки);
4) При достижении плотности клеток О. marina (>4000 кл/мл) в объеме 1000 мл (Табл. 1, 6 сутки) переходили к циклу 3.
Цикл 3 - Эксплуатация массовой культуры О. marina в конечном объеме культиватора в полу-проточном режиме.
1) После достижения культуры О. marina в объеме массовой эксплуатации, в нашем конкретном случае, 1000 мл (1 л), и достижением популяции в данном объеме плотности клеток >40000 кл/мл (Табл. 1, цикл 3, сутки 6, выделено красным шрифтом), начинали полу-проточное культивирование динофлагеллят при ежедневном сборе части популяции для кормления копепод с ежедневной подменой данного объема свежей средой и внесением корма, и повторяя эту процедуру через сутки (Табл. 1, цикл 3).
2) Ежесуточно производили изъятие половины объема интенсивной культуры О. marina (~0.5 объема -500 мл, Табл. 1, цикл 3, с 6 сут - выделено желтым цветом), в котором содержалось ~ 20 млн. клеток динофлагеллят.
3) Ежедневно после изъятия 0.5 части объема культуры О. marina, ее восполняли 500 мл суспензии стерильной морской воды с добавлением смеси микроводорослей TRP (Tetraselmis+Rhodomonas+Phaeodactylum) при их совокупной биомассе ~ 10 С/мл, доводя объем до 1000 мл (Табл. 1, цикл 3, с 6 сут - выделено голубым цветом)
4) Через сутки в объеме 1000 мл плотность клеток О. marina нарастала до ~ 4000 кл/мл (Табл. 1, цикл 3, 7 сут, выделено красным шрифтом), и процедуру цикла 3 (см. пункты 1-3) повторяли (Табл. 1, цикл 3, 7 сут, изъятие выделено желтым цветом, зеленым выделен оставшийся объем культуры, а голубым цветом - объем культуры после разбавления суспензией с микроводорослями).
5) Эксплуатацию массовой культуры врежиме цикла 3 производили в течение необходимомго срока культивирования массовой культуры копепод, после которого экспериментальную популяцию переводили в режим маточной культуры (см. цикл 1, пункт 6).
Культивируемые авторами изобретения гетеротрофные динофлагелляты О. marina, выведенные авторами изобретения из природного резервуара, применяли в качестве кормовых организмов в течение длительного периода при искусственном массовом выращивании морских и солоноватоводных копепод в отделе марикультуры и морской фармакологии, в экспериментальных работах по экофизиологии и биологии морских копепод (Svetlichny et al, 2016), а также при изучении структуры морских трофических сетей с включением микропластика (Rauen et al., 2023), проводимых в Институте биологии южных морей, и, в дальнейшем, будут использованы неоднократно.
Размеры Oxyrrhis marina варьируют в зависимости от режима культивирования, и при оптимальном культивировании их жирнокислотный состав с содержанием в клетках высоконенасыщенных жирных кислот ДГК (22:6n-3) не менее 30% и ЭПК ~2-4% (Parrish et al., 2012) полностью удовлетворяют потребностям морских копепод.
Источники информации, принятые во внимание:
1. Бегун А.А. Случай «цветения» воды, вызванный динофитовой водорослью Oxyrrhis marina / А.А. Бегун, Т.Ю. Орлова, М.С. Селина // Биол. моря. 2004. Т. 30, №1. С. 68-71.
2. Сеничкина Л.Г. Фитопланктон северо-западной части Черного моря в зимний период моря / Сезонные изменения черноморского планктона. - М: Наука, 1983. С. 55-65.
3. Ханайченко А.Н., Аганесова Л.О., Муханов B.C., Сахонь Е.Г., Рауэн Т.В. Селективность питания копепод разных экологических групп микроводорослями // Морские биологические исследования: достижения и перспективы: Сборник материалов Всероссийской научно-практической конференция с международным участием, приуроченной к 145-летию Севастопольской биологической станции (Севастополь, 19-24 сентября 2016 г. ). Т. 1. Севастополь: ЭКОСИ-Гидрофизика, 2016. С.323-326.
4. Chu FL, Lund ED, Littreal PR, Ruck KE, Harvey E, Le Coz JR, Marty Y, Moal J, Soudant P. Sterol production and phytosterol bioconversion in two species of heterotrophic protists, Oxyrrhis marina and Gyrodinium dominans. Marine biology. 2008 Dec; 156(2): 155-69.
5. Droop, M.R. 1959. Water-soluble factors in the nutrition of Oxyrrhis marina. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom, 38(3), 605-620
6. Lowe CD, Martin LE, Roberts EC, Watts PC, Wootton EC, Montagnes DJ. Collection, isolation and culturing strategies for Oxyrrhis marina. Journal of Plankton Research. 2011 Apr 1; 33(4):569-78.
7. Parrish CC, French VM, Whiticar MJ. Lipid class and fatty acid composition of copepods (Calanus finmarchicus, C. glacialis, Pseudocalanus sp., Tisbe furcata and Nitokra lacustris) fed various combinations of autotrophic and heterotrophic protists. Journal of Plankton Research. 2012 May 1; 34(5):356-75).
8. Patent CN105733952A "Baits and simple culture method for sea Oxyrrhis marina" // Application CN201610070619.9A events 2016-02-01 Application filed by Hebei Agricultural University 2016-02-01 Priority to CN201610070619.9A 2016-07-06 Publication of CN105733952A
9. Rauen Т.V., Mukhanov, V.S., Aganesova, L. O.2023. Ingestion of microplastics by the heterotrophic dinoflagellate Oxyrrhis marina // Marine Biological Journal (in print).
10. Svetlichny, L., Hubareva, E., Khanaychenko, A., Gubanova, A., Altukhov, D., & Besiktepe, S. (2016). Adaptive strategy of thermophilic Oithona davisae in the cold Black Sea environment. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 16(1), 077-090.
11. Jeong HJ, Kim JS, Yoo YD, Kim ST, Kim TH, Park MG, Lee CH, Seong KA, Rang NS, Shim JH. Feeding by the heterotrophic dinoflagellate Oxyrrhis marina on the red-tide raphidophyte Heterosigma akashiwo: a potential biological method to control red tides using mass-cultured grazers. Journal of eukaryotic microbiology. 2003 Jul; 50(4):274-82.
Claims (1)
- Способ культивирования морских гетеротрофных динофлагеллят Oxyrrhis marina, включающий выделение клеток О. marina из природных резервуаров, адаптацию к условиям культивирования, отличающийся тем, что отбирают наиболее быстрорастущие клетки при культивировании в течение 7-14 суток с использованием стерильной морской воды, при исходной плотности О. marina 0,5 кл/мл, с кормлением один раз в течение 3 суток нанопланктонными микроводорослями при концентрации ~104 кл/мл и постоянном освещении 500 лк, а затем рекультивируют О. marina в условиях пониженного метаболизма при 15°C с минимальным освещением ~100-500 люкс, при кормлении 1-2 раза в месяц суспензией ~104 кл/мл зеленых микроводорослей Tetraselmis или Dunaliella, а для получения массовой культуры гетеротрофных динофлагеллят О. marina их переводят в условия активации метаболизма клеток и стимуляции ускоренного деления, путем повышения температуры до оптимальной 24±1°С и оптимизацией кормления микроводорослями Isochrysis galbana 105 кл/мл, и в течение 3 суток с постепенным увеличением объема культуры динофлагеллят от 20 мл до 200 мл при плотности клеток О. marina ~300 кл/мл и средней скорости роста численности популяции 1,4 сут-1, затем в течение 5 суток при скорости роста численности 0,7-1,4 сут-1 производят постепенное увеличение плотности клеток от 300 до ~ 40000 кл/мл при одновременном наращивании объема до 1000 мл, добавляя питательную суспензию клеток I.galbana в стерильной морской воде, и для перевода полученной маточной культуры в полу-промышленную ежесуточно производят изъятие 0.5 объема интенсивной культуры О. marina, восполняя изъятие до полного объема суспензией стерильной морской воды с добавлением смеси микроводорослей Tetraselmis+Rhodomonas+Phaeodactylum, а через сутки повторяют процедуру изъятия.
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2810308C1 true RU2810308C1 (ru) | 2023-12-26 |
Family
ID=
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5492938A (en) * | 1990-02-13 | 1996-02-20 | Martek Biosciences Corporation | Pharmaceutical composition and dietary supplement containing docosarexaenoic acid obtained from dinoflagellates |
RU95104643A (ru) * | 1995-03-29 | 1996-07-10 | Тихоокеанский научно-исследовательский рыбохозяйственный центр | Способ культивирования ламинарии в одногодичном цикле в условиях дальнего востока |
CN105733952A (zh) * | 2016-02-01 | 2016-07-06 | 河北农业大学 | 一种海洋尖尾藻的饵料及海洋尖尾藻简易培养方法 |
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5492938A (en) * | 1990-02-13 | 1996-02-20 | Martek Biosciences Corporation | Pharmaceutical composition and dietary supplement containing docosarexaenoic acid obtained from dinoflagellates |
RU95104643A (ru) * | 1995-03-29 | 1996-07-10 | Тихоокеанский научно-исследовательский рыбохозяйственный центр | Способ культивирования ламинарии в одногодичном цикле в условиях дальнего востока |
CN105733952A (zh) * | 2016-02-01 | 2016-07-06 | 河北农业大学 | 一种海洋尖尾藻的饵料及海洋尖尾藻简易培养方法 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Osinga et al. | Cultivation of marine sponges | |
JP4852662B2 (ja) | 動物プランクトン餌料用セレン含有単細胞微細藻類とそれを使用したセレン含有動物プランクトンの培養方法 | |
KR20140033490A (ko) | 혼합영양 배양 모드에서의 epa 및 dha의 제조를 위한 오돈텔라 속의 미세조류의 신규 균주 | |
US20200087699A1 (en) | Methods for producing zooplankton | |
Osinga et al. | Development of in vivo sponge cultures: particle feeding by the tropical sponge Pseudosuberites aff. andrewsi | |
US20110207820A1 (en) | Novel chrysochromulina species, methods and media therefor, and products derived therefrom | |
EP1508272A1 (en) | Bioreactor system for the cultivation of aquatic organisms | |
JP2015510762A (ja) | ユーグレナによる混合栄養モードでのエイコサペンタエン酸および/またはアラキドン酸の産生 | |
US20140199739A1 (en) | Novel strains of microalgae of the isochrysis genus for producing epa and dha in a mixotrophic mode | |
RU2810308C1 (ru) | Способ культивирования морских гетеротрофных динофлагеллят oxyrrhis marina | |
Ownagh et al. | Comparison of the growth, survival and nutritional value of Artemia using various agricultural by-products and unicellular algae Dunaliella salina | |
CN111254080B (zh) | 一株Nanochlorum sp.微藻及其作为水产饵料的应用 | |
JP3302123B2 (ja) | 動物性プランクトン培養用飼料 | |
Takeyama et al. | DHA enrichment of rotifers: A simple two-step culture using the unicellular algae Chlorella regularis and Isochrysis galbana | |
KR101323873B1 (ko) | 성장률이 우수한 나노클로롭시스 속 신균주 및 이의 용도 | |
Rorrer et al. | Production of bioactive metabolites by cell and tissue cultures of marine macroalgae in bioreactor systems | |
JP2007006763A (ja) | 水産動物用餌料とその製造方法 | |
Palanichamy et al. | Observations on the long term preservation and culture of the marine microalga, Nannochloropsis oculata | |
CN110923146A (zh) | 一种富含多不饱和脂肪酸和必需氨基酸的小球藻及其应用 | |
Izaara et al. | Effect of type of nutrient media on the biomass and fatty acid profiles of microalgae (Chlorella spp.) | |
JP2790642B2 (ja) | ユーグレナ処理物とその用途 | |
JPH06105659A (ja) | 動物性プランクトン用飼料、該飼料に用いられる鞭毛藻類の培養方法並びにdha高含有オイルの製造方法 | |
KR20140132226A (ko) | 신규한 담수산 패오닥틸럼 트리코누툼 균주 및 이의 용도 | |
KR20200121524A (ko) | 규조류 배양 시 보조색소인 후코산틴의 함량 향상방법 | |
Joseph | Microalgae Culture and Production |