RU2634041C1 - Method for simulating general purulent peritonitis in wistar rats - Google Patents

Method for simulating general purulent peritonitis in wistar rats Download PDF

Info

Publication number
RU2634041C1
RU2634041C1 RU2016119869A RU2016119869A RU2634041C1 RU 2634041 C1 RU2634041 C1 RU 2634041C1 RU 2016119869 A RU2016119869 A RU 2016119869A RU 2016119869 A RU2016119869 A RU 2016119869A RU 2634041 C1 RU2634041 C1 RU 2634041C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
peritonitis
wistar rats
blind
purulent peritonitis
rats
Prior art date
Application number
RU2016119869A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Валерия Анатольевна Арапова
Игорь Николаевич Большаков
Сергей Владимирович Якимов
Светлана Сергеевна Дунаевская
Original Assignee
федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Красноярский государственный медицинский университет им. В.Ф. Войно-Ясенецкого" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО КрасГМУ им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого Минздрава России)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Красноярский государственный медицинский университет им. В.Ф. Войно-Ясенецкого" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО КрасГМУ им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого Минздрава России) filed Critical федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Красноярский государственный медицинский университет им. В.Ф. Войно-Ясенецкого" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО КрасГМУ им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого Минздрава России)
Priority to RU2016119869A priority Critical patent/RU2634041C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2634041C1 publication Critical patent/RU2634041C1/en

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G09EDUCATION; CRYPTOGRAPHY; DISPLAY; ADVERTISING; SEALS
    • G09BEDUCATIONAL OR DEMONSTRATION APPLIANCES; APPLIANCES FOR TEACHING, OR COMMUNICATING WITH, THE BLIND, DEAF OR MUTE; MODELS; PLANETARIA; GLOBES; MAPS; DIAGRAMS
    • G09B23/00Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes
    • G09B23/28Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes for medicine

Landscapes

  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: to simulate general purulent peritonitis in rats under inhalation halotane anesthesia, a head of blind colon is removed from the abdominal cavity in Wistar rats. Necrosis of the blind gut is carried out by imposing a ligature on the head. At the same time, 2 ml of fresh filtered fecal autosuspension is injected into the lumen of the ligated section of the blind gut.
EFFECT: method is characterized by a one hundred per cent result of the peritonitis development, the simplicity of modeling, the survival of laboratory animals in 60,6 percent of cases for more than 7 days, which is important for developing a new method of treatment and studying the basic pathophysiological mechanisms of the disease.
1 tbl

Description

Изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальной хирургии, и может быть использовано для моделирования разлитого гнойного перитонита у крыс.The invention relates to medicine, namely to experimental surgery, and can be used to model diffuse purulent peritonitis in rats.

Существует способ моделирования перитонита у крыс линии Wistar, основанный на осуществлении некроза слепой кишки [1]. Способ основан на выполнении перфораций в бессосудистой зоне купола слепой кишки в 6-8 местах иглой для инъекций на различных сторонах кишки. При этом способе выживаемость крыс менее 7 суток, что не позволяет оценить основные патофизиологические механизмы развития перитонита.There is a method for modeling peritonitis in Wistar rats, based on the implementation of cecal necrosis [1]. The method is based on performing perforations in the avascular zone of the cecum dome in 6-8 places with an injection needle on different sides of the intestine. With this method, rat survival is less than 7 days, which does not allow us to evaluate the main pathophysiological mechanisms of peritonitis development.

Известны различные способы моделирования перитонита в экспериментальных условиях, такие как: введение каловой аутовзвеси пункционным способом; введение взвеси St. Aureus штамм 209Р в брюшную полость; продольный разрез поперечно-ободочной кишки; полное пересечение тонкой кишки [2, 3, 4, 5]. Отрицательными моментами являются: продолжительность жизни лабораторного животного менее 7 суток, технические трудности в воспроизведении модели эксперимента.There are various methods for simulating peritonitis in experimental conditions, such as: the introduction of fecal self-suspension by the puncture method; Suspension introduction Aureus strain 209P into the abdominal cavity; longitudinal section of the transverse colon; complete intersection of the small intestine [2, 3, 4, 5]. The negative points are: the life of the laboratory animal is less than 7 days, technical difficulties in reproducing the model of the experiment.

Задача предлагаемого способа - создать модель разлитого гнойного перитонита у лабораторных крыс линии Wistar для дальнейшего изучения патофизиологических механизмов развития перитонита.The objective of the proposed method is to create a model of diffuse purulent peritonitis in laboratory rats of the Wistar strain to further study the pathophysiological mechanisms of peritonitis development.

Поставленную задачу решают за счет того, что некроз слепой кишки осуществляют путем наложения лигатуры в зоне купола слепой кишки и одновременным введением в просвет лигированного участка кишки каловой аутовзвеси.The problem is solved due to the fact that necrosis of the cecum is carried out by applying a ligature in the area of the dome of the cecum and simultaneously introducing fecal autoprecipitation into the lumen of the ligated portion of the intestine.

Способ осуществляют следующим образом: под ингаляционным фторотановым наркозом крысам линии Wistar массой 200-250 г производили обработку операционного поля, предварительно проведя сухое бритье передней брюшной стенки. Животным после проведения лапаротомии выводили из брюшной полости купол слепой кишки. Некроз слепой кишки осуществляли путем наложения лигатуры на купол, одновременно вводили 2 мл свежей отфильтрованной каловой аутовзвеси в просвет лигированного участка купола слепой кишки в бессосудистую зону. Взвесь получали путем смешивания 0,5 мл стерильного изотонического раствора NaCl и 0,25 граммов кала интактных животных, полученного путем фильтрации ее через двойной слой марли. Вводили аутовзвесь не позднее чем через 10 минут после ее приготовления. Введенное количество каловой взвеси являлось достаточным для развития гнойного разлитого перитонита. Операционную рану послойно ушивали. Выводили животное из наркозного сна. В течение эксперимента наблюдали за клинической картиной патологического процесса. Эксперимент был выполнен с соблюдением принципов гуманного обращения с животными, а также требованиями мирового сообщества «Европейская конвенция по защите позвоночных, используемых для экспериментальных и иных научных целей» (Страсбург, 1986). Всего в эксперименте было использовано 33 крысы.The method is as follows: under inhalation fluorotan anesthesia, Wistar rats weighing 200-250 g were treated with an operative field, after a dry shave of the anterior abdominal wall was performed. After laparotomy, the dome of the cecum was removed from the abdominal cavity of the animals. Necrosis of the cecum was carried out by applying a ligature to the dome; at the same time, 2 ml of fresh filtered stool was added to the lumen of the ligated portion of the dome of the cecum into the avascular zone. A suspension was obtained by mixing 0.5 ml of sterile isotonic NaCl solution and 0.25 grams of feces from intact animals obtained by filtering it through a double layer of gauze. Auto-suspension was introduced no later than 10 minutes after its preparation. The amount of fecal suspension introduced was sufficient for the development of purulent spilled peritonitis. The surgical wound was sutured in layers. The animal was withdrawn from anesthesia sleep. During the experiment, the clinical picture of the pathological process was observed. The experiment was carried out in compliance with the principles of humane treatment of animals, as well as the requirements of the international community “European Convention for the Protection of Vertebrates Used for Experimental and Other Scientific Purposes” (Strasbourg, 1986). A total of 33 rats were used in the experiment.

Все выведенные из эксперимента и погибшие животные подвергались патологоанатомическому исследованию. Среди экспериментальных животных летальность за первые трое суток составила 39,4% (13 лабораторных крыс), что свидетельствует как о тяжести развивающегося патологического процесса, так и об особенностях индивидуальной реактивности. В сроки 7 суток выжило 20 крыс, что составило 60,6%. Клиническая картина острого перитонита была более выраженной через 6 часов после начала эксперимента, отмечали ухудшение общего состояния, адинамию, отсутствие аппетита, снижение выраженности безусловных рефлексов, снижение двигательного возбуждения в ответ на пальпацию вздутого живота. Развивались прогрессирующая инспираторная одышка и выраженное тахипноэ.All animals removed from the experiment and dead were subjected to pathological examination. Among experimental animals, mortality in the first three days was 39.4% (13 laboratory rats), which indicates both the severity of the developing pathological process and the characteristics of individual reactivity. In the period of 7 days, 20 rats survived, which amounted to 60.6%. The clinical picture of acute peritonitis was more pronounced 6 hours after the start of the experiment; general condition, adynamia, lack of appetite, a decrease in the severity of unconditioned reflexes, a decrease in motor excitement in response to palpation of a swollen abdomen were noted. Progressive inspiratory dyspnea and severe tachypnea developed.

При патологоанатомическом исследовании у лабораторных животных были выявлены гиперемия париетальной и висцеральной брюшины, вздутие петель кишечника, наличие мутного выпота с запахом (таблица №1).A pathological study in laboratory animals revealed hyperemia of the parietal and visceral peritoneum, bloating of the intestines, the presence of a turbid effusion with a smell (table No. 1).

Figure 00000001
э
Figure 00000001
uh

Предлагаемый способ характеризуется 100% результатом развития перитонита, простотой моделирования, выживаемостью лабораторных животных в 60,6% случаев более 7 суток, увеличение продолжительности жизни лабораторных животных важно для разработки новых способ лечения и изучения основных патофизиологических механизмов заболевания.The proposed method is characterized by a 100% result of the development of peritonitis, simplicity of modeling, survival of laboratory animals in 60.6% of cases for more than 7 days, an increase in the lifespan of laboratory animals is important for developing new methods of treatment and studying the main pathophysiological mechanisms of the disease.

ЛитератураLiterature

1. Патент РФ №2376648, G09B 23/28, Бюл. №35, 20.12.2009 г.1. RF patent No. 2376648, G09B 23/28, Bull. No35, December 20, 2009

2. Фастова И.А., Губанова Е.И. Синдром острого повреждения легких при экспериментальном перитоните // Вестник новых медицинских технологий. - 2012. - №2 (Т. 19). - С. 114-117.2. Fastova I.A., Gubanova E.I. Acute lung damage syndrome in experimental peritonitis // Bulletin of new medical technologies. - 2012. - No. 2 (T. 19). - S. 114-117.

3. Коваль Е.В., Лепехова С.А., Колмакова С.А. и др. Микробиологический контроль течения экспериметального перитонита // Сибирский медицинский журнал (Иркутск). - 2012. - №8 (Т. 115). - С. 074-076.3. Koval EV, Lepekhova SA, Kolmakova S.A. et al. Microbiological control of the course of experimental peritonitis // Siberian Medical Journal (Irkutsk). - 2012. - No. 8 (T. 115). - S. 074-076.

4. Русин В.И., Зиматкин С.М., Смотрин С.М. Гистологическая оценка состояния брюшины крыс при экспериментальном перитоните и его лечении с применением фотодинамической терапии // Журнал Гродненского государственного медицинского университета. - 2011. - №3(35). - С 21-24.4. Rusin V.I., Zimatkin S.M., Smotrin S.M. Histological assessment of the status of rat peritoneum in experimental peritonitis and its treatment using photodynamic therapy // Journal of Grodno State Medical University. - 2011. - No. 3 (35). - From 21-24.

5. Гоженко А.И., Васильев А.А., Насибуллин Б.А. Особенности течения экспериментального перитонита у крыс при промывании брюшной полости. // Свiт медицини та бiологi. - 2014. - №2 (44). - С. 111-114.5. Gozhenko A.I., Vasiliev A.A., Nasibullin B.A. Features of the course of experimental peritonitis in rats when washing the abdominal cavity. // Suite of medicine and biology. - 2014. - No. 2 (44). - S. 111-114.

Claims (1)

Способ моделирования разлитого гнойного перитонита у крыс линии Wistar, включающий введение свежеотфильтрованной каловой аутовзвеси при проведении хирургического вмешательства под фторотановым наркозом, отличающийся тем, что осуществляется некроз купола слепой кишки путем наложения на нее лигатуры и одновременное введение в просвет лигированой кишки свежей отфильтрованной каловой аутовзвеси, при этом моделирование гнойного перитонита происходит в 100% случаев, а выживаемость животных более 7 суток составляет 60,6%.A method for modeling diffuse purulent peritonitis in Wistar rats, comprising administering a freshly filtered fecal autosuspension during surgery under fluorotan anesthesia, characterized in that necrosis of the cecum dome is performed by applying a ligature to it and simultaneously introducing fresh filtered fecal autosuspension into the ligation gut lumen This modeling of purulent peritonitis occurs in 100% of cases, and animal survival for more than 7 days is 60.6%.
RU2016119869A 2016-05-23 2016-05-23 Method for simulating general purulent peritonitis in wistar rats RU2634041C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2016119869A RU2634041C1 (en) 2016-05-23 2016-05-23 Method for simulating general purulent peritonitis in wistar rats

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2016119869A RU2634041C1 (en) 2016-05-23 2016-05-23 Method for simulating general purulent peritonitis in wistar rats

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2634041C1 true RU2634041C1 (en) 2017-10-23

Family

ID=60153904

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2016119869A RU2634041C1 (en) 2016-05-23 2016-05-23 Method for simulating general purulent peritonitis in wistar rats

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2634041C1 (en)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2716482C1 (en) * 2019-04-01 2020-03-11 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Иркутский научный центр хирургии и травматологии" Method for modeling peritonitis
RU2740942C1 (en) * 2020-02-28 2021-01-21 федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский университет) (ФГАОУ ВО Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России (Се Method for creating experimental model of inflamed colon in peritonitis conditions

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2291496C1 (en) * 2005-07-11 2007-01-10 Виктор Иванович Нефедов Method for creating chronic large intestine ischemia model
RU2338265C1 (en) * 2007-05-28 2008-11-10 Юрий Юрьевич Блинков Method of acute peritonitis modelling
JP2008278830A (en) * 2007-05-13 2008-11-20 Univ Nagoya Model animal having peritoneopatyhy under peritoneal dialysis and its utilization
RU2376648C1 (en) * 2008-07-07 2009-12-20 Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Омская государственная медицинская академия Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию" (ГОУ ВПО ОмГМА Росздрава) Method for modeling of peritonitis in rats

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2291496C1 (en) * 2005-07-11 2007-01-10 Виктор Иванович Нефедов Method for creating chronic large intestine ischemia model
JP2008278830A (en) * 2007-05-13 2008-11-20 Univ Nagoya Model animal having peritoneopatyhy under peritoneal dialysis and its utilization
RU2338265C1 (en) * 2007-05-28 2008-11-10 Юрий Юрьевич Блинков Method of acute peritonitis modelling
RU2376648C1 (en) * 2008-07-07 2009-12-20 Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Омская государственная медицинская академия Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию" (ГОУ ВПО ОмГМА Росздрава) Method for modeling of peritonitis in rats

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ASANO S et al. Cecal inoculum peritonitis: An alternative model for sepsis vascular dysfunction study. Life Sci. 2015 Nov 15;141:108-18. *
ЛЫЗИКОВ А. Н. Влияние креатинфосфата на течение разлитого гнойного перитонита в эксперименте. Здравоохранение Беларуси, 1993, N 1, С. 31-34. *
ЛЫЗИКОВ А. Н. Влияние креатинфосфата на течение разлитого гнойного перитонита в эксперименте. Здравоохранение Беларуси, 1993, N 1, С. 31-34. ЧЕБОТАРЬ Д.В. и др. Эффекты наночастиц серебра при экспериментальном перитоните. Бюлл. Сибирской медицины, 2015, том.14, N 2, с.67-74. ASANO S et al. Cecal inoculum peritonitis: An alternative model for sepsis vascular dysfunction study. Life Sci. 2015 Nov 15;141:108-18. *
ЧЕБОТАРЬ Д.В. и др. Эффекты наночастиц серебра при экспериментальном перитоните. Бюлл. Сибирской медицины, 2015, том.14, N 2, с.67-74. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2716482C1 (en) * 2019-04-01 2020-03-11 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Иркутский научный центр хирургии и травматологии" Method for modeling peritonitis
RU2740942C1 (en) * 2020-02-28 2021-01-21 федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский университет) (ФГАОУ ВО Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России (Се Method for creating experimental model of inflamed colon in peritonitis conditions

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Gentz Medicine and surgery of amphibians
Sykes Updates and practical approaches to reproductive disorders in reptiles
KR102597594B1 (en) A composition for bio transplanting of organoid
Stout Common emergencies in pet birds
RU2634041C1 (en) Method for simulating general purulent peritonitis in wistar rats
Echols Soft tissue surgery
De Battisti et al. Chest wall reconstruction with latissimus dorsi and an autologous thoracolumbar fascia graft in a dog
Tanaka et al. Education and research using experimental pigs in a medical school
RU2668201C1 (en) Method for mimicking acute destructive pancreatitis in pigs
Simova-Curd et al. Comparison of ventriculotomy closure with and without a coelomic fat patch in Japanese quail (Coturnix coturnix japonica)
Sukra et al. Effect of selenium and mercury on gross morphology and histopathology of chick embryos
RU2714949C2 (en) Method for simulating local circumscribed peritonitis in rats
Dedja et al. Heterotopic cardiac xenotransplantation in rodents: Report of a refined technique in a hamster‐to‐rat model
CN101450005B (en) Special ventral striking deivce for establishing ventral urgent spinal cord injury animal model
RU2337704C1 (en) Method of postsurgery rehabilitation of fishes
RU2302041C1 (en) Method for modeling acute cholecystitis in dogs
Prządka et al. Laparoscopic-assisted percutaneous herniorrhaphy as an alternative to open surgery technique in farm swines
RU2798407C1 (en) Method of colonic obstruction modeling
RU2578818C1 (en) Method for simulating osteomyelitis
US8835710B2 (en) Animal model for infant pathologies
Kinsel et al. Ventricular phytobezoar impaction in three Micronesian kingfishers (Halcyon cinnamomina cinnamomina)
RU2698041C1 (en) Method of producing xenograft with modifiable stiffness parameters for ophthalmosurgery
RU2813045C1 (en) Method of laparoscopic modeling of small intestinal perforation in laboratory animals
RU2785942C1 (en) Method for modeling reversible mechanical jaundice
RU2799704C1 (en) Method of modeling a combined radiation and mechanical injury

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20180524