RU2622209C1 - Method for localized metaphyseal chronic osteomyelitis simulation in rabbit - Google Patents
Method for localized metaphyseal chronic osteomyelitis simulation in rabbit Download PDFInfo
- Publication number
- RU2622209C1 RU2622209C1 RU2016117035A RU2016117035A RU2622209C1 RU 2622209 C1 RU2622209 C1 RU 2622209C1 RU 2016117035 A RU2016117035 A RU 2016117035A RU 2016117035 A RU2016117035 A RU 2016117035A RU 2622209 C1 RU2622209 C1 RU 2622209C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- osteomyelitis
- defect
- localized
- bone
- chronic
- Prior art date
Links
Images
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G09—EDUCATION; CRYPTOGRAPHY; DISPLAY; ADVERTISING; SEALS
- G09B—EDUCATIONAL OR DEMONSTRATION APPLIANCES; APPLIANCES FOR TEACHING, OR COMMUNICATING WITH, THE BLIND, DEAF OR MUTE; MODELS; PLANETARIA; GLOBES; MAPS; DIAGRAMS
- G09B23/00—Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes
- G09B23/28—Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes for medicine
Landscapes
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Materials For Medical Uses (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к медицине и может быть использовано для изучения патогенеза остеомиелита и разработки методов его профилактики и лечения.The invention relates to medicine and can be used to study the pathogenesis of osteomyelitis and the development of methods for its prevention and treatment.
В экспериментальной медицине в качестве подопытных животных чаще всего используют самок кроликов. Это связано с рядом преимуществ, а именно малой степенью фенотипического полиморфизма, относительной простотой воспроизведения популяции, меньшей агрессивностью самок в сравнении с самцами, что не приводит к дополнительному травматизму среди экспериментальных животных. Известно множество способов получения экспериментальным путем модели остеомиелита, таких как способ моделирования травматического остеомиелита, в котором грубо механически нарушают целостность кости и вводят инфицирующий материал в зону сформированного ишемического некроза (авт. свид. СССР №829101). При этом костномозговой канал герметизируют и на конечность накладывают давящую гипсовую повязку. Также, описан способ моделирования инфицированной костной раны, состоящий в нанесении открытого перелома большеберцовой кости и через сутки его инфицирования путем орошения раны суспензией золотистого стафилококка ("Комплексное лечение больных посттравматическим остеомиелитом длинных трубчатых костей", Н.П. Грицай, дис., с. 104-178, 1992). Следует отметить, что данные способы позволяют создать модель острого остеомиелита.In experimental medicine, female rabbits are most often used as experimental animals. This is due to a number of advantages, namely, a small degree of phenotypic polymorphism, relative ease of reproduction of the population, less aggressive females in comparison with males, which does not lead to additional injuries among experimental animals. There are many ways to experimentally obtain models of osteomyelitis, such as a method for modeling traumatic osteomyelitis, in which the integrity of the bone is roughly mechanically impaired and infectious material is introduced into the zone of formed ischemic necrosis (ed. Certificate of the USSR No. 829101). In this case, the medullary canal is sealed and a pressure plaster cast is applied to the limb. Also, a method for modeling an infected bone wound is described, which consists in applying an open fracture of the tibia and after a day of infection by irrigation of the wound with a suspension of Staphylococcus aureus ("Comprehensive treatment of patients with post-traumatic osteomyelitis of long tubular bones", N.P. Gritsai, dis., P. 104-178, 1992). It should be noted that these methods allow you to create a model of acute osteomyelitis.
Кроме того, существуют способы моделирования свищевых форм хронического остеомиелита, с возможностью поддержания воспалительного процесса длительное время, которое необходимо для изучения и объективной оценки течения патологического процесса при разработке средств и методов его лечения. К таким моделям хронического остеомиелита относят способ моделирования остеомиелита длинной трубчатой кости путем использования физических факторов для нарушения целостности кости путем воздействия постоянным электрическим током силой 50 мкА и напряжением 1,5 В (пат. РФ №2049434), а также способ создания хронического очага остеомиелита путем формирования по передней поверхности большеберцовой кости четырех трепанационных отверстий с обнажением костномозгового канала и последующим их соединением продольными пропилами кости и инфицированием образованного дефекта (Моделирование хронического остеомиелита С.В. ЛАДОНИН, А.Г. СОНИС, Д.Г. АЛЕКСЕЕВ, Е.А. БЕЛОЗЕРЦЕВА, Е.А. ВОВК, ВЕСТНИК ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЙ И КЛИНИЧЕСКОЙ ХИРУРГИИ, ТОМ IV, №2, с. 344-348, 2011). Надо отметить, что представленные модели остеомиелита не всегда позволяют создать локальный хронический воспалительный процесс. Зачастую, процесс обширно распространяется на окружающие ткани, что приводит к нежелательным последствиям, ослаблению животного, генерализации инфекционного процесса вплоть до развития сепсиса и последующей гибели экспериментального животного.In addition, there are methods for modeling fistulous forms of chronic osteomyelitis, with the possibility of maintaining the inflammatory process for a long time, which is necessary for studying and objective assessment of the pathological process in the development of tools and methods for its treatment. Such models of chronic osteomyelitis include a method for modeling osteomyelitis of a long tubular bone by using physical factors to violate bone integrity by exposure to direct electric current of 50 μA and voltage of 1.5 V (US Pat. RF No. 2049434), as well as a method of creating a chronic focus of osteomyelitis by the formation on the front surface of the tibia of four trepanation holes with exposure of the medullary canal and their subsequent connection with longitudinal cuts of bone and infections defect (Modeling of chronic osteomyelitis S.V. LADONIN, A.G. SONIS, D.G. ALEKSEEV, E.A. BELOZERTSEVA, E.A. VOVK, NEWSLET OF EXPERIMENTAL AND CLINICAL SURGERY, VOLUME IV, No. 2, p. . 344-348, 2011). It should be noted that the presented models of osteomyelitis do not always allow creating a local chronic inflammatory process. Often, the process extends extensively to the surrounding tissues, which leads to undesirable consequences, weakening of the animal, generalization of the infectious process up to the development of sepsis and the subsequent death of the experimental animal.
Известен способ моделирования туберкулезного омартрита (патент №RU 2265891 С2), где авторы вносят взвесь возбудителя иглой, прокалывая губчатую кость и закрывая отверстие гемостатической губкой. Данный способ не предполагает создание именно костного дефекта. Помимо этого, патогенез туберкулезного артрита отличается от патогенеза остеомиелита. Туберкулезное заболевание костей и суставов является следствием лимфогематогенной диссеминации. По современным представлениям преимущественность локализаций первичных поражений в губчатом веществе суставных концов костей объясняется повышенной чувствительностью ретикулоэндотелиальных элементов красного костного мозга и обилием его кровоснабжения (Беллендир Э.Н. Костно-суставной туберкулез, 1995 N 6. - С. 7-13; Васильев А.В. Внелегочный туберкулез, 1997. - С. 10-11. Гарбуз А.Е. Внелегочный туберкулез, 1997, С. 11-12).A known method of modeling tuberculous omartritis (patent No. RU 2265891 C2), where the authors introduce the suspension of the pathogen with a needle, piercing the spongy bone and closing the hole with a hemostatic sponge. This method does not imply the creation of a bone defect. In addition, the pathogenesis of tuberculous arthritis is different from the pathogenesis of osteomyelitis. Tuberculosis disease of bones and joints is a consequence of lymphohematogenous dissemination. According to modern concepts, the predominance of localization of primary lesions in the spongy substance of the articular ends of the bones is explained by the increased sensitivity of the reticuloendothelial elements of the red bone marrow and the abundance of its blood supply (E. Bellendir, Osteoarticular tuberculosis, 1995
Задачей описанного способа является создание модели костного туберкулезного поражения, последовательно распространяющегося из субхондрально расположенного очага на плечевой сустав, адекватно развитию туберкулезного омартрита у человека, а также предотвращения инфицирования культурой МВТ окружающих мягких тканей операционной раны, что не отвечает требованиям, предъявляемым к созданию локализованного метафизарного очага остеомиелита, без вовлечения в инфекционный процесс сустава.The objective of the described method is to create a model of bone tuberculous lesion that sequentially spreads from a subchondral focus to the shoulder joint, is adequate to the development of tuberculous omartritis in humans, as well as to prevent infection of the surrounding soft tissue of the surgical wound with MBT culture, which does not meet the requirements for the creation of a localized metaphysial focus osteomyelitis, without involvement in the joint infection process.
Наиболее близким к заявленному является способ моделирования остеомиелита челюсти, когда у животного удаляют резец нижней челюсти, в лунку удаленного зуба вводят культуру золотистого стафилококка на углеродном волокнистом адсорбенте, после чего лунку обтурируют фрагментом корня удаленного зуба (Соловьев М.М. СПОСОБ МОДЕЛИРОВАНИЯ ОСТЕОМИЕЛИТА. Стоматология, 1969, М 6, с. 40-4З. (54)). К недостаткам этого способа можно отнести то, что указанный способ можно использовать только для моделирования остеомиелита в области зубных лунок. Помимо этого, описанный в данном способе в качестве носителя инфекции адсорбент в виде углеродного волокна не подвергается резорбции в костной ране. Это обстоятельство отдаляет данный способ моделирования остеомиелита от классической клинической картины.Closest to the claimed one is a method for modeling jaw osteomyelitis, when the lower jaw cutter is removed from the animal, a Staphylococcus aureus culture on a carbon fiber adsorbent is introduced into the hole of the extracted tooth, after which the hole is obturated with a fragment of the root of the removed tooth (Solovyov M.M. , 1969,
Цель изобретения - создание адекватной модели локализованного хронического остеомиелитического дефекта трубчатых костей, с возможностью нанесения минимальной экспериментальной травмы животному, что позволит минимизировать распространение инфекционного процесса на смежные сегменты, снизит риск генерализации инфекции и повысит выживаемость животных.The purpose of the invention is the creation of an adequate model of localized chronic osteomyelitis defect of the tubular bones, with the possibility of causing minimal experimental trauma to the animal, which will minimize the spread of the infectious process to adjacent segments, reduce the risk of generalization of infection and increase animal survival.
Технический результат состоит в:The technical result consists in:
- получении модели локализованного метафизарного очага хронического остеомиелита, пригодной для изучения особенностей клинического течения остеомиелита, разработки и оценки эффективности различных способов его лечения, в том числе для изучения процессов репаративного остеогенеза и реакции костной ткани на имплантацию различных костных трансплантатов и остеозамещающих материалов в указанных условиях,- obtaining a model of a localized metaphyseal focus of chronic osteomyelitis suitable for studying the clinical features of osteomyelitis, developing and evaluating the effectiveness of various methods of its treatment, including studying the processes of reparative osteogenesis and bone tissue response to implantation of various bone grafts and osteo-substituting materials under these conditions,
- снижении риска генерализации инфекционного процесса и повышении выживаемости животных.- reducing the risk of generalization of the infectious process and increasing animal survival.
Результат изобретения достигается за счет формирования костного дефекта в области проксимального метаэпифиза большеберцовой кости, в который укладывают рассасывающийся материал (гемостатическая губка) и затем инфицируют его патогенной микрофлорой, что обеспечивает купирование диффузного кровотечения из кости и вымывание инфицирующего агента из области костного дефекта. Это способствует ограничению распространения инфекции на смежные сегменты и приводит к низкому риску генерализации инфекционного процесса и отсутствию летальных исходов экспериментального животного в результате сепсиса.The result of the invention is achieved due to the formation of a bone defect in the proximal tibia metaepiphysis, in which absorbable material (hemostatic sponge) is placed and then infected with pathogenic microflora, which ensures relief of diffuse bleeding from the bone and leaching of the infectious agent from the area of the bone defect. This helps to limit the spread of infection to adjacent segments and leads to a low risk of generalization of the infectious process and the absence of fatal outcomes of the experimental animal as a result of sepsis.
На чертежах изображены макропрепараты, рентгенограммы и микропрепараты морфологического исследования локализованного метафизарного хронического остеомиелитического дефекта у животных основной группы, а также костного дефекта в контрольной группе и в группе сравнения - классическая модель остеомиелита без использования заселенной патогенной микрофлорой гемостатической губки:The drawings depict macrodrugs, radiographs and micropreparations of a morphological study of a localized metaphysical chronic osteomyelitis defect in animals of the main group, as well as a bone defect in the control group and in the comparison group — a classical model of osteomyelitis without the use of a hemostatic sponge populated by pathogenic microflora:
Фиг. 1: общий вид экспериментальной модели на 21-е сутки после укладки в костный дефект гемостатической губки с последующим инфицированием. В области верхней трети голени, по наружной поверхности, в проекции костного дефекта, визуализировано локальное эластическое образование, возвышающееся над кожей с гиперемированными краями, содержащее гнойно-серозную жидкость.FIG. 1: general view of the experimental model on the 21st day after laying a hemostatic sponge in a bone defect followed by infection. In the region of the upper third of the leg, on the outer surface, in the projection of the bone defect, a local elastic formation is seen that rises above the skin with hyperemic edges, containing purulent-serous fluid.
Фиг. 2: рентгенологическая картина экспериментальной модели на 21-е сутки после укладки в костный дефект инфицированной гемостатической губки. В зоне дефекта определяется четкая секвестрация.FIG. 2: X-ray picture of the experimental model on the 21st day after laying an infected hemostatic sponge in a bone defect. In the defect zone, clear sequestration is determined.
Фиг. 3: микропрепарат: морфологическая картина локализованного метафизарного хронического остеомиелитического дефекта на 21-е сутки после формирования остеомиелитического дефекта предлагаемым способом (окраска гематоксилином, ув. х 100). Визуализируется дефект, заполненный лейкоцитами и костными секвестрами. Надкостница и эндоост инфильтрированы лейкоцитами, между ними и подлежащей костной тканью видны клеточные элементы формирующейся соединительной ткани.FIG. 3: micropreparation: morphological picture of a localized metaphysical chronic osteomyelitis defect on the 21st day after the formation of the osteomyelitis defect by the proposed method (hematoxylin staining, UV x 100). A defect filled with white blood cells and bone sequesters is visualized. The periosteum and endosteum are infiltrated with white blood cells, between them and the underlying bone tissue, the cellular elements of the forming connective tissue are visible.
Фиг. 4: общий вид голени кролика при формировании асептического дефекта (контроль). Кожный покров без признаков воспаления, рана зажила первичным натяжением, отечности в области оперативного вмешательства нет.FIG. 4: general view of the rabbit tibia during the formation of an aseptic defect (control). The skin without signs of inflammation, the wound healed by first intention, there is no swelling in the area of surgical intervention.
Фиг. 5: микропрепарат: морфологическая картина при формировании асептического дефекта (контроль). Отмечены остаточные полости в центральной зоне дефекта. Происходит дифференцировка жирового костного мозга в кроветворный от периферии к центру, что говорит о нормальном течении репаративных процессов. Признаков воспаления не выявлено (окраска гематоксилином, ув. х 100).FIG. 5: micropreparation: morphological picture during the formation of an aseptic defect (control). Residual cavities in the central zone of the defect are noted. Differentiation of the adipose marrow into the hematopoietic from the periphery to the center occurs, which indicates the normal course of reparative processes. No signs of inflammation were detected (stained with hematoxylin, UV. X 100).
Фиг. 6: общий вид голени кролика при моделировании остеомиелита без использования заселенной патогенной микрофлорой гемостатической губки. В области операционного вмешательства кожные покровы и подлежащие ткани ярко гиперемированы и инъецированы. Околосуставные ткани заполнены гнойным содержимым с распространением по фасциальным влагалищам в смежные сегменты конечности. В области оперативного вмешательства - множественные свищевые ходы.FIG. 6: general view of the rabbit tibia when modeling osteomyelitis without using a hemostatic sponge populated by pathogenic microflora. In the area of surgical intervention, the skin and underlying tissues are brightly hyperemic and injected. The periarticular tissues are filled with purulent contents with spread through the fascial sheaths to adjacent segments of the limb. In the field of surgical intervention - multiple fistulous passages.
Способ осуществляется следующим образом: в асептических условиях кроликам породы «шиншилла» весом 2,5-3,5 кг под внутривенной анестезией (кетамин) проводят оперативное вмешательство по общепринятой методике, при этом на латеральной поверхности в области проксимального метаэпифиза большеберцовой кости стоматологическим бором под углом 45° относительно поверхности кости круговыми движениями формируют трепанационное отверстие округлой формы диаметром 8 мм. В сформированный костный дефект помещают заранее заготовленную стерильную гемостатическую губку размером, соответствующим размеру костного дефекта. После чего в костный дефект, в область лежащей на дне костной раны гемостатической губки шприцом вносят 0,5 мл микробной взвеси (суточная культура золотистого стафилококка 106 КОЕ/мл), далее костный дефект укрывают подлежащими тканями и ушивают послойно, после чего животных содержат в обычных условиях не менее 21 суток, что приводит к формированию локализованного метафизарного очага хронического остеомиелита за счет купирования кровотечения и ограничения распространения инфицирующего агента на смежные сегменты, что приводит к низкому риску генерализации инфекционного процесса и развитию летальных исходов экспериментального животного в результате сепсиса.The method is as follows: under aseptic conditions, chinchilla rabbits weighing 2.5-3.5 kg under intravenous anesthesia (ketamine) undergo a surgical procedure according to the generally accepted method, while on the lateral surface in the area of the proximal tibia metaepiphysis with a dental bur at an angle 45 ° relative to the bone surface in a circular motion form a trepanation hole of a rounded shape with a diameter of 8 mm. A pre-prepared sterile hemostatic sponge with a size corresponding to the size of the bone defect is placed in the formed bone defect. After that, 0.5 ml of microbial suspension (daily culture of Staphylococcus aureus 10 6 CFU / ml) is injected into the bone defect, in the area of the hemostatic sponge lying on the bottom of the bone wound (daily culture of Staphylococcus aureus 10 6 CFU / ml), then the bone defect is covered with the underlying tissues and sutured in layers, after which the animals are kept in normal conditions for at least 21 days, which leads to the formation of a localized metaphysial focus of chronic osteomyelitis due to the relief of bleeding and the restriction of the spread of the infecting agent to adjacent segments, which leads to low rice generalization of the infectious process and the development of fatal outcomes of an experimental animal as a result of sepsis.
ПРИМЕРEXAMPLE
С целью изучения различных осложнений, летальности животных, а также трудоемкости воспроизведения моделей остеомиелита, было проведено сравнение разработанной модели локализованного хронического метафизарного остеомиелитического дефекта (основная группа, n=10) и классической модели остеомиелита без использования заселенной патогенной флорой гемостатической губки (группа сравнения, n=10), контрольную группу составили 3 животных с костным дефектом без инфицирования. Исследование проводили на самках кроликов породы «шиншилла» весом 2,5-3,5 кг.In order to study various complications, animal mortality, and the complexity of reproducing models of osteomyelitis, a comparison was made of the developed model of localized chronic metaphysial osteomyelitis defect (main group, n = 10) and the classical model of osteomyelitis without the use of a hemostatic sponge populated by the pathogenic flora (comparison group, n = 10), the control group consisted of 3 animals with a bone defect without infection. The study was conducted on female chinchilla rabbits weighing 2.5-3.5 kg.
Животным основной группы под внутривенным наркозом (кетамин) в асептических условиях фиксировали задние конечности. Продольным разрезом обнажали большеберцовую кость, далее на латеральной поверхности в области проксимального метаэпифиза большеберцовой кости стоматологическим бором под углом 45° относительно поверхности кости круговыми движениями формировали трепанационное отверстие округлой формы диаметром 8 мм. В сформированный костный дефект помещали заранее заготовленную стерильную гемостатическую губку размером, соответствующим костному дефекту. После чего, в костный дефект в область лежащей на дне костной раны гемостатической губки шприцом вносили 0,5 мл микробной взвеси (суточная культура золотистого стафилококка 106 КОЕ/мл), далее костный дефект укрывали подлежащими тканями, ушивали послойно и обрабатывали раствором йода.The animals of the main group under intravenous anesthesia (ketamine) in aseptic conditions fixed the hind limbs. A tibia was exposed in a longitudinal section, then on a lateral surface in the proximal metaepiphysis of the tibia with a dental bur at an angle of 45 ° relative to the bone surface, a round trepanation hole with a diameter of 8 mm was formed. A pre-prepared sterile hemostatic sponge with a size corresponding to the bone defect was placed in the formed bone defect. After that, 0.5 ml of microbial suspension (daily culture of Staphylococcus aureus 10 6 CFU / ml) was injected into the bone defect in the area of the hemostatic sponge lying on the bottom of the bone wound (daily culture of Staphylococcus aureus 10 6 CFU / ml), then the bone defect was covered with the underlying tissues, sutured in layers and treated with iodine solution.
Животным группы сравнения также формировали костный дефект (по приведенной выше схеме), но взвесь микроорганизмов вносили прямо в область дефекта, без использования гемостатической губки.The animals of the comparison group also formed a bone defect (according to the above diagram), but a suspension of microorganisms was introduced directly into the area of the defect, without using a hemostatic sponge.
Животным контрольной группы также моделировали костный дефект (по приведенной выше схеме), но взвесь микроорганизмов не вносили.The animals of the control group also modeled a bone defect (according to the above scheme), but no suspension of microorganisms was introduced.
В послеоперационном периоде кроликов помещали по трое в клетки габаритами 100×100×50 см.In the postoperative period, three rabbits were placed in cages with dimensions 100 × 100 × 50 cm.
В первые сутки и на 21 сутки после операции выполняли рентгенологическое исследование области сформированного костного дефекта. На 7-е, 14-е и 21-е сутки после операции выполняли контрольные пункции послеоперационной раны с последующим микробиологическим исследованием аспирата. В результате микробилогического исследования, в основной группе и группе сравнения во всех полученных аспиратах выявлен рост патогенной флоры заселенной ранее - S. aureus, с аналогичным профилем чувствительности.On the first day and 21 days after surgery, an X-ray examination of the area of the formed bone defect was performed. On the 7th, 14th and 21st days after the operation, control punctures of the postoperative wound were performed followed by a microbiological examination of the aspirate. As a result of microbiological research, in the main and comparison groups in all aspirates obtained, an increase in the pathogenic flora of the previously populated S. aureus, with a similar sensitivity profile, was revealed.
У животных основной группы область оперативного вмешательства имела отграниченные очаги воспалительного процесса с гнойным отделяемым из свищевых ходов. Инфекционный процесс не распространялся на смежные сегменты конечности (фиг. 1). На рентгенограммах, выполненных на 21-е сутки с момента операции, выявлена секвестрация зоны костной раны (фиг. 2). При морфологическом исследовании тканевых блоков из области хирургического вмешательства подтверждено наличие хронического инфекционного процесса в области сформированного 3 недели назад дефекта костной ткани (остеомиелита): определялся дефект костной ткани, заполненный лейкоцитами и костными секвестрами. Надкостница и эндоост были инфильтрированы лейкоцитами, между ними и подлежащей костной тканью определялись клеточные элементы формирующейся соединительной ткани (фиг. 3). Таким образом, получена модель локализованного хронического остеомиелитического дефекта (см. фиг. 1, 2, 3).In animals of the main group, the area of surgical intervention had delimited foci of the inflammatory process with purulent discharge from fistulous passages. The infectious process did not extend to adjacent limb segments (Fig. 1). On radiographs performed on the 21st day after the operation, sequestration of the bone wound zone was revealed (Fig. 2). A morphological study of tissue blocks from the surgical area confirmed the presence of a chronic infectious process in the area of bone tissue defect (osteomyelitis) formed 3 weeks ago: a bone tissue defect filled with white blood cells and bone sequestration was determined. The periosteum and endoost were infiltrated with leukocytes, between them and the underlying bone tissue, the cellular elements of the forming connective tissue were determined (Fig. 3). Thus, a model of localized chronic osteomyelitis defect was obtained (see Figs. 1, 2, 3).
При исследовании контрольной группы (не инфицированный костный дефект) во все сроки наблюдения, не отмечено признаков воспаления в области оперативного вмешательства (фиг. 4). При морфологическом исследовании у животных контрольной группы, определяли остаточные полости с тонкими стенками и единичными костными балками без признаков воспалительного процесса, на фоне процесса восстановления костного мозга (фиг. 5).When examining the control group (non-infected bone defect) at all follow-up periods, there were no signs of inflammation in the area of surgical intervention (Fig. 4). During a morphological study in animals of the control group, residual cavities with thin walls and single bone beams without signs of an inflammatory process were determined against the background of the bone marrow recovery process (Fig. 5).
В группе сравнения при воспроизведении классической модели остеомиелита без использования заселенной патогенной флорой гемостатической губки у большинства животных (n=8) развивались разлитые очаги инфекционного процесса с распространением на смежные сегменты конечности (фиг. 6). В связи с этим зачастую развивалась генерализация инфекции, что в 6 случаях (60%) привело к гибели экспериментального животного. При использовании разработанной модели локализованного метафизарного хронического остеомиелитического дефекта морфологическая картина области остеомиелитического дефекта не отличалась от классической модели остеомиелита без применения заселенной патогенной флорой гемостатической губки и от описанных моделей остеомиелита в литературе. Гибели животных, а также распространения очага инфекции на смежные сегменты при создании оригинальной модели локализованного метафизарного хронического остеомиелитического дефекта не отмечено.In the comparison group, when reproducing the classical model of osteomyelitis without using the hemostatic sponge populated by the pathogenic flora, most animals (n = 8) developed spilled foci of the infectious process with spread to adjacent limb segments (Fig. 6). In this regard, the generalization of infection often developed, which in 6 cases (60%) led to the death of the experimental animal. Using the developed model of localized metaphysical chronic osteomyelitis defect, the morphological picture of the osteomyelitis defect region did not differ from the classical model of osteomyelitis without the use of a hemostatic sponge populated by the pathogenic flora and from the described models of osteomyelitis in the literature. The death of animals, as well as the spread of the focus of infection to adjacent segments when creating an original model of localized metaphysial chronic osteomyelitis defect, was not noted.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2016117035A RU2622209C1 (en) | 2016-04-28 | 2016-04-28 | Method for localized metaphyseal chronic osteomyelitis simulation in rabbit |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2016117035A RU2622209C1 (en) | 2016-04-28 | 2016-04-28 | Method for localized metaphyseal chronic osteomyelitis simulation in rabbit |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2622209C1 true RU2622209C1 (en) | 2017-06-13 |
Family
ID=59068405
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2016117035A RU2622209C1 (en) | 2016-04-28 | 2016-04-28 | Method for localized metaphyseal chronic osteomyelitis simulation in rabbit |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2622209C1 (en) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU175628U1 (en) * | 2017-05-11 | 2017-12-12 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Российский ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии им. Р.Р. Вредена" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "РНИИТО им. Р.Р. Вредена" Минздрава России) | DEVICE FOR THE FORMATION OF STANDARDIZED DEFECTS OF THE CARTILAGE SURFACE OF THE JOINTS IN THE EXPERIMENT |
| RU2720838C1 (en) * | 2019-11-28 | 2020-05-13 | федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Приволжский исследовательский медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО "ПИМУ" Минздрава России) | Method for simulating chronic osteomyelitis |
Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| SU1674218A1 (en) * | 1989-08-02 | 1991-08-30 | Институт Травматологии И Ортопедии Восточно-Сибирского Филиала Со Амн Ссср | Method for simulation of chronic hematogenic osteomyelitis |
| RU2129735C1 (en) * | 1995-07-19 | 1999-04-27 | Читинская областная клиническая больница N 1 | Method for modeling traumatic osteomyelitis |
| RU2265891C2 (en) * | 2003-04-02 | 2005-12-10 | Государственное учреждение "Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт фтизиопульмонологии МЗ РФ" | Method for modeling tuberculous omarthritis |
| CN102068693A (en) * | 2009-11-20 | 2011-05-25 | 复旦大学 | Application of complete Freund adjuvant (CFA) to preparation of tibia inflammatory pain model |
-
2016
- 2016-04-28 RU RU2016117035A patent/RU2622209C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| SU1674218A1 (en) * | 1989-08-02 | 1991-08-30 | Институт Травматологии И Ортопедии Восточно-Сибирского Филиала Со Амн Ссср | Method for simulation of chronic hematogenic osteomyelitis |
| RU2129735C1 (en) * | 1995-07-19 | 1999-04-27 | Читинская областная клиническая больница N 1 | Method for modeling traumatic osteomyelitis |
| RU2265891C2 (en) * | 2003-04-02 | 2005-12-10 | Государственное учреждение "Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт фтизиопульмонологии МЗ РФ" | Method for modeling tuberculous omarthritis |
| CN102068693A (en) * | 2009-11-20 | 2011-05-25 | 复旦大学 | Application of complete Freund adjuvant (CFA) to preparation of tibia inflammatory pain model |
Non-Patent Citations (3)
| Title |
|---|
| KISHOR C et al. Phage therapy of staphylococcal chronic osteomyelitis in experimental animal model. Indian J Med Res. 2016 Jan;143(1):87-94. SCHULZ S et al. Chronic osteomyelitis in a new rabbit model J Invest Surg. 2001 Mar-Apr;14(2):121-31. * |
| КОТЛЯРОВ В. Н. Способ моделирования хронического остеомиелита. Забайкальский медицинский вестник, 1998, N1-3, С. 45-47. * |
| КОТЛЯРОВ В. Н. Способ моделирования хронического остеомиелита. Забайкальский медицинский вестник, 1998, N1-3, С. 45-47. KISHOR C et al. Phage therapy of staphylococcal chronic osteomyelitis in experimental animal model. Indian J Med Res. 2016 Jan;143(1):87-94. SCHULZ S et al. Chronic osteomyelitis in a new rabbit model J Invest Surg. 2001 Mar-Apr;14(2):121-31. * |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU175628U1 (en) * | 2017-05-11 | 2017-12-12 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Российский ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии им. Р.Р. Вредена" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "РНИИТО им. Р.Р. Вредена" Минздрава России) | DEVICE FOR THE FORMATION OF STANDARDIZED DEFECTS OF THE CARTILAGE SURFACE OF THE JOINTS IN THE EXPERIMENT |
| RU2720838C1 (en) * | 2019-11-28 | 2020-05-13 | федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Приволжский исследовательский медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО "ПИМУ" Минздрава России) | Method for simulating chronic osteomyelitis |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Daif | Effect of autologous platelet‐rich plasma on bone regeneration in mandibular fractures | |
| Alworth et al. | Laboratory reptile surgery: principles and techniques | |
| Tiemann et al. | Principles of the therapy of bone infections in adult extremities: Are there any new developments? | |
| van Houdt et al. | The performance of CPC/PLGA and Bio‐Oss® for bone regeneration in healthy and osteoporotic rats | |
| RU2622209C1 (en) | Method for localized metaphyseal chronic osteomyelitis simulation in rabbit | |
| Togo et al. | Usefulness of absorbable sutures in preventing surgical site infection in hepatectomy | |
| Li et al. | Drill hole models to investigate bone repair | |
| Helbig et al. | A new sequential animal model for infection-related non-unions with segmental bone defect | |
| Robertson et al. | Failure of indomethacin and radiation to prevent blast-induced heterotopic ossification in a sprague-dawley rat model | |
| RU2640391C1 (en) | Method for treatment tactics selection for patients with periprosthetic infection | |
| RU2578818C1 (en) | Method for simulating osteomyelitis | |
| Dincel et al. | Histopathological and histomorphometric investigation of the effects of different irrigation solutions on Achilles tendon healing in rats | |
| Altmeyer et al. | Wound healing and skin physiology | |
| RU2129735C1 (en) | Method for modeling traumatic osteomyelitis | |
| RU2421823C1 (en) | Method of simulating tubercular osteitis of various severities | |
| RU2720838C1 (en) | Method for simulating chronic osteomyelitis | |
| RU2802431C1 (en) | Method of simulation of posttraumatic compression bone defect | |
| Marwah | Textbook of Surgery for Dental Students | |
| RU2195709C1 (en) | Method for simulation of surgical wound | |
| RU2433794C2 (en) | Method of modelling stimulation of reparative osteogenesis with extract of fetal bone tissue cells | |
| SU1359795A1 (en) | Method of simulating post-traumatic osteomyelitis | |
| RU2533031C1 (en) | Method for nasal cavity repair in partial or complete absence of inferior nasal conchas in patients suffering from empty nose syndrome | |
| Senn | Principles of surgery | |
| RU179633U1 (en) | Device for reproducing peritonitis in rats | |
| Rein et al. | 3D implant of copolyamide associated with thermoplastic elastomer (PCTPE) for tracheal repair in rabbits (Oryctolagus cuniculus): preliminary study |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20180429 |