RU2151427C1 - Method for modeling acute peritonitis - Google Patents
Method for modeling acute peritonitis Download PDFInfo
- Publication number
- RU2151427C1 RU2151427C1 RU98102558A RU98102558A RU2151427C1 RU 2151427 C1 RU2151427 C1 RU 2151427C1 RU 98102558 A RU98102558 A RU 98102558A RU 98102558 A RU98102558 A RU 98102558A RU 2151427 C1 RU2151427 C1 RU 2151427C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- abdominal cavity
- suspension
- catheters
- microbial bodies
- stage
- Prior art date
Links
Landscapes
- Materials For Medical Uses (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к медицине, а именно - экспериментальной хирургии. The invention relates to medicine, namely to experimental surgery.
Прототипом следует считать способ моделирования острого перитонита, заключающийся в пункционном одномоментном внутрибрюшинном введении каловой взвеси /С.А. Шалимов, А.П. Радзиховский, Л.В. Кейсевич "Руководство по экспериментальной хирургии". -М.: Медицина, стр. 125/. A prototype should be considered a method of modeling acute peritonitis, consisting in a puncture simultaneous intraperitoneal injection of fecal suspension / C.A. Shalimov, A.P. Radzikhovsky, L.V. Keisevich "Guide to experimental surgery." -M.: Medicine, p. 125 /.
К недостаткам данного способа можно отнести следующие - возможность непредусмотренного травмирования органов брюшной полости, сложность получения однотипной динамики течения патологического процесса, гибель части лабораторных животных от токсико-септического шока. The disadvantages of this method include the following - the possibility of unexpected injury to the abdominal cavity, the difficulty of obtaining the same type of dynamics of the pathological process, the death of some laboratory animals from toxic-septic shock.
Целью настоящего изобретения явилась разработка нового способа моделирования острого распространенного перитонита, позволяющего получить динамику развития воспалительного процесса в брюшной полости, максимально приближенную к клиническим проявлениям, а также дающего возможность получать однотипные по характеру и распространенности патологические реакции, что повышает достоверность получаемых данных. The aim of the present invention was to develop a new method for modeling acute peritonitis, which allows to obtain the dynamics of the development of the inflammatory process in the abdominal cavity, as close as possible to clinical manifestations, as well as making it possible to obtain pathological reactions of the same type and nature, which increases the reliability of the data obtained.
Указанная цель достигается путем введения в брюшную полость комбинированной взвеси микробных тел, представленных стафилококками, кишечной палочкой, палочкой сине-зеленого гноя и пептококками в равных соотношениях, которая распределяется по всем отделам брюшной полости с помощью предварительно проведенных через пункционные отверстия в передней брюшной стенке катетеров, установленных в правом и левом поддиафрагмальных пространствах, правом и левом боковых каналах живота, малом тазу и центральной части брюшной полости, при этом указанная взвесь микробных тел вводится через 24 ч после предварительного введения в брюшную полость через вышеуказанные катетеры аутокрови в суммарном объеме 7-10 мл/кг массы тела экспериментального животного в три этапа, при этом на первом этапе взвесь микробных тел вводится в объеме 50-55 млрд микробных тел/кг массы тела животного, на втором и третьем - по 20-25 млрд микробных тел/кг через шестичасовые промежутки. This goal is achieved by introducing into the abdominal cavity a combined suspension of microbial bodies represented by staphylococci, Escherichia coli, blue-green pus bacillus and peptococci in equal proportions, which is distributed over all parts of the abdominal cavity using catheters previously drawn through puncture holes in the anterior abdominal wall, established in the right and left subphrenic spaces, the right and left side channels of the abdomen, the pelvis and the central part of the abdominal cavity, while A suspension of microbial bodies is injected 24 hours after preliminary introduction into the abdominal cavity through the above catheters of autologous blood in a total volume of 7-10 ml / kg body weight of an experimental animal in three stages, while at the first stage, a suspension of microbial bodies is introduced in the amount of 50-55 billion microbial bodies / kg of animal body weight, in the second and third - 20-25 billion microbial bodies / kg at six-hour intervals.
Предлагаемый способ можно использовать для моделирования гнойно-воспалительного процесса в брюшной полости у различных лабораторных животных /собаки, кролики и др./. The proposed method can be used to simulate a purulent-inflammatory process in the abdominal cavity in various laboratory animals / dogs, rabbits, etc. /.
Пример моделирования острого распространенного перитонита на беспородной собаке /собака N 3, масса 19 кг, самец/. На первом этапе у животного производился забор крови, которая впоследствии была введена в брюшную полость в объеме 7-10 мл/кг массы тела. Следующим этапом моделирования перитонита явились пункции брюшной стенки (под обезболиванием) и введение в брюшную полость 6 тонких силиконовых катетеров. Каждый катетер устанавливали в строго определенном месте брюшной полости - в правом боковом канале, левом боковом канале, правом поддиафрагмальном пространстве, левом поддиафрагмальном пространстве, малом тазу, центре брюшной полости, через отдельные проколы. После установки в брюшной полости концы катетеров фиксировали к апоневрозу и выводили или под кожу, или под повязку, исключающую самопроизвольное удаление катетеров. В каждый катетер вводили равное количество аутокрови в суммарном объеме 160 мл. После этого через 24 ч в брюшную полость вводили полимикробную взвесь, состоящую из стафилококков, кишечной палочки, палочки сине-зеленого гноя и пептококков в равных пропорциях. С целью профилактики развития токсико-септического шока и преждевременной гибели животного микробную взвесь вводили дробно. Объем вводимой на первом этапе полимикробной взвеси составил 55 млрд микробных тел/кг массы тела животного. Второе и третье введения полимикробной взвеси выполняли через шестичасовые промежутки в объеме по 25 млрд микробных тел/кг массы тела животного. В каждый катетер вводили одинаковое количество раствора с полимикробной взвесью. После выполнения последнего этапа бактериального загрязнения брюшной полости взвесью микробных тел катетеры оставляли в брюшной полости до момента выполнения первичной операции уже по поводу перитонита. Это позволяло подтвердить после лапаротомии и ревизии органов брюшной полости правильность установки катетеров и соответствие бактериального загрязнения соответствующих отделов брюшной полости предъявляемым требованиям. An example of modeling acute widespread peritonitis in a mongrel dog / dog No. 3, weight 19 kg, male /. At the first stage, the animal was sampled blood, which was subsequently introduced into the abdominal cavity in the amount of 7-10 ml / kg of body weight. The next stage of peritonitis modeling was puncture of the abdominal wall (under anesthesia) and the introduction of 6 thin silicone catheters into the abdominal cavity. Each catheter was placed in a strictly defined place in the abdominal cavity - in the right lateral canal, left lateral canal, right subphrenic space, left subphrenic space, small pelvis, center of the abdominal cavity, through separate punctures. After installation in the abdominal cavity, the ends of the catheters were fixed to the aponeurosis and removed either under the skin or under the bandage, which excludes spontaneous removal of the catheters. An equal amount of autoblood was injected into each catheter in a total volume of 160 ml. After this, after 24 hours, a polymicrobial suspension was introduced into the abdominal cavity, consisting of staphylococci, Escherichia coli, blue-green pus bacillus and peptococcus in equal proportions. In order to prevent the development of toxic-septic shock and premature death of the animal, the microbial suspension was introduced fractionally. The volume of polymicrobial suspension introduced at the first stage amounted to 55 billion microbial bodies / kg of animal body weight. The second and third injections of polymicrobial suspension were performed at six-hour intervals in the amount of 25 billion microbial bodies / kg of animal body weight. The same amount of solution with polymicrobial suspension was injected into each catheter. After the last stage of bacterial contamination of the abdominal cavity with a suspension of microbial bodies was completed, the catheters were left in the abdominal cavity until the initial operation was completed for peritonitis. This made it possible to confirm, after laparotomy and revision of the abdominal organs, the correct placement of catheters and the compliance of bacterial contamination of the corresponding parts of the abdominal cavity with the requirements.
Разработка и изучение предлагаемого способа моделирования острого перитонита проведены на 40 беспородных собаках. При использовании предлагаемой модели через 36 ч от момента бактериального загрязнения брюшной полости у экспериментальных животных развивается четкая клиника токсической стадии острого распространенного перитонита. При отсутствии лечения летальность составляет 90-95%. The development and study of the proposed method for modeling acute peritonitis was carried out on 40 outbred dogs. When using the proposed model, 36 hours after the bacterial contamination of the abdominal cavity in experimental animals, a clear clinic of the toxic stage of acute widespread peritonitis develops. If untreated, mortality is 90-95%.
Применение указанной модели острого распространенного перитонита позволяет значительно приблизить динамику патологического процесса к реальным клиническим условиям, осуществлять моделирование гнойно-воспалительного процесса с однотипной локализацией, что в совокупности повышает достоверность экспериментальных исследований. The use of this model of acute widespread peritonitis makes it possible to significantly approximate the dynamics of the pathological process to real clinical conditions, to simulate a purulent-inflammatory process with the same localization, which together increases the reliability of experimental studies.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU98102558A RU2151427C1 (en) | 1998-02-16 | 1998-02-16 | Method for modeling acute peritonitis |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU98102558A RU2151427C1 (en) | 1998-02-16 | 1998-02-16 | Method for modeling acute peritonitis |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU98102558A RU98102558A (en) | 1999-11-10 |
RU2151427C1 true RU2151427C1 (en) | 2000-06-20 |
Family
ID=20202222
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU98102558A RU2151427C1 (en) | 1998-02-16 | 1998-02-16 | Method for modeling acute peritonitis |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2151427C1 (en) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2672122C2 (en) * | 2016-11-03 | 2018-11-12 | государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Пермская государственная фармацевтическая академия" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО ПГФА Минздрава России) | Method of modeling postoperative purulent-inflammatory complications in the experiment |
RU2688707C1 (en) * | 2018-07-31 | 2019-05-22 | Михаил Аркадьевич Осканян | Method for simulating prevalent purulent peritonitis in rabbits |
RU2714949C2 (en) * | 2018-07-11 | 2020-02-21 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Саратовский государственный медицинский университет им. В.И. Разумовского" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method for simulating local circumscribed peritonitis in rats |
RU2716482C1 (en) * | 2019-04-01 | 2020-03-11 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Иркутский научный центр хирургии и травматологии" | Method for modeling peritonitis |
-
1998
- 1998-02-16 RU RU98102558A patent/RU2151427C1/en active
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
Доронина Н.К. и др. О патогенезе и лечении разлитого перитонита. Клиническая хирургия. - 1979, N 1, с. 9 - 12. * |
Шалимов С.А., Радзиховский А.П., Кейсевич Л.В. Руководство по экспериментальной хирургии. - Москва.: Медицина, 1989, с.125. * |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2672122C2 (en) * | 2016-11-03 | 2018-11-12 | государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Пермская государственная фармацевтическая академия" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО ПГФА Минздрава России) | Method of modeling postoperative purulent-inflammatory complications in the experiment |
RU2714949C2 (en) * | 2018-07-11 | 2020-02-21 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Саратовский государственный медицинский университет им. В.И. Разумовского" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method for simulating local circumscribed peritonitis in rats |
RU2688707C1 (en) * | 2018-07-31 | 2019-05-22 | Михаил Аркадьевич Осканян | Method for simulating prevalent purulent peritonitis in rabbits |
RU2716482C1 (en) * | 2019-04-01 | 2020-03-11 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Иркутский научный центр хирургии и травматологии" | Method for modeling peritonitis |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JP3722698B2 (en) | Method and apparatus for assisting implants of biological materials | |
ATE406453T1 (en) | METHOD FOR INTRODUCTION AND EXPRESSION OF GENES INTO ANIMAL CELLS | |
JPS59501747A (en) | Encapsulated genetically engineered organisms capable of producing therapeutic substances | |
RU2151427C1 (en) | Method for modeling acute peritonitis | |
Hewson et al. | Peritonitis in a llama caused by Streptococcus equi subsp. zooepidemicus. | |
Klide et al. | Acupuncture therapy for the treatment of intractable, idiopathic epilepsy in five dogs | |
Ragle et al. | Surgical treatment of colic in American miniature horses: 15 cases (1980-1987) | |
Adamo et al. | Discospondylitis associated with three unreported bacteria in the dog | |
JP2003531124A5 (en) | ||
Pearce et al. | Management of obstructive urolithiasis and concurrent urethral rupture in a goat | |
RU2714949C2 (en) | Method for simulating local circumscribed peritonitis in rats | |
RU98102558A (en) | METHOD FOR MODELING ACUTE PERITONITIS | |
Dick | Single domain antibodies. | |
RU2394278C1 (en) | Method of simulation of liver fibrocyst in experiment | |
Chai et al. | Treatment of a retroperitoneal abscess by omentalization in an orangutan (Pongo pygmaeus pygmaeus) | |
Davis | The effect of potassium iodid on experimental sporotrichosis | |
RU2772397C1 (en) | Method for modeling delimited acute purulent mastitis in the experiment | |
RU2058598C1 (en) | Method of gram-positive staphylococcus sepsis modelling | |
RU2188456C2 (en) | Method for modelling acute purulent pyelonephritis | |
Mawby et al. | Complications of ileal cannulation in cats | |
Thomson et al. | Management of a femoral fracture complicated by clostridial myositis | |
US5135933A (en) | Method for transplantation of fertilized ova | |
RU2133124C1 (en) | Method for treating the cases of endometritis in cattle (cows) | |
Marcus et al. | Norfloxacin nicotinate in the treatment of Pseudomonas aeruginosa infection in the genital tract of a bull | |
SU997084A1 (en) | Method of simulating peritonitis |