PL184403B1 - Sposób wytwarzania klawamów - Google Patents
Sposób wytwarzania klawamówInfo
- Publication number
- PL184403B1 PL184403B1 PL95320662A PL32066295A PL184403B1 PL 184403 B1 PL184403 B1 PL 184403B1 PL 95320662 A PL95320662 A PL 95320662A PL 32066295 A PL32066295 A PL 32066295A PL 184403 B1 PL184403 B1 PL 184403B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- ammonia
- fermentation
- clavulanic acid
- urea
- compound
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P17/00—Preparation of heterocyclic carbon compounds with only O, N, S, Se or Te as ring hetero atoms
- C12P17/18—Preparation of heterocyclic carbon compounds with only O, N, S, Se or Te as ring hetero atoms containing at least two hetero rings condensed among themselves or condensed with a common carbocyclic ring system, e.g. rifamycin
- C12P17/188—Heterocyclic compound containing in the condensed system at least one hetero ring having nitrogen atoms and oxygen atoms as the only ring heteroatoms
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/8215—Microorganisms
- Y10S435/822—Microorganisms using bacteria or actinomycetales
- Y10S435/886—Streptomyces
Landscapes
- Organic Chemistry (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Nitrogen And Oxygen Or Sulfur-Condensed Heterocyclic Ring Systems (AREA)
- Catalysts (AREA)
- Saccharide Compounds (AREA)
- Transition And Organic Metals Composition Catalysts For Addition Polymerization (AREA)
- Medicines Containing Plant Substances (AREA)
Abstract
1. Sposób wytwarzania klawamów przez fermentacje mikroorganizmów rodzaju Streptomyces wytwarzajacych klawamy w odpowiednim srodowisku, znamienny tym, ze w fermentatorze stosuje sie takie warunki, w których podczas fermentacji utrzymuje sie poziom amoniaku ponizej 50 µg/ml dla unikniecia represji ureazy. PL
Description
Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania klawamów. Za pomocą organizmów z odpowiednimi szlakami biosyntezy wytwarza się kwas klawulanowy i inne klawamy, w tym również te, które wykazują silne działanie hamujące aktywność β-laktamazy.
Drobnoustroje, zwłaszcza Streptomyces sp., wytwarzają szereg antybiotyków, w tym kwas klawulanowy i inne klawamy, cefalosporyny i penicyliny
Kwas klawulanowy jest ważnym inhibitorem β-laktamazy, który stanowi podstawowy składnik antybiotyku dostępnego pod nazwą Augmentin (znak towarowy SmithKline Beecham pic). W skali przemysłowej kwas klawulanowy wytwarzany jest przez fermentację
184 403
Streptomyces clavuligerus. Odpowiedni ośrodek fermentacji do wytwarzania kwasu klawulanowego ujawniony jest w brytyjskim opisie patentowym nr 1 508 977
Jakkolwiek kwas klawulanowy i inne klawamy wytwarzać można w zadowalających ilościach znanymi sposobami, istnieje zapotrzebowanie na zwiększenie miana kwasu klawulanowego w bulionie fermentacyjnym, tak aby produkt mógł być wytwarzany w sposób bardziej opłacalny. Jednym ze sposobów, w jaki problem ten można rozwiązać, jest poszukiwanie szczepów mutantowych Streptomyces clavuligerus ATCC 27064 lub innych drobnoustrojów wytwarzających kwas klawulanowy, zapewniających uzyskanie wyższego miana. Dotychczas opublikowano niewiele danych odnośnie usprawnień procesu umożliwiających uzyskanie wyższego miana kwasu klawulanowego poprzez zmianę warunków reakcji w fermentatorze.
Zazwyczaj jako źródło azotu stosuje się amoniak, gdyż manipulowanie doprowadzaniem azotu do fermentatora wywiera decydujący wpływ na wydajność kwasu klawulanowego. Jednakże stwierdzono, że sposoby wytwarzania kwasu klawulanowego na drodze fermentacji są szczególnie wrażliwe na stężenie amoniaku w układzie.
W związku z tym przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania klawamów przez fermentację mikroorganizmów rodzaju Streptomyces wytwarzających klawamy w odpowiednim środowisku, który polega na tym, ze w fermentatorze stosuje się takie warunki, w których podczas fermentacji utrzymuje się poziom amoniaku poniżej 50 pg/ml dla uniknięcia represji ureazy.
W sposobie według wynalazku, korzystnie, stosuje się amoniak pochodzący z kompleksowego źródła azotu.
W sposobie według wynalazku, korzystnie, jako klawam otrzymuje się kwas klawulanowy.
W sposobie według wynalazku, korzystnie, jako mikroorganizm stosuje się Streptomyces clavuligerus.
W sposobie według wynalazku, korzystnie, derepresję powoduje się nastawiając pH fermentacji dowolną odpowiednią zasadą inną niz amoniak, a zwłaszcza wodorotlenek sodowy.
W sposobie według wynalazku, korzystnie, niskie poziomy amoniaku utrzymuje się przez dodanie do fermentacji związku, który bezpośrednio lub pośrednio wpływa na stężenie amoniaku w fermentatorze.
W sposobie według wynalazku, korzystnie, stosuje się związek adsorbujący amoniak, a nie związek adsorbujący mocznik.
Inny sposób wytwarzania klawamów przez fermentację mikroorganizmów rodzaju Streptomyces wytwarzających klawamy w odpowiednim środowisku, polega według wynalazku na tym, że w fermentatorze w odpowiednim środowisku rozmnaża się organizmy produkujące klawamy i do fermentatora ewentualnie dodaje się związek, który bezpośrednio lub pośrednio wpływa na stężenie amoniaku lub mocznika w fermentatorze.
W sposobie według wynalazku, jako związek, który bezpośrednio lub pośrednio wpływa na stężenie amoniaku w fermentatorze, korzystnie, stosuje się zeolit lub fosforan amonowo-mągnezowy.
W sposobie według wynalazku, jako związek, który bezpośrednio lub pośrednio wpływa na stężenie mocznika w fermentatorze, korzystnie, stosuje się zeolit lub fosforan amonowo-magnezowy.
W sposobie według wynalazku, jako mikroorganizm produkujący klawamy stosuje się mikroorganizm, który jest konstytutywny względem ekspresji ureazy.
W sposobie według wynalazku, jako klawam, otrzymuje się kwas klawulanowy.
Tak więc, sposób wytwarzania klawamów na drodze fermentacji organizmów wytwarzających klawam w odpowiednim środowisku, charakteryzuje się tym, ze ilość amoniaku w fermentacji utrzymuje się na niskim poziomie w czasie fermentacji, tak aby uniknąć tłumienia jednego lub więcej z kluczowych enzymów przez amoniak.
Niski poziom oznacza stężenie poniżej 50 pg/ml. Poziom amoniaku poniżej 50 pg/ml należy utrzymywać przez odpowiedni okres czasu, dogodnie przez 1-10 godzin, aby umożliwić derepresję i biosyntezę kluczowych enzymów tłumionych przez amoniak. W przemysłowych warunkach fermentacji (przy poziomach amoniaku powyżej 100 pg/ml) stwierdzono, ze
184 403 amoniak działa w ten sposób iż tłumi szereg enzymów odgrywających rolę w metabolizmie azotu, w tym ureazy, która katalizuje konwersję mocznika do amoniaku i dwutlenku węgla (patrz V. Bascaran i inni, J. Gen. Microbiol. 1989, 135, 2465-2474). Jednakże badania te nie były powiązane z mianem antybiotyku i nie sugerują jakiegokolwiek związku z usprawnieniem wytwarzania klawamu lub kwasu klawulanowego.
W pracach, które doprowadziły do wynalazku, nieoczekiwanie stwierdzono, ze mocznik nagromadza się w bulionach fermentacyjnych przy wytwarzaniu kwasu klawulanowego. Mocznik wytwarzany jest w procesie syntezy klawulanu, z tym ze mogą również istnieć inne źródła mocznika.
W związku z tym stwierdzono, że jeśli spowoduje się, ze mocznik, który nagromadza się podczas wytwarzania kwasu klawulanowego, przereaguje z enzymem ureazą, miano kwasu klawulanowego znacząco wzrośnie, np. o wielkość rzędu 10%.
W związku z tym sposób wytwarzania klawamów na drodze fermentacji drobnoustrojów wytwarzających klawam w odpowiednim środowisku, charakteryzuje się tym, ze powoduje się reagowanie mocznika wytworzonego w procesie fermentacji z enzymem ureazą..
Ureaza może być wewnętrzna (endogenna) lub zewnętrzna (egzogenna), to znaczy może być wytwarzana przez drobnoustroje wytwarzające kwas klawulanowy (ureaza wewnętrzna) lub może być dodawana do układu (ureaza zewnętrzna).
Gdy pożądane jest stosowanie ureazy zewnętrznej, enzym można uzyskać z dowolnego źródła i dodać do reakcji fermentacji. Gdy stosuje się ureazę wewnętrzną może ona, w jednym rozwiązaniu według wynalazku, zostać uwolniona na drodze derepresyjnej ekspresji ureazy przez organizm wytwarzający kwas klawulanowy.
Taką derepresję można spowodować np. nastawiając pH za pomocą dowolnej zasady innej niz amoniak Zgodnie z takim sposobem stężenie amoniaku w fermentacji utrzymuje się korzystnie na niskim poziomie aż do zajścia derepresji. Taką derepresję można dogodnie śledzić obserwując zmiany w profilu pH ośrodka reakcji (patrz przykłady podane poniżej)
Zgodnie z powyższym sposobem środek regulujący pH może stanowić dowolna odpowiednia zasada inna niż amoniak, np. wodorotlenek metalu alkalicznego taki jak wodorotlenek sodowy Po zajściu derepresji i ekspresji ureazy dogodnie pH reguluje się w zwykły sposób, tak aby zapewnić dostarczenie wystarczającej ilości azotu. Wariantowo można jednak zastosować regulator pH inny niz amoniak w całej fermentacji.
Amoniak jest zasadniczo korzystny jako surowiec w typowej fermentacji, gdyż spełnia on podwójną rolę - reguluje pH i dostarcza azotu do fermentacji. Działa on także jako jonowa przeciwwaga w nagromadzaniu się klawulanianu. Jakkolwiek korzyści związane z derepresją enzymów tłumionych przez amoniak osiągnąć można dzięki zastosowaniu wariantowego regulatora pH w części fermentacji, to można to również uzyskać stosując wariantowy regulator pH, a następnie wprowadzając niezbędny azot do wsadu fermentacyjnego lub dodając sól amonową.
Kolejny sposób derepresji ureazy obejmuje nastawianie ilości kompleksowego źródła azotu, które znajduje się lub jest dodawane do fermentacji. Amoniak uwalniany w wyniku odaminowania kompleksowego źródła azotu będzie tłumić ureazę. W związku z tym nastawianie ilości biorących udział w fermentacji łub charakterystyki ich uwalniania będą wpływać na derepresję ureazy.
Kolejny sposób zwiększania miana kwasu klawulanowego polega na dodawaniu do reakcji fermentacji dowolnego odpowiedniego związku, który wpływa bezpośrednio lub pośrednio na stężenie amoniaku lub mocznika w fermentacji.
Jednym ze sposobów, w jaki można to osiągnąć, jest dodawanie związku takiego jak zeolit, który może adsorbować amoniak zmniejszając w ten sposób jego stężenie Do odpowiednich odczynników adsorbujących amoniak należą związki zdolne do wytrącania amoniaku w postaci kompleksowej soli, takie jak fosforan amonowo-magnezowy.
Kolejnym sposobem obniżania stężenia mocznika jest dodawanie do ośrodka farmaceutycznego związku, który bezpośrednio lub pośrednio zwiększa ekspresję ureazy przez organizmy wytwarzające kwas klawulanowy.
Manipulacje genetyczne lub sposoby poprawy szczepów można również zastosować do zwiększenia poziomów wewnętrznej ureazy produkowanej przez drobnoustroje wytwarzające
184 403 kwas klawulanowy. Tak np. poprawę szczepu [np. na drodze mutagenezy, a następnie selekcji na specyficznych ośrodkach, np. takich, które zawierają związek metyloamoniowy (Microbiological Reviews 1989, 53, 85-108)] wykorzystać można do wytwarzania szczepu mutantowego drobnoustroju wytwarzającego kwas klawulanowy, konstytutywnego względem ekspresji ureazy, tak że ureaza nie jest w znaczącym stopniu tłumiona w obecności amoniaku. Podobne wyniki uzyskać można technikami ukierunkowanej manipulacji genetycznej obejmującymi manipulowanie genem ureazy, tak aby wpłynąć na jego regulację, np. powodując wspólną ekspresję z enzymem odgrywającym rolę na szlaku biosyntezy kwasu klawulanowego.
Zaletą powyższych sposobów jest to, ze umożliwiają znaczące zwiększenie miana kwasu klawulanowego. Kwas klawulanowy można oddzielać i oczyszczać standardowymi technikami.
Poniższe przykłady ilustrują wynalazek. W przykładach, o ile nie zaznaczono tego inaczej, wykorzystano sposoby i standardowe techniki opisane w pracy Sambrook i inni (1989) Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2 wydanie.
Przykład 1. Wpływ doboru regulatora pH na miano kwasu klawulanowego
W fermentacji Streptomyces clavuligerus w skali 1000 litrów (5% inokulum zaszczepiającego fermentację, 20-60 g/litr białka w postaci mączki sojowej. 1-3% dekstryny, 1-5% oleju roślinnego oraz zestaw pierwiastków śladowych z utrzymywaniem pH na poziomie 6,8) wydajność kwasu klawulanowego można zwiększyć o 8% dobierając regulator pH.
Jeśli 2,5N NaOH zastosuje się zamiast amoniaku do utrzymywania pH na poziomie 6,8 na początku fermentacji, na profilu pH zaobserwuje się dwa piki. Pierwszy odpowiada odaminowaniu białka sojowego, w wyniku którego następuje uwolnienie amoniaku i wzrost pH. Drugi spowodowany jest derepresją ureazy, co również powoduje uwalnianie amoniaku. Po zaobserwowaniu drugiego piku (co można potwierdzić nie wykrycie mocznika metodami kolorymetrycznymi) regulator pH ponownie zmienia się na amoniak, aby zapewnić wystarczającą ilość azotu w środowisku reakcji.
Przykład 2. Wytwarzanie drobnoustrojów konstytutywnych względem ureazy
Uzyskać można zmutowane szczepy S. clavuligerus, które konstytutywnie eksprymują ureazę. Spory poddane działaniu mutagenu (takiego jak promieniowanie UV lub wystawienie na działanie nitrozoguanidyny) wysiewa się na agarze zawierającym związek metyloamoniowy i mocznik. W agarze mocznik stanowi jedyne źródło węgla i azotu Związek metyloamoniowy nie może być metabolizowany, ale jest rozpoznawany przez organizm tak jak amoniak, w związku z czym wywiera działanie tłumiące na ekspresję ureazy.
Spory mutantowe zdolne do rozwoju na takiej pożywce można wybrać. Eksprymują one ureazę w konstytutywny sposób w fermentacji i zapewniają doskonałą wydajność kwasu klawulanowego.
184 403
Departament Wydawnictw UP RP. Nakład 50 egz Cena 2,00 zł.
Claims (14)
- Zastrzeżenia patentowe1. Sposób wytwarzania klawamów przez fermentację mikroorganizmów rodzaju Streptomyces wytwarzających klawamy w odpowiednim środowisku, znamienny tym. ze w fermentatorze stosuje się takie warunki, w których podczas fermentacji utrzymuje się poziom amoniaku poniżej 50 pg/ml dla uniknięcia represji ureazy.
- 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym. ze stosuje się amoniak pochodzący z kompleksowego źródła azotu.
- 3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym. ze jako klawam otrzymuje się kwas klawulanowy.
- 4. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym. ze jako mikroorganizm stosuje się Streptomyces clavuligerus
- 5. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym. ze derepresję powoduje się nastawiając pH fermentacji dowolną odpowiednią zasadą inną niz amoniak.
- 6. Sposób według zastrz. 5, znamienny tym. ze jako zasadę stosuje się wodorotlenek sodowy.
- 7. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym. ze niskie poziomy amoniaku utrzymuje się przez dodanie do fermentacji związku, który bezpośrednio lub pośrednio wpływa na stężenie amoniaku w fermentatorze. ,
- 8. Sposób według zastrz. 7, znamienny tym. ze stosuje się związek adsorbujący amoniak, a nie związek adsorbujący mocznik.
- 9. Sposób wytwarzania klawamów przez fermentację mikroorganizmów rodzaju Streptomyces wytwarzających klawamy w odpowiednim środowisku, znamienny tym. że w fermentatorze w odpowiednim środowisku rozmnaża się organizmy produkujące klawamy i do fermentatora ewentualnie dodaje się związek, który bezpośrednio lub pośrednio wpływa na stężenie amoniaku lub mocznika w fermentatorze.
- 10. Sposób według zastrz. 9, znamienny tym. że jako związek, który bezpośrednio lub pośrednio wpływa na stężenie amoniaku w fermentatorze korzystnie stosuje się zeolit lub fosforan amonowo-magnezowy.
- 11. Sposób według zastrz. 9, znamienny tym. ze jako związek, który bezpośrednio lub pośrednio wpływa na stężenie mocznika w fermentatorze korzystnie stosuje się zeolit lub fosforan amonowo-magnezowy.
- 12. Sposób według zastrz 9, znamienny tym. ze jako mikroorganizmy produkujące klawamy stosuje się mikroorganizm, który jest konstytutywny względem ekspresji ureazy
- 13. Sposób według zastrz. 9, znamienny tym. ze jako klawam otrzymuje się kwas klawulanowy.
- 14. Sposób według zastrz. 9, znamienny tym. że jako mikroorganizm stosuje się Streptomyces clavuligerus.
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| GBGB9424950.5A GB9424950D0 (en) | 1994-12-10 | 1994-12-10 | Novel process |
| PCT/EP1995/004888 WO1996018743A1 (en) | 1994-12-10 | 1995-12-07 | Process for the fermentative preparation of clavam derivatives whereby the levels of ammonia and urea in the fermentation medium are kept low |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL320662A1 PL320662A1 (en) | 1997-10-13 |
| PL184403B1 true PL184403B1 (pl) | 2002-10-31 |
Family
ID=10765725
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL95320662A PL184403B1 (pl) | 1994-12-10 | 1995-12-07 | Sposób wytwarzania klawamów |
Country Status (21)
| Country | Link |
|---|---|
| US (2) | US5985624A (pl) |
| EP (1) | EP0796340B1 (pl) |
| JP (1) | JP3916251B2 (pl) |
| KR (1) | KR100411839B1 (pl) |
| CN (1) | CN1119423C (pl) |
| AT (1) | ATE233322T1 (pl) |
| AU (1) | AU702660B2 (pl) |
| BR (1) | BR9509878A (pl) |
| CA (1) | CA2207411A1 (pl) |
| CZ (1) | CZ292673B6 (pl) |
| DE (1) | DE69529765T2 (pl) |
| DK (1) | DK0796340T3 (pl) |
| ES (1) | ES2193207T3 (pl) |
| FI (1) | FI972446A7 (pl) |
| GB (1) | GB9424950D0 (pl) |
| HU (1) | HU221755B1 (pl) |
| MX (1) | MX9704279A (pl) |
| NO (1) | NO319278B1 (pl) |
| NZ (1) | NZ298035A (pl) |
| PL (1) | PL184403B1 (pl) |
| WO (1) | WO1996018743A1 (pl) |
Families Citing this family (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| AR015825A1 (es) * | 1997-05-28 | 2001-05-30 | Gist Brocades Bv | Produccion fermentativa de acido clavulanico bajo condiciones controladas de fosfato |
| US6440708B1 (en) * | 1998-09-29 | 2002-08-27 | Dsm N.V. | Fermentation of clavulanic acid at a controlled level of ammonia |
| CN1198940C (zh) * | 1998-09-29 | 2005-04-27 | Dsm公司 | 在控制氨水平条件下的棒酸发酵 |
| JP2003304893A (ja) * | 2002-04-16 | 2003-10-28 | Sumitomo Heavy Ind Ltd | 有機酸の製造方法及び製造装置並びに有機酸の保存方法 |
| US7790231B2 (en) * | 2003-07-10 | 2010-09-07 | Brewer Science Inc. | Automated process and apparatus for planarization of topographical surfaces |
Family Cites Families (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| GB1508977A (en) * | 1974-04-20 | 1978-04-26 | Beecham Group Ltd | Beta-lactam antibiotic from streptomyces clavuligerus |
| US4110165A (en) * | 1974-04-20 | 1978-08-29 | Beecham Group Limited | Process for the production of clavulanic acid |
| US5100635A (en) * | 1990-07-31 | 1992-03-31 | The Boc Group, Inc. | Carbon dioxide production from combustion exhaust gases with nitrogen and argon by-product recovery |
| JP3558295B2 (ja) * | 1992-12-02 | 2004-08-25 | スミスクライン・ビーチャム・パブリック・リミテッド・カンパニー | クラブラン酸の製法 |
-
1994
- 1994-12-10 GB GBGB9424950.5A patent/GB9424950D0/en active Pending
-
1995
- 1995-12-07 CN CN95196726A patent/CN1119423C/zh not_active Expired - Fee Related
- 1995-12-07 KR KR1019970703840A patent/KR100411839B1/ko not_active Expired - Fee Related
- 1995-12-07 FI FI972446A patent/FI972446A7/fi not_active IP Right Cessation
- 1995-12-07 PL PL95320662A patent/PL184403B1/pl not_active IP Right Cessation
- 1995-12-07 JP JP51825196A patent/JP3916251B2/ja not_active Expired - Fee Related
- 1995-12-07 ES ES95942115T patent/ES2193207T3/es not_active Expired - Lifetime
- 1995-12-07 US US08/860,043 patent/US5985624A/en not_active Expired - Lifetime
- 1995-12-07 MX MX9704279A patent/MX9704279A/es not_active IP Right Cessation
- 1995-12-07 HU HU9702106A patent/HU221755B1/hu not_active IP Right Cessation
- 1995-12-07 WO PCT/EP1995/004888 patent/WO1996018743A1/en not_active Ceased
- 1995-12-07 AT AT95942115T patent/ATE233322T1/de not_active IP Right Cessation
- 1995-12-07 NZ NZ298035A patent/NZ298035A/xx unknown
- 1995-12-07 EP EP95942115A patent/EP0796340B1/en not_active Revoked
- 1995-12-07 DE DE69529765T patent/DE69529765T2/de not_active Revoked
- 1995-12-07 DK DK95942115T patent/DK0796340T3/da active
- 1995-12-07 CA CA002207411A patent/CA2207411A1/en not_active Abandoned
- 1995-12-07 AU AU43432/96A patent/AU702660B2/en not_active Ceased
- 1995-12-07 BR BR9509878A patent/BR9509878A/pt not_active Application Discontinuation
- 1995-12-07 CZ CZ19971771A patent/CZ292673B6/cs not_active IP Right Cessation
-
1997
- 1997-06-09 NO NO19972647A patent/NO319278B1/no unknown
-
1999
- 1999-09-29 US US09/408,340 patent/US6235506B1/en not_active Expired - Fee Related
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| US5985624A (en) | 1999-11-16 |
| KR100411839B1 (ko) | 2004-02-18 |
| WO1996018743A1 (en) | 1996-06-20 |
| FI972446L (fi) | 1997-06-09 |
| DE69529765D1 (de) | 2003-04-03 |
| DK0796340T3 (da) | 2003-05-05 |
| PL320662A1 (en) | 1997-10-13 |
| CN1169162A (zh) | 1997-12-31 |
| AU702660B2 (en) | 1999-02-25 |
| JP3916251B2 (ja) | 2007-05-16 |
| MX9704279A (es) | 1997-09-30 |
| GB9424950D0 (en) | 1995-02-08 |
| ATE233322T1 (de) | 2003-03-15 |
| FI972446A0 (fi) | 1997-06-09 |
| ES2193207T3 (es) | 2003-11-01 |
| NO972647D0 (no) | 1997-06-09 |
| CZ292673B6 (cs) | 2003-11-12 |
| US6235506B1 (en) | 2001-05-22 |
| HU221755B1 (hu) | 2002-12-28 |
| NO972647L (no) | 1997-06-09 |
| DE69529765T2 (de) | 2003-10-16 |
| FI972446A7 (fi) | 1997-06-09 |
| AU4343296A (en) | 1996-07-03 |
| HUT77082A (hu) | 1998-03-02 |
| CZ177197A3 (en) | 1997-09-17 |
| JPH10510426A (ja) | 1998-10-13 |
| NO319278B1 (no) | 2005-07-11 |
| EP0796340B1 (en) | 2003-02-26 |
| CN1119423C (zh) | 2003-08-27 |
| EP0796340A1 (en) | 1997-09-24 |
| NZ298035A (en) | 1999-01-28 |
| CA2207411A1 (en) | 1996-06-20 |
| BR9509878A (pt) | 1997-11-25 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| JP3036930B2 (ja) | 発酵法によるl−イソロイシンの製造法 | |
| Mayer et al. | Simultaneous production and decomposition of clavulanic acid during Streptomyces clavuligerus cultivations | |
| Pruess et al. | Ro 22-5417, A NEW CLAVAM ANTIBIOTIC FROM STREPTOMYCES CLAVULIGERUS I. DISCOVERY AND BIOLOGICAL ACTIVITY | |
| JPH05304969A (ja) | 発酵法によるアミノ酸の製造法 | |
| HU214909B (hu) | Eljárás L-triptofán előállítására | |
| US4510246A (en) | Isolation of cyclase, epimerase and a ring expansion enzyme for producing unnatural cephalosporins | |
| EP0092709B1 (en) | Process for producing l-hystidine by fermentation and microorganisms therefor | |
| PL184403B1 (pl) | Sposób wytwarzania klawamów | |
| Maranesi et al. | Utilization of vegetable oil in the production of clavulanic acid by Streptomyces clavuligerus ATCC 27064 | |
| Fernandez et al. | Stimulatory effect of growth in the presence of alcohols on biotransformation of penicillin G into cephalosporin-type antibiotics by resting cells of Streptomyces clavuligerus NP1 | |
| US4487761A (en) | Dopamine β-hydroxylase inhibitors | |
| Williamson et al. | The biosynthesis of thienamycin and related carbapenems | |
| Wilson et al. | Northienamycin and 8-epi-thienamycin, new carbapenems from Streptomyces cattleya | |
| US6277609B1 (en) | Method to produce biotin | |
| NAKAMURA et al. | A novel naturally occurring carbapenem antibiotic, AB-110-D, produced by Kitasatosporia papulosa novo sp. | |
| EP0673432B1 (en) | Process for preparing clavulanic acid | |
| US4908443A (en) | 7-Beta-substituted 3-lower alkanoylacetoxy-methyl-7-alpha-methoxy-3-cephem-4-carboxylic acid | |
| Okachi et al. | Enzymatic synthesis of penicillins and cephalosporins by penicillin acylase | |
| Gorman et al. | β-Lactam antibiotics | |
| KR830001259B1 (ko) | 미생물에 의한 l-글루타민의 제조방법 | |
| EP0209363B1 (en) | Heteropeptides, intermediates in the biosynthesis of penicillins | |
| Gorman et al. | B-LACTAM ANTIBIOTICS | |
| Svensson et al. | Glycerol catabolite regulation of d-cycloserine production in Streptomyces garyphalus | |
| WO1993003038A1 (en) | Novel cholesterol lowering compound | |
| Roh et al. | Biosynthesis of β-lactam antibiotics by cell-free extract from Lysobacter lactamgenus |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| LAPS | Decisions on the lapse of the protection rights |
Effective date: 20061207 |