RU2720838C1 - Method for simulating chronic osteomyelitis - Google Patents
Method for simulating chronic osteomyelitis Download PDFInfo
- Publication number
- RU2720838C1 RU2720838C1 RU2019138548A RU2019138548A RU2720838C1 RU 2720838 C1 RU2720838 C1 RU 2720838C1 RU 2019138548 A RU2019138548 A RU 2019138548A RU 2019138548 A RU2019138548 A RU 2019138548A RU 2720838 C1 RU2720838 C1 RU 2720838C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- bone
- staphylococcus aureus
- osteomyelitis
- defect
- chronic osteomyelitis
- Prior art date
Links
Images
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61B—DIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
- A61B17/00—Surgical instruments, devices or methods, e.g. tourniquets
- A61B17/56—Surgical instruments or methods for treatment of bones or joints; Devices specially adapted therefor
-
- G—PHYSICS
- G09—EDUCATION; CRYPTOGRAPHY; DISPLAY; ADVERTISING; SEALS
- G09B—EDUCATIONAL OR DEMONSTRATION APPLIANCES; APPLIANCES FOR TEACHING, OR COMMUNICATING WITH, THE BLIND, DEAF OR MUTE; MODELS; PLANETARIA; GLOBES; MAPS; DIAGRAMS
- G09B23/00—Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes
- G09B23/28—Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes for medicine
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Medical Informatics (AREA)
- Surgery (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Algebra (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Mathematical Analysis (AREA)
- Mathematical Optimization (AREA)
- Mathematical Physics (AREA)
- Pure & Applied Mathematics (AREA)
- Business, Economics & Management (AREA)
- Educational Administration (AREA)
- Educational Technology (AREA)
- Theoretical Computer Science (AREA)
- Orthopedic Medicine & Surgery (AREA)
- Computational Mathematics (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Heart & Thoracic Surgery (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Materials For Medical Uses (AREA)
- Prostheses (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к экспериментальной медицине для моделирования хронического остеомиелита длинных костей конечностей.The invention relates to experimental medicine for modeling chronic osteomyelitis of the long bones of the extremities.
На сегодняшний день вопрос лечения остеомиелита остается весьма актуальным. В общей структуре заболеваний опорно-двигательного аппарата хронический остеомиелит составляет 10-25%, а частота неудовлетворительных результатов лечения и рецидивов данного заболевания составляет до 40%. Постоянно разрабатываются и совершенствуются способы хирургического лечения, требующие создания новых экспериментальных моделей остеомиелита.To date, the treatment of osteomyelitis remains very relevant. In the general structure of diseases of the musculoskeletal system, chronic osteomyelitis is 10-25%, and the frequency of unsatisfactory treatment results and relapses of this disease is up to 40%. Methods of surgical treatment are constantly being developed and improved, requiring the creation of new experimental models of osteomyelitis.
Известен способ моделирования остеомиелита (Патент RU № 2622369). Для этого в асептических условиях создают полость в метаэпифизарной зоне кости лабораторного животного, находящегося под наркозом. В эту полость вносят турунду, смоченную 1% раствором этоксисклерола, и фрагменты аутокости с последующим инфицированием полости культурой золотистого стафилококка. Инфицирование проводят на 7-е сутки путем введения в полученную полость кусочка суточной культуры золотистого стафилококка в 2% растворе агар-агара. При этом отверстие в кости запломбировывают эркодонт-цементом и рану засыпают порошком амоксиклава. На 31-е сутки после внесения микробной культуры развивается хронический остеомиелит.A known method of modeling osteomyelitis (Patent RU No. 2622369). For this, under aseptic conditions, a cavity is created in the metaepiphyseal area of the bone of a laboratory animal under anesthesia. Turunda moistened with a 1% ethoxysclerol solution and autocost fragments with subsequent infection of the cavity with staphylococcus aureus are introduced into this cavity. Infection is carried out on the 7th day by introducing into the resulting cavity a piece of the daily culture of Staphylococcus aureus in 2% agar-agar solution. In this case, the hole in the bone is filled with ercodont cement and the wound is covered with amoxiclav powder. On the 31st day after the introduction of the microbial culture, chronic osteomyelitis develops.
Недостатком данного способа является его трудоемкость, обусловленная двухэтапностью выполнения, а также увеличение стоимости эксперимента за счет используемых медикаментов (этоксисклерол, эркодонт-цемент).The disadvantage of this method is its complexity, due to the two-stage implementation, as well as an increase in the cost of the experiment due to the drugs used (ethoxysclerol, ercodont-cement).
Известен способ моделирования остеомиелита Доценко И. А. (Патент RU № 2578818). В качестве носителя авторы использовали лавсановую ткань, контаминированную штаммом патогенного микроорганизма путем выдерживания полоски лавсановой ткани в суспензии возбудителя 1.5 McF(1×108 КОЭ). После размещения полоски в дефекте кости его герметизировали костным воском и рану послойно ушивали. Удаление полоски производили на 7-е сутки.A known method of modeling osteomyelitis Dotsenko I. A. (Patent RU No. 2578818). As a carrier, the authors used dacron tissue contaminated with a strain of a pathogenic microorganism by keeping a strip of dacron tissue in a suspension of the pathogen 1.5 McF (1 × 10 8 CFU). After placing the strip in the bone defect, it was sealed with bone wax and the wound was sutured in layers. Strip removal was performed on the 7th day.
Недостатком данного способа является необходимость дополнительного оперативного вмешательства с целью удаления бактериального носителя, а использование хирургического воска может обострять инфекционный процесс, приводить к септическим осложнениям и гибели животного.The disadvantage of this method is the need for additional surgical intervention to remove the bacterial carrier, and the use of surgical wax can aggravate the infectious process, leading to septic complications and death of the animal.
В качестве прототипа выбран способ моделирования хронической гнойной костной раны (Патент RU 2499295), включающий формирование костного дефекта вдоль оси кости, помещение в него смеси культуры музейного штамма Staphylococcus Aureus №5 в количестве 40-45 млн KОЕ на 1 кг массы тела экспериментального животного и 0,1 мл стерильного кварцевого песка. Через трое суток после операции удаляют некротические массы и гной из зоны костного дефекта, снимают три операционных шва в средней трети раны, формируя свищевую рану. Выполняют реинфицирование раны той же культурой в дозе 20-25 млн KОЕ на 1 кг массы тела. В последующем сохраняют рану в свищевом виде.As a prototype, a method for modeling chronic purulent bone wounds (Patent RU 2499295) was selected, including the formation of a bone defect along the axis of the bone, placing in it a culture mixture of the museum strain of Staphylococcus Aureus No. 5 in the amount of 40-45 million CFU per 1 kg of body weight of the experimental animal and 0.1 ml of sterile silica sand. Three days after the operation, necrotic masses and pus are removed from the bone defect zone, three surgical sutures are removed in the middle third of the wound, forming a fistulous wound. Perform wound reinfection with the same culture at a dose of 20-25 million CFU per 1 kg of body weight. Subsequently, the wound is kept in fistulous form.
Недостатком вышеописанного способа является необходимость двухэтапного вмешательства с дополнительным инфицированием раны, невозможность полного удаления носителя (кварцевый песок) Staphylococcus Aureus из раны. Размер сформированного дефекта формируется на усмотрение исследователя, поэтому можно сказать «размер дефекта не стандартизирован», что в последующем приводит к искажению данных, получаемых экспериментатором, отсутствию воспроизводимости получаемых результатов при использовании модели.The disadvantage of the above method is the need for a two-stage intervention with additional infection of the wound, the inability to completely remove the carrier (silica sand) of Staphylococcus Aureus from the wound. The size of the defect formed is formed at the discretion of the researcher, so we can say “the size of the defect is not standardized”, which subsequently leads to distortion of the data obtained by the experimenter, the lack of reproducibility of the obtained results when using the model.
Задачей изобретения является создание модели хронического остеомиелитического процесса, имеющего патоморфологическое сходство с остеомиелитическим процессом у человека, позволяющей длительное время поддерживать этот процесс, со стандартизированным размером дефекта для получения воспроизводимых результатов при использовании в экспериментах, направленных на изучение вариантов лечения.The objective of the invention is to create a model of a chronic osteomyelitis process that has a pathomorphological similarity with the osteomyelitis process in humans, allowing a long time to maintain this process, with a standardized size of the defect to obtain reproducible results when used in experiments aimed at studying treatment options.
Техническим результатом предложенного способа является создание модели хронического остеомиелитического процесса, имеющего патоморфологическое сходство с остеомиелитическим процессом у человека, лишенного недостатков аналогов и прототипа.The technical result of the proposed method is the creation of a model of a chronic osteomyelitis process having a pathomorphological similarity with the osteomyelitis process in a person who is devoid of the disadvantages of analogues and prototype.
Технический результат достигается тем, что в способе моделирования хронического остеомиелита, включающем формирование костного дефекта, введение в него инфицирующего агента, удаление на третий день после оперативного вмешательства части швов из средней трети раны и разведение её краев для инициирования свищевого хода, формируют стандартизированный костный дефект округлой формы, вводят предварительно импрегнированную микробной взвесью аллокость.The technical result is achieved by the fact that in the method of modeling chronic osteomyelitis, including the formation of a bone defect, the introduction of an infectious agent into it, the removal of part of the sutures from the middle third of the wound on the third day after surgery and the dilution of its edges to initiate fistulous passage, form a standardized round bone defect forms, allocost is pre-impregnated with a microbial suspension.
Предпочтительно стандартизированный костный дефект формируют четырехгранным конусовидным сверлом диаметром 0,5 см с ограничителем на глубину 0,5 см.Preferably, a standardized bone defect is formed with a tetrahedral conical drill with a diameter of 0.5 cm with a limiter to a depth of 0.5 cm.
Предпочтительно аллокость импрегнируют путем погружения аллогенной кости весом 1 грамм на 15 минут в раствор микробной взвеси с концентрацией микробных клеток Staphylococcus aureus 6*108 КОЕ/мл по стандарту для оптической стандартизации бактерий 1 МакФарланда (McF), с плотностью раствора 1 г/мл.Preferably, the allocost is impregnated by immersing the allogeneic bone weighing 1 gram for 15 minutes in a microbial suspension solution with a concentration of microbial cells of Staphylococcus aureus 6 * 10 8 CFU / ml according to the standard for optical standardization of bacteria 1 McFarland (McF), with a solution density of 1 g / ml.
Предпочтительно используют Staphylococcus aureus ATCC 29213, выращенный на плотной питательной среде в течение 24 часов.Preferably, Staphylococcus aureus ATCC 29213 grown in solid nutrient medium for 24 hours is used.
Предпочтительно моделирование хронического остеомиелита завершают на 21 сутки.Preferably, modeling of chronic osteomyelitis is completed on day 21.
Способ осуществляют следующим образом. Положение животного на спине. Выполняют комбинированное обезболивание. По внутренней поверхности проксимальной трети голени удаляют волосяной покров, производят трехкратную обработку операционного поля 0,5% спиртовым раствором хлоргексидина. Выполняют разрез кожи 2,0 см, с последующим острым и тупым доступами через все слои мягких тканей к проксимальному метаэпифизу большеберцовой кости. Выполняют гемостаз раны. Затем формируют стандартизированный костный дефект. В частности, дефект формируют четырехгранным конусовидным сверлом диаметром 0,5 см с ограничителем на глубину 0,5 см. В зону дефекта погружают предварительно импрегнированную микробной взвесью аллокость, подготовленную путем погружения аллогенной кости весом 1 грамм на 15 минут в раствор микробной взвеси с концентрацией микробных клеток 6×108 КОЕ/мл по стандарту для оптической стандартизации бактерий 1 МакФарланда (McF), с плотностью раствора 1 г/мл. Производят послойное ушивание раны. На 3-й день после оперативного вмешательства производят удаление части швов из средней трети раны и разведение её краев для инициирования свищевого хода. Наблюдают за животным в течение 21 дня.The method is as follows. The position of the animal on the back. Perform combined anesthesia. Hairline is removed along the inner surface of the proximal third of the leg, and the surgical field is treated three times with a 0.5% alcohol solution of chlorhexidine. A skin incision of 2.0 cm is performed, followed by sharp and blunt accesses through all layers of soft tissues to the proximal metaepiphysis of the tibia. Perform wound hemostasis. Then form a standardized bone defect. In particular, the defect is formed by a tetrahedral conical drill with a diameter of 0.5 cm with a limiter to a depth of 0.5 cm. Allocity prepared by immersing allogeneic bone weighing 1 gram for 15 minutes in a solution of microbial suspension with a concentration of microbial is immersed in the defect zone. cells 6 × 10 8 CFU / ml standard for optical standardization of bacteria 1 McFarland (McF), with a solution density of 1 g / ml Produce layered wound closure. On the 3rd day after surgery, part of the sutures are removed from the middle third of the wound and its edges are diluted to initiate the fistulous course. Observe the animal for 21 days.
Пример 1.Example 1
Выписка из протокола эксперимента №16. Кролик породы «Шиншилла», самец, масса 2,5 кг. Под комбинированным обезболиванием препаратами «Золетил 50» в дозе 15 мг/кг в/м, «Ксила» в дозе 0,1 мг/кг в/м и местной анестезией 0,25% раствором новокаина - 4 мл в положении животного на спине по внутренней поверхности проксимальной трети голени удалили волосяной покров, произвели трехкратную обработку операционного поля 0,5% спиртовым раствором хлоргексидина и выполнили 2,0 см разрез кожи с последующим острым и тупым доступами через все слои мягких тканей к проксимальному метаэпифизу большеберцовой кости. Выполнили гемостаз раны. Затем сформировали стандартизированный костный дефект четырехгранным конусовидным сверлом диаметром 0,5 см с ограничителем на глубину 0,5 см. В зону дефекта погрузили 1 грамм предварительно подготовленной инфицированной микробной взвесью аллокости. Произвели послойное ушивание раны. Выполнили компьютерную томографию с целью послеоперационного контроля (Фиг. 1).Extract from the protocol of experiment No. 16. Rabbit of breed "Chinchilla", male, weight 2.5 kg. Under combined anesthesia with preparations “Zoletil 50” at a dose of 15 mg / kg i / m, “Xila” at a dose of 0.1 mg / kg i / m and local anesthesia with 0.25% novocaine solution - 4 ml in the position of the animal on the back The hair was removed from the inner surface of the proximal third of the lower leg, the surgical field was treated three times with a 0.5% alcohol solution of chlorhexidine and a 2.0 cm skin incision was made, followed by sharp and blunt accesses through all layers of soft tissues to the proximal tibia meta-epiphysis. Wound hemostasis was performed. Then a standardized bone defect was formed with a tetrahedral cone-shaped drill 0.5 cm in diameter with a limiter to a depth of 0.5 cm. 1 gram of a previously prepared infected microbial suspension of allostia was immersed in the defect zone. Made a layered wound closure. Computed tomography was performed for the purpose of postoperative control (Fig. 1).
Для подготовки импрегнированной аллокости фрагмент аллогенной кости весом 1 грамм погружали на 15 минут в раствор микробной взвеси с концентрацией микробных клеток 6×108 КОЕ/мл по стандарту для оптической стандартизации бактерий 1 МакФарланда (McF) с плотностью раствора 1 г/мл. Проводили контрольное взвешивание (Весы лабораторные ВК 300.1). Определяли массу поглощенной жидкости на 1 грамм кости и концентрацию микробных клеток в ней. 1 грамм кости поглощал 0,01 грамм раствора микробной взвеси с концентрацией микробных клеток 1,0×108 КОЕ/МЛ подтвержденный данными бактериологических посевов по методу серийных разведений. На 3-й день после оперативного вмешательства производили удаление части швов из средней трети раны и разведение её краев для инициирования свищевого хода.To prepare the impregnated allosty, a 1 gram fragment of allogeneic bone was immersed for 15 minutes in a solution of microbial suspension with a concentration of microbial cells of 6 × 10 8 CFU / ml according to the standard for optical standardization of bacteria 1 McFarland (McF) with a solution density of 1 g / ml. Conducted control weighing (Laboratory balance VK 300.1). The mass of absorbed fluid per 1 gram of bone and the concentration of microbial cells in it were determined. 1 gram of bone absorbed 0.01 gram of a solution of microbial suspension with a concentration of microbial cells of 1.0 × 10 8 CFU / ML confirmed by the data of bacteriological culture according to the method of serial dilutions. On the 3rd day after surgery, part of the sutures were removed from the middle third of the wound and its edges were diluted to initiate the fistulous course.
У животного после операции наблюдалось снижение аппетита, физической активности, истощение, повышение температуры, нарушение функции оперированного сегмента. На 21-й день в области послеоперационной раны имелся незаживающий свищевой ход, с обильным гнойным отделяемым творожистой консистенции (Фиг. 2). По данным компьютерной томографии, выполненной на 21 день после операции, в проксимальном метаэпифизе большеберцовой кости визуализировалась полость с неровными склерозированными краями, заполненная костными секвестрами. Кортикальный слой неравномерно утолщен. Отек прилежащих мягких тканей, окружающих очаг, с наличием свищевого хода (Фиг.3). По данным лабораторных исследований в общем анализе крови была отмечена тенденция к снижению гемоглобина, эритроцитов и повышению лейкоцитов. По данным бактериологического исследования был выявлен рост монокультуры Staphylococcus aureus.In the animal after surgery, there was a decrease in appetite, physical activity, exhaustion, fever, impaired function of the operated segment. On the 21st day, in the area of the postoperative wound there was an unhealed fistulous course, with a profuse purulent discharge of a curdled consistency (Fig. 2). According to computed tomography performed on day 21 after the operation, a cavity with uneven sclerotic edges filled with bone sequesters was visualized in the proximal metaepiphysis of the tibia. The cortical layer is unevenly thickened. Edema of adjacent soft tissues surrounding the focus, with the presence of fistulous passage (Figure 3). According to laboratory studies, a general analysis of blood showed a tendency to a decrease in hemoglobin, red blood cells and an increase in white blood cells. According to a bacteriological study, the growth of a monoculture of Staphylococcus aureus was revealed.
На 21 день животное выведено из эксперимента. В гистологических препаратах (Окраска гематоксилин-эозином, ×200) костный дефект с участками некроза и выраженной лейкоцитарной инфильтрацией (Фиг.4), фрагментами расплавляющейся костно-хрящевой ткани (Фиг.5), разрастанием соединительной ткани, окружающей очаг хронического гнойного воспаления (Фиг.6), с участками некроза и выраженной инфильтрацией сегментоядерными нейтрофилами, формирование свищевого хода (Фиг.7), что подтверждает формирование хронического остеомиелита.On day 21, the animal was withdrawn from the experiment. In histological preparations (Hematoxylin-eosin staining, × 200), a bone defect with areas of necrosis and marked leukocyte infiltration (Figure 4), fragments of melting bone-cartilaginous tissue (Figure 5), proliferation of connective tissue surrounding the focus of chronic suppurative inflammation (Fig .6), with areas of necrosis and marked infiltration by segmented neutrophils, the formation of the fistulous course (Fig.7), which confirms the formation of chronic osteomyelitis.
Таким образом, предложенный способ моделирования хронического остеомиелита позволяет избежать генерализации остеомиелитического процесса, обеспечивает выживаемость животных на всем сроке эксперимента, в том числе за счет точного дозирования инфицирующего агента, завершить моделирование на 21 день, прост в техническом исполнении, смоделированный процесс соответствует патоморфологическими изменениям характерным для человека. Локализация дефекта минимизирует риск развития гнойного процесса в окружающие мягкие ткани и полость сустава. Стандартизированный размер дефекта позволяет получать воспроизводимые результаты при использовании в экспериментах, направленных на изучение вариантов лечения остеомиелита.Thus, the proposed method for modeling chronic osteomyelitis avoids the generalization of the osteomyelitis process, ensures the survival of animals throughout the entire duration of the experiment, including through accurate dosing of the infecting agent, to complete the simulation for 21 days, is simple in technical design, the simulated process corresponds to pathomorphological changes characteristic of person. The localization of the defect minimizes the risk of the development of a purulent process in the surrounding soft tissues and joint cavity. The standardized size of the defect allows reproducible results when used in experiments aimed at exploring treatment options for osteomyelitis.
Claims (5)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2019138548A RU2720838C1 (en) | 2019-11-28 | 2019-11-28 | Method for simulating chronic osteomyelitis |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2019138548A RU2720838C1 (en) | 2019-11-28 | 2019-11-28 | Method for simulating chronic osteomyelitis |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2720838C1 true RU2720838C1 (en) | 2020-05-13 |
Family
ID=70735224
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2019138548A RU2720838C1 (en) | 2019-11-28 | 2019-11-28 | Method for simulating chronic osteomyelitis |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2720838C1 (en) |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102068693A (en) * | 2009-11-20 | 2011-05-25 | 复旦大学 | Application of complete Freund adjuvant (CFA) to preparation of tibia inflammatory pain model |
RU2499295C1 (en) * | 2012-03-19 | 2013-11-20 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Нижегородский научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации | Method for simulating chronic infected bone wound |
RU2622209C1 (en) * | 2016-04-28 | 2017-06-13 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Российский ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии им. Р.Р. Вредена" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "РНИИТО им. Р.Р. Вредена" Минздрава России) | Method for localized metaphyseal chronic osteomyelitis simulation in rabbit |
-
2019
- 2019-11-28 RU RU2019138548A patent/RU2720838C1/en active
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102068693A (en) * | 2009-11-20 | 2011-05-25 | 复旦大学 | Application of complete Freund adjuvant (CFA) to preparation of tibia inflammatory pain model |
RU2499295C1 (en) * | 2012-03-19 | 2013-11-20 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Нижегородский научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации | Method for simulating chronic infected bone wound |
RU2622209C1 (en) * | 2016-04-28 | 2017-06-13 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Российский ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии им. Р.Р. Вредена" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "РНИИТО им. Р.Р. Вредена" Минздрава России) | Method for localized metaphyseal chronic osteomyelitis simulation in rabbit |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Живцов О. П. и др. Экспериментальная модель хронической гнойной костной полости. Современные проблемы науки и образования, 2015, N 6, с. 232, УДК: 619:616.832-002-085. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
RAY et al. | Bone implants: preliminary report of an experimental study | |
Li et al. | Drill hole models to investigate bone repair | |
Zhang et al. | Treatment with vancomycin loaded calcium sulphate and autogenous bone in an improved rabbit model of bone infection | |
RU2720838C1 (en) | Method for simulating chronic osteomyelitis | |
RU2622209C1 (en) | Method for localized metaphyseal chronic osteomyelitis simulation in rabbit | |
Gumieiro et al. | Platelet-rich plasma in bone repair of irradiated tibiae of Wistar rats | |
RU2499295C1 (en) | Method for simulating chronic infected bone wound | |
RU2703709C1 (en) | Method for simulating an experimental soft tissue wound in rats for developing a therapeutic approach | |
RU2578818C1 (en) | Method for simulating osteomyelitis | |
Robinson | The use of blowfly larvae in the treatment of infected wounds | |
Koch | Aetiology of tuberculosis | |
CN109010334A (en) | The compound Simvastatin bone cement of polymethyl methacrylate is used to prepare the application in the drug of the dissolution of Periprosthetic bone and inflammatory reaction | |
SU1359795A1 (en) | Method of simulating post-traumatic osteomyelitis | |
Dobrowolskaja | On the regeneration of bone in its relation to the cultivation of bone tissue | |
RU2778615C1 (en) | Graft, a method for bone marrow autotransplantation to stimulate reparative bone regeneration and a device for carrying out transplantation | |
RU2800318C1 (en) | Method of the treatment of chronic post-traumatic osteomyelitis | |
CN107094705A (en) | The animal model constructing method that White Rabbit caused by a kind of simulation external microbiological contamination of artificial prosthesis material infects | |
RU2676478C1 (en) | Method of preparing filling mass for closure of bone defect | |
RU179633U1 (en) | Device for reproducing peritonitis in rats | |
RU2581255C1 (en) | Method of producing laboratory model of artificial phlegmonous inflammation of soft tissue in rats against background of artificial immunosuppression | |
Reshetnyak et al. | Reparative histogenesis of bone tissue in femoral fractures in rats using biocomposite material along with immunocorrection | |
Chu et al. | A new rabbit model of implant-related biofilm infection: development and evaluation | |
RU2622369C1 (en) | Chronic traumatic osteomyelitis simulation method | |
Lu et al. | Preparation of animal model of chicken for lymphatic anastomosis technique training | |
Senn | Principles of surgery |