PL91810B1 - - Google Patents

Download PDF

Info

Publication number
PL91810B1
PL91810B1 PL17597268A PL17597268A PL91810B1 PL 91810 B1 PL91810 B1 PL 91810B1 PL 17597268 A PL17597268 A PL 17597268A PL 17597268 A PL17597268 A PL 17597268A PL 91810 B1 PL91810 B1 PL 91810B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
mycelium
raffinose
environment
galactosidase
units
Prior art date
Application number
PL17597268A
Other languages
English (en)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed filed Critical
Publication of PL91810B1 publication Critical patent/PL91810B1/pl

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarza- aaia a-galaktozydazy.
Odrzucana dotychczas melasa, otrzymana po od¬ zyskaniu sacharozy z buraków cukrowych, mimo faktu, ze okolo 50% sacharozy pozostawalo nadal w melasie, byla stosowana jako surowiec do fer¬ mentacji alkoholowej lub jako karma. Przyczyna, dla której sacharoza, pozostajaca w melasie, nie moze byc odzyskana w przystepny sposób jest fakt, ze rafinoza obecna w melasie przeszkadza* normalnej krystalizacji sacharozy. Hydroliza rafi¬ nozy w melasie przy uzyciu a-galaktozydazy umoz¬ liwia wyeliminowanie dzialania rafinozy, zaklóca¬ jacego krystalizacje cukru, co powoduje wzrost wydajnosci cukru buraczanego. Ponadto, poniewaz a-galaktozydaza rozklada rafinoze na sacharoze i galaktoze, okolo 2/3 rozlozonej rafinozy odzysku¬ je sie w postaci sacharozy.
Znane sa sposoby otrzymywania a-galaktozyda¬ zy z drozdzy, lecz a-galaktozydaza, otrzymana ty¬ mi sposobami, jest droga i. zawiera inwertaze, wskutek czego produkt ten stoscwac mozna je± dynie do celów analitycznych, a nie do prze¬ myslowej produkcji cukru z buraków.
W pracach nad hydroliza rafinozy w soku lub melasie buraczanej przy zastosowaniu a-galakto¬ zydazy, wytworzonej przez mikroorganizmy, udalo sie wyodrebnic z gleby mikroorganizm, który wy¬ twarza a-galaktozydaze, a prawie zupelnie nie wytwarza inwertazy. 2 Stwierdzono równiez mozliwosc wielokrotnego zastosowania grzybni, zawierajacej a-galaktozyda¬ ze, do rozkladu rafinozy w róznych szarzach soku buraczanego lub melasy buraczanej.
Stwierdzono, ze, gdy omówiony wyzej mikro¬ organizm zaszczepi sie i hoduje wf, srodowisku syntetycznym, zawierajacym pozywke, to wytwo¬ rzona zostaje a-galaktozydaza, przy czym znacz¬ na jej czesc pozostaje w grzybni mikroorganizmu.
Opracowano sposób wytwarzania a-galaktozydazy wewnatrzkomórkowo przez dodanie do srodowiska, zawierajacego laktoze, galaktoze, melibioze lub galaktoze, otrab ryzowych, makuch rzepakowych, mielonego stodu, slodu kukurydzy, soku kukury¬ dzianego lub ich ekstraktów.
Mikroorganizm, stosowany w sposobie wedlug wynalazku, wyodrebniono z gleby w miescie Chiba w Japonii, przy czym .jego wlasnosci morfologicz¬ ne odpowiadaja wlasnosciom plesni Mortierella vi- nacea, odkrytej przez Dixona-Stewarta (Manual of Soil Fungi, Gilman, wydanie drugie, The Iowa State Collega Press-Ames, Iowa, U.S.A.), przy czym mikroorganizm wytwarza a-galaktozydaze, ale pra¬ wie nie wytwarza inwertazy. Odmianie tej na¬ dano nazwe Mortierella vinacea var. raffinoseuti- lizer i zostala ona zdeponowana w Stanach Zjed¬ noczonych Ameryki w American-Type Culture Col- lection pod numerem ATCC Nr 20034.
Wlasnosci Mortierella vinacea var. raffinoseuti- lizer przedstawiaja sie nastepujaco: 9181091810 3 Mikroskopowe obserwacje owocnika, wyhodo¬ wanego na podlozu agarowym ekstraktu slodu, ujawnily rozgalezienia zarodni o srednicy 3—4//, jasno-brazowe zarodnie prawie kuliste o srednicy —20ii i nie zawierajace szyjki slupka oraz nie- 5 regularnie kanciaste zarodniki o wymiarach 2,7— —5a.
Mikroskopowe obserwacje plesni w róznych sro¬ dowiskach agarowych pozwolily na ustalenie na¬ stepujacych cech: 10 — agar z ekstraktem slodu: grzybnia ma wyglad gestej plesni i zmienia kolor od bialego do jasno brazowego lub ciem¬ no pomaranczowego w miare dojrzewania za¬ rodników. Nie wytwarza rozpuszczalnego barw- 15 nika w srodowisku, — agar ziemniaczario-glukozowy: grzybnia zmienia kolor od bialego do jasno brazowego w miare dojrzewania zarodników.
Nie wytwarza rozpuszczalnego barwnika w sro- 20 dowisku, — agar z ekstraktem drozdzy i ekstraktem slodu: grzybnia zmienia kolor od bialego do bezowego w miare dojrzewania zarodników. Nie wytwa¬ rza rozpuszczalnego barwnika w srodowisku. 25 a-galaktozydaze wytwarza sie z dobrym wyni¬ kiem w komórce plesni Mortierella vinacea var. raffinoseutilizer jezeli plesn te zaszczepia sie w srodowisku, zawierajacym laktoze, galaktozydaze, melibioze lub rafinoze z dodatkiem otrab ryzo- 30 wych, makuch rzepakowych, mielonego slodu, slo¬ du kukurydzy lub soku z kukurydzy lub wyciagu któregos z powyzszych sladników, hodujac ja w temperaturze okolo 30°C.
Grzybnie, zawierajaca wytworzona a-galaktozy- 35 daze lub a-galaktozydaze, wydzielona i wyekstra¬ howana ze srodowiska znanym sposobem, dodaje sie do soku buraczanego lub melasy buraczanej, ustalajac wartosc pH na 3—7 i prowadzi sie fer¬ mentacje w temperaturze 20—70°C. Rafinoza, któ¬ ra hamuje formowanie sie krysztalów sacharozy, rozklada sie, i dzieki temu zwieksza sie ilosc krysztalów sacharozy. Ponadto, poniewaz rafinoza rozklada sie na galaktoze i sacharoze, wydajnosc sacharozy wydatnie zwieksza sie.
Przyklady I—V przedstawiaja sposoby wytwa¬ rzania a-galaktozydazy w plesni, a przyklady VI—X przedstawiaja sposoby rozkladu rafinozy w melasie buraczanej przy uzyciu a-galaktozydazy, wytworzonej w grzybni. 50 Pomiary aktywnosci a-galaktozydazy dokonywa¬ no wedlug nizej podanego sposobu.
Wywoluje sie enzymatyczna reakcje w tempe¬ raturze 40°C w ciagu 2 godzin przez dodanie 1 ml zawiesiny grzybni do mieszaniny 0,5 ml 0,06 M, 55 melibiozy i 0,5 ml 0,1 M fosforanowego roztworu buforowego o wartosci pH = 5,2, nastepnie otrzy¬ muje sie mieszanine reakcyjna w ciagu 5 minut we wrzacej wodzie w celu dezaktywacji a-galakto¬ zydazy i dodaje 1 ml 1,8% Ba(OH)2 * 8H20 oraz $q 1 ml 2% ZnS04 • 7H20. Po rozwarstwieniu mie¬ szaniny na wirówce ustala sie ilosciowo glukoze w cieczy. Aktywnosc a-galaktozydazy, która po¬ woduje wytworzenie 1 /ug glukozy w tych warun¬ kach reakcji, okreslona jest jako jednostka od- 65 40 45 niesienia. Poniewaz ilosc uwolnionej glukozy i ste¬ zenia enzymu sa zwiazane liniowa zaleznoscia, az do ilosci 1000 jug glukozy, koncentracje roz¬ tworu enzymu ustala sie przez rozcienczenie do ilosci enzymu w zakresie wymienionej wyzej za¬ leznosci, nastepnie przeprowadza sie reakcje enzy¬ matyczna, a w 'koncu mnozy ilosc uwolnionej glu¬ kozy przez wielokrotnosc rozcienczenia.
Przyklad I. Zarodniki plesni Mortierella vi- nacea var. raifinoseutilizer zaszczepiono w srodo¬ wisku, skladajacym sie z 0,1 M buforowego roz¬ tworu fosforanowego o wartosci pH = 6,0, hodo¬ wano w temperaturze 30°C w ciagu 72 godzin, w srodowisku nastepujacej mieszaniny; weglowo¬ dany 0,2%, peptony 0,3%, ekstrakt miesny 0,3%, KC1 0,2%, MgS04-7H20 0,2%.
Po zakonczeniu hodowli w ustalonym czasie od¬ dzielono grzybnie przez odsaczenie, przemyto ja dokladnie woda i roztarto w mozdzierzu lacznie z piaskiem morskim na paste. Nastepnie uzupel¬ niono woda destylowana do pierwotnej objetosci, to jest objetosci zawieszonej grzybni przed odsa¬ czeniem.
Aktywnosc enzymu podano w tabeli I. Dotyczy ona aktywnosci a-galaktozydazy grzybni, zebranej z 1 ml tego srodowiska w odniesieniu do róznych weglowodanów.
Tabela I Rodzaj weglowodanu Ksyloza Arabinoza Ramnoza Glukoza Mannoza Fruktoza Galaktoza Maltoza Celobioza Laktoza Melibioza Sacharoza Rafinoza f Rozpuszczalna skrobia Dekstran Jednostki a-G w grzybni 0 0 0 0 0 1013 4 0 3426 1776 0 2250 0 0 | Jak widac z powyzszej tabeli, galaktoza, rafi¬ noza, melibioza i laktoza skutecznie powodowaly tworzenie sie a-galaktozydazy w grzybni plesni Mortierella vinacea var. raffinoseutilizer.
Przyklad II. 0,1 M buforowy roztwór fosfo¬ ranowy o wartosci pH = 6,0, zawierajacy 1,5% laktozy, 1% glukozy, 0,3% mocznika, 0,2% siar¬ czanu magnezu i 0,2% chlorku potasu, przygoto¬ wano jako srodowisko zasadnicze. Do tego sro¬ dowiska w oddzielnych próbach dodano substan¬ cje wymienione w tabeli II, kazda w ilosci 3%, przygotowujac srodowisko hodowli, które nastep¬ nie zaszczepiono plesnia Mortierella vinacea var. raffinoseutilizer i prowadzono hodowle w tempe¬ raturze 30°C w ciagu 72 godzin na wstrzasarce.
Po zakonczeniu hodowli calosc produktu przesa¬ czono, oddzielajac grzybnie, która nastepnie po przemyciu woda roztarto w mozdzierzu z piaskiem91810 morskim na paste. Z pasty przygotowano zawie¬ sine przez dodanie destylowanej wody w uzupel¬ niajacej ilosci do wyjsciowej objetosci srodowiska i zawiesine zastosowano jako ciecz enzymatyczna.
Jednostki a-galaktozydazy, podane w tabeli II, przedstawiaja aktywnosc a-galaktozydazy w grzyb¬ ni, zebranej z 1 ml srodowiska.
Tabela II Substancja Otreby pszeniczne Placek rybny Makuch sojowy Otreby ryzowe Makuch rzepakowy Kukurydza Slód Mielony slód Wytloki browarnicze Namok kukurydzy Jednostki a-G 9453 276 70 32350 17381 39616 33920 29984 365 25880 Przyklad III. Do srodowiska zasadniczego, przygotowanego w sposób, jak podano w przykla¬ dzie II, dodawano przesacz, otrzymany z ekstraktu otrab ryzowych goraca woda lub tez przesacz, poddany dzialaniu amylazy i po dodaniu bakte¬ ryjnej a-arnylazy oraz po przeprowadzeniu reak¬ cji enzymatycznej do momentu uzyskania ujem¬ nej reakcji z jodem. Ilosc odpowiedniego przesa¬ czu wynosila 3% w stosunku do ilosci otrab ryzo¬ wych. Plesn Mortierella vinacea var. raffinoseuti- lizer hodowano w sposób, opisany w przykladzie II i oceniano aktywnosc enzymatyczna w grzybni.
Otrzymane wyniki przedstawia tabela III.
Tabela III Substancja Otreby ryzowe, nie poddane obróbce Przesacz, otrzymany z eks¬ traktu otrab ryzowych przy uzyciu goracej wcdy Przesacz ekstraktu otrab ry¬ zowych, poddany dzialaniu a-amylazy Jednostki a-G 32191 34495 38250 Przyklad IV. Jako zasadnicze srodowisko uzyto 0,1 M buforowy roztwór fosforanowy o war¬ tosci pH = 6,0, zawierajacy 1,5% laktozy, 3% otrab ryzowych, 0,3% mocznika, 0,2% siarczanu magnezu i 0,2% chlorku potasu, do którego do¬ dawano odpowiednio 0,2%, 0,5% i 1% proszkowa¬ nego ekstraktu slodu w celu przygotowania sro¬ dowiska hodowli. Hodowle prowadzono w sposób, jak opisano w przykladzie II i oceniano aktyw¬ nosc a-galaktozydclzy w grzybni. Aktywnosc enzy¬ matyczna wynosila: 27806 jednostek ze srodowiska zasadniczego, 29634 jednostek ze srodowiska z 0,2% ekstraktu slodu, 35577 jednostek ze srodowiska z 0,5% ekstraktu slodu oraz 43349 jednostek ze srodowiska z 1% ekstraktu slodu. 50 55 Przyklad V. W 1 1 wody rozpuszczono 100 g laktozy, 100 g glukozy, 100 g namoku kukurydzy, IDO g siarczanu amonu, 30 g KH2P04, 30 g Mg S04 • 7H20, 20 g NaCl i 100 g CaCOa. Otrzymany roztwór umieszczono w kadzi fermentacyjnej i po sterylizacji w temperaturze 120°C w ciagu 30 mi¬ nut, ochlodzono do 30°C. Nastepnie przy uzyciu sterylizowanej -wody rozcienczono roztwór do lacz¬ nej objetosci 10 1 i zaszczepiono zarodnikami plesni Mortierella yinacea var. raffinoseutilizer, prowa¬ dzac hodowle w temperaturze 30°C przy szybkosci mieszania 200 obrotów na minute i napowietrzaniu z szybkoscia 5 1 na minute. Wyniki hodowli przed¬ stawiono w tabeli IV.
Tabela IV Czas hodowli (godz.) PH Ciezar suchej grzybni mg/ /100 ml srodo¬ wiska Jednostki a-G 24 6,4 1,165 2670 48 6,3 1,539 11260 72 6,3 1,789 26600 77 6,3 1,852 33650. 90 6,5 1,801 33010 | Przyklad VI. 0,1 M fosforanowy roztwór buforowy, zawierajacy 0,75% laktozy, 2% glukozy, 1,8% peptonu, 1,8% ekstraktu miesnego, 0,2% siar¬ czanu magnezu i 0,2% chlorku potasu zaszczepiono plesnia Mortierella yinacea var. raffinoseutilizer i hodowano ja, wstrzasajac w ciagu 72 godzin.
Po zakonczeniu hodowli grzybnie odsaczono, prze¬ myto dokladnie woda i odwazono okreslona na- wazke w celu uzycia jej jako enzymu. Ilosc pow¬ stalego a-G 3500 jednostek na 1 ml przesaczu sro¬ dowiska i 28400 jednostek w grzybni, zebranej z 1 ml srodowiska.
Z drugiej ¦ strony do 10 g melasy buraczanej, o zawartosci rafinozy 1,088 g, dodano kwasu siar¬ kowego do uzyskania pH srodowiska wartosci 5,2, a nastepnie dodano 0,1 M fosforanowego roztworu buforowego o wartosci pH = 5,2 i rozcienczono woda do 20° Brixa.
Do tak przygotowanej rozcienczonej melasy bu¬ raczanej dodano grzybnie, wytworzona ze 100 ml srodowiska i przeprowadzano proces enzymatyczny w temperaturze 50°C w ciagu 24 godzin z wstrza¬ saniem. W otrzymanym przesaczu zmierzono w sposób ilosciowy- ilosc sacharozy i zwiekszona ilosc sacharozy elucyjna metoda chromatografii bibulo¬ wej. Przy uzyciu grzybni o aktywnosci enzyma¬ tycznej 450000 stopien rozkladu rafinozy i przy¬ rost ilosci sacharozy wynosily odpowiednio 70,4% i 364 mg, a przy uzyciu grzybni o aktywnosci enzymatycznej równej 900.000 jednostek, wynosily odpowiednio 81,5% i 544 mg.
Przyklad VII. Plesn hodowano w warun- 60 kach, jak opisano w przykladzie VI, stosujac ta¬ kie same ilosci grzybni jako enzym.
Z drugiej strony- do 10 g melasy buraczanej o zawartosci rafinozy, 1,088 g dodano kwasu siar¬ kowego oraz fosforanowego roztworu buforowego 65 o wartosci pH = 5,2 i rozcienczono mieszanine do91810 8 36° Brixa. Nastepnie do rozcienczonej melasy bu¬ raczanej dodano 1.700.000 jednostek enzymu i prze¬ prowadzono reakcje enzymatyczna w temperatu¬ rze 37°C, w ciagu 24 godzin z potrzasaniem. Po zakonczeniu reakcji, mieszanine reakcyjna prze¬ saczono i w przesaczu zmierzono stopien rozkladu rafinozy oraz przyrost ilosci sacharozy. Po doklad¬ nym przemyciu grzybni woda próbowano stosowac grzybnie powtórnie w róznych rozcienczonych roz¬ tworach melasy buraczanej, posiadajacej ten sam uklad. Wyniki, uzyskane po trzykrotnym uzyciu grzybni, przedstawia tabela V.
Tabela V Krotnosc stosowania grzybni 1 2 1 - ,3 Przyrost ilosci sacharozy mg 372 426 390 Rozklad rafinozy % 67,3 72,7 67,3 Koncowa aktywnosc a-G % | 98 84 55 Przyklad VIII. Plesn hodowano w srodowi¬ sku o. tym samym skladzie, jak w przykladzie VI.
Grzybnie zhomogenizowano w homogenizatorze, a nastepnie rozrywano komórki w ciagu 1 godziny przy uzyciu generatora ultradzwiekowego o cze¬ stotliwosci 10 kilocyklów. Zniszczona grzybnie od¬ wirowano w celu oddzielenia cieczy od osadu i oznaczono aktywnosc a-G w kazdej czesci.
Stwierdzono, ze aktywnosc enzymatyczna w cie¬ czy wynosila 39%, a w osadzie 61%. Nastepnie przeprowadzono rozklad rafinozy, stosujac 1.750.000 jednostek wymienionego osadu jako enzymu, w sposób, jak w przykladzie VII. Otrzymane wy¬ niki przedstawiono w tabeli VI.
Tabela VI Krotnosc 1 stosowana grzybni 1 2 1 3 Przyrost ilosci sacharozy mg 262 244 244 Rozklad rafinozy % 67,3 65,4 50,9 Koncowa aktywnosc a-G % 61 44 29 Rozklad rafinozy wykonano takze przez zateze- nie przesaczu pod zmniejszonym cisnieniem, do¬ danie 1.750.000 jednostek a-G do 10 g melasy bu¬ raczanej o zawartosci rafinozy 1,088 g nastawienie otrzymanej mieszaniny do wartosci pH = 5,2 oraz stezenie 36° Brixa,. stosujac odpowiednio wode i kwas siarkowy, a nastepnie pozostawienie mie¬ szaniny w ciagu 24 godzin, w temperaturze 37°C.
Stwierdzono, ze stopien rozkladu rafinozy wyno¬ sil 65,3%, a przyrost ilosci sacharozy 260 mg.
Przyklad IX. Przygotowano srodowisko, za¬ wierajace 1,5% laktozy, 0,5% glukozy, 1% namoku kukurydzy, 0,1% mocznika, 0,1% siarczanu amonu, 0,3% KH2P04, 0,2% MgS04-7H20 i 0,2% NaCl, na¬ stepnie po sterylizacji zaszczepiono srodowisko 40 45 56 GO zarodnikami plesni i hodowano w temperaturze °C w ciagu 72 godzin. Stwierdzono, ze liczba jednostek a-G w grzybni, zebranej z 1 ml srodo¬ wiska, wynosila 28.000.
Z drugiej strony 10 g melasy buraczanej o za¬ wartosci rafinozy 1,088 g rozcienczono woda do ° Brixa i nastawiono do wartosci pH = 5,2, sto¬ sujac kwas siarkowy. Do rozcienczonego roztworu melasy buraczanej dodano grzybnie o zawartosci 980.000 jednostek a-G i przeprowadzono reakcje enzymatyczna odpowiednio w temperaturze 20°C, °C, 40°C, 50°C, 60°C i 70°C w ciagu 24 godzin z potrzasaniem, a nastepnie mierzono stopien przemiany rafinozy. Otrzymane wyniki zestawiono w tabeli VII.
Tabela VII Temperatura reakcji | °C 40 50 60 70 Stopien rozkladu rafinozy % 42,1 * 78,2 80,1 83,5 78,0 53,9 Przeprowadzono równiez reakcje enzymatyczna rozcienczonej 10 g melasy buraczanej o zawar¬ tosci rafinozy 1.088 g roztworem Mcylvaine'a do ° Brixa, przy odpowiednich wartosciach pH = 2,2; 3; 4; 5; 6; 7 i 8, dodajac 980.000 jednostek grzybni i wytrzasajac otrzymany roztwór w temperaturze 50°C w ciagu 6 godzin. Stopien rafinozy przedsta¬ wia tabela VIII.
Tabela VIII pH mieszaniny reakcyjnej 2,2 3 4 6 7 8 Stopien rozkladu rafinozy % 11,0 61,2 80,5 80,7 51,9 38,1 12,0 Przyklad X. 10 g melasy buraczanej o za¬ wartosci rafinozy 1.088 g rozcienczono woda do ° Brixa i doprowadzono pH do wartosci 5,2 kwa¬ sem siarkowym. Do otrzymanego roztworu do¬ dano 980.000 jednostek tej samej grzybni, jaka stosowano w przykladzie IX', i przeprowadzono reakcje enzymatyczna w temperaturze 50°C w cia¬ gu 5 godzin z potrzasaniem. Nastepnie grzybnie przemyto . dokladnie woda i dodano do róznych rozcienczonych melas buraczanych, majacych ten sam sklad, jak powyzej w celu przeprowadzenia rozkladu rafinozy kilkakrotnie w warunkach ta¬ kich samych, jak powyzej. Wyniki, otrzymane podczas trzykrotnego stosowania, podano w ta¬ beli IX.91 810 9 10 Tabela IX *

Claims (2)

Zastrzezenia patentowe Krotnosc stosowania grzybni 1 2 3 Rozklad rafinozy % 77,3 74,6 65,3 Koncowa aktywnosc a-G '% 79,4 66,6 58,3
1. Sposób wytwarzania cc-galaktozydazy przez hodowle mikroorganizmu, znamienny tym, ze ho¬ duje sie plesn Mortierella vinacea var. raffinoseu- tilizer ATTCC 20034 w srodowisku, zawierajacym pozywke, w temperaturze 30°C.
2. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze jako pozywke stosuje sie laktoze, galaktóze, me- libioze lub rafinoze.
PL17597268A 1967-06-14 1968-03-27 PL91810B1 (pl)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP3798067 1967-06-14

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL91810B1 true PL91810B1 (pl) 1977-03-31

Family

ID=12512699

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL17597268A PL91810B1 (pl) 1967-06-14 1968-03-27

Country Status (2)

Country Link
PL (1) PL91810B1 (pl)
SU (1) SU461513A3 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
SU461513A3 (ru) 1975-02-25

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Chi et al. Bioproducts from Aureobasidium pullulans, a biotechnologically important yeast
EP0251018B1 (en) Feeds for larvae of crustaceans and shellfish
CN103004659B (zh) 一种四大家鱼鱼苗养殖方法
TW200909575A (en) Method for producing cellulase and hemicellulase having high hydrolytic activity
US3647625A (en) Method of reducing raffinose content of beet molasses
Chakrabortty et al. Optimization of process parameters for chitinase production by a marine isolate of Serratia marcescens
DE2453111A1 (de) Verfahren zur herstellung von neuen enzymen
DE112014003580T5 (de) β-1,3-Glucanase, Polynukleotid, rekombinanter Vektor, Transformant, Herstellungsverfahren für β-1,3-Glucanase, Enzymherstellung und Herstellung von Paramylon mit reduziertem Molekulargewicht
DE1807185C3 (de) Verfahren zur Herstellung von proteolytische Enzyme enthaltenden Aufbereitungen und deren Verwendung
CA1039672A (en) PRODUCTION OF .alpha.-GALACTOSIOASE BY PENICILLIUM DUPONTI
CN105018544A (zh) 具有促进海参生长和抗逆作用的卡拉胶寡糖及其制法和应用
DK164070B (da) Fremgangsmaade til fremstilling af et sammensat cellulase/xylanase-enzympraeparat
DE1932981B2 (de) Verfahren zur biotechnischen herstellung eines enzyms lipase
Haggett et al. Mutants of Cellulomonas which produce increased levels of β-glucosidase
Yabuki et al. Rapid method for converting fungal cells into protoplasts with a high regeneration frequency
Aziz et al. Bioconversion of acid-and gamma-ray-treated sweet potato residue to microbial protein by mixed cultures
Araki et al. Purification and characterization of a novel exo-β-mannanase from Aeromonas sp. F-25
Peberdy Protoplasts from fungi
PL91810B1 (pl)
Yamasaki et al. Isolation of bacteria that decompose major polysaccharides in the cell wall of the marine red alga Porphyra yezoensis and their application for protoplast production
PL79287B1 (pl)
RU2725475C1 (ru) Рекомбинантный штамм дрожжей Pichia pastoris - продуцент ксиланазы из Pyromyces finnis
DE2554407A1 (de) Herstellung thermostabiler lactase
RU2747782C1 (ru) Рекомбинантный штамм дрожжей Ogataea haglerorum, продуцирующий бета-маннаназу Bacillus subtilis
EP0151708B1 (en) Method for preparing protoplasts of laver thallus