RU2601378C1

RU2601378C1 - Method for simulating soft tissue abscess

Info

Publication number: RU2601378C1
Application number: RU2015120118/14A
Authority: RU
Inventors: Владимир Владимирович Алипов; Алина Ивановна Урусова; Дмитрий Александрович Андреев; Ниджат Ханлар оглы Кулиев
Priority date: 2015-05-27
Filing date: 2015-05-27
Publication date: 2016-11-10

Abstract

FIELD: medicine.

SUBSTANCE: invention can be used for search of new methods of treating abscesses of soft tissues. For simulating abscess exciter of the pathological process is introduced to animal in subcutaneous space. At that, catheter is inserted in it with balloon. Balloon is inflated in volume by 2 ml of 0.9 % sodium chloride solution. End of catheter is covered by skin duplication. Three days later balloon is emptied and catheter is removed. Then in formed cavity suspension of Staphylococcus aureus with microbial load of 2 ml × 10⁶ CFU is injected as agent of pathological process.

EFFECT: method is low-traumatic, does not require complex manipulations, enables to form limited suppurative inflammation of soft tissues on fifth day of experiment.

1 cl, 6 dwg, 1 ex

Description

Изобретение относится к медицине, экспериментальной и гнойной хирургии и может быть использовано для поиска новых способов лечения абсцессов мягких тканей.The invention relates to medicine, experimental and purulent surgery and can be used to search for new methods of treating soft tissue abscesses.

В литературе известны способы моделирования абсцессов мягких тканей:In the literature, methods for modeling soft tissue abscesses are known:

1) После обработки кожи животного в подкожную клетчатку вводили 1-1,5 мл скипидара, формирование абсцесса происходит через несколько часов, затем в полученную полость вводили 2-4×10⁵ КОЕ St.aureus (Шалимов С.А., Радзинский А.П., Кейсевич А.В. Руководство по экспериментальной хирургии. - М.: Медицина, 1989. - 272 с.). Недостатком этого способа является то, что введенный в подкожную клетчатку скипидар не создает ограниченную полость, а распространяется по подкожному пространству, и введение возбудителя моделирует гнойную распространенную рану, а не абсцесс.1) After processing the skin of the animal, 1-1.5 ml of turpentine was injected into the subcutaneous tissue, the formation of an abscess occurs after a few hours, then 2-4 × 10 ⁵ CFU of St.aureus were introduced into the cavity (Shalimov S.A., Radzinsky A. P., Keysevich A.V. Guide to Experimental Surgery.- M.: Medicine, 1989. - 272 p.). The disadvantage of this method is that turpentine introduced into the subcutaneous tissue does not create a limited cavity, but spreads through the subcutaneous space, and the introduction of the pathogen models a purulent widespread wound, and not an abscess.

2) После обработки кожи под местной анестезией раствором новокаина 0,5% 10-мл иглой наносили повреждения мягких тканей (область длинных мышц спины) на глубине 3 см шириной 2 см в предполагаемой зоне формирования абсцесса. В день начала эксперимента под наркозом производился разрез скомпрометированной накануне области длинной 3 см и в мягкие ткани вводился стерильный марлевый шарик диаметром 10 мм, пропитанный 1 мл жидкости с патогенным штаммом St.aureus. На рану накладывались первичные швы (Джимак С.С., Барышев М.Г., Басов А.А. Влияние сверхнизких концентраций дейтерия на процессы свободнорадикального окисления у лабораторных животных. - www.biophys.ru/archive/congress2012/proc-p73.pdf). Недостатком этого метода является высокая травматичность, сложность выполнения способа. Также моделированный абсцесс не отвечал всем требованиям отграниченного гнойного воспаления, так как производился обширный дефект одной из стенок, а это уже является гнойной раной, а не абсцессом.2) After treating the skin under local anesthesia with a novocaine solution of 0.5% with a 10-ml needle, soft tissue damage (the area of the long back muscles) was applied at a depth of 3 cm 2 cm wide in the proposed area of abscess formation. On the day the experiment began, under anesthesia, an incision was made on a 3 cm long area that had been compromised the previous day and a sterile gauze ball with a diameter of 10 mm soaked in 1 ml of liquid with the pathogenic strain of St. aureus was injected into the soft tissues. Primary sutures were placed on the wound (Dzhimak S.S., Baryshev M.G., Basov A.A. Effect of ultra-low concentrations of deuterium on free radical oxidation processes in laboratory animals. - www.biophys.ru/archive/congress2012/proc-p73. pdf). The disadvantage of this method is the high morbidity, the complexity of the method. Also, the simulated abscess did not meet all the requirements of a limited purulent inflammation, since an extensive defect of one of the walls was produced, and this is already a purulent wound, and not an abscess.

Наиболее близким способом формирования абсцесса мягких тканей является способ, заключающийся в том, что в подкожную клетчатку вначале вводился воздух и в сформировавшийся воздушный пузырь медленно вводился инфекционный агент, через 7 суток формировался подкожный абсцесс (Моделирование экстрасфинктерного свища прямой кишки в эксперименте. / С.В. Шахрай // Медицинский журнал. - 2012. - №3. - С. 131-135). Недостатком этого способа является то, что воздушный пузырь и введенный инфекционный агент не создает стенку предполагаемого абсцесса, которая должна отграничивать гнойное содержимое от его распространения по подкожному пространству. Следовательно, автор моделировал гнойную распространенную рану, а не абсцесс подкожного пространства, как было заявлено.The closest way to form an abscess of soft tissues is the way that air was first introduced into the subcutaneous tissue and an infectious agent was slowly introduced into the formed air bubble, after 7 days a subcutaneous abscess was formed (Modeling of extrasphincter fistula of the rectum in the experiment / C. Shakhrai // Medical journal. - 2012. - No. 3. - S. 131-135). The disadvantage of this method is that the air bubble and the injected infectious agent does not create a wall of the alleged abscess, which should delimit purulent contents from its distribution through the subcutaneous space. Consequently, the author modeled a purulent widespread wound, rather than an abscess of the subcutaneous space, as has been claimed.

Нами впервые предложен способ формирования абсцесса мягких тканей в эксперименте, который отвечает всем требованиям отграниченного гнойного воспаления мягких тканей.We first proposed a method of forming an abscess of soft tissues in an experiment that meets all the requirements of delimited purulent inflammation of soft tissues.

Способ осуществляется следующим образом.The method is as follows.

Для формирования абсцесса мягких тканей крысы определен участок кожи в межлопаточной области размером 5×3 см. Область была выбрана не случайно, а как недоступная зона для животного. После чего произведена депиляция и обработка антисептиком (70% этиловый спирт) участка кожи. Далее выполнен наркоз с помощью комбинированного специализированного препарата «Zoletil 100» в дозе 50 мг/кг (Ю.В. Фокин, Д.С. Сахаров. Сравнительная характеристика и возможность использования наркотизирующих препаратов Золетил 100 и диэтиловый эфир при проведении операций по вживлению ЭЭГ-электродов на крысах // Биомедицина, №1, 2011, с. 84-89). Произведена пункция подкожного пространства иглой Дюфо, после в проделанное иглой отверстие в коже диаметром 2 мм введен модифицированный катетер Фогарти, суть модификации в том, что мы изменили длину катетера путем его укорочения до 4 см, смотри Фиг. 1, где 1 - клапан, 2 - проводник, 3 - раздуваемый баллон, и раздут баллон в объеме 2 мл раствором 0,9% NaCl, конец катетера укрыт с помощью кожной дупликатуры, смотри Фиг. 2, на которой схематическое расположение катетера, где 3 - раздуваемый баллон, 4 - кожа, 5 - подкожное пространство.To form an abscess of soft tissues of a rat, a skin area in the interscapular region measuring 5 × 3 cm was determined. The region was not chosen by chance, but as an inaccessible zone for the animal. After that, depilation and treatment with an antiseptic (70% ethanol) of the skin area was performed. Next, anesthesia was performed using the combined specialized drug “Zoletil 100” at a dose of 50 mg / kg (Yu.V. Fokin, DS Sakharov. Comparative characteristics and the possibility of using narcotic drugs Zoletil 100 and diethyl ether during EEG implantation operations- electrodes in rats // Biomedicine, No. 1, 2011, pp. 84-89). The subcutaneous space was punctured with a Dufo needle, after the modified Fogarty catheter was inserted into the hole made in the skin with a diameter of 2 mm, the essence of the modification is that we changed the length of the catheter by shortening it to 4 cm, see Fig. 1, where 1 is a valve, 2 is a conductor, 3 is an inflated balloon, and the balloon is inflated in a volume of 2 ml with a solution of 0.9% NaCl, the end of the catheter is covered with skin duplicate, see Fig. 2, in which the schematic arrangement of the catheter, where 3 is the balloon, 4 is the skin, 5 is the subcutaneous space.

Наши исследования показали, что через 2-е суток после введения катетера стенки полости недостаточно образованы. Так как на 3-е сутки стенки сформированы, то более длительно держать катетер нецелесообразно, на Фиг. 3 показано гистологическое исследование полости, где 6 - стенка абсцесса, 7 - полость абсцесса. Через 3-е суток после установления катетера было произведено опорожнение баллона и удаление катетера, и уже в полученную полость вводили стандартизированную по оптическому стандарту мутности МакФарланда суспензию Staphylococcus aureus с микробной нагрузкой 2 мл × 10⁶ КОЕ. На 5-е сутки был сформирован абсцесс мягких тканей, который отвечал всем требованиям отграниченного абсцесса, как видно на Фиг. 4 при ультразвуковом исследовании, где 6 - стенка абсцесса. 7 - полость абсцесса, и при посеве гнойного отделяемого на питательную среду отмечается рост микроорганизмов сплошным газоном, смотри Фиг. 5. Таким образом, все методы диагностики подтверждают наличие моделированного абсцесса с хорошо сформированными стенками у всех 10 лабораторных животных (крысы-самцы массой 200±10 г).Our studies showed that 2 days after the introduction of the catheter, the walls of the cavity are not sufficiently formed. Since the walls are formed on the 3rd day, it is impractical to hold the catheter for longer, in FIG. 3 shows a histological examination of the cavity, where 6 is the wall of the abscess, 7 is the cavity of the abscess. 3 days after the catheter was installed, the balloon was emptied and the catheter removed, and a suspension of Staphylococcus aureus standardized according to the optical McFarland turbidity standard with a microbial load of 2 ml × 10 ⁶ CFU was already introduced into the cavity. On the 5th day, a soft tissue abscess was formed that met all the requirements of a delimited abscess, as can be seen in FIG. 4 by ultrasound, where 6 is the wall of the abscess. 7 - abscess cavity, and when the purulent discharge is inoculated onto the nutrient medium, the growth of microorganisms is observed by a continuous lawn, see Fig. 5. Thus, all diagnostic methods confirm the presence of a simulated abscess with well-formed walls in all 10 laboratory animals (male rats weighing 200 ± 10 g).

ПримерExample

Кролику-самцу породы шиншилла в возрасте 1 год и массой 3±0,5 кг после депиляции и обработки антисептиком кожи произведена пункция подкожного пространства и был установлен катетер и раздут баллон в объеме 2 мл раствором 0,9% NaCl. На 3-е сутки баллон был опорожнен и в образованную полость введена суспензия Staphylococcus aureus с микробной нагрузкой 2 мл × 10⁶ КОЕ. На 5 сутки у кролика был сформирован абсцесс мягких тканей.A male rabbit of a chinchilla breed aged 1 year and weighing 3 ± 0.5 kg, after depilation and treatment with a skin antiseptic, was punctured subcutaneous space and a catheter was inserted and a balloon was inflated in a volume of 2 ml with a solution of 0.9% NaCl. On the 3rd day, the balloon was empty and a suspension of Staphylococcus aureus was introduced into the cavity with a microbial load of 2 ml × 10 ⁶ CFU. On day 5, a soft tissue abscess was formed in the rabbit.

На Фиг. 6 изображено макроскопическое исследование, подтверждающие все признаки абсцесса, где а) до вскрытия абсцесса, б) после вскрытия с отделяемым гноем, в) после санирования абсцесса.In FIG. 6 shows a macroscopic examination confirming all the signs of an abscess, where a) before opening the abscess, b) after opening with detachable pus, c) after sanitation of the abscess.

Заключение.Conclusion

Таким образом, предлагаемый нами способ является малотравматичным, обеспечивает гарантированное формирование абсцесса, не требует каких-либо сложных манипуляций и высокого технического оснащения, обеспечивает срок формирования абсцесса до 5 дней.Thus, our proposed method is less traumatic, provides guaranteed formation of an abscess, does not require any complex manipulations and high technical equipment, and provides an abscess formation period of up to 5 days.

Claims

A method for simulating soft tissue abscess, including the introduction of a pathological process pathogen into the subcutaneous space, characterized in that a catheter with a balloon is introduced into this space, while the balloon is inflated in a volume of 2 ml with 0.9% NaCl solution, the end of the catheter is covered with duplikatury skin, after three days and empty the balloon catheter removed, then the formed cavity as the causative agent of the pathological process Staphylococcus aureus suspension is administered with a microbial load of 2 × ¹⁰ June ml CO .