PL165045B1 - Sposób klarowania dekstryny ryzowej do zastosowania w doustnych roztworach rehydracyjnych PL - Google Patents

Sposób klarowania dekstryny ryzowej do zastosowania w doustnych roztworach rehydracyjnych PL

Info

Publication number
PL165045B1
PL165045B1 PL91289725A PL28972591A PL165045B1 PL 165045 B1 PL165045 B1 PL 165045B1 PL 91289725 A PL91289725 A PL 91289725A PL 28972591 A PL28972591 A PL 28972591A PL 165045 B1 PL165045 B1 PL 165045B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
rice
dextrin
glucose
solution
oral rehydration
Prior art date
Application number
PL91289725A
Other languages
English (en)
Other versions
PL289725A1 (en
Inventor
Michael C Tao
Richard E Litov
John R Euber
Salim S Akrabawi
J Roberto Moran
Original Assignee
Bristol Myers Squibb Co
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Bristol Myers Squibb Co filed Critical Bristol Myers Squibb Co
Publication of PL289725A1 publication Critical patent/PL289725A1/xx
Publication of PL165045B1 publication Critical patent/PL165045B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C08ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08BPOLYSACCHARIDES; DERIVATIVES THEREOF
    • C08B30/00Preparation of starch, degraded or non-chemically modified starch, amylose, or amylopectin
    • C08B30/12Degraded, destructured or non-chemically modified starch, e.g. mechanically, enzymatically or by irradiation; Bleaching of starch
    • C08B30/18Dextrin, e.g. yellow canari, white dextrin, amylodextrin or maltodextrin; Methods of depolymerisation, e.g. by irradiation or mechanically
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23LFOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L29/00Foods or foodstuffs containing additives; Preparation or treatment thereof
    • A23L29/30Foods or foodstuffs containing additives; Preparation or treatment thereof containing carbohydrate syrups; containing sugars; containing sugar alcohols, e.g. xylitol; containing starch hydrolysates, e.g. dextrin
    • A23L29/35Degradation products of starch, e.g. hydrolysates, dextrins; Enzymatically modified starches
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/70Carbohydrates; Sugars; Derivatives thereof
    • A61K31/715Polysaccharides, i.e. having more than five saccharide radicals attached to each other by glycosidic linkages; Derivatives thereof, e.g. ethers, esters
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K33/00Medicinal preparations containing inorganic active ingredients
    • A61K33/14Alkali metal chlorides; Alkaline earth metal chlorides
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P1/00Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system
    • A61P1/12Antidiarrhoeals

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Inorganic Chemistry (AREA)
  • Nutrition Science (AREA)
  • Materials Engineering (AREA)
  • Crystallography & Structural Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Medicines Containing Plant Substances (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Cereal-Derived Products (AREA)
  • Coloring Foods And Improving Nutritive Qualities (AREA)

Abstract

1. Sposób klarowania dekstryny ryzowej do zastosowania w doustnych roztworach rehyda- cyjnych, znamienny tym, ze a / filtruje sie z solubilizowana frakcje weglowodanów ryzowych otrzymana z maki ryzowej droga enzymatycznej hydrolizy przy neutralnym pH z uzyciem dodatku filtracyjnego w temperaturze 35°C do 50°C, po czym b / przesacz poddaje sie nastepnej filtracji w temperaturze powyzej 80°C z uzyciem dodatku filtracyjnego i wegla aktywowanego. PL

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób klarowania dekstryny ryżowej do zastosowania w doustnych roztworach rehydracyjnych. Rozwój doustnej terapii rehyddracyjnej (oral rehydration therapy - ORT) w chorobach biegunkowych niemowląt i dzieci zmniejszył znacznie związaną z tym zachorowalność i śmiertelność, zwłaszcza w mniej rozwiniętych krajach, gdzie stanowi ona podstawowy sposób leczenia.
Doustne roztwory (oraz rehydration solutions - ORS) stosowane w tym leczeniu na ogół składają się z mieszaniny elektrolitów i składnika węglowodanowego takiego jak glikoza lub sacharoza. Amerykańska Akademia Pediatrii (The American Academy of Pediatrics) zaleca glikozę w ilości 2,0 do 2,5% wagowych, potas 2,0 milirównoważników/litr, aniony takie jak chlorki i jako zasady (octany, mleczany, cytryniany czy wodorowęglany), sód 75 do 90 milirównoważników/litr dla silnego odwodnienia i sód 40 do 60 milirównoważników w celu zapobieżenia odwodnieniu lub utrzymania uwodnienia (1985, Pediatrics, 75:358).
Światowa Organizacja Zdrowia (The World Health Organisation-WHO/Unicef) aktualnie zaleca, aby doustny roztwór rehydracyjny zawierał sodu 90 milirównoważników/litr, potasu 20 milirównoważników/litr, Cl 80 milirównoważników/litr, cytrynianu 30 milirównoważników/litr lub wodorowęglanu 30 milirównoważników/litr i glikozy 110 milirównoważników/litr. Preparaty WHO wykazały zmniejszenie zachorowalności i śmiertelności w przypadkach ostrych chorób biegunkowych, lecz nasilenie biegunki w sensie objętości i częstości stolca i czasu trwania choroby nie uległo zmniejszeniu.
W preparatach WHO badano zastąpienie glikozy innymi węglowodanami.
Lebenthal i in. w J. Pediatrics 103: 29-34 (1983) przedstawili studia skuteczności trzech syropowych cukrów zbożowych (dekstryn), zawierających polimery glikozy o rozmaitej długości posiadające równoważniki dekstrozy 10,15 i 24 i ustalili, że są one odpowiednie jako samodzielne źródło węglowodanu w doustnej terapii rehydracyjnej (ORT). Ustalono również, że doustne roztwory rehydracyjne (ORS), w których glikozę zastąpiono ryżem lub innymi źródłami skrobi są skuteczne, o czym donieśli Carpenter i in. w New England Journal of Meficine, 319: 1346-1348
165 045 3 (1988). W szczególności doustne roztwory rehydracyjne oparte na ryżu okazały się skuteczne, o czym doniesiono w następujących publikacjach:
- Patra i in. W Archives of Disease in Childhood, 57:910-912(1982), „Is Oval Rice Electrolyte Solution Superior to Glucose Electrolyte Solution in Infantile Diarrhoea?“.
- Molla i in. The Lancet, 1317-1319 (1982), „Rice-Powder Electrolyte Solution as Oral Therapy in Diarrhoea Due to Vibrio Cholerae and Escherichia Coli“.
- El Mougi i in. Journal of Pediatric Gastsroenterology Trial on the Efficazy of Rice PowderBased Oral Rehydration Solution on the Outcome of Acute Diarrhea i Infants“.
- Molla i in. Journal of Gastroenterology and Nutrition, 8: 81-84 (1989); Tourning Off the Diarrhea: The Role of Food and ORS“.
Oparte na ryżu doustne roztwory rehydracyjne (ORS) według powyższych referencji zawierały 3 do 5% ryżu i miały poziom elektrolitów odpowiadający konwencjonalnym preparatom Światowej Organizacji Zdrowia (WHO). Wytwarzano je następująco:
- Patra i in. jak wyżej - Wystarczającą ilość sproszkowanego ryżu (wytworzonego przez rozdrobnienie niełuszczonego ryżu na ogrzanym piasku) rozpuszczono w płynie rehydracyjnym przed użyciem wytwarzając 5% doustny roztwór rehydracyjny;
- Molla i in. (1982) jak wyżej - Proszek ryżowy rozpuszczono najpierw w kilkuset mililitrach wody i gotowano w ciągu 1-2 minut wytwarzając jednolity roztwór, po czym dodano elektrolity, wytwarzając 3% doustny roztwór rehydracyjny;
- El Mougi i in., jak wyżej - Wystarczającą ilość proszku ryżowego rozpuszczono w 200ml gorącej wody, zagotowano w ciągu 10 minut aż do utworzenia żelu uzyskując półpłynny 5% doustny roztwór rehydracyjny;
- Molla i in. (1989) - jak wyżej - Wystarczającą ilość mąki ryżowej zagotowano w 1,1 litrze wody, który zmieszano z elektrolitami i uzyskano 4,5% doustny roztwór rehydracyjny.
Pierwszym problemem związanym że stosowaniem znanych, opartych na ryżu doustnych roztworów rehydracyjnych jest to, że muszą być one sporządzane krótko przed użyciem, ponieważ nie są one sterylne. Inny problem związany ze znanymi ryżowymi doustnymi roztworami rehydracyjnymi stanowi stosunkowo mała rozpuszczalność mąki ryżowej, co uniemożliwia wytwarzanie farmaceutycznie dobrych, krystalicznie klarownych (woda) doustnych roztworów rehydracyjnych.
Celem wynalazku jest dostarczenie dekstryny ryżowej do wytwarzania trwałych gotowych do użycia doustnych roztworów rehydracyjnych, w których składnikiem węglowodanowym jest dekstryna ryżowa, przy czym roztwory te powinny dawać w efekcie mniejsze wydzielanie stolca i lepszy bilans wodny i potasowy w okresie rehydracji.
Użycie dekstryny klarowanej według wynalazku daje ulepszone doustne roztwory rehydracyjne, zawierające mieszaninę potrzebnych elektrolitów połączonych z dekstryną ryżową. Wynalazek opiera się na odkryciu, że doustny roztwór rehydracyjny oparty na dekstrynie ryżowej u niemowląt z chroniczną biegunką działa lepiej niż oparty na glikozie, powodując zmniejszenie wydzielania stolca i wzmagając retencję wody. Dekstryna ryżowa ma również profil polimeru glikozowego, który dostarcza łatwiej przyswajalną glikozę niż dekstryna zbożowa czy mąka ryżowa.
Na schemacie przedstawiono diagram procesu klarowania dekstryny ryżowej według wynalazku.
Doustny roztwór rehydracyjny zawierający dekstrynę ryżową klarowaną według wynalazku wytwarza się przez rozpuszczenie w wodzie chlorków, potasu i sodu oraz zasad (octanów, mleczanów, cytrynianów czy wodorowęglanów).
165 045
Sposćb wytwarzania klarowanego syropu ryżowego /dekstryny ryżowej/ do stosowania w doustnym roztworze rehydracy/jnym
Węglowodan Nova + woda /30%, w/w, TS/
Ogrzać do 45°C pH do 6 za pomocą KOH +dodatek filtracyjny /7% Sil Flo
MO968 w stosunku do węglowodanu/
Pierwsza filtracja i—;Części nierozpuszczalne /odrzucić/
Części nierozpuszczalne /odrzucić/
-1-1 rzesącz + Dodatek filtaacyjny 1% Sil Flo MO968 w stosunku do węglowodanu/ + Węgiel aktywny /9% American Norit R1927 w stosunku do węglowodanu// Ogrzać do 90°C
Druga Jf ilr ac ja a
Przesącz
Ochłodzić pH do 4-4,8 /kwas solny/
Zatężyć i suszyć rczpylowo
Klarowany syrop ryżowy /Dekstryna ryżowa/
Sklarowaną dekstrynę ryżową ewentualnie wraz ze środkami smakowymi dodaje się do roztworu, który standaryzuje się oczyszczoną wodą w celu uzyskania 10 do 80 g/l, a korzystnie 10-35 g/l dekstryny ryżowej. Sód dodaje się do preparatu w ilości 20-100 milirównoważmków/litr, a korzystnie 40-60 milirównoważników/litr do leczenia ostrego odwodnienia, a do preparatów zapobiegających odwodnieniu lub utrzymaniu uwodnienia w ilości 75-90 milirównoważmków/litr.
Korzystną ilość potasu stanowi ilość 20-30 milirównoważników/litr w obrębie szerokiego zakresu stosowania 20-100 milirównoważników/litr. Anion chlorkowy korzystnie dodaje się w ilości 30-80 milirównoważników/litr w obrębie szerokiego zakresu stosowania 25-100 milirównoważników/litr. Zasadę wybraną z grupy składającej się z octanów, mleczanów, cytrynianów lub wodorowęglanów korzystnie dodaje się w ilości 25-40 milirównoważników/litr w obrębie szerokiego zakresu stosowania 20-50 mil^^<5wI^<^o^^^r^il^<^^^>/litr. Najkorzystniejsze oparte na dekstrynie ryżowej doustne roztwory rehydrujące w litrze zawierają: sodu 50 milirównoważników, potasu 25 milirównoważników, chlorków 45 milirównoważników, cytrynianów 34 milirównoważników i dekstryny ryżowej 30 g.
Profil polimeru glikozowego dekstryny ryżowej w gotowym doustnym roztworze rehydracyjnym składa się w 50-90% z ktrótkołańcuchowych polimerów glikozy o 2 do 6 jednostkach glikozy, korzystnie w 55-80%, a najkorzystniej w 65-75% (wag/wag).
165 045
Dekstrynę ryżową odpowiednią do stosowania w doustnych rozwtorach rehydracyjnych według wynalazku można otrzymać z solubilizowanej skrobi ryżowej według opisu patentowego Stanów Zjednoczonych Ameryki nr 4 830 861, włączonego w całości jako referencja do niniejszego opisu. Opisano tam postępowanie, w którym węglowodan w mące ryżowej solubilizuje się enzymami amylazy i oddziela się od nierozpuszczalnych protein ryżowych i węglowodanów przez odwirowanie. Otrzymana rozpuszczalna frakcja zawiera około 98% węglowodanu i mniej niż 1% ale więcej niż 0,1% protein. Materiał ten nie jest odpowiedni jako składnik węglowodanowy doustnych roztworów rehydracyjnych ze względu na śladowe ilości substancji ziarnistej i resztek protein, które wywołują problemy związane z pienieniem i brunatnieniem podczas obróbki i sterylizacji i tworzeniem się bardzo subtelnego osadu podczas przechowywania.
Solibilizowany ryżowy węglowodan według wspomnianego opisu patentowego Stanów Zjednoczonych Ameryki nr 4 830 861 według wynalazku poddaje się klarowaniu w procesie zawierającym następujące etapy:
a) filtrację solubilizowanej frakcji węglowodanu ryżowego otrzymanej z mąki ryżowej drogą hydrolizy enzymatycznej w neutralnym środowisku w temperaturze 35-50°C z dodatkiem filtracjnym, oraz
b) poddanie przesączu drugiemu filtrowaniu z użyciem dodatku filtracyjnego i węgla aktywnego w temperaturze wyższej niż 80°C.
W miarę potrzeby sklarowany roztwór może być wysuszony rozpryskowo po skorygowaniu pH do 4,0-4,8, a korzystnie 4,5. Stosuje się konwencjonalne dodatki filtracyjne takie jak amorficzna krzemionka (Silflow) z Sil Flo Croporation i węgiel aktywowany Darko S-51 z American Norit. Sklarowana dekstryna ryżowa według tego procesu może być wysuszona rozpryskowo, dając stałą ryżową dekstrynę zawierającą mniej niż 0,1% wagowych protein. Pierwsza filtracja zasadniczo zmniejsza zawartość protein do poziomu, przy którym produkt może być sterylizowany bez problemów związanych z pienieniem i brunatnieniem. Jednakże powstały doustny roztwór rehydracyjny nie może być zaakceptowany ze względu na niewystarczającą klarowność odpowiadającą wymaganiom dla klarownych roztworów.
Poddanie przesączu z pierwszej filtracji następnej filtracji z węglem aktywowanym w wysokiej temperaturze, korzystnie 80-95°C, a najkorzystniej 90-95°C,usuwa drobnoziarnisty osad i zmętnienie jakie on tworzy w węglowodanie po pierwszej filtracji. Wyniki z tabeli 1 przedstwiają poprawę klarowności jako rezultat drugiej filtracji powyżej 80°C.
Tabela 1
Wpływ temperatury filtracji na klarowność roztworów węglowodanów w temperaturze pokojowej i 90-95°C.
Temperatura filtracji °C Klarowność określona wizualnie a) (20%, wag/wag, TS) Klarowność określona spektrofotometrycznie a) (400 nm, 20% wag/wag, TS)
Temp. pokojowa 90-95°C Temp. pokojowa 90-95°C
40-45 klarowny mętny 0,012 0,385
60-65 klarowny mętny 0,013 0,271
70-75 klarowny mętny 0,020 0,138
80-85 klarowny klarowny 0,012 0,017
90-95 klarowny klarowny 0,013 0,015
a) Temperatura odnosi się do temperatury roztworu w momencie obserwacji i pomiaru.
Druga filtracja w temperaturze niższej niż 80°C nie powoduje usunięcia zmętnienia lub utworzonego osadu w sterylizowanych doustnych roztworach rehydracjnych. Krytyczność temperatury drugiej filtracji jeśli chodzi o klarowność ORS przedstawiono w tabeli 2, w której przedstawiono wyniki drugiej filtracji w temperaturze wysokiej (90°C) i niskiej (45°C).
165 045
Tabela 2
Wpływ temperatury na klarowność roztworów węglowodanu wytworzonego z zastosowałem drugiej filtracji w temperaturze 45°C i 90°C.
Temperatura procesu temperatura próbki Klarowność określana wizualnie (20% wag/wag, TS) Klarowność określona spektrofotometrycznie (400 nm, 20% wag/wag, TS)
Filtracja 45°C
Temperatura pokojowa klarowny 0,016
9O-95°Cal mętny 0,246
Ochłodzony do temp. pokojowej 61 lekkie zmętnienie 0,019
Filtracja 90°C
Temperatura pokojowa klarowny 0,010
9O-95°C°’ klarowny 0,015
Ochłodzony do temp. pokojowej bl klarowny 0,014
a) Roztwór umieszczono w łaźni o temperaturze 90-95°C na okres 20 minut i niezwłocznie określono klarowność
b) Roztwór umieszczono w łaźni o temperaturze 90-95°C po czym umieszczono w łaźni o temperaturze pokojowej.
Dostępne w handlu stałe składniki syropu ryżowego (dekstryna ryżowa) są odpowiednie dla wynalazku pod warunkiem, że nie zawierają więcej niż 0,1% wagowych protein lub innych materiałów ziarnistych i w których profil polimeru glikozowego składa się z 50 do 90% GP2 do GP6. Te, które zawierają więcej niż 0,1% wagowych protein lub innych materiałów ziarnistych poddaje się procesowi klarowania według wynalazku.
W tabeli 3 przedstawiono rozkład polimeru glikozowego stwierdzony w próbkach dekstryny ryżowej (RD) i dekstryny zbożowej (CD) o podobnych równoważnikach dekstryny. Porównano też z mąką ryżową (RF). Nieklarowana dekstryna ryżowa (RD-1) była mętna i miała słabe właściwości fizyczne. Dekstryny ryżowe według wynalazku (RD-2, RD-3, RD-4) były bardzo klarownymi syropami. Syrop dekstryny zbożowej był również klarowny, podczas gdy próbki mąki ryżowej były nierozpuszczalne i mętne.
Tabela 3
Profile polimerów glikozowych dekstryny ryżowej (RD), dekstryny zbożowej (CD) i mąki ryżowej (RF) w procentach wagowych
Polimerx/ Nieklarowana RD-1 RD-2 . Skala produkcyjna CD RF
RD-3 RD-4xx'
GP 1 4,1 9,6 6,0 4,7 7,4 0,0
GP 2 11,6 9,8 14,1 13,5 7,7 0,0
GP 3 15,0 13,0 16,8 16,8 9,1 0,0
GP 4 6,5 7,2 7,1 8,9 7,5 0,0
GP 5 19,6 8,9 21,2 16,6 7,6 0,0
GP 6 10,2 8,0 6,9 13,6 7,7 0,0
GP 7 32,9 43,4 27,8 25,9 53,0 100
x/ liczba określa ilość jednostek glikozy xx/ kliniczna
Porównanie dekstryny ryżowej i dekstryny zbożowej przy stosowaniu w doustnych roztworach rehydracyjnych.
Jak stwierdzono uprzednio, Światowa Organizacja Zdrowia (WHO) rekomenduje glikozę jako składnik węglowodanowy w doustnych roztworach dehydracyjnych (ORS) dodawany przy zastępowaniu wody i elektrolitów u niemowląt z silną biegunką. Glikoza zwiększa transport membranowy sodu, który z kolei umożliwia szybkie przyswajanie wody. Porównanie kliniczne doustnych roztworów rehydracyjnych dekstryny ryżowej i ORS glikozy wykazały, że ORS ryżowej dekstryny lepiej działa u niemowląt z biegunką niż preparaty z glikozą jako źródłem węglowodanów. W doustnej terapii rehydracyjnej stosowano również dekstrynę zbożową jako źródło węglowodanów (Lebenthal i in. jak wyżej). Jednak, jak wynika z dalszej analizy dekstryna ryżowa dostarcza łatwiej przyswajalną glikozę niż dekstryna zbożowa u niemowląt z chroniczną biegunką.
165 045
Zarówno dekstryna ryżowa jak i dekstryna zbożowa składają się z polimerów glikozy pochodzących z częściowej hydrolizy macierzystej skrobi. Trawienie tych polimerów glikozowych (GP) u niemowląt obejmuje enzymatyczne rozszczepienie do glikozy przez enzym amylazę, taką jak glikoamylaza przewodu pokarmowego. Enzym ten rozmieszczony jest w śluzówce jelita cienkiego i wykazuje tendencję do większej trwałości na uszkodzenia jelitowe wywołane biegunką. Disacharydy i inne niskocząsteczkowe polimery glikozy występujące w dekstrynach są korzystnym substratem dla glikoamylazy.
W tabeli 4 przedstawiono rozkład polimerów glikozy (GP) w dekstrynie ryżowej w mniejszych doustnych roztworach rehydracyjnych i w handlowo dostępnej dekstrynie zbożowej o podobnym równoważniku dekstrozowym.
Tabela 4
Porównanie ryżowych polimerów glikozowych ze zbożowymi polimerami glikozowymi
Rozkład w procentach wagowych
ryżowe GP zbożowe GP
Glikoza /GP 1 3,8 6,2
GP2-GP6 65,7 33,6
GP 6 30,5 60,1
Z rozkładu polimerów ryżowej dekstryny widać jasno, że procentowo większa część (65,7%) ogólnej ilości polimerów to polimery o krótkim łańcuhu składające się z 2-6 jednostek glikozy (GP-2 - GP6) w porównaniu z rozkładem w zbożowej dekstrynie (33,6%). Stąd dekstryny ryżowe są korzystniejszymi substratami od dekstryn zbożowych dla glikoamylazy głównego enzymu trawiącego w celu przyswojenia glikozy po zachorowaniach niemowląt na biegunkę.
W tabeli 5 przedstawiono wyniki hydrolizy enzymatycznej dekstryny ryżowej i zbożowej przez homogenizaty śluzówkowe. Do porównania tego enzymy otrzymano ze śliny, wyciągu z dwunastnicy i homogenizatu śluzówkowego z dwunastnicy kilkorga niemowląt i połączono. Pięćset mililitrów roztworu węglowodanu inkubowano z 100 ml homogenizatu z dwunastnicy i inkubowano w ciągu 3 godzin z wytrząsaniem w temperaturze 37°C. Po inkubacji mieszaniny zagrzano do 100°C na 5 minut, przepuszczono przez 4 warstwowe mikroporowate filtry i analizowano HPLC. Wyniki połączono w dwóch kategoriach polimerów glikozy GP/2-4/ i GP^5. Wyniki przedstawiono w tabeli 5.
Tabela 5
Hydroliza in vitro dekstryny ryżowej i zbożowej przez połączone homogenizaty śluzówkowe
Glikoza GP (2-4)^/ GP>5x/
Ryżowa Zbożowa + 0,74±0,19b/ + 0,22 ± 0,03b/ + 1,32±0,21a/ + 0,56±0,ł9b/ -2,16±0,16“/ -0,79±0,25b/
x/ jednostek glikozy a/ Wartości mające różne wskaźniki są znacząco różne
Widać, że dekstryna ryżowa wytwarza znacznie więcej glikozy i niskocząsteczkowych polimerów glikozy (GP) niż dekstryna zbożowa. Odpowiednio frakcję o wyższym ciężarze cząsteczkowym dekstryny ryżowej (GP>5) zmniejszyła się szybciej w porównaniu z frakcją o wyższym ciężarze cząsteczkowym dekstryny zbożowej. Wyniki te ilustrują, że dla ekstraktów ludzkiego enzymu ryżowe polimery glikozowe były lepszym podłożem w konwersji do glikozy i polimerów glikozy o krótkim łańcuchu niż zbożowe polimery glikozy.
Badanie tolerancji węglowodanu.
W tabeli 6 przedstawiono wyniki badań tolerancji węglowodanu szesnaściorga niemowląt z chroniczną biegunką. Postępowano w sposób następujący. Pacjentów przegłodzono w ciągu ośmiu godzin, po czym podano dwa gramy na kilogram 10% roztworu glikozy, dekstryny ryżowej i dekstryny zbożowej w losowej kolejności następnego ranka; Wszystkie trzy różne węglowodany były dobrze trawione i przyswojone.
165 045
Tabela 6
Maksymalna odpowiedź glikozy w surowicy i czas zaniku piku glikozy w surowicy po spożyciu doustnego roztworu rehydracyjnego (ORS) glikozy, dekstryny ryżowej i dekstryny zbożowej
Maksymalny wzrost zawartości glikozy w surowicy mg'D1 (x±SD) Czas zaniku piku zawartości glikozy w surowicy minuty (x±SD)
Glikoza 41,1 ±14,5-' 31,9 ± 7,5*
Dekstryna ryżowa 36,6± 7,3* 34,0±10,2*
Dekstryna zbożowa 7,6 ± 10,3* 52,5±25,7*
a/ wartości mające różne indeksy są wyraźnie różne (P< 0,02)
Jak widać maksymalny wzrost zawartości glikozy w surowicy jest wyraźnie większy w przypadku roztworu dekstryny ryżowej w porównaniu do przypadku roztworu dekstryny zbożowej.
W odniesieniu do poziomów glikozy w surowicy, czas zaniku piku w przypadku dekstryny ryżowej był wyraźnie krótszy niż w przypadku dekstryny zbożowej. Roztwory glikozy i 'dekstryny ryżowej wykazują podobne wzrosty zawartości glikozy w surowicy, jednak roztwory glikozy mają większe obciążenie osmotyczne w porównaniu do roztworów dekstryny, co może być problemem dla preparatów doustnych roztworów rehydracyjnych.
Krzywe odpowiedzi glikozy w surowicy wykazują, że powierzchnia pod krzywą jest wyraźnie większa w przypadku dekstryny ryżowej niż w przypadku dekstryny zbożowej podczas pierwszych 30-60 minut w próbie tolerancji (p> 0,05), ale nie 120 minut. Wyniki tych badań ilustrują, że dekstryna ryżowa ma większy wzrost maksymalnej zawartości glikozy w surowicy, krótszy czas zaniku od momentu piku glikozy i większą powierzchnię pod krzywą odpowiedzi glikozy w surowicy podczas pierwszych 30 do 60 minut badania niż dekstryna zbożowa. Wyniki te wykazują, że dekstryna ryżowa jest szybciej hydrolizowana i absorbowna niż dekstryna zbożowa. Tak więc dekstrynaryżowa dostarcza szybciej dostępnej glikozy niż dekstryna zbożowa w celu umożliwienia szybkiego przyswajania wody i sodu z doustnego roztworu rehydracyjnego.
Porównanie klarowanej dekstryny ryżowej, proszku z prażonego ryżu i mąki ryżowej.
Jak wspomniano uprzednio w doustnej terapii rehydracyjnej stosowano zarówno prażony ryż jak i mąkę ryżową. Jednakże prażony ryż i mąka ryżowa nie są odpowiednie jako źródło składnika węglowodanowego dla klarownych, trwałych podczas przechowywania, gotowych do użycia doustnych roztworów rehydracyjnych. Doustne roztwory rehydracyjne prażonego ryżu i mąki ryżowej nie mogą być sterylizowane bez problemów związanych z pienieniem i brunatnieniem w wyniku obróbki i sterylizacji produktów. Ponadto klarowne, gotowe do użytku doustne roztwory rehydracyjne nie mogą być preparowane z powodu stosunkowej nierozpuszczalności prażonego ryżu i mąki ryżowej. W końcu właściwości organoleptyczne prażonego ryżu i mąki ryżowej czynią je mniej pożądanymi niż dekstryna ryżowa dla doustnych roztworów rehydracyjnych. Wyniki porównawcze roztworów dekstryny ryżowej, proszku z ryżu prażonego i mąki ryżowej w stężeniu 3% wag/wag przedstawiono w następujących tabelach.
Tabela 7
Zawartość rozpuszczalnych substancji stałych w klarowanej dekstrynie ryżowej, proszku z prażonego ryżu i mące ryżowej w tmepertaurze 25°C przed i po obróbce cieplnej w temperaturze 80°C
Produkt Zawaratość rozpuszczalnych substancji stałych (% wag/wag)
Temperatura (°C)-/
25 (1) 25 (2)
Klarowana dekstryna ryżowa 100 100
Proszek z prażonego ryżu 13 20
Mąka ryżowa 4 2
80°C
a) Liczba w nawiasach odnosi się do pomiaru przed (1) i po (2) ogrzewaniu do
165 045
Tabela 8
Klarowność określona spekrtofotometrycznie roztworów dekstryny ryżowej, proszku prażonego ryżu i mąki zbożowej w temperaturze 25°C przed i po obróbce cieplnej w temperaturze 80°C
Produkt Klarowność spektrofotometrycznie (Absorbancja, 400 nm)
Temperatura (°C)al
25(1) 25(2)
Dekstryna ryżowa 0,002 0,(0)9
Proszek z prażonego ryżu 3,22 3,23
Mąka ryżowa 2,54 2,77
a) Liczba w nawiasach odnosi się do pomiaru przed (1) i po (2) ogrzewaniu do 80°C
Tabela 9
Badania organoleptyczne roztworów klarowanej dekstryny ryżowej, proszku z prażonego ryżu i mąki ryżowej w temperaturze 25°C przed i po obróbce cieplnej w temperaturze 80°C
Produkl/wliuściwość Opis
Temperatura (°C)al
25(1) 25(2)
Klarowana dekstryna ryżowa
Wygląd Podobny do wody, klarowny roztwór Taki sam
Zapach Bez zapachu Taki sam
Smak w ustach Proszek z prażonego ryżu Lekko słodki, jednorodny zapach w ustach jak woda Taki sam
Wygląd Opalizujący, zabarwiony na brunatno roztwór. Osad, liczne ciemne ziarna Taki sam
Zapach Silny zapach mąki przennej; lekko nieprzyjemny (siarkowy lub wilgotnego psa) Taki sam
Smak w ustach Mąka ryżowa Wyraźny smak mąki pszennej, jakby piasek, kleju roślinnego oklejającego gardło Taki sam
Wygląd Opalizujący, zabarwiony na biało roztwór, osad, nieliczne ciemne cząstki; wygląd szklistego ziarna Taki sam
Zapach Słaby zapach mąki pszennej Taki sam
Smak w ustach Slaby smak mąki pszennej, wyczuwalna w ustach Słaby smak mąki pszennej, wyczu-
ziarnistość walna w ustach ziarnistość jak kleju roślinnego, oklejającego gardłt
a) Liczba w nawiasach odnosi się do obserwacji przed (1) i po (2) ogrzaniu do 80°C.
Jak widać dekstryna ryżowa była całkowicie rozpuszczalna podczas gdy tylko nieznaczna część substancji stałych ryżu prażonego i mąki ryżowej była rozpuszczalna. Większa rozpuszczalność dekstryny ryżowej powoduje klarowność jak wykazano w tabelach 7 i 8. Sklarowany roztwór dekstryny ryżowej był klarowny „jak woda“, podczas gdy roztwory ryżu prażonego i mąki ryżowej były prawie mętne.
W badaniu organoleptycznym przedstawionym w tabeli 9 roztwór dekstryny ryżowej był zasadniczo różny od roztworów proszku z prażonego ryżu i mąki ryżowej pod względem wszystkich badanych właściwości. Obróbka cieplna (80°C) miała niewielkie działanie z wyjątkiem niewielkiego wpływu na smak w ustach roztworu mąki ryżowej.
Porównanie trawienia dekstryny ryżowej i mąki ryżowej przez enzymy przewodu pokarmowego.
Większość enzymów, których działanie obejmuje trawienie węglowodanów i wytwarzanie glikozy z polimerów glikozy to maltoza przewodu pokarmowego i amylaza trzustki. Jednak w ciągu pierwszych sześciu miesięcy życia amylaza trzustki jest nieobecna albo występuje w znikomym stężeniu. Stąd trawienie węglowodanów u niemowląt na początku zależne jest od amylazy śliny wraz z różnymi amylazami przewodu pokarmowego.
165 045
Choroba przewodu pokarmowego niemowląt wpływa na trawienie węglowodanów, ze względu na utratę enzymów spowodowaną chorobą zakaźną. Wprawdzie, po zachorowaniu infekcyjnym, aktywność maltazy pozostaje wysoka podczas gdy inne disacharydy ulegają silnemu zmniejszeniu. Ponadto na utratę węglowodanów wpływa niska aktywność amylazy trzustki u niemowląt do szóstego miesiąca życia.
W tabeli 10 przedstawiono porównanie strawienia maltazą dekstryny ryżowej (RD) i mąki ryżowej (RF). Trawienie maltazą przeprowadzono przez inkubowanie (37°C) 30 mg RD i RF z 20 jednostkami maltazy w łącznej objętości 1,0 ml w ciągu różnej długości czasów. Po inkubacji próbki umieszczano we wrzącej łaźni wodnej na okres 5 minut w celu inaktywacji enzymu. Trawione próbki odwirowywano w celu oddzielenia nierozpuszczalnych materiałów (na przykład RF) w supernatancie określano kolorymetryczne stężenie wolnej glikozy odczynnikiem Trindera oksydazy gliokzy (Sigma Chemical Co., St. Luis, MO).
Tabela 10
Hydroliza in vitro dekstryny ryżowej i mąki ryżowej przy pomocy maltazy
Podłoże Inkubacja z maltazą (minuty) Wytworzona glikoza (mg)01
Łączna01 Skorygowana01
Mąka ryżowa 0 (czysta) 0,00 0,00
5 0,03 0,03
10 0,00 0,00
20 0,00 0,00
40 0,03 0,03
Dekstryna ryżowa 0(czysta) 0,85 0,00
5 2,97 2,12
10 3,93 3,08
20 4,91 4,06
40 6,01 5,16
a) Przedstawia wartość z dwóch oddzielnych prób przy użyciu łącznie 20 jednostek maltazy i 30 mg podłoża;
b) Przedstawia łączną ilość wykrytej glikozy po inkubacji podłoża z maltazą;
c) Przedstawia ilość glikozy wytworzoną bezpośrednio jako wynik trawienia maltazą (tj. po oddzieleniu wolnej glikozy w nietrawionym podłożu).
Jak widać w próbkach RF po trawieniu maltazą w ciągu 4 minut nie stwierdzono obecności glikozy. Trawienie RD maltazą prowadzi natomiast do natychmiastowego wytwarzania gliozy, które wzrasta wraz ze wzrostem czasu inkubacji. Po oddzieleniu wolnej glikozy z niestrawionego podłoża RD od łącznej ilości glikozy w trawionej dekstrynie ryżowej, ilość uwolnionej glikozy jako bezpośredni produkt trawienia maltazą wynosi Od 2,12 do 5,16 mg czyli 7-17% całkowitej ilości RD. Wyniki te wykazują, że glikoza powstaje podczas trawienia maltazą RD ale nie RF.
Jak wspomniano wcześniej profil dekstryny ryżowej według wynalazku dla doustnych roztworów rehydracyjnych korzystnie składa się z 65 do 75% polimerów glikozy (GP) o 2 do 6 jednostkach glikozy. Mąka ryżowa nie ma polimerów glikozy o mniejszej ilości jednostek gliozy niż 7. Podczas inkubowania ryżowej dekstrozy (RD) i mąki ryżowej (RF) z ludzką glikoamylazą trzustki stwierdzono proporcjonalny wzrost zawartości GP 1 do GP 5, co mogłoby sugerować, że RD i RF są porównywalne pod względem trawienia przez amylazę trzustki, jednak jak stwierdzono wyżej amylaza trzustki nie jest ważna we wczesnym niemowlęctwie.
W tablei 11 przedstwiono porównanie ilości glikozy w roztworach RD i RF przed i po trawieniu ludzką amylazą trzustki, a nadmiar maltazy ilustruje, że RD powoduje znacznie wyższy poziom gliozy niż RF w porównywalnym czasie badania. Sprzężone trawienie enzymatyczne polegało na inkubowaniu 30 mg RD lub RF z 0,28 jednostek amylazy w założonym czasie, zagotowaniu próbek w ciągu 5 minut w celu inkatywacji amylazy i na następnej inkubacji mieszania z nadmiarem maltazy (50 jednostek) w celu konwersji dostępnej maltozy (GP2) i maltotriozy (GP3) w wolną glikozę. Trawione próbki odwirowano w celu oddzielenia materiałów nierozpuszczalnych (na przykład RF) i określono kolorymetrycznie stężenie wolnej glikozy.
165 045
Tabela 11
Hydroliza in vitro dekstryny ryżowej i mąki ryżowej amylazą z trzustki z następnym trawieniem maltazą w celu wytworzenia wolnej glikozy
Podkład Inkubacja z amylazy(minuty) Powstałej glikozy (mg)01 Łącznie1
Mąka ryżowa 0 (czysta) 0,00
2 1,16
5 2,01
10 3,10
20 5,65
40 8,83
Dekstryna ryżowa 0(czysta) 7,00
2 8,23
5 9,07
10 10,24
20 11,80
40 13,73
a) Przedstawia wartość dwóch oddzielnych prób przy użyciu łącznie 0,28 jednostek ludzkiej amylazy trzustki i 30 mg podkładu;
b) Przedstawia łączną ilość gliozy wykrytej po inkubacji podkładu z maltazą i amylazą.
Jak widać inkubacja RD i RF z nadmiarem samej maltazy (czysta) w rezultacie dała dużą ilość glikozy w próbkach RD (7 mg/30 mg RD), 23% całkowitej ilości RD, ale nie dała żadnej glikozy z trawienia RF maltazą. Glikoza ta jest wynikiem trawienia maltazą GP2 (maltozy) i GP3 (maltotriozy) obecnej w RD ale nie występującej w RF. Trawienie RD i RF jednocześnie (amylazą z trzustki i nadmiarem maltazy prowadzi do większych ilości glikozy w próbkach RD niż w próbkach RF.
Łączna ilość wytworzonej glikozy z próbek RD lub RF wzrastała wraz ze wzrostem czasu inkubacji z amylazą. Wyniki badań trawienia w przewodzie pokarmowym wykazują, że podczas trawienia jednoczesnego amylazą i maltazą z RD wytwarza się glikozę w większej ilości niż w RF. Ponadto, wyniki również wykazują, że glikozę wytwarza się podczas trawienia RD maltazą, ale nie wytwarza się podczas trawienia RF, co wskazuje na to, że glikoza byłaby nadal dostępna z RD, ale nie z RF podczas okresów niedoboru amylazy z trzustki. Tak więc trawienie in vitro RD lecz nie RF wydaje się dostarczać potrzebną glikozę przy leczeniu odwodnienia wskutek ostrej biegunki u niemowląt.
Poniższe przykłady ilustrują wynalazek.
Przykład I. Klarowanie dekstryny ryżowej - skala laboratoryjna.
W przykładzie tym 300 g roztworu, zawierajcąego 30% jako węglowodan surową dekstrynę ryżową ogrzano do 45°C i skorygowano pH do 6,0 dodając KOH. Pierwszą filtrację przeprowadzono na lejku Buchnera wstępnie pokrytego dodatkiem filtracyjnym po dodaniu SilFlow w ilości 6,2 g. Przesącz przygotowano do drugiej filtracji dodając 2,75 g dodatku filtracyjnego i 8,1 g proszku węglowego, American Norit. Mieszaninę ogrzano do 90°C przed przesączeniem przez lejek Buchnera wstępnie pokryty dodatkiem filtracyjnym. Otrzymany przesącz ochłodzono do 30°C i skorygowano pH do 4,0-4,5 przez dodanie 0,1 N HCl. Ten klarowny przesącz użyto do sporządzenia doustnego roztworu rehydracyjnego. Przetworzone roztory rehydracyjne były klarowne i bezbarwne, zawierały 20% ciał stałych przy zawartości protein poniżej 0,1% ciał stałych.
Przykład II. Klarowanie dekstryny ryżowej - skala produkcyjna.
Surowe dekstryny ryżowe - produkt uboczny procesu wysokoproteinowej mąki ryżowej, wymagają klarowania przed zastosowaniem w doustnych roztworach rehydracyjnych, stanowiących produkt handlowy. W niniejszym przykładzie klarowania na skalę produkcyjną 2038,5 kg surowych dekstryn ryżowych wmieszano do otwartego zbiornika zawierającego 4732 litry odfluorowanej wody z kranu. Mieszaninę mieszano i ogrzewano w temperaturze 44,4-50,0°C. Dodając 10% roztwór KOH skorygowano pH do 5,9. W tym przypadku wyjściowa wartość pH wynosiła 4,5, a do doprowadzenia do pH = 5,98 potrzeba było 2,72 kg KOH.
Do mieszaniny wody i dekstryn w otwartym zbiorniku dodano w przybliżeniu 136 kg dodatku filtracyjnego Silfo. W celu wstępnego pokrycia filtru filtracyjną prasą ramowo-płytową wyposa12 165 045 żono w około 22,7 kg dodatku filtracyjnego Silfo. Roztwór dekstryny ryżowej przepompowano przez prasę filtracyjną do drugiego otwartego zbiornika. W drugim zbiorniku zawierającym pierwszy przesącz z około 25% substancji stałych uruchomiono mieszadło i przesącz ogrzano do 85°C.
Po osiągnięciu przez pierwszy przesącz pożądanej temperatury dodano 38,1 kg dodatku fitracyjnego i 114,75 kg węgla aktywowanego. Roztwór ten przepompowano przez prawidłowo zmontowany filtr płytowo-ramowy pokryty dodatkiem filtracyjnym do trzeciego zbiornika, w którym drugi przesącz najpierw ochłodzono do 37,8°C w zbiorniku, a następnie do 7,2°C w chłodnicy płytowej. W schłodzonym drugim przesączu o łącznej ilości substancji stałych 17,91% skorygowano pH do 4,5 dodając 10% HCl. Drugi przesącz zatężono i suszono rozpryskowo wytwarzając biały proszek zawierający około 2,3% wilgoci, mniej niż 0,1% protein i 24,6 równoważnika dekstrozy. Po rozpuszczeniu roztwór był krystalicznie (woda) klarowny.
Przykład III. Wytwarzanie doustnego roztworu rehydracjnego dekstryny ryżowej.
Doustny roztwór rehydracyjny (ORS) formowano i przetwarzano na skalę produkcyjną w szarży 75701 postępując następująco. Na początku 6814 litrów dejonizowanej wody ogrzano do 54,4°C i przepompowano do zbiornika - mieszalnika. Następnie przy pomocy triblendera do wody wprowadzono suche składniki i 19,7 kg chlorku sodu, 3710 g cytrynianu sodu, 1920 g kwasu cytrynowego, 18,6 kg cytrynianu potasu i 233,5 kg sklarowanej substancji stałej syropu ryżowego.
Po dodaniu suchych składników do zbiornika-mieszalnika dodano 21,2 kg ciekłego Natural Tropical Flavor. Następnie zmieszany produkt przepompowano przez chłodnicę o temperaturze 4,5°C. Produkt standaryzowano oczyszczoną wodą do optymalnej łącznej, zawartości substancji stałych 3,49%. Do standaryzacji produktu potrzeba w przybliżeniu 760 litrów wody.
Ciekłym produktem napełniono pojemniki do sterylizacji. Wymagania odżywcze na litr są następujące: sód - 50 milirównoważników; chlorki - 45 milirównoważników; potas - 25 milirównoważników; cytrynian - 34 milirównoważników; dekstryna ryżowa - 30 g. Kaloryczność - 120 kcal.
Przykład IV. Kliniczne porównanie doustnych roztworów rehydracyjnych opartych na dekstrynie ryżowej i glikozie.
Badania kliniczne w celu sprawdzenia skuteczności doustnych roztworów rehydracyjnych opartych na dekstrynie ryżowej według wynalazku w porównaniu z opartymi na glikozie konwencjonalnymi doustnymi roztworami rehydracyjnymi przeprowadzono następująco. Chłopcyniemowlęta w wielu 3-18 miesięcy z niewielkim do średniego odwodnieniem jako następstwem ostrej biegunki wybrano jako kandydatów do doustnej terapii rehydracyjnej i losowo podzielono na dwie grupy. Na początku o wszystkich pacjentach zebrano informacje, takie jak wiek, płeć, waga, począstkowy stopień odwodnienia, ilość dni trwania biegunki przed włączeniem do grupy oraz występowanie lub brak wymiotów.
Pobrane próbki krwi stanowiące bazę wyjściową w celu określenia zawartości w surowicy sodu, potasu, chloru, węglowodanu, pH, pCO2, glikozy, mocznika, kreatyniny i osmolarności. Dodatkowe określenia przeprowadzonono po 6, 12, 24 i 48 godzinach po przyjęciu. W okresie badania oddzielnie zbierano stolce i mocz, ważono i przechowywano w celu określenia sodu i potasu, stolec na osmolarność, a mocz na ciężar właściwy. Okresy zbierania stolca i moczu obejmowało 0-6 godzin, 6-12 godzin i 12-24 godzin. Wagę wymiotów ustalono przez określenie różnicy pomiędzy ciężarem suchych i mokrych pieluszek do zbierania wymiotów.
Po wystąpieniu do badań całkowity deficyt płynu u niemowląt określono przez pomnożenie ustalonego procentu odwodnienia przez początkową wagę. Podczas trwania 6-12 godzin niemowlęta otrzymywały doustny roztwór dehydracyjny o objętości równej podwójnemu wyliczonemu deficytowi płynu. W przypadku klinicznego stwierdzenia u niemowlęcia niechęci do picia lub częstych wymiotów doustny roztwór rehydracyjny wprowadzono do żołądka przez rurkę poprzez nos. Po podaniu wyliczonej objętości płynów niemowlęta podawane były badaniom klinicznym. Jeśli nie osiągano rehydracji powtarzano podawanie objętości roztworu rehydracyjnego obliczonej według ostatnich wyliczeń deficytu płynu z uwzględnieniem poboru zarejestrowanego w okresie rehydracji.
165 045
Po zakończeniu rehydracji pacjentów ważono i wyliczano procentowy przyrost wagi każdego niemowlęcia w sposób następujący:
Waga po rehydracji - waga wyjściowa χθθ waga po rehydracji
Dane nieprarametryczne analizowano w próbie chi-square. Dane ciągle analizowano drogą ANOVA lub analizy powtórnych pomiarów dla różnic w czasie przypadków leczenia. Poziom istotności ustalano przy p< 0,05. Wyniki wyrażono jako wartość ± standardowa odchyłka (SD), jeśli nie zaznaczono inaczej.
W tabeli 12 przedstawiono składy doustnych roztworów rehydracyjnych stosowanych w badaniu.
Tabela 12
Skład doustnych roztworów rehydracyjynch
Dekstryna ryżowa Glikoza
Sód (mmol/litr) 50 75
Potas (mmol/litr) 25 20
Chlorki (mmol/litr) 45 65
Cytryniany (mmol/litr) 10 10
Glikoza (^rmoL/litr) - 25
Sub. stałe syropu ryżowego (g/litr) 30 -
Osmolarność (mOsm/kg) 200 305
Z tabeli 13 widać, że nie ma znaczących różnic w klinicznych właściwościach i stanu odżywienia badanych grup.
Tabela 13
Kliniczne właściwości pacjentów na początku badań
Zmienne Dekstryna.ryżowa n = 30 Glikoza n =29
Wiek, miesięcy 9,8±4,1 9,8±4,2
Waga, kg 7,2±1,6 7,8±1,6
Czas trwania biegunki, dni 2,5±1,5 2,8±1,8
Ilość stolców na dzień 12 15
Szacunkowe odwodnienie 17 14
(% przyjętych pacjentów)
Łagodne
W tabeli 14 przedstawiono wyniki badań bilansu przyswajania płynu i sodu. Obie grupy pacjentów były porównywalne w odniesieniu do przyswajania doustnych roztworów rehydracyjnych w ciągu okresu badania. Pacjenci otrzymujący doustny roztwór rehydracyjny oparty na glikozie otrzymywali roztwór o większym, stężeniu sodu. Stąd ich przyswajanie sodu netto było wyraźnie większe niż przyswajanie u pacjentów otrzymujących oparty na dekstrynie ryżowej doustny roztwór rehydracyjny.
Tabela 14
Przyswajanie płynu i sodu podczas badania
Zmienne Dekstryna ryżowa (n = 30) Glikoza (n = 29)
Płyn (ml/kg)
godziny 0-6 108±9 104±9
0-12 82±6 80±6
0-48 105±7 107±7
Sód (mmol/kg)
godziny 0-6 5,2±0,4 7,610,7^
0-12 3,9±0,4 5,4±0,4></
0-48 4,4±0,4 6,510,4*
Wartości przedstawiają znaczenie ± SEM Różnica istotności PX),05.
165 045
W tabeli 15 przedstawiono wydzielanie stolców. Podczas pierwszych sześciu godzin kuracji wydzielanie stolca było mniejsze u pacjentów otrzymujących doustny roztwór rehydracyjny na dekstrynie ryżowej. Wydzielanie stolca w ciągu całego okresu badania w grupie otrzymującej roztwór na dekstrynie ryżowej wyniosło 49,9 g/kg w porównaniu z 65,9 g/kg u grupy otrzymującej roztwór glikozy. Wydzielanie sodu i potasu ze stolcem w ciągu pierwszych sześciu godzin kuracji było znacznie mniejsze w grupie otrzymującej roztwór dekstryny ryżowej w porwónaniu z grupą otrzymującą roztwór glikozy. W dalszym okresie 6-12,12-24 i 24-48 godzin zarysowała się tendencja do zmniejszenia wagi stolców i wydzielania sodu w grupie otrzymującej doustny roztwór rehydracyjny oparty na dekstrynie ryżowej.
Tabela 15 Wydzielanie stolca
Zmienne Grupa
Dekstryny ryżowej (n = 30) Glikozy (n = 29)
Waga (g/kg)
godziny 0-6 28,7± 4,1 45,5± 6,7x/
6-12 29,1± 3,6 32,0± 6,2
12-24 55,0± 5,6 68,5±10,1
24-48 87,7± 11,9 117,6±20,5
Sód (mmoli/kg)
godziny 0-6 1,38±0,25 2,88±0,65x/
6-12 1,39±0,21 1,90±0,4C
12-24 2,39±0,27 4,15±0,67
24-48 4,24±0,70 6,81 ±1,40
Potas (mmoli/kg)
godziny 0-6 1,02±0,14 1,45±0,16x/
6-12 0,99±0,13 0,97±0,17
12-24 1,81 ±0,17 1,83±0,30
24-48 2,75±0,32 3,04±0,66
Wartość przedstwiają znaczenie ± SEM Różnica statystyczna P<0,05
W tabeli 16 przedstawiono bilans jelita netto wyliczony przez oddzielenie wydzielania stolca od przyswajania netto.
Tabela 16 Bilans netto jelita
Zmienne Grupa
Dekstry ryżowej (n = 30) Glikozy (n = 29)
Płyn (ml/kg)
godziny 0-6 79,4±6,5x/ 58,6±5,2
6-12 25,6±6,0 24,2±4,1
12-24 46,7±5,6 21,8±4,9
24-48 69,0±7,1 61,3±6,9
Sód (mmol/kg)
godziny 0-6 3,74±0,36 4,75±0,51
6-12 0,95±0,38 1,26±0,22
12-24 1,4^±0,36 1,30±0,40
24-48 2,29±0,51 3,04±0,93
Potas (mmol/kg)
godziny 0-6 1,59±0,23x/ 0,63±0,13
6-12 0,36±0,21 0,22±0,16
12-24 0,42±0,18 0,16±0,21
24-48 1,00±0,26 0,75±0,35
Wartość przedstawiają znaczenie ± SEM Statystyczne różnice p< 0,005
Bilans płynu w jelicie był wyraźnie lepszy w grupie otrzymującej doustny roztwór rehydracyjny z dekstryną ryżową podczas pierwszych sześciu godzin fazy rehydracji. Z analizy w ciągu różnych okresów badania wynika, że podstawowy bilans dla grupy doustnego roztworu rehydracyjnego był lepszy (55,2 ± 3,1 ml/kg) niż w grupie otrzymującej rotwór z glikozą (41,4 ± 3,2 ml/kg). Mimo, że zawartość sodu w doustnym roztworze rehydracyjnym z glikozą była wyższa nie wystąpiła różnica w bilansie netto sodu pomiędzy grupami podczas żadnego z czterech okresów badania w ciągu 0-48 godzin. Główny bilans był nieoczekiwanie wyższy w grupie otrzymującej doustny roztwór rehydracyjny z dekstryną ryżową jeśli ten parametr rozpatrywać w ciągu całego trwania badania. Bilans potasu w jelicie grupy otrzymującej dosunny roztwór rehydracyjny z dekstryną ryżową był statystycznie wyższy niż w grupie otrzymującej roztwór z glikozą podczas pierwszych sześniu godzin terapii.
W ciągu pozostałych trzech okresów badania występowała tendencja do wyższego bilansu w jelicie grupy otrzymującej roztwór z dekstryną w porównaniu z grupą otrzymującą roztwór z glikozą.
Wyniki z przeprowadzonych badań doustnych roztworów rehydracyjnych z dekstryną ryżową i glikozą wskazują, że oba preparaty były skuteczne w przywracaniu uwodnienia. Jednak studia bilansu wykazują, że doustny roztwór rehydracyjny z dekstryną ryżową według wynalazku był bardziej efektywny niż roztwór z glikozą w leczeniu biegunki, ponieważ niemowlęta odżywiane doustnym roztworem rehydracyjnym z dekstryną ryżową według wynalazku miały znacznie mniejsze wydzielanie stolca (tabela 15) i wyższy bilans wody i potasu (tabela 16) podczas początkowych sześciu godzin okresu rehydracji niż w grupie otrzymującej roztwór z glikozą z tendencją w tym kierunku podczas pozostałych trzech okresów badania do 48 godzin. Bilans sodu nie wykazywał różnicy pomiędzy obu grupami (tabela 16) wykazując, że doustny roztwór rehydracyjny z dekstryną różową mimo, że zawierał mniej sodu był tak samo skuteczny w promocji absorbowania sodu jak doustny roztwór rehydracyjny z glikozą zawierającą więcej sodu (tabela 12).
16^045
Departament Wydawnictw UP RP. Nakład 90 egz. Cena 10 000 zł

Claims (4)

Zastrzeżenia patentowe
1. Sposób klarowania dekstryny ryżowej do zastosowania w doustnych roztworach rehydacyjnych, znamienny tym, że a/ filtruje się z solubilizowaną frakcję węglowodanów ryżowych otrzymaną z mąki ryżowej drogą enzymatycznej hydrolizy przy neutralnym pH z użyciem dodatku filtracyjnego w temperaturze 35°C do 50°C, po czym b/ przesącz poddaje się następnej filtracji w temperaturze powyżej 80°C z użyciem dodatku filtracyjnego i węgla aktywowanego.
2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że klarowaniu poddaje się frakcję o profilu polimerów glikozy zawierającą 50 do 90% polimerów glikozy o krótkim łańcuchu o 2 do 6 jednostek glikozy.
3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że pH drugiego przesączu koryguje się do 4,0-4,8 i poddaje suszeniu rozpryskowemu w celu otrzymania dekstryny ryżowej o profilu polimerów glikozy składającym się z 50 do 90% krótkołańcuchowych polimerów glikozy o 2 do 6 jednostkach glikozy.
4. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że pH drugiego przesączu koryguje się do 4,5 i poddaje suszeniu rozpryskowemu w celu otrzymania dekstryny ryżowej o profilu polimerów glikozy składającym się z 50 do 90% krótkołańcuchowych polimerów glikozy o 2 do 6 jednostkach glikozy.
PL91289725A 1990-04-03 1991-04-03 Sposób klarowania dekstryny ryzowej do zastosowania w doustnych roztworach rehydracyjnych PL PL165045B1 (pl)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US07/504,142 US5096894A (en) 1990-04-03 1990-04-03 Rice dextrin oral rehydration solution
SG7895A SG7895G (en) 1990-04-03 1995-01-18 Rice dextrin oral rehydration solution

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL289725A1 PL289725A1 (en) 1991-11-04
PL165045B1 true PL165045B1 (pl) 1994-11-30

Family

ID=26663795

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL91289725A PL165045B1 (pl) 1990-04-03 1991-04-03 Sposób klarowania dekstryny ryzowej do zastosowania w doustnych roztworach rehydracyjnych PL

Country Status (19)

Country Link
US (1) US5096894A (pl)
EP (1) EP0459108B1 (pl)
JP (1) JPH0757729B2 (pl)
AT (1) ATE113443T1 (pl)
AU (1) AU642483B2 (pl)
CA (1) CA2039473C (pl)
CY (1) CY1824A (pl)
DE (1) DE69104901T2 (pl)
DK (1) DK0459108T3 (pl)
EG (1) EG19628A (pl)
ES (1) ES2062593T3 (pl)
HK (1) HK52095A (pl)
IL (1) IL97740A (pl)
MX (1) MX172924B (pl)
OA (1) OA09491A (pl)
PL (1) PL165045B1 (pl)
PT (1) PT97229B (pl)
SG (1) SG7895G (pl)
ZA (1) ZA912423B (pl)

Families Citing this family (18)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5120539A (en) * 1991-01-22 1992-06-09 Doyle W. Boatwright Amylase-electrolyte oral rehydration method and composition
US20050181021A1 (en) * 1992-02-14 2005-08-18 Robert Lamb Vitamin E phosphate/phosphatidycholine liposomes to protect from or ameliorate cell damage
GB9212737D0 (en) * 1992-06-16 1992-07-29 Norbrook Lab Veterinary product
US5498408A (en) * 1992-09-21 1996-03-12 Sandoz Nutrition Ltd. Oral rehydration composition
US5869458A (en) * 1994-10-14 1999-02-09 Waite; Christopher S. Frozen rehydration formulation and delivery system therefor
US5489440A (en) * 1995-03-06 1996-02-06 Abbott Laboratories Rice flour-based oral rehydration solution
AU5847596A (en) * 1995-05-26 1996-12-11 Virbac Laboratories (Nz) Limited Rice flour based oral rehydration compositions for farm anim als
GB9715340D0 (en) * 1997-07-22 1997-09-24 Cerestar Holding Bv Beverages for enhanced physical performance
US6572898B2 (en) 1999-05-21 2003-06-03 Pts Labs Llc Electrolyte gels for maintaining hydration and rehydration
GB0008209D0 (en) * 2000-04-04 2000-05-24 Highnoon Lab Limited Oral rehydration formulation
US20030194448A1 (en) * 2002-04-16 2003-10-16 Mitchell Cheryl R. Oral rehydration composition
DE60308946T2 (de) * 2002-06-03 2007-05-10 Jsr Corp. Polierkissen und Verfahren zur Herstellung eines Polierkissens
US7638151B2 (en) 2003-03-10 2009-12-29 Danisco Us Inc. Grain compositions containing pre-biotic isomalto-oligosaccharides and methods of making and using same
US20050008685A1 (en) * 2003-07-07 2005-01-13 Mitchell Cheryl R. Oral rehydration compositions containing liposomes
US20090029009A1 (en) * 2007-07-24 2009-01-29 St Phard Dimitri Sports drink containing rice syrup and agave nectar
US20090029010A1 (en) * 2007-07-24 2009-01-29 Ritorna Natural, Inc. Organic sports drink containing rice syrup and agave nectar
MX2010000660A (es) * 2009-12-11 2011-06-14 Abbott Lab Soluciones de rehidratacion oral que comprenden dextrosa.
CN110973481A (zh) * 2020-01-04 2020-04-10 广东一家亲营养科技有限公司 一种谷基配方米粉的中温酶解工艺及配方米粉

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR1419128A (fr) * 1964-12-14 1965-11-26 Nat Starch Chem Corp Fond de sauces et procédé pour le préparer
US4120952A (en) * 1975-10-06 1978-10-17 Arizona Feeds Method for the treatment of diarrhea in monogastric animals
GB1547941A (en) * 1977-03-24 1979-07-04 Gen Foods Corp Method of making edible acidifield carbohydrate powers
GB8512345D0 (en) * 1985-05-15 1985-06-19 Scras Anti-diarrhea compositions
US4830861A (en) * 1988-07-14 1989-05-16 Bristol-Myers Company Low manganese high protein rice flour

Also Published As

Publication number Publication date
JPH0757729B2 (ja) 1995-06-21
EP0459108A2 (en) 1991-12-04
DE69104901T2 (de) 1995-03-30
PT97229A (pt) 1992-01-31
DK0459108T3 (da) 1994-12-19
PL289725A1 (en) 1991-11-04
CY1824A (en) 1995-12-01
ATE113443T1 (de) 1994-11-15
IL97740A0 (en) 1992-06-21
SG7895G (en) 1995-06-16
IL97740A (en) 1995-03-15
AU7394691A (en) 1991-10-10
US5096894A (en) 1992-03-17
HK52095A (en) 1995-04-13
EP0459108A3 (en) 1992-01-08
MX172924B (es) 1994-01-21
EG19628A (en) 1995-10-31
DE69104901D1 (de) 1994-12-08
PT97229B (pt) 1998-09-30
AU642483B2 (en) 1993-10-21
ZA912423B (en) 1991-12-24
CA2039473A1 (en) 1991-10-04
JPH05320054A (ja) 1993-12-03
OA09491A (fr) 1992-11-15
CA2039473C (en) 1997-03-25
EP0459108B1 (en) 1994-11-02
ES2062593T3 (es) 1994-12-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL165045B1 (pl) Sposób klarowania dekstryny ryzowej do zastosowania w doustnych roztworach rehydracyjnych PL
KR0181312B1 (ko) 정장작용을 갖는 식품조성물
JP3047113B2 (ja) 可溶性米蛋白質濃厚物
Graham et al. Quality-protein maize as the sole source of dietary protein and fat for rapidly growing young children
Krezowski et al. Insulin and glucose responses to various starch-containing foods in type II diabetic subjects
JPH04228026A (ja) 調合乳およびその調製法
KR20010013449A (ko) 알파-아밀라제에 대해 내성을 가지는 식품급 전분
Schroeder Serum cholesterol and glucose levels in rats fed refined and less refined sugars and chromium
CA2547934A1 (en) Methods of using gamma cyclodextrin to control blood glucose and insulin secretion
Xue et al. Effects of heat treatment of barley starches on in vitro digestibility and glucose responses in rats
US20040096560A1 (en) Nutritional products containning modified starches
HAMBIDGE Trace elements in pediatric nutrition
Sever Zinc and human development: a review
JP5349744B2 (ja) ミネラル吸収促進剤、食品及び飼料
US20060025382A1 (en) Use of a crosslinked or inhibited starch product
USRE36032E (en) Rice dextrin oral rehydration solution
KR100243525B1 (ko) 효소 저항성이 높은 난소화성 텍스트린의 제조방법
US5120539A (en) Amylase-electrolyte oral rehydration method and composition
KR100485155B1 (ko) 효소저항전분을 포함하는 면역활성 증강용 조성물
JPH07215851A (ja) 抗アレルギー剤及びその製造法
US20240306681A1 (en) Method for flash heat treatment of pea starch
JP4033279B2 (ja) 食物繊維顆粒
SU1479055A1 (ru) Способ получени питательной смеси дл внутрикишечного зондового питани
EP1043022B1 (en) Sodium ion absorption inhibitors and sodium ion excretion accelerators as preventive and therapeutic agents for diseases resulting from excessive intake of common salt
Haraa et al. Intestinal absorption of zinc is promoted by low-level intake but inhibited by high-level intake of corn husk fiber in rats

Legal Events

Date Code Title Description
LAPS Decisions on the lapse of the protection rights

Effective date: 20070403