RU2303630C1 - Dense nutrient medium for cholera vibrio cultivation - Google Patents
Dense nutrient medium for cholera vibrio cultivation Download PDFInfo
- Publication number
- RU2303630C1 RU2303630C1 RU2006101948/13A RU2006101948A RU2303630C1 RU 2303630 C1 RU2303630 C1 RU 2303630C1 RU 2006101948/13 A RU2006101948/13 A RU 2006101948/13A RU 2006101948 A RU2006101948 A RU 2006101948A RU 2303630 C1 RU2303630 C1 RU 2303630C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- sodium
- cultivation
- nutrient medium
- cholera vibrio
- distilled water
- Prior art date
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к микробиологии, именно к получению питательных сред, которые создают оптимальные условия для выделения и культивирования холерного вибриона.The invention relates to microbiology, namely to obtain nutrient media that create optimal conditions for the isolation and cultivation of cholera vibrio.
При бактериологическом исследовании на холеру используют питательную среду, включающую, г/л: агар-агар 20,0; гидролизат говяжьего мяса, содержащий аминного азота, 0-12%, натрий хлористый 5,0; 20% гидроокись натрия 0,002; дистиллированная вода до 1 л (Справочник по микробиологическим и вирусологическим методам исследования Биргер М.О., 1972, с.53.)In a bacteriological study of cholera, a nutrient medium is used, including, g / l: agar-agar 20.0; beef hydrolyzate containing amine nitrogen, 0-12%, sodium chloride 5.0; 20% sodium hydroxide 0.002; distilled water up to 1 liter (Handbook of microbiological and virological research methods Birger M.O., 1972, p. 53.)
Недостатком данной среды является ее дороговизна.The disadvantage of this environment is its high cost.
Наиболее близкой к предлагаемой питательной среде является среда для культивирования холерного вибриона, содержащая, г/л: панкреатический гидролизат казеина 4,0; панкреатический гидролизад кормовых дрожжей 4,0, в качестве питательной основы - натрий хлористый 5,0; натрий фосфорнокислый двузамещенный 0,4; натрий пиросернистокислый (метабисульфит) 0,5; агар 14,0 и дистиллированную воду до литра (Справочник по микробиологическим питательным средам. Под ред. Меджидова М.М. Махачкала, 1989, с.66.)Closest to the proposed nutrient medium is a medium for the cultivation of cholera vibrio, containing, g / l: pancreatic hydrolyzate of casein 4.0; pancreatic hydrolysis of feed yeast 4.0, as a nutritional base - sodium chloride 5.0; disubstituted sodium phosphate 0.4; sodium pyrosulphate (metabisulphite) 0.5; agar 14.0 and distilled water to a liter (Handbook of microbiological culture media. Edited by M. Medzhidov Makhachkala, 1989, p. 66.)
Недостатком данной среды является ее высокая себестоимость, сложность приготовления.The disadvantage of this environment is its high cost, the complexity of the preparation.
Целью изобретения является получение качественной, дешевой питательной среды для культивирования холерного вибриона.The aim of the invention is to obtain high-quality, cheap nutrient medium for the cultivation of cholera vibrio.
Сущность предлагаемого изобретения заключается в том, что питательная среда содержит питательную основу - ферментативный гидролизат соевых бобов и стимулирующую добавку - натрий сернистокислый при следующем соотношении ингредиентов, г/л:The essence of the invention lies in the fact that the nutrient medium contains a nutrient base - an enzymatic hydrolyzate of soybeans and a stimulating additive - sodium sulfite in the following ratio of ingredients, g / l:
В качестве исходного сырья используют сою, плоды которой - бобы содержат в среднем 40% белка, кроме того, соя богата микроэлементами и витаминами. Как известно (Y.P.Yupta, 1987), соевые белки характеризуются повышенным содержанием глутаминовой и аспарагиновой кислот, поставляющих макроэргические связи. Соевые белки содержат также большое количество таких незаменимых аминокислот, как лизин, лейцин, аргинин. Имеются также сведения о способности лейцина, как аминокислоты с разветвленной белковой цепью, инициировать синтез белка (Е.И.Чазов, X.С.Морган (США), 1989).Soy is used as a raw material, the fruits of which - beans contain an average of 40% protein, in addition, soy is rich in trace elements and vitamins. As is known (Y.P. Yupta, 1987), soy proteins are characterized by an increased content of glutamic and aspartic acids, which supply macroergic bonds. Soy proteins also contain a large number of essential amino acids such as lysine, leucine, arginine. There is also information about the ability of leucine, as branched chain amino acids, to initiate protein synthesis (E.I. Chazov, X. S. Morgan (USA), 1989).
Приготовление питательной основы для выращивания микроорганизмов заключается в следующем. Плоды сои - бобы в количестве 0,5 кг пятикратно вымачивают в 5 л горячей воды в течение 1 суток, причем последний настой с бобами кипятят в течение 40 мин. Затем настой сливают в 10 л баллон, охлаждают, бобы измельчают мясорубкой и помещают в настой. Добавляют поджелудочную железу КРС из расчета 20,0 на 1 л, устанавливают рН до 8,2 20% раствором натрия гидроокиси в количестве 3 мл, добавляют 1% хлороформа. Гидролиз ведут в термокамере при температуре 37°С в течение 3 сут. Первые 2 ч смесь перемешивают через каждые 15 мин, по 5 в последующем смесь перемешивают через каждые 6 ч. Ежедневно измеряют уровень аминного азота, который на 3 сутки составил 0,6±0,05%.The preparation of a nutrient base for growing microorganisms is as follows. Soy fruits - beans in an amount of 0.5 kg are soaked five times in 5 l of hot water for 1 day, and the last infusion with beans is boiled for 40 minutes. Then the infusion is poured into a 10 liter cylinder, cooled, the beans are minced with a meat grinder and placed in the infusion. The cattle pancreas is added at the rate of 20.0 per 1 liter, the pH is adjusted to 8.2 with a 20% sodium hydroxide solution in an amount of 3 ml, and 1% chloroform is added. Hydrolysis is carried out in a heat chamber at a temperature of 37 ° C for 3 days. For the first 2 hours, the mixture is stirred every 15 minutes, 5 at a later time; the mixture is stirred every 6 hours. The level of amine nitrogen, which is 0.6 ± 0.05% daily, is measured daily.
Питательную среду на основе соевого ферментативного гидролизата для выращивания микроорганизмов готовят следящим образом. Агар микробиологический 12,0; ферментативный гидролизат из соевых бобов, разбавленный дистиллированной водой до показания аминного азота 0,08%, 110 мл, натрий хлористый 5,0; натрий фосфорнокислый 2-замещенный 4,0; дистиллированная вода до 1 литра.A nutrient medium based on soybean enzymatic hydrolyzate for growing microorganisms is prepared as follows. Microbiological agar 12.0; enzymatic hydrolyzate from soybeans, diluted with distilled water to an amine nitrogen reading of 0.08%, 110 ml, sodium chloride 5.0; 2-substituted sodium phosphate 4.0; distilled water up to 1 liter.
Среду кипятят до полного растворения ингредиентов, фильтруют через ватно-марлевый фильтр, затем устанавливают рН 7,8±0,1 с помощью 20% раствора натрия гидроокиси, добавляют стимулятор: натрий сернистокислый в концентрации 0,4 г/л. Готовую среду разливают в 0,5 л бутылки по 400,0±10,0 мл и стерилизуют в автоклаве при 0,5 атм. 30 мин. Согласно методическим указаниям по определению качества питательных сред для выращивания холерного вибриона (Инструкция по бактериологическому контролю диагностических питательных сред для холерного вибриона) готовят культуру авирулентного штамма НАГ - вибрион Р-9741. Для чего культуру, хранящуюся на полужидком агаре, высевают в 1% пептонную воду или бульон Мартена (рН 7,6-7,8). Через 18-20 ч роста с агара отбирают гладкие колонии HAT вибриона Р-9741, пересевают их на агаровые пластинки (2-пассаж). Культуру выращивают 3-6 ч при 37°С, после чего используют для контроля. Из суточной культуры готовят взвесь м.т., равной 5 ед по оптическому стандарту мутности по ГИСК им. Л.А.Тарасевича. Затем серийными десятикратными разведениями в физиологическом растворе в объеме 4,5 мл доводят до содержания в 1 мл 1000 и 100 м.к. Из данных разведений взвеси культур высевают по 0,1 мл стерильной бактериологической пипеткой по 3 чашки Петри опытной и контрольной среды. В качестве последней используют заранее проверенный высококачественный питательный щелочной агар. Выращивание производят при 37°С. Питательная среда плотная считается пригодной в том случае, если при посеве 100 и 10 м.к. тест-штамма через 12 ч выращивания вырастают соответственно не менее 30 и 1 колонии диаметром 1 мм на всех чашках.The medium is boiled until the ingredients are completely dissolved, filtered through a cotton-gauze filter, then the pH is adjusted to 7.8 ± 0.1 using a 20% sodium hydroxide solution, and a stimulant is added: sodium sulfide at a concentration of 0.4 g / l. The prepared medium is poured into 0.5 l bottles of 400.0 ± 10.0 ml and sterilized in an autoclave at 0.5 atm. 30 minutes. According to the guidelines for determining the quality of nutrient media for growing cholera vibrio (Instructions for bacteriological monitoring of diagnostic nutrient media for cholera vibrio), a culture of avirulent strain NAG - vibrio R-9741 is prepared. Why culture stored on semi-liquid agar, seeded in 1% peptone water or Marten broth (pH 7.6-7.8). After 18–20 h of growth, smooth HAT vibrio R-9741 colonies were selected from agar and transferred to agar plates (2-passage). The culture is grown for 3-6 hours at 37 ° C, after which it is used for control. A suspension of bw is prepared from the daily culture, equal to 5 units according to the optical turbidity standard according to the GISK named after L.A. Tarasevich. Then, serial ten-fold dilutions in physiological saline in a volume of 4.5 ml are adjusted to a content of 1 ml of 1000 and 100 MK From these dilutions, culture suspensions are seeded with 0.1 ml sterile bacteriological pipette of 3 Petri dishes of the experimental and control medium. As the latter, a pre-tested high-quality nutritious alkaline agar is used. Cultivation is carried out at 37 ° C. A solid nutrient medium is considered suitable if, when sowing 100 and 10 m.k. after 12 hours of cultivation, the test strain grows at least 30 and 1 colonies with a diameter of 1 mm on all plates, respectively.
Пример 1. Тест-штамм выращивали на питательной среде, содержащей, г/л: агар микробиологический 11,0; ферментативный гидродизат сои (бобы) 60,0; натрий хлористый 4,0; натрий фосфорнокислый 2-зэмещенный 3,0; натрий сернистокислый 0,3; дистиллированная вода до 1 л. При таком соотношении ингредиентов количество колоний, выросших на плотных пластинках агара, для холерного вибриона при посевной дозе 100 и 10 м.к. составило соответственно 29 и 1 колонии диаметром 1,0 мм.Example 1. The test strain was grown on a nutrient medium containing, g / l: microbiological agar 11.0; soybean enzymatic hydrodysate (beans) 60.0; sodium chloride 4.0; 2-substituted sodium phosphate 3.0; sodium sulfite 0.3; distilled water up to 1 liter. With this ratio of ingredients, the number of colonies grown on dense agar plates for cholera vibrio at a sowing dose of 100 and 10 m.k. amounted to 29 and 1 colonies with a diameter of 1.0 mm, respectively.
Пример 2. Тест-штамм выращивали на питательной среде, содержащей, г/л: агар микробиологический 12,0; ферментативный гадролизат сои (бобы) - 110,0; натрий хлористый 5,0; натрий фосфорнокислый 2-замещенный 4,0; натрий сернистокислый 0,4; дистиллированная вода до 1 л. При таком соотношении ингредиентов количество колоний, выросших на плотных пластинках агара, для холерного вибриона при посевной дозе 100 и 10 м.к. составило соответственно 45 и 4 колонии диаметром 1,5 мм.Example 2. The test strain was grown on a nutrient medium containing, g / l: microbiological agar 12.0; soy enzymatic hadrolyzate (beans) - 110.0; sodium chloride 5.0; 2-substituted sodium phosphate 4.0; sodium sulfide 0.4; distilled water up to 1 liter. With this ratio of ingredients, the number of colonies grown on dense agar plates for cholera vibrio at a sowing dose of 100 and 10 m.k. amounted to respectively 45 and 4 colonies with a diameter of 1.5 mm.
Пример 3. Тест-штамм выращивали на питательной среде, содержащей, г/л: агар микробиологический 13,0; ферментативный гидролизат сои (бобы) 160,0; натрий хлористый 6,0; натрий фосфорнокислый 2-замещенный 5,0; натрий сернистокислый 0,5; дистиллированная вода до 1 л. При таком соотношении ингредиентов количество колоний, выросших на плотных пластинах агара, для холерного вибриона при посевной дозе 100 и 10 м.к. составило соответственно 31 и 1 колонии диаметром 1,0 мм.Example 3. The test strain was grown on a nutrient medium containing, g / l: microbiological agar 13.0; soybean enzymatic hydrolyzate (beans) 160.0; sodium chloride 6.0; 2-substituted sodium phosphate 5.0; sodium sulfite 0.5; distilled water up to 1 liter. With this ratio of ingredients, the number of colonies grown on dense agar plates for cholera vibrio at a sowing dose of 100 and 10 mk amounted to 31 and 1 colonies with a diameter of 1.0 mm respectively.
Таким образом, заявленная питательная среда плотная для культивирования холерного вибриона (пример 2), приготовленная на основе ферментативного гидролизата сои (бобы), может применяться для культивирования холерного вибриона как экономически выгодная.Thus, the claimed nutrient medium is dense for the cultivation of cholera vibrio (example 2), prepared on the basis of an enzymatic hydrolyzate of soy (beans), can be used for the cultivation of cholera vibrio as cost-effective.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2006101948/13A RU2303630C1 (en) | 2006-01-24 | 2006-01-24 | Dense nutrient medium for cholera vibrio cultivation |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2006101948/13A RU2303630C1 (en) | 2006-01-24 | 2006-01-24 | Dense nutrient medium for cholera vibrio cultivation |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2303630C1 true RU2303630C1 (en) | 2007-07-27 |
Family
ID=38431699
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2006101948/13A RU2303630C1 (en) | 2006-01-24 | 2006-01-24 | Dense nutrient medium for cholera vibrio cultivation |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2303630C1 (en) |
-
2006
- 2006-01-24 RU RU2006101948/13A patent/RU2303630C1/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Под ред. М.М. МЕДЖИДОВА. Справочник по микробиологическим питательным средам, Махачкала, 1989, с.66. СИДОРОВ М.А., СКОРОДУМОВ Д.И., ФЕДОТОВ В.Б. Справочник. Определитель зоопатогенных микроорганизмов. - М.: КОЛОС, 1995, с.183. КОЗЛОВ Ю.А. Питательные среды в медицинской микробиологии. - М.: МЕДГИЗ, 1950, с.160-165. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN1197956C (en) | Lactobacillus helvetius producing antihypertensive di- and tripeptides | |
RU2433170C1 (en) | Nutrient liquid medium for culturing plague microbe of vaccine strain eb | |
US8119371B2 (en) | Process for the preparation of polymyxin B employing (PAENI) Bacillus polymyxa | |
RU2412240C1 (en) | Culture medium for growing legionella | |
RU2626568C1 (en) | Dense nutrient medium for cultivation and collection of biomass of plague microbe of ypestis ev vaccine strain | |
RU2245362C2 (en) | Nutrient medium for culturing plague microorganism vaccine strain | |
RU2415923C1 (en) | Method for production of fermentative hydrolysate of fresh white cabbage and nutritive medium for cultivation lactobacteria based thereon | |
RU2303630C1 (en) | Dense nutrient medium for cholera vibrio cultivation | |
RU2301256C1 (en) | Liquid nutrient medium for culturing cholera vibrio | |
CN107348274B (en) | Method for preparing functional beverage by fermenting jellyfish collagen peptide | |
RU2260620C1 (en) | Liquid nutrient medium for culturing plague microorganism of vaccine strain eb | |
KR102554307B1 (en) | GABA Salt Containing Live Lactic acid Bacteria and Preparing Method Thereof | |
RU2525637C2 (en) | Nutrient medium for cultivation of listeriosis causative agent | |
JP3957132B2 (en) | Separation medium for low turbidity soy sauce lactic acid bacteria, separation method for low turbidity soy sauce lactic acid bacteria using the same medium, and method for producing highly clear soy sauce using the same lactic acid bacteria | |
RU2415922C1 (en) | Nutrient medium for lactic acid bacilli cultivation | |
RU2394905C1 (en) | Nutrient medium for cultivation of plague microbe | |
RU2169472C2 (en) | Method of preparing bacterial ferment for fermented-milk product | |
RU2213779C2 (en) | Nutrient medium for isolation of lactobacilli | |
RU2270856C2 (en) | Nutrient medium for submerged culturing plague microorganism of vaccine antibiotic-resistant strain eb p2 | |
RU2410424C1 (en) | Culture medium for growing microorganism | |
RU2333948C2 (en) | Nutritional medium for growing causative agent of tularemia | |
RU2528101C2 (en) | Nutrient medium for legionella culture | |
RU2380409C1 (en) | Nutrient medium for pestilential microbe cultivation | |
RU2722071C1 (en) | Nutrient medium for cultivation of bacillus subtilis vkpm b-12079 | |
RU2681116C2 (en) | Dense nutrient medium for storage of plague microbe |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20080125 |