RU2571858C1 - РЕКОМБИНАЦИОННАЯ КАССЕТА, СОДЕРЖАЩАЯ ГЕНЫ EP153R И EP402R ШТАММА Ф-32 ВИРУСА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ И РЕКОМБИНАНТНЫЙ ШТАММ DswCongo/FranceLectinCD2 ВИРУСА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ - Google Patents

РЕКОМБИНАЦИОННАЯ КАССЕТА, СОДЕРЖАЩАЯ ГЕНЫ EP153R И EP402R ШТАММА Ф-32 ВИРУСА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ И РЕКОМБИНАНТНЫЙ ШТАММ DswCongo/FranceLectinCD2 ВИРУСА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ Download PDF

Info

Publication number
RU2571858C1
RU2571858C1 RU2014133432/10A RU2014133432A RU2571858C1 RU 2571858 C1 RU2571858 C1 RU 2571858C1 RU 2014133432/10 A RU2014133432/10 A RU 2014133432/10A RU 2014133432 A RU2014133432 A RU 2014133432A RU 2571858 C1 RU2571858 C1 RU 2571858C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
strain
virus
swine fever
african swine
fever virus
Prior art date
Application number
RU2014133432/10A
Other languages
English (en)
Inventor
Галина Сергеевна Бурмакина
Юрий Петрович Моргунов
Илья Андреевич Титов
Ксения Александровна Мима
Денис Владимирович Колбасов
Александр Сергеевич Малоголовкин
Original Assignee
Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии filed Critical Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии
Priority to RU2014133432/10A priority Critical patent/RU2571858C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2571858C1 publication Critical patent/RU2571858C1/ru

Links

Images

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Изобретение относится к области ветеринарной вирусологии и генной инженерии. Предложен рекомбинантный штамм вируса африканской чумы свиней с заменой генов EP153R и EP402R, содержащий репортерный ген EGFP, кодирующий зеленый флюоресцентный белок. Штамм DswCongo/FranceLectinCD2 получен из аттенуированного штамма КК-262 вируса африканской чумы свиней путем гомологичной рекомбинации. Штамм содержит в своем составе гены EP153R и EP402R из штамма ФК-32 вируса АЧС. Рекомбинантный штамм является непатогенным для свиней при внутримышечном заражении в дозе 2*106 ГАЕ 50/см3. Также предложена рекомбинационная кассета, которая была использована для получения рекомбинантного штамма DswCongo/FranceLectinCD2, представляющая собой плазмиду на основе вектора pUC19, содержащая фрагменты генов EP152R и EP364R штамма КК-262 вируса АЧС, полноразмерные гены EP153R и EP402R штамма Ф-32, а также репортерный ген EGFP. Изобретение может быть использовано в научно-исследовательских институтах для изучения роли белков вируса АЧС в репродукции вируса в культурах клеток, в восприимчивых животных, а также их функций в модуляции иммунного ответа. 2 н.п. ф-лы, 2 ил., 1 табл., 3 пр.

Description

Изобретение относится к области ветеринарной вирусологии и генной инженерии, в частности к штаммам вируса африканской чумы свиней (АЧС), и может быть использовано в научно-исследовательских институтах для изучения роли белков вируса АЧС (C-type lectin-like protein и CD2v) в репродукции вируса в культурах клеток, в восприимчивых животных, а также их функций в модуляции иммунного ответа.
На сегодняшний день в России создалась напряженная обстановка по африканской чуме среди свиней. На территорию нашей страны АЧС была занесена в ноябре 2007 г., заболевание диагностировали у кабанов в Шатойском районе Республики Чечня. В последующие годы (2007-2014 гг.) вспышки болезни регистрировали еще в 35 субъектах России.
Африканская чума свиней - особо опасная болезнь свиней вирусной этиологии, характеризующаяся лихорадкой, геморрагическим диатезом, воспалительными и некродистрофическими изменениями паренхиматозных органов. АЧС относится к группе трансграничных инфекций животных, декларируемых ФАО как болезни, которые оказывают существенное влияние на экономику, торговлю и продовольственную безопасность значительного количества стран, могут легко распространиться из одной страны в другую и достигать эпидемических масштабов. К африканской чуме свиней восприимчивы домашние и дикие свиньи, независимо от возраста. Вирус АЧС также инфицирует отдельных представителей клещей рода Ornithodoros.
В соответствии с классификацией, установленной Международной комиссией по таксономии вирусов (International Committee on Taxonomy of Viruses - ICTV), вирус АЧС является уникальным представителем семейства Asfarviridae, рода Asfivirus. Геном вируса представлен линейной двухцепочечной молекулой ДНК, размером от 170 до 190 тыс. п.о.
Несмотря на многолетние исследования, до сих пор не разработаны эффективные средства специфической профилактики АЧС. Неоднократные попытки создания «классических» инактивированных и живых аттенуированных вакцин, ДНК-вакцин и вакцин на основе рекомбинантных антигенов не увенчались успехом.
В странах Африканского, Американского и Европейского континентов выделено более 400 штаммов и изолятов вируса АЧС. Данные исследований различных штаммов демонстрируют, что вирус АЧС обладает выраженным плюралитетом по патогенности, иммуногенности, антигенности, способности вызывать гемадсорбцию [3]. По результатам Bastos et all., 2003 получены данные о существовании 22 генотипов вируса АЧС, на основе филогенетического анализа участка гена р72 [5]. Все отмеченные генотипы вируса циркулируют на территории африканского континента и могут быть субтипированы на группы и субтипы с использованием анализа нуклеотидных последовательностей вариабельных областей генома [4]. Генотипирование вируса АЧС позволило проследить географическое распространение и молекулярную эволюцию возбудителя, однако абсолютно не коррелировало с данными о протективных свойствах различных изолятов.
Предположения о существовании нескольких иммунологических типов вируса АЧС появились в 30-х годах прошлого столетия и получили экспериментальное подтверждение на рубеже 50-60 годов. De Tray D. обнаружил антигенные различия африканских изолятов Хинде, Уганда, Тенгани в реакции задержки гемадсорбции [3]. Используя эту реакцию и иммунологическую пробу на животных, Malmquist W. доказал существование антигенной множественности изолятов, выделенных в Африке [6]. Им установлено семь иммунологических и серологических типов с референс-штаммами: Л-57, Л-60, Хинде-2, Родезия, Дакар, 2743, Мозамбик. Однако представители даже одного иммунологического типа сильно отличались между собой по фенотипическим и биологическим свойствам, что позволило предположить участие регуляторных и репродуктивных систем вируса в данном феномене.
Согласно разработанной в ГНУ ВНИИВВиМ Россельхозакадемии классификации, в основу которой положены результаты РЗГАд типоспецифическими сыворотками и иммунобиологической пробы на свиньях, имеющиеся в коллекции института изоляты вируса АЧС разделены на 8 серогрупп [1]. Наиболее изученными являются штаммы вируса, отнесенные к I-IV серогруппам. Референс-штаммом I-ой серогруппы определен штамм «Лиссабон 57», II-ой - «Конго 49», III-ей - «Мозамбик 78», IV-ой «Франция 32». Генетические маркеры, определяющие принадлежность к определенной серогруппе, не были выявлены.
Филогенетический анализ более 70 штаммов вируса АЧС, проведенный в ГНУ ВНИИВВиМ Россельхозакадемии, показал корреляцию между генетическими кластерами на основе нуклеотидных последовательностей генов EP153R и EP402R и серогруппами. Полученный рекомбинантный вирус АЧС позволит определить роль С-type lectin-like protein и CD2v в модуляции механизмов иммунного ответа.
Современные исследования по изучению роли отдельных генов вируса АЧС в основном направлены на создание рекомбинантных (химерных) вирусов с измененными или удаленными генами с дальнейшим изучением фенотипических свойств данных вирусов на культурах клеток и восприимчивых животных.
Среди штаммов вируса АЧС различают вирулентные штаммы, выделенные от инфицированных животных, или авирулентные штаммы, полученные путем аттенуации вируса в культурах клеток гомологичного или гетерологичного происхождения [2]. Однако данные штаммы не могут быть использованы для изучения роли отдельных генетических элементов формировании фенотипа вируса.
Целью данного изобретения является получение нового рекомбинантного авирулентного штамма вируса африканской чумы свиней DswCongo/FranceLectinCD2, обладающего стабильными иммуногенными, гемадсорбирующими и патогенными свойствами для изучения роли белков вируса АЧС (C-type lectin-like protein и CD2v) в репродукции вируса в культурах клеток, в восприимчивых животных, а также их функций в модуляции иммунного ответа.
Поставленная цель достигается путем создания рекомбинантного штамма вируса АЧС с измененными генами EP153R и EP402R, содержащего репортерный ген EGFP. Штамм DswCongo/FranceLectinCD2 получен из аттенуированного штамма KK-262 вируса африканской чумы свиней путем гомологичной рекомбинации. Рекомбинационная кассета представляет собой рекомбинантную плазмиду на основе вектора pUC19, содержащая фрагменты генов EP152R и EP364R (плечи рекомбинации), штамма KK-262 вируса АЧС, полноразмерные гены EP153R и EP402R штамма Ф-32, а также репортерный ген EGFP (Рис. 1). Рекомбинантный штамм вируса содержит в своем составе гены EP153R и EP402R из штамма ФК-32 вируса АЧС, кодирующие белки C-type lectin-like protein и CD2v соответственно. Рекомбинантные клоны вируса были получены при одновременной трансфекции культуры клеток COS-1 рекомбинационной кассетой и инфицировании ее вирусом АЧС штамм KK-262 (Рис. 2). Для дальнейшего скриннинга клонов использовали метод предельных разведений (12 последовательных пассажей на перевиваемой культуре клеток COS-1) и селекции мутантных вариантов вируса по репортерной флюоресценции гена EGFP. Чистота клональной популяции рекомбинантного вируса была подтверждена в ГПДР со специфическими праймерами, фланкирующими фрагмент гена EP402R штамма KK-262 вируса АЧС. Отсутствие нуклеотидных замен в сайте рекомбинации определяли нуклеотидным секвенированием фрагментов генома вируса.
Полученный рекомбинантный авирулентный штамм обозначен как штамм «DswCongo/FranceLectinCD2» и депонирован в Коллекции микроорганизмов ГНУ ВНИИ ветеринарной вирусологии и микробиологии Россельхозакадемии под №3076.
Молекулярно-генетические свойства.
Проводили генетическую идентификацию полученного рекомбинантного штамма DswCongo/FranceLectinCD2 вируса африканской чумы свиней и сравнительный анализ нуклеотидной последовательности фрагмента генома. Использовали полимеразную цепную реакцию (ПЦР) с последующим секвенированием продуктов амплификации. ДНК выделяли из 0,2 мл культуры клеток макрофагов свиней, инфицированной рекомбинантным вирусом с помощью набора QIAamp DNA Mini Kit (Qiagen, Германия), согласно инструкции изготовителя. ПНР проводили с праймерами, комплементарными фрагментам генов EP152R, EP153R, EP402R, EP364R и представленными в таблице 1.
Figure 00000001
Типовая принадлежность.
Определение серотипа проводили в реакции задержки гемадсорбции (РЗГАд) с использованием полученных ранее в ГНУ ВНИИВВиМ Россельхозакадемии референс-сывороток. По результатам РЗГАд рекомбинантный штамм DswCongo/FranceLectinCD2 вируса АЧС отнесен к IV серогруппе. Тогда как штамм КК-262 вируса АЧС, из которого был получен рекомбинантный вирус, по результатам РЗГАд относится к II серогруппе.
Культуральные свойства.
Рекомбинантный штамм DswCongo/FranceLectinCD2 вируса АЧС размножается в первичных культурах клеток костного мозга свиней (KMC) и макрофагов свиней, а также в перевиваемой культуре клеток COS-1. Репродукция вируса в культуре клеток костного мозга сопровождается адсорбцией эритроцитов свиней на мембране инфицированных клеток (феномен гемадсорбции) и их последующим лизисом. В культуре клеток макрофагов свиней также отмечается округление клеток и отслоение от субстрата на 2 день после заражения. Инфицированные клетки формируют кластеры, которые разрушаются по мере репродукции вируса на 3-4 день после заражения. Репродукция вируса в культуре клеток COS-1 не сопровождается выраженным ЦПД. Накопление вируса, как в первичных, так и перевиваемой культуре клеток составляет 6,0-7,0 lg ГАЕ 50/см3.
Патогенные свойства.
Штамм DswCongo/FranceLectinCD2 вируса АЧС не является патогенным для свиней при внутримышечном заражении в дозе 2*106 ГАЕ 50/см3. У инфицированных животных отмечено кратковременное повышение температуры до 40,5-41,0°С на 3-5 день после инфицирования. Вирусная ДНК в пробах крови на 3, 5, 7, 13 и 21 день после заражения методом ПЦР в режиме реального времени не обнаруживается. Клинических признаков болезни не отмечено.
Контаминация бактериями, грибами, микоплазмами.
Рекомбинантный штамм DswCongo/FranceLectinCD2 не контаминирован бактериями, грибами, микоплазмами.
Условия хранения.
Рекомбинантный штамм DswCongo/FranceLectinCD2 хранят при минус 40°С в виде лиофилизированной культуры клеток COS-1, инфицированной рекомбинантным штаммом вируса АЧС. Периодичность освежения штамма один раз в 10 лет.
Сущность изобретения поясняется следующими примерами.
Пример 1. Создание рекомбинационной кассеты.
Для получения рекомбинантного штамма
DswCongo/FranceLectinCD2 вируса АЧС была сконструирована рекомбинационная кассета, представляющая собой рекомбинантную плазмиду на основе вектора pUC19, содержащая фрагменты генов EP152R и EP364R штамма KK-262 вируса АЧС, полноразмерные гены EP153R и EP402R штамма Ф-32, а также репортерный ген EGFP, кодирующий зеленый флюоресцентный белок, под контролем промотера р72 вируса АЧС. Фрагменты генов EP152R и EP364R штамма KK-262 являлись плечами рекомбинации. Клонирование всех фрагментов в бактериальный вектор проводили последовательно с использованием фермента Т4 ДНК-лигазы (NEB, США).
Пример 2.
Рекомбинантный штамм DswCongo/FranceLeetinCD2 получен из аттенуированного штамма KK-262 вируса африканской чумы свиней путем гомологичной рекомбинации. Рекомбинантные клоны вируса были получены при одновременной трансфекции культуры клеток COS-1 рекомбинационной кассетой и инфицировании ее штаммом KK-262 вируса АЧС. В результате гомологичной рекомбинации по плечам рекомбинации (фрагментам генов EP152R и EP364R) полученный рекомбинантный вирус содержал гены EP153R и EP402R гетерологичного штамма Ф-32, а также репортерный ген EGFP. Для дальнейшего скриннинга клонов использовали метод предельных разведений (12 последовательных пассажей на перевиваемой культуре клеток COS-1) и селекции мутантных вариантов вируса по репортерной флюоресценции за счет введенного в состав вируса гена EGFP. Чистота клональной популяции рекомбинантного вируса была подтверждена в ГШР со специфическими праймерами, фланкирующими фрагмент гена EP402R штамма KK-262 вируса АЧС. Отсутствие нуклеотидных изменений в сайте рекомбинации определяли путем нуклеотидного секвенирования.
Пример 3.
Определение типовой принадлежности рекомбинантного штамма DswCongo/FranceLectinCD2.
Типовая принадлежность рекомбинантного штамма DswCongo/FranceLectinCD2 определена в РЗГАд в культуре клеток макрофагов со специфическими референс-сыворотками II и IV серогрупп по разработанной в ГНУ ВНИИВВиМ Россельхозакадемии методике. Установлено, что специфическая референс-сыворотка IV серогруппы вызывает задержку гемадсорбции штамма DswCongo/FranceLectinCD2. На основании этих исследований рекомбинантный штамм вируса АЧС DswCongo/FranceLectinCD2 отнесен к IV серогруппе.
Краткое описание чертежей:
Рис. 1. Рекомбинационная кассета, используемая для получения рекомбинантного штамма DswCongo/FranceLectinCD2v вируса АЧС. pUC19 содержит фрагменты генов EP152R и EP364R (плечи рекомбинации), штамма KK-262 вируса АЧС, полноразмерные гены EP153R и EP402R штамма Ф-32, а также репортерный ген EGFP под контролем р72 промотора.
Рис. 2. Схема получения рекомбинантного вируса DswCongo/FranceLectinCD2. Рекомбинантные клоны вируса были получены при одновременной трансфекции культуры клеток COS-1 рекомбинационной кассетой и инфицировании ее вирусом АЧС штамм KK-262.
Используемые источники
1. Сероиммунологическая классификация природных изолятов вируса африканской чумы свиней. И.Ф. Вишняков, Н.И. Митин, Ю.И. Петров // Актуальные вопросы ветеринарной вирусологии: Материалы научно-практической конференции ВНИИВВиМ. - Покров. - 1995. С. 141-143.
2. Черятников Л.Л. Получение аттенуированных вариантов из различных изолятов вируса АЧС и их сравнительная оценка. / Л.Л. Черятников, Ю.И. Петров, Н.И. Митин // Вопросы ветеринарной вирусологии, микробиологии и эпизоотологии 1992. - 4.1. - С. 56.
3. D.Е. De Tray, African swine fever / De Tray D.E., // Adv. Vet. Sci. Comp. Med. - 1963. - №19. P. 299-333.
4. Enhanced discrimination of African swine fever virus isolates through nucleotide sequencing of the p54, p72, and pB602L (CVR) genes / Gallardo C., Mwaengo D.M., Macharia J.M., Arias M., Taracha E.A., Soler A. // Virus Genes. - 2009. - №38. - P. 85-95.
5. Genotyping field strains of African swine fever virus by partial p72 gene characterization / Bastos ADS, Penrith ML, Cruciere C, Edrich JL, Hutchings G, Roger F, Couacy-Hymann E, Thomson GR // Arch. Virol. - 2003. - №148. P. 693-706.
6. W. Malmquist, D. Hay, Haemadsorption and cytopathic effect produced by African swine fever virus in swine bone marrow and buffy coat cultures / Malmquist W., Hay D. // J. Vet. Res. - 1960. - №21. P. 104-108.

Claims (2)

1. Рекомбинационная кассета для получения рекомбинантного штамма DswCongo/FranceLectinCD2 представляет собой плазмиду на основе вектора pUC19, включающую генетические элементы вируса АЧС в следующей последовательности: фрагмент гена EP152R штамма КК-262 вируса АЧС, полноразмерные гены EP153R и EP402R штамма Ф-32, репортерный ген EGFP под контролем р72 промотора и фрагмент гена EP364R штамма КК-262 вируса АЧС.
2. Рекомбинантный штамм DswCongo/FranceLectinCD2 вируса африканской чумы свиней с заменой генов EP153R и EP402R штамма КК-262 на гены EP153R и EP402R штамма Ф-32, содержащий репортерный ген EGFP под контролем р72 промотора, для изучения роли белков вируса АЧС (C-type lectin-like protein и CD2v) в репродукции вируса в культурах клеток, в восприимчивых животных, а также их функций в модуляции иммунного ответа.
RU2014133432/10A 2014-08-13 2014-08-13 РЕКОМБИНАЦИОННАЯ КАССЕТА, СОДЕРЖАЩАЯ ГЕНЫ EP153R И EP402R ШТАММА Ф-32 ВИРУСА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ И РЕКОМБИНАНТНЫЙ ШТАММ DswCongo/FranceLectinCD2 ВИРУСА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ RU2571858C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2014133432/10A RU2571858C1 (ru) 2014-08-13 2014-08-13 РЕКОМБИНАЦИОННАЯ КАССЕТА, СОДЕРЖАЩАЯ ГЕНЫ EP153R И EP402R ШТАММА Ф-32 ВИРУСА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ И РЕКОМБИНАНТНЫЙ ШТАММ DswCongo/FranceLectinCD2 ВИРУСА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2014133432/10A RU2571858C1 (ru) 2014-08-13 2014-08-13 РЕКОМБИНАЦИОННАЯ КАССЕТА, СОДЕРЖАЩАЯ ГЕНЫ EP153R И EP402R ШТАММА Ф-32 ВИРУСА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ И РЕКОМБИНАНТНЫЙ ШТАММ DswCongo/FranceLectinCD2 ВИРУСА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2571858C1 true RU2571858C1 (ru) 2015-12-20

Family

ID=54871505

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2014133432/10A RU2571858C1 (ru) 2014-08-13 2014-08-13 РЕКОМБИНАЦИОННАЯ КАССЕТА, СОДЕРЖАЩАЯ ГЕНЫ EP153R И EP402R ШТАММА Ф-32 ВИРУСА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ И РЕКОМБИНАНТНЫЙ ШТАММ DswCongo/FranceLectinCD2 ВИРУСА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2571858C1 (ru)

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109652449A (zh) * 2018-12-07 2019-04-19 扬州大学 一种ep153r与ep402r基因共表达重组腺病毒载体构建及腺病毒包装方法
CN111471089A (zh) * 2019-01-24 2020-07-31 浙江海隆生物科技有限公司 一种重组的非洲猪瘟病毒cd2v亚单位蛋白及其制备方法和应用
CN114058642A (zh) * 2021-11-26 2022-02-18 中国农业科学院北京畜牧兽医研究所 表达非洲猪瘟病毒ep153r-ep402r蛋白的重组腺病毒及构建方法

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2452511C1 (ru) * 2010-11-16 2012-06-10 Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии Аттенуированный штамм вируса африканской чумы свиней 2-го серотипа для разработки диагностических и вакцинных препаратов
WO2012079016A1 (en) * 2010-12-10 2012-06-14 Brandeis University Compositions and methods for the detection and analysis of african swine fever virus

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2452511C1 (ru) * 2010-11-16 2012-06-10 Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии Аттенуированный штамм вируса африканской чумы свиней 2-го серотипа для разработки диагностических и вакцинных препаратов
WO2012079016A1 (en) * 2010-12-10 2012-06-14 Brandeis University Compositions and methods for the detection and analysis of african swine fever virus

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
GALLARDO C. et al., "Enhanced discrimination of African swine fever virus isolates through nucleotide sequencing of the p54, p72, and pB602L (CVR) genes", Virus Genes. 2009 Feb;38(1):85-95. BASTOS A.D. et al., "Genotyping field strains of African swine fever virus by partial p72 gene characterisation", Arch Virol. 2003 Apr;148(4):693-706. *

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109652449A (zh) * 2018-12-07 2019-04-19 扬州大学 一种ep153r与ep402r基因共表达重组腺病毒载体构建及腺病毒包装方法
CN111471089A (zh) * 2019-01-24 2020-07-31 浙江海隆生物科技有限公司 一种重组的非洲猪瘟病毒cd2v亚单位蛋白及其制备方法和应用
CN111471089B (zh) * 2019-01-24 2023-11-24 浙江海隆生物科技有限公司 一种重组的非洲猪瘟病毒cd2v亚单位蛋白及其制备方法和应用
CN114058642A (zh) * 2021-11-26 2022-02-18 中国农业科学院北京畜牧兽医研究所 表达非洲猪瘟病毒ep153r-ep402r蛋白的重组腺病毒及构建方法

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2654586C2 (ru) Рекомбинационная кассета, содержащая гены EP153R и EP364R штамма Congo (КК-262) вируса африканской чумы свиней и рекомбинантный штамм ΔСongoCD2v вируса африканской чумы свиней
JP6845266B2 (ja) 多価組換型鳥ヘルペスウイルス及び鳥類を免疫化するためのワクチン
Monteagudo et al. BA71ΔCD2: a new recombinant live attenuated African swine fever virus with cross-protective capabilities
US10240131B2 (en) Type II pseudorabies virus attenuated strain, its preparation method and application
US9528094B2 (en) Attenuated African swine fever virus vaccine based in the deletion of MGF genes
CN110551695A (zh) 非洲猪瘟病毒四基因缺失弱毒株及其应用
JP2019520827A (ja) 合理的に開発されたアフリカ豚コレラ弱毒化ウイルス株による、ジョージア2007単離株親ウイルスの攻撃に対する防護
WO2022218325A1 (zh) 一种基因缺失的减毒非洲猪瘟病毒毒株及其构建方法和应用
CN109439634B (zh) 伪狂犬病病毒基因工程弱毒疫苗株及其应用
CN112063592A (zh) 非洲猪瘟多基因联合缺失减毒株的构建及作为疫苗的应用
CN110527669B (zh) 一种猪伪狂犬病病毒基因缺失毒株及其构建方法和应用
CN114107228B (zh) 缺失十二个基因的减毒非洲猪瘟病毒株的构建及其作为疫苗的应用
Ball et al. Partial characterization of new adenoviruses found in lizards
CN111748563A (zh) 非洲猪瘟基因缺失弱毒株的构建及其作为疫苗的应用
CN112280753B (zh) 一种伪狂犬病病毒TK、gE、gI和gG基因缺失株及其制备方法和应用
RU2571858C1 (ru) РЕКОМБИНАЦИОННАЯ КАССЕТА, СОДЕРЖАЩАЯ ГЕНЫ EP153R И EP402R ШТАММА Ф-32 ВИРУСА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ И РЕКОМБИНАНТНЫЙ ШТАММ DswCongo/FranceLectinCD2 ВИРУСА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ
CN112063633A (zh) 一种天然免疫抑制基因缺失的减毒非洲猪瘟病毒株及应用
CN111593028A (zh) 一种缺失mgf360-9l基因的非洲猪瘟病毒减毒株及其应用
CN115717129A (zh) 一种非洲猪瘟病毒基因缺失的重组减毒株及其制备方法与应用
CN106929485B (zh) 伪狂犬病毒基因工程gB重组弱毒疫苗株及应用
CN114015660B (zh) 缺失十个基因的减毒非洲猪瘟病毒株的构建及其作为疫苗的应用
CN115851623A (zh) 非洲猪瘟mgf505-2r基因缺失减毒株的构建及作为疫苗的应用
Sprygin et al. Capripoxviruses, leporipoxviruses, and orthopoxviruses: Occurrences of recombination
US9885020B2 (en) ORF7 deficient varicella virus, vaccine comprising the virus and use thereof
Yang et al. Isolation and molecular characterization of feline herpesvirus 1 from naturally infected Korean cats

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20170814