PL190987B1 - Sposób wytwarzania wodnej kompozycji farmaceutycznej - Google Patents

Sposób wytwarzania wodnej kompozycji farmaceutycznej

Info

Publication number
PL190987B1
PL190987B1 PL335208A PL33520898A PL190987B1 PL 190987 B1 PL190987 B1 PL 190987B1 PL 335208 A PL335208 A PL 335208A PL 33520898 A PL33520898 A PL 33520898A PL 190987 B1 PL190987 B1 PL 190987B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
active ingredient
water
aqueous
weight
liposomes
Prior art date
Application number
PL335208A
Other languages
English (en)
Other versions
PL335208A1 (en
Inventor
Giovanni Cavallo
Leonardo Marchitto
Original Assignee
Acraf
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Acraf filed Critical Acraf
Publication of PL335208A1 publication Critical patent/PL335208A1/xx
Publication of PL190987B1 publication Critical patent/PL190987B1/pl

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/10Dispersions; Emulsions
    • A61K9/127Liposomes
    • A61K9/1277Processes for preparing; Proliposomes
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/10Dispersions; Emulsions
    • A61K9/127Liposomes
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P15/00Drugs for genital or sexual disorders; Contraceptives
    • A61P15/08Drugs for genital or sexual disorders; Contraceptives for gonadal disorders or for enhancing fertility, e.g. inducers of ovulation or of spermatogenesis
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S977/00Nanotechnology
    • Y10S977/902Specified use of nanostructure
    • Y10S977/904Specified use of nanostructure for medical, immunological, body treatment, or diagnosis
    • Y10S977/906Drug delivery
    • Y10S977/907Liposome

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Reproductive Health (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Pregnancy & Childbirth (AREA)
  • Gynecology & Obstetrics (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Abstract

1. Sposób wytwarzania wodnej kompozycji farmaceutycznej z aktywnym skladnikiem maja- cym rozpuszczalnosc w wodzie nie wieksza niz 0,01% (w/v) zdyspergowanym w liposomach, znamienny tym, ze obejmuje nastepujace etapy: a) dyspergowania aktywnego skladnika w lipidach w temperaturze pomiedzy 20 i 30°C; b) zawieszania tej dyspersji w fazie wodnej; c) pozostawienia zawiesiny w temperaturze otoczenia na okres pomiedzy 0 i 48 godzin; d) ogrzewania do 30-75°C w ciagu 10-40 minut; e) zamrazania w temperaturze -150/-200°C; f) powtórzenia faz d) i e) co najmniej dwukrotne, ale nie wiecej niz 8 razy; g) filtracji przez membrane filtracyjna o srednicy porów 500-1000 nm; h) wytlaczania przez membrane o srednicy porów 50-400 nm; i w tym samym czasie i) usuniecia aktywnych skladników, które nie zostaly zamkniete. PL PL PL

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania wodnej kompozycji farmaceutycznej, zawierającej aktywny składnik, który jest wysoce nierozpuszczalny w wodzie. W szczególności, wynalazek dotyczy sposobu wytwarzania kompozycji farmaceutycznej, w której aktywny składnik jest zdyspergowany w liposomach.
Wiele wysiłków badawczych w dziedzinie farmacji poczyniono w celu wynalezienia nowych liposomowych preparatów. Jednak wynikło wiele trudności, szczególnie w odniesieniu do aktywnych składników, które są wysoce nierozpuszczalne w wodzie, zwłaszcza takich, których rozpuszczalność w wodzie jest < 0,01% (w/v).
W rzeczywistości stosowane obecnie techniki wytwarzania liposomów, zawierających aktywne składniki o niskiej rozpuszczalności w wodzie polegają na:
a) solubilizacji aktywnego składnika i wyselekcjonowanych fosfolipidów w odpowiednim rozpuszczalniku organicznym, na przykład w chloroformie;
b) odparowaniu tego rozpuszczalnika pod zmniejszonym ciśnieniem w celu uzyskania filmu aktywny składnik/lipid;
c) dodaniu drugiego organicznego rozpuszczalnika, na przykład alkoholu terbutylowego;
d) zamrażaniu otrzymanego roztworu w temperaturze ciekłego azotu;
e) liofilizacji zamrożonego roztworu;
f) nawodnieniu liofilizowanego roztworu roztworem buforowym z wytworzeniem zawiesiny multilamelarnych liposomów (MLV); i
g) obróbce tej zawiesiny ultradźwiękami z wytworzeniem zawiesiny mniejszych liposomów (SUV).
Przykład takiej metody opisali A. Sharma i in. w „Pharmaceutical Research”, 2, (6), 889-896 (1994).
Technika ta ma jednak taką wadę, że jest bardzo pracochłonna i prowadzi do śladowych obecności organicznych rozpuszczalników w liposomach.
Wprawdzie wspomniani autorzy odnoszą się do przebadania różnych technik wytwarzania MLV liposomów, takich jak nawodnienie suchego filmu lipidowego (ręczne wytrząsanie), odtajanie ze stanu zamrożenia i inne techniki, takie jak wytłaczanie i obróbka ultradźwiękami w celu następnego zmniejszenia (po obróbce) wielkości liposomów (MLV SUV) i konkludują, że wyżej opisana w szczegółach metoda i zawierająca wspomniane fazy a) do g) wykazała, że najbardziej nadaje się do zaakceptowania (loc. ci t. str. 890, prawa kolumna, wiersze 51-57). Jednak wspomniani autorzy nie pokazują jak wspomniana pierwsza technika wytwarzania liposomów MLV i wspomniana druga technika, którą można zmniejszyć wielkość liposomów, zostały połączone.
WO-A-96 40064, EP-A-0 578 629, DE-A-4 038 075 i DE-A-4 430 593 ujawniają kompozycje farmaceutyczne, w których nierozpuszczalny w wodzie aktywny składnik jest zdyspergowany w liposomach. Takimi aktywnymi składnikami są cyklosporyna-A, melatonina i, odpowiednio, taksol.
Jednak żaden z wspomnianych wyżej dokumentów nie opisuje sposobu wytwarzania wodnej kompozycji liposomowej, który łączy techniki zamrażania i odtajania z wytłaczaniem.
Nieoczekiwanie stwierdzono, że technika zamrażania i odtajania w połączeniu z wytłaczaniem pozwala na wytwarzanie wodnych kompozycji liposomowych aktywnych składników o rozpuszczalności w wodzie < 0,01% (w/v) bez stosowania jakiegokolwiek organicznego rozpuszczalnika.
W niniejszym opisie i zastrzeżeniach patentowych aktywne składniki o rozpuszczalności w wodzie < 0,01% (w/v) określane są jako „wysoce nierozpuszczalne w wodzie”.
Poniższe stanowią typowe przykłady aktywnych składników, które są wysoce nierozpuszczalne w wodzie: lonidamina (rozpuszczalność 3 x 10-6 g/ml), melatonina [„praktycznie nierozpuszczalna”, G. S. Shida i in. w „J. Pineal Res”., 16, 198-201 (1994)], cyklosporyna-A [„nierozpuszczalna w wodzie”, monografia o cyklosporynie-A w „Analytical Profiles of Drug Substances, 16, 163, (1987)] i bindaryt (rozpuszczalność 1 x 10-4 g/ml).
Liposomy kompozycji wytwarzanej sposobem według wynalazku korzystnie wytwarza się ze składników wybranych z grupy składającej się z fosfoglicerydów, glicerydów, diglicerydów, triglicerydów, fosfolipidów, lipidów galaktozylowych i glikozylowych, cholesterolu i jego pochodnych, sfingolipidów i ich mieszanin. Bardziej korzystnie wytwarza się je z fosfolipidów.
Typowy przykład liposomowej kompozycji według wynalazku zawiera fosfatydylocholinę, lizofosfatydylocholinę, N-acylofosfatydylocholinę, fosfatydyloetanoloaminę, fosfatydyloseryne, sfingomielinę, niepolarne lipidy, triglicerydy, wolne kwasy tłuszczowe, DL-a-tokoferol.
PL 190 987 B1
Korzystna liposomowa kompozycja według wynalazku zawiera:
% (wagowych)
85-97
0-5
0-4
0-10
0-4
0-3
0-1 liposomowa kompozycja wytwarzana sposobem według wynalazku
Składnik
Fosfatydylocholina Lizofosfatydylocholina N-acylo-etanoloamina Fosfatydyloetanoloamina Triglicerydy
Wolne kwasy tłuszczowe DL-a-tokoferol
Szczególnie korzystna zawiera:
Składnik % (wagowych)
Fosfatydylocholina 94
Lizofosfatydylocholina 3
N-acylo-etanoloamina 1
Fosfatydyloetanoloamina 0,1
Triglicerydy 1
Wolne kwasy tłuszczowe 0,75
DL-a-tokoferol 0,15
Typowo wielkość liposomów według wynalazku jest mniejsza niż 500 nm, korzystnie wynosi ona 50-250 nm.
Sposób wytwarzania wodnej kompozycji farmaceutycznej z aktywnym składnikiem mającym rozpuszczalność w wodzie nie większą niż 0,01% (w/v) zdyspergowanym w liposomach, zgodnie z wynalazkiem charakteryzuje się tym, że obejmuje następujące etapy:
a) dyspergowania aktywnego składnika w lipidach w temperaturze pomiędzy 20 i 30°C;
b) zawieszania tej dyspersji w fazie wodnej;
c) pozostawienia zawiesiny w temperaturze otoczenia na okres pomiędzy 0 i 48 godzin;
d) ogrzewania do 30-75°C w ciągu 10-40 minut;
e) zamrażania w temperaturze -150/-200°C;
f) powtórzenia faz d) i e) co najmniej dwukrotne, ale nie więcej niż 8 razy;
g) filtracji przez membranę filtracyjną o średnicy porów 500-1000 nm;
h) wytłaczania przez membranę o średnicy porów 50-400 nm; i w tym samym czasie
i) usunięcia aktywnych składników, które nie zostały zamknięte.
Korzystnie, fazę wodną tworzy się z 0,05%-0,9% (w/v) wodnego roztworu chlorku sodu.
Korzystnie, ilość użytych lipidów wynosi pomiędzy 0,01 i 0,4 części wagowe na każdą część wagową wody.
Korzystnie, ilość użytego aktywnego składnika wynosi pomiędzy 0,01 i 0,3 części wagowe na każdą część wagową lipidów.
Korzystnie, użyty w etapie h) gaz wytłaczający wybrany jest z grupy składającej się z powietrza, azotu, helu i argonu.
Korzystnie, gaz wytłaczający ma ciśnienie pomiędzy 500 i 5500 kPa.
Korzystnie, etap h) prowadzi się w temperaturze pomiędzy 20 i 75°C.
Korzystnie, temperatura mieści się pomiędzy 40 i 65°C.
Korzystnie, etap h) powtarza się co najmniej dwukrotnie, ale nie więcej niż 8 razy.
Czas trwania fazy c) zależy od ilości wysoce nierozpuszczalnego aktywnego składnika, który ma być zamknięty w liposomach. Stąd fachowcy w tej dziedzinie nie powinni mieć trudności, ponieważ drogą kilku prostych rutynowych prób można określić prawidłowy czas dla każdego aktywnego składnika i kompozycji liposomowej.
Faza wodna powinna być korzystnie wytworzona z 0,05%-0,9% (w/v) wodnego roztworu chlorku sodu.
Typowo ilość użytych lipidów wynosi pomiędzy 0,01-0,4 części wagowych na każdą część wagową wodnego roztworu. Z kolei ilość aktywnego składnika typowo wynosi pomiędzy 0,01 i 0,3 części wagowych na każdą część wagową lipidu.
Typowo do dyspergowania stosuje się homogenizer typu Ultraturrax™.
Typowo wytłaczanie prowadzi się przy pomocy sprężonego powietrza lub neutralnego gazu wybranego z grupy składającej się z helu i argonu jako gazów wytłaczających.
PL 190 987 B1
Korzystnym gazem neutralnym jest hel. W fazie wytłaczania ciśnienie korzystnie powinno mieć wartość pomiędzy 500 a 5500 kPa, a temperatura korzystnie powinna wynosić pomiędzy 20 a 75°C, a nawet bardziej korzystnie pomiędzy 40 a 65°C. Do typowych urządzeń do wytłaczania należy typ Lipex Biomembranes Thermobarrel lub typ Emulsiflex CC Avestin z filtrami z poliwęglanowymi membranami Costar™ o średnicy porów pomiędzy 50 a 600 nm.
Typowo fazę h) powtarza się co najmniej dwukrotnie, ale nie więcej niż 8 razy, korzystnie 6 razy.
Poniższe przykłady ilustrują wynalazek bez ograniczania go w jakikolwiek sposób.
P r z y k ł a d 1
100 mg melatoniny dyspergowano w 1 g fosfolipidu w temperaturze 30°C w ciągu 10 minut, stosując homogenizator typu Ultraturrax™. Bezpośrednio po tym dyspersję zawieszono w 10 ml 0,9% (w/v) wodnego roztworu chlorku sodu, stosując ten sam homogenizator, po czym ogrzewano na łaźni wodnej o temperaturze 55°C w ciągu 20 minut.
Otrzymaną w ten sposób zawiesinę poddano następującemu cyklowi chłodzenia i ogrzewania:
- chłodzenie w ciekłym azocie w ciągu 1 minuty,
- ogrzewanie do temperatury 55°C do czasu całkowitego upłynnienia fosfolipidów.
Cykl ten powtórzono 6 razy. Zawiesinę przepuszczono dwukrotnie przez filtr 0,6 μm aparatu Lipex Biomembrane.
Otrzymano w ten sposób zawiesinę Multilamellar Large Vesicles (MLV), którą poddano 6 cyklom ciągłego wytłaczania z użyciem urządzenia do wytłaczania typu Lipex Biomembrane Extruder Thermobarrel z poliwęglanowymi filtrami 0,1 μm Costar™ w temperaturze 55°C z użyciem helu jako gazu wytłaczającego pod ciśnieniem pomiędzy 1000 i 4800 kPa.
Działając w opisany wyżej sposób wytworzono trzy szarże produktu (LM/186, LM/188 i LM/190).
Szarże poddano następującym testom:
* ilość melatoniny w wodnej kompozycji liposomowej (analiza HPLC);
* wielkość liposomów;
* ilość melatoniny zamkniętej w liposomach.
Poniższa tabela przedstawia mierzone parametry i ich określenie:
Parametry Określenie
Wielkość liposomów - stabilność w czasie formowania - pomiar „fuzji” pęcherzyków
Ilość melatoniny - stężenie melatoniny w wodnej liposomowej kompozycji - stabilność w czasie formowania;
Otrzymane dane podano w tabeli 1, która przedstawia:
- stężenie melatoniny otrzymane z trzech wodnych liposomowych preparatów, wyrażone jako wartość średnia dla trzech szarż, które wynosiło 8,0 5x 10-3 g/ml;
- średnią wielkość liposomów dla trzech szarż, która wynosiła 93 nm;
- ilość zamkniętą, wyrażoną jako wartość średnia dla trzech szarż, która wynosiła 80,5 μg/mg;
- preparaty nie wykazywały żadnych fenomenów agregacji liposomów;
T a b e l a 1
Ilość HPLC (mg/ml) Średnia wielkość (nm) Ilość zamknięta ^g/mg) *
LM/186 7,80 85 78,0
LM/188 8,46 97 84,6
LM/190 7,90 98 79,0
(*) wyrażone w μg leku na mg użytego fosfolipidu
Zastosowano następującą procedurę w analizie HPLC:
- faza nieruchoma: kolumna w odwróconej fazie PKB-100 (250 x 4,6 mm; 5 μm Supelco);
- faza ruchoma: woda : acetonitryl 80 : 20 (v/v);
- detekcja: UV 254 nm.
PL 190 987 B1
Do analizy średniej wielkości liposomów użyto dwuczęściowej aparatury:
1) DELSA 440 Coulter,
2) NICOMP Submicron particle sizer model 370.
Procedura była następująca:
a) do testu prowadzonego aparatem 1) 1 ml zawiesiny liposomowej rozcieńczono 10 ml wodnego 0,9% (w/v) roztworu chlorku sodu;
b) do testu prowadzonego aparatem 2) 0,5 ml roztworu a) rozcieńczono 10 ml wodnego 0,9% (w/v) roztworu chlorku sodu.
P r z y k ł a d 2
Postępowano jak opisano wyżej w przykładzie 1, stosując 2 g fosfolipidu i 50 mg lonidaminy zamiast 1 g fosfolipidu i 100 mg melatoniny.
Wytworzono w ten sposób trzy szarże produktu (LM/195, GN/1L i GN/2L). Otrzymane dane podano w tabeli 2, która pokazuje:
- stężenie lonidaminy w wodnej kompozycji, wychodząc od początkowej wartości rozpuszczalności 3 x 10-6 g/ml do średniej wartości dla trzech szarż 3,83 x 10-3 g/ml;
- średnią wielkość liposomów dla trzech szarż, która wynosiła 79,6 nm;
- ilość zamkniętą, wyrażoną jako średnia wartość dla trzech szarż, która wynosiła 19,2 μg/mg;
- preparaty nie wykazywały żadnych fenomenów agregacji liposomów.
T a b e l a 2
Szarża Ilość HPLC (mg/ml) Średnia wielkość (nm) Ilość zamknięta ^g/mg) *
LM/195 3,66 103 18,3
GN/1L 3,31 53 16,5
GN/2L 4,54 76 22,7
(*) wyrażona w μ9 leku na mg użytego fosfolipidu
P r z y k ł a d 3
Postępowano jak opisano wyżej w przykładzie 1, stosując 2 g fosfolipidu i 200 mg melatoniny zamiast 1 g fosfolipidu i 100 mg melatoniny.
Tak wytworzono trzy szarże produktu (GN/1M, GN/2M i GN/3M). Otrzymane dane podano w tabeli 3, która pokazuje:
- stężenie melatoniny w wodnym liposomowym preparacie, wyrażone jako średnia wartość z trzech szarż, które wynosiło 13,5 x 10-3 g/ml;
- średnią wielkość liposomów dla trzech szarż, która wynosiła 92,6 nm;
- ilość zamkniętą, wyrażoną jako średnia wartość z trzech szarż, która wynosiła 67,6 μg/mg;
- preparaty nie wykazywały żadnych fenomenów agregacji liposomów.
T a b e l a 3
Szarża Ilość HPLC (mg /ml) Średnia wielkość (nm) Ilość zamknięta (γ/mg)*
GN/1M 10,66 104 53,30
GN/2M 13,90 76 69,50
GN/3M 16,03 98 80,15
(*) wyrażona w μg leku na mg użytego fosfolipidu
P r z y k ł a d 4
Postępowano tak jak opisano wyżej w przykładzie 2, z tą różnicą, że wytłaczanie prowadzono przez poliwęglanową membranę 0,2 μm zamiast 0,1 μm.
Wytworzono tak trzy szarże produktu (GN/3L, GN/4L i GN/5L). Otrzymane dane podano w tabeli 4, która pokazuje, że przez zwiększenie lonidaminy z 20 mg do 50 mg, ilości fosfolipidu z 1 do 2 mg
PL 190 987 B1 i wytłaczania przez membranę o średnicach 0,2 μm zamiast 0,1 μm, otrzymano znaczny wzrost stężenia lonidaminy w wodnej kompozycji w przykładzie 2. Faktycznie otrzymano średnią wartość 4,47 x 10-3 g/ml stężenia lonidaminy.
T a b e l a 4
Szarża Ilość HPLC (mg /ml) Średnia wielkość (nm) Ilość zamknięta ^g/mg)*
GN/3L 4,23 134 21,15
GN/4L 4,44 129 22,20
GN/5L 4,75 109 23,75
(*) wyrażona w μg leku na mg użytego fosfolipidu
P r z y k ł a d 5 mg cyklosporyny-A dyspergowano w 1 g fosfolipidu w temperaturze 30°C w ciągu 10 minut, stosując homogenizer typu Ultraturrax™. Bezpośrednio po tym dyspersje tę zawieszono w wodnym 0,9% (w/v) roztworze chlorku sodu, stosując ten sam homogenizer, po czym ogrzewano na łaźni wodnej o temperaturze 65°C w ciągu 20 minut.
Otrzymaną w ten sposób zawiesinę poddano następującemu cyklowi chłodzenia i ogrzewania:
- chłodzenie w ciekłym azocie w ciągu 1 minuty;
- ogrzewanie w temperaturze 65°C do czasu całkowitego upłynnienia fosfolipidów.
Cykl ten powtórzono 6 razy. Zawiesinę przepuszczono dwukrotnie przez 0,6 μm filtr aparatu Lipex Biomembrane. Otrzymano w ten sposób zawiesinę „Multilamellar Large Vesicles” (MLV), którą poddano 6 cyklom ciągłego wytłaczania, stosując 10 ml urządzenie do wytłaczania typu Lipex Biomembrane Extruder Thermobarrel z 0,1 μm poliwęglanowymi filtrami Costar™ w temperaturze 65°C i hel jako gaz wytłaczający pod ciśnieniem pomiędzy 1000 i 4800 kPa.
W ten sposób wytworzono trzy szarże produktu (LM/416A, LM/416B i LM/416C). Otrzymane dane podano w tabeli 5, która pokazuje:
- stężenie cyklosporyny-A w wodnym preparacie liposomowym, wyrażone jako średnia wartość z trzech szarż, które wynosiło 0,96 x 10-3 g/ml;
- średnią wielkość liposomów dla trzech szarż, która wynosiła 103 nm;
- ilość zamkniętą, wyrażoną jako średnia wartość dla trzech szarż, która wynosiła 9,6 μg/mg;
- preparaty nie wykazywały żadnych fenomenów agregacji liposomów.
T a b e l a 5
Szarża Ilość HPLC (mg /ml) Średnia wielkość (nm) Ilość zamknięta ^g/mg)*
LM/416A 0,96 103 9,6
LM/416B 0,94 99 9,4
LM/416C 0,98 107 9,8
(*) wyrażona w μg leku na mg użytego fosfolipidu
P r z y k ł a d 6
Postępowano jak opisano wyżej w przykładzie 1, stosując 2 g fosfolipidów i 50 g bindarytu zamiast 1 g fosfolipidów i 100 mg melatoniny.
Otrzymano w ten sposób trzy szarże produktu (LM/356, LM/357 i LM/358). Otrzymane dane podano w tabeli 6, która pokazuje:
- stężenie bindarytu w wodnej kompozycji liposomowej, wychodząc od początkowej wartości rozpuszczalności 1 x 10-4 g/ml do średniej wartości z trzech szarż 4 mg/ml;
- średnią wielkość liposomów dla trzech szarż, która wynosiła 108,3 nm;
- ilość zamkniętą, wyrażoną jako średnia wartość dla trzech szarż, która wynosiła 20,2 μg/mg;
- preparaty nie wykazywały żadnego fenomenu agregacji liposomów.
PL 190 987 B1
T a b e l a 6
Szarża Ilość HPLC (mg /ml) Średnia wielkość (nm) Ilość zamknięta ^g/mg)*
LM/356 4,1 109,4 20,5
LM/357 4,0 109,7 20,0
LM/358 4,0 106,0 20,0
(*) wyrażona w μg leku na mg użytego fosfolipidu
P r z y k ł a d 7 mg cyklosporyny-A dyspergowano w 2 g fosfolipidów w temperaturze 30°C w ciągu 10 minut, stosując homogenizator typu Ultrturrax™. Bezpośrednio po tym dyspersję tę zawieszono w wodnym 0,9% (w/v) roztworze chlorku sodu, stosując ten sam homogenizator i pozostawiono na 24 godziny w temperaturze otoczenia. Następnie otrzymaną zawiesinę ogrzewano na łaźni wodnej o temperaturze 65°C w ciągu 20 minut.
Otrzymaną w ten sposób zawiesinę poddano następującemu cyklowi chłodzenia i ogrzewania:
- chłodzenie w ciekłym azocie w ciągu 1 minuty;
- ogrzewanie do 65°C do czasu całkowitego upłynnienia fosfolipidów.
Cykl ten powtórzono 6 razy.
Zawiesinę przepuszczono dwukrotnie przez 0,6 μm filtr aparatu Lipex Biomembrane.
Otrzymano w ten sposób zawiesinę „Multilamellar Large Vesicles” (MLV), którą poddano 6 cyklom ciągłego wytłaczania, stosując 10 ml urządzenie do wytłaczania typu Lipex Biomembrane Extruder Thermobarrel z 0,1 μm poliwęglanowymi filtrami Costar™ w temperaturze 65°C i hel jako gaz wytłaczający pod ciśnieniem pomiędzy 1000 i 4800 kPa.
Tak otrzymano trzy szarże produktu (LM/422a, LM/422b i LM/422c). Otrzymane dane podano w tabeli 7, która pokazuje:
- stężenie cyklosporyny-A w wodnym preparacie liposomowym, wyrażone jako średnia wartość dla trzech szarż, które wynosiło 3 mg/ml;
- średnią wielkość liposomów dla trzech szarż, która wynosiła 119,5 nm;
- ilość zamkniętą, wyrażoną jako średnia wartość dla trzech szarż, która wynosiła 15 μg/mg;
- preparaty nie wykazywały żadnych fenomenów agregacji liposomów.
T a b e l a 7
Szarża Ilość HPLC (mg /ml) Średnia wielkość (nm) Ilość zamknięta ^g/mg)*
LM/422a 3,2 121,5 16
LM/422b 3,0 117,9 15
LM/422c 2,8 119,0 14
(*) wyrażona w μg leku na mg użytego fosfolipidu

Claims (9)

1. Sposób wytwarzania wodnej kompozycji farmaceutycznej z aktywnym składnikiem mającym rozpuszczalność w wodzie nie większą niż 0,01% (w/v) zdyspergowanym w liposomach, znamienny tym, że obejmuje następujące etapy:
a) dyspergowania aktywnego składnika w lipidach w temperaturze pomiędzy 20 i 30°C;
b) zawieszania tej dyspersji w fazie wodnej;
c) pozostawienia zawiesiny w temperaturze otoczenia na okres pomiędzy 0 i 48 godzin;
d) ogrzewania do 30-75°C w ciągu 10-40 minut;
e) zamrażania w temperaturze -150/-200°C;
f) powtórzenia faz d) i e) co najmniej dwukrotne, ale nie więcej niż 8 razy;
g) filtracji przez membranę filtracyjną o średnicy porów 500-1000 nm;
PL 190 987 B1
h) wytłaczania przez membranę o średnicy porów 50-400 nm; i w tym samym czasie
i) usunięcia aktywnych składników, które nie zostały zamknięte.
2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że fazę wodną tworzy się z 0,05%-0,9% (w/v) wodnego roztworu chlorku sodu.
3. Sposób według zastrz. 1 lub 2, znamienny tym, że ilość użytych lipidów wynosi pomiędzy 0,01 i 0,4 części wagowe na każdą część wagową wody.
4. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że ilość użytego aktywnego składnika wynosi pomiędzy 0,01 i 0,3 części wagowe na każdą część wagową lipidów.
5. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że użyty w etapie h) gaz wytłaczający wybrany jest z grupy składającej się z powietrza, azotu, helu i argonu.
6. Sposób według zastrz. 5, znamienny tym, że gaz wytłaczający ma ciśnienie pomiędzy 500 i 5500 kPa.
7. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że etap h) prowadzi się w temperaturze pomiędzy 20 i 75°C.
8. Sposób według zastrz. 7, znamienny tym, że temperatura mieści się pomiędzy 40 i 65°C.
9. Sposób według zastrz.1, znamienny tym, że etap h) powtarza się co najmniej dwukrotnie, ale nie więcej niż 8 razy.
PL335208A 1997-02-20 1998-02-12 Sposób wytwarzania wodnej kompozycji farmaceutycznej PL190987B1 (pl)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
IT97MI000363A IT1289939B1 (it) 1997-02-20 1997-02-20 Composizione farmaceutica acquosa comprendente un principio attivo altamente insolubile in acqua
PCT/EP1998/000816 WO1998036735A1 (en) 1997-02-20 1998-02-12 Aqueous pharmaceutical composition comprising an active ingredient which is highly insoluble in water

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL335208A1 PL335208A1 (en) 2000-04-10
PL190987B1 true PL190987B1 (pl) 2006-02-28

Family

ID=11376099

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL335208A PL190987B1 (pl) 1997-02-20 1998-02-12 Sposób wytwarzania wodnej kompozycji farmaceutycznej

Country Status (26)

Country Link
US (1) US6337087B1 (pl)
EP (1) EP0973505B1 (pl)
JP (1) JP4299369B2 (pl)
KR (1) KR100515249B1 (pl)
CN (1) CN1135969C (pl)
AR (1) AR011682A1 (pl)
AT (1) ATE257374T1 (pl)
AU (1) AU740619B2 (pl)
BG (1) BG64367B1 (pl)
CA (1) CA2285985C (pl)
CZ (1) CZ296700B6 (pl)
DE (1) DE69821001T2 (pl)
DK (1) DK0973505T3 (pl)
EA (1) EA002281B1 (pl)
ES (1) ES2213894T3 (pl)
GE (1) GEP20022751B (pl)
HU (1) HU225594B1 (pl)
IL (2) IL131354A0 (pl)
IT (1) IT1289939B1 (pl)
PL (1) PL190987B1 (pl)
PT (1) PT973505E (pl)
SK (1) SK282905B6 (pl)
TR (1) TR199901987T2 (pl)
UA (1) UA63939C2 (pl)
WO (1) WO1998036735A1 (pl)
ZA (1) ZA981354B (pl)

Families Citing this family (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SE9804192D0 (sv) * 1998-12-03 1998-12-03 Scotia Lipidteknik Ab New formulation
US6075045A (en) * 1999-04-28 2000-06-13 Ajinomoto Co., Inc. Method of treating paralysis of the extremities caused by cerebral infarction
JP4894119B2 (ja) * 2001-09-26 2012-03-14 日油株式会社 脂肪酸含有リポソーム分散液
US20040115226A1 (en) * 2002-12-12 2004-06-17 Wenji Li Free-flowing solid formulations with improved bio-availability of poorly water soluble drugs and process for making the same
WO2004064736A2 (en) * 2003-01-17 2004-08-05 Threshold Pharmaceuticals, Inc. Treatment of benign prostatic hyperplasia using energolytic agents
WO2005105040A2 (en) * 2004-04-26 2005-11-10 Micelle Products, Inc. Water-soluble formulations of fat soluble vitamins and pharmaceutical agents and their applications
US8999292B2 (en) 2012-05-01 2015-04-07 Translatum Medicus Inc. Methods for treating and diagnosing blinding eye diseases
US20210290562A1 (en) * 2018-12-11 2021-09-23 Disruption Labs Inc. Compositions for the delivery of therapeutic agents and methods of use and making thereof
CN111759807B (zh) * 2019-04-01 2021-06-01 上海谷森医药有限公司 一种环孢素脂质体及其制备方法
EP3990433A4 (en) 2019-06-25 2023-07-26 Translatum Medicus Inc. METHODS FOR THE MANUFACTURE OF 2-((1-BENZYL-1H-INDAZOL-3-YL)METHOXY)-2-METHYLPROPANOIC ACID AND ITS DERIVATIVES

Family Cites Families (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CA1264668A (en) * 1984-06-20 1990-01-23 Pieter R. Cullis Extrusion techniques for producing liposomes
DE4038075C1 (en) * 1990-11-29 1992-03-19 B. Braun Melsungen Ag, 3508 Melsungen, De Encapsulating solid or liq. lipophilic agents - comprises mixing hydration medium with phospholipid increasing temp. to above soln. phase change temp. and adding remaining medium
IT1254995B (it) * 1992-06-24 1995-10-11 Farmaco contenente melatonina e/o agonisti, con somministrazione particolarmente efficace nelle patologie che interferiscono con i ritmi circandiani
AT396755B (de) * 1992-07-09 1993-11-25 Oesko Gmbh Verfahren zum reinigen eines rauchgasstromes mit hilfe einer waschflüssigkeit
FR2716110B1 (fr) * 1994-02-16 1996-04-05 Roussel Uclaf Compositions cosmétiques ou pharmaceutiques comprenant des liposomes.
DE4430593C2 (de) * 1994-08-20 1999-01-14 Max Delbrueck Centrum Verfahren zur Herstellung von Liposomal verkapseltem Taxol
WO1996040064A1 (en) * 1995-06-07 1996-12-19 Nexstar Pharmaceuticals, Inc. Liposomal cyclosporin formulations as agents for immunosuppression and multiple drug resistant indications

Also Published As

Publication number Publication date
AR011682A1 (es) 2000-08-30
PL335208A1 (en) 2000-04-10
WO1998036735A1 (en) 1998-08-27
DE69821001D1 (de) 2004-02-12
CA2285985C (en) 2008-01-29
JP2001519775A (ja) 2001-10-23
TR199901987T2 (xx) 1999-11-22
DE69821001T2 (de) 2004-11-11
CN1255057A (zh) 2000-05-31
KR100515249B1 (ko) 2005-09-16
HUP0000910A2 (hu) 2000-10-28
CZ292699A3 (cs) 2000-01-12
UA63939C2 (uk) 2004-02-16
ES2213894T3 (es) 2004-09-01
IT1289939B1 (it) 1998-10-19
ITMI970363A1 (it) 1998-08-20
JP4299369B2 (ja) 2009-07-22
EA002281B1 (ru) 2002-02-28
IL131354A (en) 2010-06-30
ZA981354B (en) 1998-08-17
BG103739A (en) 2000-06-30
EA199900750A1 (ru) 2000-04-24
EP0973505A1 (en) 2000-01-26
CA2285985A1 (en) 1998-08-27
ATE257374T1 (de) 2004-01-15
GEP20022751B (en) 2002-08-26
DK0973505T3 (da) 2004-05-03
CZ296700B6 (cs) 2006-05-17
CN1135969C (zh) 2004-01-28
HU225594B1 (en) 2007-05-02
SK111199A3 (en) 2000-06-12
PT973505E (pt) 2004-05-31
HUP0000910A3 (en) 2000-11-28
AU740619B2 (en) 2001-11-08
BG64367B1 (bg) 2004-12-30
AU6398798A (en) 1998-09-09
US6337087B1 (en) 2002-01-08
KR20000075480A (ko) 2000-12-15
EP0973505B1 (en) 2004-01-07
SK282905B6 (sk) 2003-01-09
IL131354A0 (en) 2001-01-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US5380531A (en) Accumulations of amino acids and peptides into liposomes
EP0231261B1 (en) Multilamellar liposomes having improved trapping efficiencies
EP0981332B1 (en) Pharmaceutical preparation comprising lyophilized liposomes encapsulating an active principle which is highly insoluble in water, and the process for preparing the said preparation
PL190987B1 (pl) Sposób wytwarzania wodnej kompozycji farmaceutycznej
EP1757270A1 (en) Liposomal formulations
JPH04505616A (ja) プロトン勾配によるリポソームへの薬剤の蓄積
CA2279259A1 (en) Pain reducing parenteral liposome formulation
MXPA99007683A (en) Aqueous pharmaceutical composition comprising an active ingredient which is highly insoluble in water
JPS63501569A (ja) アルファトコフェロ−ルをベ−スとした小胞体
JPH07100367A (ja) ステロールベシクル中への化合物の捕捉方法