PL91810B1 - - Google Patents
Download PDFInfo
- Publication number
- PL91810B1 PL91810B1 PL17597268A PL17597268A PL91810B1 PL 91810 B1 PL91810 B1 PL 91810B1 PL 17597268 A PL17597268 A PL 17597268A PL 17597268 A PL17597268 A PL 17597268A PL 91810 B1 PL91810 B1 PL 91810B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- mycelium
- raffinose
- environment
- galactosidase
- units
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarza-
aaia a-galaktozydazy.
Odrzucana dotychczas melasa, otrzymana po od¬
zyskaniu sacharozy z buraków cukrowych, mimo
faktu, ze okolo 50% sacharozy pozostawalo nadal
w melasie, byla stosowana jako surowiec do fer¬
mentacji alkoholowej lub jako karma. Przyczyna,
dla której sacharoza, pozostajaca w melasie, nie
moze byc odzyskana w przystepny sposób jest
fakt, ze rafinoza obecna w melasie przeszkadza*
normalnej krystalizacji sacharozy. Hydroliza rafi¬
nozy w melasie przy uzyciu a-galaktozydazy umoz¬
liwia wyeliminowanie dzialania rafinozy, zaklóca¬
jacego krystalizacje cukru, co powoduje wzrost
wydajnosci cukru buraczanego. Ponadto, poniewaz
a-galaktozydaza rozklada rafinoze na sacharoze
i galaktoze, okolo 2/3 rozlozonej rafinozy odzysku¬
je sie w postaci sacharozy.
Znane sa sposoby otrzymywania a-galaktozyda¬
zy z drozdzy, lecz a-galaktozydaza, otrzymana ty¬
mi sposobami, jest droga i. zawiera inwertaze,
wskutek czego produkt ten stoscwac mozna je±
dynie do celów analitycznych, a nie do prze¬
myslowej produkcji cukru z buraków.
W pracach nad hydroliza rafinozy w soku lub
melasie buraczanej przy zastosowaniu a-galakto¬
zydazy, wytworzonej przez mikroorganizmy, udalo
sie wyodrebnic z gleby mikroorganizm, który wy¬
twarza a-galaktozydaze, a prawie zupelnie nie
wytwarza inwertazy.
2
Stwierdzono równiez mozliwosc wielokrotnego
zastosowania grzybni, zawierajacej a-galaktozyda¬
ze, do rozkladu rafinozy w róznych szarzach soku
buraczanego lub melasy buraczanej.
Stwierdzono, ze, gdy omówiony wyzej mikro¬
organizm zaszczepi sie i hoduje wf, srodowisku
syntetycznym, zawierajacym pozywke, to wytwo¬
rzona zostaje a-galaktozydaza, przy czym znacz¬
na jej czesc pozostaje w grzybni mikroorganizmu.
Opracowano sposób wytwarzania a-galaktozydazy
wewnatrzkomórkowo przez dodanie do srodowiska,
zawierajacego laktoze, galaktoze, melibioze lub
galaktoze, otrab ryzowych, makuch rzepakowych,
mielonego stodu, slodu kukurydzy, soku kukury¬
dzianego lub ich ekstraktów.
Mikroorganizm, stosowany w sposobie wedlug
wynalazku, wyodrebniono z gleby w miescie Chiba
w Japonii, przy czym .jego wlasnosci morfologicz¬
ne odpowiadaja wlasnosciom plesni Mortierella vi-
nacea, odkrytej przez Dixona-Stewarta (Manual
of Soil Fungi, Gilman, wydanie drugie, The Iowa
State Collega Press-Ames, Iowa, U.S.A.), przy czym
mikroorganizm wytwarza a-galaktozydaze, ale pra¬
wie nie wytwarza inwertazy. Odmianie tej na¬
dano nazwe Mortierella vinacea var. raffinoseuti-
lizer i zostala ona zdeponowana w Stanach Zjed¬
noczonych Ameryki w American-Type Culture Col-
lection pod numerem ATCC Nr 20034.
Wlasnosci Mortierella vinacea var. raffinoseuti-
lizer przedstawiaja sie nastepujaco:
9181091810
3
Mikroskopowe obserwacje owocnika, wyhodo¬
wanego na podlozu agarowym ekstraktu slodu,
ujawnily rozgalezienia zarodni o srednicy 3—4//,
jasno-brazowe zarodnie prawie kuliste o srednicy
—20ii i nie zawierajace szyjki slupka oraz nie- 5
regularnie kanciaste zarodniki o wymiarach 2,7—
—5a.
Mikroskopowe obserwacje plesni w róznych sro¬
dowiskach agarowych pozwolily na ustalenie na¬
stepujacych cech: 10
— agar z ekstraktem slodu:
grzybnia ma wyglad gestej plesni i zmienia
kolor od bialego do jasno brazowego lub ciem¬
no pomaranczowego w miare dojrzewania za¬
rodników. Nie wytwarza rozpuszczalnego barw- 15
nika w srodowisku,
— agar ziemniaczario-glukozowy:
grzybnia zmienia kolor od bialego do jasno
brazowego w miare dojrzewania zarodników.
Nie wytwarza rozpuszczalnego barwnika w sro- 20
dowisku,
— agar z ekstraktem drozdzy i ekstraktem slodu:
grzybnia zmienia kolor od bialego do bezowego
w miare dojrzewania zarodników. Nie wytwa¬
rza rozpuszczalnego barwnika w srodowisku. 25
a-galaktozydaze wytwarza sie z dobrym wyni¬
kiem w komórce plesni Mortierella vinacea var.
raffinoseutilizer jezeli plesn te zaszczepia sie w
srodowisku, zawierajacym laktoze, galaktozydaze,
melibioze lub rafinoze z dodatkiem otrab ryzo- 30
wych, makuch rzepakowych, mielonego slodu, slo¬
du kukurydzy lub soku z kukurydzy lub wyciagu
któregos z powyzszych sladników, hodujac ja w
temperaturze okolo 30°C.
Grzybnie, zawierajaca wytworzona a-galaktozy- 35
daze lub a-galaktozydaze, wydzielona i wyekstra¬
howana ze srodowiska znanym sposobem, dodaje
sie do soku buraczanego lub melasy buraczanej,
ustalajac wartosc pH na 3—7 i prowadzi sie fer¬
mentacje w temperaturze 20—70°C. Rafinoza, któ¬
ra hamuje formowanie sie krysztalów sacharozy,
rozklada sie, i dzieki temu zwieksza sie ilosc
krysztalów sacharozy. Ponadto, poniewaz rafinoza
rozklada sie na galaktoze i sacharoze, wydajnosc
sacharozy wydatnie zwieksza sie.
Przyklady I—V przedstawiaja sposoby wytwa¬
rzania a-galaktozydazy w plesni, a przyklady
VI—X przedstawiaja sposoby rozkladu rafinozy
w melasie buraczanej przy uzyciu a-galaktozydazy,
wytworzonej w grzybni. 50
Pomiary aktywnosci a-galaktozydazy dokonywa¬
no wedlug nizej podanego sposobu.
Wywoluje sie enzymatyczna reakcje w tempe¬
raturze 40°C w ciagu 2 godzin przez dodanie 1 ml
zawiesiny grzybni do mieszaniny 0,5 ml 0,06 M, 55
melibiozy i 0,5 ml 0,1 M fosforanowego roztworu
buforowego o wartosci pH = 5,2, nastepnie otrzy¬
muje sie mieszanine reakcyjna w ciagu 5 minut
we wrzacej wodzie w celu dezaktywacji a-galakto¬
zydazy i dodaje 1 ml 1,8% Ba(OH)2 * 8H20 oraz $q
1 ml 2% ZnS04 • 7H20. Po rozwarstwieniu mie¬
szaniny na wirówce ustala sie ilosciowo glukoze
w cieczy. Aktywnosc a-galaktozydazy, która po¬
woduje wytworzenie 1 /ug glukozy w tych warun¬
kach reakcji, okreslona jest jako jednostka od- 65
40
45
niesienia. Poniewaz ilosc uwolnionej glukozy i ste¬
zenia enzymu sa zwiazane liniowa zaleznoscia,
az do ilosci 1000 jug glukozy, koncentracje roz¬
tworu enzymu ustala sie przez rozcienczenie do
ilosci enzymu w zakresie wymienionej wyzej za¬
leznosci, nastepnie przeprowadza sie reakcje enzy¬
matyczna, a w 'koncu mnozy ilosc uwolnionej glu¬
kozy przez wielokrotnosc rozcienczenia.
Przyklad I. Zarodniki plesni Mortierella vi-
nacea var. raifinoseutilizer zaszczepiono w srodo¬
wisku, skladajacym sie z 0,1 M buforowego roz¬
tworu fosforanowego o wartosci pH = 6,0, hodo¬
wano w temperaturze 30°C w ciagu 72 godzin,
w srodowisku nastepujacej mieszaniny; weglowo¬
dany 0,2%, peptony 0,3%, ekstrakt miesny 0,3%,
KC1 0,2%, MgS04-7H20 0,2%.
Po zakonczeniu hodowli w ustalonym czasie od¬
dzielono grzybnie przez odsaczenie, przemyto ja
dokladnie woda i roztarto w mozdzierzu lacznie
z piaskiem morskim na paste. Nastepnie uzupel¬
niono woda destylowana do pierwotnej objetosci,
to jest objetosci zawieszonej grzybni przed odsa¬
czeniem.
Aktywnosc enzymu podano w tabeli I. Dotyczy
ona aktywnosci a-galaktozydazy grzybni, zebranej
z 1 ml tego srodowiska w odniesieniu do róznych
weglowodanów.
Tabela I
Rodzaj weglowodanu
Ksyloza
Arabinoza
Ramnoza
Glukoza
Mannoza
Fruktoza
Galaktoza
Maltoza
Celobioza
Laktoza
Melibioza
Sacharoza
Rafinoza
f Rozpuszczalna skrobia
Dekstran
Jednostki a-G
w grzybni
0
0
0
0
0
1013
4
0
3426
1776
0
2250
0
0 |
Jak widac z powyzszej tabeli, galaktoza, rafi¬
noza, melibioza i laktoza skutecznie powodowaly
tworzenie sie a-galaktozydazy w grzybni plesni
Mortierella vinacea var. raffinoseutilizer.
Przyklad II. 0,1 M buforowy roztwór fosfo¬
ranowy o wartosci pH = 6,0, zawierajacy 1,5%
laktozy, 1% glukozy, 0,3% mocznika, 0,2% siar¬
czanu magnezu i 0,2% chlorku potasu, przygoto¬
wano jako srodowisko zasadnicze. Do tego sro¬
dowiska w oddzielnych próbach dodano substan¬
cje wymienione w tabeli II, kazda w ilosci 3%,
przygotowujac srodowisko hodowli, które nastep¬
nie zaszczepiono plesnia Mortierella vinacea var.
raffinoseutilizer i prowadzono hodowle w tempe¬
raturze 30°C w ciagu 72 godzin na wstrzasarce.
Po zakonczeniu hodowli calosc produktu przesa¬
czono, oddzielajac grzybnie, która nastepnie po
przemyciu woda roztarto w mozdzierzu z piaskiem91810
morskim na paste. Z pasty przygotowano zawie¬
sine przez dodanie destylowanej wody w uzupel¬
niajacej ilosci do wyjsciowej objetosci srodowiska
i zawiesine zastosowano jako ciecz enzymatyczna.
Jednostki a-galaktozydazy, podane w tabeli II,
przedstawiaja aktywnosc a-galaktozydazy w grzyb¬
ni, zebranej z 1 ml srodowiska.
Tabela II
Substancja
Otreby pszeniczne
Placek rybny
Makuch sojowy
Otreby ryzowe
Makuch rzepakowy
Kukurydza
Slód
Mielony slód
Wytloki browarnicze
Namok kukurydzy
Jednostki a-G
9453
276
70
32350
17381
39616
33920
29984
365
25880
Przyklad III. Do srodowiska zasadniczego,
przygotowanego w sposób, jak podano w przykla¬
dzie II, dodawano przesacz, otrzymany z ekstraktu
otrab ryzowych goraca woda lub tez przesacz,
poddany dzialaniu amylazy i po dodaniu bakte¬
ryjnej a-arnylazy oraz po przeprowadzeniu reak¬
cji enzymatycznej do momentu uzyskania ujem¬
nej reakcji z jodem. Ilosc odpowiedniego przesa¬
czu wynosila 3% w stosunku do ilosci otrab ryzo¬
wych. Plesn Mortierella vinacea var. raffinoseuti-
lizer hodowano w sposób, opisany w przykladzie II
i oceniano aktywnosc enzymatyczna w grzybni.
Otrzymane wyniki przedstawia tabela III.
Tabela III
Substancja
Otreby ryzowe, nie poddane
obróbce
Przesacz, otrzymany z eks¬
traktu otrab ryzowych przy
uzyciu goracej wcdy
Przesacz ekstraktu otrab ry¬
zowych, poddany dzialaniu
a-amylazy
Jednostki a-G
32191
34495
38250
Przyklad IV. Jako zasadnicze srodowisko
uzyto 0,1 M buforowy roztwór fosforanowy o war¬
tosci pH = 6,0, zawierajacy 1,5% laktozy, 3%
otrab ryzowych, 0,3% mocznika, 0,2% siarczanu
magnezu i 0,2% chlorku potasu, do którego do¬
dawano odpowiednio 0,2%, 0,5% i 1% proszkowa¬
nego ekstraktu slodu w celu przygotowania sro¬
dowiska hodowli. Hodowle prowadzono w sposób,
jak opisano w przykladzie II i oceniano aktyw¬
nosc a-galaktozydclzy w grzybni. Aktywnosc enzy¬
matyczna wynosila: 27806 jednostek ze srodowiska
zasadniczego, 29634 jednostek ze srodowiska z 0,2%
ekstraktu slodu, 35577 jednostek ze srodowiska
z 0,5% ekstraktu slodu oraz 43349 jednostek ze
srodowiska z 1% ekstraktu slodu.
50
55
Przyklad V. W 1 1 wody rozpuszczono 100 g
laktozy, 100 g glukozy, 100 g namoku kukurydzy,
IDO g siarczanu amonu, 30 g KH2P04, 30 g Mg
S04 • 7H20, 20 g NaCl i 100 g CaCOa. Otrzymany
roztwór umieszczono w kadzi fermentacyjnej i po
sterylizacji w temperaturze 120°C w ciagu 30 mi¬
nut, ochlodzono do 30°C. Nastepnie przy uzyciu
sterylizowanej -wody rozcienczono roztwór do lacz¬
nej objetosci 10 1 i zaszczepiono zarodnikami plesni
Mortierella yinacea var. raffinoseutilizer, prowa¬
dzac hodowle w temperaturze 30°C przy szybkosci
mieszania 200 obrotów na minute i napowietrzaniu
z szybkoscia 5 1 na minute. Wyniki hodowli przed¬
stawiono w tabeli IV.
Tabela IV
Czas hodowli
(godz.)
PH
Ciezar suchej
grzybni mg/
/100 ml srodo¬
wiska
Jednostki a-G
24
6,4
1,165
2670
48
6,3
1,539
11260
72
6,3
1,789
26600
77
6,3
1,852
33650.
90
6,5
1,801
33010 |
Przyklad VI. 0,1 M fosforanowy roztwór
buforowy, zawierajacy 0,75% laktozy, 2% glukozy,
1,8% peptonu, 1,8% ekstraktu miesnego, 0,2% siar¬
czanu magnezu i 0,2% chlorku potasu zaszczepiono
plesnia Mortierella yinacea var. raffinoseutilizer
i hodowano ja, wstrzasajac w ciagu 72 godzin.
Po zakonczeniu hodowli grzybnie odsaczono, prze¬
myto dokladnie woda i odwazono okreslona na-
wazke w celu uzycia jej jako enzymu. Ilosc pow¬
stalego a-G 3500 jednostek na 1 ml przesaczu sro¬
dowiska i 28400 jednostek w grzybni, zebranej
z 1 ml srodowiska.
Z drugiej ¦ strony do 10 g melasy buraczanej,
o zawartosci rafinozy 1,088 g, dodano kwasu siar¬
kowego do uzyskania pH srodowiska wartosci 5,2,
a nastepnie dodano 0,1 M fosforanowego roztworu
buforowego o wartosci pH = 5,2 i rozcienczono
woda do 20° Brixa.
Do tak przygotowanej rozcienczonej melasy bu¬
raczanej dodano grzybnie, wytworzona ze 100 ml
srodowiska i przeprowadzano proces enzymatyczny
w temperaturze 50°C w ciagu 24 godzin z wstrza¬
saniem. W otrzymanym przesaczu zmierzono w
sposób ilosciowy- ilosc sacharozy i zwiekszona ilosc
sacharozy elucyjna metoda chromatografii bibulo¬
wej. Przy uzyciu grzybni o aktywnosci enzyma¬
tycznej 450000 stopien rozkladu rafinozy i przy¬
rost ilosci sacharozy wynosily odpowiednio 70,4%
i 364 mg, a przy uzyciu grzybni o aktywnosci
enzymatycznej równej 900.000 jednostek, wynosily
odpowiednio 81,5% i 544 mg.
Przyklad VII. Plesn hodowano w warun-
60 kach, jak opisano w przykladzie VI, stosujac ta¬
kie same ilosci grzybni jako enzym.
Z drugiej strony- do 10 g melasy buraczanej
o zawartosci rafinozy, 1,088 g dodano kwasu siar¬
kowego oraz fosforanowego roztworu buforowego
65 o wartosci pH = 5,2 i rozcienczono mieszanine do91810
8
36° Brixa. Nastepnie do rozcienczonej melasy bu¬
raczanej dodano 1.700.000 jednostek enzymu i prze¬
prowadzono reakcje enzymatyczna w temperatu¬
rze 37°C, w ciagu 24 godzin z potrzasaniem. Po
zakonczeniu reakcji, mieszanine reakcyjna prze¬
saczono i w przesaczu zmierzono stopien rozkladu
rafinozy oraz przyrost ilosci sacharozy. Po doklad¬
nym przemyciu grzybni woda próbowano stosowac
grzybnie powtórnie w róznych rozcienczonych roz¬
tworach melasy buraczanej, posiadajacej ten sam
uklad. Wyniki, uzyskane po trzykrotnym uzyciu
grzybni, przedstawia tabela V.
Tabela V
Krotnosc
stosowania
grzybni
1
2
1 - ,3
Przyrost
ilosci
sacharozy
mg
372
426
390
Rozklad
rafinozy
%
67,3
72,7
67,3
Koncowa
aktywnosc
a-G
% |
98
84
55
Przyklad VIII. Plesn hodowano w srodowi¬
sku o. tym samym skladzie, jak w przykladzie VI.
Grzybnie zhomogenizowano w homogenizatorze,
a nastepnie rozrywano komórki w ciagu 1 godziny
przy uzyciu generatora ultradzwiekowego o cze¬
stotliwosci 10 kilocyklów. Zniszczona grzybnie od¬
wirowano w celu oddzielenia cieczy od osadu
i oznaczono aktywnosc a-G w kazdej czesci.
Stwierdzono, ze aktywnosc enzymatyczna w cie¬
czy wynosila 39%, a w osadzie 61%. Nastepnie
przeprowadzono rozklad rafinozy, stosujac 1.750.000
jednostek wymienionego osadu jako enzymu, w
sposób, jak w przykladzie VII. Otrzymane wy¬
niki przedstawiono w tabeli VI.
Tabela VI
Krotnosc
1 stosowana
grzybni
1
2
1 3
Przyrost
ilosci
sacharozy
mg
262
244
244
Rozklad
rafinozy
%
67,3
65,4
50,9
Koncowa
aktywnosc
a-G
%
61
44
29
Rozklad rafinozy wykonano takze przez zateze-
nie przesaczu pod zmniejszonym cisnieniem, do¬
danie 1.750.000 jednostek a-G do 10 g melasy bu¬
raczanej o zawartosci rafinozy 1,088 g nastawienie
otrzymanej mieszaniny do wartosci pH = 5,2 oraz
stezenie 36° Brixa,. stosujac odpowiednio wode
i kwas siarkowy, a nastepnie pozostawienie mie¬
szaniny w ciagu 24 godzin, w temperaturze 37°C.
Stwierdzono, ze stopien rozkladu rafinozy wyno¬
sil 65,3%, a przyrost ilosci sacharozy 260 mg.
Przyklad IX. Przygotowano srodowisko, za¬
wierajace 1,5% laktozy, 0,5% glukozy, 1% namoku
kukurydzy, 0,1% mocznika, 0,1% siarczanu amonu,
0,3% KH2P04, 0,2% MgS04-7H20 i 0,2% NaCl, na¬
stepnie po sterylizacji zaszczepiono srodowisko
40
45
56
GO
zarodnikami plesni i hodowano w temperaturze
°C w ciagu 72 godzin. Stwierdzono, ze liczba
jednostek a-G w grzybni, zebranej z 1 ml srodo¬
wiska, wynosila 28.000.
Z drugiej strony 10 g melasy buraczanej o za¬
wartosci rafinozy 1,088 g rozcienczono woda do
° Brixa i nastawiono do wartosci pH = 5,2, sto¬
sujac kwas siarkowy. Do rozcienczonego roztworu
melasy buraczanej dodano grzybnie o zawartosci
980.000 jednostek a-G i przeprowadzono reakcje
enzymatyczna odpowiednio w temperaturze 20°C,
°C, 40°C, 50°C, 60°C i 70°C w ciagu 24 godzin
z potrzasaniem, a nastepnie mierzono stopien
przemiany rafinozy. Otrzymane wyniki zestawiono
w tabeli VII.
Tabela VII
Temperatura reakcji
| °C
40
50
60
70
Stopien rozkladu
rafinozy %
42,1 *
78,2
80,1
83,5
78,0
53,9
Przeprowadzono równiez reakcje enzymatyczna
rozcienczonej 10 g melasy buraczanej o zawar¬
tosci rafinozy 1.088 g roztworem Mcylvaine'a do
° Brixa, przy odpowiednich wartosciach pH = 2,2;
3; 4; 5; 6; 7 i 8, dodajac 980.000 jednostek grzybni
i wytrzasajac otrzymany roztwór w temperaturze
50°C w ciagu 6 godzin. Stopien rafinozy przedsta¬
wia tabela VIII.
Tabela VIII
pH mieszaniny
reakcyjnej
2,2
3
4
6
7
8
Stopien rozkladu
rafinozy %
11,0
61,2
80,5
80,7
51,9
38,1
12,0
Przyklad X. 10 g melasy buraczanej o za¬
wartosci rafinozy 1.088 g rozcienczono woda do
° Brixa i doprowadzono pH do wartosci 5,2 kwa¬
sem siarkowym. Do otrzymanego roztworu do¬
dano 980.000 jednostek tej samej grzybni, jaka
stosowano w przykladzie IX', i przeprowadzono
reakcje enzymatyczna w temperaturze 50°C w cia¬
gu 5 godzin z potrzasaniem. Nastepnie grzybnie
przemyto . dokladnie woda i dodano do róznych
rozcienczonych melas buraczanych, majacych ten
sam sklad, jak powyzej w celu przeprowadzenia
rozkladu rafinozy kilkakrotnie w warunkach ta¬
kich samych, jak powyzej. Wyniki, otrzymane
podczas trzykrotnego stosowania, podano w ta¬
beli IX.91 810
9 10
Tabela IX *
Claims (2)
1. Sposób wytwarzania cc-galaktozydazy przez hodowle mikroorganizmu, znamienny tym, ze ho¬ duje sie plesn Mortierella vinacea var. raffinoseu- tilizer ATTCC 20034 w srodowisku, zawierajacym pozywke, w temperaturze 30°C.
2. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze jako pozywke stosuje sie laktoze, galaktóze, me- libioze lub rafinoze.
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP3798067 | 1967-06-14 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
PL91810B1 true PL91810B1 (pl) | 1977-03-31 |
Family
ID=12512699
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
PL17597268A PL91810B1 (pl) | 1967-06-14 | 1968-03-27 |
Country Status (2)
Country | Link |
---|---|
PL (1) | PL91810B1 (pl) |
SU (1) | SU461513A3 (pl) |
-
1968
- 1968-02-26 SU SU1481537A patent/SU461513A3/ru active
- 1968-03-27 PL PL17597268A patent/PL91810B1/pl unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
SU461513A3 (ru) | 1975-02-25 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Chi et al. | Bioproducts from Aureobasidium pullulans, a biotechnologically important yeast | |
EP0251018B1 (en) | Feeds for larvae of crustaceans and shellfish | |
CN103004659B (zh) | 一种四大家鱼鱼苗养殖方法 | |
TW200909575A (en) | Method for producing cellulase and hemicellulase having high hydrolytic activity | |
US3647625A (en) | Method of reducing raffinose content of beet molasses | |
Chakrabortty et al. | Optimization of process parameters for chitinase production by a marine isolate of Serratia marcescens | |
DE2453111A1 (de) | Verfahren zur herstellung von neuen enzymen | |
DE112014003580T5 (de) | β-1,3-Glucanase, Polynukleotid, rekombinanter Vektor, Transformant, Herstellungsverfahren für β-1,3-Glucanase, Enzymherstellung und Herstellung von Paramylon mit reduziertem Molekulargewicht | |
DE1807185C3 (de) | Verfahren zur Herstellung von proteolytische Enzyme enthaltenden Aufbereitungen und deren Verwendung | |
CA1039672A (en) | PRODUCTION OF .alpha.-GALACTOSIOASE BY PENICILLIUM DUPONTI | |
CN105018544A (zh) | 具有促进海参生长和抗逆作用的卡拉胶寡糖及其制法和应用 | |
DK164070B (da) | Fremgangsmaade til fremstilling af et sammensat cellulase/xylanase-enzympraeparat | |
DE1932981B2 (de) | Verfahren zur biotechnischen herstellung eines enzyms lipase | |
Haggett et al. | Mutants of Cellulomonas which produce increased levels of β-glucosidase | |
Yabuki et al. | Rapid method for converting fungal cells into protoplasts with a high regeneration frequency | |
Aziz et al. | Bioconversion of acid-and gamma-ray-treated sweet potato residue to microbial protein by mixed cultures | |
Araki et al. | Purification and characterization of a novel exo-β-mannanase from Aeromonas sp. F-25 | |
Peberdy | Protoplasts from fungi | |
PL91810B1 (pl) | ||
Yamasaki et al. | Isolation of bacteria that decompose major polysaccharides in the cell wall of the marine red alga Porphyra yezoensis and their application for protoplast production | |
PL79287B1 (pl) | ||
RU2725475C1 (ru) | Рекомбинантный штамм дрожжей Pichia pastoris - продуцент ксиланазы из Pyromyces finnis | |
DE2554407A1 (de) | Herstellung thermostabiler lactase | |
RU2747782C1 (ru) | Рекомбинантный штамм дрожжей Ogataea haglerorum, продуцирующий бета-маннаназу Bacillus subtilis | |
EP0151708B1 (en) | Method for preparing protoplasts of laver thallus |