PL201909B1 - Sposób wytwarzania paszy z materiału zwierzęcego oraz sposób wytwarzania materiału zwierzęcego oczyszczonego z TDE - Google Patents
Sposób wytwarzania paszy z materiału zwierzęcego oraz sposób wytwarzania materiału zwierzęcego oczyszczonego z TDEInfo
- Publication number
- PL201909B1 PL201909B1 PL362176A PL36217601A PL201909B1 PL 201909 B1 PL201909 B1 PL 201909B1 PL 362176 A PL362176 A PL 362176A PL 36217601 A PL36217601 A PL 36217601A PL 201909 B1 PL201909 B1 PL 201909B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- animal
- lane
- samples
- hours
- tde
- Prior art date
Links
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 title claims abstract description 58
- 102000029797 Prion Human genes 0.000 title description 5
- 108091000054 Prion Proteins 0.000 title description 5
- 238000005202 decontamination Methods 0.000 title 1
- 230000003588 decontaminative effect Effects 0.000 title 1
- 239000000463 material Substances 0.000 claims abstract description 76
- 238000000034 method Methods 0.000 claims abstract description 52
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims abstract description 19
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 claims description 14
- 230000007065 protein hydrolysis Effects 0.000 claims description 4
- 208000008864 scrapie Diseases 0.000 abstract description 12
- 239000006227 byproduct Substances 0.000 abstract description 9
- 241000283690 Bos taurus Species 0.000 abstract description 7
- 208000020406 Creutzfeldt Jacob disease Diseases 0.000 abstract description 7
- 208000010859 Creutzfeldt-Jakob disease Diseases 0.000 abstract description 7
- 208000014644 Brain disease Diseases 0.000 abstract description 6
- 208000003407 Creutzfeldt-Jakob Syndrome Diseases 0.000 abstract description 6
- 230000003412 degenerative effect Effects 0.000 abstract description 3
- 230000003071 parasitic effect Effects 0.000 abstract description 3
- 238000012545 processing Methods 0.000 abstract description 3
- 239000010868 animal carcass Substances 0.000 abstract 1
- 238000003672 processing method Methods 0.000 abstract 1
- 108010067770 Endopeptidase K Proteins 0.000 description 26
- AXCZMVOFGPJBDE-UHFFFAOYSA-L calcium dihydroxide Chemical compound [OH-].[OH-].[Ca+2] AXCZMVOFGPJBDE-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 22
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 21
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 21
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 21
- 102100025818 Major prion protein Human genes 0.000 description 20
- 239000000920 calcium hydroxide Substances 0.000 description 20
- 235000011116 calcium hydroxide Nutrition 0.000 description 20
- 229910001861 calcium hydroxide Inorganic materials 0.000 description 20
- 235000018102 proteins Nutrition 0.000 description 18
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 15
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 15
- 238000011282 treatment Methods 0.000 description 14
- 230000029087 digestion Effects 0.000 description 13
- 239000000047 product Substances 0.000 description 13
- 235000013372 meat Nutrition 0.000 description 12
- 239000002585 base Substances 0.000 description 11
- 238000001262 western blot Methods 0.000 description 10
- 235000015278 beef Nutrition 0.000 description 9
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 9
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 9
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 9
- 235000012054 meals Nutrition 0.000 description 8
- 108091005804 Peptidases Proteins 0.000 description 7
- 210000004556 brain Anatomy 0.000 description 7
- 235000013339 cereals Nutrition 0.000 description 7
- 241000894007 species Species 0.000 description 7
- 102000035195 Peptidases Human genes 0.000 description 6
- 230000018044 dehydration Effects 0.000 description 6
- 238000006297 dehydration reaction Methods 0.000 description 6
- 229910052751 metal Inorganic materials 0.000 description 6
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 241000699800 Cricetinae Species 0.000 description 5
- 241000282849 Ruminantia Species 0.000 description 5
- 230000003301 hydrolyzing effect Effects 0.000 description 5
- 239000002184 metal Substances 0.000 description 5
- 238000004448 titration Methods 0.000 description 5
- 239000002699 waste material Substances 0.000 description 5
- 241000251468 Actinopterygii Species 0.000 description 4
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 4
- 239000003513 alkali Substances 0.000 description 4
- 239000010828 animal waste Substances 0.000 description 4
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 4
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 4
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 4
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 4
- 235000013379 molasses Nutrition 0.000 description 4
- 235000019833 protease Nutrition 0.000 description 4
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 4
- 238000011160 research Methods 0.000 description 4
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 4
- 241001494479 Pecora Species 0.000 description 3
- KWYUFKZDYYNOTN-UHFFFAOYSA-M Potassium hydroxide Chemical compound [OH-].[K+] KWYUFKZDYYNOTN-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 3
- 239000004365 Protease Substances 0.000 description 3
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 3
- 239000003337 fertilizer Substances 0.000 description 3
- 239000011888 foil Substances 0.000 description 3
- 230000002458 infectious effect Effects 0.000 description 3
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 3
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 3
- 244000144977 poultry Species 0.000 description 3
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 3
- 235000002639 sodium chloride Nutrition 0.000 description 3
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 3
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 101100245267 Caenorhabditis elegans pas-1 gene Proteins 0.000 description 2
- 108010010803 Gelatin Proteins 0.000 description 2
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N Hydrochloric acid Chemical compound Cl VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- CSNNHWWHGAXBCP-UHFFFAOYSA-L Magnesium sulfate Chemical compound [Mg+2].[O-][S+2]([O-])([O-])[O-] CSNNHWWHGAXBCP-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-N Phosphoric acid Chemical compound OP(O)(O)=O NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N Silicium dioxide Chemical compound O=[Si]=O VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- CDBYLPFSWZWCQE-UHFFFAOYSA-L Sodium Carbonate Chemical compound [Na+].[Na+].[O-]C([O-])=O CDBYLPFSWZWCQE-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- UIIMBOGNXHQVGW-UHFFFAOYSA-M Sodium bicarbonate Chemical compound [Na+].OC([O-])=O UIIMBOGNXHQVGW-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 2
- 235000012216 bentonite Nutrition 0.000 description 2
- BRPQOXSCLDDYGP-UHFFFAOYSA-N calcium oxide Chemical compound [O-2].[Ca+2] BRPQOXSCLDDYGP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000000292 calcium oxide Substances 0.000 description 2
- ODINCKMPIJJUCX-UHFFFAOYSA-N calcium oxide Inorganic materials [Ca]=O ODINCKMPIJJUCX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 230000001413 cellular effect Effects 0.000 description 2
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 2
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 description 2
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 description 2
- 239000012467 final product Substances 0.000 description 2
- 235000013312 flour Nutrition 0.000 description 2
- 229920000159 gelatin Polymers 0.000 description 2
- 239000008273 gelatin Substances 0.000 description 2
- 235000019322 gelatine Nutrition 0.000 description 2
- 235000011852 gelatine desserts Nutrition 0.000 description 2
- 238000000227 grinding Methods 0.000 description 2
- 239000004615 ingredient Substances 0.000 description 2
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 2
- 244000144972 livestock Species 0.000 description 2
- 238000000464 low-speed centrifugation Methods 0.000 description 2
- 239000003607 modifier Substances 0.000 description 2
- 239000004570 mortar (masonry) Substances 0.000 description 2
- 235000019645 odor Nutrition 0.000 description 2
- BWHMMNNQKKPAPP-UHFFFAOYSA-L potassium carbonate Chemical compound [K+].[K+].[O-]C([O-])=O BWHMMNNQKKPAPP-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- 239000000843 powder Substances 0.000 description 2
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 2
- 210000004767 rumen Anatomy 0.000 description 2
- 238000003307 slaughter Methods 0.000 description 2
- 239000010822 slaughterhouse waste Substances 0.000 description 2
- 239000012134 supernatant fraction Substances 0.000 description 2
- 239000010457 zeolite Substances 0.000 description 2
- UNWRHVZXVVTASG-UHFFFAOYSA-N 1,3-dichloro-1,3,5-triazinane-2,4,6-trione;sodium Chemical compound [Na].ClN1C(=O)NC(=O)N(Cl)C1=O UNWRHVZXVVTASG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- BZSXEZOLBIJVQK-UHFFFAOYSA-N 2-methylsulfonylbenzoic acid Chemical compound CS(=O)(=O)C1=CC=CC=C1C(O)=O BZSXEZOLBIJVQK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000238017 Astacoidea Species 0.000 description 1
- VTYYLEPIZMXCLO-UHFFFAOYSA-L Calcium carbonate Chemical compound [Ca+2].[O-]C([O-])=O VTYYLEPIZMXCLO-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 235000013162 Cocos nucifera Nutrition 0.000 description 1
- 244000060011 Cocos nucifera Species 0.000 description 1
- 240000008120 Dendrocalamus strictus Species 0.000 description 1
- 235000016936 Dendrocalamus strictus Nutrition 0.000 description 1
- 239000004097 EU approved flavor enhancer Substances 0.000 description 1
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 description 1
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 1
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 1
- 241000282412 Homo Species 0.000 description 1
- 239000005909 Kieselgur Substances 0.000 description 1
- 150000008575 L-amino acids Chemical class 0.000 description 1
- 235000019738 Limestone Nutrition 0.000 description 1
- 102100037486 Reverse transcriptase/ribonuclease H Human genes 0.000 description 1
- 241000283984 Rodentia Species 0.000 description 1
- PMZURENOXWZQFD-UHFFFAOYSA-L Sodium Sulfate Chemical compound [Na+].[Na+].[O-]S([O-])(=O)=O PMZURENOXWZQFD-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- VMHLLURERBWHNL-UHFFFAOYSA-M Sodium acetate Chemical compound [Na+].CC([O-])=O VMHLLURERBWHNL-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 229920002472 Starch Polymers 0.000 description 1
- XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N Urea Chemical compound NC(N)=O XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910021536 Zeolite Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000002378 acidificating effect Effects 0.000 description 1
- 150000007513 acids Chemical class 0.000 description 1
- 238000007605 air drying Methods 0.000 description 1
- 238000005904 alkaline hydrolysis reaction Methods 0.000 description 1
- PNEYBMLMFCGWSK-UHFFFAOYSA-N aluminium oxide Inorganic materials [O-2].[O-2].[O-2].[Al+3].[Al+3] PNEYBMLMFCGWSK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910000147 aluminium phosphate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000012211 aluminium silicate Nutrition 0.000 description 1
- 150000001413 amino acids Chemical class 0.000 description 1
- 239000003674 animal food additive Substances 0.000 description 1
- 235000021120 animal protein Nutrition 0.000 description 1
- 239000003242 anti bacterial agent Substances 0.000 description 1
- 229940088710 antibiotic agent Drugs 0.000 description 1
- 239000003963 antioxidant agent Substances 0.000 description 1
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 1
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 1
- 239000000440 bentonite Substances 0.000 description 1
- 229910000278 bentonite Inorganic materials 0.000 description 1
- SVPXDRXYRYOSEX-UHFFFAOYSA-N bentoquatam Chemical compound O.O=[Si]=O.O=[Al]O[Al]=O SVPXDRXYRYOSEX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 1
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 1
- 239000002374 bone meal Substances 0.000 description 1
- 230000003139 buffering effect Effects 0.000 description 1
- 239000001506 calcium phosphate Substances 0.000 description 1
- 235000011010 calcium phosphates Nutrition 0.000 description 1
- 239000004202 carbamide Substances 0.000 description 1
- 231100000357 carcinogen Toxicity 0.000 description 1
- 239000003183 carcinogenic agent Substances 0.000 description 1
- 239000007795 chemical reaction product Substances 0.000 description 1
- 238000004140 cleaning Methods 0.000 description 1
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 1
- 238000000354 decomposition reaction Methods 0.000 description 1
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 description 1
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 1
- 230000001079 digestive effect Effects 0.000 description 1
- HNPSIPDUKPIQMN-UHFFFAOYSA-N dioxosilane;oxo(oxoalumanyloxy)alumane Chemical compound O=[Si]=O.O=[Al]O[Al]=O HNPSIPDUKPIQMN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000010459 dolomite Substances 0.000 description 1
- 229910000514 dolomite Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 1
- 230000008030 elimination Effects 0.000 description 1
- 238000003379 elimination reaction Methods 0.000 description 1
- 238000005265 energy consumption Methods 0.000 description 1
- 238000001704 evaporation Methods 0.000 description 1
- 230000008020 evaporation Effects 0.000 description 1
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 1
- 235000019264 food flavour enhancer Nutrition 0.000 description 1
- 239000008187 granular material Substances 0.000 description 1
- 239000010440 gypsum Substances 0.000 description 1
- 229910052602 gypsum Inorganic materials 0.000 description 1
- 244000144980 herd Species 0.000 description 1
- 239000010903 husk Substances 0.000 description 1
- 150000004679 hydroxides Chemical class 0.000 description 1
- 230000000415 inactivating effect Effects 0.000 description 1
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 1
- 239000003112 inhibitor Substances 0.000 description 1
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 1
- 229910052500 inorganic mineral Inorganic materials 0.000 description 1
- BAUYGSIQEAFULO-UHFFFAOYSA-L iron(2+) sulfate (anhydrous) Chemical compound [Fe+2].[O-]S([O-])(=O)=O BAUYGSIQEAFULO-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- RUTXIHLAWFEWGM-UHFFFAOYSA-H iron(3+) sulfate Chemical compound [Fe+3].[Fe+3].[O-]S([O-])(=O)=O.[O-]S([O-])(=O)=O.[O-]S([O-])(=O)=O RUTXIHLAWFEWGM-UHFFFAOYSA-H 0.000 description 1
- 206010023497 kuru Diseases 0.000 description 1
- 239000006028 limestone Substances 0.000 description 1
- 150000002632 lipids Chemical class 0.000 description 1
- 241000238565 lobster Species 0.000 description 1
- ZLNQQNXFFQJAID-UHFFFAOYSA-L magnesium carbonate Chemical compound [Mg+2].[O-]C([O-])=O ZLNQQNXFFQJAID-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 239000001095 magnesium carbonate Substances 0.000 description 1
- 229910000021 magnesium carbonate Inorganic materials 0.000 description 1
- VTHJTEIRLNZDEV-UHFFFAOYSA-L magnesium dihydroxide Chemical compound [OH-].[OH-].[Mg+2] VTHJTEIRLNZDEV-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 239000000347 magnesium hydroxide Substances 0.000 description 1
- 229910001862 magnesium hydroxide Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000000395 magnesium oxide Substances 0.000 description 1
- CPLXHLVBOLITMK-UHFFFAOYSA-N magnesium oxide Inorganic materials [Mg]=O CPLXHLVBOLITMK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910052943 magnesium sulfate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000019341 magnesium sulphate Nutrition 0.000 description 1
- AXZKOIWUVFPNLO-UHFFFAOYSA-N magnesium;oxygen(2-) Chemical compound [O-2].[Mg+2] AXZKOIWUVFPNLO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 235000010755 mineral Nutrition 0.000 description 1
- 239000011707 mineral Substances 0.000 description 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 1
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 1
- 238000012544 monitoring process Methods 0.000 description 1
- 239000003471 mutagenic agent Substances 0.000 description 1
- 231100000707 mutagenic chemical Toxicity 0.000 description 1
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000016709 nutrition Nutrition 0.000 description 1
- 238000012856 packing Methods 0.000 description 1
- 239000008188 pellet Substances 0.000 description 1
- 229910000027 potassium carbonate Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000003755 preservative agent Substances 0.000 description 1
- 235000019419 proteases Nutrition 0.000 description 1
- 230000006340 racemization Effects 0.000 description 1
- 238000004064 recycling Methods 0.000 description 1
- 238000009877 rendering Methods 0.000 description 1
- 210000002374 sebum Anatomy 0.000 description 1
- 239000001632 sodium acetate Substances 0.000 description 1
- 235000017281 sodium acetate Nutrition 0.000 description 1
- 239000007974 sodium acetate buffer Substances 0.000 description 1
- 235000017557 sodium bicarbonate Nutrition 0.000 description 1
- 229910000030 sodium bicarbonate Inorganic materials 0.000 description 1
- 229910000029 sodium carbonate Inorganic materials 0.000 description 1
- 229910052938 sodium sulfate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000011152 sodium sulphate Nutrition 0.000 description 1
- 239000012265 solid product Substances 0.000 description 1
- 239000003381 stabilizer Substances 0.000 description 1
- 238000010186 staining Methods 0.000 description 1
- 235000019698 starch Nutrition 0.000 description 1
- 230000001954 sterilising effect Effects 0.000 description 1
- 238000004659 sterilization and disinfection Methods 0.000 description 1
- 239000010902 straw Substances 0.000 description 1
- 239000003760 tallow Substances 0.000 description 1
- 239000011573 trace mineral Substances 0.000 description 1
- 235000013619 trace mineral Nutrition 0.000 description 1
- QORWJWZARLRLPR-UHFFFAOYSA-H tricalcium bis(phosphate) Chemical class [Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O QORWJWZARLRLPR-UHFFFAOYSA-H 0.000 description 1
- 235000013311 vegetables Nutrition 0.000 description 1
- 235000013343 vitamin Nutrition 0.000 description 1
- 239000011782 vitamin Substances 0.000 description 1
- 229940088594 vitamin Drugs 0.000 description 1
- 229930003231 vitamin Natural products 0.000 description 1
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
- A23K—FODDER
- A23K10/00—Animal feeding-stuffs
- A23K10/20—Animal feeding-stuffs from material of animal origin
- A23K10/26—Animal feeding-stuffs from material of animal origin from waste material, e.g. feathers, bones or skin
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Polymers & Plastics (AREA)
- Zoology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Physiology (AREA)
- Animal Husbandry (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Fodder In General (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
- Medicinal Preparation (AREA)
- Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
Abstract
Wynalazek dotyczy sposobu wytwarzania paszy z materia lu zwierz ecego oraz sposobu wytwa- rzania materia lu zwierz ecego oczyszczonego z TDE. Zgodnie z wynalazkiem pasza zwierz eca wytwa- rzana jest ze zwierz ecych produktów ubocznych, a stosowany sposób obróbki eliminuje lub redukuje zdolno sc przenoszenia zwyrodnieniowej choroby mózgu takiej jak paso zytnicza bydl eca forma choro- by mózgu, choroba Creutzfeldta - Jacoba i scrapie. Sposób wed lug wynalazku pozwala na uzyskanie odka zonej paszy zwierz ecej wytwarzanej w warunkach wzgl ednie niskiej temperatury i niskiego ci- snienia, osi agalnych w typowych placówkach przetwarzaj acych tusze zwierz ece. PL PL PL PL PL
Description
Opis wynalazku
Wynalazek ten dotyczy sposobu wytwarzania paszy z materiału zwierzęcego oraz sposobu wytwarzania materiału zwierzęcego oczyszczonego z TDE. Zgodnie z wynalazkiem pasza zwierzęca wytwarzana jest ze zwierzęcych produktów ubocznych, a stosowany sposób obróbki eliminuje lub redukuje zdolność przenoszenia zwyrodnieniowej choroby mózgu takiej jak pasożytnicza bydlęca forma choroby mózgu, choroba Creutzfeldta - Jacoba i scrapie.
Zakaźne zwyrodnieniowe choroby mózgu (TDE) obejmują bydlęcą pasożytniczą formę choroby mózgu (BSE lub chorobę „wściekłych krów), scrapie u owiec, chorobę Creutzfeldta-Jacoba (CJD), Gerstmana-Straussiera Shemkera (GSS) i Kuru u ludzi. Choroby te stały się dość znane w ostatnich latach, co najmniej częściowo z powodu odczucia, że władze poniosły klęskę w monitorowaniu wprowadzania wołowiny zanieczyszczonej BSE do zasobów żywności dla ludzi i zwierząt, co doprowadziło do wybuchów epidemii CJD, głównie w Zjednoczonym Królestwie (patrz artykuł wstępny, Nature, 1987, 389, 423).
Obecnie zostało stwierdzone, że czynnikiem odpowiedzialnym za przenoszenie TDE jest białko, ogólnie określane jako białko prionowe, które wywołuje zarówno BSE jak i CJD (Hill i inni, Nature 1997, 389 448).
Ogólnie dowiedziono, że rozkład TDE w mięsie wymaga obróbki w 132°C przez 20 minut pod ciśnieniem 0,3 MPa (3 barów). Alternatywnie, w obecności alkaliów temperatura i ciśnienie mogą być obniżone odpowiednio do 121°C i 0,2 MP (2 barów).
Alkalia są znane ze swego hydrolitycznego efektu na biocząsteczki takie jak białka i dlatego wysiłki zmierzające do wyjałowienia tkanek zwierzęcych zanieczyszczonych TDE obejmują stosowanie obróbki alkalicznej, ogrzewania i ciśnienia jako środków do niszczenia zdolności prionów do wywoływania choroby.
Na przykład, Taguchi i inni 1991, Arch. Virol. 119 297 zastosowali jednogodzinną obróbkę 1N NaOH, po której następowała obróbka w autoklawie w temperaturze 121°C przez 30 minut w celu zdezaktywowania zarażonych chorobą CJD homogenatów mózgowych. Ernst & Race, 1993, J. Virol. Methods 41 193 zastosowali obróbkę w autoklawie razem z obróbką NaOH i LpH w celu zdezaktywowania homogenatów mózgowych zarażonych chorobą scrapie.
Bardziej obszerna seria prób była wykonana przez Taylora i innych 1994. Arch. Virol. 139 131 i dotyczył a odkaż ania próbek mózgu woł owego zaka ż onego BSE albo próbek mózgu gryzonia zakażonego scrapie. Obróbka obejmowała działanie do 1 godziny 1M lub 2M NaOH, obróbkę w autoklawie do 1 godziny w temperaturze pomiędzy 134°C i 138°C lub obróbkę do 2 godzin z użyciem chloranu (I) sodu lub soli sodowej kwasu dichloroizocjanurowego. Autorzy ci doszli do wniosku, że żadna z testowanych procedur nie powodowała całkowitej dezaktywacji TDE.
Problemem przy produkcji paszy zwierzęcej z potencjalnie zakażonej TDE tkanki zwierzęcej jest to, że warunki wysokiej temperatury i ciśnienia nie są łatwo osiągalne przy zastosowaniu standardowego wyposażenia stosowanego do produkcji paszy zwierzęcej lub powtórnej przeróbki odpadów zwierzęcych. Także obróbka wysokotemperaturowa podczas produkcji zwierzęcej paszy prowadzi do wytworzenia gorszej paszy zawierającej niepożądane produkty uboczne takie jak czynniki rakotwórcze, kwasy diaminowe i lotne związki zapachowe.
Dlatego też istnieje potrzeba dostarczenia sposobu wytwarzania paszy zwierzęcej gdzie możliwość zanieczyszczenia TDE jest przynajmniej zmniejszana, względnie całkowicie eliminowana.
Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania paszy z materiału zwierzęcego charakteryzujący się tym, że (i) do materiału zwierzęcego dodaje się zasadę dla utrzymywania wartości pH na poziomie co najmniej 8,5;
(ii) ogrzewa się materiał uzyskany w etapie (i) do temperatury w zakresie od 55°C do 99°C, uzyskują c hydrolizę biał ek, oraz (iii) odwadnia się materiał otrzymany w etapie (ii), przy czym czas trwania etapów (i) i (ii) wynosi od 1 do 4 godzin.
Korzystnie materiał zwierzęcy stanowi materiał skażony TDE.
Korzystnie, reguluje się pH do wartości równej co najmniej 9,5, szczególnie korzystnie do wartości z zakresu od 10,5 do 13, a jeszcze korzystniej do wartości z zakresu od 11,0 do 11,5.
1. Korzystnie stosuje się temperaturę z zakresu od 60°C do 90°C, korzystniej temperaturę równą 60°C, jeszcze korzystniej temperaturę z zakresu od 80°C do 85°C.
PL 201 909 B1
W innym korzystnym wariancie wynalazku, czas trwania etapów (i) i (ii) wynosi od 1 do 2 godzin.
Korzystnie, sposób według wynalazku prowadzi się pod ciśnieniem atmosferycznym.
Przedmiotem wynalazku jest również sposób wytwarzania materiału zwierzęcego oczyszczonego z TDE charakteryzujący się tym, że (i) do materiału zwierzęcego skażonego TDE dodaje się zasadę dla utrzymywania wartości pH na poziomie co najmniej 8,5; i (ii) ogrzewa się materiał uzyskany w etapie (i) do temperatury w zakresie od 55°C do 99°C. przy czym czas trwania etapów (i) i (ii) wynosi od 1 do 4 godzin.
Korzystnie, reguluje się pH do wartości równej co najmniej 9,5, szczególnie korzystnie do wartości z zakresu od 10,5 do 13, a jeszcze korzystniej do wartości z zakresu od 11,0 do 11,5.
Korzystnie stosuje się temperaturę z zakresu od 60°C do 90°C, korzystniej temperaturę równą 60°C, jeszcze korzystniej temperaturę z zakresu od 80°C do 85°C.
W innym korzystnym wariancie wynalazku, czas trwania etapów (i) i (ii) wynosi od 1 do 2 godzin. Korzystnie, sposób według wynalazku prowadzi się pod ciśnieniem atmosferycznym.
Zgodnie z wynalazkiem jako zasadę można stosować wodorotlenek wapnia także w formie wapna uwodnionego.
Zgodnie z wynalazkiem etapy (i) i (ii) określane są jako „faza hydrolityczna. Po tej fazie hydrolitycznej poddawany obróbce materiał zwierzęcy może być przechowywany przed odwodnieniem albo natychmiast odwadniany.
W odniesieniu do odwodnienia, korzystne jest, aby zawartość wilgoci w paszy zwierzęcej nie była większa niż 10-15% wagowych. Zwykle, z czasem poziom wilgoci może zmniejszyć się do 7-8% wagowych, co jest optymalne dla paszy zwierzęcej według wynalazku.
Zgodnie z wynalazkiem, zwierzęca pasza otrzymana sposobem według wynalazku może być stosowana również jako nawóz.
W niniejszym opisie, jeż eli nie wskazano inaczej, okre ś lenia obejmuje, obejmują , i obejmując/-y są używane raczej w znaczeniu włączającym a nie wyłączającym, tak więc zawarta w oświadczeniu wartość całkowita lub grupa takich wartości może obejmować jedną lub więcej nie wspomnianych wartości całkowitych lub grup takich wartości.
Krótki opis figur i tabel
Tabela 1: Końcowe wartości pH próbek mięsa poddawanych różnej obróbce
Tabela 2: Podsumowanie wartości stopnia oczyszczenia próbek mięsa zaszczepionych TDE z biał ka prionowego po obróbce alkalicznej i termicznej.
Fig. 1: Przykład urządzenia do produkowania zwierzęcej paszy.
Fig. 2: Miareczkowanie materiału badawczego 263K SPO172200.
Pas 1: Trawiony za pomoc ą proteinazy K materiał badawczy 263K Hs, 10-2,1.
Pas 2: Nie trawiony materiał badawczy 263K Hs, 10-2,1.
Pas 3: Znaczniki tę czowe o mał ej masie czą steczkowej.
Pasy 4-10: Serie pięciu roztworów badanego materiału 263K trawionego za pomocą proteinazy K, kolejno od rozcieńczenia 10-2,1 do 10-5,6.
Fig. 3: Analiza próbek procesowych po trawieniu za pomocą proteinazy K.
Pas 1: Trawiony za pomoc ą proteinazy K materiał badawczy 263 Hs, 10-2,1.
Pas 2: Znaczniki tę czowe o mał ej masie czą steczkowej.
Pas 3: Trawiony za pomoc ą proteinazy K 287.1A.
Pas 4: Trawiony za pomoc ą proteinazy 287.1-1.
Pas 5: Jednokrotnie gotowana mieszanina.
Pas 6: Jednokrotnie gotowana mieszanina.
Pas 7: Trawiony za pomoc ą proteinazy 287.1-2.
Pas 8: Trawiony za pomoc ą proteinazy 287.1-3.
Pas 9: Trawiony za pomoc ą proteinazy 287.1-4.
Pas 10: Jednokrotnie gotowana mieszanina.
Fig. 4: Analiza nie trawionych próbek procesowych.
Pas 1: Nie trawiony materiał badawczy 263 Hs, 10-2,1.
Pas 2: Trawiony za pomocą proteinazy K materiał badawczy 263 Hs, 10-2,1.
Pas 3: Trawiony za pomoc ą proteinazy K 287.1A.
Pas 4: Nie trawiony 287.1-1.
Pas 5: Znaczniki tę czowe o mał ej masie czą steczkowej.
PL 201 909 B1
Pas 6: Jednokrotnie gotowana mieszanina.
Pas 7: Nie trawiony 287.1-2.
Pas 8: Nie trawiony 287.1-3.
Pas 9: Nie trawiony 287.1-4.
Pas 10: Jednokrotnie gotowana mieszanina.
Fig. 5: Miareczkowanie materiału badawczego 263 K SPO172200.
Pas 1: Trawiony za pomoc ą proteinazy K materiał badawczy 263 Hs, 10-2,1.
Pas 2: Nie trawiony materiał badawczy 263 Hs, 10-2,1.
Pas 3: Znaczniki tę czowe o mał ej masie czą steczkowej.
Pasy 4-10: seria pięciu roztworów trawionego za pomocą proteinazy K 263 materiału badawczego, odpowiednie rozcień czenia od 10-2,1do 10-5,6.
Fig. 6: Analiza metodą Western blot próbek trawionych za pomocą proteinazy K Pas 1: Kontrola bezwzglę dna przy rozcień czeniu 10-2,8.
Pas 2: Znaczniki ciężaru cząsteczkowego
Pas 3: Próbka 309.1 A.
Pas 4: Czysty (pusty)
Pas 5 - 10: Próbki odpowiednio: 309.1-1.3, 309.1-1.6, 309.1-2.3, 309.1-3.3, 309.1-4.3,
309.1-4.3,
Fig. 7: Analiza metodą Western blot próbek nie trawionych za pomocą proteinazy K Pas 1: Kontrola bezwzglę dna przy rozcień czeniu 10-2,8.
Pas 2: Znaczniki masy czą steczkowej
Pas 3: Próbka 309.1 A.
Pas 4: Czysty (pusty)
Pasy 5 - 10: Próbki odpowiednio: 309.1-1.3, 309.1-1.6, 309.1-2.3, 309.1-3.3, 309.1-4.3, 309.1-4.3,
Przedstawiany wynalazek wynika z niespodziewanego stwierdzenia przez obecnego wynalazcę, że poddawany obróbce substancjami alkalicznymi materiał zwierzęcy poddany łagodnej obróbce cieplnej pod ciśnieniem atmosferycznym skutecznie zniszczy TDE. Przy redukowaniu (minimalizowaniu) obróbki cieplnej istotny jest także fakt, że pasza zwierzęca musi być wysoko przyswajalna, szczególnie w odniesieniu do zawartości białkowej, jak również pozbawiona TDE. Ponadto, nadmierne ogrzewanie spowoduje wytworzenie produktów niepożądanych takich, jak usieciowane aminokwasy, racemizację aminokwasów L do ich izomerów D i tworzenie mutagenów takich, jak 2-amino-3,8-dietyloimidazolo-[4,5f]-chinolina. Ważne jest też, że podczas produkcji występuje minimalne parowanie tak, że zmniejszone jest wytwarzanie szkodliwego zapachu. Do tego, obecny wynalazek minimalizuje obróbkę cieplną w czasie wytwarzania paszy zwierzęcej pod ciśnieniem atmosferycznym podczas etapów utylizowania alkaliami i poprzez dehydratację skutecznie sterylizując z TDE. Warunki wytwarzania z wykorzystaniem niniejszego wynalazku mieszczą się z łatwością w granicach możliwości wielu standardowych, handlowych instalacji do wytwarzania paszy zwierzęcej albo mogą być zastosowane po drobnych tylko modyfikacjach tych instalacji.
Materiał zwierzęcy, który może być użyty obejmuje na przykład zwierzęta z uboju i odpady z uboju zwierząt; domowe zwierzę ta o małej handlowej wartości tak jak i porzucone ze względu na wiek lub suszę owce i bydło, albo wskutek redukcji stada owiec; zbędną albo porzuconą padlinę dzikiej zwierzyny lub jej części; odpadki drobiu lub drób porzucony ze względu na wiek; odpadki ryb lub raków lub nieużyteczne gatunki z połowu.
Materiał zwierzęcy korzystnie miesza się w masie z suchym materiałem odwadniającym, który jest zdolny do absorbowania wilgoci (chemicznie albo fizycznie) z materiału zwierzęcego, zmniejszając procentową zawartość wody w materiale do suchego stałego produktu.
Materiały odwadniające obejmują co najmniej jedną lub więcej kombinacji:
bentonitów, zeolitów, kaolinów lub innych glin w zawartości procentowej nie przekraczającej
35% wagowych;
tlenku wapnia, tlenku magnezu lub tlenku glinu o zawartości procentowej nie przekraczającej 35% wagowych;
diatomitu lub innych ziem okrzemkowych w zawartości procentowej nie przekraczającej 35% wagowych;
gipsu, dolomitu, wapienia, wodorowęglanu sodu lub soli w zawartości procentowej nie przekraczającej 35% wagowych;
PL 201 909 B1 fosforanów wapnia i/lub kwasu fosforowego w zawartości procentowej nie przekraczającej 35% wagowych;
siarczanu żelaza (II) i/lub siarczanu żelaza (III) w zawartości procentowej nie przekraczającej
35% wagowych;
ziaren, skrobii, materiałów żelatynowych i produktów ubocznych obróbki ziaren (na przykład otrąb, łupin i tym podobnych) włączając ich wytłoczone w zawartości procentowej nie przekraczającej 80% wagowych;
ziaren zawierających białko i ziaren oleistych i produktów ubocznych ich obróbki, włączając przetworzone i wytłoczone postacie mączek białkowych w zawartości procentowej nie przekraczającej 80% wagowych;
produktów roślinnych i produktów ubocznych takich, jak mąka z kopry i mąka z pestek palmy, odpadki z odziarniania, siekane siano i słoma, w zawartości procentowej nie przekraczającej 75% wagowych;
zwierzęcych produktów ubocznych takich, jak mączki mięsne, mączki kostne i mączki z krwi oraz materiały żelatynowe, w zawartości procentowej nie przekraczającej 75% wagowych.
Korzystne materiały odwadniające, które mogą być używane są zróżnicowane, a ich dobór zależy od kilku czynników, włączając:
1. Dostępność i koszt materiału odwadniającego w odniesieniu do jego zdolności odwadniania.
2. Szybkość, z jaką ma być prowadzone odwadnianie.
3. Planowany sposób wykorzystania wysuszonego produktu.
Odwodnienie jest zwykle wykonywane w suszarce obrotowej.
Zasady stosowane w etapie (i) mogą obejmować tlenki, wodorotlenki i sole metalicznych pierwiastków. Przykłady obejmują tlenek wapnia, wodorotlenek wapnia, wodorotlenek sodu, węglan sodu, siarczan (IV) sodu, wodorotlenek potasu, węglan potasu, wodorotlenek magnezu, węglan magnezu, siarczan (VI) magnezu lub jakiekolwiek dwa związki lub więcej (z wymienionych powyżej) w kombinacji.
Korzystnie zasada ma postać wodorotlenku wapnia (uwodnionego wapna).
Stężenie zasady stosowanej w etapie (i) będzie zależeć od pożądanej wartości pH, konkretnej stosowanej zasady i zdolności buforowania materiału zwierzęcego i innych materiałów stosowanych podczas produkcji.
Na przykład, typowym stosunkiem jest 25 kg uwodnionego wapna do 1200 kg wilgotnego materiału zwierzęcego.
Zależnie od materiału, z którym produkt ma być zmieszany, wartość pH może być regulowana przez dodawanie kwasu.
Podczas produkcji mogą być dodawane opcjonalne, dodatkowe materiały w celu zwiększenia wartości żywieniowej lub ekonomicznej produktu końcowego. Takie materiały dodatkowe (chociaż nie ograniczone tylko do wymienionych poniżej) mogą obejmować, na przykład, modyfikatory żwacza takie, jak monensen lub aworparcyna, enzymy lub kultury bakteryjne; dodatkowe witaminy lub minerały; niebiałkowe źródła azotu takie, jak mocznik; przeciwutleniacze, stabilizatory, antybiotyki, środki hamujące pleśnienie, środki konserwujące (włączając sól) i tym podobne; białkowe i lipidowe modyfikatory zmiany zdolności trawienia żwacza; substancje polepszające własności smakowe takie jak melasa i produkty uboczne fermentacji melasy.
Korzystne jest pozostawienie wysuszonej zwierzęcej paszy na 24 godziny zanim będzie ona dostarczona bezpośrednio do żywego inwentarza (zarówno przeżuwaczy jak i jednożołądkowców) w formie ziarnistej (granulatu), bloku lub rozdrobnionego mia łkiego proszku.
Pasza zwierzęca może być mieszana z dodatkami paszowymi, pierwiastkami śladowymi, białkowymi mączkami, białkiem zbożowym i ziarnami nasion oleistych, melasami albo produktami ubocznymi fermentacji melas, sianem lub tym podobnymi kompozycjami dla żywienia domowego inwentarza (zarówno przeżuwaczy i jednożołądkowców); może być stosowana jako właściwa pasza jak też do produkcji lub mieszania z innymi materiałami i/lub może być stosowana bezpośrednio albo jako składnik w żywności dla ludzi.
Ogólnie, suszony materiał jest mieszany do maksimum 10-15% (wag.) końcowego produktu.
Przykładami produkowanej zwierzęcej paszy są:
1. Odtłuszczone frakcje stałe odpadów rzeźniczych (typowo <10% tłuszczu w odniesieniu do suchej masy) oraz szumowinę (stickwater) miesza się z wodorotlenkiem wapnia do osiągnięcia wymaganej wartości pH równej 11 (w przybliżeniu 1:30 wagowo, w odniesieniu do suchej masy) i pozostawia na jedną godzinę w zbiorniku wyrównawczym. Produkt suszy się wówczas w temperaturze
PL 201 909 B1
80°C w suszarce obrotowej przez ponad 1 godzinę uzyskując produkt zawierający <10% wolnej wilgoci, który następnie miele się do otrzymania rozdrobnionej paszy.
2. Odtłuszczone rzeźnicze odpady (typowo <10% tłuszczu w odniesieniu do suchej masy) oraz szumowinę (stickwater) miesza się z wodorotlenkiem wapnia do osiągnięcia wymaganej wartości pH równej 10 (w przybliżeniu 1:50 wagowo, w odniesieniu do suchej masy) i pozostawia na 30 minut w zbiorniku wyrównawczym, a nastę pnie suszy się w temperaturze 60°C w suszarce obrotowej z wykorzystaniem ciepła słońca przez ponad 3 godziny otrzymując produkt zawierający <10% wolnej wilgoci. Produkt ten miele się następnie do otrzymania rozdrobnionej paszy.
3. Surowy odpadowy materiał rybny miesza się z zasadą składającą się w 80% z wodorotlenku wapnia i w 20% z wodorotlenku sodu do osiągnięcia wartości pH wynoszącej 10,5 (w przybliżeniu 1:40 wagowo, w odniesieniu do suchej masy) i suszy się w suszarce obrotowej w temperaturze 70°C przez ponad 4 godziny uzyskując produkt zawierający <11% wilgoci, który następnie miele się w celu otrzymania rozdrobnionej mączki.
Chociaż dotychczas żadne infekcyjne TDE nie zostało wykryte u zwierząt domowych innych niż przeżuwacze (na przykład u ryb i drobiu), to w wielu krajach zakazane jest karmienie mączkami białkowymi pochodzenia zwierzęcego w szerokim zakresie. Na przykład, w Australii i Stanach Zjednoczonych obowiązuje zakaz karmienia zwierząt przeżuwających jakąkolwiek białkową mączką pochodzenia zwierzęcego. W wielu europejskich krajach obowiązuje całkowity zakaz karmienia wszystkich gatunków zwierząt jakąkolwiek białkową mączką pochodzenia zwierzęcego. Zakazy te wynikają z obawy przed infekcyjnym TDE, wykrytym w końcu u zwierząt innych niż przeżuwacze.
Zaletą wytwarzania zwierzęcej paszy według niniejszego wynalazku może być także fakt, że może ona być wykorzystana jako nawóz odkażony od TDE.
Aby w pełni umożliwić zrozumienie wynalazku, wybrane jego zastosowania będą opisywane wraz z odsyłaczem do towarzyszącego rysunku (FIG. 1), który jest schematem urządzenia używanego do produkcji pasz według obecnego wynalazku.
W odniesieniu do sposobu wedł ug wynalazku, materiał odwadniają cy miesza się z surowym materiałem zwierzęcym, a następnie ogrzewa się go i suszy. Zwykle miesza się wszystkie materiały na początku procesu ale nie jest to szczególnie ważne, ponieważ którykolwiek ze składników można wprowadzać w dowolnym momencie, w trakcie trwania procesu. Materiał miesza się, a następnie suszy. Można stosować dowolny cieplny układ suszący, ale zwykle najbardziej praktyczny jest układ przepływu ogrzanego powietrza.
Zgodnie z FIG. 1, odpady zwierzęce 10 (np. padlina bydlęca) przed dodaniem zasady 12 (korzystnie wodorotlenku wapnia) przepuszcza się przez maszynę do rozdrabniania 11 i miesza w mikserze 13.
Po rozdrobnieniu a przed dodaniem zasady 12, odpad zwierzęcy 10 może być ogrzewany w celu stopienia łoju. Ogrzewany zwierzęcy odpad następnie odcedza się lub wyciska otrzymując frakcję stałą i płynną. Frakcję płynną zakwasza się i rozdziela na frakcję łojową, inne płynów (głównie wodę) i pozostałe ciało stałe (określane jako „szumowina). Szumowinę tę można przetwarzać osobno lub połączyć z frakcją stałą w celu poddania obróbce alkalicznej i cieplnej.
W przykładzie tym, dodatek zasady 12 (korzystnie wodorotlenku wapnia) podnosi pH mieszaniny do wartości około 11,0-11,5. Podczas tej „fazy hydrolitycznej wartość pH powinna być utrzymywana poziomie co najmniej 8,5 lub raczej 9,5 przez 1-4 godzin. Wartość pH może spadać w miarę postępu hydrolizy białka, przeto korzystniej jest zaczynać proces przy wartości pH wynoszącej co najmniej 11,0 tak, aby wartość pH nigdy nie spadała poniżej 8,5 lub korzystnie - poniżej 9,5.
Podczas tej fazy hydrolitycznej, temperaturę można utrzymywać na poziomie 60°C przez dłuższy okres (powiedzmy 3 godziny), tak żeby zmniejszyć zużycie energii, lub można utrzymywać na poziomie 80-85°C przez okres krótszy (powiedzmy 1 godzinę).
Następnie mieszaninę poddaje się (np. za pomocą podajnika ślimakowego) do suszarki bębnowej 14, z przeciwprądowym przepływem powietrza, wywoływanym przez wentylator lub dmuchawę 16 ogrzewaną grzejnikiem 15. Korzystnie w tym miejscu dodaje się do suszarki opcjonalne materiały odwadniające (np. bentonit, zeolit, wapień, zmielone ziarno zbożowe) w celu ułatwienia procesu odwodnienia.
Zwykle pasza zwierzęca opuszcza suszarkę bębnową 14 z zawartością wilgoci na poziomie 10-11% wagowych. Odkryto, że ta zawartość wilgoci zmniejsza się do poziomu 7-8% wagowych po upływie 24-48 godzin od zakończenia procesu suszenia, w wyniku trwającej hydrolizy białka.
PL 201 909 B1
Suszona zwierzęca pasza jest podawana do młyna młotkowego 17 w celu rozdrobnienia do żądanej wielkości granulatu/proszku, po czym granulowany/sproszkowany materiał paszowy jest podawany do wydziału pakowania/transportu 18.
Gdy produkt ma być używany do karmienia bezpośredniego np. w pokarmie dla ryb, kwas 19 można dodawać do miksera 13 (po przeprowadzeniu mieszania wstępnego) lub do młyna młotkowego 17, w celu zmniejszenia wartości pH produktu końcowego np. do poziomu pH 6,5-7,5.
Gdy produkt ma być mieszany z materiałami kwaśnymi, takimi jak ziarno, dodawanie kwasu może nie być wymagane, ponieważ zasadowy produkt może być zrównoważony przez kwasowość ziarna.
Będzie to od razu oczywiste dla fachowych odbiorców, że wartościowy pokarm, korzystnie dla zwierząt, ale także odpowiedni do spożywania przez ludzi można produkować z tkanki zwierzęcej, zasadniczo pozbawionej zakażenia TDE, lub charakteryzującej się co najmniej zmniejszonym prawdopodobieństwem zakażenia TDE, a także, że produkt końcowy jest odpowiedni dla szerokiego zakresu potencjalnych zastosowań, włączając użycie jako nawozu.
Aby ułatwić szybsze zrozumienie i praktyczne zastosowanie wynalazku, osobę wykwalifikowaną odsyła się do następujących przykładów.
P r z y k ł a d 1
Siekaną wołowinę zrazową kupiono od miejscowego rzeźnika i przygotowano cztery naważki po dziesięć gramów (4 x 10g). Dwie naważki umieszczono w metalowych zlewkach, zaszczepiono 1 ml 263K surowego zhomogenizowanego mózgu chomika chorego na scrapie (cHs) i starannie wymieszano. Do obu zlewek dodano po 20 ml 5% roztworu wodorotlenku wapnia, mieszano, przykryto folią, a następnie umieszczono na dwanaście godzin w łaźni wodnej o temperaturze 60°C. Podczas 12 godzin inkubacji roztwór mieszano co około 30 minut.
Do trzeciej 10 g naważki mięsa dodano 1 ml cHs, starannie mieszano, a następnie dodano 20 ml roztworu 1% SDS. Mieszaninę tę umieszczono w mikserze typu end over end na 10 minut. Następnie mieszaninę gotowano przez 5 minut, wyklarowano, podzielono na równe części i zamrożono w temperaturze -80°C. Tak przygotowaną próbkę oznaczono jako 287.1A cHs.
Ostatnią 10 g naważkę umieszczono w metalowej zlewce, zaszczepiono 1 ml cHs, dokładnie wymieszano, a następnie umieszczono w piecu do suszenia powietrzem w temperaturze 60°C. Próbkę mieszano co około 30 minut. Po wysuszeniu odwodnione mięso wyjęto z pieca i rozdrobniono przy użyciu moździerza i tłuczka. Rozdrobnione mięso zmieszano z 20 ml jednokrotnie zagotowanej mieszanki, umieszczono w mikserze typu „end over end, mieszano przez 12 godzin w temperaturze otoczenia, następnie wyklarowano i podzielono na równe wagowo części. Tak przygotowaną próbkę oznaczono jako 287.1-1 cHs.
Po 12 godzinach ogrzewania w łaźni wodnej w temperaturze 60°C wyjęto z niej dwie metalowe zlewki. Jedną zlewkę umieszczono w piecu i suszono powietrzem w temperaturze 60°C z przerywanym mieszaniem, jak powyżej. Materiał z drugiej zlewki umieszczono w probówce wirówki, a wartość pH korygowano do poziomu pH 7,5. Dodano 22 ml jednokrotnie gotowanej mieszanki i pozostawiono w mikserze typu „end over end do mieszania przez 12 godzin w temperaturze otoczenia. Następnie mieszaninę wyklarowano, podzielono na równe wagowo części i zamrożono w temperaturze -80°C. Tak przygotowaną próbkę oznaczono jako 287.1-2 cHs.
Po odwodnieniu w temperaturze 60°C, zhydrolizowane mięso wyjęto z pieca i rozdrobniono przy użyciu moździerza i tłuczka. Do rozdrobnionego mięsa dodano 20 ml 50 mM octanu sodowego i dostosowano wartość pH do poziomu 7,5. Dodano 23 ml dwukrotnie gotowanej mieszanki i probówkę umieszczono w mikserze typu „end over end i mieszano przez 12 godzin w temperaturze otoczenia. Następnie mieszaninę wyklarowano, podzielono na równe wagowo części i zamrożono w temperaturze -80°C. Tak przygotowaną próbkę oznaczono jako 287.1-3 cHs.
Peletki pozostałe z próbki 287.1-3 cHs powtórnie rozpuszczono i termostatowano z 10 ml 50 mM buforu octanu sodowego (pH 6,0), umieszczono w mikserze typu „end over end do wymieszania w temperaturze otoczenia przez 60 minut. Następnie mieszaninę wyklarowano, podzielono na równe wagowo części i zamrożono w temperaturze -80°C. Tak przygotowaną próbkę oznaczono jako
287.1-4 cHs.
Próbki poddano analizie metodą Western blot. Analiza metodą Western blot chomika chorego na scrapie 263K pociąga za sobą użycie specyficznego przeciwciała monoklonalnego, 3F4. 3F4 rozpoznaje zarówno normalną komórkową formę prionowego białka PrPc, jak i formę związaną z chorobą PrPSc. W przeciwieństwie do normalnej komórkowej formy, PrPSc jest względnie odporna na proteazę,
PL 201 909 B1 tak więc trawienie próbek przy użyciu proteinazy K może być stosowane do odróżniania PrPSc od
PrPc. Trawienie poddawanych obróbce próbek przy użyciu proteinazy K jest też użyteczne przy usuwaniu białek obecnych w przetwarzanych próbkach, które mogłyby spowodować niespecyficzne albo krzyżowo-reaktywne zabarwienie tła w oznaczaniu za pomocą analizy metodą Western blot.
Fig. 2 przedstawia miareczkowanie materiału badawczego chomika chorego na scrapie 263K używanego w tych badaniach (SPO172200). Wykazuje ono typowy wzór zabarwienia obserwowany dla 263K, przy użyciu 3F4. Przyjmuje się, że dojrzałe białko PrP pełnej długości ma pozorny ciężar cząsteczkowy (Mr) wynoszący około 33000 daltonów (33K, górne pasmo pasa 2). Po trawienu za pomocą proteinazy K (patrz pas 1) zwykle obserwuje się pasma: dominujące szerokie pasmo w rejonie 28K, słabsze szerokie pasmo w rejonie około 23K i ostre, ale słabe pasmo około 19K. Należy zauważyć, że w materiale badawczym 263K Hs można wykryć również gatunki o niższym Mr (pas 2), przypuszczalnie ze względu na endogenne proteazy obecne w albo podczas przygotowywania materiału badawczego.
Pasy 4-10 przedstawiają serię pięciu roztworów materiału badawczego 263K kolejno od rozcieńczenia 1:25 (10-1,4) do rozcieńczenia 1:390625 (10-5,6). Cząsteczki 28K PrPSc można wykryć w pasach 4-7, tj. poniżej roztworów 10-3,5. Przy dłuższych ekspozycjach tej plamy (nie pokazano), rodzaje 28K dostrzega się też przy rozcieńczeniu 10-4,2. Punkt końcowy albo miano materiału badawczego określa się jako pierwsze rozcieńczenie, przy którym nie dostrzega się już rodzajów 28K PrP. Z tego powodu miano tego materiału badawczego wynosi 10-4,9 albo 7,8 x 104 jednostek umownych/ml.
Analizę metodą Western blot próbek procesowych, trawionych za pomocą proteinazy K przedstawiono na Fig. 3. Trawiony za pomocą proteinazy K materiał badawczy 263K Hs SPO172200 służy jako wewnętrzna kontrola bezwzględna (pas 1, rozcieńczenie 10-2,1). Rodzaje 28K PrP mogą być oczywiście widziane w próbkach 287.1A i 287.1-1 (odpowiednio, pasy 3 i 4). Obserwuje się także rodzaje białek ~33K, co sugeruje, że trawienie tych próbek za pomocą proteinazy K jest niezupełne. Nie obserwuje się żadnych pasm białkowych dla próbek 287.1-2, 287.1-3 albo 287.1-4 (odpowiednio, pasy 7-9), co sugeruje, że proces zasadowej hydrolizy usunął białka PrPSc. Ponieważ nie obserwuje się w tych próbkach żadnych cząstek PrPSc, można uznać, że mają one końcowe miano 10°, lub 1x10° jednostek umownych/ml. Należy zauważyć, że nie można oszacować miana dla próbek 287.1A lub
287.1-1.
Dla potwierdzenia, że białka PrPSc nie zostały po prostu zdegradowane w etapie trawienia za pomocą proteinazy K, metodą Western blot analizowano próbki nietrawione (Fig. 4). Zarówno nietrawiony jak i trawiony za pomocą proteinazy K i 263K Hs materiał badawczy SPO172200 służył jako wewnętrzna kontrola bezwzględna (odpowiednio - pasy 1 i 2). Analogicznie, można zauważyć cząstki białka PrP w próbkach 287.1A i 287.1-1 (odpowiednio - pasy 3 i 4). Brak pasm białkowych w próbkach
287.1-2, 287.1-3 lub 287.1-4 (odpowiednio - pasy 7-9) potwierdza wyniki z Fig. 3.
P r z y k ł a d 2
Wstępne próby wykonano w celu zbadania stabilności pH po obróbce materiału mięsnego.
Wartość pH 5% roztworu wodorotlenku wapniowego doprowadzono do wartości 12,0 przy użyciu kwasu solnego. 20 ml tego roztworu dodano do 10 g siekanej chudej wołowiny i próbkę dokładnie wymieszano. Mierzono wartości pH i monitorowano ponad 85 minut, podczas którego to czasu wartość pH pozostawała na poziomie 12,0.
Podobnie, 5% wodorotlenek wapniowy doprowadzono do wartości pH 10,5 i 20 ml tego roztworu dokładnie wymieszano z 10 g siekanej chudej wołowiny. Początkowa wartość pH wynosiła 5,4 i została ponownie doprowadzona do wartości pH 10,5 przez dalsze dodawanie wodorotlenku wapniowego. Następnie wartość pH obniżała się przez następne 25 minut do wartości 10,3.
P r z y k ł a d 3
Dwie naważki po 10 g siekanej wołowiny zrazowej umieszczono w metalowych zlewkach i każdą naważkę zaszczepiono 1 ml zhomogenizowanego surowego mózgu chomika chorego na scrapie (cHs) 263K. Następnie do każdej zlewki dodano 20 ml wodorotlenku wapniowego o wartości pH równej 12,0, każdą z próbek wymieszano dokładnie i zmierzono wartości pH, które dla obu próbek wyniosły 12,0. Następnie zlewki pokryto folią i termostatowano w temperaturze 75°C przez całe 3 lub 6 godzin (2 lub 5 godzin w łaźni wodnej i ostatnią 1 godzinę w piecu).
Cztery naważki po 10 g siekanej wołowiny zrazowej umieszczono w czterech metalowych zlewkach i każdą z nich zaszczepiono 1 ml zhomogenizowanego surowego mózgu chomika chorego na scrapie (cHs) 263K. Wtedy do każdej zlewki dodawano 18 ml wodorotlenku wapnia o wartości pH
PL 201 909 B1
10,5, próbki mieszano całkowicie i dostosowywano wartość pH wszystkich próbek do poziomu 10,5 (wodorotlenkiem wapniowym). Wtedy zlewki pokrywano folią i termostatowano w temperaturze 75°C przez całe 3 albo 6 godzin, lub w temperaturze 90°C przez 3 godziny (początkowo w łaźni wodnej i przez końcową 1 godzinę w piecu).
Wszystkie próbki zneutralizowano do końcowych wartości pH na poziomie 6,5-7,5 i wtedy doprowadzono do końcowego stężenia, wynoszącego 1% SdS. Próbki mieszano w mikserze typu „end over end w temperaturze otoczenia przez około 10 minut, gotowano przez 5 minut i wyklarowane przez wirowanie przy małej prędkości obrotowej. Następnie frakcję nadsączu zebrano, podzielono na równe części i przechowywano w temperaturze -70°C.
Szczegółowe informacje dotyczące próbek przedstawiono w Tabeli 1.
Próbki analizowano metodą Western blot.
Dla celów kontroli jedną 10 g naważkę siekanej wołowiny zrazowej zaszczepiono 1 ml 263K cHs, dokładnie wymieszano i dodano 20 ml 1% SdS. Próbkę tę mieszano w mikserze typu „end over end w temperaturze otoczenia przez około 10 minut, gotowano przez 5 minut i wyklarowana przez wirowanie przy małej prędkości obrotowej. Frakcję nadsączu zebrano, podzielono na równe części i przechowywano w temperaturze -70°C.
Fig. 5 przedstawia miareczkowanie materiału badawczego chomika chorego na scrapie 263H używanego w tych badaniach (SPO172200). Widoczny jest typowy wzór zabarwienia obserwowany dla 263K przy użyciu mAb 3F4. Przyjmuje się, że dojrzałe białko PrP pełnej długości ma pozorną masę ciężar cząsteczkową (Mr) około 33000 (33K, górne pasmo pasa 2). Po trawieniu przy użyciu proteinazy K (patrz pas 1) zwykle obserwuje się pasma: dominujące szerokie pasmo w rejonie 28K, słabsze szerokie pasmo w rejonie około 23K i ostre, ale słabe pasmo około 19K. Należy zauważyć, że w materiale badawczym 263K Hs można również wykryć rodzaje o mniejszej masie cząsteczkowej (pas 2), przypuszczalnie dzięki proteazom endogennym obecnych w albo podczas przygotowywania materiału badawczego.
Przetwarzane próbki testowano w czystym roztworze, bez trawienia lub z następującym trawieniem za pomocą proteinazy K przy stężeniu końcowym 10 μg/ml (w oparciu o wcześniejsze wyniki). Wyniki przedstawiono na Fig. 6 i 7.
Trawiony przy użyciu proteinazy K materiał badawczy 263K cHs SPO172200 służył jako wewnętrzna kontrola bezwzględna (pas 1 na Fig. 6). Rodzaje 28K PrP mogą być łatwo zauważone w próbce 309.1A (zarówno z jak i bez trawienia proteinazy K; patrz pas 3 Fig. 6 i 7). Pewną ilość dodatkowych rodzajów białka obserwuje się też w próbce nietrawionej. Rodzaje 33K PrP są wciąż oczywiście widoczne w trawieniu za pomocą proteinazy K (pas 3 Fig. 6) sugerując, że trawienie za pomocą proteinazy K było niezupełne.
Nie zaobserwowano żadnych pasm białkowych w jakichkolwiek próbkach poddawanych obróbce cieplnej i przy użyciu wodorotlenku wapnia (pasy 5-10), albo z, albo bez trawienia przy użyciu proteinazy K nawet po dłuższych ekspozycjach podczas wykonywania analizy metodą Western blot (do 30 minut). A zatem, wszystkie testowane w tych badaniach warunki obróbki za pomocą wodorotlenku wapnia i obróbki cieplnej pozwalają na usuwanie białka PrPSc. Ponieważ w tamtych próbkach nie zaobserwowano żadnych cząstek białka PrPSc, można przyjąć, że mają one końcowe miano 101 albo 1x100 jednostek umownych/ml. Należy zauważyć, że nie można oszacować miana dla próbki 309.1A.
Poziomu białek PrP obecnych w przetwarzanych próbkach nie określano ilościowo przez miareczkowanie w próbie metodą Western blot. Jednakże, chociaż nie wykryto żadnych PrP w którejkolwiek z próbek poddawanych obróbce cieplnej i obróbce przy użyciu wodorotlenku wapnia, można dokonać szacunkowej oceny oczyszczenia w porównaniu do ocenianej próbki zaszczepionej 263K.
Logarytmiczny współczynnik oczyszczenia jest stosunkiem całkowitej ilości 263K dodanej do wyjściowego mięsnego materiału do całkowitej ilości 263K wykrytej na końcu w przetwarzanej próbce, wyrażonym jako wartość logarytmu dziesiętnego:
miano materiału badawczego x objętość zaszczepienia
Oczyszczanie =------mianopróbki x objętość próbki
Dla wszystkich próbek poddanych obróbce uzyskano logarytmiczny współczynnik oczyszczenia równy lub większy od wartości 3,4.
Obliczenia te przedstawiono w Tabeli 2.
Podsumowując, próbki siekanej wołowiny zaszczepiono 263Hs zmierzono wpływ obróbki przy użyciu wodorotlenku wapnia i obróbki cieplnej według obecnego wynalazku w warunkach eliminacji
PL 201 909 B1 białka PrPSc. Przedstawione tu wyniki bezwzględne sugerują, że sposób zaprezentowany w niniejszym wynalazku stanowi skuteczną procedurę usuwania lub dezaktywacji TDE w próbkach mięsa, stosowanego w produkcji paszy zwierzęcej.
Dla specjalisty jasny będzie fakt, że obecny wynalazek ogranicza się do zastosowań szczegółowo tu opisanych i że można rozważać wiele innych zastosowań, które niemniej są jednak zgodne z ogólnym duchem i zakresem wynalazku.
Cała naukowa i patentowa literatura, która powoływana jest w tym opisie niniejszym włączona jest tutaj jako odnośnik.
T a b e l a 1
| Próbka | OPIS | PH |
| 309.1A | Chuda siekana wołowina zaszczepiona 263 K cHs (kontrola) | 6,5 |
| 309.1-1.3 | Próbka poddawana obróbce przy wartości pH równej 10,5; w temperaturze 75°C przez 3 godziny | 8,8 |
| 309.1-1.6 | Próbka poddawana obróbce przy wartości pH równej 10,5; w temperaturze 75°C przez 6 godzin | 8,8 |
| 309.1-2.3 | Próbka poddawana obróbce przy wartości pH równej 10,5; w temperaturze 60°C przez 3 godziny | brak danych |
| 309.1-3.3 | Próbka poddawana obróbce przy wartości pH równej 10,5; w temperaturze 90°C przez 3 godziny | 8,2 |
| 309.1-4.3 | Próbka poddawana obróbce przy wartości pH równej 12,0; w temperaturze 75°C przez 3 godziny | 11,6 |
| 309.1-6.3 | Próbka poddawana obróbce przy wartości pH równej 12,0; w temperaturze 75°C przez 6 godzin | 11,5 |
T a b e l a 2
| Próbka | Miano [jednostek umownych na ml] | Objętość [ml] | Całkowity [jednostek umownych na ml] | Oczyszczenie [log10] |
| Szczepienie | 7,8 x 104 | 1 | 7,8 x 104 | - |
| 309.1-1.3 cHs | 1x100 | 30 | 3,0 x 101 | >3,41 |
| 309.1-1.6 cHs | 1x100 | 25 | 2,5 x 101 | >3,49 |
| 309.1-2.3 cHs | 1x100 | 30 | 3,0 x 101 | >3,41 |
| 309.1-3.3 cHs | 1x100 | 26 | 2,6 x 101 | >3,48 |
| 309.1-4.3 cHs | 1x100 | 20 | 2,0 x 101 | >3,59 |
| 309.1-4.3 cHs | 1x100 | 15 | 1,5 x 101 | >3,72 |
Zastrzeżenia patentowe
Claims (19)
1. Sposób wytwarzania paszy z materiału zwierzęcego, znamienny tym, że (i) do materiału zwierzęcego dodaje się zasadę dla utrzymywania wartości pH na poziomie co najmniej 8,5;
(ii) ogrzewa się materiał uzyskany w etapie (i) do temperatury w zakresie od 55°C do 99°C, uzyskują c hydrolizę biał ek, oraz (iii) odwadnia się materiał otrzymany w etapie (ii), przy czym czas trwania etapów (i) i (ii) wynosi od 1 do 4 godzin.
2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że materiał zwierzęcy stanowi materiał skażony TDE.
3. Sposób według zastrz. 1 albo 2, znamienny tym, że reguluje się pH do wartości równej co najmniej 9,5.
PL 201 909 B1
4. Sposób według zastrz. 1 albo 2, znamienny tym, że reguluje się pH do wartości z zakresu od 10,5 do 13.
5. Sposób według zastrz. 4, znamienny tym, że reguluje się pH do wartości z zakresu od 11,0 do 11,5.
6. Sposób według zastrz. 1 albo 2, znamienny tym, że stosuje się temperaturę z zakresu od 60°C do 90°C.
7. Sposób według zastrz. 6, znamienny tym, ż e stosuje się temperaturę równą 60°C.
8. Sposób według zastrz. 6, znamienny tym, ż e stosuje się temperaturę z zakresu od 80°C do 85°C.
9. Sposób według zastrz. 1 albo 2, znamienny tym, że czas trwania etapów (i) i (ii) wynosi od 1 do 2 godzin.
10. Sposób według zastrz. 1 albo 2, albo 5, albo 7, albo 8, znamienny tym, że prowadzi się go pod ciśnieniem atmosferycznym.
11. Sposób wytwarzania materiału zwierzęcego oczyszczonego z TDE, znamienny tym, że (i) do materiału zwierzęcego skażonego TDE dodaje się zasadę dla utrzymywania wartości pH na poziomie co najmniej 8,5; i (ii) ogrzewa się materiał uzyskany w etapie (i) do temperatury w zakresie od 55°C do 99°C. przy czym czas trwania etapów (i) i (ii) wynosi od 1 do 4 godzin.
12. Sposób według zastrz. 11, znamienny tym, że reguluje się pH do wartości równej co najmniej 9,5.
13. Sposób według zastrz. 11, znamienny tym, że reguluje się pH do wartości z zakresu od 10,5 do 13.
14. Sposób według zastrz. 14, znamienny tym, że reguluje się pH do wartości z zakresu od 11,0 do 11,5.
15. Sposób według zastrz. 11, znamienny tym, że stosuje się temperaturę z zakresu od 60°C do 90°C.
16. Sposób według zastrz. 15, znamienny tym, że stosuje się temperaturę równą 60°C.
17. Sposób według zastrz. 15, znamienny tym, że stosuje się temperaturę z zakresu od 80°C do 85°C.
18. Sposób według zastrz. 11, znamienny tym, że czas trwania etapów (i) i (ii) wynosi od 1 do 2 godzin.
19. Sposób według zastrz. 11 albo 12, albo 14, albo 16, albo 17, albo 18, znamienny tym, prowadzi się go pod ciśnieniem atmosferycznym.
Applications Claiming Priority (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| AUPR1527A AUPR152700A0 (en) | 2000-11-15 | 2000-11-15 | Animal feed |
| US28634101P | 2001-04-26 | 2001-04-26 | |
| PCT/AU2001/001474 WO2002039826A1 (en) | 2000-11-15 | 2001-11-14 | DECONTAMINATION OF ANIMAL FEED CONTAINING PRION (eg. BSE agent). |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL362176A1 PL362176A1 (pl) | 2004-10-18 |
| PL201909B1 true PL201909B1 (pl) | 2009-05-29 |
Family
ID=25646513
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL362176A PL201909B1 (pl) | 2000-11-15 | 2001-11-14 | Sposób wytwarzania paszy z materiału zwierzęcego oraz sposób wytwarzania materiału zwierzęcego oczyszczonego z TDE |
Country Status (18)
| Country | Link |
|---|---|
| EP (1) | EP1343387B1 (pl) |
| AT (1) | ATE308894T1 (pl) |
| AU (2) | AU1481902A (pl) |
| BR (1) | BR0115343A (pl) |
| CA (1) | CA2427895C (pl) |
| CY (1) | CY1105296T1 (pl) |
| CZ (1) | CZ303982B6 (pl) |
| DE (1) | DE60114876T2 (pl) |
| DK (1) | DK1343387T3 (pl) |
| ES (1) | ES2253437T3 (pl) |
| HU (1) | HUP0302644A3 (pl) |
| MX (1) | MXPA03004144A (pl) |
| NO (1) | NO335436B1 (pl) |
| NZ (1) | NZ526502A (pl) |
| PL (1) | PL201909B1 (pl) |
| RU (1) | RU2290828C2 (pl) |
| SI (1) | SI1343387T1 (pl) |
| WO (1) | WO2002039826A1 (pl) |
Families Citing this family (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| PL201909B1 (pl) * | 2000-11-15 | 2009-05-29 | Austech Sterile Resource Recov | Sposób wytwarzania paszy z materiału zwierzęcego oraz sposób wytwarzania materiału zwierzęcego oczyszczonego z TDE |
| FR3003728B1 (fr) * | 2013-03-27 | 2016-01-22 | Commissariat Energie Atomique | Procede de decontamination de produits animaux |
Family Cites Families (9)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4042718A (en) * | 1975-12-22 | 1977-08-16 | Commonwealth Scientific And Industrial Research Organization | Method for manufacturing ruminant feed supplements comprising a protein-aldehyde complex |
| NZ182250A (en) * | 1976-03-08 | 1979-04-26 | Blue Wing Corp | Production of a nutrient composition containing gelled albumin |
| US4225620A (en) * | 1977-08-26 | 1980-09-30 | Blue Wing Corporation | Method for feeding ruminant animals |
| FR2586163B1 (fr) * | 1985-08-13 | 1990-05-11 | Guasco Roger | Retraitement des matieres organiques en vue de leur utilisation dans l'industrie agro-alimentaire et dans l'industrie des engrais amendements |
| FI910722A7 (fi) * | 1991-02-14 | 1992-08-15 | Broilertalo Oy | Menetelmä keratiinin hydrolysoimiseksi |
| US5087474A (en) * | 1991-03-06 | 1992-02-11 | Harmony Products, Inc. | Feed supplement fats from abatoir sludge |
| US5514388A (en) * | 1994-08-31 | 1996-05-07 | Rohwer; Gary L. | Encapsulated lipid-containing feed |
| RU2163750C1 (ru) * | 1999-08-02 | 2001-03-10 | Андрюхин Тимофей Яковлевич | Способ последовательного пофазного анаэробного сбраживания разжиженных органических отходов и устройство для его осуществления |
| PL201909B1 (pl) * | 2000-11-15 | 2009-05-29 | Austech Sterile Resource Recov | Sposób wytwarzania paszy z materiału zwierzęcego oraz sposób wytwarzania materiału zwierzęcego oczyszczonego z TDE |
-
2001
- 2001-11-14 PL PL362176A patent/PL201909B1/pl unknown
- 2001-11-14 ES ES01983306T patent/ES2253437T3/es not_active Expired - Lifetime
- 2001-11-14 SI SI200130483T patent/SI1343387T1/sl unknown
- 2001-11-14 EP EP01983306A patent/EP1343387B1/en not_active Expired - Lifetime
- 2001-11-14 CZ CZ20031326A patent/CZ303982B6/cs not_active IP Right Cessation
- 2001-11-14 WO PCT/AU2001/001474 patent/WO2002039826A1/en not_active Ceased
- 2001-11-14 CA CA002427895A patent/CA2427895C/en not_active Expired - Fee Related
- 2001-11-14 AT AT01983306T patent/ATE308894T1/de active
- 2001-11-14 RU RU2003117449/13A patent/RU2290828C2/ru not_active IP Right Cessation
- 2001-11-14 AU AU1481902A patent/AU1481902A/xx active Pending
- 2001-11-14 BR BR0115343-9A patent/BR0115343A/pt not_active IP Right Cessation
- 2001-11-14 HU HU0302644A patent/HUP0302644A3/hu unknown
- 2001-11-14 MX MXPA03004144A patent/MXPA03004144A/es active IP Right Grant
- 2001-11-14 DE DE60114876T patent/DE60114876T2/de not_active Expired - Lifetime
- 2001-11-14 DK DK01983306T patent/DK1343387T3/da active
- 2001-11-14 AU AU2002214819A patent/AU2002214819B2/en not_active Ceased
- 2001-11-14 NZ NZ526502A patent/NZ526502A/en not_active IP Right Cessation
-
2003
- 2003-05-13 NO NO20032159A patent/NO335436B1/no not_active IP Right Cessation
-
2006
- 2006-01-30 CY CY20061100118T patent/CY1105296T1/el unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| AU2002214819B2 (en) | 2005-09-01 |
| BR0115343A (pt) | 2003-08-26 |
| NO20032159L (no) | 2003-07-02 |
| HUP0302644A3 (en) | 2004-06-28 |
| DK1343387T3 (da) | 2006-02-27 |
| AU1481902A (en) | 2002-05-27 |
| CY1105296T1 (el) | 2010-03-03 |
| CA2427895C (en) | 2006-01-31 |
| PL362176A1 (pl) | 2004-10-18 |
| NO20032159D0 (no) | 2003-05-13 |
| WO2002039826A1 (en) | 2002-05-23 |
| SI1343387T1 (sl) | 2006-04-30 |
| NZ526502A (en) | 2004-07-30 |
| EP1343387A1 (en) | 2003-09-17 |
| CZ303982B6 (cs) | 2013-07-31 |
| CZ20031326A3 (cs) | 2003-09-17 |
| NO335436B1 (no) | 2014-12-15 |
| RU2290828C2 (ru) | 2007-01-10 |
| HUP0302644A2 (hu) | 2003-11-28 |
| CA2427895A1 (en) | 2002-05-23 |
| DE60114876T2 (de) | 2006-08-03 |
| MXPA03004144A (es) | 2004-12-02 |
| DE60114876D1 (de) | 2005-12-15 |
| EP1343387A4 (en) | 2004-06-16 |
| ES2253437T3 (es) | 2006-06-01 |
| ATE308894T1 (de) | 2005-11-15 |
| EP1343387B1 (en) | 2005-11-09 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US8075939B2 (en) | Decontamination of animal feed containing prion (eg. BSE agent) | |
| Oehme et al. | Effects of dietary moisture content of extruded diets on physical feed quality and nutritional response in A tlantic salmon (S almo salar) | |
| EP1003384A1 (en) | Granular plasma protein supplement with increased bio-efficacy | |
| CN104686792B (zh) | 以鸡粪为原料生产再生饲料的方法 | |
| PL201909B1 (pl) | Sposób wytwarzania paszy z materiału zwierzęcego oraz sposób wytwarzania materiału zwierzęcego oczyszczonego z TDE | |
| Hendriks et al. | Source of the variation in meat and bone meal nutritional quality | |
| AU2002214819A1 (en) | Decontamination of animal feed containing prion (eg. BSE agent). | |
| KR101922385B1 (ko) | 사료 제조용 고라니 분말 및 이를 이용한 가축사료의 제조방법 | |
| El Boushy et al. | Poultry by-products | |
| RU2368236C2 (ru) | Способ производства мясокостных гранул на корм птице и свиньям | |
| WO2021189115A1 (en) | A process for producing a collagen composition | |
| RU2125810C1 (ru) | Способ приготовления корма из отходов крупяного производства | |
| EP0809941B1 (en) | Poultry fodder and procedure for its manufacture | |
| RU2125382C1 (ru) | Способ получения корма из отходов пищевой промышленности | |
| RU2007098C1 (ru) | Способ получения мясокостной муки | |
| Young et al. | Potential of spray dried animal plasma as an alternative in-feed growth promoter in poultry production | |
| US20010031307A1 (en) | Spent hens for use in pet food | |
| RU2030881C1 (ru) | Состав для получения кормовой муки из сырья животного происхождения для сельскохозяйственных животных | |
| WO2023233171A1 (en) | Method for removing gossypol from the cottonseed | |
| RU2125811C1 (ru) | Способ получения вареных кормов | |
| CN1199564A (zh) | 含有黄土的动物饲料及其制备方法 | |
| Brown et al. | Digestibility of dry matter, nitrogen and minerals in biosolids | |
| KR20030071741A (ko) | 음식물 쓰레기를 이용한 사료 및 그 제조 방법 | |
| Karthikeyan et al. | Stabilization of raw chicken of fals by organic acidulants | |
| Kumar | Growth Performance of Buffalo Calves Fed Roasted Soyabean Cake Vis-a-vis Formaldehyde Treated Cake |