RU2720838C1 - Method for simulating chronic osteomyelitis - Google Patents

Method for simulating chronic osteomyelitis Download PDF

Info

Publication number
RU2720838C1
RU2720838C1 RU2019138548A RU2019138548A RU2720838C1 RU 2720838 C1 RU2720838 C1 RU 2720838C1 RU 2019138548 A RU2019138548 A RU 2019138548A RU 2019138548 A RU2019138548 A RU 2019138548A RU 2720838 C1 RU2720838 C1 RU 2720838C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
bone
staphylococcus aureus
osteomyelitis
defect
chronic osteomyelitis
Prior art date
Application number
RU2019138548A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Святослав Борисович Королев
Вячеслав Николаевич Митрофанов
Олег Петрович Живцов
Дарья Петровна Юлина
Ольга Васильевна Ковалишена
Ирина Юрьевна Широкова
Наталья Александровна Белянина
Original Assignee
федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Приволжский исследовательский медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО "ПИМУ" Минздрава России)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Приволжский исследовательский медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО "ПИМУ" Минздрава России) filed Critical федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Приволжский исследовательский медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО "ПИМУ" Минздрава России)
Priority to RU2019138548A priority Critical patent/RU2720838C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2720838C1 publication Critical patent/RU2720838C1/en

Links

Images

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61BDIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
    • A61B17/00Surgical instruments, devices or methods, e.g. tourniquets
    • A61B17/56Surgical instruments or methods for treatment of bones or joints; Devices specially adapted therefor
    • GPHYSICS
    • G09EDUCATION; CRYPTOGRAPHY; DISPLAY; ADVERTISING; SEALS
    • G09BEDUCATIONAL OR DEMONSTRATION APPLIANCES; APPLIANCES FOR TEACHING, OR COMMUNICATING WITH, THE BLIND, DEAF OR MUTE; MODELS; PLANETARIA; GLOBES; MAPS; DIAGRAMS
    • G09B23/00Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes
    • G09B23/28Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes for medicine

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medical Informatics (AREA)
  • Surgery (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Algebra (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Mathematical Analysis (AREA)
  • Mathematical Optimization (AREA)
  • Mathematical Physics (AREA)
  • Pure & Applied Mathematics (AREA)
  • Business, Economics & Management (AREA)
  • Educational Administration (AREA)
  • Educational Technology (AREA)
  • Theoretical Computer Science (AREA)
  • Orthopedic Medicine & Surgery (AREA)
  • Computational Mathematics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Materials For Medical Uses (AREA)
  • Prostheses (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: invention refers to medicine, namely to orthopedics and experimental medicine for simulating chronic osteomyelitis of limb longitudinal bone for simulating chronic osteomyelitis in rabbit. A bone defect of rounded shape is formed in a proximal tibial bone metaphysis. Allograft bone pre-impregnated with microbial suspension of Staphylococcus aureus is introduced as infectious agent. Bone defect is formed by tetrahedral cone-shaped drill with diameter of 0.5 cm with limiter to depth of 0.5 cm. Allograft bone is impregnated by immersion of allogenic bone with weight of 1 gram for 15 minutes in solution of microbial suspension with concentration of microbial cells Staphylococcus aureus 6×108 CFU/ml by a standard for optical standardization of bacteria 1 McFarland (McF), with a solution density of 1 g/ml. Staphylococcus aureus ATCC 29213 grown on a dense nutrient medium for 24 hours is used. Simulating chronic osteomyelitis is completed on 21st day.
EFFECT: method provides creating a model of a chronic osteomyelitic process by minimizing the risk of developing a purulent process in the surrounding soft tissues and the joint cavity; standardized size of the defect enables to obtain reproducible results when used in experiments aimed at studying the osteomyelitis treatment options.
5 cl, 7 dwg, 1 ex

Description

Изобретение относится к экспериментальной медицине для моделирования хронического остеомиелита длинных костей конечностей.The invention relates to experimental medicine for modeling chronic osteomyelitis of the long bones of the extremities.

На сегодняшний день вопрос лечения остеомиелита остается весьма актуальным. В общей структуре заболеваний опорно-двигательного аппарата хронический остеомиелит составляет 10-25%, а частота неудовлетворительных результатов лечения и рецидивов данного заболевания составляет до 40%. Постоянно разрабатываются и совершенствуются способы хирургического лечения, требующие создания новых экспериментальных моделей остеомиелита.To date, the treatment of osteomyelitis remains very relevant. In the general structure of diseases of the musculoskeletal system, chronic osteomyelitis is 10-25%, and the frequency of unsatisfactory treatment results and relapses of this disease is up to 40%. Methods of surgical treatment are constantly being developed and improved, requiring the creation of new experimental models of osteomyelitis.

Известен способ моделирования остеомиелита (Патент RU № 2622369). Для этого в асептических условиях создают полость в метаэпифизарной зоне кости лабораторного животного, находящегося под наркозом. В эту полость вносят турунду, смоченную 1% раствором этоксисклерола, и фрагменты аутокости с последующим инфицированием полости культурой золотистого стафилококка. Инфицирование проводят на 7-е сутки путем введения в полученную полость кусочка суточной культуры золотистого стафилококка в 2% растворе агар-агара. При этом отверстие в кости запломбировывают эркодонт-цементом и рану засыпают порошком амоксиклава. На 31-е сутки после внесения микробной культуры развивается хронический остеомиелит.A known method of modeling osteomyelitis (Patent RU No. 2622369). For this, under aseptic conditions, a cavity is created in the metaepiphyseal area of the bone of a laboratory animal under anesthesia. Turunda moistened with a 1% ethoxysclerol solution and autocost fragments with subsequent infection of the cavity with staphylococcus aureus are introduced into this cavity. Infection is carried out on the 7th day by introducing into the resulting cavity a piece of the daily culture of Staphylococcus aureus in 2% agar-agar solution. In this case, the hole in the bone is filled with ercodont cement and the wound is covered with amoxiclav powder. On the 31st day after the introduction of the microbial culture, chronic osteomyelitis develops.

Недостатком данного способа является его трудоемкость, обусловленная двухэтапностью выполнения, а также увеличение стоимости эксперимента за счет используемых медикаментов (этоксисклерол, эркодонт-цемент).The disadvantage of this method is its complexity, due to the two-stage implementation, as well as an increase in the cost of the experiment due to the drugs used (ethoxysclerol, ercodont-cement).

Известен способ моделирования остеомиелита Доценко И. А. (Патент RU № 2578818). В качестве носителя авторы использовали лавсановую ткань, контаминированную штаммом патогенного микроорганизма путем выдерживания полоски лавсановой ткани в суспензии возбудителя 1.5 McF(1×108 КОЭ). После размещения полоски в дефекте кости его герметизировали костным воском и рану послойно ушивали. Удаление полоски производили на 7-е сутки.A known method of modeling osteomyelitis Dotsenko I. A. (Patent RU No. 2578818). As a carrier, the authors used dacron tissue contaminated with a strain of a pathogenic microorganism by keeping a strip of dacron tissue in a suspension of the pathogen 1.5 McF (1 × 10 8 CFU). After placing the strip in the bone defect, it was sealed with bone wax and the wound was sutured in layers. Strip removal was performed on the 7th day.

Недостатком данного способа является необходимость дополнительного оперативного вмешательства с целью удаления бактериального носителя, а использование хирургического воска может обострять инфекционный процесс, приводить к септическим осложнениям и гибели животного.The disadvantage of this method is the need for additional surgical intervention to remove the bacterial carrier, and the use of surgical wax can aggravate the infectious process, leading to septic complications and death of the animal.

В качестве прототипа выбран способ моделирования хронической гнойной костной раны (Патент RU 2499295), включающий формирование костного дефекта вдоль оси кости, помещение в него смеси культуры музейного штамма Staphylococcus Aureus №5 в количестве 40-45 млн KОЕ на 1 кг массы тела экспериментального животного и 0,1 мл стерильного кварцевого песка. Через трое суток после операции удаляют некротические массы и гной из зоны костного дефекта, снимают три операционных шва в средней трети раны, формируя свищевую рану. Выполняют реинфицирование раны той же культурой в дозе 20-25 млн KОЕ на 1 кг массы тела. В последующем сохраняют рану в свищевом виде.As a prototype, a method for modeling chronic purulent bone wounds (Patent RU 2499295) was selected, including the formation of a bone defect along the axis of the bone, placing in it a culture mixture of the museum strain of Staphylococcus Aureus No. 5 in the amount of 40-45 million CFU per 1 kg of body weight of the experimental animal and 0.1 ml of sterile silica sand. Three days after the operation, necrotic masses and pus are removed from the bone defect zone, three surgical sutures are removed in the middle third of the wound, forming a fistulous wound. Perform wound reinfection with the same culture at a dose of 20-25 million CFU per 1 kg of body weight. Subsequently, the wound is kept in fistulous form.

Недостатком вышеописанного способа является необходимость двухэтапного вмешательства с дополнительным инфицированием раны, невозможность полного удаления носителя (кварцевый песок) Staphylococcus Aureus из раны. Размер сформированного дефекта формируется на усмотрение исследователя, поэтому можно сказать «размер дефекта не стандартизирован», что в последующем приводит к искажению данных, получаемых экспериментатором, отсутствию воспроизводимости получаемых результатов при использовании модели.The disadvantage of the above method is the need for a two-stage intervention with additional infection of the wound, the inability to completely remove the carrier (silica sand) of Staphylococcus Aureus from the wound. The size of the defect formed is formed at the discretion of the researcher, so we can say “the size of the defect is not standardized”, which subsequently leads to distortion of the data obtained by the experimenter, the lack of reproducibility of the obtained results when using the model.

Задачей изобретения является создание модели хронического остеомиелитического процесса, имеющего патоморфологическое сходство с остеомиелитическим процессом у человека, позволяющей длительное время поддерживать этот процесс, со стандартизированным размером дефекта для получения воспроизводимых результатов при использовании в экспериментах, направленных на изучение вариантов лечения.The objective of the invention is to create a model of a chronic osteomyelitis process that has a pathomorphological similarity with the osteomyelitis process in humans, allowing a long time to maintain this process, with a standardized size of the defect to obtain reproducible results when used in experiments aimed at studying treatment options.

Техническим результатом предложенного способа является создание модели хронического остеомиелитического процесса, имеющего патоморфологическое сходство с остеомиелитическим процессом у человека, лишенного недостатков аналогов и прототипа.The technical result of the proposed method is the creation of a model of a chronic osteomyelitis process having a pathomorphological similarity with the osteomyelitis process in a person who is devoid of the disadvantages of analogues and prototype.

Технический результат достигается тем, что в способе моделирования хронического остеомиелита, включающем формирование костного дефекта, введение в него инфицирующего агента, удаление на третий день после оперативного вмешательства части швов из средней трети раны и разведение её краев для инициирования свищевого хода, формируют стандартизированный костный дефект округлой формы, вводят предварительно импрегнированную микробной взвесью аллокость.The technical result is achieved by the fact that in the method of modeling chronic osteomyelitis, including the formation of a bone defect, the introduction of an infectious agent into it, the removal of part of the sutures from the middle third of the wound on the third day after surgery and the dilution of its edges to initiate fistulous passage, form a standardized round bone defect forms, allocost is pre-impregnated with a microbial suspension.

Предпочтительно стандартизированный костный дефект формируют четырехгранным конусовидным сверлом диаметром 0,5 см с ограничителем на глубину 0,5 см.Preferably, a standardized bone defect is formed with a tetrahedral conical drill with a diameter of 0.5 cm with a limiter to a depth of 0.5 cm.

Предпочтительно аллокость импрегнируют путем погружения аллогенной кости весом 1 грамм на 15 минут в раствор микробной взвеси с концентрацией микробных клеток Staphylococcus aureus 6*108 КОЕ/мл по стандарту для оптической стандартизации бактерий 1 МакФарланда (McF), с плотностью раствора 1 г/мл.Preferably, the allocost is impregnated by immersing the allogeneic bone weighing 1 gram for 15 minutes in a microbial suspension solution with a concentration of microbial cells of Staphylococcus aureus 6 * 10 8 CFU / ml according to the standard for optical standardization of bacteria 1 McFarland (McF), with a solution density of 1 g / ml.

Предпочтительно используют Staphylococcus aureus ATCC 29213, выращенный на плотной питательной среде в течение 24 часов.Preferably, Staphylococcus aureus ATCC 29213 grown in solid nutrient medium for 24 hours is used.

Предпочтительно моделирование хронического остеомиелита завершают на 21 сутки.Preferably, modeling of chronic osteomyelitis is completed on day 21.

Способ осуществляют следующим образом. Положение животного на спине. Выполняют комбинированное обезболивание. По внутренней поверхности проксимальной трети голени удаляют волосяной покров, производят трехкратную обработку операционного поля 0,5% спиртовым раствором хлоргексидина. Выполняют разрез кожи 2,0 см, с последующим острым и тупым доступами через все слои мягких тканей к проксимальному метаэпифизу большеберцовой кости. Выполняют гемостаз раны. Затем формируют стандартизированный костный дефект. В частности, дефект формируют четырехгранным конусовидным сверлом диаметром 0,5 см с ограничителем на глубину 0,5 см. В зону дефекта погружают предварительно импрегнированную микробной взвесью аллокость, подготовленную путем погружения аллогенной кости весом 1 грамм на 15 минут в раствор микробной взвеси с концентрацией микробных клеток 6×108 КОЕ/мл по стандарту для оптической стандартизации бактерий 1 МакФарланда (McF), с плотностью раствора 1 г/мл. Производят послойное ушивание раны. На 3-й день после оперативного вмешательства производят удаление части швов из средней трети раны и разведение её краев для инициирования свищевого хода. Наблюдают за животным в течение 21 дня.The method is as follows. The position of the animal on the back. Perform combined anesthesia. Hairline is removed along the inner surface of the proximal third of the leg, and the surgical field is treated three times with a 0.5% alcohol solution of chlorhexidine. A skin incision of 2.0 cm is performed, followed by sharp and blunt accesses through all layers of soft tissues to the proximal metaepiphysis of the tibia. Perform wound hemostasis. Then form a standardized bone defect. In particular, the defect is formed by a tetrahedral conical drill with a diameter of 0.5 cm with a limiter to a depth of 0.5 cm. Allocity prepared by immersing allogeneic bone weighing 1 gram for 15 minutes in a solution of microbial suspension with a concentration of microbial is immersed in the defect zone. cells 6 × 10 8 CFU / ml standard for optical standardization of bacteria 1 McFarland (McF), with a solution density of 1 g / ml Produce layered wound closure. On the 3rd day after surgery, part of the sutures are removed from the middle third of the wound and its edges are diluted to initiate the fistulous course. Observe the animal for 21 days.

Пример 1.Example 1

Выписка из протокола эксперимента №16. Кролик породы «Шиншилла», самец, масса 2,5 кг. Под комбинированным обезболиванием препаратами «Золетил 50» в дозе 15 мг/кг в/м, «Ксила» в дозе 0,1 мг/кг в/м и местной анестезией 0,25% раствором новокаина - 4 мл в положении животного на спине по внутренней поверхности проксимальной трети голени удалили волосяной покров, произвели трехкратную обработку операционного поля 0,5% спиртовым раствором хлоргексидина и выполнили 2,0 см разрез кожи с последующим острым и тупым доступами через все слои мягких тканей к проксимальному метаэпифизу большеберцовой кости. Выполнили гемостаз раны. Затем сформировали стандартизированный костный дефект четырехгранным конусовидным сверлом диаметром 0,5 см с ограничителем на глубину 0,5 см. В зону дефекта погрузили 1 грамм предварительно подготовленной инфицированной микробной взвесью аллокости. Произвели послойное ушивание раны. Выполнили компьютерную томографию с целью послеоперационного контроля (Фиг. 1).Extract from the protocol of experiment No. 16. Rabbit of breed "Chinchilla", male, weight 2.5 kg. Under combined anesthesia with preparations “Zoletil 50” at a dose of 15 mg / kg i / m, “Xila” at a dose of 0.1 mg / kg i / m and local anesthesia with 0.25% novocaine solution - 4 ml in the position of the animal on the back The hair was removed from the inner surface of the proximal third of the lower leg, the surgical field was treated three times with a 0.5% alcohol solution of chlorhexidine and a 2.0 cm skin incision was made, followed by sharp and blunt accesses through all layers of soft tissues to the proximal tibia meta-epiphysis. Wound hemostasis was performed. Then a standardized bone defect was formed with a tetrahedral cone-shaped drill 0.5 cm in diameter with a limiter to a depth of 0.5 cm. 1 gram of a previously prepared infected microbial suspension of allostia was immersed in the defect zone. Made a layered wound closure. Computed tomography was performed for the purpose of postoperative control (Fig. 1).

Для подготовки импрегнированной аллокости фрагмент аллогенной кости весом 1 грамм погружали на 15 минут в раствор микробной взвеси с концентрацией микробных клеток 6×108 КОЕ/мл по стандарту для оптической стандартизации бактерий 1 МакФарланда (McF) с плотностью раствора 1 г/мл. Проводили контрольное взвешивание (Весы лабораторные ВК 300.1). Определяли массу поглощенной жидкости на 1 грамм кости и концентрацию микробных клеток в ней. 1 грамм кости поглощал 0,01 грамм раствора микробной взвеси с концентрацией микробных клеток 1,0×108 КОЕ/МЛ подтвержденный данными бактериологических посевов по методу серийных разведений. На 3-й день после оперативного вмешательства производили удаление части швов из средней трети раны и разведение её краев для инициирования свищевого хода.To prepare the impregnated allosty, a 1 gram fragment of allogeneic bone was immersed for 15 minutes in a solution of microbial suspension with a concentration of microbial cells of 6 × 10 8 CFU / ml according to the standard for optical standardization of bacteria 1 McFarland (McF) with a solution density of 1 g / ml. Conducted control weighing (Laboratory balance VK 300.1). The mass of absorbed fluid per 1 gram of bone and the concentration of microbial cells in it were determined. 1 gram of bone absorbed 0.01 gram of a solution of microbial suspension with a concentration of microbial cells of 1.0 × 10 8 CFU / ML confirmed by the data of bacteriological culture according to the method of serial dilutions. On the 3rd day after surgery, part of the sutures were removed from the middle third of the wound and its edges were diluted to initiate the fistulous course.

У животного после операции наблюдалось снижение аппетита, физической активности, истощение, повышение температуры, нарушение функции оперированного сегмента. На 21-й день в области послеоперационной раны имелся незаживающий свищевой ход, с обильным гнойным отделяемым творожистой консистенции (Фиг. 2). По данным компьютерной томографии, выполненной на 21 день после операции, в проксимальном метаэпифизе большеберцовой кости визуализировалась полость с неровными склерозированными краями, заполненная костными секвестрами. Кортикальный слой неравномерно утолщен. Отек прилежащих мягких тканей, окружающих очаг, с наличием свищевого хода (Фиг.3). По данным лабораторных исследований в общем анализе крови была отмечена тенденция к снижению гемоглобина, эритроцитов и повышению лейкоцитов. По данным бактериологического исследования был выявлен рост монокультуры Staphylococcus aureus.In the animal after surgery, there was a decrease in appetite, physical activity, exhaustion, fever, impaired function of the operated segment. On the 21st day, in the area of the postoperative wound there was an unhealed fistulous course, with a profuse purulent discharge of a curdled consistency (Fig. 2). According to computed tomography performed on day 21 after the operation, a cavity with uneven sclerotic edges filled with bone sequesters was visualized in the proximal metaepiphysis of the tibia. The cortical layer is unevenly thickened. Edema of adjacent soft tissues surrounding the focus, with the presence of fistulous passage (Figure 3). According to laboratory studies, a general analysis of blood showed a tendency to a decrease in hemoglobin, red blood cells and an increase in white blood cells. According to a bacteriological study, the growth of a monoculture of Staphylococcus aureus was revealed.

На 21 день животное выведено из эксперимента. В гистологических препаратах (Окраска гематоксилин-эозином, ×200) костный дефект с участками некроза и выраженной лейкоцитарной инфильтрацией (Фиг.4), фрагментами расплавляющейся костно-хрящевой ткани (Фиг.5), разрастанием соединительной ткани, окружающей очаг хронического гнойного воспаления (Фиг.6), с участками некроза и выраженной инфильтрацией сегментоядерными нейтрофилами, формирование свищевого хода (Фиг.7), что подтверждает формирование хронического остеомиелита.On day 21, the animal was withdrawn from the experiment. In histological preparations (Hematoxylin-eosin staining, × 200), a bone defect with areas of necrosis and marked leukocyte infiltration (Figure 4), fragments of melting bone-cartilaginous tissue (Figure 5), proliferation of connective tissue surrounding the focus of chronic suppurative inflammation (Fig .6), with areas of necrosis and marked infiltration by segmented neutrophils, the formation of the fistulous course (Fig.7), which confirms the formation of chronic osteomyelitis.

Таким образом, предложенный способ моделирования хронического остеомиелита позволяет избежать генерализации остеомиелитического процесса, обеспечивает выживаемость животных на всем сроке эксперимента, в том числе за счет точного дозирования инфицирующего агента, завершить моделирование на 21 день, прост в техническом исполнении, смоделированный процесс соответствует патоморфологическими изменениям характерным для человека. Локализация дефекта минимизирует риск развития гнойного процесса в окружающие мягкие ткани и полость сустава. Стандартизированный размер дефекта позволяет получать воспроизводимые результаты при использовании в экспериментах, направленных на изучение вариантов лечения остеомиелита.Thus, the proposed method for modeling chronic osteomyelitis avoids the generalization of the osteomyelitis process, ensures the survival of animals throughout the entire duration of the experiment, including through accurate dosing of the infecting agent, to complete the simulation for 21 days, is simple in technical design, the simulated process corresponds to pathomorphological changes characteristic of person. The localization of the defect minimizes the risk of the development of a purulent process in the surrounding soft tissues and joint cavity. The standardized size of the defect allows reproducible results when used in experiments aimed at exploring treatment options for osteomyelitis.

Claims (5)

1. Способ моделирования хронического остеомиелита у кролика, включающий формирование костного дефекта в метафизе большеберцовой кости, введение в него микробных клеток Staphylococcus aureus, удаление на третий день после оперативного вмешательства части швов из средней трети раны и разведение её краев для инициирования свищевого хода, отличающийся тем, что костный дефект округлой формы формируют в проксимальном метафизе большеберцовой кости, в качестве инфицирующего агента вводят предварительно импрегнированную микробной взвесью аллокость.1. A method for modeling chronic osteomyelitis in a rabbit, including the formation of a bone defect in the tibia metaphysis, the introduction of Staphylococcus aureus microbial cells into it, the removal of part of the sutures from the middle third of the wound on the third day after surgery, and diluting its edges to initiate fistulous passage, characterized in that a rounded bone defect is formed in the proximal tibia metaphysis, allocost is pre-impregnated with a microbial suspension as an infecting agent. 2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что костный дефект формируют четырехгранным конусовидным сверлом диаметром 0,5 см с ограничителем на глубину 0,5 см.2. The method according to p. 1, characterized in that the bone defect is formed by a tetrahedral conical drill with a diameter of 0.5 cm with a limiter to a depth of 0.5 cm 3. Способ по пп. 1, 2, отличающийся тем, что аллокость импрегнируют путем погружения аллогенной кости весом 1 грамм на 15 минут в раствор микробной взвеси с концентрацией микробных клеток Staphylococcus aureus 6×108 КОЕ/мл по стандарту для оптической стандартизации бактерий 1 МакФарланда (McF), с плотностью раствора 1 г/мл.3. The method according to PP. 1, 2, characterized in that the allogeneity is impregnated by immersing allogeneic bone weighing 1 gram for 15 minutes in a solution of microbial suspension with a concentration of microbial cells of Staphylococcus aureus 6 × 108 CFU / ml according to the standard for optical standardization of bacteria 1 McFarland (McF), with a density solution of 1 g / ml. 4. Способ по пп. 1-3, отличающийся тем, что используют Staphylococcus aureus ATCC 29213, выращенный на плотной питательной среде в течение 24 часов.4. The method according to PP. 1-3, characterized in that they use Staphylococcus aureus ATCC 29213, grown in solid nutrient medium for 24 hours. 5. Способ по пп. 1-4, отличающийся тем, что моделирование хронического остеомиелита завершают на 21 сутки.5. The method according to PP. 1-4, characterized in that the modeling of chronic osteomyelitis is completed on 21 days.
RU2019138548A 2019-11-28 2019-11-28 Method for simulating chronic osteomyelitis RU2720838C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019138548A RU2720838C1 (en) 2019-11-28 2019-11-28 Method for simulating chronic osteomyelitis

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019138548A RU2720838C1 (en) 2019-11-28 2019-11-28 Method for simulating chronic osteomyelitis

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2720838C1 true RU2720838C1 (en) 2020-05-13

Family

ID=70735224

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2019138548A RU2720838C1 (en) 2019-11-28 2019-11-28 Method for simulating chronic osteomyelitis

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2720838C1 (en)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102068693A (en) * 2009-11-20 2011-05-25 复旦大学 Application of complete Freund adjuvant (CFA) to preparation of tibia inflammatory pain model
RU2499295C1 (en) * 2012-03-19 2013-11-20 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Нижегородский научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации Method for simulating chronic infected bone wound
RU2622209C1 (en) * 2016-04-28 2017-06-13 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Российский ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии им. Р.Р. Вредена" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "РНИИТО им. Р.Р. Вредена" Минздрава России) Method for localized metaphyseal chronic osteomyelitis simulation in rabbit

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102068693A (en) * 2009-11-20 2011-05-25 复旦大学 Application of complete Freund adjuvant (CFA) to preparation of tibia inflammatory pain model
RU2499295C1 (en) * 2012-03-19 2013-11-20 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Нижегородский научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации Method for simulating chronic infected bone wound
RU2622209C1 (en) * 2016-04-28 2017-06-13 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Российский ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии им. Р.Р. Вредена" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "РНИИТО им. Р.Р. Вредена" Минздрава России) Method for localized metaphyseal chronic osteomyelitis simulation in rabbit

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Живцов О. П. и др. Экспериментальная модель хронической гнойной костной полости. Современные проблемы науки и образования, 2015, N 6, с. 232, УДК: 619:616.832-002-085. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RAY et al. Bone implants: preliminary report of an experimental study
Li et al. Drill hole models to investigate bone repair
Zhang et al. Treatment with vancomycin loaded calcium sulphate and autogenous bone in an improved rabbit model of bone infection
RU2720838C1 (en) Method for simulating chronic osteomyelitis
RU2622209C1 (en) Method for localized metaphyseal chronic osteomyelitis simulation in rabbit
Gumieiro et al. Platelet-rich plasma in bone repair of irradiated tibiae of Wistar rats
RU2499295C1 (en) Method for simulating chronic infected bone wound
RU2703709C1 (en) Method for simulating an experimental soft tissue wound in rats for developing a therapeutic approach
RU2578818C1 (en) Method for simulating osteomyelitis
Robinson The use of blowfly larvae in the treatment of infected wounds
Koch Aetiology of tuberculosis
CN109010334A (en) The compound Simvastatin bone cement of polymethyl methacrylate is used to prepare the application in the drug of the dissolution of Periprosthetic bone and inflammatory reaction
SU1359795A1 (en) Method of simulating post-traumatic osteomyelitis
Dobrowolskaja On the regeneration of bone in its relation to the cultivation of bone tissue
RU2778615C1 (en) Graft, a method for bone marrow autotransplantation to stimulate reparative bone regeneration and a device for carrying out transplantation
RU2800318C1 (en) Method of the treatment of chronic post-traumatic osteomyelitis
CN107094705A (en) The animal model constructing method that White Rabbit caused by a kind of simulation external microbiological contamination of artificial prosthesis material infects
RU2676478C1 (en) Method of preparing filling mass for closure of bone defect
RU179633U1 (en) Device for reproducing peritonitis in rats
RU2581255C1 (en) Method of producing laboratory model of artificial phlegmonous inflammation of soft tissue in rats against background of artificial immunosuppression
Reshetnyak et al. Reparative histogenesis of bone tissue in femoral fractures in rats using biocomposite material along with immunocorrection
Chu et al. A new rabbit model of implant-related biofilm infection: development and evaluation
RU2622369C1 (en) Chronic traumatic osteomyelitis simulation method
Lu et al. Preparation of animal model of chicken for lymphatic anastomosis technique training
Senn Principles of surgery