RU2714949C2

RU2714949C2 - Method for simulating local circumscribed peritonitis in rats

Info

Publication number: RU2714949C2
Application number: RU2018125571A
Authority: RU
Inventors: Владимир Владимирович Алипов; Виктор Сергеевич Лойко; Грайр Араратович Аванесян; Ара Гагикович Мусаелян; Артем Сергеевич Бахметьев; Артем Игоревич Алипов
Priority date: 2018-07-11
Filing date: 2018-07-11
Publication date: 2020-02-21
Also published as: RU2018125571A; RU2018125571A3

Abstract

FIELD: medicine.

SUBSTANCE: invention refers to medicine, namely to experimental surgery, and can be used in scientific studies to simulate a limited pus-inflammatory process in the abdominal cavity in rats. Method involves administering into the animal's abdominal cavity 15 % suspension of faeces in an isotonic sodium chloride solution in amount of 1 ml per 100 g of the animal's body weight. Under the control of ultrasound, a modified Foley catheter is inserted into the right iliac region of the rat abdomen through the trocar. After filling the balloon, the distal portion of the catheter is ligatured and fixed by skin duplication. Infectious agent is introduced into the formed cavity.

EFFECT: method provides minimal injuries, guaranteed formation of local circumscribed peritonitis (LCP) in the shortest possible time, does not lead to early death of animals, which enables to develop new methods for effective treatment of LCP by adding to the abdominal cavity a faecal suspension in isotonic sodium chloride solution.

1 cl, 5 dwg

Description

Изобретение относится к области медицины, в частности к экспериментальной хирургии, и может быть использовано в научных исследованиях для моделирования отграниченного гнойно-воспалительного процесса в брюшной полости у лабораторных животных и поиска новых способов лечения местного отграниченного перитонита (МОП).The invention relates to medicine, in particular to experimental surgery, and can be used in scientific research to simulate a delimited purulent-inflammatory process in the abdominal cavity in laboratory animals and to search for new methods of treating local delimited peritonitis (MOS).

Известны различные способы моделирования перитонита. В настоящее время, все существующие модели по воспроизведению экспериментального перитонита можно подразделить на три основные группы.Various methods for modeling peritonitis are known. Currently, all existing models for the reproduction of experimental peritonitis can be divided into three main groups.

К первой группе можно отнести модели местного перитонита, для воспроизведения которых в брюшную полость животным вводили инородные тела: куски дерева, пробки, марли. Вероятность развития местного перитонита при данной методике маловероятна, так как инородные тела инкапсулировались, ограничивались от брюшной полости [Сельцовский П.Л., / Разлитые гнойные перитониты. - 1963. - 212 с.], либо развивался спаечные процесс и кишечная непроходимость с последующей гибелью животного (Агаларов П.М Стрижова К.А. / Моделирование отграниченного перитонита//Bulletin of Medical Internet Conferences (ISSN 2224-6150). - 2017. - Volume 7. - C. 1388).The first group includes models of local peritonitis, for the reproduction of which foreign bodies were introduced into the abdominal cavity of animals: pieces of wood, corks, gauze. The likelihood of developing local peritonitis with this technique is unlikely, since foreign bodies were encapsulated, limited from the abdominal cavity [Seltsovsky PL, / Spilled purulent peritonitis. - 1963. - 212 pp.], Or an adhesive process and intestinal obstruction developed with the subsequent death of the animal (Agalarov P.M. Strizhova K.A. / Modeling of delimited peritonitis // Bulletin of Medical Internet Conferences (ISSN 2224-6150). - 2017 . - Volume 7. - C. 1388).

Недостатками данных способов является невозможность моделирования отграниченной полости при введении в брюшную полость инородных тел.The disadvantages of these methods is the inability to simulate a delimited cavity when foreign bodies are introduced into the abdominal cavity.

Во второй группе экспериментов моделирование МОП проводят путем перфорации какого-либо отдела желудочно-кишечного тракта по С.А. Шалимову (Шалимов С.А., Радзиховский А.П., Кейсевйч Л.В. Руководство по экспериментальной хирургии - М.: Медицина, 1989. 272 с.), путем рассечения стенки кишки разрезом в 1-2 см. Острый распространенный перитонит развивается через 24-36 часов после операции, а на третий день животные погибают. Аналогично у 80,4% подопытных животных развитие острого перитонита возникало через 8 часов после внутри брюшного введения 1 мл диметилсульфоксида (Р.Д. Магалашвили, Шалимов С.А., Радзиховский А.П., Кейсевич Л.В. Руководство по экспериментальной хирургии - М.: Медицина, 1989. - 272 с.In the second group of experiments, the modeling of MOS is carried out by perforation of any part of the gastrointestinal tract according to S.A. Shalimov (Shalimov S.A., Radzikhovsky A.P., Keisevich L.V. Guide to Experimental Surgery - M .: Medicine, 1989.272 p.), By dissecting the intestinal wall with a 1-2 cm section. Acute widespread peritonitis develops 24-36 hours after surgery, and on the third day, animals die. Similarly, in 80.4% of experimental animals, the development of acute peritonitis occurred 8 hours after the intraperitoneal administration of 1 ml of dimethyl sulfoxide (R.D. Magalashvili, Shalimov S.A., Radzikhovsky A.P., Keisevich L.V. Guide for experimental surgery - M .: Medicine, 1989 .-- 272 p.

Недостатком данных способов моделирования является то, что во всех группах животных развивался острый распространенный перитонит с последующей скорой гибелью животных. МОП моделировать не удалось.The disadvantage of these modeling methods is that in all groups of animals acute peritonitis developed with subsequent rapid death of animals. MOS failed to simulate.

К третьей группе моделей экспериментального МОП относятся комбинированные способы, при которых кроме введения в брюшную полость патогенного объекта, создают те или иные деструктивные процессы или фоновые заболевания организма с целью его «сенсибилизации». Так, известно введение калово-скипидарной смеси на высоте асептического воспаления брюшины с последующим введением смеси монокультур или каловой взвеси [Шалимов С.А., Радзиховский А.П., Кейсевич Л.В. Руководство по экспериментальной хирургии - М.: Медицина, 1989. 272 с. Известна также модель Глухова А.А. [Пат. 2151427 РФ МПК G09B 23/28, A61M 25/01, при которой развитие перитонита заключалось во введении через катетер, установленный в брюшную полость лабораторным животным, аутокрови и микробной взвеси стафилококка, кишечной палочки, сине-зеленого гноя и стрептококка в равных соотношениях.The third group of experimental MOS models includes combined methods in which, in addition to introducing a pathogenic object into the abdominal cavity, these or other destructive processes or background diseases of the body are created with the aim of sensitizing it. So, it is known the introduction of fecal-turpentine mixture at the height of aseptic inflammation of the peritoneum with the subsequent introduction of a mixture of monocultures or fecal suspension [Shalimov SA, Radzikhovsky AP, Keisevich LV Guide to experimental surgery - M .: Medicine, 1989.272 p. Also known is the model of A. Glukhov. [Pat. 2151427 RF IPC G09B 23/28, A61M 25/01, in which the development of peritonitis consisted in the introduction through a catheter inserted into the abdominal cavity of laboratory animals, autoblood and microbial suspension of staphylococcus, E. coli, blue-green pus and streptococcus in equal proportions.

Недостатками моделей третьей группы является развитие распространенного, а не отграниченного перитонита брюшной полости. Как следует из вышеизложенного, существующие модели экспериментального перитонита, не способны вызвать локальное воспаление брюшины, что обусловлено вариабельностью показателей патогенности и вирулентности микрофлоры, а также не совершенством механизма, клинически и морфологически схожего с местным перитонитом у человека.The disadvantages of the models of the third group is the development of common, and not delimited, peritonitis of the abdominal cavity. As follows from the above, existing models of experimental peritonitis are not able to cause local inflammation of the peritoneum, which is due to the variability of the pathogenicity and virulence of microflora, as well as the perfection of the mechanism that is clinically and morphologically similar to local peritonitis in humans.

Известен способ моделирования перитонита, предложенный Ю.Ю. Блинковым и соавт. (Патент RU 2338265, G09B 23/28, 10.11.2008. - Способ моделирования острого перитонита), который заключается в инъекционном введении в брюшную полость предварительно наркотизированных крыс каловой взвеси, приготовленной из содержимого слепой кишки.A known method of modeling peritonitis proposed by Yu.Yu. Blinkov et al. (Patent RU 2338265, G09B 23/28, 10.11.2008. - Method for modeling acute peritonitis), which consists in the injection into the abdominal cavity of pre-anesthetized rat fecal suspension prepared from the contents of the cecum.

Недостатком данного способа является то, что используется инъекционный способ введения, при котором каловую взвесь вводят в брюшную полость через одну точку вкола путем перемещения иглы в правое и левое подреберья и в правую и левую подвздошные области. При таком способе возрастает риск травмирования органов брюшной полости. Это в значительной степени влияет на то, что создается острый распространенный перитонит, что приводит к преждевременной гибели животных.The disadvantage of this method is that the injection method is used, in which the stool suspension is introduced into the abdominal cavity through one injection point by moving the needle into the right and left hypochondria and into the right and left iliac regions. With this method, the risk of injury to the abdominal organs increases. This greatly affects the fact that acute peritonitis is created, which leads to premature death of animals.

Наиболее близким является способ моделирования отграниченного перитонита у лабораторных нелинейных мышей (Акулова А.П. Способ моделирования отграниченного перитонита у лабораторных нелинейных мышей Пат. 2567602. - 10.11.2015). Для этого нелинейным лабораторным мышам массой 20-22 г производят однократное внутрибрюшинное введение 10% каловой взвеси из свежих крысиных фекалий через одну точку вкола по средней линии в пупочной области живота на глубину 2 мм. Взвесь готовят на изотоническом растворе хлорида натрия и однократно фильтруют через двойной слой марли. Для использования модели более 13 дней взвесь вводят в дозе 0,3-0,4 мл, а для использования модели не более 13 дней - в дозе 0,5 мл.The closest is the method for modeling delimited peritonitis in laboratory non-linear mice (Akulova A.P. The method for modeling delimited peritonitis in laboratory non-linear mice Pat. 2567602. - 11/10/2015). For this, nonlinear laboratory mice weighing 20-22 g produce a single intraperitoneal injection of 10% stool suspension from fresh rat feces through one point of injection along the midline in the umbilical region of the abdomen to a depth of 2 mm. The suspension is prepared on an isotonic sodium chloride solution and is filtered once through a double layer of gauze. To use the model for more than 13 days, the suspension is administered at a dose of 0.3-0.4 ml, and to use the model no more than 13 days, at a dose of 0.5 ml.

Главным недостатком предложенного способа является образование к шестым суткам эксперимента множества отграниченных абсцессов в нескольких анатомических областях брюшной полости и вовлечение в воспалительный процесс всех отделов брюшной полости с развитием распространенного перитонита, не МОП,The main disadvantage of the proposed method is the formation by the sixth day of the experiment, many delimited abscesses in several anatomical areas of the abdominal cavity and the involvement in the inflammatory process of all parts of the abdominal cavity with the development of common peritonitis, not MOS,

Нами впервые предложен способ формирования МОП в эксперименте, отличающегося наличием сформированной отграниченной полости, окруженной фиброзной капсулой. Настоящее исследование выполнено на базе кафедры оперативной хирургии и топографической анатомии СГМУ им. В.И. Разумовского. В эксперименте на 20 белых лабораторных крысах массой 190±20 г под комбинированным обезболиваем (рометар, золетил) минилапаротомным доступом в правой подвздошной области использовали разработанную на кафедре методику формирования отграниченной гнойной полости. В брюшную полость, после депиляции и антисептической обработки участка кожи размером 3×3 см., транскутанно, под контролем УЗИ, в полость живота вводили троакар диаметром 3 мм. Далее через троакар проводили модифицированный (укороченный до 3 см) катетер Фолея и после заполнения баллона в дистальной части катетера 2,0 мл физиологического раствора (NaCl 0,9%), производили перевязку катетера проксимальнее баллона и фиксацию дистальной части его при помощи кожной дупликатуры, проводили контрастное и УЗ-исследование, при которых установлено, что в подвздошной области определяется сформированная округлая полость диаметром 2 см³ с четкими стенками и подпаянными к ним петлями кишечника, Катетер опорожняли и удаляли. Смотреть Фиг 1.We first proposed a method for the formation of MOS in an experiment, characterized by the presence of a formed delimited cavity surrounded by a fibrous capsule. The present study was performed on the basis of the Department of Surgery and Topographic Anatomy of SSMU named after IN AND. Razumovsky. In an experiment on 20 white laboratory rats weighing 190 ± 20 g under a combined anesthetic (rometar, zoletil) with minilaparotomic access in the right iliac region, we used the technique developed at the department for the formation of a delimited purulent cavity. After depilation and antiseptic treatment of a 3 × 3 cm skin area in the abdominal cavity, a trocar 3 mm in diameter was introduced transcutaneously, under the control of ultrasound, into the abdominal cavity. Then, through a trocar, a modified (shortened to 3 cm) Foley catheter was carried out and after filling the balloon in the distal part of the catheter 2.0 ml of physiological saline (0.9% NaCl), the catheter was ligated proximal to the balloon and the distal part was fixed using skin duplication, conducted a contrast and ultrasound study, in which it was found that in the iliac region, a formed rounded cavity with a diameter of 2 cm ³ with clear walls and intestinal loops soldered to them was determined, the catheter was emptied and removed. See Fig 1.

Моделирование МОП заключалось в инфицировании созданной отграниченной полости. Для этого одному из животных выполняли лапаротомию, вскрывали просвет слепой кишки и из ее содержимого готовили 15% взвесь фекалий в изотоническом растворе хлорида натрия. Далее смесь дважды фильтровали через двойной слой марли и вводили животным второй группы в созданную кистозную полость через пункционную иглу под контролем УЗИ из расчета 1 миллилитр на 100 граммов массы животных.The modeling of MOS was to infect the created delimited cavity. For this, one of the animals underwent a laparotomy, the lumen of the cecum was opened, and 15% of the feces suspension in isotonic sodium chloride solution was prepared from its contents. Next, the mixture was twice filtered through a double layer of gauze and introduced into animals of the second group into the created cystic cavity through a puncture needle under ultrasound control at the rate of 1 milliliter per 100 grams of animal weight.

Картину развития отграниченного гнойника и местного перитонита после выведения животных из эксперимента, подтверждали клиническими, инструментальными, микробиологическими и морфологическими исследованиями через 6 суток после инфицирования полости и развития классических клинических признаков МОП: животные принимали лежащее положение, плохо реагировали на болевой и звуковой раздражители, отказывались пить и принимать пищу, отмечались выраженная болезненность при пальпации, отечность кожи и местная гипертермия. Первые признаки гнойной интоксикации и органной недостаточности отмечены также уже к шестым суткам эксперимента.The picture of the development of delimited abscess and local peritonitis after animals were removed from the experiment was confirmed by clinical, instrumental, microbiological and morphological studies 6 days after infection of the cavity and the development of classical clinical signs of MOS: the animals assumed a prone position, reacted poorly to pain and sound stimuli, refused to drink and take food, marked pain on palpation, swelling of the skin and local hyperthermia were noted. The first signs of purulent intoxication and organ failure were also noted by the sixth day of the experiment.

Для комплексной планиметрической оценки полости отграниченного перитонита выполняли исследования с использованием формулы объема шара и использовали ультразвуковой аппарат производства экспертного класса Philips EpiQ7 (США) с конвексными датчиками, работающими с частотой 3,5 МГц. В ходе проведенного УЗИ определяли следующие параметры: диаметр сформированной полости и толщину фиброзной капсулы. Полученные экспериментально планиметрические показатели с применением шприца и результаты ультразвукового исследования показали, что внутренний диаметр полости сформированной полости после опорожнения баллона составлял 2,06±0,7 мл, что соответствует 2,0±0,25 см. При УЗ-исследовании сформированного МОП установлено, что на глубине 9-10 мм от поверхности кожи (граница верхнего края образования) в правой подвздошной области лоцируется образование с четкими гиперэхогенными контурами 16-17 мм на в диаметре овальной формы. Образование умеренно-выражено васкуляризируется с преобладанием артериального кровотока. Линейная скорость кровотока (ЛСК) артерий центрального звена - 5-6 см/сек. Венозная ЛСК - не более 4,3 см/сек. Питающий сосуд отчетливо не лоцируется. Смотреть Фиг 2.For a comprehensive planimetric assessment of the cavity of delimited peritonitis, studies were performed using the ball volume formula and an ultrasound device manufactured by Philips EpiQ7 (USA), an expert class, was used with convex sensors operating at a frequency of 3.5 MHz. During the ultrasound, the following parameters were determined: the diameter of the formed cavity and the thickness of the fibrous capsule. The experimentally obtained planimetric indicators using a syringe and the results of ultrasound studies showed that the internal diameter of the cavity of the formed cavity after emptying the balloon was 2.06 ± 0.7 ml, which corresponds to 2.0 ± 0.25 cm. that at a depth of 9-10 mm from the skin surface (the border of the upper edge of the formation) in the right iliac region, a formation with clear hyperechoic contours of 16-17 mm in diameter oval is located. The formation is moderately pronounced vascularized with a predominance of arterial blood flow. The linear velocity of blood flow (LSC) of the arteries of the central link is 5-6 cm / sec. Venous BFV - not more than 4.3 cm / sec. The feeding vessel is not distinctly located. See FIG 2.

При микробиологических исследованиях МОП оценивали количество микробных клеток в полученном отделяемом смоделированной полости, для чего содержимое полости эвакуировали и 0,1 мл его использовали для приготовления трех последовательных десятикратных разведений в стерильном физиологическом растворе хлорида натрия. Из последнего разведения 0,1 мл засевали на чашки Петри с МПА и через сутки инкубации в термостате при температуре 37°С подсчитывали количество выросших колоний. Исходя из полученных значений, рассчитывали количество колоний образующих единиц (КОЕ) в 1 мл содержимого полости. Анализ микробиологических данных показал, что через 6 суток после инфицирования полости у животных высевается моноштамм Staphylococcus aureus и кишной палочки со средним количеством бактериальных клеток 5,2±0,6*109 КОЕ/мл.In microbiological studies of MOS, the number of microbial cells in the resulting separated simulated cavity was estimated, for which the contents of the cavity were evacuated and 0.1 ml of it was used to prepare three consecutive ten-fold dilutions in sterile physiological sodium chloride solution. From the last dilution, 0.1 ml was seeded on Petri dishes with MPA, and after one day of incubation in an incubator at a temperature of 37 ° C, the number of grown colonies was counted. Based on the obtained values, the number of colony forming units (CFU) in 1 ml of the contents of the cavity was calculated. An analysis of microbiological data showed that 6 days after infection of the cavity in animals, the mono strain of Staphylococcus aureus and Escherichia coli was seeded with an average number of bacterial cells of 5.2 ± 0.6 * 109 CFU / ml.

Морфологическое исследование проводили после выведения животных из эксперимента на шестые сутки исследования. У животных иссекали стенки и перифокальные ткани в области МОП. Полученные биоптаты ткани фиксировали в растворе 10% нейтрального формалина. Готовили парафиновые блоки по общепринятой методике после обезвоживания в серии спиртов возрастающей концентрации. Срезы препаратов толщиной 3-5 мкм депарафинизировали, окрашивали гематоксилином и эозином. Морфологический анализ препаратов тканей при МОП показал, что у животных сформирована плотная стенка отграниченной полости толщиной до 540 мкм. Перифокально, на границе стенки, выявлялась клеточная инфильтрация, представленная макрофагами, клетками инородных тел. К зоне клеточной инфильтрации прилежала грануляционная ткань, переходящая в рыхлую соединительную ткань. Смотреть Фиг 3, Фиг 4, Фиг 5.A morphological study was carried out after removing animals from the experiment on the sixth day of the study. The animals dissected the walls and perifocal tissues in the MOS region. The resulting tissue biopsies were fixed in a solution of 10% neutral formalin. Paraffin blocks were prepared according to the generally accepted method after dehydration in a series of alcohols of increasing concentration. Sections of preparations with a thickness of 3-5 μm were dewaxed, stained with hematoxylin and eosin. Morphological analysis of tissue preparations during MOS showed that animals formed a dense wall of a delimited cavity with a thickness of up to 540 microns. Perifocal, at the wall border, cell infiltration was revealed, represented by macrophages, cells of foreign bodies. Granulation tissue adjacent to the loose connective tissue adhered to the cell infiltration zone. See Fig 3, Fig 4, Fig 5.

Пример. В эксперименте на белой лабораторной крысе массой 198 г под комбинированным обезболиваем (рометар, золетил) после депиляции и антисептической обработки участка кожи размером 3×3 см в правой подвздошной области, транскутанно, под контролем УЗИ, в полость живота введен троакар диаметром 3 мм. Далее через троакар проведен катетер Фолея и после заполнения баллона в дистальной части катетера 2,0 мл физиологического раствора (NaCl 0,9%), произведена перевязка катетера проксимальнее баллона и фиксация дистальной части его при помощи кожной дупликатуры. Через 6 суток после проведения манипуляции, катетер опорожнен, проведено контрастное и УЗ-исследование, после чего катетер удален. Инструментальные исследования показали, что в подвздошной области определяется сформированная полость округлой формы диаметром 2 см с четкими стенками и подпаянными к ним петлями кишечника. К 6-м суткам эксперимента, после инфицирования полости 15%-ной взвесью фекалий в изотоническом растворе хлорида натрия, получена модель МОП. Смотреть Фиг 1.Example. In an experiment on a white laboratory rat weighing 198 g under a combined anesthetic (rometar, zoletil) after depilation and antiseptic treatment of a skin area of 3 × 3 cm in the right iliac region, a trocar 3 mm in diameter was introduced into the abdominal cavity transcutaneously under ultrasound control. Then, a Foley catheter was inserted through the trocar and after filling the balloon in the distal part of the catheter with 2.0 ml of physiological saline (0.9% NaCl), the catheter was ligated proximal to the balloon and the distal part was fixed with skin duplication. 6 days after the manipulation, the catheter was empty, a contrast and ultrasound examination was performed, after which the catheter was removed. Instrumental studies have shown that in the iliac region, a formed rounded cavity with a diameter of 2 cm is defined with clear walls and intestinal loops soldered to them. By the 6th day of the experiment, after infection of the cavity with a 15% suspension of feces in an isotonic sodium chloride solution, a MOS model was obtained. See Fig 1.

При оценке планиметрических данных и результатов ультразвукового исследования выявлено, что внутренний диметр полости сформированной полости после опорожнения баллона составлял 2,0±0,6 мл. По данным УЗИ на глубине 10 мм от поверхности кожи в правой подвздошной области определяется образование с четкими гиперэхогенными контурами 17 мм × 10 мм × 8 мм овальной формы. Анализ микробиологических данных показал, из полости высевается моноштамм Staphylococcus aureus и кишечной палочки 5,0±0,1*10⁹ КОЕ/мл, а при морфологическом исследовании к 6-м суткам у животного в созданной отграниченной полости отмечалось незначительное количество мутного экссудата и сформированная стенка тол щиной 510 мкм. Смотреть Фиг 2.When evaluating the planimetric data and the results of ultrasound, it was revealed that the internal cavity diameter of the formed cavity after emptying the balloon was 2.0 ± 0.6 ml. According to ultrasound, at a depth of 10 mm from the surface of the skin in the right iliac region, formation with clear hyperechoic contours of 17 mm × 10 mm × 8 mm oval is determined. An analysis of microbiological data showed that Staphylococcus aureus mono-strain and Escherichia coli were sown from the cavity 5.0 ± 0.1 * 10 ⁹ CFU / ml, and a morphological examination showed a slight amount of turbid exudate in the created delimited cavity and formed wall with a thickness of 510 microns. See FIG 2.

Таким образом, к 6-м суткам после введения в сформированную отграниченную полость в правой подвздошной области животных 15%-ной взвеси фекалий в изотоническом растворе хлорида натрия во всех проведенных экспериментах формировался МОП со всеми характерными его клиническими признаками, что подтверждено планиметрическими, инструментальными, микробиологическими и морфологическими исследованиями. Как видно из описания и приведенного примера, предложенный способ является экономически и технически выгодным, минимально травматичным, обеспечивающим гарантированное формирование абсцесса в кратчайший срок, позволяет моделировать именно местный отграниченный перитонит, что не приводит к ранней гибели крыс и позволяет разрабатывать новые способы эффективного лечения МОП.Thus, by the 6th day after the 15% suspension of feces in an isotonic sodium chloride solution was introduced into the formed rounded cavity in the right ileal region of animals in all the experiments, MOS was formed with all its characteristic clinical signs, which was confirmed by planimetric, instrumental, microbiological and morphological studies. As can be seen from the description and the given example, the proposed method is economically and technically profitable, minimally traumatic, ensuring guaranteed formation of an abscess in the shortest possible time, it allows simulating local delimited peritonitis, which does not lead to early death of rats and allows developing new methods for effective treatment of MOS.

Claims

A method for modeling local delimited peritonitis in rats, including the introduction into the abdominal cavity of an animal of 15% suspension of feces in an isotonic sodium chloride solution at a rate of 1 milliliter per 100 grams of animal mass, characterized in that it is pre-controlled by ultrasound in the right iliac region of the animal’s abdomen through the trocar is carried out with a modified Foley catheter and after filling its balloon, the distal part of the catheter is ligated and fixed with skin duplication, then the insertion into the formed cavity m pathogen infection.