PL206257B1 - Związek oksapenemowy, zawierająca go kompozycja farmaceutyczna i zastosowanie - Google Patents

Związek oksapenemowy, zawierająca go kompozycja farmaceutyczna i zastosowanie

Info

Publication number
PL206257B1
PL206257B1 PL361312A PL36131201A PL206257B1 PL 206257 B1 PL206257 B1 PL 206257B1 PL 361312 A PL361312 A PL 361312A PL 36131201 A PL36131201 A PL 36131201A PL 206257 B1 PL206257 B1 PL 206257B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
compound
oxapenem
solution
formula
toluene
Prior art date
Application number
PL361312A
Other languages
English (en)
Other versions
PL361312A1 (pl
Inventor
Hans Rudolf Pfaendler
Iain Nelson Simpson
Original Assignee
Amura Limitedamura Limited
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority claimed from EP00309207A external-priority patent/EP1199077A1/en
Priority claimed from GB0105766A external-priority patent/GB0105766D0/en
Priority claimed from GB0119165A external-priority patent/GB2369358A/en
Application filed by Amura Limitedamura Limited filed Critical Amura Limitedamura Limited
Publication of PL361312A1 publication Critical patent/PL361312A1/pl
Publication of PL206257B1 publication Critical patent/PL206257B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07DHETEROCYCLIC COMPOUNDS
    • C07D503/00Heterocyclic compounds containing 4-oxa-1-azabicyclo [3.2.0] heptane ring systems, i.e. compounds containing a ring system of the formula:, e.g. oxapenicillins, clavulanic acid derivatives; Such ring systems being further condensed, e.g. 2,3-condensed with an oxygen-, nitrogen- or sulfur-containing hetero ring
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/33Heterocyclic compounds
    • A61K31/395Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins
    • A61K31/41Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins having five-membered rings with two or more ring hetero atoms, at least one of which being nitrogen, e.g. tetrazole
    • A61K31/42Oxazoles
    • A61K31/424Oxazoles condensed with heterocyclic ring systems, e.g. clavulanic acid
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K47/00Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
    • A61K47/06Organic compounds, e.g. natural or synthetic hydrocarbons, polyolefins, mineral oil, petrolatum or ozokerite
    • A61K47/08Organic compounds, e.g. natural or synthetic hydrocarbons, polyolefins, mineral oil, petrolatum or ozokerite containing oxygen, e.g. ethers, acetals, ketones, quinones, aldehydes, peroxides
    • A61K47/10Alcohols; Phenols; Salts thereof, e.g. glycerol; Polyethylene glycols [PEG]; Poloxamers; PEG/POE alkyl ethers
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/0012Galenical forms characterised by the site of application
    • A61K9/0014Skin, i.e. galenical aspects of topical compositions
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/0012Galenical forms characterised by the site of application
    • A61K9/0019Injectable compositions; Intramuscular, intravenous, arterial, subcutaneous administration; Compositions to be administered through the skin in an invasive manner
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/0012Galenical forms characterised by the site of application
    • A61K9/0043Nose
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/0012Galenical forms characterised by the site of application
    • A61K9/0046Ear
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/0012Galenical forms characterised by the site of application
    • A61K9/0048Eye, e.g. artificial tears
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/14Particulate form, e.g. powders, Processes for size reducing of pure drugs or the resulting products, Pure drug nanoparticles
    • A61K9/141Intimate drug-carrier mixtures characterised by the carrier, e.g. ordered mixtures, adsorbates, solid solutions, eutectica, co-dried, co-solubilised, co-kneaded, co-milled, co-ground products, co-precipitates, co-evaporates, co-extrudates, co-melts; Drug nanoparticles with adsorbed surface modifiers
    • A61K9/145Intimate drug-carrier mixtures characterised by the carrier, e.g. ordered mixtures, adsorbates, solid solutions, eutectica, co-dried, co-solubilised, co-kneaded, co-milled, co-ground products, co-precipitates, co-evaporates, co-extrudates, co-melts; Drug nanoparticles with adsorbed surface modifiers with organic compounds
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/14Particulate form, e.g. powders, Processes for size reducing of pure drugs or the resulting products, Pure drug nanoparticles
    • A61K9/19Particulate form, e.g. powders, Processes for size reducing of pure drugs or the resulting products, Pure drug nanoparticles lyophilised, i.e. freeze-dried, solutions or dispersions
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04Antibacterial agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P43/00Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Dermatology (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Otolaryngology (AREA)
  • Oil, Petroleum & Natural Gas (AREA)
  • Ophthalmology & Optometry (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
  • Nitrogen And Oxygen Or Sulfur-Condensed Heterocyclic Ring Systems (AREA)
  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)

Description

Opis wynalazku
Niniejszy wynalazek dotyczy związku oksapenemowego, zawierającej go kompozycji farmaceutycznej i zastosowania medycznego.
Dobrze znane jest zastosowanie antybiotyków β-laktamowych (na przykład penicylin, cefalosporyn i karbapenemów), ale ich długotrwałe stosowanie wiąże się ze zwiększeniem oporności bakteryjnej.
Zasadniczy mechanizm powstawania oporności bakteryjnej jest związany z β-laktamazami. Są cztery klasy β-laktamaz, znane jako klasy A do D. Najważniejsze klinicznie są β-laktamazy klasy A i C. Jako sposób przeciwdziałania pewnym postaciom oporności, skuteczna okazała się terapia łączona przy użyciu antybiotyku β-laktamowego i inhibitora β-laktamazy. Znanymi produktami łączonymi są na przykład Tazocim®, który jest połączeniem antybiotyku piperacyliny i inhibitora, tazobaktamu oraz Augmentin®, połączenie antybiotyku amoksycyliny i inhibitora kwasu klawulanowego. Jednakże tazobaktam i kwas klawulanowy są skuteczne tylko przeciwko β-laktamazom klasy A, co pozostawia ich partnerów antybiotykowych niezabezpieczonymi przeciwko β-laktamazom klasy B, D i co najważniejsze, klasy C.
Chociaż znane są inhibitory β-laktamazy o aktywności przeciwko β-laktamazom klasy C, to dotychczas nie ma dostępnego handlowo inhibitora o szerokim spektrum, aktywnego przeciwko β-laktamazom, zarówno klasy A, jak i C.
W EP 0 301 394 ujawniono szeroki zakres związków oksapenemowych, które są środkami przeciwbakteryjnymi.
W EP 0 362 622 ujawniono związki oksapenemowe o szerokim spektrum hamowania β-laktamaz, wysoce aktywne przeciwko β-laktamazom klasy A, klasy C i klasy D.
W EPO 548 790 ujawniono, że stereochemia chiralnego łańcucha bocznego przy węglu 6 struktury oksapenemu ma znaczny wpływ na aktywność hamowania β-laktamazy in vitro. Związki mające boczny łańcuch (1'S)-1-hydroksyalkilowy, o konfiguracji przeciwnej do konfiguracji tienamycyny, wykazują zwiększoną aktywność in vitro przeciwko β-laktamazie TEM 1 z E. Coli, typowej β-laktamazie klasy A. Żaden z powyższych dokumentów nie wykazuje szczególnej aktywności in vivo.
W leczeniu infekcji bakteryjnych ważne jest także uzyskanie dostatecznie wysokich poziomów we krwi i długich okresów półtrwania β-laktamów. W dziedzinie tradycyjnych antybiotyków β-laktamowych, np. cefalosporyn, problem ten rozwiązano za pomocą związków takich jak ceftazydym i ceftriakson (biologiczne okresy półtrwania in vivo w osoczu ludzkim odpowiednio 1,7-2,1 godzin i 5,8-8,7 godzin). W przeciwieństwie do tego, odpowiadające biologiczne okresy półtrwania in vivo antybiotyków β-laktamowych nietradycyjnych, na przykład antybiotyku karbapenemowego, imipenemu, są znacznie krótsze (0,9 i 1,0 godziny). Okres półtrwania klawulanianu wynosi 0,7-1,4 godziny. Relatywnie długi biologiczny okres półtrwania jest bardzo ważny dla praktycznej stosowalności antybiotyków i inhibitorów β-laktamaz.
Zgłaszający nieoczekiwanie stwierdził, że kilka nowych związków w zakresie najszerszego ogólnego ujawnienia EP 0 362 622 wykazuje zaskakująco wysoką biodostępność i doskonałą aktywność przeciwko β-laktamazom klasy A i klasy C. Ponadto stwierdzono, że wykazują one nieoczekiwanie bardzo dobrą stabilność w osoczu krwi, co może prowadzić do zwiększonych poziomów w osoczu i zwiększonego biologicznego okresu półtrwania.
Zgodnie z niniejszym wynalazkiem, w pierwszym jego aspekcie, przedmiotem wynalazku jest związek oksapenemowy, będący zwitterjonem o wzorze la lub Ib, lub zdolny do tworzenia zwitterjonu o wzorze la lub Ib:
w których R oznacza grupę C1-C8 alkilową o łańcuchu prostym lub rozgałęzionym, zawierającą protonowany podstawnik zasadowy, którym jest protonowana grupa aminowa lub protonowana grupa aminometylenoaminowa.
PL 206 257 B1
Korzystnymi związkami są te związki o wzorze la, w których:
R oznacza -(CH2)4NH3+ (dalej okreś lany jako zwi ą zek E);
R oznacza -(CH2)3NH3+ (dalej okreś lany jako zwi ą zek PFOB);
R oznacza -(CH2)2NH3+ (dalej okreś lany jako zwi ą zek A);
R oznacza - (CH2)2NHCH:NH2+ (dalej określany jako związek B); lub
R oznacza -CH2NHCH:NH2+ (dalej okreś lany jako związek D), a w szczególności związek o wzorze la, w którym R oznacza -(CH2)3NH3+.
Zrozumiałe jest, że protonowanie azotu w grupach R związków B i D może mieć miejsce przy każdym z atomów azotu. Zatem, B i D mogą być również przedstawione wzorem la, w którym R oznacza -(CH2)2NH2+CH:NH i -CH2NH2+CH:NH.
Również korzystny jest związek o wzorze Ib, w którym R oznacza -(CH2)3NH3+ (dalej określany jako YOB).
Jest zrozumiałe, że będzie istniała równowaga pomiędzy związkami według wynalazku w ich postaci zwitterjonowej [tj. gdy grupa zasadowa (np. aminowa) jest protonowana, a grupa kwasu karboksylowego deprotonowana] oraz związkami w ich postaci „niejonowej” [gdy grupa zasadowa (np. aminowa) i grupa kwasu karboksylowego są obojętne]. Postaci „niejonowe” kompozycji oraz mieszaniny postaci zwitterjonowych i „niejonowych” są wszystkie objęte zakresem wynalazku. Zatem, określenie „związek oksapenemowy, który jest zdolny do tworzenia zwitterjonu”, obejmuje związki oksapenemowe w postaci „niejonowej”, to jest związki oksapenemowe o wzorze la lub wzorze Ib, w którym grupa CO2- została protonowana do CO2H, a „protonowana grupa zasadowa” lub „protonowana zasada azotowa” w grupie R jest deprotonowana. Przykładami związków oksapenemowych, które są zdolne do tworzenia zwitterjonu są związki o wzorze la, w którym grupa CO2- jest protonowana do CO2H, a grupami R są grupy -(CH2)4NH2, -(CH2)3NH2, -(CH2)2NH2, -(CH2)2NHCH:NH, lub -CH2NHCH:NH; oraz związki o wzorze Ib, w którym grupa CO2- jest protonowana do CO2H, a grupą R jest grupa -(CH2)3NH2.
Termin „związek oksapenemowy, który jest zdolny do tworzenie zwitterjonu” obejmuje również mieszaniny związków oksapenemowych w postaciach zwitterjonowej i „niejonowej”.
Zgłaszający stwierdził, że połączenie: (a) szczególnej stereochemii w pozycjach 5 i 6 dwupierścieniowej struktury oksapenemowej; i (b) szczególnej struktury zwitterjonowej (lub zdolności do tworzenia takiej struktury zwitterjonowej); daje związki o znaczącej biodostępności i szerokim spektrum działania.
Zastrzegane związki wykazują niezwykle wysoką biodostępność w porównaniu ze związkami znanymi. Związki wykazują niezwykłą aktywność przeciwko β-laktamazom klas A i C.
W szczególności niezwykle wysoką aktywność i selektywność przeciwko β-laktamazom klasy A wykazuje związek YOB.
Zgodnie z powyższym, w następnym aspekcie, przedmiotem wynalazku jest kompozycja farmaceutyczna, zawierająca skuteczną farmakologicznie ilość związku oksapenemowego określonego powyżej. Kompozycja ma aktywność hamownia β-laktamazy.
W kolejnym aspekcie, przedmiotem niniejszego wynalazku jest zastosowanie związku zwitterjonowego o wzorze la lub Ib:
w których R oznacza grupę alkilową C1-C8 o łańcuchu prostym lub rozgałęzionym, zawierającą protonowany podstawnik zasadowy, którym jest protonowana grupa aminowa lub protonowana grupa aminometylenoaminowa, do wytwarzania leku do leczenia infekcji.
Korzystnie, stosuje się związek zwitterjonowy określony jest wzorem la, w którym R oznacza -(CH2)4NH3+, -(CH2)3NH3+, -(CH2)2NH3+, -(CH2)2NHCH:NH2+ lub -CH2NHCH:NH2+; lub w którym związek zwitterjonowy jest określony wzorem Ib, w którym R oznacza -(CH2)3NH3+.
PL 206 257 B1
Związki opisane w tym wynalazku jak i antybiotyki β-laktamowe są aktywne przeciwko szerokiemu zakresowi bakterii Gram-dodatnich (gronkowce, paciorkowce) i Gram-ujemnych (pałeczki jelitowe, gatunki niefermentujące), odpowiedzialnych za infekcje układu moczowego, układu oddechowego, ran i posocznicę wewnątrzbrzuszną. Związek oksapenemowy i antybiotyk mogą być podawane jednocześnie (na przykład jako mieszanina lub, na przykład, jako oddzielne leki. Oksapenem i antybiotyk mogą być podawane w różnych porach.
Zatem, kompozycje farmaceutyczne mogą zawierać dodatkowo skuteczną farmakologicznie ilość antybiotyku, takiego jak antybiotyk β-laktamowy (np. ceftazydym). Pacjent może być człowiekiem lub pacjentem zwierzęcym.
Krótki opis rysunków
Przedmiotowy wynalazek zostanie zilustrowany w odniesieniu do rysunków, na których: figura 1 przedstawia poziomy analogów oksapenemu w osoczu krwi po podskórnym podaniu myszom w dawce 50 mg na kg; a figura 2 przedstawia schemat syntezy związku, ilustrujący syntezę związku według wynalazku (PFOB) ze związku dostępnego w handlu.
Szczegółowy opis wynalazku
Zsyntetyzowano i przetestowano in vitro ponad 40 analogów oksapenemu. Badania zależności struktura-aktywność (SAR) pozwoliły zidentyfikować funkcje różnych części cząsteczki oksapenemu w odniesieniu do stabilności chemicznej, powinowactwa wiązania docelowego, aktywności przeciwbakteryjnej i jej spektrum, oraz stopnia hamowania β-laktamaz. Nie było możliwe przewidzenie aktywności na podstawie badań struktury.
Zsyntetyzowaliśmy i przebadaliśmy szereg związków oksapenemowych, znanych jako PFOB, YOB, A, E, B, D, U i XOB. Ich struktury przedstawiono w tabeli 1. Można zauważyć, że PFOB, YOB, E, B, D i A stanowią wykonania niniejszego wynalazku.
Syntezy omówiono poniżej.
T a b e l a 1
Struktura związków oksapenemowych
Związek Wzór Grupa R
1 2 3
PFOB OH ΥΦ · co2 -(CH2)3NH3+
E OH co2 -(CH2)4NH3+
A OH ΎΦ - CO2 -(CH2)2NH3+
PL 206 257 B1 cd tabeli 1
1 2 3
B OH Ύχ - 0 bot (CH2)2NHCH:NH2+
D OH ΖΎ - οο2 -CH2NHCH:NH2+
YOB 9ηη w · C02 -(CH2)3NH3+
U OH ΖΎ - οο2 -CH3
XOB 9ηη w · C02 -CH3
A. Testy farmakokinetyczne
Poziomy w osoczu krwi u myszy (średnia z 3 na punkt czasowy) kompozycji XOB, YOB, PFOB i YOB mierzono w punktach czasowych 5, 10, 20 i 30 minut po podaniu podskórnym (SC) w dawce 50 mg na kg.
Wyniki przedstawiono w tabeli 2 i zilustrowano na fig. 1.
T a b e l a 2
Związek Stężenie (mg/l) 5 min Stężenie (mg/l) 10 min Stężenie (mg/l) 20 min Stężenie (mg/l) 30 min
YOB 40,12 44,88 13,79 10,40
PFOB 26,42 25,39 12,90 2,89
XOB 16,20 10,43 2,63 1,21
U 0,55 0,21 0,03 0,00
PL 206 257 B1
Na podstawie poziomów w osoczu krwi w różnych punktach czasowych można wyraźnie stwierdzić, że związki według wynalazku po podaniu podskórnym (zwitterjonowe związki PFOB i YOB) mają zaskakująco dobrą biodostępność w porównaniu z solami XOB i U. Ponadto, należy zauważyć, że jedyną różnicą pomiędzy PFOB i U oraz pomiędzy YOB i XOB, jest łańcuch podstawiony grupą aminową (zamiast grupy metylowej) w związkach PFOB i YOB. Łańcuch podstawiony grupą aminową umożliwia strukturę zwitterjonową. Zatem, kompozycje są wyjątkowo odpowiednie do stosowania w szpitalach w reż imach podawania drogą i. p. i s. c.
B. Aktywność in vitro w połączeniu z ceftazydymem
Testy, w celu oznaczenia minimalnego stężenia hamującego (MIC), przeprowadzono w rozcieńczeniach agarowych zgodnie z zaleceniami NCCLS (2000). W danych pokazanych poniżej najniższa wartość MIC wskazuje najsilniejszą aktywność.
β-Laktamazy klasy A
Ceftazydym sam (CAZ) i ceftazydym w stosunku 2:1 z każdym z PFOB, YOB, U i XOB (CAZ +
PFOB, CAZ + YOB, CAZ + U i CAZ + XOB) testowano względem różnych β-laktamaz klasy A.
Wyniki przedstawiono w tabeli 3.
T a b e l a 3
Aktywność hamująca w stosunku do β-laktamaz klasy A
Organizm CAZ CAZ + PFOB CAZ + YOB CAZ + U CAZ + XOB
E. coli ATCC 25922 0,25 0,25 0,03 0,125 0,25
E. coli ATCC 35218 0,125 0,125 0,125 0,125 0,125
E. coli J53-1 0,125 0,125 0,125 0,125 0,25
E. coli TEM-1 0,25 0,5 0,06 0,25 0,25
E. coli TEM-3 16 2 2 2 2
E. coli TEM-6 > 64 4 2 8 2
E. coli TEM-9 > 64 8 2 8 4
E. coli TEM-10 > 64 16 2 8 4
Widoczne jest, że wszystkie oksapenemy, stosowane w połączeniu z CAZ wykazują bardzo dobrą aktywność przeciwko E. coli TEM-3, TEM-6, TEM-9 i TEM-10 w porównaniu z samym CAZ.
YOB, kompozycja według wynalazku, wykazuje zaskakująco wysoką aktywność w porównaniu z XOB (kompozycja bliska strukturalnie i stereochemicznie, która nie jest zwitterjonem). Szczególnie dobrze wykazują to wartości MIC przeciwko E. coli ATCC 25922 i TEM-1 dla YOB (0,03 i 0,06) w porównaniu z wartościami dla XOB (0,25 i 0,25). Należy zauważyć, że wartości MIC przeciwko TEM-9 i TEM-10 są również bardzo dobre.
β-Laktamazy klasy C
Ceftazydym sam (CAZ) i ceftazydym w stosunku 1:1 z każdym z PFOB, YOB, U i XOB (CAZ + PFOB, CAZ + YOB, CAZ + U i CAZ + XOB) testowano względem różnych β-laktamaz klasy C.
Wyniki przedstawiono w tabeli 4.1.
T a b e l a 4.1
Aktywność hamująca w stosunku do β-laktamaz klasy C z Enterobacteriacaeae
Organizm CAZ CAZ + PFOB CAZ + YOB CAZ + U CAZ + XOB
E. cloacae P99 32 4 4 2 4
E. cloacae Hennessy > 64 4 16 4 4
E. cloacae 84-CON > 64 4 8 8 8
C. freundii C2-eon 64 0,03 4 2 2
S. marcescens S2-con 1 0,03 0,03 0,25 0,5
PL 206 257 B1
Widoczne jest, że wszystkie oksapenemy, stosowane w połączeniu z CAZ wykazują bardzo dobrą aktywność przeciwko wszystkim organizmom w porównaniu z samym CAZ.
PFOB, kompozycja według wynalazku, wykazuje zaskakująco wysoką aktywność w porównaniu z U (kompozycja bliska strukturalnie i stereochemicznie, która nie jest zwitterjonem). Szczególnie dobrze wykazują to wartości MIC przeciwko E. cloacae 84-eon, C. Freundii C2-con i S. marcescens S2-con dla PFOB (odpowiednio 4, 0,03 i 0,03) w porównaniu z wartościami dla U (8, 2 i 0,25). Należy zauważyć, że wartości MIC dla YOB przeciwko S. marcescens S2-con są znacznie lepsze w porównaniu z XOB.
Ceftazydym sam (CAZ) i ceftazydym w stosunku 2:1 z każdym z PFOB, YOB, U i XOB (CAZ +
PFOB, CAZ + YOB, CAZ + U i CAZ + XOB) testowano względem różnych β-laktamaz klasy C.
Wyniki przedstawiono w tabeli 4.2.
T a b e l a 4.2
Aktywność hamująca w stosunku β-laktamaz klasy C z Enterobacteriacaeae (stosunek 2:1)
Organizm CAZ CAZ + PFOB CAZ + YOB CAZ + U CAZ + XOB
E. cloacae P99 32 4 8 4 8
E. cloacae Hennessy > 64 4 8 8 8
E. cloacae 84-CON > 64 4 16 16 16
C. freundii C2-eon 64 2 2 4 4
S. marcescens S2-con 1 0,5 1 0,5 0,5
Także w tym przypadku PFOB, kompozycja według wynalazku, wykazuje zaskakująco wysoką aktywność w porównaniu z U (kompozycja bliska strukturalnie i stereochemicznie, która nie jest zwitterjonem). Wykazano to przez porównanie wartości MIC przeciwko E. cloacae Hennessy, E. cloacae 84-con i C. Freundii C2-con dla PFOB (odpowiednio 4,4 i 2) z wartościami dla U (8, 16 i 4). Należy zauważyć, że wartości MIC dla YOB przeciwko C. freundii C2-con są znacznie lepsze w porównaniu z XOB.
Podsumowanie
Można zauważyć, że kompozycje według wynalazku charakteryzują się niezwykłą kombinacją doskonałej biodostępności w połączeniu z szerokim spektrum aktywności przeciwko β-laktamazom dwóch klas, A i C. Nie ma prostej metody przewidywania zależności pomiędzy aktywnością związku a stereochemią podstawnika przy C-6: U i PFOB mają (1'R)-1-hydroksyetylowy łańcuch boczny, natomiast XOB i YOB mają (1'S)-1-hydroksyetylowy łańcuch boczny. Doskonałej aktywności PFOB i YOB nie można było przewidzieć.
C.1 Stabilność chemiczna XOB i YOB
Hydrolityczne okresy półtrwania oznaczono w 37°C w buforowanym fizjologicznie fosforanie, pH 7,4, metodą spektroskopii UV, przy 265 nm i stężeniu oksapenemu 10-4 M.
XOB YOP
Hydrolityczny okres półtrwania 6,5 h 7,0 h
C.2 Stabilność XOB i YOB w osoczu krwi
Stabilność w osoczu krwi oznaczono mikrobiologicznie, stosując agarowy test dyfuzji z Escherichia coli TEM 1 (szczep oporny na penicylinę). Oksapenemy inkubowano z jałową surowicą bydlęcą (OXOID) w temperaturze 37°C w stężeniu 0,033%. Próbki (30 ml) pobierane w odstępach czasowych w 0 h, 1,5 h, 3 h, 4,5 h i 6 h wylewano na handlowe krążki bibuły filtracyjnej (OXOID) zawierające piperacylinę (75 mg) i obliczano ilości pozostałego aktywnego inhibitora β-laktamazy (oksapenemu) z obserwowanych zmniejszających się średnic hamowania (27-12 mm) w porównaniu ze średnicami (24-0 mm) otrzymanymi dla krążków z piperacyliną (75 mg) potraktowanych różnymi ilościami (10 mg, 5 mg, 2,5 mg, 1,25 mg, 0 mg) inhibitora β-laktamazy.
XOB YOP
Okres półtrwania w osoczu w 37°C 1,0 h 2,4 h
PL 206 257 B1
Zatem, zwitterjonowy związek YOB jest dużo bardziej stabilny w osoczu krwi niż XOB, podczas gdy stabilności chemiczne obu związków są praktycznie jednakowe. Ten nieoczekiwany wzrost stabilności w osoczu krwi zwitterjonowego oksapenemu YOB (w porównaniu z XOB, kompozycją bliską strukturalnie i stereochemicznie, która nie jest zwitterjonem) jest bardzo znaczący i ważny. Stabilność ta zapewnia wysokie poziomy we krwi i długi biologiczny okres półtrwania i przez to doskonałą zdolność do leczenia infekcji bakteryjnych u ludzi i zwierząt.
D. Synteza związku PFOB, A, E i YOB
D.1 Synteza kwasu (5R,6R,1'R)-3-(4-amino-1,1-dimetylobutylo)-6-(1'-hydroksyetylo)-7-okso-4-oksa-1-azabicyklo-[3.2.0]hept-2-eno-2-karboksylowego [PFOB]
Opisana poniżej synteza jest przedstawiona schematycznie na figurze 2 załączonych rysunków.
Do reaktora Pfaudler'a o pojemności 35 1 (GLMS) wprowadzono acetonitryl (16,7 kg) i (3R,4R)-4-(acetoksy)-3-[(IR)-1-[[(1,1-dimetyloetylo)dimetylosililo]oksy]etylo]-2-azetydynon (3,34 kg, 11,6 mola). Do kolby górnej załadowano 21% sól sodowa merkaptanu metylu (5,8 1, 17,4 mola, 1,5 równoważników). Dodano go do wsadu w temperaturze 15-20°C (wymagane chłodzenie dla kontrolowania reakcji egzotermicznej) w ciągu 2 godzin. Następnie wsad mieszano przez 1 godzinę, po którym to czasie analiza TLC wykazała zakończenie reakcji.
Dolną fazę wodną wyładowano, a fazę produktu (w acetonitrylu) przemyto 6,7 1 20% solanki, po czym odpędzono do sucha w wyparce rotacyjnej (20 l). Następnie surowy produkt krystalizowano z heksanu (13,3 1), chłodząc od temperatury wrzenia do 0°C. Krystaliczny produkt odsączono i przemyto heksanem (1 l). Po wysuszeniu pod próżnią otrzymano związek III z fig. 2 (2,49 kg, 78%), t.t. 93°C w postaci białych igieł.
Do naczynia szklanego o pojemności 20 l załadowano THF (8,25 l) i następnie związek (III) (1,65 kg, 6,0 moli). Wsad ochłodzono do -40°C i załadowano 2,5 M butylolit (2,4 l) w temperaturze < -25°C (typowo -45 do -35°C), w ciągu 1 godziny. Całość pozostawiono do osiągnięcia temperatury -25°C. Do drugiego naczynia załadowano THF (4,1 l) i jodooctan paranitrobenzylu (1,92 kg, 6,02 mola), który następnie ochłodzono do -10°C. Roztwór związku (III) przeniesiono następnie do drugiego roztworu, utrzymując temperaturę < 0°C (typowo < -8°C), w ciągu 30 minut, stosując kaniulę pod próżnią. Mieszano do zakończenia reakcji (dwie godziny w temperaturze < -5°C), po czym ochłodzono wsad do -10°C i dodano do naczynia o pojemności 50 l, zawierającego 20% solankę (16 l). Niższą fazę wodną ekstrahowano dichlorometanem (13 l). Następnie połączono dwie fazy organiczne i odpędzono do suchości, otrzymując surowy związek (IV) z figury 2 (około 3 kg). Dodano THF (około 2 l) w celu umoż liwienia przechowywania produktu w postaci około 40% roztworu.
Roztwór w THF (3,54 l), zawierający około 40% związku IV (1292 g, 2,76 mola) odparowano do KF < 0,1%, po czym ponownie rozpuszczono w świeżym THF (KF < 0,05%), 7,5 l. Dodano do niego chlorek kwasu 5-azydo-2,2-dimetylopentanowego (1,23 kg, 6,5 mola, 2,35 równoważnika) w temperaturze < -50°C. Wkroplono w temperaturze < -65°C 20% (1,04M) roztwór bis(trimetylosililo)amidku litu 6000 ml, 6,24 mola, 2,25 równoważnika). Mieszaninę, która znacznie ściemniała, mieszano w temperaturze -70°C przez 1 godzinę. Reakcję zatrzymano przez wyładowanie do toluenu (12,5 l) i 10% HCl (12,5 l). Następnie fazę organiczną przemyto kolejno 25% KHCO3 (12,5 l), wodą (12,5 l) i nasyconą solanką (6 l). Następnie fazę organiczną zatężono i odparowano, otrzymując ciemny zatężony roztwór (około 30% produktu).
Produkt (z trzech szarż powyższej reakcji) rozpuszczony w 20% heksanie w toluenie (20 l) dodano do 2 5 kg krzemionki chromatograficznej przygotowanej z około 50 l toluenu. Eluowano pod ciśnieniem 0,5 bara, załadowano materiału na kolumnę i zawracano aż do pokazania się czoła (frakcja 1). Małą ilość czoła oddzielono w tej frakcji i odrzucono. Następnie eluowano następujące frakcje;
Frakcje 2-4 toluen (po 25 l każda),
Frakcje 5-6 6% octan etylu w toluenie (po 25 l),
Frakcje 7-8 8% octan etylu w toluenie (po 25 l),
Frakcje 9-10 10% octan etylu w toluenie (po 25 l).
Następnie frakcje zawierające produkt odpędzono do objętości 25 l 13,5% roztworu związku V z fig. 2 (3,51 kg, 68%).
Roztwór tetrahydrofuranowy związku V odpędzono na wyparce rotacyjnej, aż do uzyskania oleju (4,44 kg, zawierający 3,2 kg związku V, 5,15 mola, w tym część THF). Olej ten ponownie rozpuszczono w THF (10,75 l), otrzymując roztwór finalny (KF 0,0326%). Roztwór ten załadowano do naczynia o pojemności 100 l, po czym dodano kwas octowy (2,98 l) i fluorek tetra-n-butyloamoniowy (5,36 kg, 17,13 mola) i więcej THF (21,5 l). Podczas załadowywania obserwowano lekkie pienienie. Szarżę
PL 206 257 B1 ogrzano do wrzenia (65°C) i następnie utrzymywano w temperaturze bliskiej wrzenia przez 16 godzin. Analiza próbki za pomocą TLC wykazała obecność jedynie śladowej ilości substratu. Dodano toluen (32 l) i zawartość naczynia ochłodzono do 20°C, po czym zatrzymano reakcję dodając w ciągu 15 minut 1M roztwór wodorowęglanu potasu (27 l), znów obserwując pienienie.
Fazę organiczną przemyto 1M roztworem wodorowęglanu potasu (2 x 27 l), 10% solanką (4 x 11l) i 20% roztworem solanki (3 l). Przemywanie to miał o na celu dokładne usunięcie kwasu octowego.
Roztwór toluenowy odpędzono do objętości około 5 l i przechowywano w lodówce, aż do wytworzenia drugiej partii 4,2 kg surowego produktu.
Surowy materiał oczyszczono metodą suchej chromatografii kolumnowej szybkiej pod ciśnieniem 0,5 bara azotu.
Do kolumny o średnicy 30 cm załadowano zawiesinę krzemionki chromatograficznej (Chrogel Silica I 254, 25 kg) w toluenie (50 l), otrzymując głębokość złoża 80 cm po osadzeniu. Toluen eluowano, aż krzemionka była częściowo sucha. Surowy produkt otrzymany powyżej (8,5 kg) rozpuszczono w toluenie (20 l) zał adowano na krzemionkę i wprowadzono na kolumnę , stosują c ciś nienie azotu. Następnie produkt eluowano stosując następujące mieszaniny rozpuszczalników.
100% toluen 50 l, toluen:octan etylu (98:2) 75 l, toluen:octan etylu (95:5) 25 l, toluen:octan etylu (80:20) 100 l, toluen:octan etylu (70:30) 50 l, toluen:octan etylu (60:40) 50 l, toluen:octan etylu (60:40) + 0,5% izopropanol 50 l.
Zebrano następujące frakcje
Numer frakcji Wielkość frakcji
1-7
8-12
13-20 l, l, 25 l.
Po zatężeniu pod próżnią w 20-litrowej wyparce rotacyjnej otrzymano związek VI z fig. 2 jako jasny, czerwono-pomarańczowy olej (pojedyncza plama w TLC, 4,004 kg, 7,88 mola, 76,5%).
Do 2-litrowej kolby załadowano dichlorometan (1,02 l) i disulfid metylowy (398 g, 4,23 mola). Następnie wprowadzono zmiatacz wolnych rodników (sulfid 3 -tert-butylo-4-hydroksy-5-metylowofenylowy, 1,85 g, 0,005 mola) i wsad ochłodzono do -35°C. Przez roztwór przepuszczano przez 2 h gazowy chlor (296 g, 8,35 mola), otrzymując pomarańczowy roztwór chlorku metylosulfenylu.
Roztwór ten dodano do 20-litrowej kolby zawierającej dichlorometan (11,4 l) i związek VI (4,97 kg 38,2% roztworu w dichlorometanie, 1,9 kg aktywnego związku, 3,74 mola) w temperaturze -25°C do -15°C w ciągu 25 minut. Następnie mieszano wsad w temperaturze -25°C przez 20 minut. Kiedy TLC wykazała zakończenie reakcji (nieobecność substratu), wsad wylano do 50-litrowej kolby zawierającej roztwór wodorosiarczynu sodu (1,196 kg) i wodorowęglanu sodu (0,975 kg) w wodzie (23 l). Rozdzielono fazy i fazę wodną ekstrahowano dichlorometanem (1,5 kg, 2 l). Połączone fazy organiczne przemyto nasyconym roztworem solanki (6 l) i wysuszono nad siarczanem magnezu (1 kg), po czym zatężono pod próżnią do oleju w 20-litrowej wyparce rotacyjnej, otrzymując związek VII z fig. 2 jako surowy czerwony olej (1,74 kg, 3,51 mola, wydajność produktu surowego 93,7%), który rozpuszczono w tetrahydrofuranie (2,71 kg) i przechowywano w temperaturze -30°C do użycia w następnym etapie.
Związek VII (1,028 kg) zatężono pod próżnią, otrzymując surowy olej, który rozpuszczono w tetrahydrofuranie (9,5 kg, 10,6 1, wartość KF = 0,02%) i załadowano do 20-litrowej kolby. Następnie kolbę ponownie ochłodzono do temperatury < -50°C i dodano w ciągu 5 minut trietyloaminę (848 g, 1,168 l). Wsad mieszano w temperaturze -50°C przez 1 godzinę, ogrzano do 20°C w ciągu 2 godzin następnie mieszano w temperaturze 20-25°C przez następne dwie godziny. TLC wykazała zakończenie reakcji (zanik substratu). Do 50-litrowej kolby załadowano toluen (17,7 l) i dodano do niego mieszaninę reakcyjną, przepłukując naczynie reakcyjne toluenem (3,55 l). Po dekantacji i rozdzieleniu faz, fazę organiczną przemyto 10% roztworem solanki (3 x 12 l), następnie nasyconym roztworem solanki (3 l), wysuszono nad siarczanem sodu (1 kg), po czym zatężono pod próżnią aż do uzyskania l objętości roztworu związku VIII z fig. 2 w toluenie, który uzupełniono toluenem do 4,5 kg.
Sporządzono zawiesinę żelu krzemionkowego 60 (1500 g) w mieszaninie eter dietylowy:n-pentan (1,5:1), załadowano ją na kolumnę z płaszczem (średnica wewnętrzna 80 mm) i ochłodzono cyrkulującym glikolem do -15°C. Surowy związek VIII (22,5-25,0% w/w, 450 g roztworu, 101,3-112,5 g su10
PL 206 257 B1 rowej mieszaniny związku aktywnego) załadowano na krzemionkę i eluowano mieszaniną eter dietylowy:n-pentan (1,5:1) ochłodzoną do -20°C. Produkt eluowano 25 l mieszaniny rozpuszczalników i 2 l eteru dietylowego, zbierając frakcje po 1 l i zatężono pod próżnią w temperaturze -20°C, otrzymując związek trans VIII z fig. 2 (zwykle 46 g), który przechowywano w temperaturze -20°C.
Do 10-litrowej kolby załadowano wodę demineralizowaną (750 ml), 10% pallad na węglu (Johnson Matthey, Typ 87L, 60% wody, 55 g wilgotnej substancji stałej, 2,2 g palladu, 0,0207 mola, 0,0211 równ.) i octan etylu (1750 ml). Kolbę przedmuchiwano azotem przez 15 minut, następnie wodorem i ochłodzono wsad do < 0°C. Cały czas stosowano energiczne mieszanie (450 do 500 obr./min.).
Związek trans VIII (45 g, 0,098 mola) rozpuszczono w octanie etylu (300 ml) w temperaturze -30°C, uzyskując końcową temperaturę -5°C. Dodano go do wsadu, utrzymując temperaturę reakcji i temperaturę gł owicy < 0°C.
Wsad uwodorniano przez okres do 90 minut, utrzymując cały czas stały przepływ wodoru. Reakcję uznano za zakończoną, kiedy analiza HPLC warstwy organicznej wykazała nieobecność substratu.
Możliwie jak najszybciej katalizator usunięto przez filtrację przez Celit 521 (50 g, uprzednio przemyty wodą demineralizowaną i octanem etylu), utrzymując temperaturę poniżej 0°C. Zużyty katalizator przemyto ochłodzonym octanem etylu (100 ml) i wodą demineralizowaną (2 x 100 ml) w temperaturze 0°C. Po dekantacji oddzielono fazę wodną, utrzymywano ją w temperaturze 0°C i przemyto mieszaniną n-pentan:toluen (3:1) (225 ml), ochłodzoną do -20°C.
Fazę wodną zawierającą produkt przesączono kolejno przez papier z włókna szklanego 1,6 mm (gatunek GF/A) i membranę polieterosulfonową (wielkość porów 0,2 mm, gatunek PES) z wkładem przedfiltracyjnym z włókna szklanego (gatunek GFP), otrzymując całkowicie przezroczysty, jasny żółtobursztynowy roztwór. Roztwór ten zamrażano w porcjach po 200 ml na ściankach kolb o pojemności 500 ml w temperaturze -78°C. Liofilizowano przez 72 godziny, otrzymując kwas (5R,6R,1'R)-3-(4-amino-1,1-dimetylobutylo)-6-(1'-hydroksyetylo)-7-okso-4-oksa-1-azabicyklo[3.2.0]hept-2-eno-2-karboksylowy (typowo -50% wydajności skorygowanej) w postaci objętościowego osadu barwy od białawej do jasnożółtej.
D.2 Synteza A, E
Związki A i E wytworzono przez zwykłą adaptację powyższej syntezy PFOB.
D.3 Synteza kwasu (5R, 6R, 1'S)-3-(4-amino-1,1-dimetylo-butylo)-6-(1'-hydroksyetylo)-7-okso-4-oksa-1-azabicyklo-[3.2.0]hept-2-eno-2-karboksylowego [YOB]
W kolbie Schlenka o pojemnoś ci 500 ml, wyposaż onej w mieszad ł o magnetyczne i chł odnicę zwrotną połączoną z balonem wypełnionym azotem, ogrzewano do wrzenia roztwór (3S,4R)-(3-(1'(R)-tert-butylodimetylosililoksyetylo)-4-metylo-tio-2-oksoazetydynylo)octanu p-nitrobenzylu (14,13 g, 30,15 mmola) (związek IV w syntezie PFOB), kwas octowy (17,3 ml, 302 mmole) i fluorek tetrabutyloamoniowy (23,2 g, 88,6 mmola) w suchym tetrahydrofuranie ogrzewano do wrzenia przez 12 h. TLC na silikażelu wykazała prawie całkowitą konwersję. Mieszaninę rozcieńczono toluenem (2500 ml) i przemyto kolejno porcjami po 500 ml 10% KHCO3, 10% NaCl (dwa razy) i nasyconego NaCl. Fazę organiczną wysuszono nad siarczanem magnezu, przesączono i odparowano przesącz pod próżnią, otrzymując niekrystaliczną pozostałość (12 g). Po oczyszczeniu metodą chromatografii kolumnowej na silikażelu (440 g, 40-63 mm) układem toluen-octan etylu (2:1, 3:2 i 1:1), zbierając frakcje po 440 ml, otrzymano (3S,4R)-(3-(1'(R)-hydroksyetylo)-4-metylotio-2-oksoazetydynylo)octan p-nitrobenzylu w postaci czystego krystalicznego produktu (6,38 g, 60%) z frakcji 10-16. T.t. 77-79°C.
Do kolby Schlenka o pojemności 500 ml wyposażonej w mieszadło magnetyczne, gumową przegrodę i balon wypełniony azotem dodano (3S,4R)-(3-(1'(R)-hydroksyetylo)-4-metylotio-2-oksoazetydynylo)octan p-nitrobenzylu (6,35 g, 17,93 mmola), trifenylofosfinę (9,4 g, 35,86 mmola) i suchy tetrahydrofuran (134 ml). Do tej mieszaniny dodano kwas mrówkowy (2,03 ml, 53,79 mmola) i do tego mieszanego roztworu dodano powoli w ciągu 30 minut w temperaturze -10°C azodikarboksylan diizopropylu (7,03 ml, 35,86 mmola). Po 10 minutach wytrącił się osad. Zawiesinę mieszano przez dodatkowe 30 minut w temperaturze 0°C i przez następne 90 minut w temperaturze pokojowej, uzyskując rozpuszczenie się wytrąconego osadu. Otrzymano w ten sposób ciemnożółty roztwór. Mieszaninę reakcyjną rozcieńczono toluenem (1500 ml) i następnie przemyto porcjami po 1200 ml wody, 10% KHCO3 i 10% NaCl. Warstwę organiczną wysuszono nad siarczanem magnezu, przesączono i usunięto rozpuszczalnik pod próżnią, otrzymując olej. Oczyszczono go metodą chromatografii na silikażelu (205 g, 63-200 mm), zbierając frakcje po 200 ml i stosując układ toluen-octan etylu (9:1).
Frakcje badano metodą TLC na silikażelu (chloroform-octan etylu 4:1). Z frakcji 6-15 zebrano (3S,4R)-(3-(1'(S)-formyloksyetylo)-4-metylotio-2-oksoazetydynylo) octan p-nitrobenzylu jako zaniePL 206 257 B1 czyszczone, półkrystaliczne ciało stałe (10,01 g) (6,85% = 100%). Do kolby okrągłodennej o pojemności 500 ml wyposażonej w mieszadło magnetyczne dodano surowy (3S,4R)-(3-(1'(S)-formyloksyetylo)-4-metylotio-2-oksoazetydynylo)octan p-nitrobenzylu (10,01 g, wytworzony z 17,93 mmola prekursora) i metanol (180 ml). Do tej mieszaniny dodano 1N wodny roztwór HCl (17,9 ml, 17,9 mmola) i roztwór mieszano do następnego dnia w temperaturze pokojowej. TLC na silikażelu wykazała całkowite przereagowanie. Mieszaninę reakcyjną rozcieńczono toluenem (1600 ml) i roztwór przemyto następnie zimną wodą (1100 ml), 10% KHCO3 (500 ml) i 10% NaCl (500 ml). Warstwę organiczna wysuszono nad siarczanem magnezu, przesączono i uzyskany roztwór odparowano pod próżnią, otrzymując olej. Oczyszczono go metodą chromatografii kolumnowej na silikażelu, zbierając frakcje po 200 ml i stosując układ toluen-octan etylu (2:1 i 1:1). Z frakcji 9-19 otrzymano (3S,4R)-(3-(1'(S)-hydroksyetylo)-4-metylotio-2-oksoazetydynylo)octan p-nitrobenzylu w postaci niekrystalicznego osadu (3,77 g, 59%).
Do kolby Schlenka o pojemności 100 ml wyposażonej w mieszadło magnetyczne i balon wypełniony azotem dodano (3S,4R)-(3-(1'(S)-hydroksyetylo)-4-metylotio-2-oksoazetydynylo) octan p-nitrobenzylu (3,72 g, 10,50 mmola) i suchy (wolny od etanolu) chlorek metylenu (23 ml). Dodano powoli w temperaturze -18°C roztwór chloromrówczanu p-nitrobenzylu (3,08 g, 14,28 mmola) w chlorku metylenu. Do tej mieszaniny dodano w małych porcjach w ciągu 20 minut, podczas mieszania, stałą N,N-dimetyloaminopirydynę (1,74 g, 14,28 mmola). Mieszano w temperaturze -18°C przez 4 h, po którym to czasie TLC na żelu krzemionkowym wykazała zakończenie reakcji. Mieszaninę reakcyjną rozcieńczono chlorkiem metylenu (230 ml), a uzyskany roztwór przemyto następnie porcjami (120 ml) 1N HCl, nasyconego NaHCO3 i 10% NaCl. Fazę HCl ekstrahowano chlorkiem metylenu (40 ml) i roztwór ekstrakcyjny przemyto NaHCO3. Połączone ekstrakty wysuszono nad siarczanem magnezu, przesączono i usunięto rozpuszczalnik pod próżnią, otrzymując surowy produkt (5,24 g). Po oczyszczeniu metodą chromatografii na silikażelu (170 g, 63-200 mm), stosując frakcje po 170 ml mieszaniny toluen-octan etylu (6:1), otrzymano (3S,4R)-(3-(1'(S)-p-nitrobenzyloksykarbonyloksyetylo)-4-metylotio-2-oksoazetydynylo)octan p-nitrobenzylu w postaci niekrystalicznego ciała stałego (4,80 g, 86%).
Do kolby Schlenka o pojemności 250 ml wyposażonej w mieszadło magnetyczne, gumową przegrodę i balon wypełniony azotem dodano (3S,4R)-(3-(1'(S)-p-nitrobenzyloksykarbonyloksyetylo)-4-metylotio-2-oksoazetydynylo)octan p-nitrobenzylu (1,00 g, 1,87 mmola) i suchy tetrahydrofuran (46 ml). Do tej mieszaniny dodano w temperaturze -78°C chlorek 5-azydo-2,2-dimetylopentanoilu (0,37 g, 1,96 mmola) i następnie w ciągu 15 minut w temperaturze -78°C 1M roztwór bis-trimetylosililoamidku litu (3,74 ml, 3,74 mmola) w tetrahydrofuranie. Początkowo utworzony pomarańczowy roztwór zmienił barwę na bladożółtą. Po 15 minutach dodatkowego mieszania TLC na żelu krzemionkowym wykazała zakończenie reakcji. Mieszaninę reakcyjną rozcieńczono toluenem (240 ml), przemyto porcjami (220 ml) 2N HCl i dwa razy nasyconym NaCl. Fazę organiczną wysuszono nad siarczanem magnezu, przesączono i odparowano przesącz pod próżnią, otrzymując po krótkim suszeniu w wysokiej próżni niekrystaliczny surowy materiał (1,38 g). Po oczyszczeniu metodą chromatografii kolumnowej na silikażelu (92 g, 63-200 mm) frakcjami po 90 ml układu toluen-octan etylu (9:1) otrzymano po dwukrotnym odparowaniu z chlorkiem metylenu i wysuszeniu w wysokiej próżni 7-azydo-4,4-dimetylo-2-[(3S,4R)-4-metylotio-3-[(S)-1-p-nitrobenzyloksykarbonyloksyetylo]-2-okso-1-azetydynylo]-3-okso-heptanian p-nitrobenzylu w postaci jasnożółtej warstwy (1,01 g, 79%).
Do kolby Schlenka o pojemności 250 ml wyposażonej w mieszadło magnetyczne, gumową przegrodę i balon wypełniony azotem dodano 7-azydo-4,4-dimetylo-2-[(3S,4R)-4-metylotio-3-[(S)-1-p-nitrobenzyloksykarbonyloksyetylo]-2-okso-1-azetydynylo]-3-oksoheptanian p-nitrobenzylu (0,97 g, 1,41 mmola) i suchy chlorek metylenu, wolny od etanolu (56 ml). Do tej mieszaniny dodano strzykawką podpowierzchniowo w temperaturze -60°C suchy gazowy chlor. Po 10 minutach w temperaturze -50°C TLC na silikażelu wykazała zakończenie reakcji. Zimny roztwór wylano do wodnego roztworu zawierającego NaHSO3 (2,82 g, bezwodny) i węglan sodu (2,23 g, bezwodny). Mieszaninę wytrząsano przez 4 min, zebrano fazę organiczną, a fazę wodną ekstrahowano małą porcją chlorku metylenu. Roztwory organiczne przemyto następnie dwiema porcjami (37 ml) 10% NaCl i roztwory organiczne połączono i wysuszono nad siarczanem magnezu. Po odparowaniu pod próżnią otrzymano niekrystaliczny osad (0,95 g). Oczyszczono go metodą szybkiej chromatografii na silikażelu (2,3 g, 63-200 mm) z ukł adem toluen-octan etylu 19:1 i 4:1, stosują c frakcje po 5 ml. Z frakcji 2-14 otrzymano, po odparowaniu rozpuszczalnika pod próżnią i wysuszeniu pozostałości pod wysoką próżnią, 7-azydo-2-[(3S,4R)-4-chloro-3-[(S)-1-p-nitrobenzyloksykarbonyloksyetylo-2-okso-1-azetydynylo]-4,4-dimetylo-3-oksoheptanian p-nitrobenzylu w postaci jasnożółtego, niekrystalicznego osadu (930 mg, 97%).
PL 206 257 B1
Do kolby Schlenka o pojemności 100 ml wyposażonej w mieszadło magnetyczne, gumową przegrodę i balon wypełniony azotem dodano 7-azydo-[(3S,4R)-4-chloro-3-[(S)-1-p-nitro-benzyloksykarbonyloksyetylo-2-okso-1-azetydynylo]-4,4-dimetylo-3-oksoheptanian p-nitrobenzylu (910 mg, 1,35 mmola) i suchy tetrahydrofuran (27 ml). Do tej mieszaniny dodano powoli 0,92M roztwór tertbutanolanu potasu (1,54 ml, 1,42 mmola) w suchym tert-butanolu w temperaturze -3 0°C. Mieszaninę reakcyjną mieszano przez 150 minut w temperaturze -30°C. TLC wykazała całkowite przereagowanie. Ciemnożółty roztwór rozcieńczono octanem etylu (150 ml), odstawiono na 5 minut, po czym przemyto 10% NaCl (130 ml), 10% NaCl (65 ml) i nasyconym NaCl (65 ml). Warstwę organiczną zebrano i wysuszono nad siarczanem magnezu. Po odsączeniu i odparowaniu rozpuszczalnika pod próżnią otrzymano po wysuszeniu przez 90 minut pod wysoką próżnią żółty olej (860 mg). Oczyszczono go metodą średniociśnieniowej chromatografii kolumnowej w niskiej temperaturze (-13°C) na silikażelu (60 g, 5-20 mm) układem toluen-octan butylu (19:1), zbierając frakcje po 30 ml. Frakcje utrzymywano w temperaturze -20°C. Z frakcji 11-13 otrzymano po odparowaniu rozpuszczalnika pod wysoką próżnią czysty trans (5R,6R)-3-[4-azydo-1,1-dimetylobutylo]-6-[(S)-1-p-nitrobenzyloksykarbonyloksyetylo]-7-okso-4-oksa-1-azabicyklo[3.2.0]hept-2-eno-2-karboksylan p-nitrobenzylu (306 mg, 35%) w postaci bezbarwnej stałej substancji niekrystalicznej. Z frakcji 14-21 w podobny sposób otrzymano mieszaninę izomerów cis-trans (277 mg, 32%).
W kolbie dwuszyjnej o pojemności 100 ml, wyposażonej w mieszadło magnetyczne, gumową przegrodę i połączonej z aparatem do uwodorniania katalizator pallad na węglu (10%, 300 mg) w octanie etylu (13 ml) i wodzie (13 ml) uwodorniano wstępnie przez 20 minut w temperaturze 0°C. Następnie dodano za pomocą strzykawki podczas mieszania w temperaturze 0°C roztwór (5R,6R)-3-[4-azydo-1,1-dimetylobutylo]-6-[(S)-1-p-nitrobenzyloksykarbonyloksyetylo]-7-okso-4-oksa-1-azabicyklo-[3.2.0]hept-2-eno-2-karboksylanu p-nitrobenzylu (280 mg, 0,44 mmola) w octanie etylu (10 ml). Po 50 minutach mieszania w temperaturze 0°C wychwyt wodoru zakończył się (zużyto 90 ml wodoru). Usunięto katalizator przez odsączenie, przemyto małą porcją octanu etylu i wody i ochłodzoną dwufazową mieszaninę odstawiono do sedymentacji. Fazę wodną przemyto dwa razy porcjami po 3 ml zimnego octanu etylu i wody, a fazy octanowe reekstrahowano porcjami po 3 ml wody. Z połączonych faz wodnych usunięto resztki octanu etylu pod próżnią i następnie wysoką próżnią w temperaturze 0°C i zmniejszono objętość do 13 ml pod wysoką próżnią. Roztwór liofilizowano w temperaturze -25°C przez trzy dni, otrzymując kwas (5R,6R)-3-[4-amino-1,1-dimetylobutylo]-6-[(S)-1-hydroksyetylo]-7-okso-4-oksa-1-azabicyklo[3.2.0]hept-2-eno-2-karboksylowy (YOB) w postaci bezbarwnego, objętościowego proszku (98 mg, 75%).
E. Preparaty do stosowania jako farmaceutyki
Preparaty farmaceutyczne można wytworzyć jak następuje.
P r z y k ł a d 1 (Metoda A)
Preparat farmaceutyczny kwasu (5R,6R,1'R)-3-(4-amino-1,1-dimetylobutylo)-6-(11-hydroksyetylo)-7-okso-4-oksa-1-azabicyklo [3.2.0]hept-2-eno-2-karboksylowego (PFOB) w laktozie o wysokiej stabilności
Roztwór 3,79 g (8,25 mmola) (5R,6R,1'R)-3-(4-azydo-1-dimetylobutylo)-6-(1'-hydroksyetylo)-7-okso-4-oksa-1-azabicyklo[3.2.0]hept-2-eno-2-karboksylanu p-nitrobenzylu w 30 ml octanu etylu dodano w temperaturze 0°C za pomocą strzykawki przez gumową przegrodę do wcześniej nawodorowanej mieszaniny 3,1 g palladu na węglu (10%) w 120 ml octanu etylu i 60 ml wody. Po czasie reakcji 70 minut, w temperaturze 0°C, pochłonięte zostało 840 ml wodoru (ilość teoretyczna 740 ml). Mieszaninę reakcyjną przesączono przez filtr szklany G5 o średnicy 10 cm, pozostałość przemyto 30 ml zimnej wody i 30 ml zimnego octanu etylu, przesącze połączono i oddzielono warstwę octanową. Warstwę wodną przemyto w temperaturze 0°C 50 ml zimnego octanu etylu i 50 ml zimnego toluenu i uzyskany koloidalny roztwór wodny przeciśnięto za pomocą strzykawki przez filtr membranowy, po czym rozdzielono warstwy. Warstwę wodną odessano za pomocą wysokiej próżni w celu usunięcia resztek
PL 206 257 B1 rozpuszczalników organicznych. Do roztworu wodnego (89,8 ml) dodano zimny roztwór zawierający 7,20 g monohydratu laktozy w 180 ml wody i porcjami po 3 ml uzyskanego roztworu napełniano szklane ampułki. Zawartość zamrożono w łaźni z suchego lodu w acetonie i usunięto wodę w liofilizatorze w temperaturze -25°C w cią gu 4 dni pod ciś nieniem 0,01 barów. Uzyskany biał y proszek wysuszono przez noc w eksykatorze nad pięciotlenkiem fosforu pod ciśnieniem 0,001 mbara i w temperaturze pokojowej, otrzymując w każdej ampułce 98,3 mg białego proszku. Spektroskopia UV w wodzie przy 262 nm wykazała w każdej ampułce zawartość 18,2 mg związku tytułowego i 80,1 mg laktozy. Ampułki napełniono suchym azotem i zatopiono lub alternatywnie przechowywano nad środkiem suszącym.
Kompozycję farmaceutyczną można wytworzyć jak następuje.
P r z y k ł a d 2
Kwas (5R,6R,1'R)-3-(4-amino-1,1-dimetylobutylo)-6-(1'-hydroksyetylo)-7-okso-4-oksa-1-azabicyklo[3.2.0]hept-2-eno-2-karboksylowy (PFOB)
ο
COO
Postępując według procedury podanej w sekcji C1 otrzymano czysty tytułowy związek w postaci białego proszku po zwykłej liofilizacji w temperaturze -25°C (bez laktozy) i po suszeniu przez noc pod ciśnieniem 0,001 bara i w temperaturze pokojowej nad pięciotlenkiem fosforu. Tak otrzymany związek jest odpowiedni do podawania jako środek farmaceutyczny znanymi metodami lub tak jak opisano poniżej.
P r z y k ł a d 3
Wytwarzanie preparatów farmaceutycznych
Nowe związki oksapenemowe można stosować w kompozycjach farmaceutycznych. Związki oksapenemowe można przetwarzać na kompozycje farmaceutyczne/leki za pomocą typowych metod, takich jak metody opisane w EP 0 301394. Inne metody wytwarzania leków obejmują następujące.
Dawkę jednostkową wytwarza się mieszając 300 mg koliofilizatu (4:1) monohydratu laktozy i kwasu (5R,6R,1'R)-3-(4-amino-1,1-dimetylobutylo)-6-(1'-hydroksyetylo)-7-okso-4-oksa-1-azabicyklo-[3.2.0]hept-2-eno-2-karboksylowego (PFOB, przykład 1) ze 120 mg cefakloru i 5 mg stearynianu magnezu i 425 mg tej mieszaniny wprowadza się do kapsułki żelatynowej nr 3. Podobnie, można wytwarzać inne postaci dawkowania i napełniać nimi kapsułki żelatynowe nr 3, jeśli stosuje się koliofilizat o wyższej zawartości kwasu oksapenemo-3-karboksylowego i, w razie potrzeby, wymieszać ze sobą więcej niż 425 mg składników i wytwarzać większe kapsułki, oraz prasowane tabletki i pigułki. Poniższe przykłady ilustrują wytwarzanie preparatów farmaceutycznych.
T a b e l a 5
Koliofilizat (4:1) monohydratu laktozy i kwasu (5R,6R,1'R)-3-(4-amino-1,1-dimetylobutylo)-6-(1'hydroksyetylo)-7-okso-4-oksa-1-azabicyklo-[3.2.0]hept-2-eno-2-karboksylowego 625 mg
Cefaklor 250 mg
Skrobia kukurydziana V.S.P. 200 mg
Diwodorofosforan wapnia 60 mg
Stearynian magnezu 60 mg
Koliofilizat i drugi składnik czynny (cefaklor) zmieszano z diwodorofosforanem wapnia i około połową skrobi kukurydzianej. Następnie mieszaninę granulowano i zgrubnie przesiano. Wysuszono ją w temperaturze 45°C i przesiano przez sita mesh 1,0 mm (sita nr 16). Dodano pozostałą część skrobi kukurydzianej i stearynianu magnezu i prasowano mieszaninę na tabletki o wadze 1195 mg i średnicy 1,27 cm (0,5 cala).
Roztwór pozajelitowy
Ampułka
Koliofilizat (4:1) monohydratu laktozy i kwasu (5R,6R,1'R)-3-(4-amino-1,1-dimetylobutylo)-6-(1'-hydroksyetylo)-7-okso-4-oksa-1-azabicyklo-[3.2.0]hept-2-eno-2-karboksylowego 1250 mg
Ceftazydym 500 mg
Jałowa woda (dodaje się bezpośrednio przed użyciem z oddzielnej ampułki za pomocą strzykawki) 5 mg
PL 206 257 B1
Roztwór oftalmiczny
Koliofilizat (4:1) monohydratu laktozy i kwasu (5R,6R,1'R)-3-(4-amino-1,1-dimetylobutylo)-6-(11-hydroksyetylo)-7-okso-4-oksa-1-azabicyklo-[3.2.0]hept-2-eno-2-karboksylowego 625 mg
Ceftazydym 250 mg
Hydroksypropylometyloceluloza 15 mg
Jałowa woda (dodaje się bezpośrednio przed użyciem z oddzielnej ampułki za pomocą strzykawki) 2 mg
Roztwór do oczu
Koliofilizat (4:1) monohydratu laktozy i kwasu (5R,6R,1'R)-3-(4-amino-1,1-dimetylobutylo)-6-(1'-hydroksyetylo)-7-okso-4-oksa-1-azabicyklo[3.2.0]hept-2-eno-2-karboksylowego 250 mg
Ceftazydym 100 mg
Chlorek benzalkonium 0,1 mg
Jałowa woda (dodaje się bezpośrednio przed 2 ml użyciem z oddzielnej ampułki za pomocą strzykawki) 2 ml
Krem lub maść do stosowania miejscowego zewnętrznego
Koliofilizat (4:1) monohydratu laktozy i kwasu (5R,6R,1'R)-3-(4-amino-1,1-dimetylobutylo)-6-(1'-hydroksyetylo)-7-okso-4-oksa-1-azabicyklo [3.2.0]hept-2-eno-2-karboksylowego 250 mg
Ceftazydym 100 mg
Glikol polietylenowy 4000 V.S.P. 800 mg
Glikol polietylenowy 400 V.S.P. 200 mg
YOB, A, B, D i E mogą być zastosowane jako środki farmaceutycznie czynne w podobnych przykładach przez zwykłe zastąpienie nimi PFOB w powyższych formulacjach.
Należy zauważyć, że ko-liofilizacja aktywnego oksapenemu (PFOB, YOB, itp.) z nośnikiem (np. laktozą) przed zmieszaniem z innymi składnikami nie jest konieczna, aczkolwiek koliofilizacja powinna zwiększać stabilność.
Składniki aktywne w powyższych preparatach można mieszać same lub razem z innymi składnikami aktywnymi biologicznie, takimi jak linkomycyna, penicylina, streptomycyna, nowobiocyna, gentamycyna, neomycyna, kolistyna i klanamycyna lub z innymi środkami terapeutycznymi, takimi jak probenicid.
Jest zrozumiałe, że opis i przykłady stanowią ilustrację, nie zaś ograniczenie wynalazku i że zakres wynalazku wyznaczają zastrzeżenia patentowe.

Claims (8)

1. Związek oksapenemowy, będący związkiem zwitterjonowym o wzorze la lub Ib, lub zdolny do tworzenia związku zwiterjonowego o wzorze la lub Ib:
w których R oznacza grupę C1-C8 alkilową o łańcuchu prostym lub rozgałęzionym, zawierającą protonowany podstawnik zasadowy, którym jest protonowana grupa aminowa lub protonowana grupa aminometylenoaminowa.
2. Związek oksapenemowy według zastrz. 1, o wzorze la, w którym R oznacza -(CH2)4NH3+, -(CH2)3NH3+, -(CH2)2NH3+, -(CH2)2NHCH:NH2+ lub R oznacza -CH2NHCH:NH2+.
3. Związek oksapenemowy według zastrz. 1 albo 2, o wzorze Ia, w którym R oznacza
-(CH2)3NH3+.
4. Związek oksapenemowy według zastrz. 1, o wzorze Ib, w którym R oznacza -(CH2)3NH3+.
PL 206 257 B1
5. Kompozycja farmaceutyczna zawierająca składnik aktywny i farmaceutycznie dopuszczalny nośnik, znamienna tym, że jako czynnik aktywny zawiera skuteczną farmakologicznie ilość związku oksapenemowego określonego w zastrz. 1-4.
6. Kompozycja farmaceutyczna według zastrz. 5, znamienna tym, że przeznaczona jest do hamowania β-laktamazy.
7. Zastosowanie związku zwitterjonowego o wzorze la lub Ib w których R oznacza grupę C1-C8 alkilową o łańcuchu prostym lub rozgałęzionym, zawierającą protonowany podstawnik zasadowy, którym jest protonowana grupa aminowa lub protonowana grupa aminometylenoaminowa, do wytwarzania leku do leczenia infekcji.
8. Zastosowanie według zastrz. 7, w którym związek zwiterjonowy określony jest wzorem la, w którym R oznacza -(CH2)4NH3+, -(CH2)3NH3+, -(CH2)2NH3+, -(CH2)2NHCH:NH2+ lub -CH2NHCH:NH2+; lub w którym związek zwitterjonowy jest określony wzorem Ib, w którym R oznacza -(CH2)3NH3+.
PL361312A 2000-10-19 2001-10-11 Związek oksapenemowy, zawierająca go kompozycja farmaceutyczna i zastosowanie PL206257B1 (pl)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP00309207A EP1199077A1 (en) 2000-10-19 2000-10-19 Stable compositions of oxapenem-3-carboxylic acids by Co-lyophilisation with pharmaceutical carriers
GB0105766A GB0105766D0 (en) 2001-03-08 2001-03-08 Orally active compounds
GB0119165A GB2369358A (en) 2000-10-19 2001-08-06 Oxapenems and pharmaceutical compositions thereof

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL361312A1 PL361312A1 (pl) 2004-10-04
PL206257B1 true PL206257B1 (pl) 2010-07-30

Family

ID=27223564

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL361312A PL206257B1 (pl) 2000-10-19 2001-10-11 Związek oksapenemowy, zawierająca go kompozycja farmaceutyczna i zastosowanie

Country Status (18)

Country Link
US (1) US7247622B2 (pl)
EP (1) EP1326607B1 (pl)
JP (1) JP4283535B2 (pl)
CN (1) CN1219512C (pl)
AT (1) ATE401884T1 (pl)
AU (2) AU9400401A (pl)
BR (1) BR0114762A (pl)
CA (1) CA2425314C (pl)
CZ (1) CZ296089B6 (pl)
DE (1) DE60135002D1 (pl)
DK (1) DK1326607T3 (pl)
ES (1) ES2310561T3 (pl)
HK (1) HK1053793A1 (pl)
HU (1) HUP0500956A3 (pl)
IL (1) IL155183A0 (pl)
MX (1) MXPA03003280A (pl)
PL (1) PL206257B1 (pl)
WO (1) WO2002032423A1 (pl)

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB0106428D0 (en) * 2001-03-15 2001-05-02 Amura Ltd Antibacterial composition
WO2011049919A1 (en) 2009-10-23 2011-04-28 Dow Corning Corporation Hydrophilically-modified silicone compositions
CA2851984C (en) * 2011-10-14 2020-10-27 Universite De Liege Method for measuring beta-lactam antibiotics

Family Cites Families (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB2045236A (en) 1979-03-26 1980-10-29 Hoechst Uk Ltd Oxapenem derivatives
US4293555A (en) * 1979-04-17 1981-10-06 Merck & Co., Inc. 6- and 6,6-Disubstituted-2-substituted-oxapen-2-em-3-carboxylic acids
DE3725375A1 (de) 1987-07-31 1989-02-09 Bayer Ag Stabile oxapenem-3-carbonsaeuren
DE3833693A1 (de) * 1988-10-04 1990-04-05 Bayer Ag Stabile oxapenem-3-carbonsaeuren und ihre verwendung als ss-lactamasehemmer
DE4027928A1 (de) 1990-09-04 1992-03-05 Bayer Ag Neue 2-tert.substituierte methyl-oxapenem-3-carbonsaeuren und -ester, verfahren zu ihrer herstellung und ihre verwendung
DE4142423A1 (de) 1991-12-20 1993-06-24 Pfaendler Hans Rudolf ((ls)-hydroxyalkyl)oxapenem-3-carbonsaeuren und ihre verwendung als betalactamasehemmer
WO1996038450A1 (en) 1995-05-31 1996-12-05 Microcide Pharmaceuticals, Inc. Cephalosporin antibiotics
EP1199077A1 (en) * 2000-10-19 2002-04-24 Amura Limited Stable compositions of oxapenem-3-carboxylic acids by Co-lyophilisation with pharmaceutical carriers
GB0106428D0 (en) * 2001-03-15 2001-05-02 Amura Ltd Antibacterial composition

Also Published As

Publication number Publication date
CA2425314A1 (en) 2002-04-25
ATE401884T1 (de) 2008-08-15
EP1326607B1 (en) 2008-07-23
US20040067929A1 (en) 2004-04-08
BR0114762A (pt) 2003-10-07
IL155183A0 (en) 2003-11-23
AU9400401A (en) 2002-04-29
JP2004511519A (ja) 2004-04-15
US7247622B2 (en) 2007-07-24
CN1219512C (zh) 2005-09-21
HUP0500956A3 (en) 2013-01-28
HK1053793A1 (en) 2003-11-07
PL361312A1 (pl) 2004-10-04
DK1326607T3 (da) 2008-11-17
CA2425314C (en) 2009-04-28
WO2002032423A1 (en) 2002-04-25
CZ20031214A3 (cs) 2003-10-15
MXPA03003280A (es) 2004-12-13
EP1326607A1 (en) 2003-07-16
HUP0500956A2 (en) 2006-05-29
ES2310561T3 (es) 2009-01-16
DE60135002D1 (de) 2008-09-04
AU2001294004B2 (en) 2007-04-26
CZ296089B6 (cs) 2006-01-11
CN1469744A (zh) 2004-01-21
JP4283535B2 (ja) 2009-06-24

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Baltzer et al. Mutual pro-drugs of β-lactam antibiotics and β-lactamase inhibitors
EP2964268A1 (en) Antibiotic conjugates
CN103347515A (zh) 化合物及其用途
TW200816999A (en) Penem products
JPS59181280A (ja) ペネム化合物および該化合物を含有する医薬組成物
CZ315696A3 (en) Pharmaceutical mixture and the use thereof
PL206257B1 (pl) Związek oksapenemowy, zawierająca go kompozycja farmaceutyczna i zastosowanie
RU2289582C2 (ru) Соединение карбапенема
BE848545A (fr) Derives n-methylene substitues de thienamycine,
BE897854A (fr) Derives de carbapeneme antibiotiques
KR100814802B1 (ko) 옥사페넴-3-카르복시산을 포함하는 제약학적 조성물
US6482818B2 (en) C-2 S/O-and S/N formaldehyde acetal derivatives of carbapenem-3-carboxylic acids and their use as antibiotics and β-lactamase inhibitors
ZA200302804B (en) Pharmaceutical compositions containing oxapenem-3-carboxylic acids.
AU2001294004A1 (en) Pharmaceutical compositions containing oxapenem-3-carboxylic acids
GB2051046A (en) Penicillanic acid derivatives
CN101412718B (zh) 含有硫基杂环胺甲酰基的碳青霉烯衍生物
JPH05194528A (ja) 新規な1−オキサペネム−3−カルボン酸類及びそのβ−ラクタマーゼ阻害薬としての用途
CN1185783A (zh) 碳代青霉烯酯

Legal Events

Date Code Title Description
RECP Rectifications of patent specification