SU461513A3 - Способ получени -галактозидазы - Google Patents
Способ получени -галактозидазыInfo
- Publication number
- SU461513A3 SU461513A3 SU1481537A SU1481537A SU461513A3 SU 461513 A3 SU461513 A3 SU 461513A3 SU 1481537 A SU1481537 A SU 1481537A SU 1481537 A SU1481537 A SU 1481537A SU 461513 A3 SU461513 A3 SU 461513A3
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- galactosidase
- mycelium
- units
- raffinose
- activity
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
(54) СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ L-ГАЛАКТОЗИДАЗЫ
св зь, вызывают образование L-галактозидазы в мицелии плесени, причем лактоза наиболее эффективна.
Пример 2. 1/10 М фосфатной буферной смеси (рН 6,0), содержащей, %: 1,5 лактозы, 1 глюкозы, 0,3 мочевины, 0,2 сульфата магни и 0,2 хлористого кали , приготовл ют в качестве основной среды, к которой прибавл ют вещества, перечисленные в табл. 2, каждое в количестве 3% дл приготовлени культуральной среды, которую затем инокулируют плесенью и культивируют при 30°С в течение 72 час при встр хивании. Мицелий затем отфильтровывают , тщательно промывают водой и измельчают в ступке с морским песком в пасту. Паста превращаетс в суспензию при добавлении дистиллированной воды, количество которой равно количеству среды. Суспензию испытывают на ферментативную активность .
Табл. 2 иллюстрирует активность L-галактозидазы в мицелии, вз том из 1 мл проб нескольких сред.
Таблица 2
Единицы
L-галактозиСырье
дазы
9453
и
276
70
32350 I738I 39616 33920 29984 365 25880
ти после замочки
Пример 3. Приготавливают порции культуральной среды из основной среды (описанной в примере 2) и следующих веществ: рисовых отрубей, отфильтрованного экстракта, приготовленного из рисовых отрубей и гор чей воды, продукта реакции между фильтратом , приготовленным по примеру 2, и бактериальной L-амилазой, котора продолжаетс до того момента, пока йодна реакци смеси не станет отрицательной.
Мицелий плесени, выросщий на трех средах аналогично описанному в примере 2, имеет значени L-галактозидазы соответственно 32191,34495 и 38250 ед.
Пример 4. 1/10 М фосфатной буферной смеси (рН 6,0), содержащей, %: 1,5 лактозы, 3 рисовых отрубей, 0,3 мочевины, 0,2 сернистого магни и 0,2 хлористого кальци используют в качестве основной среды, к которой добавл ют 0,2, 0,5 и 1 % порошка солодового экстракта дл приготовлени культуральной
среды. Культивирование выполн ют аналогично примеру 2, и анализируют активность L-галактозидазы в мицелии. Энзиматическа активность 27806 ед. была обнаружена в мице5 ЛИИ, выращенном на основной среде, 29634 ед. - на среде, содержащей 0,2% солодового экстракта, 35577 ед. - на среде, содержащей 0,5% солодового экстракта, и 43349 ед. - на среде, содержащей 1 % солодового экстракта соответственно.
При М е р 5. 100 г лактозы, 100 г глюкозы, 100 г экстракта жидкости от замочки зерна, 100 г сульфата аммони , 30 г КН2РО4, 30 г MgSO4-7H2O, 20 г NaCl и 100 г СаСОз раствор ют в 8 л воды. Полученный раствор помещают во встр хиваемый ферментатор и после стерилизации при 120°С в течение 30 мин его охлаждают до 30°С. Затем в раствор добавл ют стерилизованную воду до общего
0 объема 10 л и в него инокулируют споры плесени , после чего следует культивирование при 30°С с перемешиванием при 200 об/мин и с продуванием воздухом со скоростью 5 л/мин. Результаты испытаний при культивироваНИИ представлены в табл. 3.
Таблица 3
Пример 6. 1/10 М фосфатный буфер (рП 6,0), содержащий, %: 0,75 лактозы,
2 глюкозы, 1,8 пептона, 1,8 м сного экстракта, 0,2 сернокислого магни и 0,2 хлористого кали инкулируют плесенью, которую культивируют со встр хиванием в течение 72 час. Мицелий выдел ют фильтрацией, тщательно
промывают водой и взвешивают. Активность L-галактозидазы 3500 ед. на 1 мл фильтрата, свободного от мицели , и 28400 ед. в мицелии , собранном с 1 мл среды. Серную кислоту добавл ют к 10 г свекольной мелассы, содержащей 1,088 г раффинозы , дл доведени ее рН приблизительно до 5,2 с последующим добавлением фосфатного буфера (рН 5,2) и доведением водой полученного в результате раствора до 20° по Бриксу.
Мицелий затем добавл ют к приготовленному разбавленному раствору свекольной мелассы , ведут энзиматическую реакцию при 50°С в течение 24 час при перемещивании. Реакционную смесь фильтруют, и оставщуюс рафинозу и возросшее количество сахарозы определ ют в фильтрате хроматографией на бумаге.
При добавлении мицели с энзиматической активностью 450000 ед. расцепл етс 70,4% исходной раффинозы и образуетс 364 мг сахарозы. Соответствующие значени после добавлени 900000 ед. энзиматической активности 81,5% и 544 мг.
Пример 7. Плесень культивируют в услови х , аналогичных примеру 6, и определенное количество полученного таким образом мицели используют в качестве источника энзима .
Серную кислоту и фосфатный буфер (рН 5,2) добавл ют к 10 г свекольной мелассы и разбавл ют смесь водой до концентрации 36° по Бриксу. Разбавленный раствор свекольной мелассы перемешивают с 1700000 ед. энзима при 37°С в течение 24 час.
Затем реакционную смесь фильтруют и определ ют расщепление раффинозы и образование сахарозы. Отфильтрованный мицелий тщательно промывают водой и вновь используют на последующей порции по способу разбавленного раствора и повтор ют эту процедуру еще раз.
Результаты приведены в табл. 4.
Таблица 4
Таблица 5
10
Степень расщеплени раффинозы 65,3%, а возросщее количество сахара 260 мг.
Пример 9. Среду, содержащую, %: 1,5 лактозы, 0,5 глюкозы, 1 жидкости после замочки зерна, 0,1 мочевины, 0,1 сернокислого аммони , 0,3 КН2Р04, 0,2 MgSO4-7H2O и 0,2 NaCl, инокулируют спорами плесени и культивируют при 30°С в течение 72 час. После сбора мицели с 1 мл среды определ ют, что он содержит 28000 ед. L-галактозидазы.
10 г навески свекольной мелассы, содержащей 1,088 г раффинозы, разбавл ют водой до
концентрации 15° по Бриксу, рН довод т до 5,2 добавлением серной кислоты и смещивают с мицелием, имеющим 980000 ед. L-галактозидазной активности. Смеси хран т при 20, 30, 40, 50, 60 и 70°С соответственно в течение
24 час при встр хивании, после чего измер ют расщеплением раффинозы.
Пример 8. Плесень культивируют в среде , аналогичной описанной в примере 6. Выросший мицелий гомогенизируетс в гомогенизаторе и подвергаетс воздействию УЗ-генератора (10 кг цикл) в течение 1 час. Измельченный мицелий центрифугируют дл того , чтобы отделить часть, всплывающую наверх , от осадочной фракции и дл каждой фракции определ ют активность L-галактозидазы .
Энзиматическа активность равна 39% в поверхностной части и 61% в осевщей фракции.
Раффинозу из свекольной сахарной мелассы расщепл ют посредством 1750000 ед. на осадочной фракции в трех последовательных опытах (как в примере 7).
Результаты представлены в табл. 5. Раффинозу также расщепл ют при помощи концентрировани верхней всплывщей части в вакууме. Добавл ют 1750000 ед. L-талактозидазы в виде концентрата к 10 г свекольной мелассы, содержащей 1,088 г раффинозы. Довод т рН полученной в результате смеси до 5,2 и разбавл ют ее водой и серной кислотой до 36° по Бриксу, оставл на 24 час при37°С,.
10 г навески такой же свекольной мелассы также раствор ют буферным раствором МсП vaine до 15° по Бриксу, их рН довод т до 2,2, 3,4, 5,6, 7 и 8 соответственно, после чего добавл лись 980000 ед. мицели , и полученный в результате раствор встр хивают при 50°С в течение 6 час.
Расщепление раффинозы,
рН реакционной жидкости
55
60
65
Пример 10. Юг навески свекольной мелассы разбавл ют водой до 15° по Брнксу, довод т до рН 5,2 серной кислоты и смешивают с 980000 ед. мицели , аналогично описанному в примере 9.
Смесь встр хивают при 50°С в течение 6 час.
Извлеченный мицелий тщательно промывают водой, добавл ют к другой порции разбавленной свекольной мелассы и повтор ют процедуру .
Результаты, полученные в трех опытах, представлены в табл. 6.
Таблица б
Аналогичные результаты получают в тех случа х, когда разбавленную мелассу замен ют свекольным соком, экстрагированным из свеклы или после очистки.
Активность L-галактозидазы измер ют следующим образом.
Ферментативную реакцию осуществл ют при 40°С в течение 2 час путем добавлени I мл суспензии к смеси 0,5 мл (0,06 мол ) мелибиозы и 0,5 мл (0,1 мол ) фосфатной буферной смеси (рН 5,2). После завершени реакции реакционную смесь выдерживают в кип щей воде в течение 5 мин дл инактивации L-галактозидазы и к ней добавл ют 1 мл 1,8%-ного Ва(ОН)2ВН2О и 1 мл 2%-ного ZnO4-7H2O.
После центрифугировани смеси при помощи глюкостат-метода измер ют количество глюкозы в поверхностном слое. Активность L-галактозидазы, котора выдел ет 1 мг глюкозы в этих реакционных услови х, определ ют как одну единицу.
Поскольку количество освобожденной глюкозы и концентраци энзима наход тс в пр мой зависимости до количества 1000 мг глюкозы , раствор фермента разбавл ют дл того, чтобы количество энзима стало внутри указанной выще зависимости, затем провод т ферментативную реакцию и количество освобожденной глюкозы умножают путем многократного разбавлени .
Характеристики Mortierella vinacea var raffinoseutilizer (АТСС, № 20034) следующие.
1. Микроскопическое наблюдение плодового тела, выросшего на среде агара солодового экстракта, показывает разветвленные спорангионосцы , имеющие в диаметре 3-4 мкм, спорангии бледно-коричневые, имеют почти круглую форму в диаметре 10-20 мкм и неправильно угловатые спорангиспоры-2,7-5 мкм.
2. Микроскопическое наблюдение в различных средах.
Агар солодового экстракта. Мицелий имеет толстый войлокообразный вид и измен етс в
5 краске от белого до бледно-коричневого в зависимости от зрелости спор. В мицелии не образуетс растворимого пигмента. Картофельно-глюкозный агар. В мицелии наблюдаетс изменение окраски от белой до светло-коричневой в зависимости от зрелости спор. В мицелии не образуетс растворимый пигмент.
Дрожжевой экстракт-агар солодового экстракта .
5 Мицелий обнаруживает изменение окраски от белой до бежевой в зависимости от зрелости спор. В мицелии не образуетс растворимый пигмент. Наиболее подход щей температурой культивировани плесени в среде вл 0 етс температура около 30°С. Продуцирование L-галактозидазы быстро возрастает, спуст около 30 час и становитс наиболее высоким примерно через 70-80 час. Так как больша часть L-галактозидазы получаетс в мицелии, она может повторно использоватьс добавлением к свекловичной мелассе , подвергаетс реакции с рафинозой, регенерируетс и снова добавл етс к другой свекловичной мелассе.
0 Около 80% L-галактозидазы, продуцируемой в среде, содержащей сою, становитс неактивной , когда она поддерживаетс при температуре 60°С в течение 15 мин. Только около 38% L-галактозидазы, продуцируемой по
5 предложенному способу, становитс неактивной , когда она сохран етс при температуре 60°С в течение 15 мин. Так как ферментативна реакци может осуществл тьс при высокой температуре, соответственно можно со0 кратить врем реакции.
Инвертазна активность L-галактозидазы, чрезвычайно низка по сравнению с активностью L-галактозидазы, получаемой в среде, содержащей сою. В 1 мл ферментативного
5 раствора, полученного из среды, содержащей сою, включающего, например, 50000 ед. L-галактозидазы , получаетс 18,1 ед. инвертазы, тогда как в 1 мл энзимного раствора, полученного по предложенному способу, включающего 50000 ед. L-галактозидазы, получаетс только 0,085 ед. инвертазы, т. е. активность инвертазы снижаетс , примерно до 1/200. Причина этого заключаетс в том, что когда плесень культивируетс в среде, содержащей или сою, или соевый жмых, получение инвертазы вызываетс сахарозой, содержащейс в сое. Так как рафиноза при добавлении L-галактозидазы к отбросной мелассе разлагаетс на сахарозу и галактозу, можно увеличивать выход свекловичного сахара.
Предмет изобретени
Способ получени L-галактозидазы путем 65 выращивани плесени Mortierella Vinacea var. 9 raffinoseutilizer (АТСС 20034) на питательной среде, содержащей индуктор галактозадазы, в присутствии источника углерода, азота и минеральных солей с последующим выделением L-галактозидазы из культуральной жидко-5 10 сти, отличающийс тем, что, с целью повышени активности L-галактозидазы и снижени количества инвертазы, сопутствующей данному ферменту, в качестве индуктора используют лактозу.
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP3798067 | 1967-06-14 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU461513A3 true SU461513A3 (ru) | 1975-02-25 |
Family
ID=12512699
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU1481537A SU461513A3 (ru) | 1967-06-14 | 1968-02-26 | Способ получени -галактозидазы |
Country Status (2)
Country | Link |
---|---|
PL (1) | PL91810B1 (ru) |
SU (1) | SU461513A3 (ru) |
-
1968
- 1968-02-26 SU SU1481537A patent/SU461513A3/ru active
- 1968-03-27 PL PL17597268A patent/PL91810B1/pl unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
PL91810B1 (ru) | 1977-03-31 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US3806420A (en) | Process for the preparation of creatinine amidohydrolase | |
US3647625A (en) | Method of reducing raffinose content of beet molasses | |
Petrović et al. | Effect of various carbon sources on microbial lipases biosynthesis | |
DE1807185B2 (de) | Verfahren zur Herstellung von proteolytische Enzyme enthaltenden Aufbereitungen und deren Verwendung | |
CH620471A5 (ru) | ||
DE1932981C3 (de) | Verfahren zur biotechnischen Herstel lung eines Enzyms Lipase | |
Delente et al. | Production of a new thermostable neutral α‐galactosidase from a strain of Bacillus stearothermophilus | |
ES2784253T3 (es) | Procedimiento de producción de un cóctel enzimático a partir de mosto de hongo | |
SU461513A3 (ru) | Способ получени -галактозидазы | |
DE2527068A1 (de) | Verfahren zur herstellung von cholesterinesterase | |
US2978384A (en) | Method for the production of 1-glutamic acid | |
US3684658A (en) | Enzymes and process for their preparation | |
US4011135A (en) | Production of L(+)-tartaric acid | |
US2524089A (en) | Process of producing subtilin | |
US3733253A (en) | Method of producing citric acid | |
US3832284A (en) | Method for manufacture of alpha-galactosidase by microorganisms | |
SU557762A3 (ru) | Способ получени -галактозидазы | |
US3808102A (en) | Process for preparing alpha amylase | |
JPS6362195B2 (ru) | ||
SU1678831A1 (ru) | Способ получени холестериноксидазы | |
US3592846A (en) | Hydroxy-phenyl-alpha-ketobutyric acids | |
JPS6363390A (ja) | マンノシルエリスリト−ルの製造法 | |
DE2164018A1 (de) | Verfahren zur biotechnischen Herstellung von Uricase | |
GB1101440A (en) | Method for cultivating micro-organisms having exoenzymeproducing ability | |
SE7506666L (sv) | Forfarande for odling av neringsmedel-encells-proteiner under samtidig utvinning av aktiva substanser ur avvattnen. |