RU2200386C1 - Method for reproduction in crustacean (king crab) - Google Patents
Method for reproduction in crustacean (king crab) Download PDFInfo
- Publication number
- RU2200386C1 RU2200386C1 RU2001135398/13A RU2001135398A RU2200386C1 RU 2200386 C1 RU2200386 C1 RU 2200386C1 RU 2001135398/13 A RU2001135398/13 A RU 2001135398/13A RU 2001135398 A RU2001135398 A RU 2001135398A RU 2200386 C1 RU2200386 C1 RU 2200386C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- stage
- larvae
- zoea
- fry
- day
- Prior art date
Links
Images
Classifications
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A40/00—Adaptation technologies in agriculture, forestry, livestock or agroalimentary production
- Y02A40/80—Adaptation technologies in agriculture, forestry, livestock or agroalimentary production in fisheries management
- Y02A40/81—Aquaculture, e.g. of fish
Abstract
Description
Изобретение относится к рыбному хозяйству, в частности может использоваться в области промышленной аквакультуры при воспроизводстве морских ракообразных сем. Lithodes, отряд Decapoda, подотряд Anomura, сем. Lithodidae, род Paralithodes, Paralithodes camtschaticus. The invention relates to fisheries, in particular, can be used in the field of industrial aquaculture in the reproduction of marine crustaceans. Lithodes, Order Decapoda, Suborder Anomura, fam. Lithodidae, genus Paralithodes, Paralithodes camtschaticus.
Промысловое освоение камчатского краба носило чрезвычайно интенсивный характер, без соблюдения биологически обоснованных норм вылова. В результате численность популяций камчатского краба была подорвана в кратчайшие сроки. Без искусственного воспроизводства восстановление камчатского краба невозможно. The commercial development of the Kamchatka crab was extremely intense, without observing biologically sound catch standards. As a result, the population of Kamchatka crab was undermined as soon as possible. Kamchatka crab restoration is impossible without artificial reproduction.
Проблема искусственного воспроизводства камчатского краба, как возможного способа пополнения численности значительно сократившихся природных популяций, активно обсуждается в научно-технической литературе. The problem of artificial reproduction of Kamchatka crab, as a possible way to replenish the number of significantly reduced natural populations, is actively discussed in the scientific and technical literature.
Биотехнология получения личинок и их содержание в бассейнах со специально поддерживаемыми условиями увеличивает эффективность воспроизводства по сравнению с естественным на порядок и более. Biotechnology for obtaining larvae and their maintenance in pools with specially maintained conditions increases the efficiency of reproduction compared to natural by an order of magnitude or more.
Известен опыт содержания камчатского краба в аквариальных условиях (Зубкова, 1964) [1]. The experience of keeping Kamchatka crab in aquarium conditions is known (Zubkova, 1964) [1].
Цель наблюдений состояла в том, чтобы установить, как будут держать себя самки в аквариуме и как они будут питаться, а основной задачей были наблюдения за развитием икры, выведение из нее личинок и получение данных о первых жизненных стадиях личинок. The purpose of the observations was to establish how the females will behave in the aquarium and how they will feed, and the main task was to observe the development of the eggs, remove the larvae from it, and obtain data on the first life stages of the larvae.
Из двенадцати самок, живших в аквариуме, в течение года погибло семь. Гибель крабов была вызвана содержанием их в неблагоприятных условиях обитания в аквариуме. Из икры выживших самок произошел выклев личинок, после чего самки перелиняли и отложили новую икру. Of the twelve females living in the aquarium, seven died during the year. The death of crabs was caused by their content in adverse living conditions in the aquarium. From the eggs of the surviving females, the larvae hatch, after which the females molted and laid new eggs.
Самки камчатского краба содержались в проточном аквариуме. Из-за ограниченности площади и недостаточности водообмена появляется сапролегния, вызывающая значительную гибель икры. Из общего количества икры, вынашиваемой самками, выжило только 10%. Female king crab was kept in a flowing aquarium. Due to the limited area and insufficient water exchange, saprolegnia appears, causing significant death of eggs. Of the total number of eggs hatched by females, only 10% survived.
Длинная передержка самок (с осени по весну) в аквариумах при неконтролируемых условиях приводила к 90% смертности оплодотворенной икры на их плейоподах. Продолжительность выклева (66 суток) слишком велика. Это приводит к большому разбросу личинок по возрасту и усилению каннибализма. Long overexposure of females (from autumn to spring) in aquariums under uncontrolled conditions led to 90% mortality of fertilized eggs on their playopods. Hatching time (66 days) is too long. This leads to a large scatter of larvae by age and increased cannibalism.
Питание вылупившихся личинок начиналось через 3-4 дня после выклева. Отсутствие источника пищи в самом начале онтогенетического развития определяет высокую смертность еще на первой стадии - зоэа I. The feeding of hatched larvae began 3-4 days after hatching. The absence of a food source at the very beginning of ontogenetic development determines high mortality even at the first stage - zoea I.
Массовое развитие инфузорий и обрастание личинок диатомовыми водорослями Limnopora paradoxa, отсутствие контроля за параметрами среды и отсутствие дифференцированного кормления в зависимости от потребности личинок на каждой стадии развития являются причиной высокой смертности. The massive development of ciliates and the growth of larvae with Limnopora paradoxa diatoms, the lack of control over environmental parameters and the absence of differentiated feeding depending on the needs of the larvae at each developmental stage are the cause of high mortality.
Известен способ воспроизводства крабов (варианты) (патент РФ 2174750, МПК7 А 01 К 61/00) [2].A known method of reproduction of crabs (options) (RF patent 2174750, IPC 7 A 01 K 61/00) [2].
Сущность изобретения воспроизводство крабов и крабоидов заключается в том, что сбор личинок крабов производится на коллекторы, на системы коллектор - садки или на садки, которые выставляют на глубины 5-150 м в районы моря с температурой воды не выше 18oС, соленостью не ниже 28% с содержанием растворенного кислорода в воде не менее 5 мг/л. Подращивание мальков ведут от 4 месяцев до 3 лет.The essence of the invention, the reproduction of crabs and craboids lies in the fact that the collection of crab larvae is carried out on collectors, on collector-cage systems or on cages, which are exposed to depths of 5-150 m in sea areas with a water temperature of not higher than 18 o C, salinity not lower 28% with dissolved oxygen in water of at least 5 mg / l. Growing fry are from 4 months to 3 years.
Недостатком данного способа является то, что воспроизводство производится в естественных условиях, без жесткого контроля и возможности оптимизировать условия среды и режим кормления, что в конечном счете определяет выживаемость личинок. The disadvantage of this method is that reproduction is carried out in vivo, without strict control and the ability to optimize environmental conditions and feeding conditions, which ultimately determines the survival of the larvae.
Известна разработка биотехнологии камчатского краба с использованием морской воды в аппаратах типа "Акватрон" (Ковачева, 2000) [3] от эмбриональных стадий развития до малька, касающаяся в основном регулирования температурного режима. Автором отмечено, что создание оптимальных температурных условий (7-8oС) при выращивании личинок в системах замкнутого типа позволяет существенно сократить продолжительность личиночного периода развития. В процессе линьки личинки краба наиболее уязвимы. При переходе от одной личиночной стадии к другой отход составил около 10%. На стадии глаукотоэ температуру повысили до 10oС и поддерживали ее до конца эксперимента. Выживаемость приблизительно соответствовала величине этого показателя для камчатского краба, выращенного на естественной морской воде.It is known to develop Kamchatka crab biotechnology using sea water in Aquatron-type apparatuses (Kovacheva, 2000) [3] from embryonic developmental stages to fry, mainly related to temperature control. The author noted that the creation of optimal temperature conditions (7-8 o C) when growing larvae in closed systems can significantly reduce the duration of the larval period of development. In the process of molting, crab larvae are most vulnerable. When moving from one larval stage to another, the waste amounted to about 10%. At the stage of glaucoma, the temperature was increased to 10 o C and maintained until the end of the experiment. Survival approximately corresponded to the value of this indicator for the Kamchatka crab grown on natural sea water.
В качестве корма применяли науплии жаброногого рачка Artemia salina. The nauplii of the gill-footed crustacean Artemia salina were used as food.
В ходе мальковой стадии развития крабов кормили моллюсками, кальмаром, в размельченном виде и науплиями артемии. Однако в работе не представлены условия кормления, составы кормов и рационы на ранних стадиях развития, что в итоге существенно влияет на выживаемость. During the juvenile developmental stage, crabs were fed mollusks, squid, crushed and nauplii artemia. However, the work does not present feeding conditions, feed compositions and diets in the early stages of development, which ultimately significantly affects survival.
Наиболее близкое решение к заявляемому изобретению представлено в биотехнологии, рекомендуемой при получении посадочного материала камчатского краба в пилотной установке (Степанов, Смирнов, 1999) [4]. Разработанная установка с замкнутой системой водоснабжения дает возможность контролировать и поддерживать заданные параметры среды (освещенность, температуру, соленость, содержание кислорода, рН, редокс-потенциала). The closest solution to the claimed invention is presented in biotechnology recommended when receiving planting material for king crab in a pilot plant (Stepanov, Smirnov, 1999) [4]. The developed installation with a closed water supply system makes it possible to control and maintain specified environmental parameters (illumination, temperature, salinity, oxygen content, pH, redox potential).
Недостатком данной работы является то, что пилотная установка не прошла апробации с получением личинок и молоди до жизнестойких стадий. Из доставленных в апреле 1998 г. из Владивостока 3 самок камчатского краба с икрой одна самка сбросила икру во время транспортировки, а у двух других наблюдался абортивный выклев личинок через день после доставки. Все личинки погибли в течение 3-4 дней. Предложенная биотехника имеет ряд недостатков: не отработаны условия и оптимальные режимы кормления для каждой стадии развития. Предложенная авторами плотность посадки 100 шт./л не проверена и не отвечает биологическим особенностям личинок (сильно развит каннибализм). The disadvantage of this work is that the pilot installation did not pass approbation with obtaining larvae and juveniles until viable stages. Of the 3 Kamchatka crab females delivered from Vladivostok in April 1998, one female dropped eggs during transportation, while the other two showed abortive hatching of larvae a day after delivery. All larvae died within 3-4 days. The proposed biotechnology has several disadvantages: the conditions and optimal feeding conditions for each stage of development have not been worked out. The planting density of 100 pcs / l proposed by the authors has not been verified and does not meet the biological characteristics of the larvae (cannibalism is highly developed).
Задача, на которую направлено изобретение, - восстановление популяций камчатского краба путем получения достаточного количества жизнестойкой молоди. The task to which the invention is directed is the restoration of king crab populations by obtaining a sufficient number of viable juveniles.
Целью проведенных нами исследований являлась разработка биотехнологии воспроизводства и подращивания камчатского краба до жизнестойкой стадии в системе с замкнутым циклом водоснабжения. The aim of our research was to develop a biotechnology for the reproduction and growing of Kamchatka crab to a viable stage in a system with a closed water supply cycle.
Сущность способа искусственного разведения камчатского краба Paralithodes camtschaticus заключается в том, что получение жизнестойкой молоди производится в искусственных контролируемых условиях при оптимизации режима содержания и кормления на каждой стадии развития личинок и молоди первой стадии. The essence of the method of artificial breeding of king crab Paralithodes camtschaticus is that the production of viable juveniles is carried out in artificial controlled conditions while optimizing the regime of keeping and feeding at each stage of development of larvae and juveniles of the first stage.
Процесс искусственного разведения камчатского краба включает три этапа: первый этап продолжительностью 35-40 дней заключается в выращивании личинок (зоэа) и заканчивается после очередной линьки с метаморфозом и превращением в глаукотоэ. Второй этап продолжительностью 18-20 дней заключается в выращивании глаукотоэ до малька. Третий этап продолжительностью 14-20 дней заключается в подращивании мальков до получения жизнестойкой молоди, с последующим выпуском в море. The process of artificial breeding of king crab includes three stages: the first stage lasting 35-40 days consists in growing larvae (zoea) and ends after the next molt with metamorphosis and transformation into glaukotoe. The second stage lasting 18-20 days is to grow glaucothae to fry. The third stage lasting 14-20 days consists in growing fry to obtain viable juveniles, followed by release into the sea.
Предлагаемый способ воспроизводства камчатского краба заключается в том, что самки с икрой на последней эмбриональной стадии (за 5-10 дней до выклева личинок) перевозятся на место инкубации при постоянной аэрации и плотности посадки - 10-12 шт./м2. При этом продолжительность транспортировки не должна превышать 15 ч. Содержание самок перед выклевом личинок производится в бассейнах с замкнутой системой водоснабжения при плотности посадки не более 2 шт. /м2, скорости протока воды не менее 5 л/мин, температуре воды не выше 4oС, рН в пределах 7,9-8,1, солености 30 - 32. Кормление проводится один раз в сутки, при суточном рационе 0,5-1,0% от массы тела. В состав кормов входят кальмар, минтай, треска. С начала выклева температура воды постепенно повышается (1oС/сутки) до 7-8oС. Начало выклева рассчитывается заранее по изменению отношения площади желтка ко всей площади икринки (Onli et al, 1980). Выклев личинок от одной самки колеблется от 3 до 7 дней. Выклюнувшиеся личинки просчитываются и ежедневно переносятся в выростные бассейны. Для сбора личинок используется их реакция фототаксиса. Дальнейшее выращивание личинок (зоэа) проводится в бассейнах с замкнутой системой водоснабжения при плотности посадки не более 50 шт./л, скорости протока не менее 1 л/мин, при температуре воды 7-9oС, рН в пределах 7,9-8,2, насыщении кислородом воды не менее 80%. За личиночный период развития зоэа проходят 4 стадии. Уже на ранних личиночных стадиях у камчатского краба отмечен каннибализм. В связи с этим соблюдается плотность посадки не более 50 шт./л и своевременное и достаточное обеспечение живыми кормами.The proposed method for the reproduction of king crab is that females with caviar at the last embryonic stage (5-10 days before hatching of the larvae) are transported to the incubation site with constant aeration and planting density of 10-12 pcs / m 2 . At the same time, the duration of transportation should not exceed 15 hours. The content of females before hatching larvae is carried out in pools with a closed water supply system with a planting density of not more than 2 pcs. / m 2 , the flow rate of water is not less than 5 l / min, the water temperature is not higher than 4 o C, pH in the range of 7.9-8.1, salinity 30 - 32 . Feeding is carried out once a day, with a daily diet of 0.5-1.0% of body weight. The composition of the feed includes squid, pollock, cod. From the beginning of hatching, the water temperature gradually rises (1 o C / day) to 7-8 o C. The hatch start is calculated in advance by changing the ratio of the yolk area to the entire egg area (Onli et al, 1980). The hatching of larvae from one female ranges from 3 to 7 days. Hatching larvae miscalculate and are daily transferred to outgrowth pools. To collect the larvae, their phototaxis reaction is used. Further growing of larvae (zoea) is carried out in pools with a closed water supply system at a planting density of not more than 50 pcs / l, flow rate of at least 1 l / min, at a water temperature of 7-9 o C, pH in the range of 7.9-8 , 2, oxygen saturation of water of at least 80%. During the larval period of the development of zoea, 4 stages pass. Kamchatka crab already has cannibalism in the early larval stages. In this regard, a landing density of not more than 50 pcs / l and timely and sufficient provision of live food is observed.
Скорость развития, роста и выживаемость личинок краба в большой степени зависят от уровня их обеспеченности живыми кормами, адекватными размеру, количеству и пищевым потребностям личинок на каждой стадии их развития. Важным моментом при искусственном выращивании камчатского краба является обеспечение личинок пищей в самом начале их перехода на активное питание. The rate of development, growth, and survival of crab larvae to a large extent depends on their level of live food availability, adequate to the size, quantity and nutritional needs of the larvae at each stage of their development. An important point in the artificial cultivation of king crab is to provide larvae with food at the very beginning of their transition to active nutrition.
Кормление личинок (зоэа I) начинается с 1-ого дня после выклева разбавленным японским кормом для морских креветок, с содержанием протеина 50%, жира 8% (EBI STAR-0), и науплиями артемии в возрасте не более 24 часов. Дополнительное внесение в водную среду японского корма обеспечивает снабжение личинок краба высокоэнергетичным протеином, дополняющим комплекс необходимых питательных веществ, поступающих с науплиями артемии. Feeding of larvae (zoea I) begins on the 1st day after hatching with diluted Japanese shrimp food, containing 50% protein, 8% fat (EBI STAR-0), and artemia nauplii at the age of no more than 24 hours. The additional introduction of Japanese feed into the aquatic environment ensures the supply of crab larvae with a high-energy protein that complements the complex of essential nutrients supplied with artemia nauplii.
Соблюдается следующая последовательность операции кормления личинок камчатского краба:
- чистка дна от остатков корма и экзувиев;
- адаптирование науплий артемии к температурным условиям бассейна в течение не менее 30 минут;
- включение света для концентрирования личинок в месте подкармливания;
- отключение протока воды на 10 мин;
- подача суспензии разбавленного корма для морских креветок в количестве 50 мл на 10 тыс.шт. личинок (зоэа I);
- подача науплиев артемии в количестве, заранее просчитываемом по объему для каждой стадии развития камчатского краба (для инкубации отбирают цисты артемии всхожестью не менее 70%);
- перемещение источника света с повторной подачей суспензии и науплиев в новое место бассейна.The following sequence of operations for feeding the king crab larvae is observed:
- cleaning the bottom of the remains of feed and exuvium;
- adaptation of nauplii brine shrimp to the temperature conditions of the pool for at least 30 minutes;
- the inclusion of light to concentrate the larvae in the place of feeding;
- shut off the water flow for 10 minutes;
- feeding a suspension of diluted feed for sea shrimp in the amount of 50 ml per 10 thousand pieces larvae (zoea I);
- the supply of artemia nauplii in an amount calculated in advance for each stage of development of the king crab (artemia cysts with an germination rate of at least 70% are selected for incubation);
- moving the light source with the repeated supply of suspension and nauplii to a new place in the pool.
Расход живого корма в зависимости от стадии развития личинок приведен в табл.1. The consumption of live food depending on the stage of development of the larvae is given in table 1.
Отработана, усовершенствована биотехника выращивания зоэа, включая условия кормления, плотности посадки, введен постоянный контроль условий выращивания, снижена смертность в процессе линек. The biotechnology of growing zoea, including feeding conditions, planting density, was worked out, improved, constant monitoring of growing conditions was introduced, mortality in the process of linking was reduced.
После четвертой линьки личинок (зоэа IV) наступает следующая стадия развития - глаукотоэ. На этой стадии начинается оседание. В акватроны заблаговременно погружают субстраты (плавающие сетки, кораллы, красные водоросли). Поддерживают следующие условия выращивания: температура 8-10oС, соленость 30 - 32, рН 7,9-8,2, содержание кислорода в воде не менее 80%, скорость протока 1 л/мин, плотность посадки 25 шт./л.After the fourth molting of the larvae (zoea IV), the next stage of development occurs - glaucothoe. At this stage, subsidence begins. Substrates (floating nets, corals, red algae) are immersed in water in advance. The following growing conditions are supported: temperature 8-10 o C, salinity 30 - 32 , pH 7.9-8.2, oxygen content in water of at least 80%, flow rate 1 l / min, planting
В связи с переходом глаукотоэ на эндогенную форму питания интенсивность кормления снижается до 1 раза в сутки по 5 шт. науплий артемии на 2 экз. краба. Продолжительность этапа 18-20 суток. In connection with the transition of glaucomotoe to an endogenous form of nutrition, the feeding intensity decreases to 1 time per day, 5 pcs. nauplii brine shrimp for 2 copies. crab. The duration of the stage is 18-20 days.
После очередной линьки глаукотоэ переходят на первую стадию малькового периода развития. Выращивание проводят в тех же самых емкостях с замкнутым циклом водоснабжения при тех же самых условиях среды, при которых выращивали зоэа и глаукотоэ. Температура воды термостатируется в пределах 10-12oС, скорость протока увеличивается до 5 л/мин из-за интенсификации обмена веществ молоди камчатского краба на этой стадии развития. В качестве корма используют фарш креветок и мидий (в соотношении 3:1) при кормовом коэффициенте 3. Интенсивность кормления увеличивается за счет увеличения частоты кормления до 2 раз в сутки. Продолжительность третьего этапа - 14-20 суток. В конце первой мальковой стадии мальков выпускают в море.After the next molt, glaucomotae pass to the first stage of the fry period of development. Cultivation is carried out in the same containers with a closed cycle of water supply under the same environmental conditions under which zoea and glaukotoe were grown. The water temperature is thermostated within 10-12 o C, the flow rate increases to 5 l / min due to the intensification of metabolism of juvenile king crab at this stage of development. For feed use shrimp and mussel forcemeat (in a ratio of 3: 1) with a feed ratio of 3. The intensity of feeding increases due to an increase in the frequency of feeding up to 2 times a day. The duration of the third stage is 14-20 days. At the end of the first fry stage, fry are released into the sea.
Полученные данные дают возможность регулировать процесс воспроизводства и рекомендовать бионормативы для получения мальков камчатского краба в промышленных масштабах. The data obtained make it possible to regulate the reproduction process and recommend bio-standards for the production of king crab fry on an industrial scale.
Технологическая схема и бионормативы процесса искусственного воспроизводства камчатского краба от эмбриональных стадий развития до первой мальковой стадии (табл.2). The technological scheme and bio-standards of the artificial reproduction of Kamchatka crab from the embryonic stages of development to the first fry stage (Table 2).
Список литературы
1. Зубкова Н. А., 1964. Опыт содержания камчатского краба в аквариуме. Тр. Мурм. морск. биол. ин-та, вып.5(9), с. 105-113.List of references
1. Zubkova N. A., 1964. Experience in keeping Kamchatka crab in an aquarium. Tr. Murm. marine. biol. Inst., issue 5 (9), p. 105-113.
2. Федосеев В.Я., Григорьева Н.И., 2001. Способ воспроизводства крабов (варианты). Патент РФ 2174750/МПК7, А 01 К 61/00. Бюл. 29, 2001 г.2. Fedoseev V.Ya., Grigoryeva NI, 2001. The method of reproduction of crabs (options). RF patent 2174750 / IPC 7 , A 01 K 61/00. Bull. 29, 2001
3. Ковачева Н.П., 2000. Воспроизводство камчатского краба (Paralithodes camtschaticus) с использованием искусственной морской воды в аппаратах типа "Акватрон". /Рыбное хозяйство: Серия Марикультура, аналитическая и реферативная информация/ ВНИЭРХ, вып.4. С. 14-26. 3. Kovacheva NP, 2000. Reproduction of Kamchatka crab (Paralithodes camtschaticus) using artificial sea water in apparatus such as "Aquatron". / Fisheries: Series Mariculture, analytical and abstract information / VNIERH,
4. Степанов Д. Н, Б.П. Смирнов, 1999. Пилотная установка для получения посадочного материала камчатского краба./Рыбное хозяйство: Серия Аквакультура: Информпакет "Аквакультура: проблемы и достижения"/ ВНИЭРХ, вып.2.-С. 10-14. 4. Stepanov D. N, B.P. Smirnov, 1999. Pilot installation for receiving planting material for Kamchatka crab. / Fisheries: Aquaculture Series: Information package "Aquaculture: Problems and Achievements" / VNIERH,
Claims (6)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2001135398/13A RU2200386C1 (en) | 2001-12-27 | 2001-12-27 | Method for reproduction in crustacean (king crab) |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2001135398/13A RU2200386C1 (en) | 2001-12-27 | 2001-12-27 | Method for reproduction in crustacean (king crab) |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2200386C1 true RU2200386C1 (en) | 2003-03-20 |
Family
ID=20254956
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2001135398/13A RU2200386C1 (en) | 2001-12-27 | 2001-12-27 | Method for reproduction in crustacean (king crab) |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2200386C1 (en) |
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102487853A (en) * | 2011-11-18 | 2012-06-13 | 洪水根 | Artificial breeding and culturing method for horseshoe crabs |
CN103141426A (en) * | 2013-03-28 | 2013-06-12 | 中国水产科学研究院黄海水产研究所 | Method for efficiently breeding blue crabs |
CN103270982A (en) * | 2013-05-22 | 2013-09-04 | 山东省日照市水产研究所 | Manual offspring seed cultivating method for blepharipoda liberata |
CN104542408A (en) * | 2015-02-04 | 2015-04-29 | 南通中国科学院海洋研究所海洋科学与技术研究发展中心 | Method for synchronous line establishment of small-population parents in artificial breeding of exopalaemon carinicauda |
CN112655621A (en) * | 2020-12-23 | 2021-04-16 | 马鞍山市徽农农业科技发展有限公司 | River crab culture method for improving acre yield |
-
2001
- 2001-12-27 RU RU2001135398/13A patent/RU2200386C1/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
СТЕПАНОВ Д.Н., СМИРНОВ Б.П. Пилотная установка для получения посадочного материала камчатского краба. Рыбное хозяйство: серия Аквакультура, информпакет "Аквакультура: проблемы и достижения". - М. ВНИЭРХ, вып.2, с. 10-14. * |
Cited By (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102487853A (en) * | 2011-11-18 | 2012-06-13 | 洪水根 | Artificial breeding and culturing method for horseshoe crabs |
CN103141426A (en) * | 2013-03-28 | 2013-06-12 | 中国水产科学研究院黄海水产研究所 | Method for efficiently breeding blue crabs |
CN103141426B (en) * | 2013-03-28 | 2014-07-16 | 中国水产科学研究院黄海水产研究所 | Method for efficiently breeding blue crabs |
CN103270982A (en) * | 2013-05-22 | 2013-09-04 | 山东省日照市水产研究所 | Manual offspring seed cultivating method for blepharipoda liberata |
CN103270982B (en) * | 2013-05-22 | 2014-08-20 | 山东省日照市水产研究所 | Manual offspring seed cultivating method for blepharipoda liberata |
CN104542408A (en) * | 2015-02-04 | 2015-04-29 | 南通中国科学院海洋研究所海洋科学与技术研究发展中心 | Method for synchronous line establishment of small-population parents in artificial breeding of exopalaemon carinicauda |
CN112655621A (en) * | 2020-12-23 | 2021-04-16 | 马鞍山市徽农农业科技发展有限公司 | River crab culture method for improving acre yield |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN101919359B (en) | Method for comprehensively regulating and controlling gonad mature ovulation of cheilinus undulates | |
Sykes et al. | Cuttlefish culture-state of the art and future trends | |
Choudhury | Responses of larval Macrobrachium carcinus (L.) to variations in salinity and diet (Decapoda, Palaemonidae) | |
CN110692557B (en) | Method for cultivating yellow croaker by artificial seawater salinity desalination | |
Arimoro | Culture of the freshwater rotifer, Brachionus calyciflorus, and its application in fish larviculture technology | |
CN107114283A (en) | A kind of artificial breeding method of Collichthys lucidus | |
KR101327669B1 (en) | Seed production method of sea bass species through a food organism incubation. | |
JP2020048468A (en) | Cultivation method of aquatic animal | |
CN101647412B (en) | Method for breeding tridentiger trigonocephalus by artificial induced spawning and insemination | |
Liu et al. | Sea urchin aquaculture in China | |
CN100355337C (en) | Artificial hybridization and breeding method for male Paralichthys dentatus and female summer flounder | |
CN108077116A (en) | A kind of artificial raise seedling method of wild six spots thorn Puffer | |
Madhu et al. | Spawning and larval rearing of Amphiprion ocellaris under captive condition | |
RU2200386C1 (en) | Method for reproduction in crustacean (king crab) | |
Donelson et al. | Anemonefish husbandry | |
Kestemont et al. | Larval rearing of the gudgeon, Gobio gobio L., under optimal conditions of feeding with the rotifer, Brachionus plicatilis OF Müller | |
CN1116896A (en) | Artificial fry culturing method for red-fin dongfang globe fish | |
Da | Rearing practices of live feedstuff animal midge fly larvae (Chironomus circumdatus) Kieffer (Diptera: Chironomidae) | |
Kabir et al. | High density rotifer culture as live food for larval rearing in carp hatcheries | |
Ali et al. | Effect of high and low cost brood feeds on the hatching and survival rate of freshwater prawn, Macrobrachium rogenbergii larvae | |
Madhu et al. | Breeding, larval rearing and seed production of maroon clown Premnas biaculeatus under captive conditions | |
EP3718399B1 (en) | Method for cultivating paralarvae of the common octopus (octopus vulgaris) | |
KR101317143B1 (en) | Incubation method for a food organism of a sea bass species. | |
GB1334087A (en) | Method of feeding and breeding crustaceans | |
Daniels et al. | Culture of southern flounder |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20131228 |