NO175593B - Fremgangsmåte for fastfase-peptidsyntese - Google Patents

Fremgangsmåte for fastfase-peptidsyntese

Info

Publication number
NO175593B
NO175593B NO893773A NO893773A NO175593B NO 175593 B NO175593 B NO 175593B NO 893773 A NO893773 A NO 893773A NO 893773 A NO893773 A NO 893773A NO 175593 B NO175593 B NO 175593B
Authority
NO
Norway
Prior art keywords
meth
acryloyl
washing
everytime
time
Prior art date
Application number
NO893773A
Other languages
English (en)
Other versions
NO893773D0 (no
NO175593C (no
NO893773L (no
Inventor
Bernard Calas
Michel Follet
Jean Mery
Hanitra Naharisoa
Original Assignee
Expansia Sa
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Expansia Sa filed Critical Expansia Sa
Publication of NO893773D0 publication Critical patent/NO893773D0/no
Publication of NO893773L publication Critical patent/NO893773L/no
Publication of NO175593B publication Critical patent/NO175593B/no
Publication of NO175593C publication Critical patent/NO175593C/no

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/04General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length on carriers

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
  • Polymerization Catalysts (AREA)

Description

Den foreliggende oppfinnelse gjelder fastfase-peptidsyntese.
Forkortelsene benyttet i denne patentbeskrivelse er i samsvar med anbefalingene fra IUPAC-IUB felleskommisjonen for biokjemisk nomenklatur fra 1983 (1983 Recommendations of the IUPAC-IUB Joint Commission on Biochemical Nomenclature), som vist i Eur. J. Biochem., 138, 9-37 (1984). I tillegg, anvendes de følgende:
TFA trifluoreddiksyre
DCM diklormetan
DMF dimetylformamid
NMP N-metylpyrrolidin
DMAc dimetylacetamid
Aminosyrer og deres rester har L-konfigurasjon hvis ikke annet er angitt, for eksempel Ala = L-alanin, DAla = D-alanin. Uttrykket (met)acrylic- er brukt for å indikere enten akryl-eller metakryl-.
De vanlige fremgangsmåter for fastfase-peptidsynteser består av de følgende operasjonssekvenser: 1. - Fjerning av beskyttelsen på Boc-gruppen; 2. - Vaskinger; 3. - Nøytralisering av NH2 i a-posisjon; 4. - Vaskinger;
5. - Koblinger og
6. - Vaskinger.
Trinnene med fjerning av beskyttelse og nøytralisering oppnås ved å behandle resin-peptidet med TFA og diisopropyletylamin-oppløsninger i DCM. Dette samme oppløsningsmidlet benyttes også til mellomliggende vaskinger. Uansett koblingsreagenset som benyttes (symmetrisk anhydrid, dicykloheksylkarbodiimid, hydroksybenzotriazol, osv.), gjennomføres koblingsreaksjonen enten i DCM eller i DMF.
I samsvar med dette, omfatter fastfase-peptidsynteser store mengder av ganske kostbare oppløsningsmidler og reagenser, så som TFA; således er prisen på et peptid direkte avhengig av prisen på DCM, NMP, DMF, DMAc og TFA som er benyttet ved syntesen.
Derfor ville det være av særlig interesse å finne billigere oppløsningsmidler og reagenser for å senke fremstillingskostnadene på peptider vesentlig.
Vårt europeiske patent nr. 0 079 842 beskriver polyakryl-resiner som er kopolymere av tre monomere på følgende måte: (i) en første monomer som er opphavet til den kopolymere og er en av: 1-(met)akryloyl-pyrrolidin,
1-(met)akryloyl-piperidin,
1-(met)akryloyl-perhydroazepin,
1- (met)akryloyl-4-metyl-piperazin,
4-(met)akryloyl-morfolin,
N,N-dimetyl-(met)akrylamid og
N,N-dietyl-(met)-akrylamid
(ii) en annen monomer som danner tverrbindinger i den kopolymere og er en av: N,N'-di(met)akryloyl-diaminometan og
N,N'-di(met)akryloyl-1,2-diaminoetan, og
(iii) en tredje monomer som aktiverer kopolymeren og er en av de følgende syrer: 2- (met)akrylamido-eddiksyre,
3- (met)akrylamido-propionsyre,
4- (met)akrylamido-smørsyre,
6-(met)akrylamido-heksansyre,
N-(met)akryloyl-L-alanin,
N-(met)akryloyl-L-valin,
N-(met)akryloyl-L-leucin,
N-(met)akryloyl-L-fenylalanin,
N-(met)akryloyl-L-tyrosin,
N-(met)akryloyl-L-metionin,
N-(met)akryloyl-L-lysin og
N-(met)akryloyl-L-prolin
eller er en metylester av en av disse syrer.
Disse kopolymere har frie karboksy- eller metoksykarbonylgrupper som kommer fra den tredje monomere. Vårt europeiske patent nr. 814 08 beskriver videre polyakryl-resiner hvori disse grupper har dannet amider med etylendiamin. Det beskriver også bruken av disse ytterligere polyakryl-resiner i fastfase-peptidsyntese, men bare i forbindelse med de kostbare oppløsningsmidler som vanligvis brukes med polystyren-resiner, som diskutert her ovenfor.
Oppfinnelsen gir en fremgangsmåte for fastfase-peptidsyntese, og fremgangsmåten omfatter tilknytning av en første aminosyrerest valgt fra de naturlig forekommende L-a-aminosyrer til et hydrofilt polyakryl-resin, kobling av én eller flere aminosyre-rester valgt fra de naturlig forekommende L-a-aminosyrer så det dannes det ønskede peptid og frigjøring av peptidet fra resinet, karakterisert ved at fremgangsmåten ved koblingen omfatter trinn med vasking av resinet i vann, i én eller flere vandige oppløsninger, eller i kombinasjoner av disse.
Fremgangsmåten ifølge oppfinnelsen utnytter de hydrofile egenskaper som polyakryl-resiner har i motsetning til polystyren-resiner. Polyakryl-resinene til bruk i fremgangsmåten ifølge oppfinnelsen er fortrinnsvis de beskrevet i våre europeiske patenter nr. 0 079 842 og 0 081 408 som diskutert ovenfor.
Den første aminosyre-rest kan festes til matriks ved hjelp av glykolamid-enheten (B. Calas et al., Tetrahedron, 1985, 4_1, 5331). Tidligere forsøk med andre labile bindings-enheter så som hvori X = Br, Cl eller OH, viste seg å være utilfredsstillende.
Resinet kan deretter vaskes i vann. Den neste aminosyren i peptidsekvensen som skal bygges, kan tilsettes ifølge den følgende oppskrift (anvendbar når den beskyttende gruppe er Boe) :
1. - Vasking: destillert vann - 2 til 4 ganger,
2 min. hver gang; 2. - Fjerning av beskyttelse: HCl (6N) i vann - 1 gang, 2 min. og 1 gang til, 30 minutter;
3. - Vasking: destillert vann - 4 til 6 ganger,
2 min. hver gang; 4. - Nøytralisering: 1 ekvivalent borat-buffer 12,5 mM pH 8,5 til 9,0-1 gang, 1 til 2 min. og 1 gang til, 1 til 2 min.;
5. - Vasking: destillert vann - 4 til 6 ganger,
1 til 2 min. hver gang; 6. - Vasking: DMF - 2 ganger, 1 til 2 min. hver gang;
7. - Kobling: symmetrisk anhydrid (2 ekvivalenter,
2 ganger i DMF)
8. - Vasking: DMF eller NMP - 2 ganger, 2 min. hver gang;
og
9. - Vasking: destillert vann - 4 ganger,
2 min. hver gang.
Utviklingen av koblingsreaksjonen kan kontrolleres ved ninhydrin eller fluorescamin.
Alternativt, når den beskyttende gruppe er Fmoc, kan fremgangsmåten for forlengelse være som følgende:
1. - Vasking: destillert vann - 4 til 6 ganger,
2 min. hver gang; 2. - Fjerning av beskyttelse: piperidin eller dietylamin i vann; 3. - Vasking: isopropanol, 2 ganger, 2 min. hver gang; destillert vann - 4 til 6 ganger, 2 min. hver gang; 4. - Eventuell vasking: DMF - 1 gang, 2 min.; 5. - Kobling: symmetrisk anhydrid (3 ganger i overskudd
av DMF) og
6. - Vasking: DMF (2 ganger, 2 min. hver gang);
destillert vann - 6 ganger, 2 min. hver gang.
Når syntesen er fullstendig, adskilles peptidet fra opphavet ved selektiv bryting av glykolamid-bindingene ved hjelp av en av de følgende behandlinger:
- NaOH i isopropanol
- NH3 i trifluoretanol eller metanol eller etanol eller isopropanol,
- N2H4 i DMF og
- CH3OH i trietylamin.
Ved denne fremgangsmåte, fremkom referansepeptidet til Dorman (Leu Ala Gly Val) og LHRH-analoger med utbytter på omtrentlig over 50%.
Oppfinnelsen vil forståes bedre ut fra beskrivelsen av de følgende eksempler:
Eksempel 1
Syntese av DTrp<6->LHRH: pyro-Glu-His-Trp-Ser-Tyr-DTrp-Leu-Arg-Pro-Gly. 5 g av et pblyakryl-resin (0,55 mmol NH2/g) , fremstillet ved kopolymerisering av 1-akryloyl-pyrrolidin, N,N'-diakryloyl-1,2-diaminoetan og metyl 2-akrylamidoacetat som beskrevet i Eksempel 19 fra EP 0 079 842, ble behandlet på følgende måte:
1/ vaskinger med DCM (4 ganger, 2 min. hver gang)
2/ nøytralisering med 5% diisopropyletylamin i DCM
(2 ganger, 2 min. hver gang)
3/ vaskinger med DCM (4 ganger, 2 min. hver gang)
4,29 g (0,0165 mol) bromeddiksyre-anhydrid i 50 ml DCM ble tilsatt til resinet. Etter 45 min. risting, ble DCM-oppløsningen fjernet ved filtrering og det bromerte resin ble vasket på følgende måte:
1/ DCM (4 ganger, 2 min. hver gang)
2/ DMF (4 ganger, 2 min. hver gang)
Cesiumsalt av BOcGlyOH (4,22 g, 0,0137 mol) fremstillet ifølge Mery et al. (Int. J. Protein Peptide Res., 1988, 3_1, 412) ble løst opp i DMF (75 ml) og denne oppløsningen ble tilsatt til resinet. Blandingen ble ristet i 2 dager ved omgivelsenes temperatur. På dette tidspunkt ble DMF filtrert fra og polymeret ble vasket med:
1/ DMF (10 ganger, 2 min. hver gang)
2/ Metanol (4 ganger, 2 min. hver gang)
3/ DCM (4 ganger, 2 min. hver gang)
4/ Dietyleter (4 ganger, 2 min. hver gang)
Resinet ble tørret under høyt vakuum i nærvær av KOH-perler i 12 timer. Mengden av Gly tilknyttet var 0,483 mmol/g, bestemt ved aminosyreanalyse etter hydrolyse i 6N HC1 i evakuerte og forseglede rør ved 110°C i 24 timer.
BocGly-resin (4,47 g) ble vasket med vann (4 ganger, 2 min. hver gang) og Boc-gruppen ble spaltet av ved bruk av 6N HC1 i vann (2 ganger, 1 gang 2 min. og 1 gang igjen 30 min.). HC1 ble fjernet ved filtrering og resinet vasket med vann (6 ganger, 2 min. hver gang). Nøytraliseringen ble utført ved bruk av borat-buffer (12,5 mmol, pH 9), resinet ble behandlet 2 ganger med 50 ml buffer (1 min. hver gang). Etter vasking med vann (6 ganger, 2 min. hver gang) og med DMF (2 ganger, 2 min. hver gang) ble symmetrisk anhydrid av BocProOH i DMF
(50 ml) tilsatt til resinet.
Oppløsningen av symmetrisk anhydrid ble fremstillet på følgende måte: BocProOH (3,55 g, 0,0165 mol) ble løst opp i 40 ml DMF, oppløsningen ble avkjølt til 0°C og dicykloheksylkarbodiimid (1,69 g, 8,25 mmol) i 10 ml DCM ble tilsatt. Etter røring ved 0°C i 30 min. og filtrering, ble oppløsningen dampet inn under høyt vakuum uten oppvarming, og resten ble løst opp i DMF og tilsatt til resinet. Blandingen ble ristet i 30 min., på dette tidspunkt var den kvalitative ninhydrin-testen til Kaiser et al. (Anal. Biochem. 1970, 34., 575) negativ noe som indikerte et koblingsutbytte høyere enn 99,6%. DMF ble deretter fjernet og resinet ble vasket to ganger med DMF (2 min. hver gang) og med vann (4 ganger, 2 min. hver gang).
Denne fremgangsmåte ble benyttet for å føre inn de andre aminosyrer i DTrp<6->LHRH-sekvensen. De symmetriske anhydrider ble fremstillet ved å bruke: BocArg(Mts)OH (7,52 g,
0,0165 mol), BocLeuOH (4,11 g, 0,0165 mol), BocDTrpOH (5,02 g, 0,0165 mol), BocTyr (2,6 diklorbenzyl)OH eller BocTyr (2,6 DCB)0H (7,26 g, 0,0165 mol), BocSer(Bzl)OH (4,86 g,
0,0165 mol), BocTrpOH (5,02 g, 0,0165 mol), BocHis (dinitrofenyl)OH eller BocHis (Dnp)OH (6,94 g, 0,0165 mol), pyro-GluOH (2,13 g, 0,0165 mol).
Etter innføring av pyro-GluOH, ble resinet vasket med metanol (4 ganger, 2 min. hver gang), med dietyleter (4 ganger, 2 min. hver gang) og tørret i høyt vakuum ved omgivelsenes temperatur i 48 timer.
Peptid-resinet ble deretter behandlet med tiofenol
(10 ml) i DMF (50 ml) for å fjerne dinitrofenylgruppen på histidin-sidekj eden.
Etter 45 min. risting, ble tiofenoloppløsningen filtrert og resinet vasket med DMF (4 ganger, 2 min. hver gang), DCM (4 ganger, 2 min. hver gang) og dietyleter (4 ganger, 2 min. hver gang). Resinet ble tørret under høyt vakuum i 12 timer. Det ble behandlet 2 ganger (30 min. hver gang) ved 0°C med 50 ml av den følgende på forhånd avkjølte oppløsning: trifluormetansulfonsyre (3,6 ml), anisol (4 ml), tioanisol (4 ml), metakresol (4 ml) og trifluoreddiksyre (40 ml). Etter at beskyttelsen var slutt, ble resinet vasket med DCM (2 ganger, 2 min. hver gang), DCM/DMF (50-50) (2 ganger, 2 min. hver gang), diisopropyletylamin 5% i DCM (2 ganger, 1 min. hver gang), DMF (3 ganger, 2 min. hver gang), isopropanol-vann (70-30) (3 ganger, 2 min. hver gang). Peptid-resin ble deretter suspendert i en NH3-mettet trifluor-etanolisk oppløsning (250 ml).
Blandingen ble ristet ved omgivelsenes temperatur i 15 timer, den trifluor-etanoliske oppløsning som inneholdt DTrp<6->LHRH hvor beskyttelsen var fjernet, ble samlet og resinet ble vasket med vann (4 ganger, 2 min. hver gang), metanol (4 ganger, 2 min. hver gang) og vann (6 ganger, 2 min. hver gang). Filtratene ble samlet, pH ble bragt til ca. 4 med IN saltsyre; de ble konsentrert under vakuum uten oppvarming. Resten ble fraksjonert på en kolonne med karboksymetylcellulose (Wathman CM 52, 10 x 2 cm) med en lineær gradient av NaCl (10 mM AcONa pH 5,0 til 10 mM av AcONa, 0,15M NaCl pH 5,0). Passende fraksjoner ble samlet, lyofilisert og avsaltet ved gelfiltrering på en kolonne (100 x 2,5 cm) av Sephadex G10 i 10M HC1. Peptidfraksjonen ble deretter renset ved HPLC på en kolonne (270 x 20 mm) Lichrosorb RP18 (10 /im) ved bruk av trifluoreddiksyre (TFA) 0,01% i vann og acetonitril til utvasking.
Utbytte: 51% (basert på aminogruppene på resinet som det startes med).
Aminosyreanalyse: Glu 0,99 (1), Leu 1,0 (1), His 1,0 (1), Trp 1,89 (2), Ser 0,96 (1), Tyr 0,97 (1), Pro 0,99 (1), Gly 1,07 (1).
For noen aminosyrer som er mindre stabile ved sure forhold, kan de analytiske verdier være lavere enn de ventede på grunn av nedbrytning av disse.
Den samme fremgangsmåte ble benyttet for de følgende peptider:
Dorman-peptid: Leu Ala Gly ValOH
Utbytte = 46,6%
Gly = 0,96, Ala = 0,94, Val = 1,05, Leu = 1,04.
Laminin: Tyr Ile Gly Ser ArgNH2
Utbytte = 35,6%
Ser = 0,75, Gly = 1,03, Ile = 0,99, Tyr = 1, Arg = 0,99.
CDC 28 kinose-protein fra celle-syklusen til
"Pombee" gjær
Utbytte = 44,1% (urenset peptid)
Tyr Lys Ala Leu Asp Leu Arg Pro GlyOH
Asp = 1, Gly = 1,08, Ala = 1, Leu = 1,05 x 2, Tyr = 0,99, Arg = 0,99, Lys = 1, Pro = 1.
Tyrosin-fosfatase
Utbytte = 58,6% (urenset peptid)
Cys Ser Asp Ser Glu Lys Leu Asn Leu Asp Ser IleOH
Asp = 0,95 x 3, Ser = 0,58 x 3, Glu = 0,67, Ile = 1,1, Leu =1,1.
Onkogen: Phe Arg Gly Thr Leu Arg
Utbytte = 53,4%
Phe = 0,97, Arg = 2 x 1,1, Gly = 1,02, Thr = 0,99,
Leu = 1.
Eksempel 2
Syntese av Leu-Ala-Gly-Val
1 g av polyakryl-resinet benyttet i Eksempel 1 ble behandlet på følgende måte:
1/ vaskinger med DCM (4 ganger, 2 min. hver gang)
2/ nøytralisering med 5% diisopropyletylamin i DCM
(2 ganger, 2 min. hver gang)
3/ vaskinger med DCM (4 ganger, 2 min. hver gang).
0,858 g (3,3 mmol) bromeddiksyreanhydrid i 10 ml DCM ble tilsatt til resinet. Etter 45 min. risting, ble DCM-oppløsningen fjernet ved filtrering og det bromerte resin ble vasket på følgende måte:
1/ DCM (4 ganger, 2 min. hver gang)
2/ DMF (4 ganger, 2 min. hver gang)
Cesiumsalt av FmocValOH (1,29 g, 2,75 mmol) fremstillet ifølge Mery et al., (Int. J. Peptide Protein Res. 1988, 31, 412) ble løst opp i DMF (15 ml) og oppløsningen ble tilsatt til resinet. Suspensjonen ble ristet ved omgivelsenes temperatur i 3 dager. På dette tidspunkt ble DMF filtrert fra og polymeren ble vasket med:
1/ DMF (10 ganger, 2 min. hver gang)
2/ Metanol (4 ganger, 2 min. hver gang)
3/ DCM (4 ganger, 2 min. hver gang)
4/ Dietyleter (4 ganger, 2 min. hver gang)
Resinet ble tørret under høyt vakuum i nærvær av KOH-perler i 12 timer. Mengden av Val tilknyttet var 0,492 mmol/g, bestemt ved aminosyreanalyse etter hydrolyse i 6N HC1 i evakuerte og forseglede rør i 24 timer.
FmocVal-resin (1,1 g) ble vasket med vann (4 ganger, 2 min. hver gang) og Fmoc-gruppen ble spaltet ved bruk av 10% piperidin eller dietylamin i vann (2 ganger, 2 min. hver gang). Resinet ble deretter vasket med isopropanol (2 ganger, 2 min. hver gang) og med vann (4 ganger, 2 min. hver gang).
Symmetrisk anhydrid av FmocGlyOH i DMF (15 ml) ble tilsatt til resinet. Oppløsningen av symmetrisk anhydrid ble fremstillet på følgende måte: FmocGlyOH (0,981 g, 3,3 mmol) ble løst opp i DCM (15 ml), oppløsningen ble avkjølt til 0°C og dicykloheksylkarbodiimid (0,339 g, 1,65 mmol) i DCM (10 ml). Den blakkede blanding ble rørt i 20 min. ved 0°C, bunnfallet av dicykloheksyl-urinstoff ble fjernet ved filtrering og filtratet ble konsentrert i vakuum ved romtemperatur. Den oljeaktige rest ble løst opp i DMF (15 ml) og oppløsningen ble tilsatt til resinet. Blandingen ble ristet ved romtemperatur i 45 min., på dette tidspunkt var den kvalitative ninhydrin-test til Kaiser et al.
(Anal. Biochem. 1970, 34., 575) negativ. DMF ble fjernet ved filtrering og resinet ble vasket med DMF (2 ganger, 2 min. hver gang) og så med vann (6 ganger, 2 min. hver gang).
Denne fremgangsmåte ble benyttet for å innføre de følgende aminosyrer: Leu og Ala. Det symmetriske anhydrid ble fremstillet ved å starte med 1,16 g (3,3 mmol) FmocLeuOH og 1,02 g (3,3 mmol) FmocAlaOH. Etter fullføring av syntesen, ble peptid-resin addisjonsproduktet vasket med isopropanol (4 ganger, 2 min. hver gang), vann (4 ganger, 2 min. hver gang) og isopropanol-vann (70-30) (4 ganger, 2 min. hver gang).
Peptid-resin ble deretter suspendert i isopropanol-vann (70-30) og 1,1 ml IN NaOH ble tilsatt. Blandingen ble ristet ved omgivelsestemperatur i 5 timer, isopropanol-vann-oppløsningen som inneholdt Leu-Ala-Gly-Val ble samlet og resinet ble vasket med vann (4 ganger, 2 min. hver gang), metanol (4 ganger, 2 min. hver gang) og vann (4 ganger, 2 min. hver gang). Filtratene ble samlet, pH ble bragt til 4 med IN HC1, oppløsningen ble konsentrert under vakuum ved romtemperatur. Resten ble renset ved HPLC på en kolonne (250 x 20 mm) med Lichrosorb RP 18 (10 /xm) ved bruk av TFA 0,1% i vann og acetonitril til utvaskingene.
Utbytte: 54% (basert på aminogruppene på resinet som det startes med).
Aminosyreanalyse: Leu 1,02 (1), Ala 0,99 (1), Gly 1,1 (1), Val 1,0 (1).
Den samme fremgangsmåte ble benyttet for syntesen av de følgende peptider:
Dorman-peptid: Leu Ala Gly ValOH
Utbytte = 46,6%
Gly = 0,93, Ala = 0,91, Val = 1,01, Leu = 1.
Laminin: Tyr Ile Gly Ser ArgNH2
Utbytte = 46,3%
Ser = 0,79, Gly = 1,01, Ile = 0,96, Tyr = 0,89, Arg = 0,93.
- CDC 28 kinase-protein fra celle-syklusen til
"Pombee" gjær
Utbytte = 48,6% (urenset peptid)
Tyr Lys Ala Leu Asp Leu Arg Pro GlyOH
Asp = 0,97, Gly = 1,02, Ala = 0,98, Leu = 1,02 x 2,
Tyr = 0,98, Arg = 0,96, Lys = 1, Pro = 0,97.
- Tyrosin-fosfatase
Utbytte = 61,6% (urenset peptid)
Cys Ser Asp Ser Glu Lys Leu Asn Leu Asp Ser IleOH
Asp = 0,99 x 3, Ser = 0,63 x 3, Glu = 0,73, Ile = 1,03, Leu = 1.
Onkogen: Phe Arg Gly Thr Leu Arg
Utbytte = 49,2%
Phe == 1, Arg = 2 x 1,04, Gly = 1, Thr = 0,96, Leu = 0,98.

Claims (5)

1. Fremgangsmåte for fastfase-peptidsyntese, der fremgangsmåten omfatter tilknytning av en første aminosyre-rest valgt fra de naturlig forekommende L-a-aminosyrer til et hydrofilt polyakryl-resin, kobling av ytterligere én eller flere aminosyre-rester valgt fra de naturlig forekommende L-a-aminosyrer så det dannes det ønskede peptid og frigjøring av peptidet fra resinet, karakterisert ved at fremgangsmåten ved koblingen omfatter trinn med vasking av resinet i vann, i én eller flere vandige oppløsninger, eller i en kombinasjon av disse.
2. Fremgangsmåte i henhold til krav 1, karakterisert ved at det hydrofile polyakryl-resinet er en kopolymer av tre monomere som følger: (i) en første monomer som utgjør et skjelett i den kopolymere og er én av 1-(met)akryloyl-pyrrolidin, 1-(met)akryloyl-piperidin, 1-(met)akryloyl-perhydroazepin, 1- (met)akryloyl-4-metyl-piperazin, 4-(met)akryloyl-morfolin, N,N-dimetyl-(met)akrylamid og N,N-dietyl-(met)akrylamid (ii) en annen monomer som danner tverrbindinger i kopolymeren og er en av: N,N'-di(met)akryloyl-diaminometan og N,N'-di(met)akryloyl-l,2-diaminoetan og (iii) en tredje monomer som aktiverer kopolymeren og er en av de følgende syrer: 2- (met)akrylamido-eddiksyre, 3- (met)akrylamido-propionsyre, 4- (met)akrylamido-smørsyre, 6-(met)akrylamido-heksansyre, N-(met)akryloyl-L-alanin, N-(met)akryloyl-L-valin, N-(met)akryloyl-L-leucin, N-(met)akryloyl-L-fenylalanin, N-(met)akryloyl-L-tyrosin, N-(met)akryloyl-L-metionin, N-(met)akryloyl-L-lysin og N-(met)akryloyl-L-prolin eller en metylester av en av disse syrer.
3. Fremgangsmåte i henhold til krav 1, karakterisert ved at det hydrofile polyakryl-resinet er en kopolymer i henhold til krav 2, som har dannet amid med etylendiamin.
4. Fremgangsmåte i henhold til noen av de foregående krav, karakterisert ved at den N-beskyttende gruppe brukt ved aminosyre-koblingen er Boe og fremgangsmåten ved koblingen er: 1. - Vasking: destillert vann - 2 til 4 ganger, 2 min. hver gang; 2. - Fjerning av beskyttelse: (6N) HC1 i vann - 1 gang, 2 min. og 1 gang igjen, 30 minutter; 3. - Vasking: destillert vann - 4 til 6 ganger, 2 min. hver gang; 4. - Nøytralisering: 1 ekvivalent 12,5 mM borat-buffer pH 8,5 til 9,0-1 gang, 1 til 2 min. og 1 gang igjen, 1 til 2 min.; 5. - Vasking: destillert vann - 4 til 6 ganger, 1 til 2 min. hver gang; 6. - Vasking: DMF - 2 ganger, 1 til 2 min. hver gang; 7. - Kobling: symmetrisk anhydrid (2 ekvivalenter, 2 ganger i DMF) 8. - Vasking: DMF eller NMP - 2 ganger, 2 min. hver gang; og 9. - Vasking: destillert vann - 4 ganger, 2 min. hver gang.
5. Fremgangsmåte i henhold til noen av kravene 1 til 3, karakterisert ved at den N-beskyttende gruppe benyttet ved aminosyre-koblingen er Fmoc og fremgangsmåten ved koblingen er: 1. - Vasking: destillert vann - 4 til 6 ganger, 2 min. hver gang; 2. - Fjerning av beskyttelse: ca. 10% piperidin eller dietylamin i vann; 3. - Vasking: isopropanol, 2 ganger, 2 min. hver gang; destillert vann - 4 til 6 ganger, 2 min. hver gang; 4. - Eventuell vasking: DMF - 1 gang, 2 min.; 5. - Kobling: symmetrisk anhydrid (3 ganger i overskudd av DMF) og 6. - Vasking: DMF (2 ganger, 2 min. hver gang); destillert vann - 6 ganger, 2 min. hver gang.
NO893773A 1988-09-24 1989-09-22 Fremgangsmåte for fastfase-peptidsyntese NO175593C (no)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GB888822502A GB8822502D0 (en) 1988-09-24 1988-09-24 New peptide synthesis method

Publications (4)

Publication Number Publication Date
NO893773D0 NO893773D0 (no) 1989-09-22
NO893773L NO893773L (no) 1990-03-26
NO175593B true NO175593B (no) 1994-07-25
NO175593C NO175593C (no) 1994-11-02

Family

ID=10644204

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
NO893773A NO175593C (no) 1988-09-24 1989-09-22 Fremgangsmåte for fastfase-peptidsyntese

Country Status (30)

Country Link
JP (1) JPH0768265B2 (no)
KR (1) KR900004761A (no)
AR (1) AR244701A1 (no)
AT (1) AT400439B (no)
AU (1) AU622705B2 (no)
BE (1) BE1002237A3 (no)
CA (1) CA1333441C (no)
CH (1) CH679672A5 (no)
DE (1) DE3931731C2 (no)
DK (1) DK468589A (no)
ES (1) ES2018924A6 (no)
FI (1) FI101474B1 (no)
FR (1) FR2636951B1 (no)
GB (2) GB8822502D0 (no)
GR (1) GR1000564B (no)
HK (1) HK47792A (no)
IE (1) IE62008B1 (no)
IT (1) IT1231960B (no)
LU (1) LU87592A1 (no)
MA (1) MA21633A1 (no)
MY (1) MY106567A (no)
NL (1) NL8902361A (no)
NO (1) NO175593C (no)
NZ (1) NZ230712A (no)
OA (1) OA09243A (no)
PT (1) PT91784B (no)
SE (1) SE8903121L (no)
SG (1) SG40692G (no)
TN (1) TNSN89104A1 (no)
ZA (1) ZA897151B (no)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5811241A (en) * 1995-09-13 1998-09-22 Cortech, Inc. Method for preparing and identifying N-substitued 1,4-piperazines and N-substituted 1,4-piperazinediones
IL156258A0 (en) * 2000-12-22 2004-01-04 Kinerton Ltd Process for the synthesis of a peptide having a trp residue

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3951741A (en) * 1973-07-10 1976-04-20 Peter Pfaender Process and apparatus for the synthesis of peptides by use of n-carboxyanhydrides
US4439545A (en) * 1981-11-19 1984-03-27 Societe D "Expansion Scientifique "Expansia" Acrylic copolymers of N-acryloylpolymethyleneimines or N-acryloyldialkylamides, N,N'-acryloyldiaminoalcanes and N-acryloylaminoacids (or esters) their preparation and use as cation exchangers

Also Published As

Publication number Publication date
FI894489A (fi) 1990-03-25
DE3931731A1 (de) 1990-03-29
AU622705B2 (en) 1992-04-16
ZA897151B (en) 1990-06-27
AR244701A1 (es) 1993-11-30
MA21633A1 (fr) 1990-04-01
KR900004761A (ko) 1990-04-13
MY106567A (en) 1995-06-30
GB8822502D0 (en) 1988-10-26
ATA219989A (de) 1995-05-15
NO893773D0 (no) 1989-09-22
NO175593C (no) 1994-11-02
ES2018924A6 (es) 1991-05-16
GR1000564B (el) 1992-08-26
IE893037L (en) 1990-03-24
IE62008B1 (en) 1994-12-14
FI894489A0 (fi) 1989-09-22
LU87592A1 (fr) 1990-01-08
GB2223227B (en) 1992-01-15
JPH0768265B2 (ja) 1995-07-26
DK468589D0 (da) 1989-09-22
PT91784B (pt) 1996-01-31
BE1002237A3 (fr) 1990-10-30
AU4161489A (en) 1990-03-29
TNSN89104A1 (fr) 1991-02-04
GR890100587A (en) 1990-10-31
IT1231960B (it) 1992-01-16
GB8921637D0 (en) 1989-11-08
DE3931731C2 (de) 1996-06-13
SG40692G (en) 1992-06-12
SE8903121D0 (sv) 1989-09-22
CH679672A5 (no) 1992-03-31
SE8903121L (sv) 1990-03-25
JPH02129200A (ja) 1990-05-17
NZ230712A (en) 1991-07-26
DK468589A (da) 1990-03-25
NO893773L (no) 1990-03-26
HK47792A (en) 1992-07-10
FI101474B (fi) 1998-06-30
AT400439B (de) 1995-12-27
OA09243A (en) 1992-06-30
CA1333441C (en) 1994-12-06
PT91784A (pt) 1990-03-30
FI101474B1 (fi) 1998-06-30
NL8902361A (nl) 1990-04-17
FR2636951B1 (fr) 1991-03-08
FR2636951A1 (fr) 1990-03-30
GB2223227A (en) 1990-04-04
IT8921804A0 (it) 1989-09-22

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CA1318462C (en) Synthetic resin
US4569967A (en) Synthesis of N-substituted peptide amides
AU2010241171B2 (en) Method for the manufacture of degarelix
AU4199397A (en) Improved solid-phase peptide synthesis and agent for use in such synthesis
NO161977B (no) Amino-funksjonaliserte akryl-kopolymerer.
US6897289B1 (en) Peptide synthesis procedure in solid phase
NO161744B (no) Fremgangsmaate for fremstilling av peptidet h-arg-x-z-y-tyr-r.
US5175254A (en) Solid phase peptide synthesis using a polyacrylic support in aqueous solution
NO175593B (no) Fremgangsmåte for fastfase-peptidsyntese
NO166449B (no) Gonadoliberinderivater.
US4701499A (en) Synthesis of N-substituted peptide amides
NO148373B (no) Fremgangsmaate ved fremstilling av et harpikspeptid
US4301045A (en) Synthesis of peptides
EP0056274B1 (en) Indole derivatives and a method for production of peptides
CN114945580B (zh) 用于合成南吉博肽的方法
Nishiyama et al. Cyclohexyl ether as a new hydroxy-protecting group for serine and threonine in peptide synthesis 1
HU190207B (en) Process for production of new gonadoliberine derivatives
NO177100B (no) Peptider

Legal Events

Date Code Title Description
MM1K Lapsed by not paying the annual fees

Free format text: LAPSED IN MARCH 2001