PL79287B1 - - Google Patents

Download PDF

Info

Publication number
PL79287B1
PL79287B1 PL12605068A PL12605068A PL79287B1 PL 79287 B1 PL79287 B1 PL 79287B1 PL 12605068 A PL12605068 A PL 12605068A PL 12605068 A PL12605068 A PL 12605068A PL 79287 B1 PL79287 B1 PL 79287B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
raffinose
mycelium
sucrose
environment
units
Prior art date
Application number
PL12605068A
Other languages
English (en)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed filed Critical
Publication of PL79287B1 publication Critical patent/PL79287B1/pl

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

Sposób rozkladu rafinozy przy pomocy a-galaktozydazy Przedmiotem wynalazku jest sposób rozkladu rafinozy na galaktoze i sacharoze przy pomocy a-galaktozydazy.Ogólnie znane jest, ze rafinoza hamuje proces krystalizacji sacharozy.Odrzucana dotychczas melasa, otrzymana po odzyskaniu sacharozy z buraków cukrowych, mi¬ mo faktu, ze okolo 50% sacharozy pozostawalo nadal w melasie, byla stosowana jako surowiec do fermentacji alkoholowej lub jako karma. Przy¬ czyna, dla której sacharoza, pozostajaca w mela¬ sie, nie moze byc odzyskana w przystepny sposób jest fakt, ze rafinoza obecna w melasie przeszka¬ dza normalnej krystalizacji sacharozy. Hydroliza rafinozy w melasie przy uzyciu a-G umozliwia usuniecie dzialania rafinozy, wstrzymujacego kry¬ stalizacje cukru, co powoduje wzrost wydajnosci cukru buraczanego. Ponadto poniewaz a-G roz¬ klada rafinoze na sacharoze i galaktoze, okolo 2/3 rozlozonej rafinozy odzyskuje sie w postaci sa¬ charozy.Znane sa sposoby otrzymywania a-G z drozdzy, lecz a-G,; otrzymana tymi sposobami, jest droga 'i zawiera inwertaze, wskutek czego produkt ten stosowac mozna jedynie do celów analitycznych a nie do przemyslowej produkcji cukru z bura¬ ków. 1 Glówny cel wynalazku to zwiekszenie wydaj¬ nosci cukru buraczanego przez rozklad rafinozy, znajdujacej sie w soku buraczanym lub w mela- 10 15 20 25 30 sie buraczanej. Cel wynalazku zostal osiagniety przez rozklad rafinozy przy uzyciu grzybni plesni Mortierella vinacea var. raffinoseutilizer, która zawiera wytworzona w niej a-G lub przy uzyciu a-G, wydzielonej z tej grzybni.W pracach nad hydroliza rafinozy w soku lub melasie buraczanej przy zastosowaniu a-G, wy¬ tworzonej przez mikroorganizmy, udalo sie wyod¬ rebnic z gleby plesn, która wytwarza a-G, a pra¬ wie zupelnie nie wytwarza inwertazy.Stwierdzono równiez mozliwosc wielokrotnego zastosowania grzybni, zawierajacej a-G do roz¬ kladu rafinozy w róznych szarzach soku bura¬ czanego lub melasy buraczanej.Stwierdzono, ze gdy omówiona wyzej plesn za¬ szczepi sie i hoduje w srodowisku syntetycznym, zawierajacym okreslona pozywke to wytworzona zostaje a-G, przy czym znaczna jej czesc pozo¬ staje w grzybni. Opracowano sposób wytwarza¬ nia a-G wewnatrzkomórkowo przez dodanie do srodowsika, zawierajacego laktoze otrab ryzo¬ wych, makuch rzepakowych, mielonego slodu, slo¬ du kukurydzy, soku kukurydzianego lub ich eks¬ traktów.Plesn stosowana w sposobie wedlug wynalazku wyodrebniono z gleby w miescie Chiba w Ja¬ ponii. Wlasnosci morfologiczne tej plesni odpo¬ wiadaja wlasnosciom plesni Mortierella vinacea okrytej przez Dixona-Stewarta (Manual of Soil Fungi, Gilman, wydanie drugie, The Iowa State 79 2873 Collega Press-Ames, Iowa, USA), przy czym plesn ta wytwarza a-G, ale prawie nie wytwarza in- wertazy. Odmianie tej nadano nazwe Mortierella vinacea var. raffinoseutilizer i zostala ona zde¬ ponowana w Stanach Zjednoczonych Ameryki w American-Type Kulture Collection pod numerem ATCC Nr 20034.Wlasnosci Mortierella vinacea var. raffinoseu¬ tilizer przedstawiaja sie nastepujaco: Mikroskopowe obserwacje owocnika wyhodowa¬ nego na podlozu agarowym ekstraktu slodu ujaw¬ nily rozgalezienia zarodni o srednicy 3—4 ja, jasno- Jbrazowe zarodnie prawie kuliste o srednicy 10— 20 \i i nie zawierajace szyjki slupka oraz niere¬ gularnie kanciaste zarodniki o wymiarach 2,7— 5 [i.Makroskopowe obserwacje plesni w róznych srodowiskach agarowych pozwolily na ustalenie nastejpiujacych cech: — agar z ekstraktem slodu: grzyibnia* ma wyglad gestej plesni i zmienia ko¬ lor c$d .bialego do jasno brazowego lub ciemno- pomaitanczowego w miare dojrzewania zarodni¬ ków. Nie wytwarza rozpuszczalnego barwnika w srodowisku, — agar ziemniaczano-glukozowy: grzybnia zmienia kolor od bialego do jasno bra¬ zowego w miare dojrzewania zarodników. Nie wytwarza rozpuszczalnego barwnika w srodo¬ wisku, — agar z ekstraktem drozdzy i ekstraktem slodu: grzybnia zmienia kolor od bialego do bezowego w miare dojrzewania zarodników. Nie wytwarza rozpuszczalnego barwnika w srodowisku.Alfa-G wytwarza sie z dobrym wynikiem w komórce plesni Mortierella vinacea var. raffino¬ seutilizer, jezeli plesn te zaszczepia sie w srodo¬ wisku, zawierajacym laktoze z dodatkiem otrab ryzowych, makuch rzepakowych, mielonego slodu, slodu kukurydzy, soku z kukurydzy lub wyciagu któregos z powyzszych skladników, hodujac ja w temperaturze okolo 30°C.Komórki, zawierajace wytwarzana a-G lub a-G z nich wydzielona i wyekstrahowana ze srodo¬ wiska znanym sposobem, dodaje sie do soku bu¬ raczanego lub melasy buraczanej, ustalajac war¬ tosc pH na 3—7 i prowadzi sie fermentacje w temperaturze 20—70°C.Czas reakcji zalezy od ilosci dodanej a-G. Jesli komórki plesni dodaje sie w takiej ilosci, ze za¬ wartosc a-G wynosi 900.000 jednostek na 1 g ra¬ finozy zawartej w soku buraczanym lub melasie buraczanej, okolo 80% rafinozy rozklada sie na galaktoze i sacharoze w ciagu 5—6 godzin.W sposobie wedlug wynalazku, rafinoza, która hamuje formowanie sie krysztalów sacharozy, rozklada sie i dzieki temu zwieksza sie ilosc krysztalów sacharozy. Ponadto, poniewaz rafinoza "rozklada sie na galaktoze i sacharoze, wydajnosc "sacharozy wydatnie zwieksza sie.Przyklady I—V przedstawiaja sposoby wytwa¬ rzania a-G w plesni, a przyklady VI—X przed¬ stawiaja sposoby rozkladu rafinozy w melasie buraczanej przy uzyciu a-G wytworzonej w grzybni. 287 4 Pomiary aktywnosci a-G dokonywano wedlug nizej podanego sposobu.Wywoluje sie enzymatyczna reakcje w tempe¬ raturze 40°C w ciagu 2 godzin przez dodanie 5 1 ml zawiesiny grzybni do mieszaniny 0,5 ml 0,06 M, melibiozy i 0,5 ml 0,1 M fosforanowego roztworu buforowego o wartosci pH = 5,2, na¬ stepnie otrzymuje sie mieszanine reakcyjna w ciagu 5 minut we wrzacej wodzie w celu dezakty- 10 wacji a-G i dodaje 1 ml l,8°/o Be(OH)2 • 8H20 oraz 1 ml 2°/o ZnSC4 • 7H2O. Po rozwarstwieniu mieszaniny na centryfudze ustala sie ilosciowo glukoze w cieczy. Aktywnosc a-G, która powo¬ duje wytworzenie 1 \ig glukozy w tych warun- 5 kach reakcji, okreslona jes£ jako jednostka od¬ niesienia. Poniewaz ilosc uwolnionej glukozy i stezenia enzymu sa zwiazane liniowa zaleznos¬ cia, az do ilosci 1000 \ig glukozy, koncentracje roztworu enzymu ustala sie przez rozcienczenie * do ilosci enzymu w zakresie wymienionej wyzej zaleznosci, nastepnie przeprowadza sie reakcje enzymatyczna, a w koncu mnozy ilosc uwolnio¬ nej glukozy przez wielokrotnosc rozcienczenia.Przyklad I. Zarodniki plesni Mortierella a5 vinacea var. raffinoseutilizer zaszczepiono w sro¬ dowisku, skladajacym sie z 0,1 M buforowego roztworu fosforanowego o wartosci pH = 6,0 i ho¬ dowano w temperaturze 30°C w ciagu 72 godzin, w srodowisku nastepujacej mieszaniny: weglo- 30 wodany 0,2%, peptony 0,3%, ekstrakt miesny 0,3% KC1 0,2%, MgS04 • 7H2O 0,2%.Po zakonczeniu hodowli w ustalonym czasie oddzielono grzybnie przez odsaczanie, przemyto ja dokladnie woda i roztarto w mozdzierzu lacz- 35 nie z piaskiem morskim na paste. Nastepnie uzu¬ pelniono woda destylowana do pierwotnej obje¬ tosci to jest objetosci zawieszonej grzybni przed odsaczeniem.Aktywnosc enzymu podano w tabeli I. Dotyczy <° ona aktywnosci a-G grzybni, zebranej z 1 ml te¬ go srodowiska w odniesieniu do róznych weglo¬ wodanów.Tabela I Rodzaj weglowodanu Ksyloza Arabinoza Ramnoza Glukoza Mannoza Fruktoza Galaktoza Maltoza Galobioza Laktoza Melibioza Sacharoza Rafinoza Rozpuszczalna skrobia Dekstran Jednostki a-G w grzybni 0 0 0 0 5 0 1013 4 0 3426 1776 0 2250 0 1 0 Jak widac z powyzszej tabeli, galaktoza, rafi¬ noza, melibioza i laktoza skutecznie powodowaly tworzenie sie a-G w grzybni plesni. Mortierella vinacea var. raffinoseutilizer.79287 Przyklad II. 0,1 M buforowy roztwór fosfo¬ ranowy o wartosci pH = 6,0, zawierajacy l,5°/o laktozy, l°/o glukozy, 0,3°/o mocznika, 0,2f/o siar¬ czanu magnezu i 0,2% chlorku potasu przygoto¬ wano jako srodowisko zasadnicze. Do tego sro¬ dowiska, w oddzielnych próbach dodano substan¬ cje, wymienione w tabeli II, kazda w ilosci 3°/o, przygotowujac srodowisko hodowli, które nastep¬ nie zaszczepiono plesnia Mortierella vinacea var. raffinoseutilizer i prowadzono hodowle w tempe¬ raturze 30°C w ciagu 72 godzin na wstrzasarce.Po zakonczeniu hodowli calosc produktu przesa¬ czono, oddzielajac grzybnie, która nastepnie po przemyciu woda roztarto w mozdzierzu z piaskiem morskim na paste. Z pasty przygotowano zawie¬ sine przez dodanie destylowanej wody w uzupel¬ niajacej ilosci do wyjsciowej objetosci srodowiska i zawiesine zastosowano jako ciecz enzymatyczna.Jednostki a-G podane w tabeli II przedstawiaja aktywnosc a-G w grzybni, zebranej z 1 ml sro¬ dowiska.Tabela II Substancja Otreby pszeniczne Placek rybny Makuch sojowy Otreby ryzowe Makuch rzepakowy Kukurydza Slód Mielony slód Wytloki browarnicze 1 Namok kukurydzy Jednostki a-G 9453 276 70 32350 17381 39616 33920 29984 365 25880 | Przyklad III. Do srodowiska zasadniczego, przygotowanego w sposób, jak podano w przy¬ kladzie Ii; dodawano przesacz otrzymany z eks¬ traktu otrab ryzowych goraca woda lub tez prze¬ sacz poddany dzialaniu amylazy i po dodaniu bakteryjnej a-amylazy oraz po przeprowadzeniu reakcji enzymatycznej do momentu uzyskania ujemnej reakcji z jodem. Ilosc odpowiedniego przesaczu wynosila 3°/o w stosunku do ilosci otrab ryzowych. Plesn Mortierella vinacea var. raffino¬ seutilizer hodowano w sposób opisany w przy¬ kladzie II i oceniano aktywnosc enzymatyczna w grzybni. Otrzymane wyniki przedstawia tabela III.Tabela III 10 15 Substancja Otreby ryzowe, nie podda¬ ne obróbce Przesacz otrzymany z eks¬ traktu otrab ryzowych przy uzyciu goracej wody Przesacz ekstraktu otrab ryzowych poddany dzialaniu 1 a-amylazy Jednostki a-G 32191 34495 38250 35 45 Przyklad IV. Jako zasadnicze srodowisko uzyto 0,1 M buforowy roztwór fosforanowy o wartosci pH — 6,0, zawierajacy 1,5^/t laktozy, 3^/t otrab ryzowych, 0,39/o mocznika, 0,2°/t siarczanu magnezu i 0,2*/e chlorku potasu, do którego do¬ dawano odpowiednio 0,2°/«, 0,59/t i l°/o proszkowa¬ nego ekstraktu slodu w celu przygotowania sro¬ dowiska hodowli. Hodowanie prowadzono w spo¬ sób, jak opisano w przykladzie II i oceniano aktywnosc a-D-G w grzybni. Aktywnosc enzyma¬ tyczna wynosila: 27806 jednostek ze srodowiska zasadniczego, 29634 jednostek ze srodowiska z a0,2°/o ekstraktu slodu, 35577 jednostek ze srodo¬ wiska z 0,5°/o ekstraktu slodu oraz 43349 jedno¬ stek ze srodowiska z l*/o ekstraktu slodu.Przyklad V. W 1 1 wody rozpuszczono 100 g laktozy, 100 g glukozy, 100 g namoku ku¬ kurydzy, 100 g siarczanu amonu, 30 g KH2PO4, 30 g MgS04 • 7H2O, 20 g NaCl i 100 g CaCOs.Otrzymany roztwór umieszczono w kadzi fermen¬ tacyjnej i po sterylizacji w temperaturze 120°C W ciagu 30 minut, ochlodzono do 30°C. Nastepnie przy uzyciu sterylizowanej wody rozcienczono roz¬ twór do lacznej objetosci 10 1 i zaszczepiono za¬ rodnikami plesni, Mortierella vinacea var. raffi¬ noseutilizer prowadzac hodowle w temperaturze 30°C przy szybkosci mieszania 200 obrotów na minute i napowietrzaniu z szybkoscia 5 1 na mi¬ nute. Wyniki hodowli przedstawiono w tabeli IV.Czas hodowli (godz.) pH Ciezar suchej grzybni, mg/100 ml srodowiska Jednostki a-G Tabela IV 24 6,4 1,165 2670 48 6,3 1,539 : 11260 72 6,3 1,789 26600 77 6,3 1,852 33650 90 6,5 1,801 33010 Przyklad VI. 0,1 M fosforanowy roztwór buforowy, zawierajacy 0,75°/o laktozy, 2!°/o gluko¬ zy, l,8°/o peptonu, 1,8% ekstraktu miesnego, 0,2d/o siarczanu magnezu i 0,2°/o chlorku potasu zaszcze¬ piono plesnia Mortierella vinacea var. raffino¬ seutilizer i hodowano ja wstrzasajac w ciagu 72 godzin. Po zakonczeniu hodowli grzybnie odsa¬ czono przemyto dokladnie woda i odwazono okreslona nawazke w celu uzycia jej jako enzy¬ mu. Ilosc powstalego a-G wynosila 3500 jedno¬ stek na 1 ml przesaczu srodowiska i 28400 jed¬ nostek w grzybni, zebranej z 1 ml srodowiska.Z drugiej strony do 10 g melasy buraczanej, 55 65 o zawartosci rafinozy 1,088 g, dodano kwasil siar¬ kowego do uzyskania pH srodowisk wartosci 5,2, a nastepnie dodano 0,1 M fosforanowego roztwo¬ ru buforowego o wartosci pH = 5,2 i rozcienczono woda do 20° Brixa.Do tak przygotowanej rozcienczonej melasy bu¬ raczanej dodano grzybnie, wytworzona ze 100 ml srodowiska, i przeprowadzono proces enzymatycz¬ ny w temperaturze 50°C w ciagu 24 godzin z wstrzasaniem. W otrzymanym przesaczu zmierzo¬ no w sposób ilosciowy ilosc sacharozy i zwiekszo¬ na ilosc sacharozy elucyjna metoda chromato¬ grafii bibulowej. Przy uzyciu grzybni o aktyw- \79287 7 8 nosci enzymatycznej 450000 stopien rozkladu ra- finozy i przyrost ilosci sacharozy wynosily odpo¬ wiednio 70,49/o i 364 mg, a przy uzyciu grzybni o aktywnosci enzymatycznej równej 900.000 jed¬ nostek, wynosily odpowiednio 81,5§/« i 544 mg.P r z y k l a kach, jak opisano w przykladzie VI, stosujac ta¬ kie same ilosci grzybni jako enzym.Z drugiej strony do 10 g melasy buraczanej o zawartosci rafinozy, 1,088 g dodano kwasu siar¬ kowego oraz fosforanowego roztworu buforowego o wartosci pH = 5,2 i rozcienczono mieszanine do 36° Brira. Nastepnie do rozcienczonej melasy bu¬ raczanej dodano 1.700.000 jednostek enzymu i prze¬ prowadzono reakcje enzymatyczna w temperatu¬ rze 37°C, w ciagu 24 godzin z potrzasaniem. Po zakonczeniu reakcji, mieszanine reakcyjna prze¬ saczono i w przesaczu zmierzono stopien rozkladu rafinozy oraz przyrost ilosci sacharozy. Po do¬ kladnym przemyciu grzybni woda próbowano sto¬ sowac grzybnie powtórnie w róznych rozcienczo¬ nych roztworach melasy buraczanej, posiadajacej ten sam uklad. Wyniki uzyskane po trzykrotnym uzyciu grzybni przedstawia tabela V.Tabela V Krotnosc stosowania grzybni ¦¦¦* 2 Przyrost ilosci sacharozy mg 372 426 aon Rozklad rafinozy •/• 67,3 72,7 «7 9 Koncowa aktywnosc a-G •/§ 98 84 Rozklad rafinozy wykonywano takze przez za- tezenie przesaczu pod zmniejszonym cisnieniem, dodanie 1.750.000 jednostek a-G do 10 g melasy buraczanej o zawartosci rafinozy 1,088 g nasta¬ wienie otrzymanej mieszaniny do wartosci pH = = 5,2 oraz stezenie 36° Brixa, stosujac odpowied¬ nio wode i kwas siarkowy, a nastepnie pozosta¬ wienie mieszaniny w ciagu 24 godzin, w tempe¬ raturze 37°C. Stwierdzono, ze stopien rozkladu rafinozy wynosil G5&ht a przyrost ilosci sacha¬ rozy 260 mg.Przyklad IX. Przygotowano srodowisko, za¬ wierajace l,5§/§ laktozy, 0,5*/o glukozy, l°/o namoku kukurydzy, 0,lf/o mocznika, 0,l°/o siarczanu amonu, 0,3*/o KH2PO4, 0,2«/t MgS04'7H20 i 0,2»/o NaCl, nastepnie po sterylizacji zaszczepiono srodowisko zarodnikami plesni i hodowano w temperaturze 30ÓC w ciagu 72 godzin. Stwierdzono, ze liczba jednostek a-G w grzybni zebranej z 1 ml srodo¬ wiska wynosila 28.000.Z drugiej strony 10 g melasy buraczanej o za¬ wartosci rafinozy 1,088 g rozcienczono woda do 15° Brixa i nastawiono do wartosci pH = 5,2, sto¬ sujac kwas siarkowy. Do rozcienczonego roztworu melasy buraczanej dodano grzybnie o zawartosci 980.000 jednostek a-G i przeprowadzono reakcje enzymatyczna odpowiednio w temperaturze 20°C, 30°C, 40°C, 50°C, 60°C i 70°C w ciagu 24 godzin z potrzasaniem, a nastepnie mierzono stopien przemiany rafinozy. Otrzymane wyniki zestawio¬ no w tabeli VII.Tabela VII Temperatura reakcji °C 20 30 40 50 60 70 Stopien rozkladu] rafinozy §/o 42,1 78,2 80,1 83,5 78,0 53,9 Przeprowadzono równiez reakcje enzymatyczna rozcienczonej 10 g melasy buraczanej o zawar¬ tosci rafinozy 1,088 g roztworem Mcllvaine'a do 15° Brixa, przy odpowiednich wartosciach pH = = 2,2; 3; 4; 5; 6; 7 i 8, dodajac 980.000 jednostek grzybni i wytrzasajac otrzymany roztwór w tem¬ peraturze 50°C w ciagu 6 godzin. Stopien rozkla¬ du rafinozy przedstawia tabela VIII.Tabela VIII pH mieszaniny 1 reakcyjnej 1 2,2 3 4 5 6 7 1 8 Stopien rozkladu rafinozy f/o 1 11,0 61,2 80,5 80,7 51,9 38,1 12,0 1 Przyklad X. 10 g melasy buraczanej o za¬ wartosci rafinozy 1,088 g rozcienczono woda do 15° Brixa i doprowadzono pH do wartosci 5,2 kwasem siarkowym. Do otrzymanego roztworu dodano 980.000 jednostek tej samej grzybni, jako stosowano w przykladzie IX, i przeprowadzono reakcje enzymatyczna w temperaturze 50°C w ciagu 5 godzin z potrzasaniem. Nastepnie grzyb¬ nie przemyto dokladnie woda i dodano do róz¬ nych rozcienczonych melas buraczanych, majacych 10 15 20 u- 25 30 35 40 45 50 55 60 • Przyklad VIII. Plesn hodowano w srodo- 35 wisku o tym samym skladzie, jak w przykladzie VI. Grzybnie zhomogenizowano w homogenizato- rze, a nastepnie rozrywano komórki w ciagu 1 go¬ dziny przy uzyciu generatora ultradzwiekowego o czestotliwosci 10 kilocyklów. Zniszczona grzyb- 40 nie odwirowano w celu oddzielenia cieczy od osa¬ du i oznaczono aktywnosc a-G w kazdej czesci.Stwierdzono, ze aktywnosc enzymatyczna w cie¬ czy wynosila 39*/o, a w osadzie 61e/o. Nastepnie przeprowadzono rozklad rafinozy, stosujac 1.750.000 45 jednostek wymienionego osadu jako enzymu, w sposób jak w przykladzie VII. Otrzymane wyniki przedstawiono w tabeli VI.Krotnosc stosowania grzybni 1 Tabe Przyrost ilosci sacharozy mg 5ft2 la VI Rozklad rafinozy •/o fi? a Koncowa aktywnosc a-G, •/# «1 55 Tabela VI Krotnosc stosowania grzybni 1 2 3 Przyrost ilosci sacharozy mg 262 244 244 Rozklad rafinozy •/o 67,3 65,4 50,9 Koncowa aktywnosc a-G, •/# 61 44 2970 287 9 10 ten sam sklad, jak powyzej w celu przeprowa¬ dzenia rozkladu rafinozy kilkakrotnie w warun¬ kach takich samych, jak powyzej. Wyniki otrzy¬ mane podczas trzykrotnego stosowania podano w tabeli IX.Tabela IX Krotnosc stosowana grzybni 1 2 3 Rozklad rafinozy °/o 77,3 74,6 65,3 Koncowa 1 aktywnosc a-G •/• 79,4 66,6 58,3 PL

Claims (2)

  1. Zastrzezenia patentowe 1. Sposób rozkladu rafinozy przy pomocy a-ga- laktozydazy, znamienny tym, ze plesn Mortierella s Vinacea var. raffinoseutilizer ATTCC 20034, za¬ wierajaca wytworzona w niej a-galaktozydaze, lub wydzielona z grzybni a-galaktozydaze dodaje sie do soku buraczanego lub melasy buraczanej, zawierajacych rafinoze.
  2. 2. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze rozklad rafinozy przy pomocy a-galaktozydazy prowadzi sie w temperaturze 20—70°C, przy war¬ tosci pH srodowiska 3—7. 79,4 66,6 58,3 10 PL
PL12605068A 1967-04-05 1968-03-27 PL79287B1 (pl)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2612967 1967-04-05

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL79287B1 true PL79287B1 (pl) 1975-06-30

Family

ID=12184938

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL12605068A PL79287B1 (pl) 1967-04-05 1968-03-27

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL79287B1 (pl)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Tanaka et al. Enzymatic hydrolysis of yeast cell walls I. Isolation of wall-decomposing organisms and separation and purification of lytic enzymes
DE69116597T2 (de) Proteinase-resistente Cellulase, sie produzierender Mikroorganismus und Verfahren zu ihrer Herstellung
MacLeod et al. Development of hydrolytic enzymes in germinating grain
Grajek et al. Influence of water activity on the enzyme biosynthesis and enzyme activities produced by Trichoderma viride TS in solid-state fermentation
DE2308596A1 (de) Enzyme und verfahren zu ihrer herstellung
DE112014003580T5 (de) β-1,3-Glucanase, Polynukleotid, rekombinanter Vektor, Transformant, Herstellungsverfahren für β-1,3-Glucanase, Enzymherstellung und Herstellung von Paramylon mit reduziertem Molekulargewicht
DE2453111A1 (de) Verfahren zur herstellung von neuen enzymen
DE1807185C3 (de) Verfahren zur Herstellung von proteolytische Enzyme enthaltenden Aufbereitungen und deren Verwendung
Peberdy Protoplasts from fungi
PL79287B1 (pl)
RU2701308C1 (ru) Рекомбинантный штамм дрожжей Pichia pastoris - продуцент ксиланазы
DE3005020C2 (pl)
Aguirre et al. An enzyme (s) from a Streptomyces sp. to prepare mould ‘protoplasts’
Pfeifer et al. The formation of protoplasts from Beauveria bassiana
Chen Biotechnology principles of solid state fermentation
PL91810B1 (pl)
Jeffries et al. Enzymatic hydrolysis of the walls of yeasts cells and germinated fungal spores
Choi et al. Intergeneric protoplast fusion in Saccharomycopsis fibuligera and Saccharomyces cerevisiae
SU503532A3 (ru) Способ получени фермента дл лизиса клеток микроорганизмов
De Clercq et al. Elucidation of the natural function of sophorolipids produced by Starmerella bombicola. J Fungi 2021; 7: 917
El-Shafei Influence of L-sorbose and the cell-wall-lytic Micrococcus sp. on the major polymers of Aspergillus fumigatus
Boze et al. Isolation and characterization of a derepressed mutant of Schwanniomyces castellii for amylase production
Fryxell et al. Diatom resting spores and Agulhas collections
Muhammad et al. Cellulase production by fungi isolated from Odo-Aremu dumpsite in Ado-Ekiti, Nigeria
KR790001609B1 (ko) 셀루로즈를 함유하는 물질을 원료로한 자이로즈 및 에틸알코올의 동시 제조방법