RU2116345C1 - Способ получения биомассы и протеолитических ферментов патогенных псевдомонад - Google Patents

Способ получения биомассы и протеолитических ферментов патогенных псевдомонад Download PDF

Info

Publication number
RU2116345C1
RU2116345C1 RU96113619A RU96113619A RU2116345C1 RU 2116345 C1 RU2116345 C1 RU 2116345C1 RU 96113619 A RU96113619 A RU 96113619A RU 96113619 A RU96113619 A RU 96113619A RU 2116345 C1 RU2116345 C1 RU 2116345C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
biomass
nutrient medium
hydrolyzate
pseudomonades
medium
Prior art date
Application number
RU96113619A
Other languages
English (en)
Other versions
RU96113619A (ru
Inventor
В.М. Самыгин
И.В. Владимцева
А.А. Степин
Н.Г. Плеханова
Л.К. Жога
В.П. Кухтин
Original Assignee
Волгоградский государственный технический университет
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Волгоградский государственный технический университет filed Critical Волгоградский государственный технический университет
Priority to RU96113619A priority Critical patent/RU2116345C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2116345C1 publication Critical patent/RU2116345C1/ru
Publication of RU96113619A publication Critical patent/RU96113619A/ru

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Способ может быть использован в биотехнологии. Выращивают псевдомонады глубинным аппаратным способом при принудительной аэрации питательной среды. Продолжительность процесса 12-15 ч, температура 25 - 37oC, pH среды 6,8 - 6,9, поддерживают добавлением 10% раствора глюкозы. Культивирование ведут в присутствии перфтордекалина в количестве 5 - 15 об.% от питательной среды следующего состава, мас.%: солянокислый гидролизат казеина 0,3-1,5, ферментативный гидролизат гороха 0,3-0,4, ферментативный гидролизат черного альбумина 0,05-0,13, магний сернокислый 0,01 - 0,04, железо сернокислое пятиводное 0,001 - 0,005 и дистиллированная вода до 100 мл. Получают 2,5-3,0•1010 м. к./мл биомассы и активные протеолитические ферменты, выявляемые при разведении бульонной культуры 1:1010 - 1:1012. Способ обеспечивает высокую урожайность и протеолитическую активность патогенных псевдомонад.

Description

Изобретение относится к биотехнологии, а именно к получению биомассы и биологически активных веществ.
Наиболее близким аналогом к предложенному объекту является способ культивирования возбудителя мелиоидоза в жидкой питательной среде в колбах на качалках (отчет НИР "Внеклеточные факторы патогенности возбудителя мелиоидоза", ВНИПЧИ, 1981, ГР 79074381, с.64).
Однако выход биомассы и экзопротеаз в указанном способе невелик. Описанный способ может быть применен лишь для аналитических целей, нетехнологичен и не позволяет масштабировать процесс получения биомассы и протеолитических ферментом патогенных псевдомонад.
Задачей предлагаемого изобретения является разработка эффективного способа получения биомассы и экзопротеаз патогенных псевдомонад.
Поставленный технический результат достигается тем, что выращивание бульонной культуры продуцирующего микроорганизма в жидкой питательной среде осуществляют глубинным аппаратным способом при принудительной аэрации питательной среды в течение 12-15 ч при температуре 25-37oC, pH 6,8-6,9, поддерживаемом давлением 10% раствора глюкозы в присутствии перфтордекалина в количестве 5,0-15 об.% от питательной среды следующего состава, (мас.%):
Солянокислый гидролизат казеина - 0,3-1,5
Ферментативный гидролизат гороха - 0,3-0,4
Ферментативный гидролизат черного альбумина - 0,05-0,13
Магний сернокислый семиводный - 0,01-0,04
Железо сернокислое пятиводное - 0,001-0,005
Дистиллированная вода - до 100 мл
Выход биомассы псевдомонад в предлагаемом способе составляет 25-30 млрд микробных клеток (м.к.) с 1 мл среды, а минимальная протеолитическая активность определяется при разведении бульонной культуры 1:1010 - 1:1012 при индексе протеолиза 2, 3, определяемом путем отношения диаметра зоны просветления к диаметру лунки на молочно-солевом агаре.
Предлагаемый способ позволяет автоматически контролировать и поддерживать на оптимальном уровне основные параметры выращивания, что приводит к стабильному выходу продуктов культивирования. Аппаратное выращивание позволяет получить биомассу и экзоферменты в препаративных и промышленных масштабах. В связи с этим предлагаемый способ отличается высокой продуктивностью и технологичностью.
Пример 1. Выращивание псевдомонад осуществляют в среде с оптимальной концентрацией ингредиентов следующего состава, (мас.%):
Солянокислый гидролизат казеина - 0,5
Ферментативный гидролизат гороха - 0,35
Ферментативный гидролизат черного альбумина - 0,1
Магний сернокислый семиводный - 0,03
Железо сернокислое пятиводное - 0,003
Дистиллированная вода - до 100 мл
PH среды устанавливают в пределах 6,8-6,9. Среду стерилизуют при 0,5 атм в течение 20 мин. Перед культивированием в нее добавляют в стерильных условиях перфтордекалин из расчета 10% от объема. В культуральный сосуд заливают приготовленную среду в количестве, равном рабочему объему такого сосуда. 24-часовую культуру псевдомонад, выращенную при 37oC в пробирках со скошенным агаром, смывают 0,15 М раствором хлорида натрия, полученную суспензию засеивают в культуральный сосуд ферментера из расчета 108 м.к. на 1 мл среды. Глубинное культивирование осуществляют при 30oC и аэрации с расходом воздуха 2000 см3 в 1 мин на 1 л среды. PH поддерживают на уровне 6,9 путем добавления 10% раствора глюкозы. Контроль за ростом культуры проводят, отбирая пробы и определяя в них концентрацию биомассы по отраслевому стандарту мутности ГИСК им. Л. А. Тарасевича, а также макрокультуральным методом на плотных питательных средах. Протеолитическую активность определяют в разведенных пробах бульонной культуры методом диффузии в молочно-солевом агаре. Результаты оценивают по максимальному разведению бульонной культуры, способной образовать зону протеолиза.
Культивирование продолжают 18 ч, после чего полученную биомассу, содержащую протеолитические ферменты, используют для получения диагностических препаратов.
Предлагаемый способ позволяет получить 25-30 млрд м.к. в 1 мл питательной среды, а активность протеаз определяется при разведении бульонной культуры до 1:1011 - 1:1012.
Пример 2 (минимальный). Культивирование псевдомонад осуществляют по технологии, описанной в примере 1 на питательной среде при следующем соотношении ингредиентов, (мас.%):
Солянокислый гидролизат казеина - 0,3
Ферментативный гидролизат гороха - 0,3
Ферментативный гидролизат черного альбумина - 0,05
Магний сернокислый семиводный - 0,01
Железо сернокислое пятиводное - 0,001
Дистиллированная вода - до 100 мл
Перфтордекалин добавляют в среду из расчета 5% от объема. Выход биомассы при использовании среды с минимальной границей концентрации ингредиентов снижается на 40-67%, а протеолитическая активность выявляется при разведении бульонной культуры до 1:109 - 1:1010.
Пример 3 (максимальный). Выращивание псевдомонад осуществляют по технологии, изложенной в примере 1, используя максимальную границу концентрации ингредиентов, (мас.%):
Солянокислый гидролизат казеина - 1,5
Ферментативный гидролизат гороха - 0,4
Ферментативный гидролизат черного альбумина - 0,13
Магний сернокислый семиводный - 0,04
Железо сернокислое пятиводное - 0,005
Дистиллированная вода - до 100 мл
Перфтордекалин добавляют перед культивированием в среду из расчета 15% от объема.
Размножение клеток и продукция ферментов в указанных условиях происходит также интенсивно, как и в способе с оптимальной концентрацией ингредиентов, однако применение среды с максимальной границей нерентабельно и ведет к удорожанию технологии.
Пример 4. Выращивание псевдомонад при отсутствии в среде перфтордекалина замедляет рост и размножение клеток, снижая урожайность в 1,5-2,0 раза, а протеолитическую активность в 1,2 раза.
Пример 5. Культивирование псевдомонад по оптимальной технологии (по примеру 1) при отсутствии в среде гидролизата гороха приводит к снижению концентрации биомассы на 13-27%. Активность протеолитических ферментов снижается незначительно.
Пример 6. Культивирование псевдомонад по оптимальной технологии (по примеру 1) без ферментативного гидролизата черного альбумина приводит к снижению концентрации биомассы на 13-27%. Активность протеаз уменьшается в 1,2 раза.
Пример 7. При культивировании псевдомонад по примеру 1 в течение 24 ч, урожайность биомассы снижается на 17-40%, протеолитическая активность уменьшается на 50%.
Пример 8. Выращивание псевдомонад осуществляют по оптимальной технологии, изложенной в примере 1, не проводя коррекцию pH 10% раствором глюкозы. Выход биомассы при этом снижается на 60-70%, активность протеолитических ферментов уменьшается более, чем на 40%.
Пример 9. Поверхностное культивирование псевдомонад в питательной среде с оптимальным соотношением ингредиентов без принудительной аэрации и коррекции pH позволяет получать биомассу в пределах 2-3 • 109 м.к. с 1 мл среды, т. е. выход биомассы снижается на 90-93%, активность протеза выявляется при разведении бульонной культуры 1:102 - 1:103.
Сводные данные по выходу биомассы и протеолитических ферментов псевдомонад на модели мелиоидозного микроба приведены в таблице.
Таким образом, использование предлагаемого способа культивирования обеспечивают высокую урожайность и протеолитическую активность патогенных псевдомонад.

Claims (1)

  1. Способ получения биомассы и протеолитических ферментов патогенных псевдомонад путем выращивания бульонной культуры продуцирующего микроорганизма в жидкой питательной среде, отличающийся тем, что выращивание ведут глубинным аппаратным способом при принудительной аэрации питательной среды в течение 12 - 15 ч при 25 - 37oС, pH 6,8 - 6,9, поддерживаемом добавлением 10%-ного раствора глюкозы в присутствии перфтордекалина в количестве 5 - 15 об.% от питательной среды следующего состава, мас.%:
    Солянокислый гидролизат казеина - 0,3 - 1,5
    Ферментативный гидролизат гороха - 0,3 - 0,4
    Ферментативный гидролизат черного альбумина - 0,05 - 0,13
    Магний сернокислый семиводный - 0,01 - 0,04
    Железо сернокислое пятиводное - 0,001 - 0,005
    Дистиллированная вода, мл - До 100и
RU96113619A 1996-06-26 1996-06-26 Способ получения биомассы и протеолитических ферментов патогенных псевдомонад RU2116345C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU96113619A RU2116345C1 (ru) 1996-06-26 1996-06-26 Способ получения биомассы и протеолитических ферментов патогенных псевдомонад

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU96113619A RU2116345C1 (ru) 1996-06-26 1996-06-26 Способ получения биомассы и протеолитических ферментов патогенных псевдомонад

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2116345C1 true RU2116345C1 (ru) 1998-07-27
RU96113619A RU96113619A (ru) 1998-10-10

Family

ID=20182873

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU96113619A RU2116345C1 (ru) 1996-06-26 1996-06-26 Способ получения биомассы и протеолитических ферментов патогенных псевдомонад

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2116345C1 (ru)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Внеклеточные факторы патогенности возбудителя мелиоидоза. Отчет НИР. - ВН ИИПЧИ, 1981, ГР 79074381, с.64. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Jiménez-Tobon et al. The relationship between pellet size and production of Mn (II) peroxidase by Phanerochaete chrysosporium in submerged culture
CN105002110B (zh) 复合微生物制剂及其在水华爆发水体处理中的应用
Chevalier et al. Enhancement of α-amylase production by immobilized Bacillus subtilis in an airlift fermenter
RU2116345C1 (ru) Способ получения биомассы и протеолитических ферментов патогенных псевдомонад
GARG et al. Continuous production of citric acid by immobilized whole cells of Aspergillus niger
CN1510128A (zh) 高温中性蛋白酶菌株、高温中性蛋白酶及其生产工艺
Takahashi et al. Diacetyl production by immobilized citrate-positive Lactococcus lactis subsp. lactis 3022 in the fibrous Ca-alginate gel
US2302079A (en) Process for producing enzymes by the cultivation of micro-organisms on nitrogen and carbohydratecontaining mashes
KR940010020B1 (ko) 슈도모나스속 미생물의 배양방법 및 그 미생물을 사용하는 l-알라닌의 제조방법
Ikeda et al. Production of alkaline protease from acetic acid
RU2815972C1 (ru) Питательная среда для культивирования уреолитических бактерий
RU2053293C1 (ru) Способ получения биомассы бацилл
Gray Vibrio amylocella, n. sp., a soil organism that decomposes cellulose and produces glucose from starch
SU767196A1 (ru) Способ выращивани продуцентов литических ферментов
Dasari Optimization of parameters for the production of protease using Aspergillus flavus by solid state fermentation
SU644827A1 (ru) Способ получени фосфолипазы
KR102106479B1 (ko) 아네우리니바실러스 미굴라너스(aneurinibacillus migulanus) 균주 및 이의 용도
SU1161551A1 (ru) Штамм @ @ 2-82-продуцент пектат-лиазы
SU1386657A1 (ru) Питательна среда дл культивировани кампилобактерий
RU1804479C (ru) Способ получени культуральной жидкости SеRRатIа маRсеSсеNS, обладающей хитиназной активностью
SU1159951A1 (ru) Питательна среда дл выращивани @ @ @ -38-продуцента ЭЗКО- @ - @ -ацетилглюкозаминидазы
SU1479513A1 (ru) Способ получени формиатдегидрогеназы
SU1163636A1 (ru) Штамм ацидофильных метилотрофных бактерий @ @ ВСБ-924-продуцент белка
SU1629315A1 (ru) Штамм бактерий АстнRовастеR Sp., разлагающий флороглюцин
SU990812A1 (ru) Способ получени бактериальных амилаз