PL233885B1 - Method and a kit for identification of Merlinius brevidens nematode, pest of grains and grasses, by Real Time PCR based method - Google Patents

Method and a kit for identification of Merlinius brevidens nematode, pest of grains and grasses, by Real Time PCR based method Download PDF

Info

Publication number
PL233885B1
PL233885B1 PL415493A PL41549315A PL233885B1 PL 233885 B1 PL233885 B1 PL 233885B1 PL 415493 A PL415493 A PL 415493A PL 41549315 A PL41549315 A PL 41549315A PL 233885 B1 PL233885 B1 PL 233885B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
real time
merlinius
identification
brevidens
time pcr
Prior art date
Application number
PL415493A
Other languages
Polish (pl)
Other versions
PL415493A1 (en
Inventor
Wiesław BOGDANOWICZ
Wiesław Bogdanowicz
Ewa DMOWSKA
Ewa Dmowska
Łukasz FLIS
Łukasz Flis
Aleksandra GRALAK
Aleksandra Gralak
Katarzyna KOWALEWSKA
Katarzyna Kowalewska
Tadeusz MALEWSKI
Tadeusz Malewski
Robert TURLEJ
Robert Turlej
Katarzyna WIŚNIEWSKA
Katarzyna Wiśniewska
Olga WIŚNIEWSKA
Olga Wiśniewska
Original Assignee
Muzeum I Instytut Zoologii Polskiej Akademii Nauk
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Muzeum I Instytut Zoologii Polskiej Akademii Nauk filed Critical Muzeum I Instytut Zoologii Polskiej Akademii Nauk
Priority to PL415493A priority Critical patent/PL233885B1/en
Publication of PL415493A1 publication Critical patent/PL415493A1/en
Publication of PL233885B1 publication Critical patent/PL233885B1/en

Links

Abstract

Przedmiotem zgłoszenia jest sposób i zestaw do identyfikacji nicienia Merlinius brevidens, szkodników zbóż i traw, metodą Real Time PCR. Dzięki specyficznie dobranym starterom i sondzie, rozwiązanie to umożliwia precyzyjną identyfikację wskazanego gatunku nicienia, niezależnie od rodzaju prób badanych, ich pochodzenia i przeznaczenia oraz stadium rozwoju.The subject of the application is a method and kit for identifying the nematode Merlinius brevidens, a pest of cereals and grass, using the Real Time PCR method. Thanks to specifically selected primers and probe, this solution enables precise identification of the indicated nematode species, regardless of the type of samples tested, their origin and purpose, and the stage of development.

Description

Opis wynalazkuDescription of the invention

Przedmiotem wynalazku jest sposób i zestaw do identyfikacji nicienia Merlinium brevidens, szkodnika zbóż i traw, metodą Real Time PCR.The subject of the invention is a method and a kit for identifying the nematode Merlinium brevidens, a pest of cereals and grasses, by the Real Time PCR method.

Identyfikacja gatunków nicieni oparta jest na analizie cech morfologicznych i morfometrycznych, w tym diagnozowane są m.in.: zabarwienie samicy na poszczególnych etapach rozwojowych, kształt cysty, długość i kształt guzów sztyletu, długość larwy inwazyjnej, wzór na płytce perinealnej. Jest to jednak analiza bardzo pracochłonna i czasochłonna. Wymaga dużo wiedzy i doświadczenia w pracy z materiałem biologicznym. Ponadto, istnieje możliwość nachodzenia na siebie wymiarów różnych gatunków. Metody opartej na analizie cech morfologicznych i morfometrycznych nie można zastosować do identyfikacji młodocianych osobników, u których cechy morfologiczne nie są jeszcze wykształcone.Identification of nematode species is based on the analysis of morphological and morphometric features, including the diagnosis of female coloration at various stages of development, cyst shape, length and shape of dagger tumors, length of invasive larvae, pattern on the perineal plate. However, this is a very laborious and time-consuming analysis. It requires a lot of knowledge and experience in working with biological material. Moreover, there is the possibility of overlapping dimensions of different species. The method based on the analysis of morphological and morphometric features cannot be used to identify adolescents in which morphological features are not yet developed.

Obecnie w diagnostyce nematologicznej coraz częściej stosowane są techniki oparte na analizie kwasów nukleinowych, w tym wykorzystujące łańcuchową reakcję polimerazy (PCR). Podstawą techniki PCR jest powielenie fragmentu/ów DNA, specyficznego dla określonego organizmu, do poziomu umożliwiającego jego szybką i prostą detekcję przy użyciu elektroforezy. Uzyskuje się to stosując krótkie jednoniciowe oligonukleotydy (12-40 nukleotydów), tzw. startery, specyficzne dla powielanego fragmentu DNA oraz enzym - termostabilną polimerazę, która umożliwia powielenie żądanego fragmentu w cyklicznej, trzyetapowej reakcji, złożonej z denaturacji, wiązania starterów oraz syntezy DNA. Zazwyczaj po około 30 cyklach reakcji uzyskuje się ponad milion kopii powielanego fragmentu DNA, co pozwala zidentyfikować go techniką elektroforezy żelowej.Currently, techniques based on the analysis of nucleic acids, including the polymerase chain reaction (PCR), are increasingly used in nematological diagnostics. The basis of the PCR technique is the amplification of a DNA fragment (s) specific for a specific organism to a level that allows for its quick and simple detection using electrophoresis. This is achieved by using short single-stranded oligonucleotides (12-40 nucleotides), the so-called primers, specific for the amplified DNA fragment, and the enzyme - thermostable polymerase, which enables the amplification of the desired fragment in a cyclic, three-step reaction consisting of denaturation, primer binding and DNA synthesis. Typically, after about 30 reaction cycles, more than a million copies of the amplified DNA fragment are obtained, which can be identified by gel electrophoresis.

Udoskonaleniem łańcuchowej reakcji polimerazy jest Real Time PCR, to jest rekcji PCR z pomiarem ilości powielonego fragmentu w każdym cyklu reakcji. Do pomiaru ilości powielonego fragmentu wykorzystuje się fluorochromy (barwniki fluorescencyjne), np.: SYBR Green 1, SYTO9, Eva Green, SYBR Gold, których fluorescencja jest proporcjonalna do ilości powielonego fragmentu. Identyfikację powstałych produktów przeprowadza się poprzez pomiar wielkości fluorescencji oraz analizę krzywej topnienia produktów reakcji bez elektroforezy. Czułość reakcji Real Time PCR jest znacznie większa niż tradycyjnego PCR, a brak elektroforezy skraca czas analizy. Wadą Real Time PCR z barwnikami fluorescencyjnymi (podobnie jak tradycyjnego PCR) jest ograniczona specyficzność reakcji. W większości przypadków reakcja PCR zachodzi nie tylko w przypadku 100% identyczności sekwencji starterów do sekwencji matrycy lecz również gdy 1-2 nukleotydy są nieidentyczne. Ta właściwość tradycyjnego PCR i Real Time PCR z barwnikami fluorescencyjnymi wymaga precyzyjnego ustawienia parametrów termicznych reakcji. Ponadto, barwniki fluorescencyjne wiążą się z każdym dwuniciowym fragmentem DNA, powstałym również w wyniku amplifikacji starterów (produkty primer-primer, primerdimer), co wymaga również starannego doboru odpowiedniego stężenia starterów.An improvement on the polymerase chain reaction is Real Time PCR, that is, a PCR reaction with the measurement of the amount of amplified fragment in each reaction cycle. To measure the amount of the amplified fragment, fluorochromes (fluorescent dyes) are used, e.g. SYBR Green 1, SYTO9, Eva Green, SYBR Gold, the fluorescence of which is proportional to the amount of the amplified fragment. Identification of the resulting products is carried out by measuring the amount of fluorescence and analyzing the melting curve of the reaction products without electrophoresis. The sensitivity of Real Time PCR is much higher than that of traditional PCR, and the lack of electrophoresis shortens the analysis time. The disadvantage of Real Time PCR with fluorescent dyes (similar to traditional PCR) is the limited specificity of the reaction. In most cases, the PCR reaction occurs not only when the primer sequence is 100% identical to the template sequence but also when 1-2 nucleotides are non-identical. This property of traditional PCR and Real Time PCR with fluorescent dyes requires precise setting of the thermal parameters of the reaction. In addition, fluorescent dyes bind to each double-stranded DNA fragment, also resulting from primer amplification (primer-primer products, primerdimer), which also requires careful selection of the appropriate primer concentration.

Alternatywą dla barwników fluorescencyjnych są sondy DNA znakowane fluorescencyjnie. Są to krótkie odcinki DNA, komplementarne do poszukiwanej sekwencji, które po przyłączeniu do DNA podczas reakcji PCR emitują fluorescencję o określonej długości fali. Obecnie znanych jest kilka rodzajów sond, np.: TaqMan, FRET, molecular beacons, czy scorpions. Specyficzność reakcji Real Time PCR ze znakowanymi sondami jest znacznie wyższa niż z barwnikami fluorescencyjnymi. W odróżnieniu od starterów niedopasowanie jednego nukleotydu w sekwencji sondy prowadzi przeważnie do braku reakcji lub bardzo istotnego zmniejszenia wydajności, co jest łatwe do stwierdzenia podczas monitorowania przebiegu reakcji lub analizy wyników reakcji.An alternative to fluorescent dyes are fluorescently labeled DNA probes. These are short sections of DNA, complementary to the searched sequence, which, when attached to DNA during PCR reactions, emit fluorescence at a specific wavelength. Currently, several types of probes are known, e.g. TaqMan, FRET, molecular beacons, and scorpions. The specificity of the Real Time PCR reaction with labeled probes is much higher than with fluorescent dyes. Unlike primers, a single nucleotide mismatch in the probe sequence usually leads to no reaction or a very significant reduction in yield, which is easy to see when monitoring the course of the reaction or analyzing the results of the reaction.

Dotychczas najczęściej stosowaną metodą molekularnej identyfikacji nicieni było PCR-RFLP (Restriction Fragments Length Polymorphism). Metoda polimorfizmu długości fragmentów restrykcyjnych wykorzystuje enzymy restrykcyjne, które tną nić DNA w specyficznym dla siebie miejscu. Różnice w długości pociętych fragmentów DNA świadczą o zmienności. Powers T O, Szalanski AL, Mullin PG, Harris TS, Bertoldi T i Griesbach JA. Identification of Seed Gall Nematodes of Agronomic and Regulatory Concern with PCR-RFLP of ITS 11. Journal of Nematology 33(4):191—194. 2001 analizowali tą metodą 18 populacji należących do rodzaju Anguina. Do identyfikacji stosowali siedem enzymów restrykcyjnych Alu I, Bsr I, Eco RI, Hae III, Hha I, Hinf I, and Taq I dzięki którym udało im się identyfikować gatunki.Until now, the most frequently used method of molecular identification of nematodes was PCR-RFLP (Restriction Fragments Length Polymorphism). The restriction fragment length polymorphism method uses restriction enzymes that cut the DNA strand at a specific site for itself. Differences in the length of the cut DNA fragments indicate variability. Powers T O, Szalanski AL, Mullin PG, Harris TS, Bertoldi T and Griesbach JA. Identification of Seed Gall Nematodes of Agronomic and Regulatory Concern with PCR-RFLP of ITS 11. Journal of Nematology 33 (4): 191—194. 2001 analyzed 18 populations belonging to the genus Anguina with this method. They used seven restriction enzymes Alu I, Bsr I, Eco RI, Hae III, Hha I, Hinf I, and Taq I for identification, thanks to which they were able to identify the species.

Cbjvh Umarao, Sharma Amita, Rao S.B. w swojej publikacji z 2009 roku RAPD-PCR Analysis of Genetic Similarity Between Males and Females of Anguina tritici. Indian Journal of Nematology, 2009 39(1): 90-97 zastosowali metodę RAPD - Randomly Amplified Polymorphic DNA (metoda losowej amplifikacji polimorficznego DNA). Metoda ta wykorzystuje tylko jeden krótki (około 10-20 nukleotydów) starter, przebiega w niższej temperaturze (około 35°C), ale jednocześnie wymaga zwiększonejCbjvh Umarao, Sharma Amita, Rao S.B. in his 2009 publication RAPD-PCR Analysis of Genetic Similarity Between Males and Females of Anguina tritici. Indian Journal of Nematology, 2009 39 (1): 90-97 used the RAPD method - Randomly Amplified Polymorphic DNA (a method of random amplification of polymorphic DNA). This method uses only one short (about 10-20 nucleotides) primer, runs at a lower temperature (about 35 ° C), but requires increased

PL 233 885 Β1 ilości cykli w stosunku do standardowego PCR - aż 40-50. W wyniku analizy elektroforetycznej uzyskuje się różnej długości prążki, których układ jest charakterystyczny dla osobnika i stanowi coś w rodzaju odcisku palca (fingerprint).PL 233 885 Β1 number of cycles in relation to standard PCR - up to 40-50. As a result of electrophoretic analysis, bands of various lengths are obtained, the arrangement of which is characteristic for an individual and is something like a fingerprint.

W pracach Wendt KR, Vrain TC & Webster JM (1993). Separation of three species of Dityienchus and some host races of D. dipsaci by restriction fragment length polymorphism. Journal of Nematology 25, 555-563 oraz Marek M, Zouhar M, Rysanek P & Havranek P (2005). Analysis of ITS sequences of nuclear rDNA and development of a PCR-based assay for the rapid identification of the stem nematode Dityienchus dipsaci (Nematoda: Anguinidae) in plant tissues. Helminthologia 42, 49-56 zostały opisane startery i enzymy restrykcyjne do identyfikacji Dityienchus dipsaci.In the works of Wendt KR, Vrain TC & Webster JM (1993). Separation of three species of Dityienchus and some host races of D. dipsaci by restriction fragment length polymorphism. Journal of Nematology 25, 555-563 and Marek M, Zouhar M, Rysanek P & Havranek P (2005). Analysis of ITS sequences of nuclear rDNA and development of a PCR-based assay for the rapid identification of the stem nematode Dityienchus dipsaci (Nematoda: Anguinidae) in plant tissues. Helminthology 42, 49-56, primers and restriction enzymes for identification of Dityienchus dipsaci have been described.

Molekularne metody identyfikacji Merlinius brevidens nie zostały dotychczas opisane. Celem wynalazku jest dostarczenie metody molekularnej identyfikację nicienia Merlinius brevidens z dużą czułością i specyficznością oraz dostarczenie nowych sekwencji nukleotydowych starterów i sondy, mających zastosowanie w sposobie wykrywania nicieni techniką PCR, zwłaszcza Real Time PCR, niezależnie od rodzaju prób badanych, ich pochodzenia i przeznaczenia oraz stadium rozwoju. Powyższe cele zrealizowano w niniejszym wynalazku.Molecular methods of identifying Merlinius brevidens have not been described so far. The aim of the invention is to provide a molecular method for the identification of the Merlinius brevidens nematode with high sensitivity and specificity, and to provide new nucleotide sequences of primers and probes, applicable in the method of detecting nematodes using the PCR technique, especially Real Time PCR, regardless of the type of samples tested, their origin, purpose and stage. development. The above objectives have been achieved in the present invention.

Przedmiotem wynalazku jest sposób identyfikacji nicienia Merlinius brevidens w próbce gleby, obejmujący następujące etapy:The invention relates to a method of identifying the nematode Merlinius brevidens in a soil sample, comprising the following steps:

a) dostarczenie próbki gleby zawierające nicienie do identyfikacji;(a) providing a soil sample containing nematodes for identification;

b) wypłukanie nicieni z gleby;b) rinsing the nematodes from the soil;

c) izolację DNA;c) DNA isolation;

d) przeprowadzenie reakcji PCR, zwłaszcza Real Time PCR, z zastosowaniem pary starterów 3’ i 5’ oraz sondy;d) performing a PCR reaction, in particular Real Time PCR, using a pair of 3 'and 5' primers and a probe;

e) porównanie krzywej amplifikacji badanej próby z krzywymi amplifikacji próby zerowej oraz kontroli negatywnej, przy czym do identyfikacji Merlinius brevidens w reakcji PCR, zwłaszcza Real Time PCR, stosuje się właściwe dla danego gatunku startery 3’ i 5’ oraz sondę:e) comparison of the amplification curve of the tested sample with the amplification curves of the blank sample and the negative control, where for the identification of Merlinius brevidens in PCR, especially Real Time PCR, primers 3 'and 5' and a probe appropriate for a given species are used:

Gatunek Type Nazwa Name 5’starter Sekwencja 5'starter Sequence Nazwa Name 3' starter Sekwencja 3 'starter Sequence Nazwa Name Sonda Sekwencja Probe Sequence Merlinius bresitkns Merlinius bresitkns Merbfv Merbfv AGGTGGAAACGGATA GAG AGGTGGAAACGGATA GAG Merbrv Merbrv CAGGGCAAACAGTCT TAG CAGGGCAAACAGTCT TAG Merbs Merbs ClTGTATTCAGCCGCTC TGGTT ClTGTATTCAGCCGCTC TGGTT Przedmiotem wynalazku jest również zestaw do identyfikacji nicenia Merlinius brevidens metodą PCR, zwłaszcza Real - Time PCR, zawierający właściwe dla danego gatunku startery 3’ i 5’ oraz sondę: The subject of the invention is also a kit for the identification of nicenia Merlinius brevidens by PCR, especially Real-Time PCR, containing species-specific primers 3 'and 5' and a probe: Gatunek Type Nazwa Name 5’ starter Sekwencja 5 'starter Sequence Nazwa Name 3' starter Sekwencja 3 'starter Sequence Nazwa Name Sonda Sekwencja Probe Sequence Merlinius bresidens Merlinius bresidens Merbfv Merbfv AGGTGGAAACGGATA GAG AGGTGGAAACGGATA GAG Merbrv Merbrv CAGGGCAAACAGTCT TAG CAGGGCAAACAGTCT TAG Merbs Merbs CTTGTATTCAGCCGCTC TGGTT CTTGTATTCAGCCGCTC TGGTT

Mieszanina reakcyjna zawiera bufor, termostabilną Taq polimerazę, jony magnezu, startery i sondę. Stężenie starterów w mieszaninie reakcyjnej wynosi 1-2 μΜ, sondy 50-100 nM, jonów magnezu 2-5 mM. Reakcję prowadzi się przy temperaturze przyłączania starterów 55-60°C, w objętości mieszaniny reakcyjnej 10-20 μΙ, przy zastosowaniu od 35 do 40 cykli reakcji. Identyfikacji produktów dokonuje się poprzez porównanie krzywych amplifikacji badanej próby z krzywymi amplifikacji próby zerowej. Fig. 1 przedstawia krzywe amplifikacji dla Merlinius microdorus.The reaction mixture contains a buffer, thermostable Taq polymerase, magnesium ions, primers and a probe. The concentration of primers in the reaction mixture is 1-2 μM, probes 50-100 nM, magnesium ions 2-5 mM. The reaction is carried out at an annealing temperature of the primers of 55-60 ° C, in a volume of the reaction mixture of 10-20 µΙ, using 35 to 40 reaction cycles. Product identification is accomplished by comparing the amplification curves of the test sample with the amplification curves of the blank. Fig. 1 shows the amplification curves for Merlinius microdorus.

Poniżej podano przykład identyfikacji Merlinius brevidens. Każdorazowo identycznym warunkom izolacji i amplifikacji poddawano próbę zerową (dejonizowana H2O wolna od nukleaz) oraz próbę ujemną. Materiałem dla próby ujemnej było DNA gatunku nicienia należącego do tego samego rodzaju co badany.An example of the identification of Merlinius brevidens is given below. In each case, the same isolation and amplification conditions were applied to the blank (deionized H2O free from nuclease) and the negative sample. The material for the negative sample was DNA of a nematode species belonging to the same genus as the test.

PrzykładExample

Identyfikacja nicienia Merlinius breyidens.Identification of the nematode Merlinius breyidens.

DNA izolowano przy użyciu komercyjnych zestawów do izolacji DNA NucleoSpin Tissue XS firmy Macherey-Nagel. W reakcji użyto starterów i sondy o następujących sekwencjach:DNA was isolated using Macherey-Nagel's commercial NucleoSpin Tissue XS DNA isolation kits. The reaction used primers and probes with the following sequences:

PL 233 885 Β1PL 233 885 Β1

Starter/sonda Starter / probe Sekwencja Sequence Merbfv Merbfv AGGTGGAAACGGATAGAG AGGTGGAAACGGATAGAG Merbrv Merbrv CAGGGCAAACAGTCTTAG CAGGGCAAACAGTCTTAG Merbs Merbs CTTGTATTCAGCCGCTCTGGTT CTTGTATTCAGCCGCTCTGGTT

Reakcję Real Time PCR przeprowadzano w mieszaninie o objętości 20 μΙ w aparacie RotorGene 6000 firmy Qiagen przy użyciu odczynników z zestawu LuminoCt qPCR ReadyMix (Sigma-Aldrich) w następujących ilościach:The Real Time PCR reaction was performed in a 20 μΙ mixture in a Qiagen RotorGene 6000 apparatus using reagents from the LuminoCt qPCR ReadyMix kit (Sigma-Aldrich) in the following amounts:

- H2O wolna od nukleaz do objętości 20 μΙ,- Nuclease-free H2O up to a volume of 20 μΙ,

- 2 μ110,0 μΜ każdego ze starterów Merbfv i Merbrv,- 2 μ110.0 μΜ of each of the Merbfv and Merbrv primers,

-1 μΙ 4,0 μΜ sondy Merbs znakowanej na końcu 5’ barwnikiem JOE, a 3’-końcu wygaszaczem HBQ1,-1 μΙ 4.0 μΜ of the Merbs probe labeled at the 5 'end with JOE dye, and at the 3' end with HBQ1 quencher,

- 10 μΙ 2X LuminoCt qPCR ReadyMix (Sigma-Aldrich), μΙ DNA.- 10 μΙ 2X LuminoCt qPCR ReadyMix (Sigma-Aldrich), μΙ DNA.

Mieszaninę reakcyjną umieszczano w probówce o objętości 20 μΙ, umieszczano w rotorze termocyklera RotorGene 6000 i przeprowadzano reakcję amplifikacji w 40 20 cyklach w następujących warunkach:The reaction mixture was placed in a 20 μΙ tube, placed in the rotor of a RotorGene 6000 thermal cycler, and the amplification reaction was run for 40 cycles under the following conditions:

Etap Stage Temperatura [°C] Temperature [° C] Czas [s] Time [s] Pomiar fluorescencji Fluorescence measurement Pre-inkubacja Pre-incubation 95 95 180 180 - - Amplifikacja Amplification denaturacja denaturation 95 95 30 thirty - - przyłączanie connecting 55 55 30 thirty pojedynczy single synteza synthesis 72 72 30 thirty - - Chłodzenie Cooling 40 40 20 twenty

Kontrolę negatywną stanowiło DNA nicienia Merlinius microdorus (2 μΙ DNA). Krzywe amplifikacji uzyskane w wyniku przeprowadzonej analizy przedstawiono na Fig. 1Merlinius microdorus DNA (2 μΙ DNA) was a negative control. The amplification curves obtained as a result of the performed analysis are presented in Fig. 1

Rozwiązanie według wynalazku pozwala na wykrycie nicienia w glebie w przeciągu kilku godzin, uwzględniając w tym etapy przygotowania prób, izolacji DNA oraz reakcji Real Time PCR. Metodę według wynalazku, można zastosować do identyfikacji wyżej wymienionego gatunku nicienia niezależnie od rodzaju prób badanych, ich pochodzenia i przeznaczenia oraz stadium rozwoju.The solution according to the invention enables the detection of nematodes in soil within a few hours, including the stages of sample preparation, DNA isolation and Real Time PCR. The method according to the invention can be used to identify the above-mentioned nematode species regardless of the type of test, its origin and destination, and the stage of development.

Proponowany zestaw pozwala identyfikować wyżej wymieniony gatunek nicienia w reakcji Real Time PCR, która jest znacznie czulsza i szybsza od innych metod PCR, Zastosowanie w reakcji Real Time PCR sond znacznie zwiększa specyficzność reakcji w stosunku do reakcji Real Time PCR z barwnikami fluorescencyjnymi.The proposed set allows to identify the above-mentioned species of nematode in the Real Time PCR reaction, which is much more sensitive and faster than other PCR methods. The use of probes in the Real Time PCR reaction significantly increases the specificity of the reaction in relation to the Real Time PCR reaction with fluorescent dyes.

Wykaz sekwencji starterów i sondPrimer and probe sequence listing

Nr startera/sondy Starter / probe No. Nazwa Name Nr 1 No. 1 Merbfv Merbfv Nr 2 No. 2 Merbrv Merbrv Nr 3 No. 3 Merbs Merbs

SekwencjaSequence

AGGTGGAAACGGATAGAGAGGTGGAAACGGATAGAG

CAGGGCAAACAGTCTTAGCAGGGCAAACAGTCTTAG

CTTG ΓΑΊTCAGCCGCTCTGGTTCTTG ΓΑΊTCAGCCGCTCTGGTT

PL 233 885 B1PL 233 885 B1

Claims (2)

Zastrzeżenia patentowePatent claims 1. Sposób identyfikacji nicienia Merlinius brevidens w próbce gleb, obejmujący następujące etapy:1. A method of identifying the nematode Merlinius brevidens in a soil sample, including the following steps: a) dostarczenie próbki gleby zawierające nicienie do identyfikacji;(a) providing a soil sample containing nematodes for identification; b) wypłukanie nicieni z gleby;b) rinsing the nematodes from the soil; c) izolację DNA;c) DNA isolation; d) przeprowadzenie reakcji PCR, zwłaszcza Real Time PCR, z zastosowaniem pary starterów 3' i 5' oraz sondy;d) performing a PCR reaction, in particular Real Time PCR, using a pair of 3 'and 5' primers and a probe; e) porównanie krzywej amplifikacji badanej próby z krzywymi amplifikacji próby zerowej oraz kontroli negatywnej, znamienny tym, że do identyfikacji gatunku Merlinius brevidens w reakcji PCR, zwłaszcza Real Time PCR, stosuje się właściwe dla dartego gatunku starter) 5' (nr 1 ) i 3' (nr 2) oraz sondę nr 3.e) comparison of the amplification curve of the tested sample with the amplification curves of the blank sample and the negative control, characterized in that for the identification of the species Merlinius brevidens in PCR, especially Real Time PCR, primers appropriate for the species are used) 5 '(No. 1) and 3 '(No.2) and probe No.3. 2. Zestaw do identyfikacji nicienia Merlinius brevidens metodą PCR, zwłaszcza Real Time PCR, zawierający właściwe dla danego gatunku starter 5' (nr 1) i 3' (nr 2) oraz sondę nr 3.2. Kit for the identification of Merlinius brevidens by PCR, especially Real Time PCR, containing species-specific primer 5 '(No. 1) and 3' (No. 2) and probe No. 3.
PL415493A 2015-12-23 2015-12-23 Method and a kit for identification of Merlinius brevidens nematode, pest of grains and grasses, by Real Time PCR based method PL233885B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL415493A PL233885B1 (en) 2015-12-23 2015-12-23 Method and a kit for identification of Merlinius brevidens nematode, pest of grains and grasses, by Real Time PCR based method

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL415493A PL233885B1 (en) 2015-12-23 2015-12-23 Method and a kit for identification of Merlinius brevidens nematode, pest of grains and grasses, by Real Time PCR based method

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL415493A1 PL415493A1 (en) 2017-07-03
PL233885B1 true PL233885B1 (en) 2019-12-31

Family

ID=59201321

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL415493A PL233885B1 (en) 2015-12-23 2015-12-23 Method and a kit for identification of Merlinius brevidens nematode, pest of grains and grasses, by Real Time PCR based method

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL233885B1 (en)

Also Published As

Publication number Publication date
PL415493A1 (en) 2017-07-03

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US9624542B2 (en) Telomere length measurement in formalin-fixed, paraffin embedded (FFPE) samples by quantitative PCR
US20070054287A1 (en) Method for identifying medically important cell populations using micro rna as tissue specific biomarkers
JP4968577B2 (en) Rapid measurement method of cytokeratin 19 (CK19) mRNA, and primer and probe therefor
WO2016075277A1 (en) Novel fish virus and method for detection
CN108754010A (en) It is a kind of quickly to detect the remaining method of genomic DNA in total serum IgE sample
PL233885B1 (en) Method and a kit for identification of Merlinius brevidens nematode, pest of grains and grasses, by Real Time PCR based method
PL233894B1 (en) Method and a kit for identification of Merlinius microdorus nematode, pest of grains and grasses, by Real Time PCR based method
CN104531866B (en) Biomarker used for colorectal cancer
PL233839B1 (en) Method and a kit for identification of nematodes, pests of grains and grasses, by Real Time PCR based method
PL232391B1 (en) Method and a kit for identification of Bursaphelenchus hofmanni nematode, forest plants pest, by the Real Time PCR based method
PL232392B1 (en) Method and a kit for identification of Bursaphelenchus fraudulentus nematode, forest plants pest, by the Real Time PCR based method
PL233892B1 (en) Method and a kit for identification of Longidorus eonymus nematode that is harmful to fruit trees and bushes, by Real Time PCR based method
PL233886B1 (en) Method and a kit for identification of Geocenamus longus nematode, forest plants pest, by the Real Time PCR based method
PL231511B1 (en) Method and a kit for identification of Bursaphelenchus tiliae nematode, forest plants pest, by the Real Time PCR based method
PL230914B1 (en) Method and a kit for identification of nematodes, forest plant pests, preferably coniferous trees, by Real Time PCR based method
PL232394B1 (en) Method and a kit for identification of Xiphinema diversicaudatum nematode that is harmful to fruit trees and bushes, by Real Time PCR based method
PL233891B1 (en) Method and a kit for identification of Geocenamus curvatum nematode, forest plants pest, by the Real Time PCR based method
PL231512B1 (en) Method and a kit for identification of Longidorus intermedius nematode that is harmful to fruit trees and bushes, by Real Time PCR based method
PL231513B1 (en) Method and a kit for identification of Longidorus poessneckensis nematode that is harmful to fruit trees and bushes, by Real Time PCR based method
PL233837B1 (en) Method and a kit for identification of nematodes, papilionaceous plant growing pests, by Real Time PCR based method
PL233888B1 (en) Method and a kit for identification of Paralongidorus maximus nematode that is harmful to fruit trees and bushes, by Real Time PCR based method
PL230915B1 (en) Method and a kit for identification of nematodes, root crop pests, by Real Time PCR based method
PL233893B1 (en) Method and a kit for identification of Heterodera goettingiana nematode, important farm plants pest, by the Real Time PCR based method
PL232393B1 (en) Method and a kit for identification of Paratrichodorus pachydermus nematode, plant pest, by the Real Time PCR based method
PL231510B1 (en) Method and a kit for identification of Rotylenchus capitatus nematode, forest plants pest, by the Real Time PCR based method