RU2116345C1 - Способ получения биомассы и протеолитических ферментов патогенных псевдомонад - Google Patents
Способ получения биомассы и протеолитических ферментов патогенных псевдомонад Download PDFInfo
- Publication number
- RU2116345C1 RU2116345C1 RU96113619A RU96113619A RU2116345C1 RU 2116345 C1 RU2116345 C1 RU 2116345C1 RU 96113619 A RU96113619 A RU 96113619A RU 96113619 A RU96113619 A RU 96113619A RU 2116345 C1 RU2116345 C1 RU 2116345C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- biomass
- nutrient medium
- hydrolyzate
- pseudomonades
- medium
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Способ может быть использован в биотехнологии. Выращивают псевдомонады глубинным аппаратным способом при принудительной аэрации питательной среды. Продолжительность процесса 12-15 ч, температура 25 - 37oC, pH среды 6,8 - 6,9, поддерживают добавлением 10% раствора глюкозы. Культивирование ведут в присутствии перфтордекалина в количестве 5 - 15 об.% от питательной среды следующего состава, мас.%: солянокислый гидролизат казеина 0,3-1,5, ферментативный гидролизат гороха 0,3-0,4, ферментативный гидролизат черного альбумина 0,05-0,13, магний сернокислый 0,01 - 0,04, железо сернокислое пятиводное 0,001 - 0,005 и дистиллированная вода до 100 мл. Получают 2,5-3,0•1010 м. к./мл биомассы и активные протеолитические ферменты, выявляемые при разведении бульонной культуры 1:1010 - 1:1012. Способ обеспечивает высокую урожайность и протеолитическую активность патогенных псевдомонад.
Description
Изобретение относится к биотехнологии, а именно к получению биомассы и биологически активных веществ.
Наиболее близким аналогом к предложенному объекту является способ культивирования возбудителя мелиоидоза в жидкой питательной среде в колбах на качалках (отчет НИР "Внеклеточные факторы патогенности возбудителя мелиоидоза", ВНИПЧИ, 1981, ГР 79074381, с.64).
Однако выход биомассы и экзопротеаз в указанном способе невелик. Описанный способ может быть применен лишь для аналитических целей, нетехнологичен и не позволяет масштабировать процесс получения биомассы и протеолитических ферментом патогенных псевдомонад.
Задачей предлагаемого изобретения является разработка эффективного способа получения биомассы и экзопротеаз патогенных псевдомонад.
Поставленный технический результат достигается тем, что выращивание бульонной культуры продуцирующего микроорганизма в жидкой питательной среде осуществляют глубинным аппаратным способом при принудительной аэрации питательной среды в течение 12-15 ч при температуре 25-37oC, pH 6,8-6,9, поддерживаемом давлением 10% раствора глюкозы в присутствии перфтордекалина в количестве 5,0-15 об.% от питательной среды следующего состава, (мас.%):
Солянокислый гидролизат казеина - 0,3-1,5
Ферментативный гидролизат гороха - 0,3-0,4
Ферментативный гидролизат черного альбумина - 0,05-0,13
Магний сернокислый семиводный - 0,01-0,04
Железо сернокислое пятиводное - 0,001-0,005
Дистиллированная вода - до 100 мл
Выход биомассы псевдомонад в предлагаемом способе составляет 25-30 млрд микробных клеток (м.к.) с 1 мл среды, а минимальная протеолитическая активность определяется при разведении бульонной культуры 1:1010 - 1:1012 при индексе протеолиза 2, 3, определяемом путем отношения диаметра зоны просветления к диаметру лунки на молочно-солевом агаре.
Солянокислый гидролизат казеина - 0,3-1,5
Ферментативный гидролизат гороха - 0,3-0,4
Ферментативный гидролизат черного альбумина - 0,05-0,13
Магний сернокислый семиводный - 0,01-0,04
Железо сернокислое пятиводное - 0,001-0,005
Дистиллированная вода - до 100 мл
Выход биомассы псевдомонад в предлагаемом способе составляет 25-30 млрд микробных клеток (м.к.) с 1 мл среды, а минимальная протеолитическая активность определяется при разведении бульонной культуры 1:1010 - 1:1012 при индексе протеолиза 2, 3, определяемом путем отношения диаметра зоны просветления к диаметру лунки на молочно-солевом агаре.
Предлагаемый способ позволяет автоматически контролировать и поддерживать на оптимальном уровне основные параметры выращивания, что приводит к стабильному выходу продуктов культивирования. Аппаратное выращивание позволяет получить биомассу и экзоферменты в препаративных и промышленных масштабах. В связи с этим предлагаемый способ отличается высокой продуктивностью и технологичностью.
Пример 1. Выращивание псевдомонад осуществляют в среде с оптимальной концентрацией ингредиентов следующего состава, (мас.%):
Солянокислый гидролизат казеина - 0,5
Ферментативный гидролизат гороха - 0,35
Ферментативный гидролизат черного альбумина - 0,1
Магний сернокислый семиводный - 0,03
Железо сернокислое пятиводное - 0,003
Дистиллированная вода - до 100 мл
PH среды устанавливают в пределах 6,8-6,9. Среду стерилизуют при 0,5 атм в течение 20 мин. Перед культивированием в нее добавляют в стерильных условиях перфтордекалин из расчета 10% от объема. В культуральный сосуд заливают приготовленную среду в количестве, равном рабочему объему такого сосуда. 24-часовую культуру псевдомонад, выращенную при 37oC в пробирках со скошенным агаром, смывают 0,15 М раствором хлорида натрия, полученную суспензию засеивают в культуральный сосуд ферментера из расчета 108 м.к. на 1 мл среды. Глубинное культивирование осуществляют при 30oC и аэрации с расходом воздуха 2000 см3 в 1 мин на 1 л среды. PH поддерживают на уровне 6,9 путем добавления 10% раствора глюкозы. Контроль за ростом культуры проводят, отбирая пробы и определяя в них концентрацию биомассы по отраслевому стандарту мутности ГИСК им. Л. А. Тарасевича, а также макрокультуральным методом на плотных питательных средах. Протеолитическую активность определяют в разведенных пробах бульонной культуры методом диффузии в молочно-солевом агаре. Результаты оценивают по максимальному разведению бульонной культуры, способной образовать зону протеолиза.
Солянокислый гидролизат казеина - 0,5
Ферментативный гидролизат гороха - 0,35
Ферментативный гидролизат черного альбумина - 0,1
Магний сернокислый семиводный - 0,03
Железо сернокислое пятиводное - 0,003
Дистиллированная вода - до 100 мл
PH среды устанавливают в пределах 6,8-6,9. Среду стерилизуют при 0,5 атм в течение 20 мин. Перед культивированием в нее добавляют в стерильных условиях перфтордекалин из расчета 10% от объема. В культуральный сосуд заливают приготовленную среду в количестве, равном рабочему объему такого сосуда. 24-часовую культуру псевдомонад, выращенную при 37oC в пробирках со скошенным агаром, смывают 0,15 М раствором хлорида натрия, полученную суспензию засеивают в культуральный сосуд ферментера из расчета 108 м.к. на 1 мл среды. Глубинное культивирование осуществляют при 30oC и аэрации с расходом воздуха 2000 см3 в 1 мин на 1 л среды. PH поддерживают на уровне 6,9 путем добавления 10% раствора глюкозы. Контроль за ростом культуры проводят, отбирая пробы и определяя в них концентрацию биомассы по отраслевому стандарту мутности ГИСК им. Л. А. Тарасевича, а также макрокультуральным методом на плотных питательных средах. Протеолитическую активность определяют в разведенных пробах бульонной культуры методом диффузии в молочно-солевом агаре. Результаты оценивают по максимальному разведению бульонной культуры, способной образовать зону протеолиза.
Культивирование продолжают 18 ч, после чего полученную биомассу, содержащую протеолитические ферменты, используют для получения диагностических препаратов.
Предлагаемый способ позволяет получить 25-30 млрд м.к. в 1 мл питательной среды, а активность протеаз определяется при разведении бульонной культуры до 1:1011 - 1:1012.
Пример 2 (минимальный). Культивирование псевдомонад осуществляют по технологии, описанной в примере 1 на питательной среде при следующем соотношении ингредиентов, (мас.%):
Солянокислый гидролизат казеина - 0,3
Ферментативный гидролизат гороха - 0,3
Ферментативный гидролизат черного альбумина - 0,05
Магний сернокислый семиводный - 0,01
Железо сернокислое пятиводное - 0,001
Дистиллированная вода - до 100 мл
Перфтордекалин добавляют в среду из расчета 5% от объема. Выход биомассы при использовании среды с минимальной границей концентрации ингредиентов снижается на 40-67%, а протеолитическая активность выявляется при разведении бульонной культуры до 1:109 - 1:1010.
Солянокислый гидролизат казеина - 0,3
Ферментативный гидролизат гороха - 0,3
Ферментативный гидролизат черного альбумина - 0,05
Магний сернокислый семиводный - 0,01
Железо сернокислое пятиводное - 0,001
Дистиллированная вода - до 100 мл
Перфтордекалин добавляют в среду из расчета 5% от объема. Выход биомассы при использовании среды с минимальной границей концентрации ингредиентов снижается на 40-67%, а протеолитическая активность выявляется при разведении бульонной культуры до 1:109 - 1:1010.
Пример 3 (максимальный). Выращивание псевдомонад осуществляют по технологии, изложенной в примере 1, используя максимальную границу концентрации ингредиентов, (мас.%):
Солянокислый гидролизат казеина - 1,5
Ферментативный гидролизат гороха - 0,4
Ферментативный гидролизат черного альбумина - 0,13
Магний сернокислый семиводный - 0,04
Железо сернокислое пятиводное - 0,005
Дистиллированная вода - до 100 мл
Перфтордекалин добавляют перед культивированием в среду из расчета 15% от объема.
Солянокислый гидролизат казеина - 1,5
Ферментативный гидролизат гороха - 0,4
Ферментативный гидролизат черного альбумина - 0,13
Магний сернокислый семиводный - 0,04
Железо сернокислое пятиводное - 0,005
Дистиллированная вода - до 100 мл
Перфтордекалин добавляют перед культивированием в среду из расчета 15% от объема.
Размножение клеток и продукция ферментов в указанных условиях происходит также интенсивно, как и в способе с оптимальной концентрацией ингредиентов, однако применение среды с максимальной границей нерентабельно и ведет к удорожанию технологии.
Пример 4. Выращивание псевдомонад при отсутствии в среде перфтордекалина замедляет рост и размножение клеток, снижая урожайность в 1,5-2,0 раза, а протеолитическую активность в 1,2 раза.
Пример 5. Культивирование псевдомонад по оптимальной технологии (по примеру 1) при отсутствии в среде гидролизата гороха приводит к снижению концентрации биомассы на 13-27%. Активность протеолитических ферментов снижается незначительно.
Пример 6. Культивирование псевдомонад по оптимальной технологии (по примеру 1) без ферментативного гидролизата черного альбумина приводит к снижению концентрации биомассы на 13-27%. Активность протеаз уменьшается в 1,2 раза.
Пример 7. При культивировании псевдомонад по примеру 1 в течение 24 ч, урожайность биомассы снижается на 17-40%, протеолитическая активность уменьшается на 50%.
Пример 8. Выращивание псевдомонад осуществляют по оптимальной технологии, изложенной в примере 1, не проводя коррекцию pH 10% раствором глюкозы. Выход биомассы при этом снижается на 60-70%, активность протеолитических ферментов уменьшается более, чем на 40%.
Пример 9. Поверхностное культивирование псевдомонад в питательной среде с оптимальным соотношением ингредиентов без принудительной аэрации и коррекции pH позволяет получать биомассу в пределах 2-3 • 109 м.к. с 1 мл среды, т. е. выход биомассы снижается на 90-93%, активность протеза выявляется при разведении бульонной культуры 1:102 - 1:103.
Сводные данные по выходу биомассы и протеолитических ферментов псевдомонад на модели мелиоидозного микроба приведены в таблице.
Таким образом, использование предлагаемого способа культивирования обеспечивают высокую урожайность и протеолитическую активность патогенных псевдомонад.
Claims (1)
- Способ получения биомассы и протеолитических ферментов патогенных псевдомонад путем выращивания бульонной культуры продуцирующего микроорганизма в жидкой питательной среде, отличающийся тем, что выращивание ведут глубинным аппаратным способом при принудительной аэрации питательной среды в течение 12 - 15 ч при 25 - 37oС, pH 6,8 - 6,9, поддерживаемом добавлением 10%-ного раствора глюкозы в присутствии перфтордекалина в количестве 5 - 15 об.% от питательной среды следующего состава, мас.%:
Солянокислый гидролизат казеина - 0,3 - 1,5
Ферментативный гидролизат гороха - 0,3 - 0,4
Ферментативный гидролизат черного альбумина - 0,05 - 0,13
Магний сернокислый семиводный - 0,01 - 0,04
Железо сернокислое пятиводное - 0,001 - 0,005
Дистиллированная вода, мл - До 100и
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU96113619A RU2116345C1 (ru) | 1996-06-26 | 1996-06-26 | Способ получения биомассы и протеолитических ферментов патогенных псевдомонад |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU96113619A RU2116345C1 (ru) | 1996-06-26 | 1996-06-26 | Способ получения биомассы и протеолитических ферментов патогенных псевдомонад |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2116345C1 true RU2116345C1 (ru) | 1998-07-27 |
RU96113619A RU96113619A (ru) | 1998-10-10 |
Family
ID=20182873
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU96113619A RU2116345C1 (ru) | 1996-06-26 | 1996-06-26 | Способ получения биомассы и протеолитических ферментов патогенных псевдомонад |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2116345C1 (ru) |
-
1996
- 1996-06-26 RU RU96113619A patent/RU2116345C1/ru active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Внеклеточные факторы патогенности возбудителя мелиоидоза. Отчет НИР. - ВН ИИПЧИ, 1981, ГР 79074381, с.64. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Jiménez-Tobon et al. | The relationship between pellet size and production of Mn (II) peroxidase by Phanerochaete chrysosporium in submerged culture | |
CN105002110B (zh) | 复合微生物制剂及其在水华爆发水体处理中的应用 | |
Chevalier et al. | Enhancement of α-amylase production by immobilized Bacillus subtilis in an airlift fermenter | |
RU2116345C1 (ru) | Способ получения биомассы и протеолитических ферментов патогенных псевдомонад | |
GARG et al. | Continuous production of citric acid by immobilized whole cells of Aspergillus niger | |
CN1510128A (zh) | 高温中性蛋白酶菌株、高温中性蛋白酶及其生产工艺 | |
Takahashi et al. | Diacetyl production by immobilized citrate-positive Lactococcus lactis subsp. lactis 3022 in the fibrous Ca-alginate gel | |
US2302079A (en) | Process for producing enzymes by the cultivation of micro-organisms on nitrogen and carbohydratecontaining mashes | |
KR940010020B1 (ko) | 슈도모나스속 미생물의 배양방법 및 그 미생물을 사용하는 l-알라닌의 제조방법 | |
Ikeda et al. | Production of alkaline protease from acetic acid | |
RU2815972C1 (ru) | Питательная среда для культивирования уреолитических бактерий | |
RU2053293C1 (ru) | Способ получения биомассы бацилл | |
Gray | Vibrio amylocella, n. sp., a soil organism that decomposes cellulose and produces glucose from starch | |
SU767196A1 (ru) | Способ выращивани продуцентов литических ферментов | |
Dasari | Optimization of parameters for the production of protease using Aspergillus flavus by solid state fermentation | |
SU644827A1 (ru) | Способ получени фосфолипазы | |
KR102106479B1 (ko) | 아네우리니바실러스 미굴라너스(aneurinibacillus migulanus) 균주 및 이의 용도 | |
SU1161551A1 (ru) | Штамм @ @ 2-82-продуцент пектат-лиазы | |
SU1386657A1 (ru) | Питательна среда дл культивировани кампилобактерий | |
RU1804479C (ru) | Способ получени культуральной жидкости SеRRатIа маRсеSсеNS, обладающей хитиназной активностью | |
SU1159951A1 (ru) | Питательна среда дл выращивани @ @ @ -38-продуцента ЭЗКО- @ - @ -ацетилглюкозаминидазы | |
SU1479513A1 (ru) | Способ получени формиатдегидрогеназы | |
SU1163636A1 (ru) | Штамм ацидофильных метилотрофных бактерий @ @ ВСБ-924-продуцент белка | |
SU1629315A1 (ru) | Штамм бактерий АстнRовастеR Sp., разлагающий флороглюцин | |
SU990812A1 (ru) | Способ получени бактериальных амилаз |