PL154027B1 - Method of extracting lypophylic proteins produced by pichia - Google Patents

Method of extracting lypophylic proteins produced by pichia

Info

Publication number
PL154027B1
PL154027B1 PL1987268298A PL26829887A PL154027B1 PL 154027 B1 PL154027 B1 PL 154027B1 PL 1987268298 A PL1987268298 A PL 1987268298A PL 26829887 A PL26829887 A PL 26829887A PL 154027 B1 PL154027 B1 PL 154027B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
protein
cells
extraction
carried out
proteins
Prior art date
Application number
PL1987268298A
Other languages
English (en)
Other versions
PL268298A1 (en
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed filed Critical
Publication of PL268298A1 publication Critical patent/PL268298A1/xx
Publication of PL154027B1 publication Critical patent/PL154027B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/005Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/06Lysis of microorganisms
    • C12N1/063Lysis of microorganisms of yeast
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14Fungi; Culture media therefor
    • C12N1/16Yeasts; Culture media therefor
    • C12N1/165Yeast isolates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/0004Oxidoreductases (1.)
    • C12N9/0006Oxidoreductases (1.) acting on CH-OH groups as donors (1.1)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2730/00Reverse transcribing DNA viruses
    • C12N2730/00011Details
    • C12N2730/10011Hepadnaviridae
    • C12N2730/10111Orthohepadnavirus, e.g. hepatitis B virus
    • C12N2730/10122New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/645Fungi ; Processes using fungi
    • C12R2001/84Pichia
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/911Microorganisms using fungi
    • Y10S435/938Pichia

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Description

RZECZPOSPOLITA POLSKA OPIS PATENTOWY 154 027
Patent dodatkowy
URZĄD do patentu nr--- Zgłoszono: S7 10 19 /P. 268298/ Pierwszeństwo: 86 10 20 Stany Zjednoczone AmmiTrki Int. Cl 5 C12P 21/02
PATENTOWY Zgłoszenie ogłoszono: 88 07 07
RP Opis patentowy opublikowano: 1991 11 29
Twórca wynalazku: WillOm S.Craig
Uprawniony z patentu: Phillips Patrolem Company,
Bart1esville /Stany Zjednoozone Afryki/
SPOSÓB ECSTRACCI BIAŁEK LlPOFIOOWYCH PBODDKOWJANCH PBZEZ PlCHIA
Przedmiotem wynalazku jest sposób ekstrakojl białek lipofilowych produkowanych przez Pichla, przy czyp w jednym aspekcie wynalazek dotyczy wydzielania rozpuszczalnego białka ze szczątków komórek, a w drugim selektywnej ekstrakcji białek.
Tedundogia «kombinowanego DNA szybko staje się potężnym narzędziem wytwarzania peptydów 1 białek będących przedmiotem zainteresowania w wielu zastosowaniach diagnostycznych, terapeutycznych i chemicznych oraz podobnych, Jednym ozęsto powtarzającym się problemem jest potrzeba uzyskiwania potrzebnego białka w postaoi oczyszczonej, wolnej od białek zanieczyszczających, które są również wytwarzane podczas ekpresji wytwarzanego produktu, Tak więo wynalazek dotyczy lepszego sposobu odzyskiwania białek wytwarzanych techniką «kombinowanego DNA.
Celem wynalazku jest zatem znalezienie wydajnego sposobu odzyskiwania białek wytoarianyoh przez modyfikowane genetycznie organizmy drożdżowe.
Stwierdzono, że można selektywnie odzyskiwać lipidowe białka wytwarzane przez modyfikowane genetycznie szczepy Piohia przez zastosowanie llzującego roztworu buforowego zawierającego sole ciaotroplwe. tozrywonie Pichia w obelno3li takich lizująoyoh roztworów buforowych zmniejsza całkowitą ilość eksmitowanych białek, a jednocześnie wyżera nieznaczny wpływ na ekstrakcję potrzebnych białek ΚροΤΙ^κ^ο^ W ten sposób ekstrakt substanoji rozpuszczalnej komórek, otrzymywany podczas realizacji wynalazku, ma zwiększoną zawartość białek lipom wwy eh w stosunku do wszystkich innych białek zawartych w ekstrakcie, upraszczając tym samym każdy następny etap oczyszczania, któremu poddaje się wytwarzane białko lipofUowe.
Zgodnie ze sposobem według wynalazku białka lipofUowe produkowane przez komórki gospodarza rodzaju Pichla ekstrahuje się przoz /a/ poddanie komórek warunkom rozbijania komórek przez okres czasu wystarczający do zniszczenia zasadniczo wszystkich komórek, przy czym rozbicie to prowadzi się w obecności środowiska ekstrakojl złożonego z oo najmniej jednej ohao154 027
154 027 tropowej soli w stężeniu molowym około 1-8, w środowisku buforowym, przy pH odpowiednia do utrzymania potrzebnego białka w postaci trwałej, zazwyczaj w zaki^^^^e około 6-8, i /b/ odzyskuje się rozpuszczalną frakcję otrzymaną w etapie /a/.
Rzpuszozalną frakcję odzyskaną zgodnie ze sposobem według wynalazku nożna następnie poddać d^szej obróbce znanymi technikami w celu dalszego zatężania i oczyszczania wywarzanego białka. Tak więc, białko we frakcji rozpuszczalnej można zatężyć przez dializę, przepuszczenie przez żywicę z odwróconą fazą, a następnie przez Knowanie minimalną objętością rozpuszczalnika, wytrącmie, ultrafiltrację, liofilizuję i podobne. Techniki przydatne do dalszego oczyszczania wytwarzanego białka obejmij frakcjonowanie według wielkości przy mżyoiu żywio wykluczających dane wielkośoi, wysokosprawna chromatografia cieczowa, wymierna jonowa, chromatografia hydrofobowa 1 podobne.
V opisie określenie białko lipofllwwe oznacza te białka, które wyczują tendencję dc asocjacji z błonami lipidwsyBi lub, w obeenośoi lipidu lub maeriału lipidojtodobnego, zespalają się w struktury podobne do miceli. Białka takie zazwyczaj mają wysoką zawartość aminokwasów hydrofobowych np. izoleuoyny, w&liny, leucyny, fenyloalaniny, tryptotanui alaniny.
Przykładowe białka lipofilwwe obejmt^ą, chooiaż nie są do nich ograniczone, wszystkie postaci powierzchniowego antygenu bepaaitis B włączając postać S, postać preS^, postać pre!^ i podobne, dekarhokeylazę flsfatydyloeecyιooią /z E.coli/, D-proteinę lambda bakteriofagową, lipoproteinę o niskiej gęstości /tD/, lipoproteinę o wysokiej gęstości /WL/ i dehydrogenazę dihydrddrotan^ίκldw%, opisie określenie sól chaotioipowa oznacza sól, której aniony faw^ir^3^iu}ą przenoszenie grup niepolamiych do wody. Sole takie obejmują związki, które zawierają jon 11οο^]*π1«ο^, Jony halogenkowe, takie jak jodki i bromki, jony plihalogenawe, takie jak podchloryny, jak również kationy, takie jak na przykład lit, wapń i bar.
Przykładowymi solami chaαlIΌpoiyBi przydatnymi w praktycznej realizacji sposobu według wynalazku są tiocyjanian sodu, tiocyjanian potasu, jodek sodu, jodek potasu, podchloryn sodu, chlorek litu, bromek litu, chlorowodorek guanidyny, tiocyjanian guanidyny, mocznik i podobne.
Wytwwrziałie białek lipoillwwych przez Picbia można realizować przez genetyczne βο<^Η^wanie odpowiedniego szczepu gospodarza pichia z sekwencją DNA, która koduje pożądane białka. Odpiwiedn^e sekwencje DNA, które kodują pożądane białka Hpoli^ne są łatwo uzyskiwane przez fachowców na przykład przez izolowanie ze źródeł naturalnych, przez konstruowiaiie sekwenoji syntetycznego DNA i podobnie. Specyficzne techniki manipulowania DNA w szczepach Pichia opisano w artykułach, które ukazały się w tomie 5 Moi^<^!^3.ar and Cellular Biology na str. lui i 8876 /1985/.
Sposób ekstrakcji według wynalazku prowadzi się przez poddanie komórek działaniu warunków, w których następuje rozbijanie komórek, przez okres czasu dostateczny do spowodowania rozerwania wszystkich w zasadzie komórek. Rzbijanie komórek prowadzi się w obecności środowiska ekstrakcyjnego zawierającego co najmilej Jedną sól cha^TCrową w stężeniu molowym około i-S, w środowisku buforowym do pff, lipowiedniego do utrzymania pożądanego białka w postaci trwałej, zazwyczaj w zakresie około 6-8. &łennuaanie, w celu obniżenia do mininim degradacji białka w czasie ekstrakcji do lizującego roztworu buforowego dodaje się środki antyproleazlwe, takie jak fluorek fenylometylosulfonylu.
W praktycznej realizacji sposobu według wynalazku zazwyczaj do rozbijania komórek stosuje się hlliilenizację w młynie perełonym lub podobnym urządzeniu. Czas potrzebny do rozbicia komórki jest funkcją podatności ścianek komórki na rozbijanie, ostrości warunków homogenizacji, obecności i stężenia d^aw^ych składników w lizującym roztworze buforowym i podobnych. Zazwyczaj komórki poddaje się działaniu warunków rozbijania komórek przez czas w zakresie około 0,5-80 minut, korzystnie czasy zawarte są w zakresie około 1-5 minut.
Tenppratura stosowana w trakcie rozbijania komórek jest na ogół regulowana, żeby azyć do minimum działanie enzymów degradujących białko. Tak więc, rozbijanie komórek na ogół ^^adzi się w temperaturze w zakresie około 0-i°°C, korzystnto 0°C w celu ^ronictonia to minimum ilości zdegradowanych, wytwarzanych białek, które ulegają degradacji podczas m154 027 bijania, przez co zwiększa się wydaaność białka wytwarzanego z rozbitych komórek.
Po rozbiciu komórek odzyskuje się frakcję rozpuszczalną przez usunięcie szczątków komórek znanymi technikami, np, przez wirowanie lub filtrację z zasiłkiem stycznym. Otrzymana brzeczka wolna od komórk jost wzbogacana w wytwarzane białko lipofilowe w stostmku do brzeczki otrzymywanej przez zwyczajne rozbicie komórek i odebranie z niej frakcji rozpuszczalnej. .
B^ee^ti^£^lt^:^e tak traktowaną brzeczkę można poddać dalszej obróbce w celu odzyskania zwężonych frakcji wytworzonego białka Hpa^^wego za pomocą różnych technik znanyoh fachowcom, takich jak na przykład wytrącanie kwasem, filtracja, chromatoorafia, odparowanie rozpuszczalnika 1 podobne.
Sposób według wynalazku ilustrują następujące przykłady.
Przykład 1. Poniżej opisano ekstrakcję cząsteczek 22nm powierzchniowego antygenu hepaattis B /HBsAjg/ z komórek Pichia, trαnslormowanych wektorem pBSAGISI /dostępnych w gospodarzu E.coli z Northern Regional Research Center of the US Department of Agrioulture, Peoria, III, pod nr NNRL B-18021/.
P.pastoris hodowano do gęstości komórkowej w zakresie 10 do 100 jednostek gęstośoi optycznej /600 na/ na mililitr. Porcję o 100 Jednostkach gęstoźol optycznej odebrano do boro8ilikatowij probówki hodowlanej 13x100 mm 1 przemyto dwukrotnie 20 lbjętlśoitml lizująoego roztworu buforowego /przepis poniżej/.
Do komórek w pastylkach /wirówka lekarska IEC/ dodano 0,5 g perełek szklanjOh /0,5 fas/ przemytych kwasem a następnie 0,35 al roztworu buforowego. Lizujący roztwór buforowy zawierał bądź 0,5 m NaCl 1 0,1% Tritonu Χ-100 /oagowoloOiętQŚó/ jako próbkę kontrolną, bądź sól ohaltropooą w stężeniu 2 m lub 3 m w obecności lub pod nleobiOiośó 0,1% Tritonu Χ-100. Wszystkie roztwory buforowano przy pE 7,5 za pomocą 10 mi roztworu fosforanu sodu. Mieszaninę mieszano przez 8 jednominutowych przedziałów czasowych z szybkością maksymalną za pomocą miksera wirowego, W przerwach mieszaninę chłodzono na lodzie przez nie mniej niż jedną minutę. W Matole miksowała ^ob^wki korzystnie trzymano pod ^em 20-40° w oelu uzyskania maksymalnego stopnia rozerwania. Po zakończeniu lizy roztwór z rozerwanymi komórkami odebrano, szklane kulki przemyto za pomocą 0,35 ml llzującego roztworu buforowego, 1 połączono dwa roztwory i poddano wirowaniu przez okres 15 minut przy 13000 xg. Supernatanty odebrano i oznaczono na immι.ulireaktyoni cząsteczki HJaAg /próba Ausria/ 1 całkowitą zawartość białka/Bradford/. Wynnki przedstawiono w tablicy I /a/. .
Przykład II. W celu dalszego zilustrowania sposobu według wynalazku 80 ml zawiesiny /lbjętośolowl jedna część zagęszczonych komóre/dwie częśoi lizującego roztworu buforowego/ poddano działaniu środka rozonoająligo komórki /Impandex, Inc,/ przy użyciu 64 mm tarczy mieszadła o 4500 obr/minutę. Lizuj^oy roztwór buforowy zawierał albo 0,5 m NaCl i 0,1% Tritonu /wa^obj/ albo 3 o KSCN. Supernatanty oznaczano na HBsAg /Ausria/ i całkowitą zawartość białka /Bradford/. Wynnki przedstawiono w tabeli /b/.
Tabela
Warunki l^ssy I Cząstki HBsAg //lig/ml/ II Całkowite białko /mg/ml/ III MsAg/białko /%
/a/ Sól /stężenie/ NaCl /0,5 m/ + Triton 230 10,1 2,3
KI /2/ + Triton 14 1,4 1,0
KI /2m/ - Triton 169 2,4 7,0
KSCN /3/ + Triton <10 1,9 <0,5
KSCN /3m/ - Triton 222 3,5 6,3
/h/ Środek rozrywałam komórki NaCl /0,5 m/ + Triton 600 32,5 1,8
KSCN /6 m/ 803 10,6 7,6
154 027 liino, te π żadnych warunkach przy zawartośoi soli chaotropowej /KJ lub ES®/ nie otrzymano wartości cząstek HBsAg znacznie wyższych niż dla próby kontrolnej /koUwna 1/, Jasne jest, że sole chaotropowe inhibitują uwwlnnanie całkowitego białka /koU^Bna 11/, zwiększając tym sposobem 2-5 krotnie specyficzną aktywność oząstek HBsAg 111,/,

Claims (9)

  1. Zastrzeżenia patentowe #154027
    1, Sposób ekstrakoji białek llpolllowych z komórek gospodarza z rodzaju Plchia, z n a lenny tyn, że komórki podda,] e się działaniu warunków rozbicia komórek przez okres czasu wystarozająoy do rozhula w zasadzie wszystkich komórek, przy czym rozbijanie komórek prowadzi się w obernośoi środowiska ekstrakcji złożonego z oo najmnej jednej soli m^tropowej * stężeniu około 1-8 molowym, w środowisku buforowanym, przy tS odpowiednim do utrzymania białka H^fUowego w postaci trwałej, i odzyskuje się frakcję rozpuszczalną.
  2. 2. Sposób według zastrz, 1, znamienny t y a, że pH środowiska ekstrakcji utrzysuje się w zakresie około 6-8.
  3. 3i Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że ekstrakoji poddaje się białko lipofUowe będąoe białkiem o tendenc^ do asocjowania z błonami lipidowym.
  4. 4. Sposób według zastrz. 1, znamienny t n, że ekstrakcji poddaje się białko liplfilowe będące białklm łą^ącym się w struktury ιicclopodlbne w obroncści substancji lipddowej lub lipidopodlbBej.
  5. 5. Sposób według zastrz. 1, znamienny tyn, że ekstrakcji poddaje się białko lipofUowe dobrane jest spośród postaci S powierzchniowego antygenu hejptltis B, postaci preSi powierzchniowego antygenu heepUtis B, postaci preS2 powierzchniowego antygenu hepatitis B, dekarbolkjylazy flsfatydyloseyuloweJ z E.ooU, O-proteiny lambda bakteriofagowej, lipoproteiny o niskiej gęstośol, LDL, lipoproteiny o wysokiej gęstośei HDL i dehydrogenazy iihydroorotanianlweJ.
  6. 6. Sposób według zastrz, 1, znamienny ty», że rozbijanie komórek prowwlsl się w temperaturze zawartej w zakresie 0 do 10°C, przez okres około 0,5-30 minut.
  7. 7. Sposób według zastrz. i, znamienny tym, te jako sól ohaotronwą stosuje się tiocyjanian sodu, tiocyjanian potasu, jodek sodu, jodek potasu, podchloryn sodu, morek litu, bromek litu, chlorowodorek guanidyny, tiocyjanian guanidyny, i mieszaniny dowolnych dwóch lub kilku powyższych sol.!.
  8. 8. Sposób według zastrz. 1, znamienny t y , że odzysklwwie frakcji rozpuszczalnej prowadzi się przez wirowanie roztworu zawierającego rozbite komórki.
  9. 9. Sposób według zastrz. i, znamienny tym, że otrzymaną frakcję rozpuszczalną poddaje się dodatkowej obróbce, aby odzyskać z niej zatężoną frakcję białka lipofilowego.
    Zakład Wydawnictw UP RP. Nakład 100 egz.
    Cena 3000 zł
PL1987268298A 1986-10-20 1987-10-19 Method of extracting lypophylic proteins produced by pichia PL154027B1 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US06/920,385 US4683293A (en) 1986-10-20 1986-10-20 Purification of pichia produced lipophilic proteins

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL268298A1 PL268298A1 (en) 1988-07-07
PL154027B1 true PL154027B1 (en) 1991-06-28

Family

ID=25443644

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL1987268298A PL154027B1 (en) 1986-10-20 1987-10-19 Method of extracting lypophylic proteins produced by pichia

Country Status (22)

Country Link
US (1) US4683293A (pl)
EP (1) EP0271667A1 (pl)
JP (1) JPS63105693A (pl)
KR (1) KR880005259A (pl)
CN (1) CN1006808B (pl)
AU (1) AU586758B2 (pl)
CA (1) CA1277272C (pl)
CS (1) CS752987A2 (pl)
DD (1) DD262673A5 (pl)
DK (1) DK545187A (pl)
FI (1) FI874597A (pl)
HU (1) HU202554B (pl)
IE (1) IE872807L (pl)
IL (1) IL83402A0 (pl)
IN (1) IN166069B (pl)
NO (1) NO874357L (pl)
NZ (1) NZ221296A (pl)
PH (1) PH23461A (pl)
PL (1) PL154027B1 (pl)
PT (1) PT85935B (pl)
YU (1) YU46080B (pl)
ZA (1) ZA875698B (pl)

Families Citing this family (35)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4935235A (en) * 1979-05-24 1990-06-19 The Regents Of The University Of California Non-passageable viruses
US5124256A (en) * 1985-11-13 1992-06-23 Labofina, S.A. Process for recovering polypeptides localized in the periplasmic space of yeast without breaking the cell wall by using an non-ionic detergent and a neutral salt
US4816564A (en) * 1986-01-31 1989-03-28 Merck & Co., Inc. Method for producing hepatitis B virus proteins in yeast
US4742158A (en) * 1986-04-25 1988-05-03 Merck & Co., Inc. Purification of hepatitis pre-S antigens by polymerized serum albumin affinity binding
US5026828A (en) * 1987-02-27 1991-06-25 Merck & Co., Inc. Method of purifying recombinant pres-1/S-2/S/S hepatitis B antigen from yeast
US5011915A (en) * 1987-10-26 1991-04-30 Merck & Co., Inc. Process for purifying recombinant hepatitis antigens
US5004688A (en) * 1988-04-15 1991-04-02 Phillips Petroleum Company Purification of hepatitis proteins
US5030720A (en) * 1988-09-01 1991-07-09 Merck & Co., Inc. Pres2+S hepatitis B vaccine derived from plasma
US6509192B1 (en) * 1992-02-24 2003-01-21 Coulter International Corp. Quality control method
US6362003B1 (en) 1992-02-24 2002-03-26 Coulter Corporation Hematological reference control composition containing leukocyte analogs, methods of making, and uses thereof
US5855902A (en) * 1992-11-02 1999-01-05 Protatek International, Inc. Method of administering a vaccine comprising tritrichomonas foetus membrane surface antigens between 45 and 300 kilopaltons
US5872098A (en) * 1995-06-05 1999-02-16 Corvas International, Inc. Nematode-extracted anticoagulant protein
US5945275A (en) * 1994-10-18 1999-08-31 Corvas International, Inc. Nematode-extracted anticoagulant protein
US5866543A (en) * 1995-06-05 1999-02-02 Corvas International, Inc. Nematode-extracted anticoagulant protein
US5866542A (en) * 1994-10-18 1999-02-02 Corvas International, Inc. Nematode-extracted anticoagulant protein
US5863894A (en) * 1995-06-05 1999-01-26 Corvas International, Inc. Nematode-extracted anticoagulant protein
EP0788546B9 (en) 1994-10-18 2007-06-13 Dendreon Corporation Nematode-extracted serine protease inhibitors and anticoagulant proteins
CA2202351A1 (en) * 1994-10-18 1996-04-25 George Phillip Vlasuk Nematode-extracted serine protease inhibitors and anticoagulant proteins
MX9605082A (es) 1996-10-24 1998-04-30 Univ Autonoma De Nuevo Leon Levaduras metilotroficas modificadas geneticamente para la produccion y secrecion de hormona de crecimiento humano.
GB2338236B (en) * 1998-06-13 2003-04-09 Aea Technology Plc Microbiological cell processing
US7455990B2 (en) * 1999-11-24 2008-11-25 Danisco A/S Method of extracting recombinant hexose oxidase
GB9927801D0 (en) 1999-11-24 2000-01-26 Danisco Method
US7625756B2 (en) 2000-06-28 2009-12-01 GycoFi, Inc. Expression of class 2 mannosidase and class III mannosidase in lower eukaryotic cells
US7449308B2 (en) * 2000-06-28 2008-11-11 Glycofi, Inc. Combinatorial DNA library for producing modified N-glycans in lower eukaryotes
US8697394B2 (en) * 2000-06-28 2014-04-15 Glycofi, Inc. Production of modified glycoproteins having multiple antennary structures
US7863020B2 (en) * 2000-06-28 2011-01-04 Glycofi, Inc. Production of sialylated N-glycans in lower eukaryotes
DK1522590T3 (da) 2000-06-28 2009-12-21 Glycofi Inc Fremgangsmåde til fremstilling af modificerede glykoproteiner
US7598055B2 (en) * 2000-06-28 2009-10-06 Glycofi, Inc. N-acetylglucosaminyltransferase III expression in lower eukaryotes
US7118901B2 (en) * 2002-12-18 2006-10-10 Roche Diagnostics Operations, Inc. Recombinant bovine pancreatic desoxyribonuclease I with high specific activity
ATE387494T1 (de) * 2002-12-20 2008-03-15 Hoffmann La Roche Hitzelabile desoxyribonuklease i-varianten
US7332299B2 (en) 2003-02-20 2008-02-19 Glycofi, Inc. Endomannosidases in the modification of glycoproteins in eukaryotes
EP1460425A1 (en) * 2003-03-17 2004-09-22 Boehringer Mannheim Gmbh Deglycosylated enzymes for conjugates
ES2337684T3 (es) * 2003-12-05 2010-04-28 F. Hoffmann-La Roche Ag Carboxipeptidasa b recombinante y su purificacion.
CN100388381C (zh) * 2004-10-14 2008-05-14 联发科技股份有限公司 光学储存媒体的数据记录方法及其装置
MY146082A (en) * 2005-09-14 2012-06-29 Sanofi Aventis Deutschland Cleavage of precursors of insulins by a variant of trypsin

Family Cites Families (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4540668A (en) * 1979-06-05 1985-09-10 Phillips Petroleum Company Alcohol oxidase from Pichia-type yeasts
US4427580A (en) * 1982-09-01 1984-01-24 Cornell Research Foundation, Inc. Method for separation and recovery of proteins and nucleic acids from nucleoproteins using water destructuring salts
US4512922A (en) * 1982-12-22 1985-04-23 Genentech, Inc. Purification and activity assurance of precipitated heterologous proteins
EP0135435A3 (en) * 1983-08-22 1987-03-25 Merck & Co. Inc. Immunogenic hbsag derived from transformed yeast
US4559307A (en) * 1983-10-17 1985-12-17 Phillips Petroleum Company Treatment of yeast cells with proteolytic enzymes
US4569790A (en) * 1984-03-28 1986-02-11 Cetus Corporation Process for recovering microbially produced interleukin-2 and purified recombinant interleukin-2 compositions
US4604377A (en) * 1984-03-28 1986-08-05 Cetus Corporation Pharmaceutical compositions of microbially produced interleukin-2
GB8414354D0 (en) * 1984-06-05 1984-07-11 Biogen Nv Purifying protein
US4572798A (en) * 1984-12-06 1986-02-25 Cetus Corporation Method for promoting disulfide bond formation in recombinant proteins
US4649192A (en) * 1985-05-30 1987-03-10 Smith Kline-Rit Method for the isolation and purification of hepatitis B surface antigen using polysorbate
US4895800A (en) * 1985-11-26 1990-01-23 Phillips Petroleum Company Yeast production of hepatitis B surface antigen

Also Published As

Publication number Publication date
PT85935A (en) 1987-11-01
US4683293A (en) 1987-07-28
NO874357D0 (no) 1987-10-19
JPS63105693A (ja) 1988-05-10
DD262673A5 (de) 1988-12-07
DK545187D0 (da) 1987-10-19
NO874357L (no) 1988-04-21
YU191387A (en) 1989-06-30
CS752987A2 (en) 1991-08-13
PL268298A1 (en) 1988-07-07
CA1277272C (en) 1990-12-04
PT85935B (pt) 1990-07-31
CN87105519A (zh) 1988-05-04
CN1006808B (zh) 1990-02-14
FI874597A0 (fi) 1987-10-19
HUT45079A (en) 1988-05-30
FI874597A (fi) 1988-04-21
PH23461A (en) 1989-08-07
AU586758B2 (en) 1989-07-20
ZA875698B (en) 1988-04-27
NZ221296A (en) 1989-07-27
IN166069B (pl) 1990-03-10
YU46080B (sh) 1992-12-21
DK545187A (da) 1988-04-21
HU202554B (en) 1991-03-28
EP0271667A1 (en) 1988-06-22
IL83402A0 (en) 1988-01-31
IE872807L (en) 1988-04-20
KR880005259A (ko) 1988-06-28
AU7717887A (en) 1988-04-21

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL154027B1 (en) Method of extracting lypophylic proteins produced by pichia
DE68923115T2 (de) Reinigung von Hepatitis-Proteinen.
JPH03502921A (ja) 乳清からのラクトペルオキシダーゼおよびラクトフェリンの純粋な画分の抽出法
JPH04243899A (ja) 第viii因子の精製およびこの方法で得られた第viii因子
US5151358A (en) Processes for the recovery of naturally produced chymosin
JP2534587B2 (ja) 微生物学的に生成されたキモシンの回収方法
US5139943A (en) Processes for the recovery of microbially produced chymosin
JP4856833B2 (ja) プラスミドdnaの大規模化可能な精製方法
EP0295859B1 (en) Production of proteins in active forms
AU697217B2 (en) A process for the preparation of factor IX from biological sources
Harve et al. Separation of nucleic acids and proteins
WO2000034312A1 (en) Method of separating basic peptide or basic protein
JP2931655B2 (ja) 全血漿から血液疑固▲viii▼因子―フオン・ビルブラント因子複合体濃縮物の製造方法
KR20010034995A (ko) 개질된 수정미세섬유막 및 그 이용
JP3040190B2 (ja) タンパクの精製方法
JPH0244320B2 (pl)
JPS62155090A (ja) Dna断片の分離方法