NO153061B - Fremgangsmaate for fremstilling av et b30-threonininsulin - Google Patents

Fremgangsmaate for fremstilling av et b30-threonininsulin Download PDF

Info

Publication number
NO153061B
NO153061B NO801048A NO801048A NO153061B NO 153061 B NO153061 B NO 153061B NO 801048 A NO801048 A NO 801048A NO 801048 A NO801048 A NO 801048A NO 153061 B NO153061 B NO 153061B
Authority
NO
Norway
Prior art keywords
insulin
threonine
stated
des
trypsin
Prior art date
Application number
NO801048A
Other languages
English (en)
Other versions
NO153061C (no
NO801048L (no
Inventor
Kazuvuki Morihara
Tatsushi Oka
Hiroshige Tsuzuki
Masami Soejima
Takeharu Masaki
Original Assignee
Shionogi & Co
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=26385768&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=NO153061(B) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Priority claimed from JP4571079A external-priority patent/JPS55138393A/ja
Priority claimed from JP4571179A external-priority patent/JPS55138391A/ja
Application filed by Shionogi & Co filed Critical Shionogi & Co
Publication of NO801048L publication Critical patent/NO801048L/no
Priority to NO844636A priority Critical patent/NO163531C/no
Publication of NO153061B publication Critical patent/NO153061B/no
Publication of NO153061C publication Critical patent/NO153061C/no

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/575Hormones
    • C07K14/62Insulins
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02PCLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES IN THE PRODUCTION OR PROCESSING OF GOODS
    • Y02P20/00Technologies relating to chemical industry
    • Y02P20/50Improvements relating to the production of bulk chemicals
    • Y02P20/55Design of synthesis routes, e.g. reducing the use of auxiliary or protecting groups

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Description

Foreliggende oppfinnelse vedrører en fremgangsmåte for fremstilling av et B30-threonin-insulin, og det særegne ved fremgangsmåten i henhold til oppfinnelsen er at et des-B30-insulin i nærvær av trypsin eller et trypsinlignende enzym i et medium med pH 5 - 9, og temperatur på 0 - 50°C, og som inneholder et eller flere organiske løsningsmidler, omsettes med en overskuddsmengde av et threoninderivat representert ved formelen
Thr (R<1>)(R<2>)
hvori Thr er L-threoninresten, R"<*>" er hydrogen eller en hydroksybeskyttende gruppe, og R er en karboksylbeskyttende gruppe, og, om ønsket, fjernes beskyttelsesgruppen eller gruppene.
Disse og andre trekk ved fremgangsmåten i henhold til oppfinnelsen fremgår av patentkravene.
Oppfinnelsen vedrører således en halvsyntese av humaninsulin. Mer spesielt består den i en enzymatisk syntese av et B30-threonin-insulin inklusive humaninsulin. Syntesen gjennomføres ved å omsette et des-B30-insulin med en overskuddsmengde av threoninderivat i nærvær av et enzym som spesifikt virker på det basiske aminosyre-karbonyl i peptidbindinger og fjerner en beskyttende gruppe fra threoninet slik at man får et B30-threonin-insulin.
Insulin er en uomgjengelig nødvendig medisin for behandling av diabetes. Okse- og svineinsuliner kan idag fås i handelen. Men disse insuliner er dog forskjellige fra humaninsulin med hensyn til noen aminosyrekomponenter, som bevirker dannelse av antistoffer i pasienter. Antistoffene er kjent for å nedsette effektiviteten av ytterligere insulinbehandling. Derfor be-gunstiges humaninsulin, og dets kommersielle tilgjengelighet har lenge vært sterkt ønsket. Humaninsulin er forskjellig fra annet animalsk insulin ved aminosyrekomponentene i posisjonene 8, 9 og 10 i A-kjeden og ved posisjon 30 i B-kjeden. Denne oppfinnelse tilveiebringer en fremgangsmåte for å erstatte aminosyren i 30-posisjonen i B-kjeden av et animalsk insulin med L-threonin. Følgelig kan humaninsulin lett fremstilles ved fremgangsmåten i henhold til oppfinnelsen ved å anvende svineinsulin som utgangsmateriale. Svineinsulin er forskjellig fra humaninsulin i aminosyren ved B30-posisjonen. Således - oppnådd humaninsulin anvendes fordelaktig for behandling av diabetiske pasienter. Oppfinnelsen tilveiebringer videre andre B30-threonin-insuliner ved å gå ut fra andre animalske insuliner. De resulterende insuliner er forskjellige fra humaninsulin i aminosyrene 8, 9 og 10-posisjonene av A-kjeden og kan anvendes som reagenser for å teste antigenj sitet og medikament for diabetes.
Humaninsulin ble kjemisk fremstilt av M.A. Ruttenberg som vist i US patentskrift nr. 3.903.068 og R. Obermeier et al. beskrevet i Hoppe-Seylers Z. Physiol. Chem. 357, 759-767 (1976). Disse prosesser omfatter kompensering av et desoktapeptid-(B23-30)-svineinsulin med et syntetisk oktapeptid tilsvarende posisjonene B23-30 i humaninsulin. Den første prosess om-fatter imidlertid alkalisk hydrolyse som gir skadelige bireaksjoner. Den siste prosess er også en ikke—spesifikk reaksjon som medfører mange bireaksjoner og krever kompliserte rense-prosedyrer. Disse prosesser kan derfor ikke anvendes i industriell målestokk.
M. Bodanszky et al. foreslo en fremgangsmåte for fremstilling av humaninsulin i US patentskrift nr. 3.276.961 hvor humaninsulin fremstilles fra andre animalske insuliner ved en innvirkning av et enzym som karboksypeptidase A og trypsin i nærvær av threonin. Denne prosess vil sannsynlig ikke frem-bringe humaninsulin på grunn av at trypsin og karboksypeptidase A ikke bare hydrolyserer peptidbindingen av lysyl-alanin (B29-B30), men også de andre posisjoner i insulin under de betingelser som er beskrevet der. Trypsin hydrolyserer foretrukket peptidbindingen i arginyl-glycin (B22-B23) snarere enn lysyl-alaninet (B29-B30). Karboksypeptidase A kan imidlertid ikke frigi bare alaninet ved C-enden av B-kjeden uten å frigi asparagin ved C-enden av A-kjeden. En spesiell betingelse, det vil si omsetning i en ammonium-hydrogenkarbonat-buffer-løsning er nødvendig for å forhindre frigivelsen av aspara-ginet. Denne betingelse ble oppdaget i 1978 (Hoppe-Seylers Z. Physiol Chem., 359, 799-802 (1978)). Videre vil peptidsyntese neppe foregå på grunn av at hydrolysehastigheten er større enn syntesehastigheten ved denne tilstand.
Det konkluderes derfor med at det ikke har vært noen til-gjengelig industriell fremgangsmåte for fremstilling av humaninsulin til denne tid.
Med den foreliggende oppfinnelse kan imidlertid humaninsulin fremstilles i kommersiell målestokk. Prosessen består av enzymatisk kondensering av et des-B30-insulin med et L-threonin derivat. Fremgangsmåten er forskjellig fra alle tidligere kjente prosesser og har mange fordeler. Den er en spesifikk reaksjon som ikke medfølges av noen skadelige bireaksjoner som for eksempel racemisering. I tillegg kan uomsatt utgangsmaterial lett gjenvinnes uten skade og anvendes på nytt. Prosessen anvender en overskuddsmengde av L-threoninderivat. Overskuddsmengden av threoninderivatet forhindrer bruddet av karbonylbindingen til argininet i 22-posisjonen av B-kjeden, selv om bindingen vanligvis spaltes av trypsin. Følgelig er beskyttelsen av argininresten som må foretas ved vanlig enzymatisk reaksjon, ikke nødvendig ved fremgangsmåten i henhold til oppfinnelsen.
Prosessen omfatter således en omsetning av et des-B30-insulin (benevnt forbindelse II heretter) med en overskuddsmengde av L-threoninderivat (benevnt forbindelse I heretter) i nærvær av et enzym som spesifikt virker på det basiske aminosyre-karbonyl i peptidbindinger og etterfølgende fjernelse av de beskyttende grupper på threoninet.
Forbindelsen I representeres ved hjelp av følgende formel:
Thr (R<1>)(R<2>)
hvori Thr er L-threoninresten, R"'" er hydrogen eller en hydroksybeskyttende gruppe, og R <2>er en karboksylbeskyttende gruppe.
Forbindelsen II kan fremstilles ved å omsette forskjellige animalske insuliner (for eksempel fra gris, kveg, hval, sau, kanin, fisk, aper o.l.) med karboksypeptidase A som omhandlet av E. W. Shimitt et al. i Hoppe-Seylers Z. Physiol. Chem.
359, 799 (1978). Den kan også fremstilles ved å anvende en protease fremstilt ved hjelp av Achromobachter lyticus. Proteasen har en spesifikk virkning overfor lysin og spalter spesifikt lysinkarbonylbindinger i peptidbindinger. Isolasjonen og egenskapene er beskrevet av Masaki et al. i Agric. Biol. Chem., 42, 1443 (1978). Enzymet benevnes protease I. Fremstillingen av des-B30-svineinsulin er omhandlet i Biochem. Biophys. Res. Commun. 92, 396-402 (1980) og japansk off. skrift nr. 54-135789. Des-B30-insuliner av andre dyr kan fremstilles på samme måte.
Hydroksygruppen i forbindelsen I kan beskyttes eller ikke. Begge forbindelser kan anvendes for reaksjonen. Den beskyttende gruppe som anvendes velges fra hvilken som helst hydroksybeskyttende gruppe som vanlig anvendes i peptidsyntese som for eksempel t-butyl, benzyl, acetyl o.l. Karboksylgruppen i forbindelsen I må beskyttes og en hvilken som helst karboksylbeskyttende gruppe anvendt ved peptidsyntese kan anvendes. Slike grupper er for eksempel alkylester (for eksempel t-butyles ter) , aralkylester (for eksempel benzyl-ester), amid, substituerte amider (for eksempel anilid), salter (for eksempel natriumsalter) o.s.v.
Den beskyttende gruppe bør velges i betraktning av innførings-reaksjonen og fjernelsesreaksjonen for insulin på grunn av at reaksjonene kan resultere i denaturering eller inaktivering av insulinet. Hvis en hydroksybeskyttende gruppe og en
karboksylbeskyttende gruppe av threoninresten velges på passende måte, er en fjernelseprosedyre nok for å fjerne begge
de beskyttende grupper. Beskyttende grupper anvendt ved pep-tidsynteser er gjengitt detaljert av M. Bodansky et al. i Peptide Synthesis, 2. utgave (1976), utgitt av John Wiley & Sons .
Enzymet anvendt ved fremgangsmåten omfatter enzymer som spesifikt virker på det basiske aminosyre-karbonyl i peptidbindinger som kan oppnås av forskjellige planter og dyr, og disse er for eksempel trypsin, trypsinlignende enzymer o.l. Trypsinlignende enzymer er illustrert som for eksempel protease isolert av Morihara et al. i Arch. Biochem. Biophys. 126, 971 (1968) og proteasen er omhandlet av Yoshida et al. i FEBS Lett., 15, 129 (1971). Det enzym som skal anvendes kan behandles med tosyl-L-fenylalanin-klormetylketon (forkortet TPCK i det følgende) for å fjerne blandede enzymer som for eksempel chymotrypsin og chymotrypsinlignende enzym.
Videre er proteaser I fremstilt av Achromobacter lyticus
M497-1 et trypsinlignende enzym og inkludert i de enzymer som kan anvendes. Protease I virker spesifikt på lysinkarbonyl i peptidbindinger og isoleringen, og egenskapene er beskrevet i Agric. Biol Chem., 42, 1443 (1978). Kondenseringen av forbindelsen I med forbindelsen II gjennomføres under passende betingelser for peptidsyntesen av de ovennevnte enzymer. Reaksjonen gjennomføres som angitt ved pH 5 - 9, foretrukket pH 6 - 7. Reaksjonstemperaturen er 0 til 50°C, foretrukket omtrent 20 til 40°C. Det er ønskelig at konsentrasjonene både av forbindelsen I og forbindelsen II er så høye som mulig. Det foretrukne mol-forhold mellom forbindelsen I og forbindelsen II er 5:1 til 1000:1, spesielt 25:1 til 200:1. Med vann blandbare organiske løsningsmidler tilsettes som angitt til reaksjonsblandingen. Tilsetningen av organisk løs-ningsmiddel nedsetter de vandige konsentrasjoner av reaksjonsblandingen og resulterer i forhindring av reverserte reak-sjoner, det vil si hydrolyse av produktet, og øker også opp-løseligheten av forbindelsen I og forbindelsen II merkbart.
De organiske løsningsmidler som anvendes er for eksempel metanol, etanol, dimetylformamid, dimetylsulfoksyd, glycerol o.l. De kan anvendes enkeltvis eller som en blanding. Den foretrukne konsentrasjon av det organiske løsningsmiddelet er 0 til 65 %, spesielt 40 til 60 % av reaksjonsblandingen. Mengden av organisk løsningsmiddel bør bestemmes av oppløse-ligheten av utgangsmaterialene, tendensen til denaturering for enzymet og dets hydrolyserende aktivitet.
Reaksjonsmediet kan velges fra trishydroksymetylaminometan (forkortet tris i det følgende), karbonat, borat-buffer-løsninger o.l. Enzymkonsentrasjonen bestemmes i avhengighet av konsentrasjonen av substrater og enzymaktiviteter. For eksempel anvendes handelsvanlig krystallinsk trypsin foretrukket i konsentrasjoner på omtrent 1 mg/ml til 10 mg/ml. Enzymet kan anvendes intakt eller i en fiksert form som for eksempel en kombinasjon mellom eller en inklusjon i en uopp-løselig bærer som for eksempel cellulose, dextran (for eksempel "Sephadex"), agarose (for eksempel "Sepharose"), polyakrylamidgel ("Bio-gel"), porøst glass o.l.
Reaksjonstiden er varierbar og påvirkes av andre reaksjonsbe-tingelser. Reaksjonen kan fortsettes inntil substrat og produkt blir i likevekt. Det tar vanligvis 3 til' 72 timer og i de fleste tilfeller 6 til 24 timer.
Insulinproduktet kan isoleres ved kombinasjon av den vanlige metode anvendt i peptidkjemien. En isolasjonsprosedyre illu-streres som følger: Reaksjonsblandingen underkastet gelfiltrering for å isolere og samle ureagert forbindelse I og enzym. Gjenvunnet forbindelse I og enzym kan anvendes på nytt. Den resterende del overføres til passende kromatogra-fering for å isolere et resulterende beskyttet insulin og et ureagert des-B30-insulin.
Det sistnevnte kan anvendes på nytt som forbindelse II. Det førstnevnte utsettes for reaksjon for fjernelse av den beskyttende gruppe.
Fjernelsen av beskyttende gruppe gjennomføres på vanlig måte, selv om metoden bør velges i avhengighet av egenskapene av den beskyttende gruppe. t-butylgruppen er et eksempel på en beskyttende gruppe for både hydroksy- og karboksylgruppen i threonin. Den kan fjernes ved å behandle med trifluoreddiksyre i nærvær av kationoppfangende middel, for eksempel anisol. Som bemerket ovenfor, hvis en enkel behandling kan fjerne den hydroksybeskyttende og den karboksylbeskyttende gruppe samtidig, blir prosessen enkel og fører til godt utbytte. Når C-enden av det resulterende insulin er beskyttet med en annen ester, amid, substituert amid eller salt, kan den beskyttende gruppe fjernes ved passende hydrolyse eller av-saltningsteknikk.
Insulin fremstilt ved oppfinnelsen er nyttig for behandling av diabetes og også som et reagens.
Insulinet oppnådd ved oppfinnelsen viser den samme aktivitet med senkning av blodsukkernivået som okseinsulin i mus som følger:
Testmetode:
Testforbindelsen oppløses i 0,01 M saltsyre og løsningen fortynnes til en passende konsentrasjon (2,5 - 20 ^ug/ml) med 20 til 60 ganger fysiologisk saltløsning. Den resulterende oppløsning tilføres intravenøst i en mengde av 0,1 ml/10 g kroppsvekt i DS mus som har fastet i fem timer. Blod tas fra orbitalblodkar 45 minutter etter tilførselen og blodsukker måles ved hjelp av glukoseoksidasemetoden under anvendselse av et kommersielt utstyr fremstilt av Boehringer Mannheim Corporation.
Bemerk: (2)-(4), (3)-(5) ingen vesentlig forskjell.
Humaninsulin fremstilt ved oppfinnelsen kan tilføres mennesker på samme måte som svine- eller okseinsulinpreparater på markedet. Det kan omdannes til farmasøytiske preparater på vanlig måte. For eksempel kan det gjøres til en injiserbar opp-løsning ved passende metoder som for eksempel fremstilling av sinkkomplekset med sinkklorid, en bufret oppløsning med en passende buffer som for eksempel natriumhydrogenfosfat, natriumacetat o.l. og en isotonisk oppløsning som for eksempel natriumklorid. Videre kan passende antiseptiske be-standdeler tilsettes, for eksempel kresol, fenol, para-hydroksybenzosyre, alkylestere (for eksempel metyl-, etyl-, propyl-, butylestere o.l.).
Doseringen av humaninsulinet er den samme som for insulin-preparater på markedet, nemlig omtrent 1 til 100 enheter kan tilføres til voksne mennesker pr. døgn, selv om doseringen avhenger av sykdommens alvorlighet.
De følgende eksempler gis for å illustrere og beskrive oppfinnelsen. I det folgende betyr hver forkortelse følgende: Ala: alanin, Arg: arginin, Asp: aspartinsyre, CysO^H: cysteinsyre, Glu: glutaminsyre, Gly: glycin, His: histidin, Ile: isoleucin, Leu: leucin, Lys: lysin, Phe: fenylalanin,
Pro: prolin, Ser: serin, Thr: threonin, Tyr: tyrosin,
Val: valin, OBu<1>": t-buty lesterrest.
Eksempel 1.
(1) Desalanin-(B30)-svineinsulin.
Til en oppløsning av svineinsulin (500 mg) i 0,1 M ammonium-hydrogenkarbonat (100 ml, pH 8,3) tilsettes krystallinsk karboksypeptidase A (5 mg, Worthington Co., forhåndsbehandlet med diisopropylfluorofosfat, 49 ^u/mg). Blandingen inkuberes ved romtemperatur i åtte timer.
Inkubasjonen stanses når alanin frigis med en hastighet på 0,77 M/IM insulin. Reaksjonsblandingen frysetørkes. Produktet oppløses i 0,5 M eddiksyre og absorberes på en kolonne av Sephadex G 50- (3,5 x 95 cm) av superfine partikler. Kolonnen elueres med 0,5 M eddiksyre med en del av 11,5 ml for hver fraksjon. Fraksjon nr. 40-60 oppsamles og frysetørkes til å gi den i overskriften nevnte forbindelse (460 mg). Utbyttet er lik 92 %.
Produktet hydrolyseres for aminosyreanalyse med 6 M saltsyre ved 110°C i 24 timer til å gi følgende resultat. Tallene i parentes viser de teoretiske verdier i denne sammenheng.
Aminosyreanalyse: Lys 1.00 (1), His 1.91 (2),
Arg 0.95 (1), Asp 3.21 (3), Thr 2.09 (2), Ser 2.97 (3),
Glu 7.35 (7), Gly 4.29 (4), Ala 1.26 (1), Cys03H 5.94 (6), Val 3.86 (4), Ile 1.55 (2), Leu 6.53 (6), Tyr 4.08 (4),
Phe 3.22 (3), Pro 1.2 (1).
(2) ^B30-Thr-OBu^j-svineinsulin.
Det ovennevnte produkt (100 mg, 10 mM) og L-threonin-t-butylester (205 mg, 500 mM) oppløses i en blanding (1,05 ml) av etanol og dimetylformamid (1:1, volumbasis). Til oppløsningen tilsettes en oppløsning av krystallinsk trypsin (4 mg, Worthington Co., omkrystallisert tre ganger) i 0,5 borat-bufferløsning (0,75 ml, pH 6,5) og TPCK i den endelige konsentrasjon på 0,01 mM. Blandingen holdes over natten ved 37°C. Produktet bekreftes ved hjelp av høypresis væskekromatografering og det teoretiske utbyttet er 75 %. Blandingen gjøres sur med iseddik og tilføres gelfiltrering med en kolonne av "Sephadex G 50" (4,2 x 130 cm) av superfine partikler til å gi tre fraksjoner tilsvarende trypsin, det i overskriften nevnte insulinderi vat og L-thr.eonin-t-butylester. Målinger av enzymaktivitet og ninhydrinreaksjon viser at trypsin og L-threonin-t-butylester gjenvinnes hver med 50 %.
Fraksjonen inneholdende insulinderivatet frysetørkes til å gi et råpulver (89 mg) av den i overskriften nevnte forbindelse. Produktet tilføres ved 4°C til en kolonne av "DEAE-
Sephadex A 25" (1,9 x 24,5 cm) som på forhånd er ekvilibrert med 0,01 M tris-bufferløsning (pH 7,6) og 7 M urea. Kolonnen elueres med den ovennevnte bufferløsning (800 ml) og deretter gjennomføres en lineær Na<+> gradient (til 0,3 M NaCl) til en fraksjon A nær 0,08 til 0,09 M konsentrasjon og en fraksjon B nær 0,13 til 0,14 M. Hver fraksjon dialyseres umiddelbart mot 0,01 ammoniumacetat i tre til fire døgn på et koldt sted og frysetørkes til å gi et pulver (35 mg) fra fraksjon A og et pulver (27 mg) fra fraksjon B. Den førstnevnte identifiseres til å være den i overskriften nevnte forbindelse og den sistnevnte bekreftes å være en blanding av desalanin-(B30)-svineinsulin og intakt svineinsulin ved hjelp av høypresis væskekromatografering og polyakrylamid-gel-elektroforese.
(3) Humaninsulin.
Tri fluoreddiksyre (2 ml) med anisol (0,2 ml) tilsettes til produktet (30 mg) oppnådd ovenfor og blandingen holdes ved romtemperatur i 30 minutter. Trifluoreddiksyre fjernes under nitrogenatmosfære og blandingen ekstraheres med eter (15 ml) etter tilsetning av IN eddiksyre (2 ml) for å fjerne anisolen. Eddiksyrelaget frysetørkes til å gi den i overskriften forbindelse (28 mg). Utbyttet er 43 % ved beregning fra utgangsforbindelsen i 77 % renhet.
Produktet identifiseres som den i overskriften nevnte forbindelse med aminosyreanalyse, gel-elektroforese og høypresis væskekromatografering. Aminosyreanalyse gjennomføres under samme betingelser som i (1) og resultatet er som følger:
Aminosyreanalyse:
Lys 1.00 (1), His 1.89 (2), Arg 0,87 (1), Asp 3.32 (3),
Thr 3.16 (3), Ser 2.99 (3), Glu 7.35 (7), Pro 1.29 (1), Gly 4,39 (4), Ala 1.26 (1), CysO H 4,6 (6), Val 3.93 (4), Ile 1.61 (2), Leu 6,51 (6), Tyr 3,68 (4), Phe 3.19 (3).
Eksempel 2.
(1) Desalanin-(B30)-okseinsulin.
Til en løsning av svineinsulin (200 mg) i 0,1 M ammonium-hydrogenkarbonat (40 ml) tilsettes krystallinsk karboksypeptidase A (1,8 mg, 49 ^u/mg). Blandingen holdes over natten ved romtemperatur og frysetørkes til å gi et råpulver (180 mg) av den ovennevnte forbindelse. Produktet påvises å bestå av 78 % av den i overskriften nevnte forbindelse og 22 % desasparagin-(A21)-desalanin-(B30)-insulin.
(2) |^B30-Thr-OBu^] -okseinsulin.
Produktet (116 mg, 5 mM) oppnådd ovenfor (1) og L-threonin-t-butylester (448 mg, 500 mM) oppløses i en blanding (2,4 ml) av etanol og dimetylformamid (1:1). Oppløsningen blandes med 0,5 M borat-bufferløsning (1,6 ml, pH 7,0) inneholdende krystallinsk trypsin (87,5 mg, 0,94 mM) og TPCK (0,27 mg,
0,2 mM) og inkuberes over natten ved 37°C. Fremstillingen av den i overskriften nevnte forbindelse bekreftes ved høypre-sis væskekromatografering og utbyttet beregnes å være 80 %.
Reaksjonsblandingen behandles på samme måte som i
Eksempel 1 (2). Den resulterende fraksjon A rekromatograferes for å fjerne desasparagin-(A21)-desalanin-(B30)-insulin og behandles på samme måte som i Eksempel 1 (2) til å gi et råpulver (63 mg). Produktet identifiseres å være den i overskriften nevnte forbindelse ved hjelp av høypresis væske-kromatograf ering og gel-elektroforese.
(3) ^B30-ThrJ -okseinsulin.
Til produktet (63 mg) av den ovennevnte (2) tilsettes trifluoreddiksyre (2 ml) med anisol (0,2 ml). Blandingen holdes ved romtemperatur i 30 minutter, behandles så på samme måte som i Eksempel 1 (3) og frysetørkes til å gi den i overskriften nevnte forbindelse (60 mg). Utbyttet er 66 % ved beregning fra utgangsforbindelsen i 78 % renhet.
Produktet identifiseres med |^B30-ThrJ -okseinsulin fremstilt ved en annen metode med aminosyreanalyse, gel-elektroforese og høypresis væskekromatografering. Aminosyreanalyse gjennom-føres under samme betingelser som i Eksempel 1 (1) og resultatet er som følger:
Aminosyreanalyse:
Lys 1.00 (1), His 1.95 (2), Arg 0.98 (1), Asp 3.00 (3), Thr 2.00 (2), Ser 2,83 (3), Glu 6.69 (7), Gly 4.06 (4). Ala 2.06 (2), CysC>3 5.38 (6), Val 4.45 (5), Ile 0,76 (1),
Leu 6.14 (6), Tyr 3,92 (4), Phe 2.97 (3), Pro 1.20 (1).
Eksempel 3.
(L) [B30-Thr-OBu^j -svineinsulin.
Desalanin-(B30)-svineinsulin (100 mg, 10 mM) fremstilt ved hjelp av prosessen i Eksempel 1 (1) og L-threonin-t-butylester (205 mg, 500 mM) oppløses i en blanding (1,05 ml) av etanol og dimetylformamid (1:1, volumbasis). Oppløsningen blandes med en 0,5 M borat-bufferløsning (0,7 ml) av protease I (0,35 mg) fremstilt av Achromobacter lyticus M'4 9 7-1 og inkuberes ved 37°C i to døgn. Reaksjonsblandingen gjøres sur med iseddik og tilføres en gelfiltrering med en kolonne (4,2 x 130 cm) av "Sephadex G 50" av superfine partikler til separering til en enzymfraks jon, en insulinfraks jon og en threoninfraks jon. Enzymet og L-threonin-t-butylester gjenvinnes med mer enn 50 %. Insulinfraksjonen frysetørkes til å gi et råpulver (83 mg). Pulveret tilføres kolonnekromatografering på samme måte som i Eksempel 1 (2) til å gi et pulver (48 mg) fra fraksjon A og et annet pulver (20 mg) fra fraksjon B. Den førstnevnte identifiseres å være den i overskriften nevnte forbindelse og den sistnevnte identifiseres til å være en blanding av desalanin-(B30)-svineinsulin og forurenset svineinsulin .
(2) Humaninsulin.
Produktet (40 mg) oppnådd ovenfor behandles med trifluoreddiksyre (2 ml) og anisol (0,2 ml). Blandingen holdes ved romtemperatur i 30 minutter og behandles så på samme måte som i Eksempel 1 (3) til å gi den i overskriften nevnte forbindelse (37 mg). Utbyttet er 56 % ved beregning fra utgangs-materialet i 76 % renhet.
Produktet identifiseres å være den i overskriften nevnte forbindelse ved hjelp av aminosyreanalyse, gel-elektroforese og høypresis væskekromatografering. Aminosyreanalyse gjennom-føres under samme betingelser som i Eksempel 1 (1) og resultatet er som følger:
Aminosyreanalyse:
Lys 1.00 (1), His 1.90 (2), Arg 0,93 (1), Asp 3.21 (3), Thr 3.05 (3), Ser 2.99 (3), Glu 7.23 (7), Pro 1.25 (1), Gly 4.33 (4), Ala 1.25 (1), Val 3.91 (4), Ile 1.58 (2), Leu 6.51 (6), Tyr 3.66 (4), Phe 3.15 (3).

Claims (8)

1. Fremgangsmåte for fremstilling av et B30-threonin-insulin, karakterisert ved at et des-B30-insulin i nærvær av trypsin eller et trypsinlignende enzym i et medium med pH 5 - 9, og temperatur på 0 - 50°C, og som inneholder et eller flere organiske løsningsmidler, omsettes med en overskuddsmengde av et threoninderivat representert ved formelen: Thr (R<1>)(R<2>) hvori Thr er L-threoninresten, R"'" er hydrogen eller en hydroksybeskyttende gruppe, og R er en karboksylbeskyttende gruppe, og, om ønsket; fjernes beskyttelsesgruppen eller gruppene.
2. Fremgangsmåte som angitt i krav 1, karakterisert ved at det som trypsinlignende enzym anvendes protease I.
3. Fremgangsmåte som angitt i krav 1, karakterisert ved at L-threoninderivatet i forhold til des-B30-insulinet anvendes i et molart forhold på fra 5:1 til 1000:1, foretrukket fra 25:1 til 200 : 1.
4. Fremgangsmåte som angitt i krav 1-3, karakterisert ved at det som organisk løsningsmiddel anvendes metanol, etanol, dimetylformamid, dimetylsulfoksyd eller glyserol, eller blandinger derav, foretrukket etanol eller dimetylformamid.
5. Fremgangsmåte som angitt i krav 1, karakterisert ved at det som des-B30-insulin anvendes des-B30-svineinsulin, eller des-B30-okseinsulin.
6. Fremgangsmåte som angitt i krav 1, karakterisert ved at det som threoninderivat anvendes t-butylesteren av L-threonin.
7. Fremgangsmåte som angitt i krav 1, karakterisert ved at reaksjonen gjennom-føres ved pH 6 til pH 7.
8. Fremgangsmåte som angitt i krav 1, karakterisert ved at reaksjonen gjennom-føres ved temperatur 20 til 40°C.
NO801048A 1979-04-13 1980-04-11 Fremgangsmaate for fremstilling av et b30-threonininsulin NO153061C (no)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
NO844636A NO163531C (no) 1979-04-13 1984-11-21 Beskyttet b30-thr(r1)(r2)-insulin egnet for fremstilling av et b30-threonininsulin.

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP4571079A JPS55138393A (en) 1979-04-13 1979-04-13 Semisynthesis of insulin
JP4571179A JPS55138391A (en) 1979-04-13 1979-04-13 New synthetic method of peptide derivative

Publications (3)

Publication Number Publication Date
NO801048L NO801048L (no) 1980-10-14
NO153061B true NO153061B (no) 1985-09-30
NO153061C NO153061C (no) 1986-01-08

Family

ID=26385768

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
NO801048A NO153061C (no) 1979-04-13 1980-04-11 Fremgangsmaate for fremstilling av et b30-threonininsulin

Country Status (4)

Country Link
EP (1) EP0017938B1 (no)
DE (1) DE3064479D1 (no)
DK (1) DK146482C (no)
NO (1) NO153061C (no)

Families Citing this family (16)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DK147437A (en) * 1980-02-11 1900-01-01 Process for preparing human insulin or threonine B30 esters of human insulin, or a salt or complex thereof
DK319780A (da) * 1980-07-24 1982-01-25 Forenede Bryggerier As Fremgangsmaade til enzymatisk udskiftning af b-30 aminosyren i insuliner
DE3101382A1 (de) * 1981-01-17 1982-09-02 Hoechst Ag, 6000 Frankfurt "verfahren zur herstellung von humanisulin oder dessen derivaten aus schweineinsulin oder dessen derivaten"
WO1983000504A1 (en) * 1981-08-10 1983-02-17 Andresen, Finn, Hede Enzymatic preparation of human insulin
DK353781A (da) * 1981-08-10 1983-02-11 Novo Industri As Fremgangsmaade til fremstilling af insulinderivater
US4601979A (en) * 1981-09-15 1986-07-22 Nordisk Insulinlaboratorium Process for preparing human insulin or B-30 esters thereof
DK149824C (da) * 1982-01-22 1987-03-16 Carlsberg Biotechnology Ltd Fremgangsmaade til enzymatisk udskiftning af b-30 aminosyrer i insuliner
WO1983002772A1 (en) * 1982-02-08 1983-08-18 Robin Ewart Offord An improved method for preparing human insulin from non-human insulin
DE3209184A1 (de) * 1982-03-13 1983-09-15 Hoechst Ag, 6230 Frankfurt Verfahren zur umwandlung von praeproinsulinanaloga zu insulinen
NL8201650A (nl) * 1982-04-21 1983-11-16 Akzo Nv Semisynthetische bereiding van humane insuline.
DK182483A (da) * 1982-04-23 1983-10-24 Wako Pure Chem Ind Ltd Fremgangsmaade til semi-syntese af humant insulin og alkalisk protease til anvendelse derved
DK55183D0 (da) * 1983-02-09 1983-02-09 Nordisk Insulinlab Fremgangsmade til fremstilling af human insulin
DE3326472A1 (de) * 1983-07-22 1985-02-14 Hoechst Ag, 6230 Frankfurt Neue insulin-derivate, verfahren zu deren herstellung und deren verwendung sowie pharmazeutische mittel zur behandlung des diabetes mellitus
DE3333640A1 (de) * 1983-09-17 1985-04-25 Hoechst Ag, 6230 Frankfurt Verfahren zur herstellung von insulin-derivaten, deren b-kette c-terminal verlaengert ist, neue basisch modifizierte insulin-derivate diese enthaltende mittel und ihre verwendung
DK119785D0 (da) * 1985-03-15 1985-03-15 Nordisk Gentofte Insulinpraeparat
EP0294851A3 (de) * 1987-06-12 1990-05-09 Berlin-Chemie Ag Verfahren zur Herstellung von Humaninsulin und seinen Derivaten

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3276961A (en) * 1963-04-08 1966-10-04 Squibb & Sons Inc Process for preparing human insulin
NL7110277A (no) * 1970-07-31 1972-02-02
GB1426061A (en) * 1972-12-28 1976-02-25 Ici Ltd Polypeptides
CH602599A5 (en) * 1974-03-27 1978-07-31 Ciba Geigy Ag Insulin prodn. using different cysteine protecting groups
US4116768A (en) * 1975-04-29 1978-09-26 (Zaidanhojin) Sagami Chemical Research Center Process for producing a peptide
GB1465235A (en) * 1975-04-29 1977-02-23 Sagami Chem Res Process for preparing peptides

Also Published As

Publication number Publication date
DK146482C (da) 1986-10-06
EP0017938B1 (en) 1983-08-03
DE3064479D1 (en) 1983-09-08
DK146482B (da) 1983-10-17
NO153061C (no) 1986-01-08
EP0017938A1 (en) 1980-10-29
DK155680A (da) 1980-10-14
NO801048L (no) 1980-10-14

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4400465A (en) Semi-synthesis of human insulin
NO153061B (no) Fremgangsmaate for fremstilling av et b30-threonininsulin
JP4519324B2 (ja) 共有結合で架橋されたインスリンダイマー
RU2205836C2 (ru) Усовершенствованный способ получения предшественника инсулина с правильно соединенными цистиновыми мостиками
US5698669A (en) Tri-arginine insulins
NO167810B (no) Analogifremgangsmaate til fremstilling av insulinderivater.
US5338668A (en) Opioid peptides derived from wheat proteins
US4401757A (en) Semi-synthesis of human insulin
US4645740A (en) Process for enzymatic replacement of the B-30 amino acid in insulins
JPH0691834B2 (ja) インシュリン誘導体の製法
EP0382732B1 (en) Superactive human insulin analogues
FI79853C (fi) Foerfarande foer framstaellning av insulinderivat.
FI79117B (fi) Foerfarande foer framstaellning av bovine-, svin- eller humaninsulin.
JPH06128287A (ja) ペプチドおよびその製造方法
IL43751A (en) Des-lys29-ala30-insulins and their preparation
HRP940766A2 (en) Enzymatic process for conversion of preproinsulin to insulin
FI73239C (fi) Foerfarande foer framstaellning av ett insulinderivat.
DK155887B (da) Fremgangsmaade til fremstilling af oeb30-thr(r1)(r2)aa - insulin
NO163531B (no) Beskyttet b30-thr(r1)(r2)-insulin egnet for fremstilling av et b30-threonininsulin.
Russell et al. Modification of human placental lactogen with plasmin. Preparation and characterization of a modified hormone with increased biologic activity
JPH0533993B2 (no)
Okamoto et al. An improved method for large-scale purification of recombinant human glucagon
NO830178L (no) Fremgangsmaate ved fremstilling av insulinderivater
JPH0150719B2 (no)
JPS6312480B2 (no)