KR20230156164A - 항-트랜스타이레틴 항체 - Google Patents

항-트랜스타이레틴 항체 Download PDF

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KR20230156164A
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Abstract

본 발명은 트랜스타이레틴(TTR)에 특이적으로 결합하는 항체를 제공한다. 상기 항체는 TTR 축적 또는 TTR 침착물의 축적과 관련된 질환 또는 장애(예를 들어, TTR 아밀로이드증)를 치료하거나 또는 예방을 달성하기 위해 사용될 수 있다. 항체는 또한 용도 중에서도 TTR 아밀로이드증을 진단하고, TTR의 응집을 저해 또는 감소시키기 위해 사용될 수 있다.

Description

항-트랜스타이레틴 항체 {ANTI-TRANSTHYRETIN ANTIBODIES}
관련출원에 대한 상호참조
본 출원은 2015년 1월 28일자로 출원된 미국 가출원 특허 제62/109,002호 및 2015년 12월 11일자로 출원된 미국 가출원 특허 제62/266,556호와 관련되며, 이들 각각은 그들의 전문이 참고로 포함된다.
서열목록에 대한 참조
본 출원은 2016년 1월 28일자로 생성되고 용량이 135,083 바이트인 파일명473373_SEQLST.TXT의 전자 서열 목록을 포함하며, 이는 본 명세서에 모든 목적을 위하여 그의 전체가 참고로 포함된다.
몇몇 질환은 질환-특정 단백질의 비정상적 폴딩 및 응집에 의해 야기되는 것으로 생각된다. 이들 단백질은 특정 조직학적 균주에 의해 시각화되는 아밀로이드로서 알려진 병리적으로 진단된 축적물 내로 축적될 수 있다. 아밀로이드는 염증 반응을 유발하는 것으로 생각되고, 연루된 조직에 대한 다중 음성 결과를 가진다. 추가로, 비정상적으로 폴딩된 단백질의 더 작은 응집물이 존재하고, 세포독성 효과를 발휘할 수 있다.
트랜스타이레틴(TTR)은 미스폴딩하고 응집하는 것으로 알려진 다수의 단백질 중 하나이다(예를 들어, 아밀로이드 생성(아밀로이드 생성)을 겪음). 트랜스타이레틴-관련 아밀로이드증은 2가지 형태의 질환을 포함한다: 돌연변이 또는 변이체 TTR의 미스폴딩으로부터 생기는 가족성 질환, 및 야생형 TTR의 잘못된 응집에 의해 야기되는 산발적인, 비유전적 질환. TTR 아밀로이드 생성 과정은 신경계 및/또는 심장에서 뿐만 아니라 다른 조직에서의 병리를 야기할 수 있다.
본 발명은 트랜스타이레틴에 결합하고, 실질적으로 항체 14G8로부터의 3개의 중쇄 CDR 및 3개의 경쇄 CDR을 포함하는 항체를 제공한다. 일부 항체는 위치 H52 및 L26이 각각 N 또는 S일 수 있다는 것을 제외하고, 항체 14G8의 3개의 카바트(Kabat) 중쇄 CDR 및 3개의 카바트 경쇄 CDR을 포함한다. 일부 항체는 항체 14G8의 3개의 카바트 중쇄 CDR 및 3개의 카바트 경쇄 CDR을 포함한다. 선택적으로, CDR-H1은 항체 14G8의 복합 카바트-코티아(composite Kabat-Chothia) CDR이다. 일부 항체는 항체 9D5의 3개의 카바트 중쇄 CDR을 포함한다. 선택적으로, CDR-H1은 항체 9D5의 복합 카바트-코티아 CDR이다.
일부 항체는 트랜스타이레틴 상에서 9D5 또는 14G8과 동일한 에피토프에 결합하고, 3개의 경쇄 CDR 및 3개의 중쇄 CDR을 포함하되, (a) 각각의 CDR은 9D5의 중쇄 및 경쇄 가변 영역으로부터의 대응하는 CDR에 대해 적어도 90% 서열 동일성을 갖거나; 또는 (b) 위치 L26이 N 또는 S일 수 있다는 것을 제외하고, 각각의 CDR은 14G8의 중쇄 및 경쇄 가변 영역으로부터의 대응하는 CDR에 대해 적어도 90% 서열 동일성을 가진다. 일부 항체는: (a) 9D5의 3개의 중쇄 CDR 및 3개의 경쇄 CDR; 또는 (b) 위치 L26이 N 또는 S일 수 있다는 것을 제외하고, 14G8의 3개의 중쇄 CDR 및 3개의 경쇄 CDR을 포함한다. 일부 항체에서, 9D5의 3개의 중쇄 CDR 및 3개의 경쇄 CDR은 각각 서열번호 13 내지 15 및 24 내지 26이다. 일부 항체에서, 위치 L26이 N 또는 S일 수 있다는 것을 제외하고, 14G8의 3개의 중쇄 CDR 및 3개의 경쇄 CDR은 각각 서열번호 67 내지 69 및 77 내지 79이다.
임의의 상기 항체는 단클론성 항체일 수 있다. 임의의 상기 항체는 키메라, 인간화(humanized), 베니어(veneer) 또는 인간 항체일 수 있다. 임의의 상기 항체는 인간 IgG1 아이소타입, 인간 IgG2 아이소타입, 또는 인간 IgG4 아이소타입을 가질 수 있다.
본 발명은 추가로 위치 H52가 S 또는 N일 수 있고, 위치 H69가 F 또는 I일 수 있으며, 위치 L26이 S 또는 N일 수 있고, 위치 L107의 R이 선택적이라는 것을 제외하고, 트랜스타이레틴에 특이적으로 결합되는 마우스 항체의 인간화 또는 키메라 항체를 제공하되, 마우스 항체는 서열번호 61의 성숙 중쇄 가변 영역 및 서열번호 70의 성숙 경쇄 가변 영역을 특징으로 한다. 선택적으로, 항체는 트랜스타이레틴에 특이적으로 결합하는 인간화된 또는 키메라 9D5 또는 14G8 항체이되, 9D5는 서열번호 1의 성숙 중쇄 가변 영역 및 서열번호 16의 성숙 경쇄 가변 영역을 특징으로 하는 마우스 항체이고, 14G8은 서열번호 61의 성숙 중쇄 가변 영역 및 서열번호 70의 성숙 경쇄 가변 영역을 특징으로 하는 마우스 항체이다. 선택적으로, 인간화 항체는: (a) 9D5의 3개의 중쇄 CDR을 포함하는 인간화된 성숙 중쇄 가변 영역 및 9D5의 3개의 경쇄 CDR을 포함하는 인간화된 성숙 경쇄 가변 영역; 또는 (b) 위치 L26이 N 또는 S일 수 있다는 것을 제외하고, 14G8의 3개의 중쇄 CDR을 포함하는 인간화된 성숙 중쇄 가변 영역 및 14G8의 3개의 경쇄 CDR을 포함하는 인간화된 성숙 경쇄 가변 영역을 포함한다. 선택적으로, 9D5의 3개의 중쇄 CDR 및 3개의 경쇄 CDR은 각각 서열번호 13 내지 15 및 24 내지 26이다. 선택적으로, 위치 L26이 N 또는 S일 수 있다는 것을 제외하고, 14G8의 3개의 중쇄 CDR 및 3개의 경쇄 CDR은 서열번호 67 내지 69 및 77 내지 79이다. 선택적으로, 서열번호 1 및 16으로부터의 성숙 중쇄 가변 영역 및 성숙 경쇄 가변 영역의 CDR에서의 임의의 차이는 각각 위치 H60 내지 H65에 있다. 선택적으로, 위치 L26이 N 또는 S일 수 있다는 것을 제외하고, 서열번호 61 및 70으로부터의 성숙 중쇄 가변 영역 및 성숙 경쇄 가변 영역의 CDR에서의 임의의 차이는 각각 위치 H60 내지 H65에 있다.
선택적으로, 위치 H19가 R 또는 K일 수 있고, 위치 H40은 A 또는 T일 수 있으며, 위치 H44는 G 또는 R일 수 있고, 위치 H49는 S 또는 A일 수 있으며, 위치 H77은 S 또는 T일 수 있고, 위치 H82a는 N 또는 S일 수 있으며, 위치 H83은 R 또는 K일 수 있고, 위치 H84는 A 또는 S일 수 있으며, 위치 H89는 V 또는 M일 수 있다는 것을 제외하고, 인간화 항체는 서열번호 5 내지 12 중 임의의 하나에 대해 적어도 90% 동일한 아미노산 서열을 갖는 인간화된 성숙 중쇄 가변 영역 및 서열번호 19 내지 23 중 임의의 하나에 대해 적어도 90% 동일한 아미노산 서열을 갖는 인간화된 성숙 경쇄 가변 영역을 포함한다. 선택적으로, 다음의 위치 중 적어도 하나는 특정된 아미노산에 의해 점유된다: 위치 H42는 E에 의해 점유되고, 위치 H47은 L에 의해 점유되며, 위치 H69는 F에 의해 점유되고, 위치 H82는 S에 의해 점유되며, 위치 H82b는 L에 의해 점유되고, 위치 H108은 L에 의해 점유되며, 위치 L8은 A에 의해 점유되고, 위치 L9는 P에 의해 점유되며, 위치 L18은 S에 의해 점유되고, 위치 L19는 V에 의해 점유되며, 위치 L36은 F에 의해 점유되고, 위치 L39는 R에 의해 점유되며, 위치 L60은 S에 의해 점유되고, 위치 L70은 A에 의해 점유되며, 위치 L74는 R에 의해 점유된다. 선택적으로, 위치 H47, H69 및 H82는 각각 L, F 및 S에 의해 점유된다. 선택적으로, 위치 H47, H69, H82 및 H82b는 각각 L, F, S 및 L에 의해 점유된다. 선택적으로, 위치 H42, H47 및 H108은 각각 E, L 및 L에 의해 점유된다. 선택적으로, 위치 H69, H82 및 H82b는 각각 F, S 및 L에 의해 점유된다. 선택적으로, 위치 H47 및 H108은 각각 L에 의해 점유된다. 선택적으로, 위치 H82 및 H82b는 각각 S 및 L에 의해 점유된다. 선택적으로, 위치 H42, H47 및 H82b은 각각 E, L 및 L에 의해 점유된다. 선택적으로, 위치 L36은 F에 의해 점유된다. 선택적으로, 위치 L60은 S에 의해 점유된다. 선택적으로, 위치 L8, L9, L19, L36, L39, L60, L70 및 L74는 각각 A, P, V, F, R, S, A 및 R에 의해 점유된다. 선택적으로, 위치 L8, L9, L18, L19, L36, L39, L60, L70 및 L74는 각각 A, P, S, V, F, R, S, A, 및 R에 의해 점유된다.
선택적으로, 위치 H19가 R 또는 K일 수 있고, 위치 H40이 A 또는 T일 수 있으며, 위치 H44가 G 또는 R일 수 있고, 위치 H49가 S 또는 A일 수 있으며, 위치 H77이 S 또는 T일 수 있고, 위치 H82a는 N 또는 S일 수 있으며, 위치 H83은 R 또는 K일 수 있고, 위치 H84는 A 또는 S일 수 있으며, 위치 H89는 V 또는 M일 수 있다는 것을 제외하고, 인간화 항체는 서열번호 5 내지 12 중 임의의 하나에 대해 적어도 95% 동일한 아미노산 서열을 갖는 성숙 중쇄 가변 영역 및 서열번호 19 내지 23 중 임의의 하나에 대해 적어도 95% 동일한 아미노산 서열을 갖는 성숙 경쇄 가변 영역을 포함한다. 선택적으로, 위치 H19가 R 또는 K일 수 있고, 위치 H40이 A 또는 T일 수 있으며, 위치 H44는 G 또는 R일 수 있고, 위치 H49는 S 또는 A일 수 있으며, 위치 H77은 S 또는 T일 수 있고, 위치 H82a는 N 또는 S일수 있으며, 위치 H83은 R 또는 K일 수 있고, 위치 H84는 A 또는 S일 수 있으며, 위치 H89는 V 또는 M일 수 있다는 것을 제외하고, 인간화 항체는 서열번호 5 내지 12 중 임의의 하나에 대해 적어도 98% 동일한 아미노산 서열을 갖는 성숙 중쇄 가변 영역 및 서열번호 19 내지 23 중 임의의 하나에 대해 적어도 98% 동일한 아미노산 서열을 갖는 성숙 경쇄 가변 영역을 포함한다. 선택적으로, 성숙 중쇄 가변 영역은 서열번호 5 내지 12 중 임의의 하나의 아미노산 서열을 가지며, 성숙 경쇄 가변 영역은 서열번호 19 내지 23 중 임의의 하나의 아미노산 서열을 가진다. 일부 항체에서, 성숙 중쇄 가변 영역은 서열번호 11의 아미노산 서열을 가지며, 성숙 경쇄 가변 영역은 서열번호 19의 아미노산 서열을 가진다.
선택적으로, 위치 H82a는 N 또는 S일 수 있고, 위치 H83은 R 또는 K일 수 있으며, 위치 H84는 A 또는 S일 수 있고, 위치 H89는 V 또는 M일 수 있으며, 위치 L18은 S 또는 P일 수 있다는 것을 제외하고, 인간화 항체는 서열번호 64 내지 66 중 임의의 하나에 대해 적어도 90% 동일한 아미노산 서열을 갖는 인간화된 성숙 중쇄 가변 영역 및 서열번호 74 내지 76 중 임의의 하나에 대해 적어도 90% 동일한 아미노산 서열을 갖는 인간화된 성숙 경쇄 가변 영역을 포함한다. 선택적으로, 다음의 위치 중 적어도 하나는 특정된 아미노산에 의해 점유된다: 위치 H1은 E에 의해 점유되고, 위치 H47은 L에 의해 점유되며, 위치 L36은 F에 의해 점유된다. 선택적으로, 위치 H1 및 H47은 각각 E 및 L에 의해 점유된다. 선택적으로, 위치 L36은 F에 의해 점유된다. 선택적으로, 다음의 위치 중 적어도 하나는 특정된 아미노산에 의해 점유된다: 위치 H3은 K에 의해 점유되고, 위치 H105는 T에 의해 점유되며, 위치 L8은 A에 의해 점유되고, 위치 L9는 P에 의해 점유되며, 위치 L19는 V에 의해 점유되고, 위치 L26은 S에 의해 점유되며, 위치 L60은 S에 의해 점유되고, 위치 L70은 A에 의해 점유된다. 선택적으로, 위치 H3 및 H105는 각각 K 및 T에 의해 점유된다. 선택적으로, 위치 L8, L9, L19 및 L70은 각각 A, P, V 및 A에 의해 점유된다. 선택적으로, 위치 L26 및 L60은 각각 S에 의해 점유된다.
선택적으로, 위치 H82a N 또는 S일 수 있고, 위치 H83 R 또는 K일 수 있으며, 위치 H84는 A 또는 S일 수 있고, 위치 H89는 V 또는 M일 수 있으며, 위치 L18은 S 또는 P일 수 있다는 것을 제외하고, 인간화 항체는 서열번호 64 내지 66 중 임의의 하나에 대해 적어도 95% 동일한 아미노산 서열을 갖는 성숙 중쇄 가변 영역 및 서열번호 74 내지 76 중 임의의 하나에 대해 적어도 95% 동일한 아미노산 서열을 갖는 성숙 경쇄 가변 영역을 포함한다. 선택적으로, 위치 H82a N 또는 S일 수 있고, 위치 H83 R 또는 K일 수 있으며, 위치 H84는 A 또는 S일 수 있고, 위치 H89는 V 또는 M일 수 있으며, 위치 L18은 S 또는 P일 수 있다는 것을 제외하고, 인간화 항체는 서열번호 64 내지 66 중 임의의 하나에 대해 적어도 98% 동일한 아미노산 서열을 갖는 성숙 중쇄 가변 영역 및 서열번호 74 내지 76 중 임의의 하나에 대해 적어도 98% 동일한 아미노ㅗ산 서열을 갖는 성숙 경쇄 가변 영역을 포함한다. 선택적으로, 성숙 중쇄 가변 영역은 서열번호 64 내지 66 중 임의의 하나의 아미노산 서열을 가지고, 성숙 경쇄 가변 영역은 서열번호 74 내지 76 중 임의의 하나의 아미노산 서열을 가진다. 일부 항체에서, 성숙 중쇄 가변 영역은 서열번호 65의 아미노산 서열을 가지며, 성숙 경쇄 가변 영역은 서열번호 76의 아미노산 서열을 가진다.
임의의 상기 항체는 무손상 항체, 결합 단편, 단일쇄 항체, Fab 또는 Fab'2 단편일 수 있다. 임의의 상기 항체에서, 성숙 경쇄 가변 영역은 경쇄 불변 영역에 융합될 수 있고, 성숙 중쇄 가변 영역은 중쇄 불변 영역에 융합될 수 있다. 선택적으로, 중쇄 불변 영역은 천연 인간 중쇄 불변 영역에 비해서 Fcγ 수용체에 대한 감소된 결합을 갖는 천연 인간 중쇄 불변 영역의 돌연변이체 형태이다. 선택적으로, 중쇄 불변 영역은 IgG1 아이소타입을 가진다. 선택적으로, 성숙 중쇄 가변 영역은 서열번호 103의 서열을 갖는 중쇄 불변 영역에 융합되고/되거나 성숙 경쇄 가변 영역은 서열번호 104 또는 105의 서열을 갖는 경쇄 불변 영역에 융합된다.
본 발명은 추가로 임의의 상기 항체 및 약제학적으로 허용 가능한 담체를 포함하는 약제학적 조성물을 제공한다.
본 발명은 추가로 임의의 상기 항체의 중쇄 및/또는 경쇄를 암호화하는 핵산, 예컨대 서열번호 40, 42, 44 내지 56, 87, 89, 91 내지 96, 및 106 내지 108 중 임의의 하나를 제공한다.
본 발명은 추가로 상기 기재한 바와 같은 핵산을 포함하는 재조합 발현 벡터 및 상기 재조합 발현 벡터에 의해 형질전환된 숙주 세포를 제공한다.
본 발명은 추가로 항체를 인간화하는 방법을 제공하며, 상기 방법은: (a) 하나 이상의 수용자 항체를 선택하는 단계; (b) 보유될 마우스 항체의 아미노산 잔기를 동정하는 단계; (c) 마우스 항체 중쇄의 CDR을 포함하는 인간화된 중쇄를 암호화하는 핵산 및 마우스 항체 경쇄의 CDR을 포함하는 인간화된 경쇄를 암호화하는 핵산을 합성하는 단계; 및 (d) 숙주 세포에서 핵산을 발현시켜 인간화 항체를 생성하는 단계를 포함하되; 마우스 항체는 9D5 또는 14G8이고, 9D5는 서열번호 1의 성숙 중쇄 가변 영역 및 서열번호 16의 성숙 경쇄 가변 영역을 특징으로 하고, 14G8은 서열번호 61의 성숙 중쇄 가변 영역 및 서열번호 70의 성숙 경쇄 가변 영역을 특징으로 한다.
본 발명은 추가로 인간화, 키메라 또는 베니어 항체를 생성하는 방법을 제공하며, 상기 방법은: (a) 세포가 항체를 분비하도록 항체의 중쇄 및 경쇄를 암호화하는 핵산에 의해 형질전환된 세포를 배양시키는 단계; 및 (b) 상기 항체를 세포 배양 배지로부터 정제하는 단계를 포함하되, 상기 항체는 9D5 또는 14G8의 인간화, 키메라 또는 베니어 형태이다.
본 발명은 추가로 인간화, 키메라, 또는 베니어 항체를 생성하는 세포주를 생성하는 방법을 제공하며, 상기 방법은: (a) 항체의 중쇄 및 경쇄를 암호화하는 벡터 및 선택 가능한 마커를 세포 내로 도입하는 단계; (b) 벡터의 복제 수가 증가된 세포를 선택하기 위한 조건 하에서 세포를 증식시키는 단계; (c) 선택된 세포로부터 단일 세포를 단리시키는 단계; 및 (d) 항체의 수율에 기반하여 클로닝된 세포를 단일 세포로부터 보관(banking)하는 단계를 포함하되; 상기 항체는 9D5 또는 14G8의 인간화, 키메라 또는 베니어 형태이다. 선택적으로, 상기 방법은 선택적 조건 하에서 세포를 증식시키는 단계 및 적어도 100㎎/ℓ/106개 세포/24시간으로 자연적으로 발현 및 분비하는 세포주를 선별하는 단계를 추가로 포함한다.
본 발명은 추가로 대상체에게 유효 요법의 임의의 상기 항체를 투여함으로써, 대상체에서의 트랜스타이레틴의 응집을 저해 또는 감소시키는 단계를 포함하는, 트랜스타이레틴-매개 아밀로이드증이 발생하였거나 또는 발생할 위험에 있는 대상체에서의 트랜스타이레틴의 응집을 저해 또는 감소시키는 방법을 제공한다.
본 발명은 추가로 대상체에게 유효 요법의 임의의 상기 항체를 투여함으로써, 대상체에서의 트랜스타이레틴 축적을 저해 또는 감소시키는 단계를 포함하는, 트랜스타이레틴-매개 아밀로이드증이 발생하였거나 또는 발생할 위험에 있는 대상체에서의 트랜스타이레틴 피브릴 형성을 저해 또는 감소시키는 방법을 제공한다.
본 발명은 추가로 대상체에게 유효 요법의 임의의 상기 항체를 투여함으로써, 대상체에서의 트랜스타이레틴 침착을 감소시키는 단계를 포함하는, 트랜스타이레틴-매개 아밀로이드증이 발생하였거나 또는 발생할 위험에 있는 대상체에서의 트랜스타이레틴 침착을 감소시키는 방법을 제공한다.
본 발명은 추가로 대상체에게 유효한 요법의 임의의 상기 항체를 투여함으로써, 항체를 받지 않은 트랜스타이레틴-매개 아밀로이드증을 갖거나 또는 가질 위험에 있는 대상체에 대해 대상체로부터 응집된 트랜스타이레틴을 어런스하는, 즉, 제거하는(clearing) 단계를 포함하는, 트랜스타이레틴-매개 아밀로이드증이 발생하였거나 또는 발생할 위험에 있는 대상체에서 응집된 트랜스타이레틴을 클리어런스하는, 즉, 제거하는(clearing)하는 방법을 제공한다.
본 발명은 추가로 대상체에게 유효 요법의 임의의 상기 항체를 투여함으로써, 대상체에서의 트랜스타이레틴의 비독성 입체배좌를 안정화시키는 단계를 포함하는, 트랜스타이레틴-매개 아밀로이드증이 발생하였거나 또는 발생할 위험에 있는 대상체에서의 트랜스타이레틴의 비독성 입체배좌를 안정화시키는 방법을 제공한다.
본 발명은 추가로 대상체에게 유효 요법의 임의의 상기 항체를 투여하는 단계를 포함하는, 대상체에서의 트랜스타이레틴-매개 아밀로이드증을 치료하거나 또는 예방을 달성하는 방법을 제공한다.
본 발명은 추가로 대상체에게 유효 요법의 임의의 상기 항체를 투여하는 단계를 포함하는, 대상체에서의 트랜스타이레틴-매개 아밀로이드증의 발병(onset)을 지연시키는 방법을 제공한다.
본 발명은 추가로 대상체로부터의 생물학적 샘플을 유효량의 임의의 상기 항체와 접촉시키는 단계를 포함하는, 대상체에서의 트랜스타이레틴-매개 아밀로이드증을 진단하는 방법을 제공한다. 선택적으로, 상기 방법은 트랜스타이레틴에 대한 항체의 결합을 검출하는 단계를 추가로 포함하되, 결합된 항체의 존재는 대상체가 트랜스타이레틴-매개 아밀로이드증을 가진다는 것을 나타낸다. 선택적으로, 상기 방법은 생물학적 샘플에 대한 항체의 결합을 대조군 샘플에 대한 항체의 결합과 비교하는 단계를 추가로 포함하며, 이에 의해 대조군 샘플에 비해 증가된 생물학적 샘플에 대한 항체의 결합은 대상체가 트랜스타이레틴-매개 아밀로이드증을 가진다는 것을 나타낸다. 선택적으로, 생물학적 샘플 및 대조군 샘플은 동일한 조직 유래의 세포를 포함한다. 선택적으로, 생물학적 샘플 및/또는 대조군 샘플은 혈액, 혈청, 혈장 또는 고형 조직이다. 선택적으로, 고형 조직은 심장, 말초신경계, 자율신경계, 신장, 눈(eye) 또는 위장관(gastrointestinal tract)이다.
임의의 상기 방법에서, 트랜스타이레틴-매개 아밀로이드증은 선택적으로 가족성 트랜스타이레틴 아밀로이드증 또는 산발적 트랜스타이레틴 아밀로이드증일 수 있다. 선택적으로, 가족성 트랜스타이레틴 아밀로이드증은 가족성 아밀로이드 심근증(FAC), 가족성 아밀로이드성 다발신경병증(FAP), 또는 중추 신경계 선택적 아밀로이드증(CNSA)이다. 선택적으로, 산발적 트랜스타이레틴 아밀로이드증은 노인성 전신 아밀로이드증(SSA) 또는 노인성 심장 아밀로이드증(SCA)이다. 임의의 상기 방법에서, 트랜스타이레틴-매개 아밀로이드증은 선택적으로 대상체의 심장, 말초신경계, 자율신경계, 신장, 눈 또는 위장관에서의 아밀로이드 축적과 관련될 수 있다.
본 발명은 추가로 아밀로이드 축적을 포함하는 것으로 의심되는 대상체로부터의 생물학적 샘플을 유효량의 임의의 상기 항체와 접촉시키는 단계를 포함하는, 대상체에서의 트랜스타이레틴 침착물의 존재 또는 부재를 검출하는 방법을 제공한다. 선택적으로, 상기 방법은 트랜스타이레틴에 대한 항체의 결합을 검출하는 단계를 추가로 포함하되, 결합된 항체의 검출은 트랜스타이레틴 침착물의 존재를 나타낸다. 선택적으로, 상기 방법은 생물학적 샘플에 대한 항체의 결합을 대조군 샘플에 대한 항체의 결합과 비교하는 단계를 추가로 포함하며, 이에 의해 대조군 샘플에 비해 증가된 생물학적 샘플에 대한 항체의 결합은 대상체가 트랜스타이레틴-매개 아밀로이드증을 가진다는 것을 나타낸다. 선택적으로, 생물학적 샘플 및 대조군 샘플은 동일한 조직 유래의 세포를 포함한다. 선택적으로, 생물학적 샘플 및/또는 대조군 샘플은 혈액, 혈청, 혈장 또는 고형 조직이다. 선택적으로, 고형 조직은 심장, 말초신경계, 자율신경계, 신장, 눈 또는 위장관이다.
본 발명은 추가로 대상체에서 임의의 상기 항체를 투여하는 단계 및 결합된 항체의 존재를 검출하는 단계를 포함하는, 대상체에서의 트랜스타이레틴 침착 수준을 결정하는 방법을 제공한다. 선택적으로, 결합된 항체의 존재는 양전자 방출 단층 촬영(PET)에 의해 결정된다.
도 1a는 마우스 9D5 항체, 마우스 모델 항체, 인간 수용자(acceptor) 항체 및 9D5 항체의 인간화된 형태의 중쇄 가변 영역의 정렬을 도시한 도면. 첫 번째 둘러싸인 박스가 코티아 CDR-H1 및 카바트 CDR-H1의 복합물이라는 것을 제외하고(카바트 CDR-H1은 밑줄 및 볼드체 표시됨), 카바트에 의해 정해지는 CDR은 박스로 둘러싸여 있다.
도 1b는 마우스 9D5 항체, 마우스 모델 항체, 인간 수용자 항체, 및 9D5 항체의 인간화된 형태의 경쇄 가변 영역의 정렬을 도시한 도면. 카바트에 의해 정해지는 CDR은 박스로 둘러싸여 있다.
도 2a는 마우스 14G8 항체, 마우스 모델 항체, 인간 수용자 항체, 및 14G8 항체의 인간화된 형태의 중쇄 가변 영역의 정렬을 도시한 도면. 첫 번째 둘러싸인 박스가 코티아 CDR-H1 및 카바트 CDR-H1의 복합물이라는 것을 제외하고(카바트 CDR-H1은 밑줄 및 볼드체 표시됨), 카바트에 의해 정해지는 CDR은 박스로 둘러싸여 있다.
도 2b는 마우스 14G8 항체, 마우스 모델 항체, 인간 수용자 항체, 및 14G8 항체의 인간화된 형태의 경쇄 가변 영역의 정렬을 도시한 도면. 카바트에 의해 정해지는 CDR은 박스로 둘러싸여 있다.
도 3A 및 도 3B: 도 3A는 pH4-처리된 TTR에 대한 뮤린 5A1, 6C1, 9D5 및 14G8 항체의 결합 곡선을 도시한 도면. 도 3B는 천연 TTR에 대한 뮤린 5A1, 6C1, 9D5 및 14G8 항체의 결합 곡선을 도시한 도면.
도 4A, 도 4B 및 도 4C: 도 4A는 미스-TTR 항체에 의한 TTR-Y78F 섬유질 형성의 저해를 도시한 도면. 도 4B는 14G8에 의한 TTR-V122I 섬유질 형성의 저해를 도시한 도면. 도 4C는 대조군 항체에 의한 TTR-V122I 섬유질 형성의 저해를 도시한 도면.
도 5A 및 도 5B: 도 5A는 9D5 미스-TTR 항체를 이용하는, V30M ATTR에 대해 확인된 환자로부터의 혈장 샘플(샘플 #21, #22, #23, #24, #25, #27) 및 정상 대상체로부터의 샘플(샘플 #11, #12, #15, #18, #19, #20)의 웨스턴 블롯 분석의 농도 계측 분석을 도시한 도면. 도 5B는 5A1 미스-TTR 항체를 이용하는, 동일한 샘플의 웨스턴 블롯 분석의 농도 계측 분석을 도시한 도면.
도 6은 6C1 항체를 이용하는 V30M ATTR에 대해 확인된 환자로부터의 혈장 샘플(샘플 #21, #22, #23, #24, #25, #27) 및 정상 대상체로부터의 샘플(샘플 #11, #12, #15, #18, #19, #20)의 메조스케일 디스커버리(MSD) 플레이트 분석을 도시한 도면.
도 7A 및 도 7B: 도 7A는 THP-1 세포에 의한 F87M/L110M TTR의 흡수에 대한 항체 14G8의 효과를 도시한 도면.  도 7B는 THP-1 세포에 의한 V30M TTR의 흡수에 대한 각각의 미스-TTR 항체의 효과를 도시한 도면.
서열의 간단한 설명
서열번호 1은 마우스 9D5 항체의 중쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 2는 마우스 중쇄 가변 영역 구조 주형 1SEQ_H의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 3은 중쇄 가변 수용자 수탁 번호 BAC02114의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 4는 중쇄 가변 수용자 수탁 번호AAX82494.1의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 5는 인간화된 9D5 항체 형태 1(Hu9D5VHv1)의 중쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 6은 인간화된 9D5 항체 형태 2(Hu9D5VHv2)의 중쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 7은 인간화된 9D5 항체 형태 2b(Hu9D5VHv2b)의 중쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 8은 인간화된 9D5 항체 형태 3(Hu9D5VHv3)의 중쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 9는 인간화된 9D5 항체 형태 3b(Hu9D5VHv3b)의 중쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 10은 인간화된 9D5 항체 형태 4(Hu9D5VHv4)의 중쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 11은 인간화된 9D5 항체 형태 4b(Hu9D5VHv4b)의 중쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 12는 인간화된 9D5 항체 형태 5(Hu9D5VHv5)의 중쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 13은 마우스 9D5 항체의 카바트 CDR-H1의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 14는 마우스 9D5 항체의 카바트 CDR-H2의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 15는 마우스 9D5 항체의 카바트 CDR-H3의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 16은 마우스 9D5 항체의 경쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 17은 마우스 중쇄 가변 영역 구조 주형 1MJU_L의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 18은 경쇄 가변 수용자 수탁 번호 ABC66952의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 19는 인간화된 9D5 항체 형태 1(Hu9D5VLv1)의 경쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 20은 인간화된 9D5 항체 형태 2(Hu9D5VLv2)의 경쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 21은 인간화된 9D5 항체 형태 3(Hu9D5VLv3)의 경쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 22는 인간화된 9D5 항체 형태 4(Hu9D5VLv4)의 경쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 23은 인간화된 9D5 항체 형태 5(Hu9D5VLv5)의 경쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 24는 마우스 9D5 항체의 카바트 CDR-L1의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 25는 마우스 9D5 항체의 카바트 CDR-L2의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 26은 마우스 9D5 항체의 카바트 CDR-L3의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 27은 인간화된 9D5 중쇄 형태 1의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 28은 인간화된 9D5 중쇄 형태 2의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 29는 인간화된 9D5 중쇄 형태 2b의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 30은 인간화된 9D5 중쇄 형태 3의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 31은 인간화된 9D5 중쇄 형태 3b의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 32는 인간화된 9D5 중쇄 형태 4의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 33은 인간화된 9D5 중쇄 형태 4b의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 34는 인간화된 9D5 중쇄 형태 5의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 35는 인간화된 9D5 경쇄 형태 1의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 36은 인간화된 9D5 경쇄 형태 2의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 37은 인간화된 9D5 경쇄 형태 3의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 38은 인간화된 9D5 경쇄 형태 4의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 39는 인간화된 9D5 경쇄 형태 5의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 40은 단일 펩타이드를 지니는 마우스 9D5 항체의 중쇄 가변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 41은 단일 펩타이드를 지니는 마우스 9D5 항체의 중쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 42는 단일 펩타이드를 지니는 마우스 9D5 항체의 경쇄 가변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 43은 단일 펩타이드를 지니는 마우스 9D5 항체의 경쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 44는 인간화된 9D5 항체 형태 1(Hu9D5VHv1)의 중쇄 가변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 45는 인간화된 9D5 항체 형태 2(Hu9D5VHv2)의 중쇄 가변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 46은 인간화된 9D5 항체 형태 2b(Hu9D5VHv2b)의 중쇄 가변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 47은 인간화된 9D5 항체 형태 3(Hu9D5VHv3)의 중쇄 가변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 48은 인간화된 9D5 항체 형태 3b(Hu9D5VHv3b)의 중쇄 가변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 49는 인간화된 9D5 항체 형태 4(Hu9D5VHv4)의 중쇄 가변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 50은 인간화된 9D5 항체 형태 4b(Hu9D5VHv4b)의 중쇄 가변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 51은 인간화된 9D5 항체 형태 5 (Hu9D5VHv5)의 중쇄 가변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 52는 인간화된 9D5 항체 형태 1(Hu9D5VLv1)의 경쇄 가변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 53은 인간화된 9D5 항체 형태 2(Hu9D5VLv2)의 경쇄 가변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 54는 인간화된 9D5 항체 형태 3(Hu9D5VLv3)의 경쇄 가변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 55는 인간화된 9D5 항체 형태 4(Hu9D5VLv4)의 경쇄 가변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 56은 인간화된 9D5 항체 형태 5(Hu9D5VLv5)의 경쇄 가변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 57은 단일 펩타이드를 지니는 마우스 9D5 중쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 58은 단일 펩타이드를 지니는 마우스 9D5 중쇄 가변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 59는 단일 펩타이드를 지니는 마우스 9D5 경쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 60은 단일 펩타이드를 지니는 마우스 9D5 경쇄 가변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 61은 마우스 14G8 항체의 중쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 62는 마우스 중쇄 가변 영역 구조 주형 1MQK_H의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 63은 중쇄 가변 수용자 수탁 번호 AAD30410.1의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 64는 인간화된 14G8 항체 형태 1(Hu14G8VHv1)의 중쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 65는 인간화된 14G8 항체 형태 2(Hu14G8VHv2)의 중쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 66은 인간화된 14G8 항체 형태 3(Hu14G8VHv3)의 중쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 67은 마우스 14G8 항체의 카바트 CDR-H1의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 68은 마우스 14G8 항체의 카바트 CDR-H2의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 69는 마우스 14G8 항체의 카바트 CDR-H3의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 70은 마우스 14G8 항체의 경쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 71은 마우스 중쇄 가변 영역 구조 주형 1MJU_L의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 72는 경쇄 가변 수용자 수탁 번호 ABA71374.1의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 73은 경쇄 가변 수용자 수탁 번호 ABC66952.1의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 74은 인간화된 14G8 항체 형태 1(Hu14G8VLv1)의 경쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 75는 인간화된 14G8 항체 형태 2(Hu14G8VLv2)의 경쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 76은 인간화된 14G8 항체 형태 3(Hu14G8VLv3)의 경쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 77은 마우스 14G8 항체의 카바트 CDR-L1의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 78은 마우스 14G8 항체의 카바트 CDR-L2의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 79는 마우스 14G8 항체의 카바트 CDR-L3의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 80은 인간화된 14G8 항체 형태 3(Hu14G8VLv3)의 카바트 CDR-L1의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 81은 인간화된 14G8 중쇄 형태 1의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 82는 인간화된 14G8 중쇄 형태 2의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 83은 인간화된 14G8 중쇄 형태 3의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 84는 인간화된 14G8 경쇄 형태 1의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 85는 인간화된 14G8 경쇄 형태 2의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 86은 인간화된 14G8 경쇄 형태 3의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 87은 단일 펩타이드를 지니는 마우스 14G8 항체의 중쇄 가변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 88은 단일 펩타이드를 지니는 마우스 14G8 항체의 중쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 89는 단일 펩타이드를 지니는 마우스 14G8 항체의 경쇄 가변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 90은 단일 펩타이드를 지니는 마우스 14G8 항체의 경쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 91은 인간화된 14G8 항체 형태 1(Hu14G8VHv1)의 중쇄 가변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 92는 인간화된 14G8 항체 형태 2(Hu14G8VHv2)의 중쇄 가변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 93은 인간화된 14G8 항체 형태 3(Hu14G8VHv3)의 중쇄 가변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 94는 인간화된 14G8 항체 형태 1(Hu14G8VLv1)의 경쇄 가변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 95는 인간화된 14G8 항체 형태 2(Hu14G8VLv2)의 경쇄 가변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 96은 인간화된 14G8 항체 형태 3(Hu14G8VLv3)의 경쇄 가변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 97은 단일 펩타이드를 지니는 마우스 14G8 중쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 98은 단일 펩타이드를 지니는 마우스 14G8 중쇄 가변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 99는 단일 펩타이드를 지니는 마우스 14G8 경쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 100은 단일 펩타이드를 지니는 마우스 14G8 경쇄 가변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 101은 예시적인 인간 IgG1 중쇄 불변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 102는 IgG1 G1m3 동종이인자형의 예시적인 인간 IgG1 중쇄 불변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 103은 IgG1 G1m3 동종이인자형의 예시적인 인간 IgG1 중쇄 불변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 104는 N-말단의 아르기닌을 갖는 예시적인 인간 카파 경쇄 불변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 105는 N-말단의 아르기닌이 없는 예시적인 인간 카파 경쇄 불변 영역의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 106은 G1m3 동종이인자형의 예시적인 인간 중쇄 불변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 107은 N-말단의 아르기닌을 갖는 예시적인 경쇄 불변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 108은 N-말단의 아르기닌이 없는 예시적인 경쇄 불변 영역의 핵산 서열을 제시한다.
서열번호 109는 수탁번호 P02766.1(유니프롯(UniProt))에 제시된 인간 트랜스타이레틴의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 110은 수탁번호 AAB35639.1(젠뱅크(GenBank))에 제시된 인간 트랜스타이레틴의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 111은 수탁번호 AAB35640.1(젠뱅크)에 제시된 인간 트랜스타이레틴의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 112는 수탁번호 ABI63351.1(젠뱅크)에 제시된 인간 트랜스타이레틴의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 113은 인간 트랜스타이레틴의 잔기 89 내지 97 잔기의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 114는 잠재적 트랜스타이레틴 면역원의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 115는 잠재적 트랜스타이레틴 면역원의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 116은 잠재적 트랜스타이레틴 면역원의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 117은 마우스 9D5 항체의 복합 코티아-카바트 CDR-H1의 아미노산 서열을 제시한다.
서열번호 118은 마우스 14G8 항체의 복합 코티아-카바트 CDR-H1의 아미노산 서열을 제시한다.
정의
단클론성 항체 또는 다른 생물학적 독립체는 전형적으로 단리된 형태로 제공된다. 이는 항체 또는 다른 생물학적 독립체가 전형적으로 이의 생성 또는 정제에서 발생하는 간섭 단백질 및 다른 오염물질의 적어도 50% w/w 순도라는 것을 의미하지만, 단클론성 항체가 과량의 약제학적으로 허용 가능한 담체(들) 또는 그의 사용을 용이하게 하기 위한 것으로 의도되는 다른 비히클과 조합되는 가능성을 제외하지는 않는다. 때때로 단클론성 항체는 생성 또는 정제로부터의 간섭 단백질 및 오염물질의 적어도 60%, 70%, 80%, 90%, 95% 또는 99% w/w 순도이다. 종종 단리된 단클론성 항체 또는 다른 생물학적 독립체는 그의 정제 후에 남아있는 우세한 거대분자 종이다.
항체의 그의 표적 항원에 대한 특이적 결합은 적어도 106, 107, 108, 109 또는 1010M-1의 친화도를 의미한다. 특이적 결합은 검출 가능하게 큰 규모이며, 적어도 하나의 관련없는 표적에 대해 생기는 비특이적 결합과 구별 가능하다. 특이적 결합은 특정 작용기 또는 특정 공간적 맞춤(예를 들어, 자물쇠와 열쇠 유형) 사이의 결합의 형성을 초래할 수 있는 반면, 비특이적 결합은 보통 반데르 발스힘의 결과이다. 특이적 결합은 반드시 항체가 한 사람 및 하나의 표적에만 결합한다는 것을 의미하는 것은 아니다.
기본적 항체 구조 단위는 서브유닛의 사량체이다. 각각의 사량체는 폴리펩타이드 쇄의 2개의 동일한 쌍을 포함하고, 각각의 쌍은 하나의 "경쇄"(약 25kDa) 및 하나의 "중쇄"(약 50 내지 70kDa)를 가진다. 각각의 쇄의 아미노 말단 부분은 주로 항원 인식을 초래하는 약 100 내지 110개 또는 그 이상의 아미노산의 가변 영역을 포함한다. 절단 가능한 신호 펩타이드에 연결된 이 가변 영역은 초기에 발현된다. 신호 펩타이드가 없는 가변 영역은 때때로 성숙 가변 영역으로서 지칭된다. 따라서, 예를 들어, 경쇄 성숙 가변 영역은 경쇄 신호 펩타이드가 없는 경쇄 가변 영역을 의미한다. 각각의 쇄의 카복시-말단 부분은 주로 효과기 기능을 초래하는 불변 영역을 정한다.
경쇄는 카파 또는 람다로서 분류된다. 중쇄는 감마, 뮤, 알파, 델타 또는 엡실론으로서 분류되고, 각각 IgG, IgM, IgA, IgD 및 IgE로서 항체의 아이소타입을 정한다. 경쇄 및 중쇄 내에서, 가변 및 불변 영역은 약 12가지 이상의 아미노산의 "J" 영역에 의해 결합되며, 중쇄는 또한 약 10개 이상의 아미노산의 "D" 영역을 포함한다. 일반적으로, 문헌[Fundamental Immunology, Paul, W., ed., 2nd ed. Raven Press, N.Y., 1989, Ch. 7] 참조(본 명세서에 그의 전문이 참고로 포함됨).
면역글로불린 경쇄 또는 중쇄 가변 영역(또한 각각 본 명세서에서 "경쇄 가변 도메인"("VL 도메인") 또는 "중쇄 가변 도메인"("VH 도메인")으로서 지칭됨)은 3개의 "상보성 결정 영역" 또는 "CDR"에 의해 방해되는 "프레임워크" 영역으로 이루어진다. 프레임워크 영역은 항원의 에피토프에 대한 특이적 결합을 위해 CDR을 정렬시키는 역할을 한다. CDR은 주로 항원 결합을 초래하는 항체의 아미노산 잔기를 포함한다. 아미노-말단으로부터 카복실-말단까지, VL과 VH 도메인은 둘 다 다음의 프레임워크(FR) 및 CDR 영역을 포함한다: FR1, CDR1, FR2, CDR2, FR3, CDR3 및 FR4. VL 도메인의 CDR 1, 2 및 3은 본 명세서에서 각각 CDR-L1, CDR-L2 및 CDR-L3으로서 지칭되며; VH 도메인의 CDR 1, 2 및 3은 또한 본 명세서에서 각각 CDR-H1, CDR-H2 및 CDR-H3으로서 지칭된다.
각각의 VL 및 VH 도메인에 대한 아미노산의 정렬은 CDR의 임의의 통상적인 정의에 따른다. 통상적인 정의는 카바트 정의(Kabat, Sequences of Proteins of Immunological Interest (National Institutes of Health, Bethesda, MD, 1987 and 1991), 코티아 정의(Chothia & Lesk, J. Mol. Biol. 196:901-917, 1987; Chothia et al., Nature 342:878-883, 1989); CDR-H1이 코티아 및 카바트 CDR의 복합인 코티아 카바트 CDR의 복합; 옥스포드 몰레큘러 항체 모델링 소프트웨어(Oxford Molecular's antibody modelling software)에 의해 사용되는 AbM 정의; 및 마틴(Martin) 등의 접촉 정의(bioinfo.org.uk/abs)(표 1 참조)를 포함한다. 카바트는 상이한 중쇄 사이의 또는 상이한 경쇄 사이의 대응하는 잔기가 동일한 수로 정렬되는 널리 사용되는 넘버링 관례(카바트 넘버링)를 제공한다. 항체가 CDR의 특정 정의(예를 들어, 카바트)에 의해 CDR을 포함하는 것으로 언급될 때, 정의는 항체에 존재하는 CDR 잔기(즉, 카바트 CDR)의 최소 수를 구체화한다. 이는 다른 통상적인 CDR 정의에 속하지만, 구체화된 정의 밖에서 또한 존재하는 다른 잔기를 제외하지 않는다. 예를 들어, 카바트에 의해 정의되는 CDR을 포함하는 항체는 특히, CDR이 카바트 CDR 잔기를 함유하고, 다른 CDR 잔기를 함유하지 않는 항체, 및 CDR H1이 복합 코티아-카바트 CDR H1이고, 다른 CDR은 카바트 CDR 잔기를 함유하며, 다른 정의에 기반한 추가적인 CDR 잔기는 없는 항체를 포함한다.
카바트 넘버링을 이용하는 CDR의 통상적인 정의를 이용하는 CDR의 통상적인 정의
루프 카바트 코티아 코티아와

카바트의 복합
AbM 접촉
L1 L24--L34 L24--L34 L24--L34 L24--L34 L30--L36
L2 L50--L56 L50--L56 L50--L56 L50--L56 L46--L55
L3 L89--L97 L89--L97 L89--L97 L89--L97 L89--L96
H1 H31--H35B H26--H32..H34* H26--H35B* H26--H35B H30--H35B
H2 H50--H65 H52--H56 H50--H65 H50--H58 H47--H58
H3 H95--H102 H95--H102 H95--H102 H95--H102 H93--H101
*코티아에 의한 CDR-H1은 (루프 길이에 따라서) H32, H33 또는 H34에서 말단일 수 있다. 이는 카바트 넘버링 계획이 35A 및 35B에서 추가 잔기의 삽입을 위치시키기 때문이지만, 코티아 넘버링은 그들을 31A 및 31B에 위치시킨다. H35A도 또는 H35B(카바트 넘버링)도 존재하지 않는다면, 코티아 CDR-H1 루프는 H32에서 끝난다. H35A만이 존재한다면, 이는 H33에서 끝난다. H35A와 H35B가 둘 다 존재한다면, 이는 H34에서 끝난다.
용어 "항체"는 무손상 항체 및 이의 결합 단편을 포함한다. 전형적으로, 단편은 별개의 중쇄, 경쇄 Fab, Fab', F(ab')2, F(ab)c, Dab, 나노바디 및 Fv를 포함하는 표적에 대한 특이적 결합에 유래된 무손상 항체와 경쟁한다. 단편은 재조합 DNA 기법에 의해, 또는 무손상 면역글로불린의 효소적 또는 화학적 분리에 의해 생성될 수 있다. 용어 "항체"는 또한 이중특이성 항체 및/또는 인간화 항체를 포함한다. 이중특이성 또는 이작용성 항체는 2개의 상이한 중쇄/경쇄 쌍 및 2개의 상이한 결합 부위를 갖는 인공 혼성체 항체이다(예를 들어, 문헌[Songsivilai and Lachmann, Clin. Exp. Immunol., 79:315-321 (1990); Kostelny et al., J. Immunol., 148:1547-53 (1992)] 참조). 일부 이중특이성 항체에서, 2개의 상이한 중쇄/경쇄쌍은 9D5에 의해 결합된 것보다 트랜스타이레틴 상의 상이한 에피토프에 대해 특이적인 인간화된 9D5 중쇄/경쇄 쌍 및 중쇄/경쇄 쌍을 포함한다. 일부 이중특이성 항체에서, 2개의 상이한 중쇄/경쇄 쌍은 14G8에 의해 결합된 것보다 트랜스타이레틴 상의 상이한 에피토프에 대해 특이적인 인간화된 14G8 중쇄/경쇄쌍 및 중쇄/경쇄쌍을 포함한다. 일부 이중특이성 항체에서, 하나의 중쇄/경쇄 쌍은 이하에 추가로 개시되는 바와 같은 인간화된 9D5 또는 14G8 항체이고, 다른 중쇄/경쇄 쌍은 혈액뇌 장벽, 예컨대 인슐린 수용체, 인슐린-유사 성장 인자(IGF) 수용체, 렙틴 수용체, 또는 리포단백질 수용체, 또는 트랜스페린 수용체 상에서 발현된 수용체에 결합하는 항체로부터 유래된다(Friden et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 88:4771-4775, 1991; Friden et al., Science 259:373-377, 1993). 이러한 이중특이성 항체는 수용체-매개 통과세포외 배출에 의해 혈액뇌 장벽을 가로질러 전달될 수 있다. 이중특이성 항체의 뇌 흡수는 혈액뇌 장벽 수용체에 대한 그의 친화도를 감소시키기 위해 이중특이성 항체를 조작함으로써 추가로 향상될 수 있다. 수용체에 대해 감소된 친화도는 뇌에서 더 넓은 분포를 야기하였다(예를 들어, 문헌[Atwal et al., Sci. Trans. Med. 3, 84ra43, 2011; Yu et al., Sci. Trans. Med. 3, 84ra44, 2011] 참조).
예시적인 이중특이성 항체는 또한 다음과 같을 수 있다: (1) 이중-가변-도메인 항체(DVD-Ig), 여기서 각각의 경쇄 및 중쇄는 짧은 펩타이드 결합을 통해 동시에 2개의 가변 도메인을 함유한다(Wu et al., Generation and Characterization of a Dual Variable Domain Immunoglobulin (DVD-Ig™) Molecule, In: Antibody Engineering, Springer Berlin Heidelberg (2010)); (2) Tandab, 이는 각각의 표적 항원에 대해 2개의 결합 부위를 갖는 4가 이중특이성 항체를 초래하는 2개의 단일쇄 다이어바디(diabody)의 융합임; (3) 플렉시바디(flexibody), 이는 다가 분자를 초래하는 다이어바디와 scFv의 조합임; (4) 단백질 키나제 A에서의 "이량체화 및 도킹 도메인"에 기반한 소위 "도킹과 잠금", 이는 Fab에 적용될 때, 상이한 Fab 단편에 연결된 2개의 동일한 Fab 단편으로 이루어진 3가 이중특이성 결합 단백질을 수득할 수 있음; 또는 (5) 소위 스콜피온(Scorpion) 분자, 예를 들어, 인간 Fc-영역의 말단 둘 다에 융합된 2개의 scFv를 포함함. 이중특이성 항체를 제조하는 데 유용한 플랫폼의 예는 BiTE(마이크로메트(Micromet)), DART(마크로제닉스(MacroGenics)), Fcab 및 Mab2(F-스타(F-star)), Fc-조작된 IgGl(젠코(Xencor)) 또는 듀오바디(DuoBody)(Fab 아암 교환에 기반함, 겐맙(Genmab))을 포함한다.
용어 "에피토프"는 항체가 결합하는 항원 상의 부위를 지칭한다. 에피토프는 하나 이상의 단백질의 3차 폴딩에 의해 접합된 인접 아미노산 또는 비인접 아미노산으로부터 형성될 수 있다. 인접 아미노산으로부터 형성된 에피토프(또한 선형 에피토프로서 알려짐)는 전형적으로 변성 용매에 대한 노출 시 남아있는 반면, 3차 폴딩에 의해 형성된 에피토프(또한 입체배좌 에피토프로서 알려짐)는 전형적으로 변성 용매에 의한 처리 시 상실된다. 에피토프는 전형적으로 독특한 공간적 입체배좌에서 적어도 3, 더 보통으로는, 적어도 5 또는 8 내지 10개의 아미노산을 포함한다. 에피토프의 공간적 입체배좌를 결정하는 방법은, 예를 들어, x-선 결정학 및 2-차원 핵 자기 공명을 포함한다. 예를 들어, 문헌[Epitope Mapping Protocols, in Methods in Molecular Biology, Vol. 66, Glenn E. Morris, Ed. (1996)] 참조. 에피토프는, 예를 들어, 서열번호 109로부터의 2 내지 5, 3 내지 5, 3 내지 9 또는 5 내지 9개의 인접 아미노산의 에피토프와 같이 선형일 수 있다. 에피토프는 또한, 예를 들어, 서열번호 109의 잔기 89 내지 97 내에서 아미노산의 2개 이상의 비인접 세그먼트를 포함하는 입체배좌 에피토프일 수 있다.
항체가 트랜스타이레틴(TTR)의 아미노산 89 내지 97 내에서 에피토프에 결합하는 것으로 언급된다면, 예를 들어, 에피토프는 범위의 외부 제한을 정하는 것을 포함하여 인용된 범위의 아미노산 내에 있다는 것을 의미한다. 범위 내의 모든 아미노산이 에피토프의 부분을 구성한다는 것을 반드시 의미하지는 않는다. 따라서, 예를 들어, TTR의 아미노산 89 내지 97 내의 에피토프는 서열번호 113의 선형 세그먼트의 다른 선형 세그먼트 중에서, 또는 입체배좌 에피토프, 서열번호 113의 아미노산의 비인접 세그먼트의 경우에 아미노산 89 내지 97, 89 내지 96, 90 내지 96, 91 내지 96, 92 내지 96, 93 내지 96, 94 내지 96, 89 내지 96, 89 내지 95, 89 내지 94, 89 내지 93, 89 내지 92 또는 89 내지 93으로 이루어질 수 있다.
동일한 또는 중복되는 에피토프를 인식하는 항체는 표적 항원에 대한 다른 항원의 결합과 경쟁하는 하나의 항체의 능력을 나타내는 단순한 면역분석에서 동정될 수 있다. 항체의 에피토프는 또한 접촉 잔기를 동정하기 위해 항원에 결합된 항체의 X-선 결정학에 의해 정해질 수 있다. 대안적으로, 하나의 항체의 결합을 감소 또는 제거하는 항원에서의 모든 아미노산 돌연변이가 다른 것의 결합을 감소 또는 제거한다면, 2개의 항체는 동일한 에피토프를 가진다. 하나의 항체의 결합을 감소 또는 제거하는 일부 아미노산 돌연변이가 다른 것의 결합을 감소 또는 제거한다면, 2개의 항체는 중복 에피토프를 가진다.
항체 사이의 경쟁은 시험 하의 항체가 통상적인 항원에 대한 기준 항체의 특이적 결합을 저해하는 분석에 의해 결정된다(예를 들어, 문헌[Junghans et al., Cancer Res. 50:1495, 1990] 참조). 경쟁적 결합 분석에서 측정하여, 과량의 시험 항체(즉, 적어도 2x, 5x, 10x, 20x 또는 100x)가 적어도 50%만큼 기준 항체의 결합을 저해한다면 시험 항체는 기준 항체와 경쟁한다. 일부 시험 항체는 적어도 75%, 90% 또는 99%만큼 기준 항체의 결합을 저해한다. 경쟁 분석에 의해 동정된 항체(경쟁 항체)는 기준 항체와 동일한 에피토프에 결합하는 항체 및 입체 장애가 일어나도록 기준 항체에 의해 결합되는 에피토프에 충분히 근위인 인접한 에피토프에 결합하는 항체를 포함한다.
구조 트랜스타이레틴(TTR)에 대해 용어 "천연"은 적절하게 기능성인 상태로 TTR의 정상 폴딩된 구조(즉, TTR 사량체)를 지칭한다. TTR은 그의 천연으로 폴딩된 형태로 사량체이기 때문에, TTR의 비천연 형태는, 예를 들어, 미스폴딩된 TTR 사량체, TTR 단량체, TTR의 응집 형태, 및 TTR의 피브릴 형태를 포함한다. TTR의 비천연 형태는 야생형 TTR 아미노산 서열 또는 돌연변이를 포함하는 분자를 포함할 수 있다.
TTR에 대해 용어 "미스폴딩된"은 TTR 폴리펩타이드 단량체 또는 다량체의 2차 및 3차 구조를 지칭하고, 폴리펩타이드는 그의 적절하게 기능성인 상태로 해당 단백질에 대해 정상이 아닌 입체배좌를 채택한다는 것을 나타낸다. TTR 미스폴딩은 단백질의 돌연변이(예를 들어, 결실, 치환 또는 첨가)에 의해 야기될 수 있지만, 야생형 TTR 단백질은 또한 질환에서 미스폴딩되어 특정 에피토프를 노출시킬 수 있다.
용어 "약제학적으로 허용 가능한"은 담체, 희석제, 부형제 또는 보조제가 제형의 다른 성분과 양립 가능하고, 이의 수용인에 대해 실질적으로 유해하지 않다는 것을 의미한다.
용어 "환자"는 예방적 또는 치료적 치료 중 하나를 받는 인간 및 다른 포유류 대상체를 포함한다.
위험 인자가 없는 개체보다 질환이 발생할 통계학적으로 유의한 더 큰 위험에 위험 인자를 갖는 개체를 위치시키는 적어도 하나의 공지된 위험 인자(예를 들어, 유전자, 생화학, 가족력 및 상황적 노출)를 갖는다면, 개체는 질환의 증가된 위험에 있다.
용어 "생물학적 샘플"은 생물학적 공급원, 예를 들어 인간 또는 포유류 대상체 내의 또는 이들로부터 얻을 수 있는 생물학적 물질의 샘플을 지칭한다. 이러한 샘플은 기관, 세포 소기관, 조직, 조직의 부문, 체액, 말초 혈액, 혈장, 혈액 혈청, 세포, 분자, 예컨대 단백질 및 펩타이드, 및 이들로부터 유래된 임의의 부분 또는 조합물일 수 있다. 용어 생물학적 샘플은 또한 샘플을 가공하는 것에 의해 유도된 임의의 물질을 포함할 수 있다. 유도된 물질은 세포 또는 그들의 자손을 포함할 수 있다. 생물학적 샘플의 가공은 여과, 증류, 추출, 농도, 고정, 간섭 성분의 비활성화 등 중 하나 이상을 수반할 수 있다.
용어 "대조군 샘플"은 트랜스타이레틴(TTR), 예컨대 TTR 아밀로이드 침착물 중의 트랜스타이레틴(TTR)의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태를 포함하는 것으로 알려져 있지 않은 또는 의심되지 않는 생물학적 샘플을 지칭한다. 대조군 샘플은 TTR 아밀로이드증 또는 TTR 아밀로이드증의 구체적으로 선택된 유형으로 고통 받지 않는 개체로부터 얻을 수 있다. 대안적으로, 대조군 샘플은 TTR 아밀로이드증 또는 TTR 아밀로이드증의 구체적으로 선택된 유형으로 고통 받는 환자로부터 얻을 수 있다. 이러한 샘플은 TTR 아밀로이드증을 포함하는 것으로 생각되는 생물학적 샘플과 동시에 또는 상이한 경우에 얻을 수 있다. 생물학적 샘플과 대조군 샘플은 둘 다 동일한 조직(예를 들어, TTR 아밀로이드 침착물과 주위의 정상 조직을 둘 다 함유하는 조직 부문)으로부터 얻을 수 있다. 바람직하게는, 대조군 샘플은 본질적으로 또는 전체적으로 TTR 아밀로이드 침착물이 없는 조직으로 이루어지고, TTR 아밀로이드 침착물을 포함하는 것으로 생각되는 생물학적 샘플에 비교하여 사용될 수 있다. 바람직하게는, 대조군 샘플 내 조직은 생물학적 샘플 중의 조직(예를 들어, 심장 내 심장 근육 세포)과 동일한 유형이다.
용어 "질환"은 생리적 기능을 손상시키는 임의의 비정상적 병태를 지칭한다. 상기 용어는 병인의 특성과 관계없이 생리적 기능이 손상된 임의의 장애, 질병, 이상, 병리, 병, 병태 또는 증후군을 포함하도록 광범위하게 사용된다.
용어 "증후군"은 대상체에 의해 인식되는 바와 같이 질환의 주관적 증거, 예컨대 변경된 보행을 지칭한다. "징후"는 의사에 의해 관찰되는 바와 같은 질환의 객관적 증거를 지칭한다.
아미노산 치환을 보존적 또는 비보존적으로 분류하는 목적을 위해, 아미노산은 다음과 같이 그룹화된다: 그룹 I(소수성 측쇄): met, ala, val, leu, ile; 그룹 II(중성 친수성 측쇄): cys, ser, thr; 그룹 III(산성 측쇄): asp, glu; 그룹 IV(염기성 측쇄): asn, gln, his, lys, arg; 그룹 V(쇄 배향에 영향을 미치는 잔기): gly, pro; 및 그룹 VI(방향족 측쇄): trp, tyr, phe. 보존적 치환은 동일한 부류에서의 아미노산 간의 치환을 수반한다. 비보존적 치환은 이들 부류 중 하나의 구성원을 다른 것의 구성원으로 교환하는 것으로 구성된다.
서열 동일성 백분율은 카바트 넘버링 관례에 의해 최대로 정렬되는 항체 서열에 의해 결정된다. 정렬 후에, 대상 항체 영역(예를 들어, 중쇄 또는 경쇄의 전체 성숙 가변 영역)이 기준 항체의 동일한 영역과 비교된다면, 대상과 기준 항체 영역 사이의 서열 동일성 백분율은 대상과 기준 항체 영역 둘 다에서의 동일한 아미노산에 의해 점유되는 위치의 수를 두 영역의 정렬된 위치의 총 수로 나누고(갭은 계수화하지 않음), 100을 곱하여서 백분율로 전환한다.
하나 이상의 인용된 요소를 "포함하는(comprising)" 또는 "포함하는(including) 조성물 또는 방법은 구체적으로 인용되지 않은 다른 요소를 포함할 수 있다. 예를 들어, 항체를 "포함하는(comprise)" 또는 "포함하는(include)" 조성물은 단독으로 또는 다른 성분과 조합하여 항체를 함유할 수 있단.
값의 범위의 표기는 범위 내의 또는 범위를 정하는 모든 정수, 및 범위 내의 정수에 의해 정해지는 모든 하위범위를 포함한다.
문맥으로부터 달리 명확하지 않다면, 용어 "약"은 언급된 값의 측정 오차(예를 들어, SEM)의 표준 차이 내의 값을 포함한다.
통계학적 유의도는 p≤0.05를 의미한다.
항목의 단수 형태는 달리 분명하게 표시되지 않는 한 복수의 대상을 포함한다. 예를 들어, 용어 "화합물" 또는 "적어도 1종의 화합물"은 이들의 혼합물을 포함하는 복수의 화합물을 포함할 수 있다.
발명을 실시하기 위한 구체적인 내용
I. 일반
본 발명은 트랜스타이레틴(TTR)의 잔기 89 내지 97에 특이적으로 결합하는 항체를 제공한다. 항체는 TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태에 결합하는 능력을 가진다. 항체는 TTR 축적 또는 TTR 침착물의 축적과 관련된 질환 또는 장애(예를 들어, TTR 아밀로이드증)를 치료하거나 또는 예방을 달성하기 위해 사용될 수 있다. 항체는 또한 용도 중에서도 TTR 아밀로이드증을 진단하고, TTR의 응집을 저해 또는 감소시키기 위해 사용될 수 있다.
II. 표적 분자
트랜스타이레틴(TTR)은 주로 간에 의해 합성되는 127-아미노산, 55kDa 혈청 및 뇌척수액 수송 단백질이다. 이는 또한 프레알부민, 티록신 결합 프레알부민, ATTR 및 TBPA로서 지칭되었다. 그의 천연 상태에서, TTR은 사량체로서 존재한다. 동형접합체에서, 사량체는 동일한 127-아미노산 베타-시트-풍부 서브유닛을 포함한다. 이형접합체에서, TTR 사량체는 전형적으로 통계학적 방식과 조합된 변이체 및/또는 야생형 서브유닛으로 이루어진다.
혈액 중의 TTR의 확립된 작용은 홀로-레티놀 결합 단백질을 수송하는 것이다. TTR은 설치류 혈액 중의 티록신(T4)의 주요 운반체이지만, 홀로(holo)-레티놀 결합 단백질에 대해 사용되는 것과 직각인 결합 부위를 이용하여, T4 결합 부위는 인간에서 효과적으로 점유되지 않는다.
TTR은 적어도 30종의 상이한 인간 단백질 중 하나인데, 응집 구조의 범위 내로의 세포외 미스폴딩 및/또는 미스어셈블리(아밀로이드 생성)는 아밀로이드 질환으로서 지칭되는 퇴행성 질환을 야기하는 것으로 생각된다. TTR은 아밀로이드가 생성되도록 입체배좌 변화를 겪는다. 부분적 비폴딩은 궁극적으로 교차-베타 시트 아밀로이드 구조로의 입체배좌 전환을 겪는 대체로 비구조화된 구체 응집물로 효율적으로 미스어셈블리된 연장된 입체배좌에서 대부분 비변화된 소수성 잔기의 신장을 노출시킨다.
문맥에서 달리 명확하지 않다면, 트랜스타이레틴(TTR) 또는 그의 단편 또는 도메인에 대한 언급은 동형단백질, 돌연변이체 및 대립형질 변이체를 포함하는 천연 인간 아미노산 서열을 포함한다. 예시적인 TTR 폴리펩타이드 서열은 등록 번호 P02766.1(유니프롯), AAB35639.1(젠뱅크), AAB35640.1(젠뱅크) 및 ABI63351.1(젠뱅크)(각각 서열번호 109 내지 112)로 표기된다. 잔기는 스위스 프롯(Swiss Prot) P02766.1에 따라 넘버링되며, 성숙 단백질의 제1 아미노산(즉, 20개의 아미노산 신호 서열을 포함하지 않음)은 잔기 1로 표기된다. 임의의 다른 TTR 단백질에서, 잔기는 최대 정렬에 대해 P02766.1에서 대응하는 잔기에 따라 넘버링된다.
III. 트랜스타이레틴 아밀로이드증
트랜스타이레틴(TTR) 아밀로이드증은 병원성, 미스폴딩된 TTR 및 TTR로 구성된 아밀로이드 피브릴의 세포외 침착을 특징으로 하는 전신 장애이다. TTR 아밀로이드증은 일반적으로 (환경적 또는 유전적 병태에 기인하여) 천연 TTR 사량체의 탈안정화에 이해 야기되어, 다양한 기관 및 조직에서 축적되는 아밀로이드 피브릴로의 TTR의 해리, 미스폴딩 및 응집을 유발하여, 진행성 기능장애를 야기한다. 예를 들어, 문헌[Almeida and Saraiva, FEBS Letters 586:2891-2896 (2012); Ando et al., Orphanet Journal of Rare Diseases 8:31 (2013)] 참조.
인간에서, 돌연변이체 및 야생형 서브유닛을 포함하는 야생형 TTR 사량체와 혼합된 사량체는 둘 다 해리, 미스폴딩 및 응집되어서, 아밀로이드 생성 과정은 유사분열 후 조직의 퇴행을 야기할 수 있다. 따라서, TTR 아밀로이드증은 TTR에서의 돌연변이로부터 초래되거나 또는 비돌연변이, 미스폴딩된 TTR로부터 초래되는 병원성 미스폴딩 TTR에 의해 야기되는 질환을 포함한다.
예를 들어, 노인성 전신 아밀로이드증(SSA) 및 노인성 심장 아밀로이드증(SCA)은 심장의 심장 근육 세포 외에서 그리고 내에서 야생형 TTR 아밀로이드의 분해로부터 초래되는 노화관련 아밀로이드증이다. TTR 아밀로이드증은 또한 TTR 단백질을 탈안정화시키는 돌연변이에 이해 야기되는 유전적(가족성) 아밀로이드증의 가장 통상적인 형태이다. TTR 유전자에서 점 돌연변이와 관련된 TTR 아밀로이드증은 가족성 아밀로이드성 다발신경병증(FAP), 가족성 아밀로이드 심근증(FAC), 및 희귀 중추 신경계 선택적 아밀로이드증(CNSA)을 포함한다. 유전적(가족성) TTR 아밀로이드증을 지니는 환자는 거의 항상 이형접합체인데, 이는 TTR 사량체가 일반적으로 통계학적으로 분포되는 돌연변이체 및/또는 야생형 TTR 서브유닛으로 구성된다는 것을 의미한다. TTR 아밀로이드증의 유전적(가족성) 형태는 일반적으로 상염색체 우세이며, 전형적으로 산발적 질환(SSA 및 SCA)보다 더 조기에 개시된다.
상염색체 우세 장애 FAP 및 FAC에 연루된 TTR을 암호화하는 유전자에서 100개 초과의 돌연변이가 있다. 예를 들어, 미국 특허 제2014/0056904호; 문헌[Saraiva, Hum. Mutat. 17(6):493-503 (2001); Damas and Saraiva, J. Struct. Biol. 130:290-299; Dwulet and Benson, Biochem. Biophys. Res. Commun. 114:657-662 (1983)] 참조. 이들 아밀로이드-유발 돌연변이는 TTR의 전체 분자 전체적으로 분포된다. 일반적으로, 돌연변이체 서브유닛을 더욱 탈안정화시키는 것은 TTR 사량체 구조에 대해서이며, 아밀로이드 질환의 더 빠르게 개시한다. TTR 변이체의 병원성 가능성은 일반적으로 그의 불안정성과 그의 세포 분비 효율의 조합에 의해 결정된다. 일부 TTR 변이체에 의해 야기되는 초기 병리는 심장 조직의 그들의 선택적 파괴로부터 초래되는 반면, 다른 TTR 변이체로부터의 병리는 말초 및 자율신경계의 손상으로부터 유래된다. 세포외 아밀로이드의 축적은 TTR 아밀로이드증의 후기 단계에서 기관 구조에 기여하고, 거의 분명히 손상시킬 수 있지만, TTR 아밀로이드 생성에 의해 야기되는 조직 손상은 대부분 작은 확산성 TTR 응집물의 독성으로부터 기인하는 것으로 나타난다.
TTR 아밀로이드증은 개체 및 지리학적 위치에 따라 상당한 표현형 변이와 함께 다수의 상이한 형태로 존재한다. 예를 들어, TTR 아밀로이드증은 진행성, 신경돌기 감각 자율신경 및 운동신경병증으로서 존재할 수 있다. TTR 아밀로이드증은 또한 침윤성 심근병증으로서 존재할 수 있다.
질환-관련 증상의 개시 시 연령은 생애의 20년 내지 90년 사이에서 변하며, 상이한 집단에 걸쳐 큰 변화가 있다. TTR 아밀로이드증의 다중시스템 연루는 그의 진단에 대한 단서이다. 예를 들어, TTR 아밀로이드증 진단은 다음 중 하나 또는 몇몇이 존재할 때 고려된다: (1) 특히 심부전과 관련된 신경병 질환의 가족력; (2) 알려지지 않은 병인의 신경병 통증 또는 진행성 감각 장애; (3) 분명한 원인이 없는 손목 터널 증후군(특히 그것이 양쪽성이며 수술적 복구를 필요로 한다면); (4) 알려지지 않은 병인의 위장 운동성 장애 또는 자율성 신경 기능장애(예를 들어, 발기성 기능장애, 기립성 저혈압, 신경인성 방광); (5) 고혈압 없이 두꺼워진 심실벽을 특징으로 하는 심장 질환; (6) 특히 두꺼워진 심장을 수반할 때 알려지지 않은 유래의 진행된 방실계 차단; 및 (6) 솜털 유형의 유리체 포함. 문헌[Ando et al., Orphanet Journal of Rare Diseases 8:31 (2013)] 참조. 다른 증상은, 예를 들어, 말초신경병증, 감각소실, 통증, 다리의 약화, 발한 이상증, 설사, 변비, 체중 감소 및 요실금/정체를 포함할 수 있다.
TTR 아밀로이드증의 진단은 전형적으로 표적 기관 생검, 다음에 아밀로이드-특이적 염료, 콩고 레드(Congo red)에 의한 절단 조직의 조직학적 염색에 의존한다. 아밀로이드에 대한 양성 검사가 관찰된다면, 아밀로이드 형성을 초래하는 전구체 단백질이 사실 TTR이라는 것을 보장하기 위해 TTR에 대한 면역조직학적 염색이 후속적으로 수행된다. 질환의 가족성 형태에 대해, 이어서, 진단이 이루어질 수 있기 전에 TTR을 암호화하는 유전자에서 돌연변이의 입증이 필요하다. 이는, 예를 들어, 등전점 전기영동, 중합효소 연쇄 반응, 또는 레이저 절개/액체 크로마토그래피-이중질량분석법을 통해 달성될 수 있다. 예를 들어, 미국 특허 제2014/0056904호; 문헌[Ruberg and Berk, Circulation 126:1286-1300 (2012); Ando et al., Orphanet Journal of Rare Diseases 8:31 (2013)] 참조.
IV. 항체
A. 결합 특이성 및 기능성 특성
본 발명은 트랜스타이레틴(TTR) 단백질에 대해, 더 구체적으로는, TTR의 아미노산 잔기 89 내지 97(서열번호 113) 내의 에피토프에 대해 결합하는 단클론성 항체를 제공한다. 이러한 에피토프는 천연 TTR 사량체에 묻혀 있으며, TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태로 노출된다.
9D5 및 14G8로 표기되는 항체는 2가지의 이러한 예시적인 마우스 항체이다. 문맥으로부터 달리 명확하게 되지 않는 한, 9D5 또는 14G8에 대한 언급은 이들 항체의 임의의 마우스, 키메라, 베니어 및 인간화된 형태를 언급하는 것으로 이해되어야 한다. 이들 항체는 TTR의 아미노산 잔기 89 내지 97(서열번호 113) 내에서 특이적으로 결합한다. 이들 항체는 추가로 TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태에 대해 결합하지만, TTR의 천연 사량체 형태에 대해서는 결합하지 않는 그들의 능력을 특징으로 한다. 추가로, 이들 항체는 TTR-매개 아밀로이드증 심장 조직에 대해 그들이 면역반응성이지만, 건강한 심장 조직에 대해서는 면역반응성이 아닌 것을 특징으로 한다. 특정 단백질 또는 이들의 단편에 결합하는 능력은 실시예에 제공되는 예시적인 분석 형식을 이용하여 입증될 수 있다.
일부 항체는 9D5 또는 14G8로 표기된 항체와 동일하거나 또는 중복되는 에피토프에 결합한다. 이들 항체의 중쇄 및 경쇄 성숙 가변 영역의 서열은 각각 서열번호 1 및 16(9D5), 및 61 및 70(14G8)으로 표기된다. 이러한 결합 특이성을 갖는 다른 항체는 TTR, 또는 목적으로 하는 에피토프를 포함하는 이의 일부(예를 들어, 서열번호 113)를 이용하여 마우스를 면역화함으로써, 그리고 선택적으로 마우스 9D5 또는 14G8의 가변 영역(IgG1 카파)을 갖는 항체와 경쟁하여, 얻어진 항체를 단량체 TTR 또는 서열번호 113을 포함하는 펩타이드에 대한 결합을 위해 선별함으로써 생성될 수 있다. 목적으로 하는 에피토프를 포함하는 TTR의 단편은 단편에 대해 항체 반응을 유발하게 하는 담체에 연결될 수 있고/있거나 이러한 반응을 유발하게 하는 애주번트와 조합될 수 있다. 이러한 항체는 구체화된 잔기의 돌연변이체에 비해 TTR 또는 이의 단편(예를 들어, 서열번호 113)의 야생형, 단량체 형태에 대한 차별적인 결합을 위해 선별될 수 있다. 이러한 돌연변이체에 대한 선별은 더 정확하게는 결합이 특정 잔기의 돌연변이유발에 의해 저해되고, 다른 예시된 항체의 기능적 특성을 공유할 가능성이 있는 항체의 동정을 허용하도록 결합 특이성을 정한다. 돌연변이는 표적 전체적으로 또는 에피토프가 존재하는 것으로 알려진 부문 전체적으로 한 번에 또는 더 크게 떨어진 간격으로 알라닌(또는 알라닌이 이미 존재한다면 세린)의 하나의 잔기로의 전체적인 대체적 치환일 수 있다. 돌연변이의 동일한 세트가 두 항체의 결합을 상당히 감소시킨다면, 두 항체는 동일한 에피토프에 결합한다.
선택된 뮤린 항체(예를 들어, 9D5 또는 14G8)의 결합 특이성을 갖는 항체는 또한 파지 디스플레이 방법의 변이체를 이용하여 생성될 수 있다. 윈터(Winter)의 WO 92/20791 참조. 이 방법은 인간 항체를 생성하는 데 특히 적합하다. 이 방법에서, 선택된 뮤린 항체의 중쇄 또는 경쇄 가변 영역 중 하나는 출발 물질로서 사용된다. 예를 들어, 경쇄 가변 영역이 출발 물질로서 선택된다면, 구성원이 동일한 경쇄 가변 영역(즉, 뮤린 출발 물질) 및 상이한 중쇄 가변 영역을 나타내는 파지 디스플레이가 구성된다. 중쇄 가변 영역은, 예를 들어, 재배열된 인간 중쇄 가변 영역의 라이브러리로부터 얻어질 수 있다. 단량체 TTR 또는 이의 단편(예를 들어, 아미노산 잔기 89 내지 97)에 대해 강한 특이적 결합(예를 들어, 적어도 108 및 바람직하게는 적어도 109 M-1)을 나타내는 파지가 선택된다. 이어서, 이 파지로부터의 중쇄 가변 영역은 추가적인 파지 라이브러리를 구성하기 위한 출발 물질로서 작용한다. 이 라이브러리에서, 각각의 파지는 동일한 중쇄 가변 영역(즉, 제1 파지 디스플레이 라이브러리로부터 단리된 영역) 및 상이한 경쇄 가변 영역을 나타낸다. 경쇄 가변 영역은, 예를 들어 재배열된 인간 가변 경쇄 영역의 라이브러리로부터 얻을 수 있다. 또한, 단량체 TTR 또는 이의 단편(예를 들어, 아미노산 잔기 89 내지 97)에 대해 강한 특이적 결합을 나타내는 파지가 선택된다. 얻어진 항체는 보통 뮤린 출발 물질과 동일 또는 유사한 에피토프 특이성을 가진다. 9D5의 중쇄의 카바트 CDR은 각각 서열번호 13 내지 15로 표기하고, 9D5의 경쇄의 카바트 CDR은 각각 서열번호 24 내지 26으로 표기한다. 9D5의 복합 코티아-카바트 CDR-H1은 서열번호 117로 표기한다. 14G8의 중쇄의 카바트 CDR은 각각 서열번호 67 내지 69로 표기하고, 14G8의 경쇄의 카바트 CDR은 각각 서열번호 77 내지 79로 표기한다. 14G8의 복합 코티아-카바트 CDR-H1은 서열번호 118로 표기한다. 14G8의 CDR-L1의 변이체는 서열번호 80로 표기한다.
다른 항체는 예시적인 항체 항체, 예컨대 9D5 또는 14G8의 중쇄 및 경쇄를 암호화하는 cDNA의 돌연변이유발에 의해 얻을 수 있다. 성숙 중쇄 및/또는 경쇄 가변 영역의 아미노산 서열 내 9D5 또는 14G8에 대해 적어도 70%, 80%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98% 또는 99% 동일하고, 그의 기능적 특성을 유지하고/하거나 소수의 기능적으로 중요하지 않은 아미노산 치환(예를 들어, 보존적 치환), 결실 또는 삽입에 의해 각각의 항체와 다른 단클론성 항체가 또한 본 발명에 포함된다. 9D5 또는 14G8의 대응하는 CDR에 대해 90%, 95%, 99% 또는 100% 동일한 임의의 통상적인 정의(그러나 바람직하게는 카바트)에 의해 정해지는 적어도 하나 또는 모두 6개의 CDR(들)을 갖는 단클론성 항체가 또한 포함된다.
본 발명은 또한 9D5 또는 14G8로부터 전체적으로 또는 실질적으로 일부 또는 모든(예를 들어, 3, 4, 5 및 6개의) CDR을 갖는 항체를 제공한다. 이러한 항체는 9D5 또는 14G8의 중쇄 가변 영역으로부터 전체적으로 또는 실질적으로 적어도 2, 보통은 모두 3개의 CDR을 갖는 중쇄 가변 영역 및/또는 9D5 또는 14G8의 경쇄 가변 영역으로부터 전체적으로 또는 실질적으로 적어도 2, 보통은 모두 3개의 CDR을 갖는 경쇄 가변 영역을 포함할 수 있다. 항체는 중쇄와 경쇄를 둘 다 포함할 수 있다. CDR은, CDR-H2(카바트에 의해 정해질 때)가 6, 5, 4, 3, 2 또는 1개 이하의 치환, 삽입 또는 결실을 가질 수 있다는 것을 제외하고, 4, 3, 2 또는 1개 이하의 치환, 삽입 또는 결실을 함유할 때, 대응하는 9D5 또는 14G8 CDR로부터 실질적으로 유래된다. 이러한 항체는 성숙 중쇄 및/또는 경쇄 가변 영역의 아미노산 서열 내 9D5 또는 14G8에 대해 적어도 70%, 80%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98% 또는 99% 동일성을 가질 수 있고, 그들의 기능적 특성을 유지하고/하거나 소수의 기능적으로 중요하지 않은 아미노산 치환(예를 들어, 보존적 치환), 결실 또는 삽입에 의해 9D5 또는 14G8과 다르다.
이러한 분석에 의해 동정되는 일부 항체는 실시예 또는 다른 것에 기재하는 바와 같이, TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태에 결합할 수 있지만, TTR의 천연 사량체 형태에 결합되지 않는다. 마찬가지로, 일부 항체는 TTR-매개 아밀로이드증 조직에 대해 면역반응성이지만, 건강한 조직에 대해서는 그렇지 않다.
일부 항체는 동물 모델 또는 임상 시험에서 TTR의 응집을 저해 또는 감소시킬 수 있거나, TTR 피브릴 형성을 저해 또는 감소시킬 수 있거나, TTR 침착 또는 응집된 TTR을 감소시키거나 또는 클리어런스하거나, 또는 TTR의 비독성 입체배좌를 안정화시킨다. 일부 항체는 동물 모델 또는 임상 시험에서 나타낸 바와 같이 TTR 아밀로이드증을 치료하거나, 예방을 달성하거나 또는 개시를 지연시킬 수 있다. TTR 아밀로이드증에 대한 활성을 시험하기 위한 예시적인 동물 모델은 문헌[Kohno et al., Am. J. Path. 150(4):1497-1508 (1997); Teng et al., Laboratory Investigations 81:385-396 (2001); Wakasugi et al., Proc. Japan Acad. 63B:344-347 (1987); Shimada et al., Mol. Biol. Med. 6:333-343 (1989); Nagata et al., J. Biochem. 117:169-175 (1995); Sousa et al., Am. J. Path. 161:1935-1948 (2002); 및 Santos et al., Neurobiology of Aging 31:280-289 (2010)]에 기재된 것을 포함한다.
B. 비인간 항체
단량체 TTR 또는 이의 단편(예를 들어, 아미노산 잔기 89 내지 97)에 대한 다른 비인간 항체의 생성, 예를 들어, 뮤린, 기니픽, 영장류, 토끼 또는 래트는, 예를 들어, TTR 또는 이의 단편을 이용하여 동물을 면역화함으로써 달성될 수 있다. 문헌[Harlow & Lane, Antibodies, A Laboratory Manual (CSHP NY, 1988)] 참조(모든 목적을 위해 참고로 포함됨). 이러한 면역원은 천연 공급원으로부터, 펩타이드 합성에 의해 또는 재조합 발현에 의해 얻을 수 있다. 선택적으로, 운반체 단백질과 융합 또는 달리 복합체화된 면역원이 투여될 수 있다. 선택적으로, 면역원은 애주번트와 함께 투여될 수 있다. 몇몇 유형의 애주번트는 이하에 기재되는 바와 같이 사용될 수 있다. 완전 프로인트 애주번트 다음에 불완전 애주번트는 실험실 동물의 면역화를 위해 바람직하다. 토끼 또는 기니픽은 전형적으로 다클론성 항체를 제조하기 위해 사용된다. 마우스는 전형적으로 단클론성 항체를 제조하기 위해 사용된다. 항체는 단량체 TTR 또는 TTR 내의 에피토프(예를 들어, 아미노산 잔기 89 내지 97 중 하나 이상을 포함하는 에피토프)에 대한 특이적 결합을 위해 선별된다. 이러한 선별은 아미노산 잔기 89 내지 97 또는 이들 잔기 내에서 돌연변이를 함유하는 단량체 TTR 변이체, 예컨대 TTR 변이체의 수집물에 대한 항체의 결합을 결정하고, TTR 변이체가 항체에 결합하는 것을 결정함으로써 달성될 수 있다. 결합은, 예를 들어, 웨스턴 블롯, FACS 또는 ELISA에 의해 평가될 수 있다.
C. 인간화 항체
인간화 항체는 비인간 "공여자(donor)" 항체로부터의 CDR이 인간 "수용자" 항체 서열에 접합된 유전자 조작된 항체이다(예를 들어, 퀸(Queen)의 미국 특허 제5,530,101호 및 제5,585,089호; 윈터(Winter)의 미국 특허 제5,225,539호; 카터(Carter)의 미국 특허 제6,407,213호; 아다이르(Adair)의 미국 특허 제5,859,205호; 및 푸트(Foote)의 미국 특허 제 6,881,557호 참조). 수용자 항체 서열은, 예를 들어, 성숙 인간 항체 서열, 이러한 서열의 복합체, 인간 항체 서열의 공통 서열 또는 생식계열 서열일 수 있다. 따라서, 인간화 항체는 공여자 항체 및 가변 영역 프레임워크 서열 및 불변 영역으로부터 전체적으로 또는 실질적으로, 존재한다면 인간 항체 서열로부터 전체적으로 또는 실질적으로 적어도 3, 4, 5 또는 모든 CDR을 갖는 항체이다. 유사하게, 인간화된 중쇄는 공여자 항체 중쇄, 및 중쇄 가변 영역 프레임워크 서열 및 중쇄 불변 영역으로부터 전체적으로 또는 실질적으로, 존재한다면, 인간 중쇄 가변 영역 프레임워크 및 불변 영역 서열로부터 실질적으로 적어도 1, 2 및 보통으로는 모두 3개의 CDR을 가진다. 유사하게, 인간화된 경쇄는 공여자 항체 경쇄, 및 경쇄 가변 영역 프레임워크 서열 및 경쇄 불변 영역으로부터 전체적으로 또는 실질적으로, 존재한다면, 인간 경쇄 가변 영역 프레임워크 및 불변 영역 서열로부터 실질적으로 적어도 1, 2 및 보통으로는 모두 3개의 CDR을 가진다. 나노바디 및 dAb 이외에, 인간화 항체는 인간화된 중쇄 및 인간화된 경쇄를 포함한다. 인간화 항체 내 CDR은 대응하는 잔기의 적어도 85%, 90%, 95% 또는 100%(임의의 통상적인 정의에 의해 정하지만, 바람직하게는 카바트에 의해 정함)가 각각의 CDR 사이에서 동일할 때, 비인간 항체 내 대응하는 CDR로부터 실질적으로 유래된다. 항체 쇄의 가변 영역 프레임워크 서열 또는 항체 쇄의 불변 영역은 임의의 통상적인 정의에 의해 정해지는(그러나 바람직하게는 카바트에 의해 정해지는) 대응하는 잔기의 적어도 85%, 90%, 95% 또는 100%가 동일할 때 인간 가변 영역 프레임워크 서열 또는 인간 불변 영역으로부터 각각 실질적으로 유래된다.
인간화 항체는 종종 마우스 항체로부터 모두 6개의 CDR(임의의 통상적인 정의에 의해 정하지만, 바람직하게는 카바트에 의해 정함)을 혼입하지만, 그들은 또한 마우스 항체로부터 모든 CDR 미만으로(예를 들어, 적어도 3, 4 또는 5개의 CDR) 이루어질 수 있다(예를 들어, 문헌[Pascalis et al., J. Immunol. 169:3076, 2002; Vajdos et al., J. of Mol. Biol., 320: 415-428, 2002; Iwahashi et al., Mol. Immunol. 36:1079-1091, 1999; Tamura et al, J. Immunol., 164:1432-1441, 2000] 참조).
일부 항체에서, CDR의 단지 일부, 즉, SDR로 칭해지는 결합에 필요한 CDR 잔기의 서브세트가 인간화 항체에서 결합을 보유하는 데 필요하다. 항원과 접촉하지 않고 SDR과 접촉하지 않는 CDR 잔기는 분자 모델링에 의해 그리고/또는 경험적으로, 또는 문헌[Gonzales et al., Mol. Immunol. 41: 863, 2004]에 기재된 바와 같이 코티아 초가변 루프 밖에 놓인 카바트 CDR의 영역으로부터 이전의 연구(예를 들어, CDR H2 내 잔기 H60 내지 H65는 종종 필요하지 않음)에 기반하여 동정될 수 있다(Chothia, J. Mol. Biol. 196:901, 1987). 하나 이상의 공여자 CDR 잔기가 없거나 또는 전체 공여자 CDR이 생략되는 위치에서의 이러한 인간화 항체에서, 위치를 점유하는 아미노산은 수용자 항체 서열에서 대응하는 위치(카바트 넘버링에 의함)를 점유하는 아미노산일 수 있다. 포함되는 CDR 내 공여자 아미노산에 대한 수용자의 이러한 치환의 수는 경쟁적 사항의 균형을 반영한다. 이러한 치환은 인간화 항체 내 마우스 아미노산의 수를 감소시키고, 결과적으로 잠재적 면역원성을 감소시킴에 있어서 잠재적으로 유리하다. 그러나, 치환은 또한 친화도의 변화를 야기할 수 있고, 친화도의 상당한 감소는 바람직하게는 회피된다. 치환을 위한 CDR 및 아미노산 내의 치환에 대한 위치는 또한 경험적으로 선택될 수 있다.
인간 수용자 항체 서열은 선택적으로 인간 수용자 서열 가변 영역 프레임워크와 공여자 항체 쇄의 대응하는 가변 영역 프레임워크 사이의 높은 정도의 서열 동일성(예를 들어, 65 내지 85% 동일성)을 제공하기 위해 다수의 공지된 인간 항체 서열 중에서 선택될 수 있다.
중쇄에 대한 수용자 서열의 예는 NCBI 수탁 코드 BAC02114 및 AAX82494.1(서열번호 3 및 4)을 갖는 인간 성숙 중쇄 가변 영역 및 인간 카바트 하위그룹 3의 중쇄 가변 영역이다. BAC02114는 마우스 9D5 중쇄와 동일한 정규 형태를 공유한다. 중쇄에 대한 수용자 서열의 다른 예는 NCBI 수탁 코드 AAD30410.1 및 AAX82494.1(각각 서열번호 63 및 4)을 갖는 인간 성숙 중쇄 가변 영역 및 인간 카바트 하위그룹 1의 중쇄 가변 영역이다. AAD30410.1 및 AAX82494.1은 마우스 14G8 중쇄와 동일한 정규 형태를 갖는 2개의 CDR을 포함한다. 경쇄에 대한 수용자 서열의 예는 NCBI 수탁 번호 ABC66952(서열번호 18)를 갖는 인간 성숙 경쇄 가변 영역 및 인간 카바트 하위그룹 3의 경쇄 가변 영역이다. ABC66952는 마우스 9D5 경쇄와 동일한 정규 형태를 갖는 2개의 CDR을 포함한다. 경쇄에 대한 수용자 서열의 다른 예는 NCBI 수탁 코드 ABA71374.1 및 ABC66952.1(각각 서열번호 72 및 73)을 갖는 인간 성숙 경쇄 가변 영역 및 인간 카바트 하위그룹 2의 경쇄 가변 영역이다. ABA71374.1 및 ABC66952.1은 마우스 14G8 경쇄와 동일한 정규 형태를 가진다.
하나 초과의 인간 수용자 항체 서열이 선택된다면, 해당 수용자의 복합체 또는 혼성체가 사용되며, 인간화된 경쇄 및 중쇄 가변 영역 내 상이한 위치에서 사용되는 아미노산은 사용되는 임의의 인간 수용자 항체 서열로부터 취해질 수 있다. 예를 들어, NCBI 수탁 코드 BAC02114 및 AAX82494.1(서열번호 3 및 4)을 갖는 인간 성숙 중쇄 가변 영역은 9D5 성숙 중쇄 가변 영역의 인간화를 위한 수용자 서열로서 사용되었다. 이들 두 수용자가 다른 위치의 예는 위치 H19(R 또는 K), H40(A 또는 T), H44(G 또는 R), H49(S 또는 A), H77(S 또는 T), H82a(N 또는 S), H83(R 또는 K), H84(A 또는 S), 및 H89(V 또는 M)를 포함한다. 9D5 중쇄 가변 영역의 인간화된 형태는 임의의 이들 위치에서 아미노산 중 하나를 포함할 수 있다. 유사하게, NCBI 수탁 코드 AAD30410.1 및 AAX82494.1(각각 서열번호 63 및 4)을 갖는 인간 성숙 중쇄 가변 영역은 14G8 성숙 중쇄 가변 영역의 인간화를 위해 수용자 서열로서 사용되었다. 이들 두 수용자가 다른 위치의 예는 위치 H82a(N 또는 S), H83(R 또는 K), H84(A 또는 S), 및 H89(V 또는 M)를 포함한다. 14G8 중쇄 가변 영역의 인간화된 형태는 임의의 이들 위치에서 아미노산 중 하나를 포함할 수 있다. 유사하게, NCBI 수탁 코드 ABA71374.1 및 ABC66952.1(각각 서열번호 72 및 73)을 갖는 인간 성숙 경쇄 가변 영역은 14G8 성숙 경쇄 가변 영역의 인간화를 위한 수용자 서열로서 사용되었다. 이들 두 수용자가 다른 위치의 예는 위치 L18(S 또는 P)이다. 14G8 경쇄 가변 영역의 인간화된 형태는 이 위치에서 아미노산 중 하나를 포함할 수 있다.
인간 가변 영역 프레임워크 잔기로부터의 특정 아미노산은 CDR 입체배좌 및/또는 항원에 대한 결합에 대한 그들의 가능한 영향에 기반하여 치환을 위해 선택될 수 있다. 이러한 가능한 영향의 연구는 특정 위치에서 아미노산의 특징의 시험, 또는 특정 아미노산의 치환 또는 돌연변이유발 효과의 경험적 관찰을 모델링하는 것에 의한다.
예를 들어, 아미노산이 뮤린 가변 영역 프레임워크 잔기와 선택된 인간 가변 영역 프레임워크 잔기 사이에서 다를 때, 인간 프레임워크 아미노산은 그것이 아미노산에 대해 합리적으로 예상될 때에 마우스 항체와 동등한 프레임워크 아미노산에 의해 치환될 수 있다:
(1) 비공유적으로 항원에 직접 결합함;
(2) 코티아(그러나 카바트는 아님)에 의해 나타내는 바와 같은 CDR 영역에 인접하거나 또는 CDR 내임;
(3) CDR 영역(예를 들어, CDR 영역의 약 6Å 내임)과 달리 상호작용함, (예를 들어, 상동성의 알려진 면역글로불린 쇄의 풀어진 구조에 대해 경쇄 또는 중쇄를 모델링하는 것에 의해 동정됨); 또는
(4) VL-VH 계면에 참여하는 잔기임.
퀸의 미국 특허 제5,530,101호에 의해 정의되는 바와 같은 부류 (1) 내지 (3)으로부터의 프레임워크 잔기는 때때로 정규 및 버니어(vernier) 잔기로서 대안적으로 지칭된다. CDR 루프의 입체배좌를 정하게 하는 프레임워크 잔기는 때때로 정규 잔기로서 지칭된다(Chothia & Lesk, J. Mol. Biol. 196:901-917 (1987); Thornton & Martin, J. Mol. Biol. 263:800-815 (1996)). 항원-결합 루프 입체배좌를 지지하고, 항원에 대한 항체의 맞춤을 미세하게 조율하는 역할을 하는 프레임워크 잔기는 때때로 베니어 잔기로서 지칭된다(Foote & Winter, J. Mol. Biol 224:487-499 (1992)).
치환을 위한 후보인 다른 프레임워크 잔기는 잠재적 글리코실화 부위를 생성하는 잔기이다. 치환을 위한 또 다른 후보는 해당 위치에서 인간 면역글로불린에 대해 보통인 수용자 인간 프레임워크 아미노산이다. 이들 아미노산은 마우스 공여자 항체의 동등한 위치로부터 또는 더 전형적인 인간 면역글로불린의 동등한 위치로부터 아미노산으로 치환될 수 있다.
예시적인 인간화 항체는 마우스 9D5 또는 14G8 항체의 인간화된 형태이며, 각각 Hu9D5 또는 Hu14G8로 표기된다. 마우스 9D5 항체는 서열번호 1 및 서열번호 16을 각각 포함하는 아미노산 서열을 갖는 성숙 중쇄 및 경쇄 가변 영역을 포함한다. 본 발명은 8개의 예시된 인간화된 성숙 중쇄 가변 영역을 제공한다: Hu9D5VHv1, Hu9D5VHv2, Hu9D5VHv2b, Hu9D5VHv3, Hu9D5VHv3b, Hu9D5VHv4, Hu9D5VHv4b 및 Hu9D5VHv5(각각 서열번호 5 내지 12). 본 발명은 추가로 5개의 예시화된 인간 성숙 경쇄 가변 영역을 제공한다: Hu9D5VLv1, Hu9D5VLv2, Hu9D5VLv3, Hu9D5VLv4 및 Hu9D5VLv5(각각 서열번호 19 내지 23). 도 1은 9D5, 마우스 모델 항체, 인간 수용자 항체, 및 다양한 인간화 항체의 정렬을 나타낸다.
마우스 14G8 항체는 서열번호 61 및 서열번호 70을 각각 포함하는 아미노산 서열을 갖는 성숙 중쇄 및 경쇄 가변 영역을 포함한다. 본 발명은 3개의 예시된 인간화된 성숙 중쇄 가변 영역을 제공한다: Hu14G8VHv1, Hu14G8VHv2 및 Hu14G8VHv3(각각 서열번호 64 내지 66). 본 발명은 추가로 3개의 예시화된 인간 성숙 경쇄 가변 영역을 제공한다: Hu14G8VLv1, Hu14G8VLv2 및 Hu14G8VLv3(각각 서열번호 74 내지 76). 도 2는 14G8, 마우스 모델 항체, 인간 수용자 항체, 및 다양한 인간화 항체의 정렬을 나타낸다.
CDR 입체배좌 및/또는 항원에 대한 결합에 대한 가능한 영향과 같은 이유로, 중쇄와 경쇄 사이의 상호작용의 매개, 불변 영역과의 상호작용, 목적으로 하는 또는 목적으로 하지 않는 번역 후 변형을 위한 부위가 되는 것, 인간 가변 영역 서열에서 그의 위치를 위한 보통이 아닌 잔기가 되는 것 및 따라서 잠재적으로 면역원성인, 응집 퍼텐셜을 얻는 것, 및 다른 이유로 다음의 15개의 가변 영역 프레임워크 위치를 실시예에서 추가로 구체화하는 바와 같이 8개의 예시된 Hu9D5 성숙 중쇄 가변 영역 및 5개의 예시된 Hu9D5 성숙 경쇄 가변 영역에서 치환을 위한 후보로서 고려하였다: H42(G42E), H47(W47L), H69(I69F), H82(M82S), H82b(S82(b)L), H108(T108L), L8(P8A), L9(L9P), L18(P18S), L19(A19V), L36(Y36F), L39(K39R), L60(D60S), L70(D70A) 및 L74(K74R). 마찬가지로, 다음의 11개의 가변 영역 프레임워크 위치를 실시예에서 추가로 구체화하는 바와 같이 3개의 예시된 Hu14G8 성숙 중쇄 가변 영역 및 3개의 예시된 Hu14G8 성숙 경쇄 가변 영역에서 치환을 위한 후보로서 고려하였다: H1(Q1E), H3(Q3K), H47(W47L), H105(Q105T), L8(P8A), L9(L9P), L19(A19V), L26(N26S), L36(Y36F), L60(D60S) 및 L70(D70A).
여기서, 다른 곳에서와 같이, 처음 언급된 잔기는 인간 수용자 프레임워크(예를 들어, 복합 또는 혼성체 인간 수용자 프레임워크) 내로 CDR-H1의 경우에 카바트 CDR 또는 복합 코티아-카바트 CDR을 접합함으로써 형성된 인간화 항체의 잔기이며, 두번째로 언급된 잔기는 이러한 잔기를 대체하기 위한 것으로 고려된다. 따라서, 가변 영역 프레임워크 내에서, 처음 언급된 잔기는 인간이고, CDR 내에서, 처음 언급된 잔기는 마우스이다.
예시된 Hu9D5 항체는 예시된 성숙 중쇄 및 경쇄 가변 영역의 임의의 순열 또는 조합을 포함한다(예를 들어, VHv1/VLv1 또는 H1L1, VHv1/VLv2 또는 H1L2, VHv1/VLv3 또는 H1L3, VHv1/VLv4 또는 H1L4, VHv1/VLv5 또는 H1L5, VHv2/VLv1 또는 H2L1, VHv2/VLv2 또는 H2L2, VHv2/VLv3 또는 H2L3, VHv2/VLv4 또는 H2L4, VHv2/VLv5 또는 H2L5, VHv2b/VLv1 또는 H2bL1, VHv2b/VLv2 또는 H2bL2, VHv2b/VLv3 또는 H2bL3, VHv2b/VLv4 또는 H2bL4, VHv2b/VLv5 또는 H2bL5, VHv3/VLv1 또는 H3L1, VHv3/VLv2 또는 H3L2, VHv3/VLv3 또는 H3L3, VHv3/VLv4 또는 H3L4, VHv3/VLv5 또는 H3L5, VHv3b/VLv1 또는 H3bL1, VHv3b/VLv2 또는 H3bL2, VHv3b/VLv3 또는 H3bL3, VHv3b/VLv4 또는 H3bL4, VHv3b/VLv5 또는 H3bL5, VHv4/VLv1 또는 H4L1, VHv4/VLv2 또는 H4L2, VHv4/VLv3 또는 H4L3, VHv4/VLv4 또는 H4L4, VHv4/VLv5 또는 H4L5, VHv4b/VLv1 또는 H4bL1, VHv4b/VLv2 또는 H4bL2, VHv4b/VLv3 또는 H4bL3, VHv4b/VLv4 또는 H4bL4, VHv4b/VLv5 또는 H4bL5, VHv5/VLv1 또는 H5L1, VHv5/VLv2 또는 H5L2, VHv5/VLv3 또는 H5L3, VHv5/VLv4 또는 H5L4, 및 VHv5/VLv5 또는 H5L5).
본 발명은 인간화된 Hu9D5VHv4b(서열번호 11)에 대해 적어도 90%, 95%, 96%, 97%, 98% 또는 99% 동일성을 나타내고, 인간화된 성숙 경쇄 가변 영역이 Hu9D5VLv1에 대해 적어도 90%, 95%, 96%, 97%, 98% 또는 99% 동일성을 나타내는(서열번호 19) 인간화된 9D5 항체의 변이체를 제공한다. 일부 이러한 항체에서, Hu9D5 H4bL1에서 복귀 돌연변이 또는 다른 돌연변이 중 적어도 1, 2 또는 모두 3가지는 유지된다. 본 발명은 또한 다른 예시된 인간화된 9D5 항체의 변이체를 제공한다. 이러한 변이체는 예시된 인간화된 9D5 H1L1, H1L2, H1L3, H1L4, H1L5, H2L1, H2L2, H2L3, H2L4, H2L5, H2bL1, H2bL2, H2bL3, H2bL4, H2bL5, H3L1, H3L2, H3L3, H3L4, H3L5, H3bL1, Hb3L2, H3bL3, Hb3L4, H3bL5, H4L1, H4L2, H4L3, H4L4, H4L5, H4bL1, H4bL2, H4bL3, H4bL4, H4bL5, H5L1, H5L2, H5L3, H5L4, 또는 H5L5 항체의 성숙 경쇄 및 중쇄 가변 영역에 대해 적어도 90%, 95%, 96%, 97%, 98% 또는 99% 서열 동일성을 나타내는 성숙 경쇄 및 중쇄 가변 영역을 가진다.
일부 항체에서, Vh 영역 내 위치 H42, H47, H69, H82, H82b 및 H108 중 적어도 하나는 각각 E, L, F, S, L 및 L에 의해 점유된다. 일부 항체에서, Vh 영역 내 위치 H47, H69 및 H82는 Hu9D5VHv1에서와 같이 각각 L, F 및 S에 의해 점유된다. 일부 항체에서, Vh 영역 내 위치 H47, H69, H82 및 H82b는 Hu9D5VHv2에서와 같이 각각 L, F, S 및 L에 의해 점유된다. 일부 항체에서, Vh 영역 내 위치 H42, H47 및 H108은 Hu9D5VHv2b에서와 같이 각각 E, L 및 L에 의해 점유된다. 일부 항체에서, Vh 영역 내 위치 H69, H82 및 H82b는 Hu9D5VHv3에서와 같이 각각 F, S 및 L에 의해 점유된다. 일부 항체에서, Vh 영역 내 위치 H47 및 H108은 Hu9D5VHv3b 및 Hu9D5Vhv4b에서와 같이 L에 의해 각각 점유된다. 일부 항체에서, Vh 영역 내 위치 H82 및 H82b는 Hu9D5VHv4에서와 같이 각각 S 및 L에 의해 점유된다. 일부 항체에서, Vh 영역 내 위치 H42, H47 및 H82b는 Hu9D5VHv5에서와 같이 각각 E, L 및 L에 의해 점유된다. 일부 항체에서, Vk 영역 내 위치 L8, L9, L18, L19, L36, L39, L60, L70 및 L74 중 적어도 하나는 각각 A, P, S, V, F, R, S, A 및 R에 의해 점유된다. 일부 항체에서, Vk 영역 내 위치 L36은 Hu9D5VLv1에서와 같이 F에 의해 점유된다. 일부 항체에서, Vk 영역 내 위치 L60은 Hu9D5VLv3에서와 같이 S에 의해 점유된다. 일부 항체에서, Vk 영역 내 위치 L8, L9, L19, L36, L39, L60, L70 및 L74는 Hu9D5VLv4에서와 같이 각각 A, P, V, F, R, S, A 및 R에 의해 점유된다. 일부 항체에서, Vk 영역 내 위치 L8, L9, L18, L19, L36, L39, L60, L70 및 L74는 Hu9D5VLv5에서와 같이 각각 A, P, S, V, F, R, S, A 및 R에 의해 점유된다. 이러한 인간화 항체의 CDR 영역은 9D5 마우스 공여자 항체 또는 임의의 상기 예신된 인간화된 9D5 항체의 CDR 영역과 동일하거나 또는 실질적으로 동일할 수 있다. CDR 영역은 임의의 통상적인 정의(예를 들어, 코티아, 또는 코티아 및 카바트의 복합)에 의해 정해질 수 있지만, 바람직하게는 카바트에 의해 정해진다.
가변 영역 프레임워크 위치는 달리 언급되지 않는 한 카바트 넘버링에 따른다. 다른 이러한 변이체는 전형적으로 소수의(예를 들어, 전형적으로 1, 2, 3, 5, 10 또는 15개 이하) 대체, 결실 또는 삽입에 의해 예시된 Hu9D5 중쇄 및 경쇄 서열과 다르다. 이러한 차이는 보통 프레임워크에 있지만, 또한 CDR 내에서 발생할 수 있다.
예시된 Hu14G8 항체는 예시된 성숙 중쇄 및 경쇄 가변 영역의 임의의 순열 또는 조합을 포함한다(예를 들어, VHv1/VLv1 또는 H1L1, VHv1/VLv2 또는 H1L2, VHv1/VLv3 또는 H1L3, VHv2/VLv1 또는 H2L1, VHv2/VLv2 또는 H2L2, VHv2/VLv3 또는 H2L3, VHv3/VLv1 또는 H3L1, VHv3/VLv2 또는 H3L2, 및 VHv3/VLv3 또는 H3L3).
본 발명은 인간화된 성숙 중쇄 가변 영역이 Hu14G8VHv2(Hu14G8 H2)에 대해 적어도 90%, 95%, 96%, 97%, 98% 또는 99% 동일성을 나타내고(서열번호 65), 인간화된 성숙 경쇄 가변 영역이 Hu14G8VLv3에 대해 적어도 90%, 95%, 96%, 97%, 98% 또는 99% 동일성을 나타내는(Hu14G8 L3)(서열번호 76) 인간화된 14G8 항체의 변이체를 제공한다. 일부 이러한 항체에서, Hu14G8 H2L3에서의 복귀 돌연변이 또는 다른 돌연변이 중 적어도 1, 2, 3, 4 또는 모두 5가지가 보유된다. 본 발명은 또한 다른 예시된 인간화된 14G8 항체의 변이체를 제공한다. 이러한 변이체는 예시된 인간화된 14G8 H1L1, H1L2, H1L3, H2L1, H2L2, H2L3, H3L1, H3L2, 또는 H3L3 항체의 성숙 경쇄 및 중쇄 가변 영역에 대해 적어도 90%, 95%, 96%, 97%, 98% 또는 99% 서열 동일성을 나타내는 성숙 경쇄 및 중쇄 가변 영역을 가진다.
일부 항체에서, Vh 영역 내 위치 H1 및 H47 중 적어도 하나는 각각 E 및 L에 의해 점유된다. 일부 항체에서, Vh 영역 내 위치 H1 및 H47은 Hu14G8VHv2 및 Hu14G8VHv3에서와 같이 각각 E 및 L에 의해 점유된다. 일부 항체에서, Vh 영역 내 위치 H3 및 H105 중 적어도 하나는 각각 K 및 T에 의해 점유된다. 일부 항체에서, Vh 영역 내 위치 H3 및 H105는 Hu14G8VHv1에서와 같이 각각 K 및 T에 의해 점유된다. 일부 항체에서, Vk 영역 내 위치 L36은 Hu14G8VLv2에서와 같이 F에 의해 점유된다. 일부 항체에서, Vk 영역 내 위치 L8, L9, L19, L26, L60 및 L70 중 적어도 하나는 각각 A, P, V, S, S 및 A에 의해 점유된다. 일부 항체에서, Vk 영역 내 위치 L8, L9, L19 및 L70은 Hu14G8VLv1에서와 같이 각각 A, P, V 및 A에 의해 점유된다. 일부 항체에서, Vk 영역 내 위치 L26 및 L60은 Hu14G8VLv3에서와 같이 S에 의해 각각 점유된다. 이러한 인간화 항체의 CDR 영역은 14G8 마우스 공여자 항체의 CDR 영역에 대해 동일하거나 또는 실질적으로 동일할 수 있다. CDR 영역은 임의의 통상적인 정의(예를 들어, 코티아, 또는 코티아 및 카바트의 복합)에 의해 정해질 수 있지만, 바람직하게는 카바트에 의해 정해진다.
가변 영역 프레임워크 위치는 달리 언급되지 않는 한 카바트 넘버링에 따른다. 다른 이러한 변이체는 전형적으로 소수의(예를 들어, 전형적으로 1, 2, 3, 5, 10 또는 15개 이하) 대체, 결실 또는 삽입에 의해 예시된 Hu14G8 중쇄 및 경쇄 서열과 다르다. 이러한 차이는 보통 프레임워크에 있지만, 또한 CDR 내에서 발생할 수 있다.
인간화된 9D5 또는 14G8 변이체에서 추가적인 변이에 대한 가능성은 가변 영역 프레임워크 내 추가적인 복귀돌연변이이다. 인간화된 mAb 내 CDR과 접촉되지 않는 다수의 프레임워크 잔기는 공여자 마우스 mAb 또는 다른 마우스 또는 인간 항체의 대응하는 위치로부터의 아미노산의 치환을 수용할 수 있으며, 훨씬 다수의 잠재적 CDR-접촉 잔기는 또한 치환될 수 있다. 심지어 CDR 내의 아미노산은, 예를 들어, 가변 영역 프레임워크를 공급하기 위해 사용되는 인간 수용자 서열의 대응하는 위치에서 발견되는 잔기에 의해 변경될 수 있다. 추가로, 대안의 인간 수용자 서열은, 예를 들어, 중쇄 및/또는 경쇄에 대해 사용될 수 있다. 상이한 수용자 서열이 사용된다면, 대응하는 공여자 및 수용자 잔기가 이미 복귀돌연변이 없이 동일하기 때문에, 상기 권장된 복귀돌연변이 중 하나 이상은 수행되지 않을 수도 있다.
바람직하게는, 인간화된 9D5 또는 14G8 변이체에서의 대체 또는 복귀돌연변이는 (보존적이든 아니든) 인간화된 mAb의 결합 친화도 또는 효능, 즉, 단량체 TTR에 결합하는 그의 능력에 대해 실질적인 효과가 없다(예를 들어, 변이체 인간화된 9D5 또는 14G8 항체의 본 실시예에 기재된 일부 또는 모든 분석에서의 효능은 뮤린 9D5 또는 14G8 항체의 효능과 같이 본질적으로 동일하며, 즉, 실험 오차 내이다).
D. 키메라 및 베니어 항체
본 발명은 추가로 비인간 항체, 특히 실시예의 9D5 또는 14G8 항체 키메라 및 베니어 형태를 제공한다.
키메라 항체는 비-인간 항체(예를 들어, 마우스)의 경쇄 및 중쇄의 성숙 가변 영역이 인간 경쇄 및 중쇄 불변 영역과 조합되는 항체이다. 이러한 항체는 마우스 항체의 결합 특이성을 실질적으로 또는 전체적으로 보유하고, 인간 서열의 약 2/3이다.
베니어 항체는 CDR의 일부, 보통은 모두 및 비-인간 항체의 비-인간 가변 영역 프레임워크 잔기의 일부를 보유하지만, B- 또는 T-세포 에피토프에 기여할 수 있는 다른 가변 영역 프레임워크 잔기, 예를 들어 노출된 잔기(Padlan, Mol. Immunol. 28:489, 1991)를 인간 항체 서열의 대응하는 위치로부터의 잔기로 대체하는 인간화 항체의 유형이다. 결과는 CDR이 비-인간 항체로부터 전체적으로 또는 실질적으로 유래되고, 비인간 항체의 가변 영역 프레임워크는 치환에 의해 더 인간 유사로 만들어지는 항체이다. 9D5 또는 14G8 항체의 베니어 형태는 본 발명에 포함된다.
E. 인간 항체
단량체 TTR 또는 이의 단편(예를 들어, TTR의 아미노산 잔기 89 내지 97(서열번호 113))에 대한 인간 항체는 이하에 기재한 다양한 기법에 의해 제공된다. 일부 인간 항체는 특정 마우스 항체, 예컨대 실시예에 기재된 마우스 단클론성 항체 중 하나와 동일한 에피토프 특이성을 갖도록 상기 또는 다른 곳에서 경쟁적 결합 실험에 의해, 윈터의 파지 디스플레이 방법에 의해 선택된다. 인간 항체는 또한 표적 항원으로서 단지 TTR의 단편, 예컨대 단지 TTR의 아미노산 잔기 89 내지 97을 함유하는 TTR 변이체를 이용함으로써, 및/또는 TTR 변이체, 예컨대 TTR의 아미노산 잔기 89 내지 97 내에서 다양한 돌연변이를 함유하는 TTR 변이체의 수집물에 대해 항체를 선별함으로써 특정 에피토프에 대해 선별될 수 있다.
인간 항체를 생성하기 위한 방법은 문헌[Oestberg et al., Hybridoma 2:361-367 (1983)]; 외스트베르크(Oestberg)의 미국 특허 제4,634,664호; 및 인글먼(Engleman) 등의 미국 특허 제4,634,666호의 트라이오마 방법, 인간 면역글로불린 유전자를 포함하는 유전자이식 마우스의 용도(예를 들어, 론버그(Lonberg) 등의 WO93/12227(1993); 미국 특허 제5,877,397; 미국 특허 제5,874,299; 미국 특허 제5,814,318; 미국 특허 제5,789,650호; 미국 특허 제5,770,429호; 미국 특허 제5,661,016호; 미국 특허 제5,633,425호; 미국 특허 제5,625,126호; 미국 특허 제5,569,825호; 미국 특허 제5,545,806호; 문헌[Neuberger, Nat. Biotechnol. 14:826 (1996)]; 및 쿠체라파티(Kucherlapati)의 WO 91/10741 (1991) 참조) 및 파지 디스플레이 방법(예를 들어, 다워(Dower) 등의 WO 91/17271; 맥커티(McCafferty) 등의 WO 92/01047; 미국 특허 제5,877,218호; 미국 특허 제5,871,907호; 미국 특허 제5,858,657호; 미국 특허 제5,837,242호; 미국 특허 제5,733,743호; 및 미국 특허 제5,565,332호)을 포함한다.
F. 불변 영역의 선택
키메라, 베니어 또는 인간화 항체의 중쇄 및 경쇄 가변 영역은 인간 불변 영역의 적어도 일부에 연결될 수 있다. 불변 영역의 선택은 항체-의존적 세포-매개 세포독성, 항체 의존적 세포의 식세포작용 및/또는 상보체 의존적 세포독성이 요망되는지의 여부에 부분적으로 의존한다. 예를 들어, 인간 아이소토프 IgG1 및 IgG3은 상보체-의존적 세포독성을 가지고, 인간 아이소타입 IgG2 및 IgG4는 그렇지 않다. 인간 IgG1 및 IgG3은 인간 IgG2 및 IgG4보다 더 강한 세포 매개 효과기 기능을 유도한다. 경쇄 불변 영역은 람다 또는 카파일 수 있다.
경쇄 및/또는 중쇄의 아미노 또는 카복시 말단에서 하나 또는 몇몇 아미노산, 예컨대 중쇄의 C-말단의 라이신은 분자의 부분 또는 모두에서 상실되거나 또는 유도체화될 수 있다. 치환은 효과기 기능, 예컨대 상보체-매개 세포독성 또는 ADCC를 감소 또는 증가시키기 위해(예를 들어, 윈터 등의 미국 특허 제5,624,821호; 트소(Tso) 등의 미국 특허 제5,834,597호; 및 문헌[Lazar et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 103:4005, 2006]), 또는 인간에서 반감기를 연장시키기 위해(예를 들어, 인간[Hinton et al., J. Biol. Chem. 279:6213, 2004]) 불변 영역에서 이루어질 수 있다. 예시적인 치환은 항체의 반감기를 증가시키기 위해 위치 250에서 Gln 및/또는 위치 428에서 Leu(EU 넘버링은 이 단락에서 불변 영역에 대해 사용됨)을 포함한다. 임의의 또는 모든 위치 234, 235, 236 및/또는 237에서 치환은 Fcγ 수용체, 특히 FcγRI 수용체에 대해 친화도를 감소시킨다(예를 들어, 미국 특허 제6,624,821호). 인간 IgG1의 위치 234, 235 및 237에서 알라닌 치환은 효과기 기능을 감소시키기 위해 사용될 수 있다. 일부 항체는 효과기 기능을 감소시키기 위해 인간 IgG1의 위치 234, 235 및 237에서 알라닌 치환을 가진다. 선택적으로, 인간 IgG2에서 위치 234, 236 및/또는 237은 알라닌으로 치환되고, 위치 235에서 글루타민으로 치환된다(예를 들어, 미국 특허 제5,624,821호). 일부 항체에서, 인간 IgG1의 EU 넘버링에 의해 위치 241, 264, 265, 270, 296, 297, 322, 329 및 331 중 하나 이상에서의 돌연변이가 사용된다. 일부 항체에서, 인간 IgG1의 EU 넘버링에 의해 위치 318, 320 및 322 중 하나 이상에서의 돌연변이가 사용된다. 일부 항체에서, 위치 234 및/또는 235는 알라닌으로 치환되고/되거나 위치 329는 글리신으로 치환된다. 일부 항체에서, 위치 234 및 235는 서열번호 102에서와 같이 알라닌으로 치환된다. 일부 항체에서, 아이소타입은 인간 IgG2 또는 IgG4이다.
예시적인 인간 경쇄 카파 불변 영역은 서열번호 104의 아미노산 서열을 가진다. 서열번호 104의 N-말단의 알기닌은 생략될 수 있으며, 이 경우에 경쇄 카파 불변 영역은 서열번호 105의 아미노산 서열을 가진다. 예시적인 인간 IgG1 중쇄 불변 영역은 (C-말단의 라이신이 있는 또는 없는) 서열번호 101의 아미노산 서열을 가진다. 항체는 2개의 경쇄 및 2개의 중쇄를 함유하는 사량체로서, 별개의 중쇄, 경쇄로서, Fab, Fab', F(ab')2 및 Fv로서, 또는 중쇄 및 경쇄 성숙 가변 도메인이 스페이서를 통해 연결되는 단일쇄 항체로서 발현될 수 있다.
인간 불변 영역은 상이한 개체 사이의 동종이인자형 변이 및 동종동질이인자형 변이를 나타내며, 즉, 불변 영역은 하나 이상의 다형체 위치에서 상이한 개체에서 상이할 수 있다. 동종동질이인자형은 동종이인자형과 다르며, 즉, 동종동질이인자형을 인식하는 혈청은 하나 이상의 다른 아이소타입의 비다형성 영역(non-polymorphic region)에 결합한다. 따라서, 예를 들어, 다른 중쇄 불변 영역은 IgG1 G1m3 동종이인자형을 가지며, 서열번호 103의 아미노산 서열을 가진다. IgG1 G1m3 동종이인자형의 다른 중쇄 불변 영역은 (C-말단의 라이신이 있는 또는 없는) 서열번호 102의 아미노산 서열을 가진다. 인간 불변 영역에 대한 언급은 임의의 천연 동종이인자형 또는 천연 동종이인자형에서 위치를 점유하는 잔기의 임의의 순열을 지니는 불변 영역을 포함한다.
G. 재조합 항체의 발현
항체-발현 세포주(예를 들어, 하이브리도마)를 이용하여 키메라 및 인간화 항체를 생성하기 위한 다수의 방법이 공지되어 있다. 예를 들어, 항체의 면역글로불린 가변 영역은 잘 공지된 방법을 이용하여 클로닝 및 시퀀싱될 수 있다. 일 방법에서, 중쇄 가변 VH 영역은 하이브리도마 세포로부터 제조된 mRNA를 이용하여 RT-PCR에 의해 클로닝된다. 5' 프라이머 및 g2b 불변 영역 특이적 3' 프라이머로서 번역 개시 코돈을 포함하는 VH 영역 리더 펩타이드에 대해 공통 프라이머가 사용된다. 예시적인 프라이머는 쉥크(Schenk) 등(본 명세서에서 이후에 "쉥크")에 의해 미국 특허 공개 제2005/0009150호에 기재된다. 다중의 독립적으로 유래된 클론으로부터의 서열은 증폭 동안 도입된 변화가 없다는 것을 보장하기 위해 비교될 수 있다. VH 영역의 서열은 또한 5' RACE RT-PCR 방법 및 3' g2b 특이적 프라이머에 의해 얻어지는 VH 단편을 시퀀싱함으로써 결정 또는 확인될 수 있다.
경쇄 가변 VL 영역은 유사한 방식으로 클로닝될 수 있다. 일 접근에서, 공통 프라이머 세트는 번역 개시 코돈을 포함하는 VL 영역에 혼성화하도록 설계된 5' 프라이머 및 V-J 결합 영역 하류의 Ck 영역에 특이적인 3' 프라이머를 이용하여 VL 영역의 증폭을 위해 설계된다. 두 번째 접근에서, 5'RACE RT-PCR 방법은 VL 암호화 cDNA를 클로닝하기 위해 사용된다. 예시적인 프라이머는 상기의 쉥크에 기재되어 있다. 이어서, 클로닝된 서열은 인간(또는 다른 비인간 종) 불변 영역을 암호화하는 서열과 조합된다. 인간 불변 영역을 암호화하는 예시적인 서열은 인간 IgG1 불변 영역(서열번호 103)을 암호화하는 서열번호 106, 및 인간 카파 경쇄 불변 영역(각각 서열번호 104 및 105)을 암호화하는 서열번호 107 및 108을 포함한다.
일 접근에서, 중쇄 및 경쇄 가변 영역은 각각의 VDJ 또는 VJ 접합 하류의 스플라이스 공여자 서열을 암호화하도록 재조작되고, 포유류 발현 벡터, 예컨대 중쇄에 대해 pCMV-hγ1 및 경쇄에 대해 pCMV-Mcl 내로 클로닝된다. 이들 벡터는 삽입된 가변 영역 카세트 하류의 엑손 단편으로서 인간 γ1 및 Ck 불변 영역을 암호화한다. 서열 확인 후에, 중쇄 및 경쇄 발현 벡터는 키메라 항체를 생성하기 위해 CHO 세포 내로 공동형질감염될 수 있다. 조건화 배지를 형질감염 후 48시간에 수집하고 나서, 항원 결합에 대해 웨스턴 블롯 분석 또는 항원 결합에 대해 ELISA에 의해 수집한다. 키메라 항체는 상기 기재한 바와 같이 인간화된다.
키메라, 베니어, 인간화 및 인간 항체는 전형적으로 재조합 발현에 의해 생성된다. 재조합 폴리뉴클레오타이드 작제물은 전형적으로 자연적으로 관련된 또는 이종성 발현 제어 요소, 예컨대 프로모터를 포함하는 항체쇄의 암호 서열에 작동 가능하게 연결된 발현 제어 서열을 포함한다. 발현 제어 서열은 진핵 또는 원핵 숙주 세포를 형질전환 또는 형질감염시킬 수 있는 벡터 내 프로모터 시스템일 수 있다. 일단, 벡터가 적절한 숙주 내로 혼입되었다면, 숙주는 뉴클레오타이드 서열의 고수준 발현 및 교차반응 항체의 수집 및 정제에 적합한 조건 하에 유지된다.
이들 발현 벡터는 전형적으로 에피솜으로서 또는 숙주 염색체 DNA의 통합 부분으로서 숙주 유기체에서 복제 가능하다. 통상적으로, 발현 벡터는 목적으로 하는 DNA 서열을 이용하여 형질전환된 해당 세포의 검출을 허용하기 위해 선택 마커, 예를 들어, 암피실린 내성 또는 하이그로마이신 내성을 함유한다.
이콜라이(E. coli)는 발현 항체, 특히 항체 단편에 유용한 하나의 원핵 숙주이다. 미생물, 예컨대 효모는 또한 발현에 유용하다. 사카로마이세스(Saccharomyces)는 원한다면 발현 제어 서열, 복제 기점, 종결 서열 등을 갖는 적합한 벡터를 지니는 효모 숙주이다. 전형적인 프로모터는 3-포스포글리세레이트 키나제 및 다른 글당분해 효소를 포함한다. 유도성 효모 프로모터는 특히 알코올 탈수소효소, 아이소사이토크롬 C 및 말토스 및 갈락토스 효용을 초래하는 효소를 포함한다.
포유류 세포는 면역글로불린 또는 이의 단편을 암호화하는 뉴클레오타이드 세그먼트에 대해 사용될 수 있다. 문헌[Winnacker, From Genes to Clones, (VCH Publishers, NY, 1987)] 참조. 무손상 이종성 단백질을 분비할 수 있는 다수의 적합한 숙주 세포주가 개발되었고, CHO 세포주, 다양한 COS 세포주, HeLa 세포, HEK293 세포, L 세포 및 Sp2/0 및 NS0를 포함하는 비항체 생성 골수종을 포함한다. 세포는 비인간일 수 있다. 이들 세포에 대한 발현 벡터는 발현 제어 서열, 예컨대 복제기점, 프로모터, 인핸서(Queen et al., Immunol. Rev. 89:49 (1986)), 및 필수적인 가공 부위, 예컨대 리보솜 결합 부위, RNA 스플라이스 부위, 폴리아데닐화 부위 및 전사 종결자 서열을 포함할 수 있다. 발현 제어 서열은 내인성 유전자, 사이토메갈로바이러스, SV40, 아데노바이러스, 소 유두종 바이러스 등으로부터 유래된 프로모터를 포함할 수 있다. 문헌[Co et al., J. Immunol. 148:1149 (1992)] 참조.
대안적으로, 항체 암호 서열은 유전자 이식 동물의 게놈 내로 도입 및 유전자 이식 동물의 모유에서의 후속적 발현을 위해 이식유전자에 도입될 수 있다(예를 들어, 미국 특허 제5,741,957호; 미국 특허 제5,304,489호; 및 미국 특허 제5,849,992호 참조). 적합한 이식유전자는 유선 특이적 유전자로부터의 프로모터 및 인핸서, 예컨대 카제인 또는 베타 락토글로불린과 작동 가능하게 연결된 경쇄 및/또는 중쇄에 대한 암호 서열을 포함한다.
관심 대상의 DNA 세그먼트를 함유하는 벡터는 세포 숙주의 유형에 따르는 방법에 의해 숙주 세포 내로 전달될 수 있다. 예를 들어, 염화칼슘 형질감염은 통상적으로 원핵 세포에 대해 이용되는 반면, 인산칼슘 처리, 전기천공법, 리포펙션, 바이오리스틱스 또는 바이러스 기반 형질감염은 다른 세포 숙주에 대해 사용될 수 있다. 포유류 세포를 형질감염하기 위해 사용되는 다른 방법은 폴리브렌, 원형질체 융합, 리포좀, 전기천공법 및 미세주입법의 사용을 포함한다. 유전자 이식 동물의 생성을 위해, 이식 유전자는 수정된 난모세포 내로 미세주사될 수 있거나, 또는 배아 줄기 세포의 게놈 내로 혼입될 수 있고, 이러한 세포의 핵은 제핵 난모세포에 전달된다.
세포 배양물 내로 항체 중쇄 및 경쇄를 암호화하는 벡터(들)를 도입하여, 세포 풀은 무 혈청 배지에서의 성장 생산성 및 제품 품질에 대해 선별될 수 있다. 이어서, 단클론성 계통을 생성하기 위해 상부 생성 세포풀에 FACS-기반 단일 세포 클로닝이 실시될 수 있다. 7.5g/ℓ 배양물 초과의 생성물 역가에 대응하는 50pg 또는 100pg/세포/일 초과의 구체적 생산성이 사용될 수 있다. 단일 세포 클론에 의해 생성된 항체는 또한 탁도, 여과 특성, PAGE, IEF, UV 스캔, HP-SEC, 탄수화물-올리고당 맵핑, 질량 스펙트럼 및 결합 분석, 예컨대 ELISA 또는 바이어코어(Biacore)에 대해 시험될 수 있다. 이어서, 선택된 클론은 다중 바이알에 보관되고, 후속 사용을 위해 냉동저장될 수 있다.
일단 발현되면, 항체는 단백질 A 포획, HPLC 정제, 칼럼 크로마토그래피, 겔 전기영동 등을 포함하는 당업계의 표준 절차에 따라 정제될 수 있다(일반적으로, 문헌[Scopes, Protein Purification (Springer-Verlag, NY, 1982)] 참조).
코돈 최적화, 프로모터의 선택, 전사 요소의 선택, 종결자의 선택, 무혈청 단일 세포 클로닝, 세포 보관(cell banking), 복제 수의 증폭을 위한 선택 마커의 사용, CHO 종결자, 또는 단백질 역가의 개선을 포함하는 항체의 상업적 생산을 위한 방법이 사용될 수 있다(예를 들어, 미국 특허 제5,786,464호; 미국 특허 제6,114,148호; 미국 특허 제6,063,598호; 미국 특허 제7,569,339호; W02004/050884; W02008/012142; W02008/012142; W02005/019442; W02008/107388; W02009/027471; 및 미국 특허 제5,888,809호 참조).
H. 항체 선별 분석
항체는 결합 분석, 기능적 선별, TTR 침착과 관련된 질환의 동물 모델에서의 선별 및 임상 시험을 포함하는 몇몇 선별이 실시될 수 있다. 결합 분석은 특이적 결합 및 선택적으로, 단량체 TTR 또는 이의 단편에 대한 친화도 및 에피토프 특이성에 대해 시험한다. 예를 들어, 결합 분석은 천연 TTR 사량체에 묻히고, TTR 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태로 노출된 에피토프인, TTR의 아미노산 잔기 89 내지 97(서열번호 113)에 결합하는 항체를 선별할 수 있다. 항체는 또한 TTR 및 TTR 아밀로이드 피브릴의 프레-피브릴, 비천연 입체배좌에 결합하지만, 천연 TTR 입체배좌에 결합하지 않는 능력에 대해 선별될 수 있다. 예를 들어, 항체는 천연 사량체 TTR의 해리 또는 분리에 의해 생성된 TTR의 단량체 형태에 결합하는 능력에 대해 선별될 수 있고, 실시예 또는 다른 곳에 기재된 천연 사량체 TTR에 대해 반대선별(counter-screened)될 수 있다. 마찬가지로, 항체는 또한 TTR-매개 아밀로이드증 조직에 대한 그들의 면역반응성에 대해 선별될 수 있지만, 건강한 조직에 대해서는 그렇지 않다. 이러한 선별은 때때로 예시적인 항체, 예컨대 9D5 또는 14G8의 가변 영역을 갖는 항체(IgG1 카파 아이소타입)와 경쟁적으로 수행된다. 선택적으로, 항체 또는 TTR 표적은 이러한 분석에서 고정된다.
기능성 분석은 TTR을 자연적으로 발현시키는 세포를 포함하는 세포 모델에서 수행될 수 있거나 또는 TTR 또는 이의 단편을 암호화하는 DNA로 형질감염된다. 적합한 세포는 TTR 아밀로이드 생성에 의해 영향받는 심장 조직 또는 다른 조직으로부터 유래된 세포를 포함한다. 세포는 피브릴 감소된 수준의 TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태(예를 들어, 세포 추출물 또는 상청액의 웨스턴 블롯팅 또는 면역침전법에 의해) 또는 TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태에 기인할 수 있는 감소된 독성에 의해 선별될 수 있다. 예를 들어, 항체는 TTR의 응집을 저해 또는 감소시킬 수 있거나, TTR 피브릴 형성을 저해 또는 감소시킬 수 있거나, TTR 침착을 감소시키거나, 응집된 TTR을 클리어런스하거나, 또는 TTR의 비독성 입체배좌를 안정화시키는 능력에 대해 시험될 수 있다.
항체가 용액 중의 단량체 TTR 또는 미스폴딩된 TTR 중간체가 항체와 접촉될 때 항체가 TTR 피브릴 형성을 방해 또는 감소시킬 수 있는지 여부를 시험하는 것과 같은 다른 기능성 분석이 용액 중에서 수행될 수 있다. 피브릴 형성 정도는, 예를 들어, 온도 제어 유닛을 구비한 UV-가시광선 분광계 상의 400㎚에서 탁도 측정에 의해 프로빙될 수 있다. 티오플라빈-T는 또한 아밀로이드 피브릴 형성 정도를 평가하기 위해 사용될 수 있다. 예를 들어, 5배 몰 과량의 티오플라빈-T는 TTR 샘플에 첨가될 수 있고, 측정하기 전 30분 동안 실온에 남겨둔다. 티오플라빈-T 형광은 분광 형광계를 이용하여 모니터링될 수 있다. 미국 특허 제2014/0056904호 참조.
동물 모델은 TTR 또는 TTR 침착물의 축적과 관련된 인간 질환을 시뮬레이션하는 동물 모델에서 징후 또는 증상을 치료적 또는 예방적으로 치료하는 항체의 능력을 선별 시험한다. 이러한 질환은 TTR 아밀로이드증의 유형, 예컨대 노인성 전신 아밀로이드증(SSA), 노인성 심장 아밀로이드증(SCA), 가족성 아밀로이드성 다발신경병증(FAP), 가족성 아밀로이드 심근증(FAC) 및 중추 신경계 선택적 아밀로이드증(CNSA)을 포함한다. 모니터링될 수 있는 적합한 징후 또는 증상은 다양한 조직, 예컨대 위장관 또는 심장에서 아밀로이드 침착물의 존재 또는 정도를 포함한다. 아밀로이드 침착물의 감소 정도는 적절한 대조군, 예컨대 대조군 항체(예를 들어, 아이소타입 매칭 대조군 항체), 위약 또는 전혀 처리 없음을 받은 대조군 동물에서의 TTR 아밀로이드 침착물의 수준에 비교하여 결정될 수 있다. TTR 아밀로이드증에 대한 활성을 시험하기 위한 예시적인 동물 모델은 가족성 아밀로이드성 말초신경병증과 관련된 V30M 돌연변이를 포함하는 내인성 마우스 Ttr 좌위 및 인간 돌연변이체 TTR 유전자에서 삭제 돌연변이를 운반하는 마우스 모델이다. 예를 들어, 문헌[Kohno et al., Am. J. Path. 150(4):1497-1508 (1997); Cardoso and Saraiva, FASEB J 20(2):234-239 (2006)] 참조. TTR 아밀로이드증의 가족성 형태에 대한 다른 모델 및 TTR 아밀로이드증의 산발적 형태에 대한 모델을 포함하는 유사한 모델이 또한 존재한다. 예를 들어, 문헌[Teng et al., Lab. Invest. 81(3): 385-396 (2001); Ito and Maeda, Mouse Models of Transthyretin Amyloidosis, in Recent Advances in Transthyretin Evolution, Structure, and Biological Functions, pp. 261-280 (2009) (Springer Berlin Heidelberg)] 참조. 유전자 이식 동물은 인간 TTR 이식유전자, 예컨대 TTR 아밀로이드증과 관련된 돌연변이를 갖는 TTR 이식유전자 또는 야생형 TTR 이식유전자를 포함할 수 있다. 동물 모델에서의 시험을 용이하게 하기 위해, 동물 모델에 적절한 불변 영역을 갖는 키메라 항체가 사용될 수 있다(예를 들어, 마우스-래트 키메라는 래트에서 항체를 시험하기 위해 사용될 수 있었다). 대응하는 마우스 항체 또는 키메라 항체가 적절한 동물 모델에서 효과적이고, 인간화 항체가 유사한 결합 친화도를 가진다면 항체의 인간화된 형태는 (예를 들어, 실험 오차 내에서, 예컨대 1.5, 2 또는 3배만큼)효과적일 것이라는 결론을 내릴 수 있다.
임상 시험은 TTR 아밀로이드증과 관련된 질환을 갖는 인간에서의 안전성 및 효능에 대해 시험한다.
I. 핵산
본 발명은 추가로 상기 기재한 임의의 중쇄 및 경쇄를 암호화하는 핵산(예를 들어, 서열번호 40, 42, 44 내지 56, 87, 89, 91 내지 96, 및 106 내지 108)을 제공한다. 선택적으로, 이러한 핵산은 추가로 신호 펩타이드를 암호화하고, 불변 영역에 연결된 신호 펩타이드(예를 들어, 각각 서열번호 40 및 87(중쇄) 및 각각 42 및 89(경쇄)에 의해 암호화될 수 있는 서열번호 41 및 88(중쇄) 및 43 및 90(경쇄)의 아미노산 서열을 갖는 신호 펩타이드)에 의해 발현될 수 있다. 핵산의 암호 서열은 암호 서열의 발현을 보장하기 위해 조절 서열, 예컨대 프로모터, 인핸서, 리보솜 결합 부위, 전사 종결 신호 등과 작동 가능하게 연결될 수 있다. 중쇄 및 경쇄를 암호화하는 핵산은 단리된 형태로 생길 수 있거나 또는 하나 이상의 벡터로 클로닝될 수 있다. 핵산은, 예를 들어, 중첩 올리고뉴클레오타이드의 고체상 합성 또는 PCR에 의해 합성될 수 있다. 중쇄 및 경쇄를 암호화하는 핵산은 하나의 인접한 핵산으로서, 예를 들어 발현 벡터 내에 결합될 수 있거나, 또는 예를 들어 각각 그 자신의 발현 벡터로 분리될 수 있다.
J. 컨쥬게이팅된 항체
TTR의 병원성 형태로 노출되지만 TTR의 천연 사량체 형태, 예컨대 TTR의 아미노산 잔기 89 내지 97(서열번호 113)에는 노출되지 않은 항원에 특이적으로 결합하는 컨쥬게이팅된 항체는 TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태의 존재를 검출하거나; TTR 아밀로이드증으로 진단된 환자를 치료하기 위해 사용 중인 치료제의 효능을 모니터링 및 평가하거나; TTR의 응집을 저해 또는 감소시키거나; TTR 피브릴 형성을 저해 또는 감소시키거나; TTR 침착을 감소 또는 클리어런스하거나; TTR의 비독성 입체배좌를 안정화시키거나; 또는 환자에서 TTR 아밀로이드증을 치료하거나 또는 예방을 달성하는 데 유용하다. 예를 들어, 이러한 항체는 다른 치료적 모이어티, 다른 단백질, 다른 항체 및/또는 검출 가능한 표지와 컨쥬게이팅될 수 있다. WO 03/057838; 미국 특허 제8,455,622호.
컨쥬게이팅된 치료적 모이어티는 환자에서의 원치않는 병태 또는 질환, 예컨대 TTR 아밀로이드증을 치료하거나, 방지하거나, 좋아지게 하거나 또는 개선시키기 위해 사용될 수 있는 임의의 제제일 수 있다. 치료적 모이어티는, 예를 들어, 항체의 활성을 용이하게 하거나 또는 향상시키는 면역조절제 또는 임의의 생물학적 활성제를 포함할 수 있다. 면역조절제는 면역학적 반응의 발생 또는 유지를 자극하거나 또는 저해하는 임의의 제제일 수 있다. 이러한 치료적 모이어티가 TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태에 대해 특이적인 항체, 예컨대 본 명세서에 기재된 항체에 결합된다면, 결합된 치료적 모이어티는 TTR의 천연 사량체 형태 이상으로 비천연, 병원성 형태에 대해 특이적인 친화도를 가질 것이다. 결과적으로, 컨쥬게이팅된 항체의 투여는 주위의 정상, 건강한 조직에 대해 최소의 손상과 함께 TTR의 병원성 형태를 포함하는 조직을 직접 표적화한다. 이는 그들 자신에 대해 투여되기에 너무 독성인 치료적 모이어티에 대해 특히 유용할 수 있다. 추가로, 더 소량의 치료적 모이어티가 사용될 수 있다.
적합한 치료적 모이어티의 예는 TTR 수준을 감소시키거나, TTR의 천연 사량체 구조를 안정화시키거나, TTR의 응집을 저해하거나, TTR 피브릴 또는 아밀로이드 형성을 방해하거나, 또는 세포 독성을 없애는 약물을 포함한다. 예를 들어, 문헌[Almeida and Saraiva, FEBS Letters 586:2891-2896 (2012); Saraiva, FEBS Letters 498:201-203 (2001); Ando et al., Orphanet Journal of Rare Diseases 8:31 (2013); Ruberg and Berk, Circulation 126:1286-1300 (2012); 및 Johnson et al., J. Mol. Biol. 421(2-3):185-203 (2012)] 참조. 예를 들어, 항체는 타파미디스, 디플루니살, ALN-TTR01, ALNTTR02, ISIS-TTRRx, 독시사이클린(독시), 타우로우르소데옥시콜산(TUDCA), 독시-TUDCA, 에피갈로카테킨 갈레이트(EGCG), 쿠르쿠민 또는 레스베라트롤(3,5,4'-트라이하이드록시스틸벤)에 컨쥬게이팅될 수 있다. 다른 대표적인 치료적 모이어티는 TTR 아밀로이드증 또는 TTR 아밀로이드증의 증상의 치료, 관리 또는 개선에 유용한 것으로 알려진 다른 제제를 포함한다. 예를 들어, TTR 아밀로이드증의 통상적인 임상적 증상 및 해당 증상을 치료하기 위해 사용되는 전형적인 제제에 대해 문헌[Ando et al., Orphanet Journal of Rare Diseases 8:31 (2013)] 참조.
항체는 또한 다른 단백질과 결합될 수 있다. 예를 들어, 항체는 파이노머(Fynomer)와 결합될 수 있다. 파이노머는 인간 Fyn SH3 도메인으로부터 유래된 작은 결합 단백질(예를 들어, 7kDa)이다. 그들은 안정하고 가용성일 수 있고, 그들은 시스테인 잔기 및 이황화 결합이 없을 수 있다. 파이노머는 항체와 동일한 친화도 및 특이성을 지니는 표적 분자에 결합하도록 조작될 수 있다. 그들은 항체에 기반하여 다중 특이적 융합 단백질을 생성하는 데 적합하다. 예를 들어, 파이노머는 상이한 구조를 지니는 이중 및 삼중 특이성 FynomAb를 생성하기 위해 항체의 N-말단 및/또는 C-말단 끝에 융합될 수 있다. 파이노머는 최적의 특성을 지니는 파이노머의 효율적인 선택을 허용하는 FACS, 바이어코어 및 세포 기반 분석을 이용하는 선별 기법을 통해 파이노머 라이브러리를 이용하여 선택될 수 있다. 파이노머의 예는 문헌[Grabulovski et al., J. Biol. Chem. 282:3196-3204 (2007); Bertschinger et al., Protein Eng. Des. Sel. 20:57-68 (2007); Schlatter et al., MAbs. 4:497-508 (2011); Banner et al., Acta. Crystallogr. D. Biol. Crystallogr. 69(Pt6):1124-1137 (2013); 및 Brack et al., Mol. Cancer Ther. 13:2030-2039 (2014)]에 개시되어 있다.
본 명세서에 개시된 항체는 또한 (예를 들어, 항체 헤테로컨쥬게이트를 형성하기 위해) 하나 이상의 다른 항체에 결합 또는 컨쥬게이팅될 수 있다. 이러한 다른 항체는 TTR 또는 이의 일부 내에서 상이한 에피토프에 결합될 수 있거나 또는 상이한 표적 항원에 결합할 수 있다.
항체는 또한 검출 가능한 표지와 결합될 수 있다. 이러한 항체는, 예를 들어, TTR 아밀로이드증을 진단하기 위해, TTR 아밀로이드증의 진행을 모니터링하기 위해, 그리고/또는 치료 효능을 평가하기 위해 사용될 수 있다. 이러한 항체는 TTR 아밀로이드증을 갖거나 또는 여지가 있는 대상체에서, 또는 이러한 대상체로부터 얻은 적절한 생물학적 샘플에서 이러한 결정을 수행하는 데 특히 유용하다. 항체에 결합되거나 또는 연결될 수 있는 대표적인 검출 가능한 표지는 다양한 효소, 예컨대 겨자무과산화효소, 알칼리 포스파타제, 베타-갈락토시다제 또는 아세틸콜린에스터라제; 보결분자단, 예컨대 스트렙타비딘/바이오틴 및 아비딘/바이오틴; 형광 물질, 예컨대 움벨리페론, 플루오레세인, 플루오레세인 아이소티오사이아네이트, 로다민, 다이클로로트라이아진일아민 플루오레세인, 염화단실 또는 피코에리트린; 발광 물질, 예컨대 루미놀; 생발광 물질, 예컨대 루시퍼라제, 루시페린 및 아에쿠오린; 방사성 물질, 예컨대 이트륨90(90Y), 방사성 은-111, 방사성 은-199, 비스무트213, 아이오딘(131I, 125I, 123I, 121I,), 탄소(14C), 황(5S), 삼중수소(3H), 인듐(115In, 113In, 112In, 111In,), 테크네튬(99Tc), 탈륨(201Ti), 갈륨(68Ga, 67Ga), 팔라듐(103Pd), 몰리브데넘(99Mo), 제논(133Xe), 플루오린(18F), 153Sm, 177Lu, 159Gd, 149Pm, 140La, 175Yb, 166Ho, 90Y, 47Sc, 186Re, 188Re, 142Pr, 105Rh, 97Ru, 68Ge, 57Co, 65Zn, 85Sr, 32P, 153Gd, 169Yb, 51Cr, 54Mn, 75Se, 113Sn 및 117Tin; 다양한 양전자 방출 단층촬영을 이용하는 양전자 방출 물질; 비방사성 상자성 금속 이온; 및 방사성표지되거나 또는 특정 방사성동위원소에 컨쥬게이팅된 분자를 포함한다.
항체에 대한 방사성동위원소의 결합은 통상적인 2작용성 킬레이트에 의해 수행될 수 있다. 방사성 은-111 및 방사성 은-199 결합을 위해, 황 기반 링커가 사용될 수 있다. 문헌[Hazra et al., Cell Biophys. 24-25:1-7 (1994)] 참조. 은 방사성동위원소의 결합은 아스코르브산을 이용하여 면역글로불린을 감소시키는 단계를 수반할 수 있다. 방사성동위원소, 예컨대 111In 및 90Y에 대해, 이브리투모맙 튜세탄이 사용될 수 있고, 각각 111In-이브리투모맙 튜세탄 및 90Y-이브리투모맙 튜세탄을 형성하기 위해 이러한 동위원소와 반응할 것이다. 문헌[Witzig, Cancer Chemother. Pharmacol., 48 Suppl 1:S91-S95 (2001)] 참조.
치료적 모이어티, 다른 단백질, 다른 항체 및/또는 검출 가능한 표지는 본 발명의 항체에 직접적으로 또는 중간체(예를 들어, 링커)를 통해 간접적으로 결합되거나 또는 컨쥬게이팅될 수 있다. 예를 들어, 문헌[Arnon et al., "Monoclonal Antibodies For Immunotargeting Of Drugs In Cancer Therapy," in Monoclonal Antibodies And Cancer Therapy, Reisfeld et al. (eds.), pp. 243-56 (Alan R. Liss, Inc. 1985); Hellstrom et al., "Antibodies For Drug Delivery," in Controlled Drug Delivery (2nd Ed.), Robinson et al. (eds.), pp. 623-53 (Marcel Dekker, Inc. 1987); Thorpe, "Antibody Carriers Of Cytotoxic Agents In Cancer Therapy: A Review," in Monoclonal Antibodies 84: Biological And Clinical Applications, Pinchera et al. (eds.), pp. 475-506 (1985); "Analysis, Results, And Future Prospective Of The Therapeutic Use Of Radiolabeled Antibody In Cancer Therapy," in Monoclonal Antibodies For Cancer Detection And Therapy, Baldwin et al. (eds.), pp. 303-16 (Academic Press 1985); and Thorpe et al., Immunol. Rev., 62:119-58 (1982)] 참조. 적합한 링커는, 예를 들어, 절단 가능한 및 비-절단 가능한 링커를 포함한다. 산성 또는 환원성 조건 하에서, 특정 프로테아제에 대한 노출 시 또는 다른 정해진 조건 하에서 결합된 치료적 모이어티, 단백질, 항체 및/또는 검출 가능한 표지를 방출하는 상이한 링커가 사용될 수 있다.
V. 치료적 용도
상기 항체는 트랜스타이레틴(TTR)에 의해, 특히 TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태에 의해 적어도 부분적으로 매개된 질환을 갖거나 또는 질환에 대한 위험에 있는 환자에서 질환을 치료하거나 또는 예방을 달성하기 위해 사용될 수 있다. 메커니즘의 이해가 실행을 위해 필요하지는 않지만, 임의의 또는 모든 다음의 메커니즘은 상기 항체를 이용하는 TTR 아밀로이드증의 치료에 기여할 수 있는 것으로 여겨진다: TTR 응집 및 피브릴 형성의 항체-매개 저해, TTR의 비독성 입체배좌의 항체-매개 안정화(예를 들어, 사량체 형태), 또는 응집된 TTR, 올리고머 TTR 또는 단량체 TTR의 항체-매개 클리어런스. 항체-약물 컨쥬게이트는 컨쥬게이팅된 모이어티에 의해 결정되는 추가적인 작용 메커니즘을 가질 수 있다.
항체는 개시를 지연시키고/시키거나 중증도를 감소시키고/시키거나, 추가적인 악화를 저해하고/하거나 치료 중인 장애의 적어도 하나의 징후 또는 증상을 개선시키는 투약량, 투여 경로 및 투여 빈도를 의미하는 유효한 요법으로 투여된다. 환자가 이미 장애로 고통받고 있다면, 요법은 치료적으로 유효한 요법으로서 지칭될 수 있다. 환자가 아직 증상을 경험하지는 않았지만 일반적인 집단에 비해 장애의 상승된 위험에 있다면, 요법은 예방적으로 유효한 요법으로서 지칭될 수 있다. 일부 예에서, 치료적 또는 예방적 효능은 동일한 환자에서의 이력 조절 또는 과거의 경험에 비교하여 개개 환자에서 관찰될 수 있다. 다른 예에서, 치료적 또는 예방적 효능은 비치료 환자의 대조군 집단에 비해 처리 환자의 집단에서의 전임상 또는 임상 시험에서 입증될 수 있다.
투여 빈도는 인자들 중에서도 순환 시 항체의 반감기, 환자의 병태 및 투여 경로에 의존한다. 빈도는 환자의 병태 또는 치료 중인 장애의 진행에 반응하여 매일, 매주, 매달, 분기별, 또는 비정기적 간격일 수 있다. 정맥내 투여의 예시적인 빈도는 다수 빈번한 투약이 또한 가능하지만, 치료의 지속적 원인에 따라 매주와 분기별 사이이다. 피하 투여를 위해, 예시적인 투약 빈도는 다소 빈번한 투약이 또한 가능하지만, 매일 내지 매달이다.
투여되는 투약량의 수는 장애가 급성 또는 만성인지의 여부, 치료에 대한 장애의 반응에 의존한다. 급성 장애 또는 만성 장애의 급성 악화에 대해, 1 내지 10회의 용량이 종종 충분하다. 때때로 선택적으로 분할된 형태의 단일 볼루스 용량은 급성 장애 또는 만성 장애의 급성 악화에 충분하다. 치료는 급성 장애 또는 급성 악화의 재발을 위해 반복될 수 있다. 만성 장애에 대해, 항체는 정기적 간격으로, 예를 들어, 적어도 1, 5 또는 10년 동안, 또는 환자의 수명 동안 매주, 40일마다, 매달, 분기별로, 6개월마다 투여될 수 있다.
VI. 약제학적 조성물 및 사용 방법
본 명세서에서 트랜스타이레틴(TTR)에 의해, 특히 TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태(예를 들어, TTR 아밀로이드증)에 의해 적어도 부분적으로 매개된 질환 또는 병태를 진단, 모니터링, 치료하거나 또는 예방을 달성하는 몇몇 방법이 제공된다. 이러한 질환의 예는 가족성 TTR 아밀로이드증, 예컨대 가족성 아밀로이드 심근증(FAC), 가족성 아밀로이드성 다발신경병증(FAP) 또는 중추 신경계 선택적 아밀로이드증(CNSA) 및 산발적 TTR 아밀로이드증, 예컨대 노인성 전신 아밀로이드증(SSA) 또는 노인성 심장 아밀로이드증(SCA)을 포함한다. 상기 기재한 항체는 이러한 방법에서 사용하기 위해 약제학적 조성물 내로 혼입될 수 있다. 일반적으로, 항체 또는 항체를 함유하는 약제학적 조성물은 이들의 투여가 필요한 대상체에게 투여된다. 치료 받을 수 있는 환자는 TTR 아밀로이드증의 위험에 있지만, 증상을 나타내지 않는 개체뿐만 아니라 현재 증상을 나타내는 환자를 포함한다. 일부 환자는 TTR 아밀로이드증의 전구증상 단계 동안 치료될 수 있다.
약제학적 조성물은 TTR 아밀로이드증의 알려진 유전적 위험을 갖는 개체에 대해 예방적으로 투여될 수 있다. 이러한 개체는 이러한 질환을 경험한 친척이 있는 개체, 및 위험이 본 명세서에 제공된 진단 방법을 이용하는 것을 포함하는 유전적 또는 생화학적 마커(예를 들어, TTR 아밀로이드증과 관련된 TTR의 돌연변이)의 분석에 의해 결정되는 개체를 포함한다. 예를 들어, TTR 아밀로이드증에 연루된 TTR을 암호화하는 유전자에서 100개 초과의 돌연변이가 있다. 예를 들어, 미국 특허 제2014/0056904호; 문헌[Saraiva, Hum. Mutat. 17(6):493-503 (2001); Damas and Saraiva, J. Struct. Biol. 130:290-299; Dwulet and Benson, Biochem. Biophys. Res. Commun. 114:657-662 (1983)] 참조.
TTR 아밀로이드증으로 고통 받고 있는 개체는 때때로 다음 중 하나 이상을 포함하는 TTR 아밀로이드증의 임상 징후로부터 인식될 수 있다: (1) 특히 심부전과 관련된 신경병 질환의 가족력; (2) 알려지지 않은 병인의 신경병 통증 또는 진행성 감각 장애; (3) 분명한 원인이 없는 손목 터널 증후군(특히 그것이 양쪽성이며 수술적 복구를 필요로 한다면); (4) 알려지지 않은 병인의 위장 운동성 장애 또는 자율성 신경 기능장애(예를 들어, 발기성 기능장애, 기립성 저혈압, 신경인성 방광); (5) 고혈압 없이 두꺼워진 심실벽을 특징으로 하는 심장 질환; (6) 특히 두꺼워진 심장을 수반할 때 알려지지 않은 유래의 진행된 방실계 차단; 및 (6) 솜털 유형의 유리체 포함. 문헌[Ando et al., Orphanet Journal of Rare Diseases 8:31 (2013)] 참조. 그러나, TTR 아밀로이드증의 최종적 진단은 전형적으로 표적 기관 생검, 다음에 아밀로이드-특이적 염료, 콩고 레드에 의한 절단 조직의 조직학적 염색에 의존한다. 아밀로이드에 대한 양성 검사가 관찰된다면, 아밀로이드 형성을 초래하는 전구체 단백질이 사실 TTR이라는 것을 보장하기 위해 TTR에 대한 면역조직학적 염색이 후속적으로 수행된다. 질환의 가족성 형태에 대해, 이어서, 최종적 진단이 이루어질 수 있기 전에 TTR을 암호화하는 유전자에서 돌연변이의 입증이 필요하다.
대상체의 동정은 임상 환경에서, 또는 그 밖에, 예컨대 대상체의 집에서, 예를 들어, 대상체 자신의 자가 시험 키트의 사용을 통해 일어날 수 있다. 예를 들어, 대상체는 다양한 증상, 예컨대 말초신경병증(감각 및 운동), 자율 신경병증, 위장관 장애, 심근병증, 신경병증 또는 안구 침착에 기반하여 동정될 수 있다. 문헌[Ando et al., Orphanet Journal of Rare Diseases 8:31 (2013)] 참조. 대상체는 또한 실시예에 개시하는 바와 같이 대조군 샘플에 비해 대상체로부터의 혈장 샘플에서 TTR의 비천연 형태의 증가된 수준에 의해 동정될 수 있다.
가족력, 유전자 검사, 또는 TTR 아밀로이드증에 대한 의학적 선별에 의해 보장되는 바와 같이, 치료는 임의의 연령에 시작할 수 있다(예를 들어, 20, 30, 40, 50, 60 또는 70세). 치료는 전형적으로 시간 기간에 걸쳐 다회 투약량을 수반하고, 시간에 따라 치료제(예를 들어, 아미노산 잔기 89 내지 97을 포함하는 TTR의 절단된 형태)에 대한 항체 또는 활성화된 T-세포 또는 B-세포를 분석함으로써 모니터링될 수 있다. 반응이 떨어진다면, 부스터 투약량이 표시된다.
예방적 용도에서, 항체 또는 이의 약제학적 조성물은 위험을 감소시키거나, 중증도를 줄이거나 또는 질환의 적어도 하나의 징후 또는 증상의 개시를 지연시키는 데 유효한 요법(투여 용량, 빈도 및 경로)에서 질환(예를 들어, TTR 아밀로이드증)에 걸리기 쉽거나 또는 달리 위험에 있는 대상체에게 투여된다. 치료적 용도에서, 항체 또는 항체를 유도하기 위한 면역원은 질환의 적어도 하나의 징후 또는 증상을 개선시키거나 또는 징후 또는 증상의 추가적인 악화를 저해하는 데 유효한 요법(투여 용량, 빈도 및 경로)에서 질환(예를 들어, TTR 아밀로이드증)의 여지가 있거나, 또는 이미 질환으로 고통받고 있는 대상체에게 투여된다.
요법은 개개의 치료되는 대상체가 본 명세서에 개시된 방법에 의해 치료되지 않은 비슷한 대상체의 대조군 집단에서의 평균 결과보다 더 바람직한 결과를 달성한다면, 또는 더 바람직한 결과가 통제 임상 시험에서의 대조군 대상체(예를 들어, II상, II/III 상 또는 III 상 시험) 또는 p < 0.05 또는 0.01 또는 심지어 0.001 수준에서의 동물 모델에 비교한 처리 대상체에서의 요법에 대해 입증된다면 치료적 또는 예방적으로 유효한 것으로 고려된다.
항체의 유효 요법은, 예를 들어, TTR 축적과 관련된 병태가 있거나 또는 병태의 위험에 있는 대상체에서 TTR의 응집을 저해 또는 감소시키기 위해; TTR 축적과 관련된 병태가 있거나 또는 병태의 위험에 있는 대상체에서 TTR 피브릴 형성을 저해 또는 감소시키기 위해; TTR 축적과 관련된 병태가 있거나 또는 병태의 위험을 갖는 대상체에서 TTR 침착물 또는 응집된 TTR을 감소 또는 클리어런스하기 위해; TTR 축적과 관련된 병태가 있거나 또는 또는 병태의 위험을 갖는 대상체에서 TTR의 비독성 입체배좌를 안정화시키기 위해; TTR 축적과 관련된 병태가 있거나 또는 또는 병태의 위험을 갖는 대상체에서 TTR 응집, 피브릴 또는 침착물의 독성 효과를 저해하기 위해; 아밀로이드 축적을 포함하는 것으로 의심되는 조직에서 TTR 아밀로이드 축적의 존재 또는 부재를 진단하기 위해; 항체의 투여 후 대상체에서 결합된 항체의 존재를 검출함으로써 대상체에서 TTR 침착물의 수준을 결정하기 위해; 대상체에서 TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태의 존재를 검출하기 위해; TTR 아밀로이드증으로 진단된 환자를 치료하기 위해 사용 중인 치료제의 효능을 모니터링 및 평가하기 위해; 대상체에서 TTR에 대한 항체를 포함하는 면역반응을 유발하기 위해; 대상체에서 TTR 아밀로이드 축적과 관련된 병태의 개시를 지연시키기 위해; 또는 환자에서 TTR 아밀로이드증을 치료하거나 또는 예방을 달성하기 위해 사용될 수 있다.
유효 용량은 다수의 상이한 인자, 예컨대 투여 수단, 표적 부위, 대상체의 생리학적 상태, 대상체가 인간 또는 동물인지의 여부, 투여되는 다른 의약, 및 치료가 예방적 또는 치료적인지의 여부에 따라 다르다.
항체에 대한 예시적인 용량 범위는 고정된 투약량으로서 약 0.1 내지 20, 또는 0.5 내지 5㎎/㎏ 체중(예를 들어, 0.5, 1, 2, 3, 4 또는 5㎎/㎏) 또는 10 내지 1500㎎일 수 있다. 투약량은 인자들 중에서도 환자의 병태 및 선행 치료에 대한 반응, 만약에 있다면, 치료가 예방적인지 또는 치료적인지의 여부 및 장애가 급성 또는 만성인지의 여부에 의존한다.
항체는 매일, 격일로, 매주, 격주, 매달, 분기별로 또는 경험적 분석에 의해 결정되는 임의의 다른 스케줄에 따라 이러한 용량이 투여될 수 있다. 예시적인 치료는 장기간, 예를 들어, 적어도 6개월에 걸쳐 다회 용량으로의 투여를 수반한다. 추가적인 예시적인 치료 요법은 2주마다 1회 또는 1개월에 1회 또는 3 내지 6개월마다 1회 투여를 수반한다.
항체는 주변 경로를 통해 투여될 수 있다. 투여 경로는 국소, 정맥내, 경구, 피하, 동맥내, 두개내, 척추강내, 복강내, 비강내 또는 근육내를 포함한다. 항체의 투여를 위한 경로는 정맥내 또는 피하일 수 있다. 정맥내 투여는, 예를 들어, 30 내지 90분과 같은 기간에 걸친 주입에 의할 수 있다. 이 주사 유형은 가장 전형적으로는 팔 또는 다린 근육에서 수행된다. 일부 방법에서, 제제는 침착물이 축적되는 특정 조직 내로 직접적으로 주사된다(예를 들어 두개내 주사).
비경구 투여를 위한 약제학적 조성물은 멸균 및 실질적으로 등장성(250 내지 350mOsm/㎏ 물)이고, GMP 조건 하에 제조된다. 약제학적 조성물은 단위 용량 형태로(즉, 단일 투여를 위한 용량) 제공될 수 있다. 약제학적 조성물은 하나 이상의 생리적으로 허용 가능한 담체, 희석제, 부형제 또는 보조제를 이용하여 제형화될 수 있다. 제형은 선택된 투여 경로에 의존한다. 주사를 위해, 항체는 (주사 부위에서 불편함을 감소시키기 위해) 수용액 중에서, 예를 들어 생리적으로 적합한 완충제, 예컨대 행크스 용액, 링거 용액 또는 생리 식염수 또는 아세트산염 완충제 중에서 제형화될 수 있다. 용액은 제형화제, 예컨대 현탁제, 안정제 및/또는 분산제를 함유할 수 있다. 대안적으로 항체는 사용 전에 적합한 비히클, 예를 들어 멸균 무발열원 수를 이용하는 구성을 위해 동결건조 형태일 수 있다.
요법은 치료 중인 질환의 치료 또는 예방에서 유효한 다른 제제와 병용하여 투여될 수 있다. 이러한 제제는 TTR의 발현을 저해하기 위한 siRNA 또는 빈다켈(Vyndaqel), 사량체 형성에서 TTR의 안정제를 포함할 수 있다.
치료 후에, 대상체의 병태는 이러한 치료의 진행 또는 효능을 결정하기 위해 평가될 수 있다. 이러한 방법은 바람직하게는 TTR 아밀로이드 수준 또는 TTR의 비천연 형태의 수준의 변화에 대해 시험한다. 예를 들어, TTR 아밀로이드 수준은 치료 전에 비슷한 환경 하의 대상체의 TTR 아밀로이드 수준에 대한 개선을 결정하기 위해 평가될 수 있다. 대상체의 TTR 아밀로이드 수준은 또한 비슷한 환경 하의 대조군 집단에 비교될 수 있다. 대조군 집단은 비치료 대상체 또는 정상 비치료 대상체(특히 대조군 대상체)와 유사하게 병으로 고생할 수 있다. 유사하게 병에 걸린, 비치료 대상체에 대한 개선 또는 비치료 정상 대상체의 수준에 접근 또는 도달하는 수준은 치료에 대한 양성 반응을 나타낸다.
TTR 아밀로이드 수준은 영상화 기법을 포함하는 다수의 방법에 의해 측정될 수 있다. 적합한 영상화 기법의 예는 방사성 표지된 TTR 또는 이의 단편을 이용하는 PET 스캐닝, TTR 항체 또는 이의 단편, 콩고-레드-기반 아밀로이드 영상화제, 예컨대, PIB(미국 특허 제2011/0008255호), 아밀로이드-영상화 펩타이드 p31(아밀로이드-영상화 펩타이드인 p31의 생체 분포는 콩고 레드 조직 염색에 기반한 아밀로이드 정량화와 상관 관계가 있다, 문헌[Wall et al., Abstract No. 1573, 2011 ISNM Annual Meeting]), 및 기타 PET 표지를 포함한다. TTR의 비천연 형태 수준은, 예를 들어, 대상체로부터의 혈장 샘플 또는 생검 샘플에 대해 본 명세서에 개시된 항체를 이용하는 SDS-PAGE/웨스턴 블롯 또는 메조 스케일 디스커버리(Meso Scale Discovery) 플레이트 분석을 수행하고, 실시예에 기재된 바와 같은 대조군 샘플을 비교함으로써 측정될 수 있다.
A. 진단 및 모니터링 방법
또한 TTR 침착 또는 TTR의 병원성 형태(예를 들어, TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태)와 관련된 질환으로 고통 받거나 또는 질환에 걸리기 쉬운 환자에서 TTR에 대한 면역 반응을 검출하는 방법이 제공된다. 상기 방법은 본 명세서에 제공된 제제를 이용하여 치료적 및 예방적 치료 과정을 모니터링하기 위해 사용될 수 있다. 수동 면역화 후에 항체 프로파일은 전형적으로 항체 농도에서 즉각적인 피크 다음에 지수함수형 붕괴를 나타낸다. 추가적인 용량 없이, 붕괴는 투여되는 항체의 반감기에 따라서 며칠 내지 몇 개월의 기간 내에 전처리 수준에 접근한다. 예를 들어, 일부 인간 항체의 반감기는 대략 20일이다.
일부 방법에서, 대상체에서 TTR에 대한 항체의 기준 측정은 투여 전에 이루어지고, 제2 측정은 최대 항체 수준을 결정하기 위해 이후에 곧 이루어지며, 1회 이상의 추가적인 측정이 항체 수준의 붕괴를 모니터링하기 위한 간격으로 이루어진다. 항체 수준이 기준 또는 기준 미만의 피크의 사전결정된 백분율(예를 들어, 50%, 25% 또는 10%)로 감소될 때, 항체의 추가적인 용량의 투여가 투여된다. 일부 방법에서, 피크 또는 배경 미만의 후속적인 측정 수준은 다른 대상체에서 유리한 예방적 또는 치료적 치료 요법을 구성하기 위해 이전에 결정된 기준 수준과 비교된다. 측정된 항체 수준이 기준 수준보다 상당히 더 적다면(예를 들어, 치료가 유리한 대상체 집단에서 기준 값의 평균 - 하나 또는 바람직하게는 두 표준 편차보다 적다면) 항체의 추가적인 용량의 투여가 표시된다.
또한, 예를 들어, 대상체로부터의 샘플에서 TTR 아밀로이드 또는 TTR의 병원성 형태(예를 들어, TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태)를 측정함으로써 또는 대상체에서 TTR의 생체내 영상화에 의해 대상체에서 TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태를 검출하는 방법이 제공된다. 이러한 방법은 TTR의 이러한 병원성 형태와 관련된 질환(예를 들어, TTR 아밀로이드증)의 진단, 또는 그에 대한 감수성을 진단하거나 또는 확인하는 데 유용하다. 상기 방법은 또한 무증상 대상체에 대해 사용될 수 있다. TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태의 존재는 장래의 증상이 있는 질환에 대한 감수성을 나타낸다. 상기 방법은 또한 TTR 아밀로이드증으로 이미 진단된 대상체에서 질환 진행 및/또는 치료에 대한 반응을 모니터링하는 데 유용하다.
TTR 아밀로이드증을 갖거나, 갖는 것으로 의심되거나 또는 가질 위험에 있는 대상체로부터 얻은 생물학적 샘플은 TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태의 존재를 평가하기 위해 본 명세서에 개시된 항체와 접촉될 수 있다. 예를 들어, 이러한 대상체에서 TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태의 수준은 건강한 대상체에서 존재하는 것에 비교될 수 있다. 대안적으로, 질환에 대한 치료를 받는 이러한 대상체에서 TTR 아밀로이드 또는 TTR의 병원성 형태(예를 들어, TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태) 수준은 TTR 아밀로이드증에 대해 치료되지 않은 대상체의 수준에 비교될 수 있다. 일부 이러한 시험은 이러한 대상체로부터 얻은 조직의 생검을 수반한다. ELISA 분석은 또한, 예를 들어, 유체 샘플에서 TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태의 수준을 평가하기 위한 유용한 방법일 수 있다. 일부 이러한 ELISA 분석은 TTR의 정상 사량체 형태에 비해 TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태에 우선적으로 결합하는 항-TTR 항체를 수반한다.
생체내 영상화 방법은 시약, 예컨대 대상체에서 TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태에 결합하는 항체를 투여하고, 이어서, 그것이 결합된 후에 시약을 검출함으로써 작업할 수 있다. 이러한 항체는 전형적으로 TTR의 잔기 89 내지 97 내의 에피토프에 결합한다. 원한다면, 클리어런스 반응은 전장 불변 영역, 예컨대 Fab가 없는 항체 단편을 이용함으로써 회피될 수 있다. 일부 방법에서, 동일한 항체는 치료와 진단 시약 둘 다로서 작용할 수 있다.
진단 시약은 대상체의 신체 내로 정맥내 주사에 의해 또는 합리적인 것으로 여겨지는 다른 경로를 통해 투여될 수 있다. 시약의 용량은 치료 방법과 동일한 범위 내이어야 한다. 전형적으로, 일부 방법에서, TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태에 대한 친화도를 지니는 1차 시약은 비표지이며, 2차 표지 시약은 1차 시약에 결합하기 위해 사용되지만, 시약은 표지된다. 표지의 선택은 검출 수단에 따른다. 예를 들어, 형광 표지는 광학 검출에 적합하다. 상자성 표지의 사용은 수술적 개입이 없는 단층 촬영 검출에 적합하다. 방사성 표지는 또한 PET 또는 SPECT를 이용하여 검출될 수 있다.
진단은 표지된 좌위의 수, 크기 및/또는 강도를 대응하는 기초선 값과 비교함으로써 수행된다. 기초선 값은 병이 없는 개체 집단에서의 평균값을 나타낸다. 기초선 값은 또한 동일한 대상체에서 결정된 이전의 수준을 나타낼 수 있다. 예를 들어, 기초선 값은 치료를 시작하기 전에 대상체에서 결정될 수 있고, 기초선 값과 비교하여 이후에 값이 측정될 수 있다. 기초선에 대한 값의 감소는 일반적으로 치료에 대한 긍정적 반응을 암시한다.
IX. 키트
본 발명은 추가로 본 명세서에 개시된 항체 및 관련된 물질, 예컨대 사용을 위한 설명서(예를 들어, 패키지 삽입물)을 포함하는 키트(예를 들어, 용기)를 제공한다. 사용을 위한 설명서는, 예를 들어, 항체 및 선택적으로 1종 이상의 추가적인 제제의 투여를 위한 설명서를 포함할 수 있다. 항체의 용기는 단위 용량, 벌크 패키지(예를 들어, 다회 용량 패키지) 또는 하위 단위 용량일 수 있다.
패키지 삽입물은 이러한 치료적 제품의 지시사항, 용법, 투약량, 투여, 사용 금지 사유 및/또는 사용에 관한 경고에 대한 정보를 포함하는 치료적 제품의 상업적 패키지에 관례적으로 포함되는 설명서를 지칭한다.
키트는 또한 약제학적으로-허용 가능한 완충제, 예컨대 주사용 정균수(BWFI), 인산염 완충 식염수, 링거 용액 및 덱스트로스 용액을 포함하는 제2 용기를 포함할 수 있다. 이는 또한 다른 완충제, 희석제, 충전제, 바늘 및 주사기를 포함하는 상업적 및 사용자 견지로부터 바람직한 다른 물질을 포함한다.
X. 다른 용도
항체는 연구에서 임상 진단 또는 치료와 관련하여 트랜스타이레틴(TTR), 또는 이의 단편의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태를 검출하기 위해 사용될 수 있다. 예를 들어, 항체는 생물학적 샘플이 TTR 아밀로이드 침착물을 포함한다는 표시로서 생물학적 샘플 중의 TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태의 존재를 검출하기 위해 사용될 수 있다. 생물학적 샘플에 대한 항체의 결합은 대조군 샘플에 대한 항체의 결합에 비교될 수 있다. 대조군 샘플 및 생물학적 샘플은 동일한 조직 유래의 세포를 포함할 수 있다. 대조군 샘플 및 생물학적 샘플은 동일한 개체 또는 상이한 개체로부터 그리고 동일한 경우에 또는 상이한 경우에 얻을 수 있다. 원한다면, 다중 생물학적 샘플 및 다중 대조군 샘플은 샘플 간의 차이와 독립적인 무작위 변이에 대한 보호를 위해 다수의 경우에 대해 평가된다. 이어서, 생물학적 샘플(들)에 대한 항체 결합(즉, TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태의 존재)이 대조군 샘플(들)에 대한 항체 결합과 비교하여 증가되거나, 감소되거나 또는 동일한지의 여부를 결정하기 위해 생물학적 샘플(들)과 대조군 샘플(들) 간에 직접적인 비교가 이루어질 수 있다. 대조군 샘플(들)에 비해 증가된 생물학적 샘플에 대한 항체의 결합(들)은 생물학적 샘플(들) 중에서 TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태의 존재를 나타낸다. 일부 예에서, 증가된 항체 결합은 통계적으로 유의하다. 선택적으로, 생물학적 샘플에 대한 항체 결합은 대조군 샘플에 대한 항체 결합보다 적어도 1.5배, 2배, 3배, 4배, 5배, 10배, 20배 또는 100배 더 높다.
추가로, 항체는 TTR 아밀로이드증으로 진단된 환자를 치료하기 위해 사용 중인 치료제의 효능을 모니터링 및 평가하기 위해 생물학적 샘플 중의 TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태의 존재를 검출하는 데 사용될 수 있다. TTR 아밀로이드증으로 진단된 환자로부터의 생물학적 샘플은 치료제에 대한 요법을 시작하기 전에 샘플에 대한 항체의 결합에 대한 기준(즉, 샘플 중의 TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태의 존재에 대한 기준)을 확립하기 위해 평가된다. 일부 예에서, 환자로부터의 다중 생물학적 샘플은 치료와 독립적인 기준과 무작위 변이의 측정을 둘 다 확립하기 위해 다수의 경우에 대해 평가된다. 이어서, 치료제는 요법에서 투여된다. 요법은 시간 기간에 걸쳐서 제제의 다회 투여를 포함할 수 있다. 선택적으로, 항체의 결합(즉, TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태의 존재)은 무작위 변이의 측정을 확립하기 위해 그리고 면역요법에 반응하는 경향을 나타내기 위해 환자로부터의 다중 생물학적 샘플에서 다수의 경우에 대해 평가한다. 이어서, 생물학적 샘플에 대한 항체 결합의 다양한 평가를 비교한다. 단지 2회의 평가가 이루어지면, 항체 결합(즉, TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태의 존재)이 두 평가 사이에서 증가되거나, 감소되거나 또는 동일하게 남아있는지의 여부를 결정하기 위해 두 평가 사이의 직접적인 비교가 이루어질 수 있다. 2회 초과의 측정이 이루어지면, 측정은 치료제에 의한 치료 전에 시작하고 요법 과정을 통해 진행되는 시간 과정으로서 분석될 수 있다. 생물학적 샘플에 대한 항체 결합이 감소된 환자에서(즉, TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태의 존재), 치료제는 환자에서의 TTR 아밀로이드증을 치료하는 데 효과적이라는 결론을 내릴 수 있다. 항체 결합의 감소는 통계적으로 유의할 수 있다. 선택적으로, 결합은 적어도 1%, 2%, 3%, 4%, 5%, 10%, 15%, 20%, 30%, 40%, 50%, 60%, 70%, 80%, 90% 또는 100%만큼 감소한다. 항체 결합의 평가는 TTR 아밀로이드증의 다른 징후 및 증상을 평가하는 것과 함께 이루어질 수 있다.
항체는 또한 TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태 또는 이의 단편을 검출함에 있어서 실험실 연구를 위한 연구 시약으로서 사용될 수 있다. 이러한 용도에서, 항체는 형광 분자, 스핀 표지 분자, 효소 또는 방사성 동위원소로 표지될 수 있고, 검출 분석을 수행하기 위한 모든 필요한 시약과 함께 키트의 형태로 제공될 수 있다. 항체는 또한 TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태, 또는 TTR의 단량체, 미스폴딩, 응집 또는 피브릴 형태의 결합 상대를, 예를 들어, 친화도 크로마토그래피에 의해 정제하기 위해 사용될 수 있다.
항체는 또한 생물학적 샘플에서 TTR의 응집을 저해 또는 감소시키거나, TTR 피브릴 형성을 저해 또는 감소시키거나, TTR 침착 또는 TTR 응집을 감소 또는 클리어런스하거나, 또는 TTR의 비독성 입체배좌를 안정화시키기 위해 사용될 수 있다. 생물학적 샘플은, 예를 들어, 혈액, 혈청, 혈장 또는 조직(예를 들어, 심장, 말초신경계, 자율신경계, 신장, 눈 또는 위장관으로부터의 조직)을 포함할 수 있다. 일부 예에서, TTR 응집, TTR 피브릴 형성 또는 TTR 침착물은 적어도 10%, 20%, 25%, 30%, 40%, 50% 또는 75%(예를 들어, 10% 내지 75% 또는 30% 내지 70%)만큼 저해 또는 감소된다. 피브릴 형성을 검출하기 위한 분석은 본 명세서의 다른 곳에 기재되어있다. 또한 미국 특허 제2014/0056904호 참조.
상기 또는 이하에 인용되는 모든 특허 출원, 웹사이트, 다른 간행물, 수탁번호 등은 각각의 개개 항목이 참조로 포함되기 위해 구체적이고 개별적으로 표시되는 것과 동일한 정도로 모든 목적을 위해 그들의 전문이 참고로 포함된다. 서열의 상이한 형태가 상이한 시간의 수탁 번호와 관련된다면, 본 출원의 유효한 출원일의 수탁 번호와 관련된 형태를 의미한다. 유효한 출원일은 적용 가능하다면 수탁 번호에 관한 실제 출원일 또는 우선권 출원의 출원일 중 빠른 것을 의미한다. 마찬가지로, 상이한 형태의 간행물, 웹사이드 등이 상이한 시간에 공개된다면, 달리 표시되지 않는 한, 본 출원의 유효한 출원일에 가장 최근에 발행된 형태를 의미한다. 본 발명의 임의의 특징, 단계, 요소, 실시형태 또는 양상은 달리 구체적으로 표시되지 않는 한 임의의 다른 것과 조합하여 사용될 수 있다. 본 발명은 분명함 및 이해의 목적을 위해 예시 및 실시예에 의해 일부 상세하게 기재되었지만, 특정 변화 및 변형이 첨부하는 청구범위의 범주 내에서 실행될 수 있다는 것은 분명할 것이다.
실시예
실시예 1. 미스-TTR 단클론성 항체의 동정
TTR의 단량체, 미스폴딩, 피브릴 또는 응집된 형태(미스-TTR)에 대한 입체배좌적으로-특이적인 단클론성 항체를 물질 및 방법(a 내지 d)에서 기재하는 바와 같이 생성, 선별, 발현 및 정제하였다. 미스-TTR 단클론성 항체를 생성하기 위해, 사량체에 묻혀있지만, 사량체의 단량체 서브유닛으로의 해리 시 노출되는 단백질 영역을 찾도록 인간 사량체 TTR의 결정 구조를 검사하였다. 동정한 영역은 TTR의 F 가닥 내에 위치되고, 사량체 단백질의 이량체 계면에서 격리된 잔기 89 내지 97(EHAEVVFTA)(서열번호 113)이다. 단백질 데이터베이스의 BLAST 검색은 이 서열을 가공하는 임의의 다른 인간 단백질을 나타내지 않았다.
이 서열(ggEHAEVVFTAgg㎏)(서열번호 114)을 포함하는 펩타이드를 합성하였다. 대문자는 TTR의 잔기 89 내지 97을 나타낸다. 소문자는 항원 펩타이드의 용해도를 증가시키고 내부 서열로서 9개의 아미노산 단편을 확인하기 위해 첨가된 추가적인 링커 잔기를 나타낸다. 이 펩타이드는 폴리-라이신 수지상 코어에 연결되어, TTR 89 내지 97 펩타이드에 연결된 다중 가지를 갖는 라이신 잔기의 코어를 포함하는 다중 항원성 펩타이드 면역원(TTR-MAP)을 생성한다. 표 2에 열거된 항체를 TTR-MAP에 대해 생성하였다.
이 다중 항원 펩타이드에 추가로, 열쇠구멍 삿갓조개 헤모사이아닌(keyhole limpet hemocyanin)(TTR89-97-N-KLH 및 TTR89-97-C-KLH)에 대한 N- 및 C-말단 시스테인 잔기를 통해 유사한 TTR 89-97 펩타이드(Ac-cggEHAEVVFTA-아마이드(서열번호 115) 및 Ac-EHAEVVFTAcgg-아마이드(서열번호 116))를 공유 결합함으로써 동일한 TTR 단편을 함유하는 두 다른 면역원을 생성하였다.
항체 생성, 선별, 발현 및 정제 후에, 상술한 결합 역학 매개변수(결합 속도(ka), 해리 속도(kd) 및 결합 친화도 상수(KD))를 표 2에 나타내는 바와 같이 재조합 인간 TTR F87M/L110M에 대한 표면 플라즈몬 공명(SPR)에 의해 리드 미스-TTR 항체에 대해 결정하였다. 항-마우스 IgG(GE 헬스케어(GE Healthcare))를 GE 헬스케어 항-마우스 키트에 제공된 지시에 따라 아민 결합을 통해 센서칩 C5(덱스트린 사슬 없음) 상에 고정시키고 나서, 30 내지 50 RU의 분석물의 최대 결합을 보장하기 위한 수준으로 미스-TTR mAb를 포획하였다. 다양한 농도의 분석물(재조합 인간 TTR F87M/L110M)을 3배 희석으로 실행 완충제(HBS + 0.05% P-20, 1㎎/㎖ BSA) 중에서 30㎕/분으로 포획 리간드에 대해 통과시켰다. 각각의 농도에 대해, 결합 동안 평형상태에 도달될 뿐만 아니라 해리 동안 적어도 10%의 신호가 붕괴되는 더 고농도의 분석물을 허용하는 시간 동안 반응을 진행시켰다. 적어도 하나의 농도(가장 높거나 또는 가장 낮지 않음)를 2회 중복해서 실행하였다. KD의 적어도 10배 초과 내지 KD의 10배 미만으로 확장하는 예비 실험에 기반하여 분석물의 농도 범위를 선택하였다.
리드 미스-TTR mAb의 SPR 분석 결과를 이하의 표 2에 나타낸다.
인간 TTR(F87M/L110M)에 대한 리드 미스-TTR 항체의 SPR 분석
mAb ka(1/Ms) kd(1/s) KD(M) Rmax
9D5 2.715E+4 4.930E-4 1.816E-8 31.55
14G8 2.880E+4 5.358E-4 1.861E-8 27.13
5A1 6.107E+4 4.693E-4 7.684E-9 30.98
6C1 4.607E+4 4.151E-4 9.010E-9 26.32
실시예 2. TTR 항원에 대한 미스-TTR 항체의 결합4개의 리드 미스-TTR mAb(9D5, 14G8, 6C1 및 5A1)를 코팅 항원으로서 pH4.0-처리 TTR(pH4-TTR)과 천연 TTR을 둘 다 이용하여 0.31 내지 2.5㎍/㎖ 범위의 농도에서 ELISA에 의해 분석하였다. TTR 항원 제조 및 ELISA 프로토콜을 물질 및 방법의 다른 곳(e 내지 g)에 기재한다.
얻어진 결합 곡선 및 표로 만든 Kd 및 Bmax 값을 이하의 도 3 및 표 3에 나타낸다. 도 3의 결과를 y-축 상의 임의의 단위(a.u.)에 제시한다. 모든 mAb는 16nM (6C1) 내지 282nM(9D5) 범위의 Kd 값으로 pH4-TTR에 대한 유의한 결합을 나타내었다. pH4-TTR에 대한 결합을 위한 Bmax 값은 최저 0.65 a.u(14G8) 내지 최고 2.02(9D5)의 범위였다. pH4-TTR에 대한 결합과 대조적으로, 항체 중 어떤 것도 천연 TTR에 대한 유의한 결합을 나타내지 않았는데, 이는 생성된 모든 TTR 항체가 TTR의 비천연 형태에 특이적이라는 것을 나타낸다.
pH4-TTR에 대한 리드 미스-TTR 항체 결합의 ELISA 분석
mAb K d (nM) B max (a.u.)
9D5 282 2.02
14G8 108 0.65
6C1 16 1.07
5A1 23 1.61
실시예 3. SDS-PAGE 및 천연-PAGE에 의한 미스-TTR 항체의 분석단량체/천연, 비변성 TTR에 대한 TTR의 변성 형태에 대한 결합의 특이성을 입증하기 위해 9D5 및 14G8을 SDS-PAGE/웨스턴에 의해 분석하였다. SDS-PAGE, 천연-PAGE 및 웨스턴 블롯 프로토콜을 방법 및 물질의 다른 곳(h 내지 j)에 기재한다.
비변성 TTR 또는 pH4-TTR을 열변성 TTR 및 열변성 pH4-TTR과 함께 SDS-PAGE 겔 상에서 실행하였다. 전기영동 후에, 겔을 나이트로셀룰로스 상에서 웨스턴 블롯팅하고 나서, TTR mAb 9D5 및 14G8을 이용하여 염색하였다. 항체를 pH4에서 처리하였을 때 또는 TTR 또는 pH4-TTR을 SDS-PAGE 전에 처음 열변성시켰을 때, 항체는 둘 다 TTR만을 인식하였다. 따라서 이들 9D5 및 14G8은 pH4에서 TTR의 변성에 의해 또는 TTR의 처리에 의해 생성된 TTR 형태이성질체에 대한 특이성을 나타낸다.
총 TTR mAb(7G7, 8C3) 및 상업적으로 입수 가능한 시그마(Sigma) 다클론성 항체와 함께 6C1 및 5A1을 또한 SDS-PAGE/웨스턴에 의해 분석하였다. 각각의 블롯은 염색된 분자량 마커, 비변성 TTR 및 pH4-TTR을 포함하였다.
염색한 SDS-PAGE 겔은 비변성 TTR에서 존재하는 주요 종이 대략 38kDa 이량체라는 것을 나타내었다. 대조적으로, pH4-TTR 샘플 중에 존재하는 주요 성분은 대략 15kDa 단량체의 소량의 이량체와 대략 35kDa 이량체로서 실행되었다. 이 이량체는 비변성 TTR 샘플 중에 존재하는 이량체보다 약간 소량의 단백질로서 실행되는데, 이는 이들 두 TTR 이량체 종 사이의 입체배좌적 차이를 나타낸다.
4개의 미스-TTR 항체를 이용하는 TTR 및 pH4-TTR의 웨스턴 블롯은 이들 mAb가 비변성 TTR을 인식하지 않지만, pH4-TTR 샘플 중에 존재하는 비변성 단량체와 이량체에 둘 다 결합한다는 것을 나타낸다. 따라서, 4개의 미스-TTR mAb(9D5, 14G8, 6C1 및 5A1)은 SDS-PAGE/웨스턴에 의해 분석될 때 TTR의 비천연 입체배좌에 대한 유사한 특이성을 나타낸다.
4개의 미스-TTR mAb와 대조적으로, 무손상 TTR을 지니는 마우스의 면역화를 통해 생성된 2개의 TTR 대조군 mAb, 7G7 및 8C3은 사량체 TTR 종을 포함하는 TTR 및 pH4-TTR 샘플 중에 존재하는 모든 TTR 종을 인식하였다. 따라서 미스-TTR mAb와 달리, 이들 대조군 mAb는 TTR에 결합하지만, 입체배좌 특이성은 없었다. 시그마 다클론성 항체는 7G7 및 8C3 대조군 mAb와 유사하게 거동하였다.
4개의 미스-TTR mAb가 비변성 겔 조건 하에서 입체배좌 특이성을 나타낼 수 있는지의 여부를 알아보기 위해 TTR 및 pH4-TTR을 또한 천연 겔 상에서 실행하였다. 염색한 천연 PAGE 겔 상에서, TTR은 소량의 사량체와 함께 대략 35kDa 천연 이량체로서 실행하였다. 대조적으로, pH4-TTR은 미량의 대략 35kDa 이량체를 지니는 고분자량 도말로서 주로 실행하였다. 비특이적 시그마 다클론성 항체는 TTR과 pH4-TTR 샘플 둘 다에 존재하는 모든 TTR 종을 인식하였다. 대조적으로, 9D5는 단지 pH4-TTR 샘플 중에 존재하는 고분자량 TTR 종을 인식하였다. SDS-PAGE/웨스턴 연구에서 관찰하는 바와 같이, 9D5는 임의의 TTR 종을 인식하지 않았다.
모두 4개의 미스-TTR mAb를 후속적으로 천연-PAGE/웨스턴 블롯에 의해 분석하였다. 예상한 바와 같이 그리고 9D5와 유사하게, 다른 미스-TTR mAbs, 14G8, 6C1 및 5A1은 pH4-TTR 샘플 중에 존재하는 TTR의 고분자량 비천연 형태에 특이적으로 결합하였다. 이들 항체 중 어떤 것도 대략 35kDa 천연 TTR 이량체를 인식하지 못하였다. 이들 결과는 4개의 미스-TTR mAb가 유사하게 거동하고, 천연 TTR과 입체배좌적으로 별개인 비천연 TTR 종만을 인식한다는 것을 나타낸다.
실시예 4. 미스-TTR 항체에 의한 TTR 섬유 형성의 저해
TTR-Y78F는 TTR 사량체를 탈안정화하는 단백질 서열 내 위치 78에서 점 돌연변이를 포함하는 TTR 변이체이다. 시간에 따라 그리고 중간으로 산성인 조건 하에서, 이 TTR 변이체는 그의 단량체 서브유닛으로 해리되고, 이어서 티오플라빈-T에 결합할 수 있는 섬유질을 계속해서 응집하고 형성할 수 있다. 따라서 섬유질 형성 정도는 480㎚에서 티오플라빈-T 형광을 측정함으로써 모니터링할 수 있다. 해리된 TTR 단량체 또는 응집물에 특이적인 미스-TTR 항체의 도입은 TTR 섬유질의 조립을 방지하여 항체가 없는 대조군 반응에 비해 티오플라빈-T 형광의 감소를 초래할 것이다. TTR 섬유질 형성의 저해를 시험하기 위한 프로토콜은 물질 및 방법의 다른 곳(k)에 기재되어 있다.
모두 4개의 미스-TTR 항체는 아이소타입 대조군에 비해 티오플라빈-T 반응성 TTR-Y78F 섬유질의 형성을 강하게 저해하였다. 상기 결과를 도 4A에 나타내며, y-축 상의 임의의 단위(a.u.)로 제시한다. 미스-TTR 항체 5A1은 섬유질 형성을 거의 완전하게 저해하였다. 이들 결과는 미스-TTR 항체가 TTR의 단량체 및/또는 응집된 형태에 결합함으로써, TTR 섬유질의 형성을 방지한다는 생각과 일치된다.
표 4는 TTR의 비천연 형태에 대해 양호한 입체배좌적 선택성을 나타낸 4개의 미스-TTR 항체(9D5, 14G8, 6C1 및 5A1)의 세트에 대해 얻은 특성규명 데이터를 요약한다. 이들 항체는 14.5nM(6C1) 내지 257nM(9D5) 범위의 pH4-TTR에 대한 친화도(KD) 및 0.65 a.u(14G8) 내지 2.02(9D5)범위의 Bmax 값을 가졌다. 이들 항체 중 어떤 것도 천연 TTR을 인식하지 않았지만, SDS-PAGE/웨스턴에 대해 pH4-TTR에 그리고 천연-PAGE/웨스턴에 대해 고분자량 TTR 응집물에 대해 결합하였다. 이들 항체는 또한 판독으로서 티오-T를 이용하는 피브릴 형성 분석에서 TTR 피브릴의 형성을 저해하였다.
TTR-V122I은 사량체를 탈안정화시키는 위치 122에서 단일 점 돌연변이를 포함하는 TTR 변이체이다. 피브릴 형성은 ThT 형광의 단조로운 감소에 의해 야기되는 hT 형광 증가 14G8 mAb의 증가와 관련되는데, 이는 TTR 피브릴화의 아화학량론 저해를 나타낸다(IC50=0.028±0.009㎎/㎖; n=3; 도 4B 및 표 4a). 아이소타입 대조군 mAb는 TTR 피브릴화 저해를 야기하지 않았고(도 4C), 따라서 14G8 매개 저해의 특이성을 입증하였다.
비슷한 아화학량론 IC50 값이 5A1 및 6C1에 대해 결정되었는데(표 4a) 이는 이들 미스-TTR mAb 각각에 대한 피브릴 저해의 유사한 메커니즘을 시사하였다. 대조적으로, 9D5는 비천연 TTR에 대한 유사한 특이성 및 친화도를 나타냄에도 불구하고 예상치 못하게 TTR-V122I 피브릴 형성을 저해하지 않았다. 이는 9D5가 사용되는 분석 조건에 대해 더 민감한지의 여부를 탐구하도록 남아있다.
(표 4a)
실시예 5. 미스-TTR mAb를 이용하는 ATTR 조직의 면역조직학적(IHC) 특성규명
트랜스타이레틴 단백질의 TTR 89 내지 97 단편에 대해 상승된 리드 미스-TTR mAb를 확인된 TTR 심장 아밀로이드증 환자로부터의 새로 냉동 및 파라핀 처리된 조직에 대해 면역조직화학적으로 시험하였다. 심장 조직 샘플을 얻고 제조하기 위한 프로토콜, 면역조직화학(IHC), 및 영상 분석을 물질 및 방법의 다른 곳(l 내지 o)에서 제공한다. IHC에 대해 사용한 항체를 표 5에 기재한다.
면역조직화학적 특성규명을 위해 사용한 항체
항체 항체 유형 공급업자 염색 심장 조직 농도
14G8 미스-TTR 프로테나 바이오사이언시즈(Prothena Biosciences) 있음 0.5㎍/㎖
9D5 미스-TTR 프로테나 바이오사이언시즈 있음 0.5㎍/㎖
6C1 미스-TTR 프로테나 바이오사이언시즈 있음 0.5㎍/㎖
5A1 미스-TTR 프로테나 바이오사이언시즈 있음 0.5㎍/㎖
7G7 TTR 프로테나 바이오사이언시즈 있음 0.5㎍/㎖
6F10 아이소타입 대조군 프로테나 바이오사이언시즈 없음 0.5㎍/㎖
프레알부민
(A0002)
TTR 다코 노스 아메리카(Dako North America) 있음 1:2,000 및 1:20,000
카파 경쇄
(A0191)
LC-κ 다코 노스 아메리카 없음 1:8,000
람다 경쇄
(A0193)
LC-λ 다코 노스 아메리카 없음 1:8,000
아밀로이드 A
(M0759)
AA 다코 노스 아메리카 없음 1:8,000
ATTR 돌연변이의 진단이 확인된 환자로부터 심장 조직 샘플을 얻었다. 면역조직화학적으로 시험한 사례에 대한 인구 통계는 다음과 같았고, 표 6에 요약한다: FAC = 가족성 아밀로이드성 심근병증; FAP = 가족성 아밀로이드성 말초신경병증; 1o AL = 경쇄 아밀로이드증; ATTR = 트랜스타이레틴-매개 아밀로이드증; Unk = 알려지지 않음
미스-TTR 항체를 이용하는 심장 조직 샘플의 면역조직화학적 염색
사례 진단 TTR 돌연변이 형식 TTR 항체로 염색하였는가
환자 1 FAC Ileu122 냉동 염색함
환자 2 FAP 야생형 냉동 염색함
환자 3 FAP 84Ser 냉동 염색함
환자 4 FAP 84Ser 냉동 염색함
환자 5 1o AL -- 냉동 염색함
환자 6 1o AL -- 냉동 염색하지 않음
환자 7 ATTR 10Arg 냉동 염색함
환자 8 ATTR V122I 냉동 염색함
환자 H1 ATTR Val122Ile FFPE 염색함
환자 H2 ATTR Thr60Ala FFPE 염색함
환자 H3 ATTR Thr49Ala FFPE 염색함
환자 H4 ATTR Ile84Ser FFPE 염색함
환자 H5 Unk. 노인 심장 FFPE 염색함
환자 H6 ATTR Ile84Ser FFPE 염색함
트랜스타이레틴 단백질의 89 내지 97 단편에 대해 상승된 마우스 단클론성 항체(미스-TTR mAb)를 확인된 TTR 심장 아밀로이드증 환자로부터의 새로 냉동 및 파라핀 처리된 조직에 대해 면역조직화학적으로 시험하였다. 각각의 미스-TTR 항체는 ATTR 심장 조직에 대해 강한 면역반응성을 나타내었다. 심근 및 혈관구조 전체적으로 침착물에서 진한 염색이 관찰되었다. 면역반응성을 티오플라빈-T의 콩고 레드에 의한 염색과 비교하였을 때, 조직 내 대다수의 면역반응성은 콩고 레드 복굴절 및 티오플라빈 T-양성 염색과의 높은 일치를 나타내었다. 이는 이 조직에서 침착된 TTR 아밀로이드의 베타 병풍 시트 특성을 확인하였다. 14G8, 9D5, 6C1 및 5A1은 또한 TTR-면역양성이지만 콩고 레드 또는 티오플라빈 T-음성인 심근 영역에 존재하는 프레-아밀로이드 TTR을 검출하였다. IgG-아이소타입 대조군 항체와 1차 항체 생략 부문은 둘 다 시험한 모든 조직에 걸쳐 염색에 대해 음성이었다. 다른 아밀로이드 생성 단백질(람다 및 카파 경쇄 또는 아밀로이드 A)에 대해 반응성인 항체는 이 분석에서 사용되는 ATTR 심장 조직에 대해 비반응성이었는데, 이는 침착물이 천연에서 구체적으로는 TTR이라는 것을 나타낸다.미스-TTR 항체의 염색 패턴을 잘 특성규명된 상업적 TTR 기준 항체에 의해 얻은 것과 비교하였다(프레알부민, A0002; 캘리포니아주 카르핀테리아에 소재한 다코사). 다코 기준 항체는 미스-TTR 항체와 동일한 면적에서 병에 걸린 심근을 염색하였지만, 더 확산하는 염색 패턴을 생성하였다. 다코 기준 항체는 미스-TTR 항체만큼 강하게 혈관구조 상에 존재하는 콩고친화성 TTR 아밀로이드 침착물을 염색하지 않았다.
미스-TTR 항체는 정상의 병에 걸리지 않은 조직을 염색하지 않았다. 더 나아가, 예상한 바와 같이, 아이소타입 대조군 항체인 6F10에 의한 염색은 또한 음성이었다.
미스-TTR 항체의 반응성이 TTR 침착물에 특이적인지의 여부를 결정하기 위해, 1차 AL 아밀로이드증으로 진단된 환자로부터 유래된 심장 조직에 대한 이들 항체의 교차 반응성을 시험하였다. 예상한 바와 같이, AL 아밀로이드 조직의 염색은 관찰되지 않았는데, TTR 항체는 ATTR 병에 걸린 조직에 대해 특이적으로 반응한다는 것을 확인한다.
노인성 전신 아밀로이드증의 진단이 확인된 환자로부터의 또는 TTR 유전자 내 점 돌연변이에 의해 야기된 FAC 또는 FAP가 확인된 환자로부터의 심장 조직은 또한 14G8, 9D5, 6C1 및 5A1에 의해 양성으로 염색되었다. 이들 결과는 미스-TTR 항체가 ATTR 유전자형과 상관없이 심장 조직 내 TTR 침착물을 인식하는 능력을 가진다는 것을 나타낸다.
TTR을 발현시키는 것으로 알려진 다른 비심장 조직을 미스-TTR 항체에 의한 염색에 대해 시험하였고, 다코 기준 항체를 이용하여 얻은 염색과 비교하였다. 예상한 바와 같이, 간, 췌장 및 맥락총은 모두 다코 기준 항체를 이용하여 TTR에 대해 양성으로 염색하였다. 대조적으로, 14G8는 랑게르한스섬 및 맥락총에서 단리한 췌장 알파 세포만을 염색하였는데, 이는 이들 기관에 대해 국소화된 일부 TTR이 간에서 발현된 TTR과 입체배좌적으로 별개라는 것을 시사한다. 간에서 미스-TTR mAb 면역반응성의 결여는 다량의 TTR일 발현되었고, 주로 사량체, 천연 TTR이 있으며, 노출된 미스-TTR 에피토프를 갖지 않는다는 것을 시사한다. 9D5, 6C1 및 5A1을 이용하여 동일한 조직을 염색하였을 때 유사한 결과를 얻었다.
실시예 6. SDS-PAGE/웨스턴 블롯에 의한 그리고 메조 스케일 디스커버리(MSD) 플레이트 분석에 의한 ATTR 대 정상 인간 혈장의 분석
V30M ATTR에 대해 확인한 환자로부터의 6개 혈장 샘플(샘플 #21, #22, #23, #24, #25, #27) 및 정상 대상체로부터의 6개 샘플(샘플 #11, #12, #15, #18, #19, #20)을 엠. 사라이바(M. Saraiva)(포르투갈에 소재한 포르토 유니버시티(Porto University))로부터 얻었다. 샘플 #C6은 상업적 공급업자(바이오레클라메이션IVT(BioreclamationIVT))로부터 얻은 정상 인간 혈청 샘플이었다. 샘플을 SDS-PAGE 및 웨스턴 블롯에 의해, 또는 메조스케일 디스커버리(MSD) 플레이트 분석에 의해 분석하였다. 이들 분석에 대한 프로토콜은 물질 및 방법의 다른 곳(p 내지 r)에 기재되어 있다. 6C1을 이용하는 MSD 플레이트 분석에 대해 표준 곡선을 생성하였다.
9D5 및 5A1 미스-TTR mAb를 이용하는 얻어진 웨스턴 블롯에서, 정상과 TTR-V30M 질환 혈장 샘플 사이의 밴딩 패턴의 차이를 검출할 수 있었다. 모든 혈장 샘플은 pH4-TTR 기준 샘플 중에 존재하는 비천연 TTR 단량체와 함께 공동 이동되는 대략 14kDa TTR 밴드를 함유하였다. 일반적으로, TTR-V30M 환자로부터 유래된 혈장 샘플(#21, 22, 23, 24, 25 및 27)은 더 많은 이런 단량체 미스-TTR 종을 가졌다. 추가로, V30M 환자로부터 유래된 혈장 샘플은 또한 pH4-TTR 기준 샘플 중에 존재하는 비천연 TTR 이량체와 함께 공동이동되는 대략 30kDa 밴드를 함유하였다. 샘플 #12 및 #18을 제외하고, 정상 개체로부터 유래된 혈장 샘플은 더 적은 이런 이량체 종을 가졌다.
상기 웨스턴 블롯을 스캐닝하고 나서, 조합한 9D5- 또는 5A1-반응성 TTR 이량체 및 단량체 밴드의 강도를 각각의 샘플에 대해 플롯팅하였다. 상기 결과를 도 5A(9D5) 및 도 5B(5A1)에 나타내며, y-축 상의 임의의 단위(a.u.)로 제시한다. 혈장 샘플 #15 및 #18을 제외하고, 정상 개체로부터 유래된 혈장 샘플(11, 12, 19 및 20)은 V30M 환자로부터 유래된 샘플(21 내지 25 및 27)보다 더 적은 9D5- 및 5A1-반응성 이량체 및 단량체 종을 함유하였다.
9D5 및 5A1 웨스턴 블롯에 의해 분석한 12개 혈청 샘플을 또한 미스-TTR 포획 항체로서 6C1 및 검출 항체로서 다코-설포 태그 항체를 이용하여 MSD 플레이트 분석에 의해 분석하였다. 이들 MSD 분석 결과를 도 6에 나타내고, y-축 상의 임의의 단위(a.u.)로 제시한다. 샘플 11, 12, 15, 18, 19 및 20은 정상 혈장을 나타낸다. 샘플 21 내지 25 및 27은 V30M 질환 혈장을 나타낸다.
혈장 샘플 #15 및 #18을 제외하고, 정상 개체로부터 유래된 혈장 샘플 중에 존재하는 6C1-반응성 TTR의 양은 TTR-V30M 질환 개체로부터의 혈장에서 관찰한 것보다 더 낮았다. MSD 분석에 의해 측정한 6C1 반응성 수준은 SDS-PAGE/웨스턴에 의해 상기 관찰한 9D5 반응성 이량체 및 단량체의 양과 매우 상관관계가 있었다.
혈장 샘플 중에 존재하는 반응성 TTR 종의 농도를 결정하기 위해, 포획 항체로서 6C1 및 검출 항체로서 8C3-설포 태그를 이용하여 동일한 샘플을 재분석하였다. MSD 신호는 상기 생성한 TTR F87M/L110M 표준 곡선을 이용하여 반응성 TTR 종의 ng/㎖ 농도로 전환하였다. 이 분석에 기반하여, 대조군 샘플 중에 존재하는 6C1-반응성 TTR의 평균 농도는 271 +/- 185ng/㎖이었다. 대조적으로, V30M 질환 혈장 샘플 중에 존재하는 반응성 TTR의 평균 농도는 331 +/- 95ng/㎖에서 더 높았다. 종합하면, 이들 MSD 결과는 미스-TTR 항체가 정상 혈장에 대해 ATTR 질환을 구별할 수 있다는 것을 시사한다. 이는 ATTR 질환의 진단 분석에서 사용하기 위한 미스-TTR 항체의 추가적인 개발을 보장한다.
실시예 7. 인간화된 9D5 항체의 설계
인간화를 위한 출발 지점 또는 공여자 항체는 마우스 항체 9D5였다. 성숙 m9D5의 중쇄 가변 아미노산 서열은 서열번호 1로서 제공된다. 성숙 m9D5의 경쇄 가변 아미노산 서열은 서열번호16으로서 제공한다. 중쇄 CDR1, CDR2 및 CDR3 아미노산 서열을 각각 서열번호 13 내지 15로서 제공한다(카바트에 의해 정함). 복합 코티아-카바트 CDR-H1을 서열번호 117로서 제공한다. 경쇄 CDR1, CDR2 및 CDR3 아미노산 서열을 각각 서열번호 24 내지 26으로서 제공한다(카바트에 의해 정함). 카바트 넘버링을 이 실시예 전체적으로 사용한다.
m9D5의 가변 카파(Vk)는 마우스 카바트 하위그룹 2에 속하는데, 이는 인간 카바트 하위그룹 3에 대응한다. m9D5의 가변 중쇄(Vh)는 마우스 카바트 하위그룹 3d에 속하는데, 이는 카바트 하위그룹 3에 대응한다. 문헌[Kabat et al. Sequences of Proteins of Immunological Interest, Fifth Edition. NIH Publication No. 91-3242, 1991] 참조. Vk에서 16-잔기 CDR-L1은 정규 부류 4에 속하고, 7-잔기 CDR-L2는 정규 부류 1에 속하며, 9-잔기 CDR-L3은 정규 부류 1에 속한다. 문헌[Martin & Thornton, J. Mol. Biol. 263:800-15, 1996] 참조. 10-잔기 복합 코티아-카바트 CDR-H1은 정규 부류 1에 속하고, 17-잔기 CDR-H2는 정규 부류 1에 속한다. 문헌[Martin & Thornton, J Mol. Biol. 263:800-15, 1996] 참조. CDR-H3은 정규 부류가 없다.
Leu이 중쇄 내 위치 47에 있는 반면, Tyr은 전형적으로 이 위치라는 것을 제외하고, Vk와 Vh 도메인 사이의 계면에서의 잔기는 통상적으로 발견되는 것이다. 이 위치는 복귀돌연변이에 대한 후보이다.
9D5의 대략의 구조적 모델을 제공하는 구조를 찾기 위해 PDB 데이터베이스 내 단백질 서열에 대해 검색하였다(Deshpande et al., Nucleic Acids Res. 33: D233-7, 2005). 항체 fab의 결정 구조(pdb 코드 1MJU)(Ruzheinikov et al., J. Mol. Biol. 332(2):423-435, 2003)를 Vk 구조에 대해 사용하였는데, 이는 양호한 분해능(1.22 A) 및 9D5 Vk에 대한 전반적인 서열 유사성을 가져서, 루프에 대해 9D5와 동일한 정규 규조가 남아있기 때문이다. pdb 암호 1SEQ를 지니는 단량체 항체(Covaceuszach et al., Acta Crystallogr. D Biol. Crystallogr. 57 (PT 9), 1307-1309, 2001)를 Vh 구조에 대해 사용하였는데, 그것이 양호한 서열 유사성 및 분해능(2.0 A)을 가지고, CDR-H1 및 CDR-H2에 대해 9D5 VH와 동일한 정규 구조를 갖기 때문이다. 본 발명자들은 마찬가지로 1MQK 구조도 이용하여 9D5 Vh 쇄를 모델링하였는데, 이것이 1.28 A의 더 양호한 분해능을 갖기 때문이다(Ostermeier et al., Proteins 21(1):74-77, 1995). 바이오루미네이트(BioLuminate) 소프트웨어(슈뢰딩거 인코포레이티드사(Schrodinger Inc.)로부터 허가)를 사용하여 9D5의 대략의 구조를 모델링하였다.
NCBI로부터의 흔하지 않은 단백질 서열의 검색은 뮤린 CDR에 접합되는 적합한 인간 프레임워크의 선택을 허용하였다. Vh에 대해, 인간 Ig 중쇄BAC02114(GI: 21670209)(서열번호 3)를 선택하였다(Akahori et al., Construction and characterization of antibody libraries: isolation of therapeutic human antibodies and application to functional genomics, Direct Submission, July 25, 2001). 이는 9D5의 정규 형태를 공유한다. 이는 카바트 인간 중쇄 하위그룹 1의 구성원이다. 9D5 Vh는 일부 독특한 프레임워크 잔기를 가지며, 임의의 인간 프레임워크 수용자는 매우 높은 상동성을 나타내지 않았다. 따라서, 본 발명자들은 혼성 수용자 프레임워크를 생성하기 위해 마찬가지로 제2 프레임워크, AAX82494(GI: 62421461)(서열번호 4)(Lundquist et al., Infect. Immun. 74(6), 3222-3231, 2006)를 사용하였다. Vk에 대해, NCBI 수탁 코드 ABC66952를 지니는 인간 카파 경쇄(GI: 84798006)(Shriner et al., Vaccine 24(49-50):7159-7166, 2006)를 선택하였다(서열번호 18). CDR-L1 및 L2에 대해 비경구 Vk와 동일한 정규 부류를 가졌다. 카바트 인간 카파 하위그룹 2의 구성원이다.
상이한 순열의 돌연변이(Hu9D5VHv1, 2, 2b, 3, 3b, 4, 4b 및 5(각각 서열번호 5 내지 12) 및 Hu9D5VLv1-5(각각 서열번호 19 내지 23))를 함유하는 8개의 인간화된 중쇄 가변 영역 변이체 및 5개의 인간화된 경쇄 가변 영역 변이체를 구성하였다(표 7 및 표 8). 선택된 인간 프레임워크에 기반한 복귀돌연변이 및 다른 돌연변이를 지니는 예시적인 인간화된 Vh 및 Vk 설계를 각각 표 7 및 표 8에 나타낸다. 표 7 및 표 8의 첫 번째 열의 회색 음영 영역은 코티아로 정한 CDR을 나타내고, 표 7 및 표 8의 남아있는 열의 회색 음영 영역은 카바트로 정한 CDR을 나타낸다. 서열번호 5 내지 12 및 19 내지 23은 표 9에 나타내는 바와 같은 복귀돌연변이 및 다른 돌연변이를 포함한다. Hu9D5VHv1, 2, 2b, 3, 3b, 4, 4b 및 5 및 Hu9D5VLv1-5 내의 위치 H42, H47, H69, H82, H82(b), H108, L8, L9, L18, L19, L36, L39, L60, L70 및 L74에서의 아미노산을 표 10 및 11에 열거한다.
V H , V L 복귀돌연변이 및 기타 돌연변이
VH 또는 VL 변이체 VH 또는 VL 엑손 수용자 서열 공여자 프레임워크 잔기
Hu9D5VHv1
(서열번호 5)
NCBI 수탁 코드 BAC02114 및 AAX82494
(각각 서열번호 3 및 4)
H47, H69, H82
Hu9D5VHv2
(서열번호 6)
NCBI 수탁 코드 BAC02114 및 AAX82494
(각각 서열번호 3 및 4)
H47, H69, H82, H82b
Hu9D5VHv2b
(서열번호 7)
NCBI 수탁 코드 BAC02114 및 AAX82494
(각각 서열번호 3 및 4)
H42, H47, H108
Hu9D5VHv3
(서열번호 8)
NCBI 수탁 코드 BAC02114 및 AAX82494
(각각 서열번호 3 및 4)
H69, H82, H82b
Hu9D5VHv3b
(서열번호 9)
NCBI 수탁 코드 BAC02114 및 AAX82494
(각각 서열번호 3 및 4)
H47, H108
Hu9D5VHv4
(서열번호 10)
NCBI 수탁 코드 BAC02114 및 AAX82494
(각각 서열번호 3 및 4)
H82, H82b
Hu9D5VHv4b
(서열번호 11)
NCBI 수탁 코드 BAC02114 및 AAX82494
(각각 서열번호 3 및 4)
H47, H108
Hu9D5VHv5
(서열번호 12)
NCBI 수탁 코드 BAC02114 및 AAX82494
(각각 서열번호 3 및 4)
H42, H47, H82b
Hu9D5VLv1
(서열번호 19)
NCBI 수탁 코드 ABC66952
(서열번호 18)
L36
Hu9D5VLv2
(서열번호 20)
NCBI 수탁 코드 ABC66952
(서열번호 18)
없음
Hu9D5VLv3
(서열번호 21)
NCBI 수탁 코드 ABC66952
(서열번호 18)
L60
Hu9D5VLv4
(서열번호 22)
NCBI 수탁 코드 ABC66952
(서열번호 18)
L8, L9, L19, L36, L39, L60, L70, L74
Hu9D5VLv5
(서열번호 23)
NCBI 수탁 코드 ABC66952
(서열번호 18)
L8, L9, L18, L19, L36, L39, L60, L70, L74
인간화된 9D5 항체의 Vk 영역 내 복귀 돌연변이 및 기타 돌연변이에 대한
프레임워크 잔기의 카바트 넘버링
잔기 ABC66952 경쇄 마우스 9D5 Hu9D5 VLv1 Hu9D5 VLv2 Hu9D5 VLv3 Hu9D5 VLv4 Hu9D5 VLv5
L8 P A P P P A A
L9 L P L L L P P
L18 P S P P P P S
L19 A V A A A V V
L36 Y F F Y Y F F
L39 K R K K K R R
L60 D D D D S S S
L70 D A D D D A A
L74 K R K K K R R
마우스 모델 서열(1SEQ_H 및 1MQK_H; 각각 서열번호 2 및 62), 인간 수용자 서열(BAC02114 및 AAX82494; 각각 서열번호 3 및 4), 및 Hu9D5VHv1, Hu9D5VHv2, Hu9D5VHv2b, Hu9D5VHv3, Hu9D5VHv3b, Hu9D5VHv4, Hu9D5VHv4b 및 Hu9D5VHv5 서열(각각 서열번호 5 내지 12)과 함께 뮤린 9D5 Vh 서열(서열번호 1)의 정렬을 도 1a에 나타낸다. 첫 번째 둘러싸인 박스가 코티아 CDR-H1 및 카바트 CDR-H1의 복합물이라는 것을 제외하고(카바트 CDR-H1은 밑줄 및 볼드체 표시됨), 카바트에 의해 정해지는 CDR은 박스로 둘러싸여 있다. 정규, 베니어 또는 계면 잔기가 마우스와 인간 수용자 서열 간에 다른 위치가 치환을 위한 후보이다. 베니어/CDR 토대 잔기의 예는 표 7에서 카바트 넘버링에 의해 잔기 2, 49, 69, 71, 75, 80 및 94를 포함한다. 정규/CDR 상호작용 잔기의 예는 표 7에서 카바트 넘버링에 의해 잔기 24, 48 및 73을 포함한다. 계면/패킹(VH+VL) 잔기의 예는 표 7에서 카바트 넘버링에 의해 잔기 37, 39, 44, 47, 91, 93 및 103을 포함한다.마우스 모델 서열(1MJU_L; 서열번호 17), 인간 수용자 서열(ABC66952; 서열번호 18), 및 Hu9D5VLv1, Hu9D5VLv2, Hu9D5VLv3, Hu9D5VLv4 및 Hu9D5VLv5 서열(각각 서열번호 19 내지 23)과 함께 뮤린 9D5 Vk 서열(서열번호 16)의 정렬을 도 1b에 나타낸다. 첫 번째 둘러싸인 박스가 코티아 CDR-H1 및 카바트 CDR-H1의 복합물이라는 것을 제외하고(카바트 CDR-H1은 밑줄 및 볼드체 표시됨), 카바트에 의해 정해지는 CDR은 박스로 둘러싸여 있다. 정규, 베니어 또는 계면 잔기가 마우스와 인간 수용자 서열 간에 다른 위치가 치환을 위한 후보이다. 베니어/CDR 토대 잔기의 예는 표 8에서 카바트 넘버링에 의해 잔기 4, 35, 46, 49, 66, 68 및 69를 포함한다. 정규/CDR 상호작용 잔기의 예는 표 8에서 카바트 넘버링에 의해 잔기 2, 48, 64 및 71을 포함한다. 계면/패킹(VH+VL) 잔기의 예는 표 8에서 카바트 넘버링에 의해 잔기 36, 38, 44, 47, 87 및 98을 포함한다.
치환을 위한 후보로서 경쇄 가변 영역 내 표 9 및 표 11에 나타낸 위치의 선택을 위한 이유는 다음과 같다.
P8A: 모델은 이 위치의 루프에서 뒤틀림을 나타내고, 따라서 A에 대한 복귀돌연변이는 이를 완화하기 위한 노력을 하였다.
L9P: 모델은 이 위치의 루프에서 뒤틀림을 나타내고, 따라서 P에 대한 복귀돌연변이는 이를 완화하기 위한 노력을 하였다.
P18S: 이 위치에서 P는 덜 빈번하다. S로의 돌연변이는 루프 왜곡을 완화하기 위한 노력을 하였다.
A19V: 이 위치에서 A 및 V는 동일하게 빈번하다. V로의 돌연변이는 루프 왜곡을 완화하기 위한 노력을 하였다.
Y36F: 이는 계면 잔기이고, 전형적으로는 Y 또는 F이다. Y는 LC + HC 패킹에 잠재적으로 영향을 미칠 수 있는 여분의 하이드록실기를 가진다. Y36의 극성은 잠재적으로는 중쇄 CRD-H3 잔기 H95의 배치를 방해할 수 있었다. 상동성 모델은 이 위치에서 Y는 H3의 이동성 제한을 초래할 수 있는 H3 내 F100(g)와 드노보 H-결합을 형성할 것을 나타낸다. F와 Y는 둘 다 별개의 형태로 사용하였다.
K39R: R은 K에 비교하여 이 루프에서 인접한 잔기와 H-결합을 형성한다. 루프 안정성에 대한 임의의 효과를 제외하기 위해, R로의 돌연변이를 시도하였다.
D60S: 이 잔기에서 D의 존재는 단백질 분해에 대한 높은 노출을 나타낸다. 일부 형태에서, 이는 이 위치의 인간 생식 계열에서 가장 빈번한 잔기 S로 대체되었다. 이는 안정성을 향상시키는 것으로 예측된다.
D70A: D는 단백질 분해 가능성을 가지며, 따라서 A로의 돌연변이가 시도되었다.
K74R: R은 이 위치에서 K에 비해 루프를 안정화시키는 것으로 나타나며, 따라서 R로의 복귀 돌연변이가 시도되었다.
치환을 위한 후보로서 중쇄 가변 영역 내 표 9 및 표 10에 나타낸 위치의 선택을 위한 이유는 다음과 같다.
G42E: E는 위치 44에서 R과의 이온성 상호작용을 만든다. 이들 상호작용이 E로의 복귀돌연변이를 가질 수 있다는 임의의 효과를 제외하기 위해, 일부 형태로 시험하였다.
W47L: 이는 계면 잔기, 전형적으로 W이다. 뮤린 9D5 중쇄에서, 이는 L인 반면, 인간 수용자 프레임워크에서 이 위치에 W가 있다. L과 W는 둘 다 비극성이지만, W의 페놀 고리는 경쇄:중쇄 패킹에 잠재적으로 영향을 줄 수 있었다. W 및 L을 별개의 형태로 포함하였다.
I69F: 이는 CDR-H2 토대의 부분인 베니어 잔기이다. 상동성 모델에 따르면, 뮤린 서열 내 F의 방향족 고리는 CRD-H2 잔기 Y59의 방향족 고리와의 파이 적층을 만든다. 이 위치에서 I 잔기는 해당 적층을 방해한다. I 및 F를 별개의 형태로 포함하였다.
M82S: 이 위치에서 M은 인간 프레임워크에서 매우 희귀하다. 가장 통상적으로는 A 또는 N이다. 더 통상적인 S로 잔기를 변화시키는 것은 이 위치에서 희귀한 M과 관련될 수 있는 면역원성을 감소시킬 수 있다. 모델 관찰에 기반하여, M이 베니어 구역 잔기인 Leu80과 상호작용할 가능성이 있다. M 및 S는 별개의 형태로 포함되었다.
S82(b)L: S는 뮤린과 인간 프레임워크 서열 둘 다에서 이 위치에 존재하지만, 이 위치에서 S는 덜 빈번하다. 이 잔기가 모델에 맞는 위치로부터 판단하면, 항원과 접촉될 가능성이 있었다. 중쇄의 프레임워크 영역 3 내의 잔기는 때때로 결합에 기여하는 것으로 알려져 있다. S 및 L을 별개의 형태로 포함하였다.
T108L: L은 이 위치에서 인간 프레임워크 내의 가장 빈번한 잔기이며, 따라서 L은 일부 형태에서 시도되었다.
두 인간 수용자 프레임워크(BAC02114 및 AAX82494.1(서열번호 3 및 4))가 9D5 중쇄 가변 영역의 인간화를 위해 사용되었기 때문에, 두 수용자 프레임워크 내에서 상이한 아미노산을 갖는 특정 프레임워크 위치가 있다. 9D5 중쇄 가변 영역의 인간화된 형태는 이들 잔기에서 아미노산 중 하나를 포함할 수 있다. 이들 두 수용자가 다른 잔기의 예는 카바트 넘버링에 의한 위치 H19(R 또는 K), H40(A 또는 T), H44(G 또는 R), H49(S 또는 A), H77(S 또는 T), H82a(N 또는 S), H83(R 또는 K), H84(A 또는 S), 및 H89(V 또는 M)를 포함한다. 이들 위치에서 하나의 아미노산 또는 다른 것을 선택하기 위한 이유는 다음과 같다.
H19(R 또는 K): R 및 K는 고려되는 2개의 프레임워크 중에 존재하며, 따라서 각각의 잔기는 별개의 형태로 시도되었다.
H40(A 또는 T): A 및 T는 고려되는 2개의 프레임워크 중에 존재하며, 따라서 각각의 잔기는 별개의 형태로 시도되었다.
H44(G 또는 R): G 및 R은 고려되는 2개의 프레임워크 중에 존재하며, 따라서 각각의 잔기는 별개의 형태로 시도되었다.
H49(S 또는 A): 이는 CDR-H2 하에 패킹되는 베니어 잔기이다. 뮤린 서열에서, 이는 A이다. S의 약간의 크기 차이 및 친수성은 CDR 토대를 잠재적으로 동요시킬 수 있었다. S 및 A를 별개의 형태로 포함하였다.
H77(S 또는 T): S 및 T는 고려되는 2개의 인간 수용자 프레임워크 중에 존재하며, 따라서 각각은 별개의 형태로 시도되었다.
H82a(N 또는 S): 이 위치에서 N은 S보다 훨씬 덜 빈번하다. 게다가, S는 항원 결합에 기여하는 것으로 나타난다. S로의 돌연변이가 일부 형태에서 시도되었다.
H83(R 또는 K): 프레임워크 영역 3에서 K는 CDR 결합 표면적에 가깝다. 그것을 K보다 더 큰 R로 대체하는 것은 항원의 배치를 방해한다. R은 가장 빈번하며, K는 이 위치에서의 인간 프레임워크에서 세번째로 빈번하다. R 및 K를 별개의 형태로 포함하였다.
H84(A 또는 S): S 및 A는 고려되는 2개의 프레임워크 중에 존재하며, 따라서 각각의 잔기는 별개의 형태로 시도되었다.
H89(V 또는 M): V 및 M은 고려되는 2개의 프레임워크 중에 존재하며, 따라서 각각은 별개의 형태로 시도되었다.
5개의 인간화된 경쇄 가변 영역 변이체 및 5개의 인간화된 중쇄 가변 영역 변이체는 다음과 같다:
응집 가능성 분석과 함께 단백질 품질 분석은 9D5 경쇄 또는 중쇄 프레임워크 영역 또는 CDR 중에 존재하는 응집 경향이 있는 잔기의 분명한 클러스터를 나타내지 않았다(Wang et al., mAbs 1(3):254-267, 2009).
실시예 8. 인간화된 9D5 항체의 결합 역학 분석
재조합 인간 TTR F87M/L110M에 대한 모든 인간화된 9D5 변이체, 뮤린 9D5 및 키메라 9D5의 결합의 결합 역학을 표 12에 나타낸 바와 같이 바이어코어에 의해 특성규명하였다. 항-인간(GE 헬스케어사)를 GE 헬스케어 항-인간 키트에 제공된 지시에 따라 아민 결합을 통해 센서칩 C5(덱스트린 사슬 없음) 상에 고정시키고 나서, 30 내지 50 RU의 분석물의 최대 결합을 보장하기 위한 수준으로 mAb를 포획하였다.  다양한 농도의 분석물(재조합 인간 TTR F87M/L110M)을 3배 희석으로 실행 완충제(HBS + 0.05% P-20, 1㎎/㎖ BSA) 중에서 50㎕/분으로 포획 리간드에 대해 통과시켰다. 각각의 농도에 대해, 결합 동안 평형상태에 도달될 뿐만 아니라 해리 동안 적어도 10%의 신호가 붕괴되는 더 고농도의 분석물을 허용하는 시간 동안 반응을 진행시켰다. 적어도 하나의 농도(가장 높거나 또는 가장 낮지 않음)를 2회 중복해서 실행하였다. KD의 적어도 10배 초과 내지 KD의 10배 미만으로 확장하는 예비 실험에 기반하여 분석물의 농도 범위를 선택하였다.
표 12는 재조합 인간 TTR F87M/L110M의 뮤린, 키메라 및 인간화된 9D5 변이체의 바이어코어 결합 상수(ka), 해리 상수(kd) 및 결합 친화도 상수(KD)를 요약한다.
인간 TTR에 대한 9D5 항체의 항원 결합 친화도(F87M/L110M)
항체 k a (1/Ms) k d (1/s) K D (M) Rmax
뮤린 9D5 2.72E+04 4.93E-04 1.82E-08 31.55
키메라 9D5 2.59E+05 3.50E-04 1.35E-09 47.05
Hu9D5 H2L5 1.15E+05 7.85E-04 6.84E-09 57.6
Hu9D5 H3L1 1.52E+04 6.57E-04 4.32E-09 54.93
Hu9D5 H4bL1 2.54E+05 5.33E-04 2.09E-09 43.91
이들 결과는 TTR-F87M/L110M에 대한 뮤린 9D5의 친화도(KD = 1.82E-08M)가 키메라 9D5 변이체에서 약간 개선되었다는 것(KD = 1.35E-09M)을 나타낸다. 더 나아가, 완전히 인간화된 9D5 변이체는 모두 낮은 nM 범위에서 유사한 친화도를 가진다. Hu9D5 H4bL1은 시험한 인간화된 9D5 변이체의 가장 강한 친화도(KD = 2.09E-09)를 가진다.
실시예 9. 인간화된 14G8 항체의 설계
인간화를 위한 출발 지점 또는 공여자 항체는 마우스 항체 14G8이었다. 성숙 m14G8의 중쇄 가변 아미노산 서열은 서열번호 61로서 제공된다. 성숙 m14G8의 경쇄 가변 아미노산 서열은 서열번호 70으로서 제공한다. 중쇄 CDR1, CDR2 및 CDR3 아미노산 서열을 각각 서열번호 67 내지 69로서 제공한다(카바트에 의해 정함). 복합 코티아-카바트 CDR-H1을 서열번호 118로서 제공한다. 경쇄 CDR1, CDR2 및 CDR3 아미노산 서열을 각각 서열번호 77 내지 79로서 제공한다(카바트에 의해 정함). CDR1의 변이체 형태는 서열번호 80으로서 제공된다. 카바트 넘버링을 이 실시예 전체적으로 사용한다.
m14G8의 가변 카파(Vk)는 마우스 카바트 하위그룹 2에 속하는데, 이는 인간 카바트 하위그룹 2에 대응한다. m14G8의 가변 중쇄(Vh)는 마우스 카바트 하위그룹 3d에 속하는데, 이는 카바트 하위그룹 1에 대응한다. 문헌[Kabat et al. Sequences of Proteins of Immunological Interest, Fifth Edition. NIH Publication No. 91-3242, 1991] 참조. Vk에서 16-잔기 CDR-L1은 정규 부류 3에 속하고, 7-잔기 CDR-L2는 정규 부류 1에 속하며, 9-잔기 CDR-L3은 정규 부류 1에 속한다. 문헌[Martin & Thornton, J. Mol. Biol. 263:800-15, 1996] 참조. 10-잔기 복합 코티아-카바트 CDR-H1은 정규 부류 1에 속하고, 17-잔기 CDR-H2는 정규 부류 1에 속한다. 문헌[Martin & Thornton, J Mol. Biol. 263:800-15, 1996] 참조. CDR-H3은 정규 부류가 없지만, 15-잔기 루프는 문헌[Shirai et al., FEBS Lett. 455:188-97 (1999)]의 규칙에 따라 뒤틀린 염기를 가질 가능성이 있다.
Vk 내지 Vh 도메인 계면에서 잔기는 아미노산이 보통 W인 위치에서 L47을 제외하고 통상적으로 발견되는 것이다.
14G8의 대략의 구조적 모델을 제공하는 구조를 찾기 위해 PDB 데이터베이스 내 단백질 서열에 대해 검색하였다(Deshpande et al., Nucleic Acids Res. 33: D233-7, 2005). 에스터라제 활성을 지니는 Fab의 결정 구조(pdb 1MJU)를 Vk 구조에 대한 모델로서 사용하였다. 이는 분해능 1.22 A에서 분해되고, CDR-H1 및 CDR-H2와 동일한 정규 구조를 포함하며, 또한 뒤틀린 염기와 동일한 길이의 CDR-H3을 포함한다. 항-사이토크롬 C 옥시다제 항체 7E2 Fv 단편(pdb 코드 1MQK_H)을 Vh 구조에 대해 사용하였다. 이는 분해능이 1.28 A이며, 루프에 대해 14G8과 동일한 정규 구조를 보유한다. 바이오루미네이트 소프트웨어(슈뢰딩거 인코포레이티드로부터 허가)를 사용하여 14G8의 대략의 구조를 모델링하였다.
NCBI로부터의 흔하지 않은 단백질 서열의 검색은 뮤린 CDR에 접합되는 적합한 인간 프레임워크의 선택을 허용하였다. Vh에 대해, NCBI 수탁 코드 AAD30410.1 및 AAX82494.1을 갖는 인간 Ig 중쇄를 선택하였다. 이들은 14G8 CDR-H1 및 H2의 정규 형태를 공유하며, AAD30410.1의 H3은 예측된 뒤틀린 염기를 지니는 15개 잔기 길이이다. Vk에 대해, NCBI 수탁 코드 ABA71374.1 및 ABC66952.1을 지니는 2개의 인간 카파 경쇄를 선택하였다. 그들은 LCDR에 대해 동일한 정규 부류를 가진다.
상이한 치환 순열(Hu14G8VHv1-3(각각 서열번호 64 내지 66) 및 Hu14G8VLv1-3(각각 서열번호 74 내지 76))을 함유하는 3개의 인간화된 중쇄 가변 영역 변이체 및 3개의 인간화된 경쇄 가변 영역 변이체를 구성하였다(표 13 및 표 14). 선택된 인간 프레임워크에 기반한 복귀돌연변이 및 다른 돌연변이를 지니는 예시적인 인간화된 Vh 및 Vk 설계를 각각 표 13 및 표 14에 나타낸다. 표 13 및 표 14의 첫 번째 열의 회색 음영 영역은 코티아로 정한 CDR을 나타내고, 표 13 및 표 14의 남아있는 열의 회색 음영 영역은 카바트로 정한 CDR을 나타낸다. 서열번호 64 내지 66 및 74 내지 76은 표 15에 나타내는 바와 같은 복귀돌연변이 및 다른 돌연변이를 포함한다. Hu14G8VHv1-3 및 Hu14G8VLv1-3 내의 위치 H1, H3, H47, H105, L8, L9, L19, L26, L36, L60 및 L70에서의 아미노산을 표 16 및 표 17에 열거한다.
V H , V L 복귀돌연변이 및 기타 돌연변이
VH 또는 VL 변이체 VH 또는 VL 엑손 수용자 서열 공여자 프레임워크 잔기 카바트 CDR 잔기
Hu14G8VHv1
(서열번호 64)
NCBI 수탁 코드 AAD30410.1 및 AAX82494.1
(각각 서열번호 63 및 4)
H1, H3, H47, H105 -
Hu14G8VHv2
(서열번호 65)
NCBI 수탁 코드 AAD30410.1 및 AAX82494.1
(각각 서열번호 63 및 4)
H1, H47 -
Hu14G8VHv3
(서열번호 66)
NCBI 수탁 코드 AAD30410.1 및 AAX82494.1
(각각 서열번호 63 및 4)
H1, H47 -
Hu14G8VLv1
(서열번호 74)
NCBI 수탁 코드 ABA71374.1 및 ABC66952.1
(각각 서열번호 72 및 73)
L8, L9, L19, L36, L70 -
Hu14G8VLv2
(서열번호 75)
NCBI 수탁 코드 ABA71374.1 및 ABC66952.1
(각각 서열번호 72 및 73)
L36 -
Hu14G8VLv3
(서열번호 76)
NCBI 수탁 코드 ABA71374.1 및 ABC66952.1
(각각 서열번호 72 및 73)
L36, L60 L26
인간화된 14G8 항체 VH 영역에서 복귀돌연변이 및 기타 돌연변이에 대한
프레임워크 및 카바트 CDR 잔기의 카바트 넘버링
잔기 AAD30410.1
중쇄
AAX82494.1
중쇄
마우스 14G8 Hu14G8 VHv1 Hu14G8 VHv2 Hu14G8 VHv3
H1 Q Q E E E E
H3 Q Q K K Q Q
H47 W W L L L L
H105 Q Q T T Q Q
인간화된 14G8 항체 VL 영역에서 복귀돌연변이 및 기타 돌연변이에 대한
프레임워크 및 카바트 CDR 잔기의 카바트 넘버링
잔기 ABA71374.1
경쇄
ABC66952.1
경쇄
마우스 14G8 Hu14G8 VLv1 Hu14G8 VLv2 Hu14G8 VLv3
L8 P P A A P P
L9 L L P P L L
L19 A A V V A A
L26 S N N N N S
L36 Y Y F F F F
L60 D D D D D S
L70 D D A A D D
마우스 모델 서열(1MQK_H; 서열번호 62), 인간 수용자 서열(AAD30410.1 및 AAX82494.1; 각각 서열번호 63 및 4), 및 Hu14G8VHv1, Hu14G8VHv2 및 Hu14G8VHv3 서열(각각 서열번호 64 내지 66)과 함께 뮤린 14G8 Vh 서열(서열번호 61)의 정렬을 도 2a에 나타낸다. 첫 번째 둘러싸인 박스가 코티아 CDR-H1 및 카바트 CDR-H1의 복합물이라는 것을 제외하고(카바트 CDR-H1은 밑줄 및 볼드체 표시됨), 카바트에 의해 정해지는 CDR은 박스로 둘러싸여 있다. 정규, 베니어 또는 계면 잔기가 마우스와 인간 수용자 서열 간에 다른 위치가 치환을 위한 후보이다. 베니어/CDR 토대 잔기의 예는 표 13에서 카바트 넘버링에 의한 잔기 2, 49, 69, 71, 75, 80 및 94를 포함한다. 정규/CDR 상호작용 잔기의 예는 표 13에서 카바트 넘버링에 의해 잔기 24, 48 및 73을 포함한다. 계면/패킹(VH+VL) 잔기의 예는 표 13에서 카바트 넘버링에 의해 잔기 37, 39, 44, 47, 91, 93 및 103을 포함한다.마우스 모델 서열(1MJU_L; 서열번호 71), 인간 수용자 서열(ABA71374.1 및 ABC66952.1; 각각 서열번호 72 및 73), 및 Hu14G8VLv1, Hu14G8VLv2, Hu14G8VLv3 서열(각각 서열번호 74 내지 76)과 함께 뮤린 9D5 Vk 14G8(서열번호 70)의 정렬을 도 2b에 나타낸다. 첫 번째 둘러싸인 박스가 코티아 CDR-H1 및 카바트 CDR-H1의 복합물이라는 것을 제외하고(카바트 CDR-H1은 밑줄 및 볼드체 표시됨), 카바트에 의해 정해지는 CDR은 박스로 둘러싸여 있다. 정규, 베니어 또는 계면 잔기가 마우스와 인간 수용자 서열 간에 다른 위치가 치환을 위한 후보이다. 베니어/CDR 토대 잔기의 예는 표 14에서 카바트 넘버링에 의한 잔기 4, 35, 46, 49, 66, 68 및 69를 포함한다. 정규/CDR 상호작용 잔기의 예는 표 14에서 카바트 넘버링에 의해 잔기 2, 48, 64 및 71을 포함한다. 계면/패킹(VH+VL) 잔기의 예는 표 14에서 카바트 넘버링에 의해 잔기 36, 38, 44, 47, 87 및 98을 포함한다.
치환을 위한 후보로서 경쇄 가변 영역 내 표 15 및 표 17에 나타낸 위치의 선택을 위한 이유는 다음과 같다.
P8A: 프롤린은 구조 입체배좌에 중요하며, 프롤린의 상실 또는 획득은 구조에 영향을 미칠 수 있다. 복귀돌연변이는 "프롤린의 획득"을 회피하도록 설계되었다. 그러나, 이 위치에서 A는 인간 IgG 프레임워크에서 희귀하기 때문에, P는 일부 형태에 포함되었다.
L9P: 프롤린은 구조 입체배좌에 중요하며, 프롤린의 상실 또는 획득은 구조에 영향을 미칠 수 있다. 복귀돌연변이는 "프롤린의 상실"을 회피하도록 설계되었다. 그러나, 이 위치에서 P는 인간 IgG 프레임워크에서 희귀하기 때문에, L은 일부 형태에 포함되었다.
A19V: A 및 V는 인간 프레임워크에서 유사한 빈도를 가진다. 잔기를 둘 다 별개의 형태로 포함하였다.
N26S: L26은 경쇄 CDR1에서의 N-글리코실화 부위를 나타낸다. S로의 돌연변이는 N-글리코실화를 감소시키며, 더 이질적인 산물을 수득한다.
Y36F: 이는 계면 잔기이다. 일부 형태에서, 이 계면 잔기에서의 뮤린 잔기를 유지하기 위한 치환이 이루어졌다.
D60S: D 및 S는 인간 IgG 프레임워크 내 빈도와 유사하다. S는 가장 상업적으로 입수 가능한 치료적 항체에 의해 적용되며, 따라서 D는 일부 형태에서 S로 대체되었다.
D70A: D는 인간 IgG 프레임워크에서 A보다 훨씬 더 빈번하다. 그러나, D는 경쇄 CDR1 내 R24와 이온 결합을 형성할 것이고, 따라서 A와 D는 둘 다 별개의 형태로 포함되었다.
치환을 위한 후보로서 중쇄 가변 영역 내 표 15 및 표 16에 나타낸 위치의 선택을 위한 이유는 다음과 같다.
Q1E: 글루탐산염(E)의 파이로글루탐산염(pE)으로의 전환은 글루타민(Q)으로부터 더 서서히 일어난다. 글루타민의 pE로의 전환에서 1차 아민의 상실 때문에, 항체는 더 산성이 된다. 불완전 전환은 전하 기반 분석 방법을 이용하여 다중 피크에서 관찰될 수 있는 항체에서 이질성을 생성한다. 이질성 차이는 공정 제어가 없음을 나타낼 수 있다.
Q3K: Q는 인간 IgG 프레임워크에서 더 빈번하다. K는 덜 빈번하지만, 드물지 않다. 잔기를 둘 다 별개의 형태로 포함하였다.
W47L: 이는 계면 잔기이다. 일부 형태에서, 이 계면 잔기에서의 뮤린 잔기를 유지하기 위한 치환이 이루어졌다.
Q105T: T는 K3과 수소 결합을 형성할 수 있고, 따라서 일부 형태에서 T는 VH의 입체배좌 구조를 유지하기 위해 포함되었다.
두 인간 수용자 프레임워크(ABA71374.1 및 ABC66952.1(각각 서열번호 72 및 73))가 14G8 경쇄 가변 영역의 인간화를 위해 사용되었기 때문에, 두 수용자 프레임워크 내에서 상이한 아미노산을 갖는 특정 프레임워크 위치가 있다. 14G8 경쇄 가변 영역의 인간화된 형태는 이들 잔기에서 아미노산 중 하나를 포함할 수 있다. 이들 두 수용자가 다른 잔기의 예는 카바트 넘버링에 의한 위치 L18(S 또는 P)이다. 이 위치에서 하나의 아미노산 또는 다른 것을 선택하기 위한 이유는 다음과 같다.
L18(S 또는 P): 이 위치에서 P는 덜 빈번하다. S로의 돌연변이는 루프 왜곡을 완화하기 위한 노력을 하였다.
두 인간 수용자 프레임워크(AAD30410.1 및 AAX82494.1(각각 서열번호 63 및 4))가 또한 14G8 성숙 중쇄 가변 영역의 인간화를 위한 수용자 서열로서 사용되었기 때문에, 두 수용자 프레임워크 내에서 상이한 아미노산을 갖는 특정 프레임워크 위치가 있다. 14G8 중쇄 가변 영역의 인간화된 형태는 이들 잔기에서 아미노산 중 하나를 포함할 수 있다. 이들 두 수용자가 다른 잔기의 예는 카바트 넘버링에 의한 위치 H82a(N 또는 S), H83(R 또는 K), H84(A 또는 S), 및 H89(V 또는 M)를 포함한다. 이들 위치에서 하나의 아미노산 또는 다른 것을 선택하기 위한 이유는 다음과 같다.
H82a(N 또는 S): N 및 S는 82a 상에서 유사한 빈도를 가진다. 그들은 또한 2개의 인간 VH 주형 내의 인간 잔기이다. S 및 N을 별개의 형태로 포함하였다.
H83(R 또는 K): 프레임워크 영역 3에서 K는 CDR 결합 표면적에 가깝다. 그것을 R로 대체하는 것은 항원의 배치를 방해한다. R은 가장 빈번하며, K는 이 위치에서의 인간 프레임워크에서 세번째로 빈번하다. R 및 K를 별개의 형태로 포함하였다.
H84(A 또는 S): S 및 A는 고려되는 2개의 프레임워크 중에 존재하며, 따라서 각각의 잔기는 별개의 형태로 시도되었다.
H89(V 또는 M): V 및 M은 고려되는 2개의 프레임워크 중에 존재하며, 따라서 각각은 별개의 형태로 시도되었다.
3개의 인간화된 경쇄 가변 영역 변이체 및 3개의 인간화된 중쇄 가변 영역 변이체는 다음과 같다:
실시예 10. 인간화된 14G8 항체의 결합 역학 분석
재조합 인간 TTR F87M/L110M에 대한 3개의 인간화된 14G8 변이체 및 뮤린 14G8의 결합 역학을 표 18에 나타낸 바와 같이 바이어코어에 의해 특성규명하였다. 항-인간(GE 헬스케어)을 GE 헬스케어 항-인간 키트에 제공된 지시에 따라 아민 결합을 통해 센서칩 C5(덱스트린 사슬 없음) 상에 고정시키고 나서, 30 내지 50 RU의 분석물의 최대 결합을 보장하기 위한 수준으로 mAb를 포획하였다.  다양한 농도의 분석물(재조합 인간 TTR F87M/L110M)을 3배 희석으로 실행 완충제(HBS + 0.05% P-20, 1㎎/㎖ BSA) 중에서 50㎕/분으로 포획 리간드에 대해 통과시켰다. 각각의 농도에 대해, 결합 동안 평형상태에 도달될 뿐만 아니라 해리 동안 적어도 10%의 신호가 붕괴되는 더 고농도의 분석물을 허용하는 시간 동안 반응을 진행시켰다. 적어도 하나의 농도(가장 높거나 또는 가장 낮지 않음)를 2회 중복해서 실행하였다. KD의 적어도 10배 초과 내지 KD의 10배 미만으로 확장하는 예비 실험에 기반하여 분석물의 농도 범위를 선택하였다.
표 18은 재조합 인간 TTR F87M/L110M에 대한 마우스 14G8, 키메라-14G8, Hu14G8 H2L1, Hu14G8 H2L2, Hu14G8H2L3, 및 Hu14G8 H3L1의 결합 상수(ka), 해리 상수(kd) 및 결합 친화도 상수(KD)를 요약한다. 표 18에 나타낸 바와 같이, Hu14G8 항체 및 마우스 14G8은 유사한 TTR 결합 친화도를 가진다.
인간 TTR에 대한 14G8 항체의 항원 결합 친화도(F87M/L110M)
항체 k a (1/Ms) k d (1/s) K D (M) Rmax
뮤린 14G8 2.88E+04 5.36E-04 1.86E-08 27.13
키메라 14G8 2.51E+05 3.46E-04 1.38E-09 51.06
Hu14G8 H2L1 3.07E+05 6.93E-04 2.26E-09 42.03
Hu14G8 H2L2 3.26E+05 6.83E-04 2.10E-09 51.43
Hu14G8 H2L3 2.52E+05 3.18E-04 1.24E-09 42.41
Hu14G8 H3L1 3.86E+05 6.77E-04 1.76E-09 44.05
LCDR1에서 변화가 없는 뮤린 14G8, 키메라 14G8 및 14G8의 기타 인간화된 형태는 환원 조건 하에서 SDS-PAGE에 대해 실행하였을 때 추가적인 경쇄를 나타내었다. 서열 분석은 카바트 넘버링에 의한 잔기 26에서 LCDR1 내의 N-글리코실화 부위가 있다는 것을 나타내었다. 이 N-글리코실화 부위는 제조 동안 잠재적인 이질성 문제를 야기할 수 있다. Hu14G8VLv2 내 잔기 L26에서 N의 돌연변이는 Hu14G8VLv3을 수득하였다. Hu14G8VLv3을 갖는 인간화 항체는 환원 조건 하에 SDS-PAGE가 실행되고, 이에 의해 잠재적인 이질성 문제를 제거할 때 하나의 경쇄만을 나타낸다. Hu14G8 H2L3의 항원 결합 친화도는 뮤린 모 항체 및 키메라 항체의 친화도와 유사하다.
실시예 11. 물질 및 방법
a. 항체 일반 프로토콜
마우스를 RIBI 애주번트 중의 항원성 펩타이드 TTR-MAP, TTR89-97-N-KLH 또는 TTR89-97-C-KLH로 매주 또는 TiterMax 애주번트 중에서 매달 면역화하였다. 융합 전 3 내지 4일에, 선택 마우스를 식염수 용액 중의 면역원을 이용하여 최종 IV 부스트를 제공하였다. 비장세포를 준비하기 위해 비장을 균질화하고, 표준 전기융합 프로토콜을 이용하여 SP2/0 골수종 세포와 융합하였다. 선택 배지 중의 융합 세포를 96-웰 플레이트에서 플레이팅하고, 7 내지 10일 후에 선별하였다.
b. 항체 선별 프로토콜
혼성세포 선택은 다음의 ELISA 선별에 기반하였다: 96-웰 ELISA 플레이트를 닭 항-His, 1㎍/㎖ PBS로 코팅하고 나서, 1시간 동안 인큐베이션시켰다. 플레이트를 15분 동안 1% BSA/PBS 용액, 200㎕/웰로 차단하고, 이어서, 0.5㎍/㎖ pH4-TTR, 50㎕/웰을 첨가하고 나서, 1시간 동안 인큐베이션시켰다. pH4-TTR에 TTR을 해리/응집시키기 위해 낮은 pH(50mM 아세트산나트륨, pH 4.0)을 실시하여, TTR89-97 에피토프를 노출시킨 TTR이다. 플레이트를 TBS-T로 2회 세척하였다. 융합 플레이트로부터의 상청액을 50㎕/웰로 첨가하고 나서, 1시간 동안 인큐베이션시켰다. 0.5% BSA/PBS/TBS-T, 50㎕/웰에서 1:5,000로 희석시킨 플레이트를 TBS-T로 2회 세척하였다. 검출 항체, 염소 항-마우스(IgG1, 2a, 2b, 3 특이적)-HRP를 첨가하고 나서, 1시간 동안 인큐베이션시켰다. 최종적으로, 플레이트를 TBS-T 및 TMB 기질을 이용하여 5회 세척하였고, 100㎕/웰을 첨가하였다. 15분 후에, 2N 황산, 50㎕/웰을 이용하여 기질 연구를 중단하였다. 플레이트를 450㎚에서 판독하였다. O.D. > 1.0로 선택하고 나서, 세포를 24-웰 플레이트에 옮겼다. 3일 성장 후에, 상기 분석을 이용하여 클론을 반대 선별하여 결합을 확인하고, 음성 반대 선별로서 천연 TTR을 pH4-TTR로 대체하고, TTR의 비천연 형태에 특이적인 TTR mAb를 생성하는 클론의 선택을 허용하였다.
c. 항체 발현 프로토콜
인간화된 단클론성 항체 서열을 운반하는 CMV 유발 경쇄 및 중쇄 플라스미드를 CHO-S1 세포(라이프 테크놀로지(Life Technology)) 내로 형질감염시켰다. 선택 풀을 제조하기 위해 이중 선택을 적용하였다. 조건화 배지를 역가에 대해 분석하고, 결합하고 나서, SDS-PAGE/웨스턴 블롯팅에 의해 분석하였다. 클론픽스 시스템(Clonepix system)(몰레큘러 디바이시즈(Molecular Devices))을 이용하는 클론 생성을 위해 선택 풀을 사용하였다. 클론을 항체 역가에 기반하여 랭킹하였다. 선택 클론을 확장시키고, 보관하였다.
가장 높게 생성되는 클론을 진탕 플라스크에서 확장시키고 나서, 배양물을 사용하여 10 내지 25ℓ 웨이브 백(Wave bag) 배양물을 접종하였다. 글루타맥스(Glutamax)(라이프 테크놀로지사로부터의 배지 및 글루타맥스)로 보충한 프리스타일(FreeStyle)-CHO, CD OptiCHO 및 프리스타일 F17 발현 배지의 혼합물을 진탕 플라스크뿐만 아니라 웨이브 백 배양물에 대해 사용하였다. 일정한 교반 하에 37℃, 7% CO2에서 웨이브 바이오리액터(Wave Bioreactor)(GE 헬스케어)를 이용하여 배취 배양물을 제조하였다. 세포수, 생존도 및 항체 생성을 주기적으로 모니터링하기 위해 샘플을 회수하였다. 필요하다면, 세포 부스트(Cell Boost)(하이클론(HyClone))로 보충하였다. 세포 생존도가 90% 미만으로 쇠퇴하기 시작하였을 때(5 내지 7일), 배취 배양물을 채취하였다.
d. 항체 정제 프로토콜
현탁액 중의 세포가 4℃에서 중력을 통해 웨이브 백의 바닥으로 침강되는 것을 처음 허용한 후에 세포 배양물을 채취하였다. 채취한 배지를 뎁스 필터(depth filter)(밀리포어사(Millipore)의 밀리스탁 포드 COHC(Millistak Pod COHC))를 통해 정화하고 나서, 접선유동 여과(밀리포어사의 펠리콘(Pelicon) 2PLC 30K)에 의해 10배 농축시키고, 0.2㎛ 필터(밀리포어사의 옵티캡(Opticap) XL)를 통해 멸균 여과시켰다. 이어서, 농축시킨 조건화 배지를 FPLC(GE 라이프사이언시즈사(GE Lifesciences) 아크타 아반트(Akta Avant))를 이용하여 1xPBS, pH 7.4에서 사전 평형상태로 만든 단백질 G 세파로스 패스트 플로(Protein G Sepharose Fast Flow) 칼럼(GE 라이프사이언시즈) 상에 부하하였다. OD280이 기준에 도달될 때까지, 비결합 단백질을 1xPBS, pH 7.4의 5 내지 10개 칼럼 용적을 갖는 칼럼으로 세척하였다. IgG 용리 완충제(써모 사이언티픽)의 2칼럼 용적을 갖는 칼럼으로부터 결합된 항체를 용리시켰다. 용리 분획을 수집하고 나서, pH를 2M 트리스, pH 9.0(60㎕/1㎖ 용리)로 중화시켰다.
항체-함유 분획을 풀링하고 나서, 1xPBS, pH 7.4에 대해 4℃에서 밤새 투석시켰다. 이어서, 투석한 샘플을 0.2㎛ PES 필터를 통한 한외여과에 의해 멸균시키고 나서, 4℃에서 저장하였다. 단백질 표준으로서 소 감마-글로불린(써모 사이언티픽)을 이용하여 바이신콘닌산(bicinchoninic acid: BCA)에 의해 최종 단백질 농도를 결정하였다.
e. 재조합 TTR 발현 및 정제 프로토콜
F87M/L110M 이중 돌연변이를 함유하는 TTR 삽입물(Met-hTTR-(His)6 또는 TTR 변이체를 함유하는 pET21a(+) 플라스미드를 이용하여 이콜라이(BL21-A1) 세포를 형질전환하였다. 100㎍/㎖ 암피실린을 함유하는 2YT 브로스에서 세포를 성장시켰다. 1mM IPTG 및 005% 아라비노스의 존재 하에 20℃에서 TTR의 발현을 밤새 유도하였다.
4000 x g에서 10분 동안 원심분리에 의해 세포를 수집하고 나서, 사용할 때까지 -80℃에서 저장하였다. 10 내지 15g 세포 펠렛을 해동시키고 나서, LV-1 고전단 프로세서(마이크로플루이딕스 인코포레이티드(Microfluidics, Inc.))를 통한 가공에 의해 50㎖ 완충제 A(500mM NaCl, 20mM 이미다졸을 함유하는 1xPBS) 중에 용해시켰다. 용해 세포를 12,000 x g에서 15분 동안 원심분리시키고 나서, His-Trap HP 칼럼(GE 라이프사이언시즈) 상에서 정제 전에 0.2㎛ PES 필터를 통해 여과시켰다. 부하 후에, 칼럼을 10 c.v.의 완충제 A로 세척하고 나서, 완충제 B(500mM NaCl, 500mM 이미다졸과 함께 1xPBS)로 용리하였다. TTR에 대응하는 피크 분획을 수집하고 나서, 1xPBS에 대해 투석하고, 사용할 때까지, -80℃에서 저장하였다.
f. TTR 항원 제조
1x PBS 중에서 최종 농도 2.5㎍/㎖까지 재조합 TTR-6His의 농축 저장액을 희석시킴으로써 천연 TTR 항원을 제조하였다. pH 3.95, 72시간 동안 실온에서 50mM 아세트산나트륨 중의 0.2㎎/㎖의 농도로 재조합 TTR을 인큐베이션함으로써 pH4-처리 TTR을 생성하였다. 이들 조건 하에서, TTR을 천연 TTR과 구조적으로 별개인 응집된 형태와 TTR 단량체의 혼합물로 해리한다. 이어서, 분석에서 사용 직전에 1xPBS에서 2.5㎍/㎖의 최종 농도로 pH4-TTR을 희석시켰다. 1xPBS에서 1시간 동안 1.0㎍/㎖ 닭-항-his 다클론성 항체(에이비캠(Abcam) #Ab9107)의 웰 당 50㎕로 96-웰 플레이트(코스타(Costar) #3690)를 실온에서 코팅하였다. 코팅 용액을 버리고 나서, 1xPBS(G-바이오사이언시즈(G-Biosciences) #786-193) 중에서 1시간 동안 희석시킨 1x BSA-함유 차단 완충제의 웰 용적 당 250㎕로 플레이트를 차단하였다.
g. ELISA 프로토콜
코팅 및 차단시킨 96-웰 플레이트를 실온에서 1시간 동안 2.5㎍/㎖ TTR 항원(천연 TTR 또는 pH4-TTR)의 웰 당 50㎕로 처리하였다. 이어서, 세척 완충제(0.05% 트윈-20을 함유하는 1x 트리스 완충 식염수)의 웰 당 250㎕로 플레이트를 2회 세척하였다. 이어서, 세척 플레이트를 0.31 내지 2.5㎍/㎖ 범위의 농도에서 1시간 동안 적절한 항-TTR 단클론성 항체의 웰 당 50㎕로 처리하였다.
처리한 플레이트를 웰 당 250㎕ 세척 완충제로 3회 세척하였다. 세척 후에, 1xPBS 중의 퍼옥사이드-컨쥬게이팅된 염소-항-마우스(잭슨 이뮤노리서치(Jackson ImmunoResearch) #115-035-164)의 1:5,000 희석물을 포함하는 검출 항체의 웰 당 50㎕로 플레이트를 1시간 동안 처리하였다. 이어서, 웰 당 100㎕ TMB 기질(락랜드(Rockland))의 첨가 전에 플레이트를 3회 세척하였다. 1N H2SO4의 웰 용적 당 50㎕로 퀀칭하기 전에 실온에서 15분 동안 HRP 반응을 진행하였다. 분광학적 흡광도를 450㎚ 파장에서 측정하였다.
h. SDS-PAGE
SDS-폴리아크릴아마이드 겔 상의 전기영동을 다음과 같이 수행하였다. 1xLDS 샘플 완충제(라이프 테크놀로지) 중의 0.1 내지 1㎍ TTR 또는 pH 4.0-TTR을 10% NuPAGE 비스-트리스 겔 상에 부하하고 나서, 일정한 90V에서 105분 동안 MES 완충제 중에서 전기영동을 실시하였다. 전기영동 후에, 겔을 인스턴트 블루(Instant Blue)(엑스페데온(Expedeon))에서 염색하거나 또는 웨스턴 블롯 분석을 위해 나이트로셀룰로스 필터에 옮겼다.
i. 천연-PAGE
천연 트리스-글리신 겔 상의 전기영동을 다음과 같이 수행하였다. 1x트리스-글리신 샘플 완충제(라이크 테크놀로지즈) 중의 0.1 내지 1㎍ TTR 또는 pH 4.0-TTR을 10 내지 20% 트리스-글리신 겔 상에 부하하고 나서, 일정한 120V에서 105분 동안 1x 천연 트리스-글리신 실행 완충제 중에서 전기영동을 실시하였다. 전기영동 후에, 겔을 인스턴트 블루(Instant Blue)(엑스페데온(Expedeon))에서 염색하거나 또는 웨스턴 블롯 분석을 위해 나이트로셀룰로스 필터에 옮겼다.
j. 웨스턴 블롯
SDS- 또는 천연- PAGE 겔을 나이트로셀룰로스 필터 페이퍼(iBlot, P7 프로그램) 상에서 블롯팅하고 나서, 차단 완충제(리퀴르(Licor))로 30분 동안 차단하였다. 이어서, 필터를 1시간 동안 실온에서(또는 밤새 4℃에서) 차단 완충제 중에서 0.5㎍/㎖ 1차 항체에서 인큐베이션시킨 다음, 1xTBS로 3회, 10분 세척한다. 차단 완충제 중에서 1:20,000로 희석시킨 IRDye 800CW-컨쥬게이팅 염소-항 마우스 2차에 필터를 넣었다. 1시간 동안 실온에서 2차 항체 용액 중에서 필터를 인큐베이션한 후에, 필터를 세척하고 나서, 오디세이(Odyssey) CLx 적외선 이미저(리코르(Licor)) 상에서 영상화하였다.
k. TTR 섬유 형성 분석 프로토콜
50mM 아세트산나트륨, pH 4.8 중의 3.6μM(0.2㎎/㎖) TTR-Y78F의 용액을 1.4μM(0.2㎎/㎖) 미스-TTR 항체 또는 아이소타입 대조군의 존재 하에 37℃에서 72시간 동안 인큐베이션시켰다. 인큐베이션 후에, 5X 몰 과량의 티오플라빈-T를 혼합물에 첨가하고 나서, 30분 동안 결합시켰다. 형광 측정을 방출 파장 480㎚와 함께 440㎚로 설정한 여기 파장에서 측정하였다. 0% 저해를 아이소타입 대조군 항체의 존재 하에 형광 광도(83 a.u.)로서 설정하였고, 100% 저해지점을 TTR-Y78F 단백질(38 a.u.)이 없는 형광으로서 설정하였다.
TTR-V122I의 저장 용액(대략 5㎎/㎖)을 최종 농도 0.2㎎/㎖ TTR, 30mM 아세트산나트륨, 5mM 인산나트륨, 100mM KCl, 1mM EDTA, 0.02% 아자이드나트륨인 완충제 내로 희석시켰고, pH 7.2에서 단클론성 항체의 농도를 달리하였다. 이 샘플을 pH 4.5에서 3시간 동안 실온에서 동일한 완충제에 대해 투석시켰다. 이어서, 샘플을 37℃에서 72시간 동안 인큐베이션시켰다. 인큐베이션 후에, 5X 몰 과량의 티오플라빈-T를 혼합물에 첨가하고 나서, 30분 동안 결합시켰다. 티오플라빈-T 형광을 포톤 테크놀로지 인터내셔날(Photon Technology International) C60 분광 형광계를 이용하여 모니터링하였다. 광전자증배관 이득을 달리하였고, 신호 대 노이즈를 최대화하기 위해 여기 및 방출 슬릿폭을 2 내지 4㎚로 설정하였다. 여기 및 방출 파장으로서 각각 430㎚ 및 480㎚를 이용하여 형광 측정을 하였다.
l. 심장 조직 샘플
ATTR 돌연변이의 진단이 확인된 심장 조직의 새로운 냉동 및 파라핀-처리 블록을 인디애나 유니버시티(Indiana University)의 메릴 벤슨(Merrill Benson) 박사로부터 얻었다. 샘플은 8개의 새로 냉동한 샘플 및 6개의 FFPE 샘플을 포함하였고, 각각의 샘플을 ATTR 또는 일부 다른 심장 아밀로이드증으로 진단하였다. 조직의 진단을 TTR 항체에 의한 특성규명 전에 카파 및 람다 경쇄 및 아밀로이드 A에 대한 항체에 의한 IHC 염색을 통해 프로테나(Prothena)에서 추가로 확인하였다.
m. 면역조직화학
가볍게 파라폼알데하이드 고정시킨, 10㎛ 슬라이드-장착 동결절편 상에서 그리고 5㎛ 파라핀 절편상에서 면역조직화학을 수행하였다. 이뮤노퍼옥시다제 방법은 원칙적 검출 시스템이었고, 이를 결합 중합체 정련 검출 키트(Bond Polymer Refine Detection Kit)(DS980, 레이카 바이오시스템즈(Leica Biosystems))를 이용하여 레이카 본드 Rx(Leica Bond Rx)(일리노이주 버팔로 그로브에 소재한 레이카 바이오시스템즈(Leica Biosystems)) 상에서 수행하였다. 1차 항체를 1시간 동안 (표 2의 농도에 따라) 인큐베이션시킨 다음, 항-마우스 및 항-토끼 중합체 HRP-링커 항체 컨쥬게이트와 함께 인큐베이션시켰다. 갈색 침착물을 생성하는 DAB 색원체를 이용하여 염색을 시각화하였다. 슬라이드를 헤마톡실린을 이용하여 반대염색하고 나서, 일련의 상승 알코올 중에서 탈수하고, 자일렌 중에서 클리어런스하고 나서, 사이토실(CytoSeal) 60(미시간주 캘러머주에 소재한 리차드 앨런 사이언티픽(Richard Allen Scientific))으로 커버슬립하였다. 음성 대조군은 비면역 IgG 아이소타입 대조군 또는 1차 항체의 생략을 이용하여 인접한 절편 상에서 전체 면역조직화학적 절차를 수행하는 것으로 이루어졌다.
n. 아밀로이드의 입증: 콩고 레드 및 티오플라빈 T 염색
아메리칸 마스터 테크(American MasterTech)(캘리포니아주 로디에 소재)로부터의 키트를 이용하여 조직 내 TTR 아밀로이드를 입증하기 위해 콩고 레드 염색을 수행하였다. 제조업자의 절차에 따라 염색을 수행하였다. 슬라이드를 1시간 동안 콩고 레드 용액 중에서 염색한 다음 대략 15초 동안 1% 수산화나트륨 중에서 분화시켰다. 이어서, 슬라이드를 실행 중인 물 중에서 린스하고 나서, 증가되는 농도의 알코올 시리즈를 통해 탈수시키고, 자일렌의 3회 변화를 통해 클리어런스하고, 사이토실(CytoSeal) 60으로 커버슬립하였다.
변형된 티오플라빈 T 염색 프로토콜(Schmidt et al 1995.)을 사용하여 조직 내 TTR 아밀로이드의 존재를 결정하였다. 간략하게, 슬라이드를 마이어(Mayer) 헤마톡실린으로 반대염색하고 나서, 실행 중인 물 중에서 린스하고, 50% 에탄올 중에서 10분 동안 0.015% 티오플라빈 T(T3516-25G; 미주리주 세인트 루이스에 소재한 시그마-알드리치사(Sigma-Aldrich))의 여과 용액으로 염색하였다. 이어서, 슬라이드를 실행 중인 물 중에서 린스하고 나서, 10분 동안 1%(v/v) 아세트산 중에서 분화시키고, 수 중에서 3회 린스하였다. 슬라이드를 프로롱 골드(ProLong Gold)(라이프 테크놀로지즈)로 커버슬립하기 전에 공기 건조시켰다.
o. 영상 분석
올림푸스(Olympus) BX61 현미경, 하마마츠 나노주머(Hamamatsu Nanozoomer) 2.0HT 디지털 슬라이드 스캐너 또는 레이카(Leica) SPE 스펙트럼 공초점 시스템 중 하나를 이용하여 슬라이드를 영상화하였다. 영상을 수집하고 나서, TIFF 파일로서 저장하였다.
p. SDS-PAGE/웨스턴에 의한 인간 혈장 샘플의 분석
V30M ATTR에 대해 확인한 환자로부터의 6개 혈장 샘플(샘플 #21, #22, #23, #24, #25, #27) 및 정상 대상체로부터의 6개 샘플(샘플 #11, #12, #15, #18, #19, #20)을 엠. 사라이바(포르투갈에 소재한 포르토 유니버시티(Porto University))로부터 얻었다. 샘플 #C6은 상업적 공급업자(바이오레클라메이션IVT(BioreclamationIVT))로부터 얻은 정상 인간 혈청 샘플이었다. 이들 혈장 샘플을 다음과 같이 9D5 또는 5A1을 이용하여 SDS-PAGE 및 웨스턴 블롯에 의해 분리하였다. 1.4㎕ 용적의 혈장을 환원제(라이프 테크놀로지즈) 없이 1xLDS 샘플 완충제에 1:8로 희석시켰다. 샘플에 SDS-PAGE 분리를 실시하고 나서, 앞서 기재한 바와 같이 0.5㎍/㎖ 9D5 또는 5A1로 웨스턴 블롯팅하였다.
q. 메조스케일 디스커버리(MSD) 플레이트 분석에 의한 인간 혈장 샘플의 분석
96-웰 MSD 플레이트를 PBS 중에서 4㎍/㎖의 농도에서 단클론성 항체 6C1로 코팅하고 나서, 실온에서 2시간 동안 진탕하면서 또는 4℃에서 밤새 인큐베이션시켰다. 플레이트를 1xTBST로 3회 세척한 후에, 1시간 진탕 동안 3% MSD 차단제 A 용액, 웰 당 150㎕로 차단하였다. 0.6% 무 글로불린 소 혈청 알부민, 1.5mM 일염기성 인산나트륨, 8mM 이염기성 인산나트륨, 145mM 염화나트륨, 0.05% 트리톤 X-405 및 0.05% 티메로살을 포함한 샘플 완충제 중에서 1:10으로 희석시킨 인간 혈장 샘플의 웰 당 30㎕ 용적을 차단시킨 MSD 플레이트에 1시간 동안 첨가하였다. 플레이트를 1xTBST를 이용하여 3회 세척하였다. 샘플 완충제 중의 1㎍/㎖ 설포-태그된 검출 항체(다코 다클론성 항체의 8C3 총 TTR 항체 중 하나)의 웰 당 50㎕ 용적을 진탕하면서 실온에서 1시간 동안 첨가하였다. 플레이트를 1xTBST로 3회 세척한 다음, 웰 당 150㎕의 1X 판독 완충제 T 용액(메조 스케일 디스커버리)을 첨가하였다. 이어서, 플레이트를 MSD 섹터 이미저(MSD Sector imager)에서 판독하였다.
r. MSD 표준 곡선의 생성
인간 혈장 샘플 중에 존재하는 비천연, 6C1-반응성 TTR 단백질의 양을 정량화하기 위해, 6C1-반응성 TTR 표준으로서 재조합 TTR-F87M/L110M을 이용하여 MSD 표준 곡선을 생성하였다. 이 TTR 변이체는 사량체 형성을 방지하고 단량체 내 단백질을 유지하는 2개의 아미노산을 함유한다(Jiang et al. (2001) Biochemistry 40, 11442-11452). 그렇게 해서, 이 TTR 변이체는 모든 미스-TTR mAb에 의해 인식되며, 따라서 MSD 분석에서 기준 표준으로서 사용에 매우 적합하다.
표준 곡선을 생성하기 위해, 96-웰 MSD 플레이트를 PBS 중에서 4㎍/㎖의 농도에서 미스-TTR 항체 6C1로 코팅하고 나서, 실온에서 2시간 동안 진탕하면서 또는 4℃에서 밤새 인큐베이션시켰다. 플레이트를 1xTBST로 3회 세척한 후에, 1시간 진탕 동안 3% MSD 차단제 A 용액, 웰 당 150㎕로 차단하였다. 이어서, 차단한 플레이트를 웰 당 50㎕의 1:5로 연속 희석시킨 25㎍/㎖ TTR-F87M/L110M으로 1시간 동안 처리하였고, 최종 희석은 완충제 블랭크이다. 플레이트를 1xTBST로 3회 세척한 후에, 진탕하면서 실온에서 1시간 동안 웰 당 50㎕ 용적의 1㎍/㎖ 설포-태그 검출 항체(8C3-설포 태그 또는 다코 pAb-설포태그)를 첨가하였다. 8C3 mAb와 다코 항체는 둘 다 설포태그에 결합하였고, 검출 항체로 사용할 수 있는데, 그들이 총 TTR에 결합하고, 입체배좌 특이적이지 않기 때문이다.
검출 항체에 의한 처리 후에, 플레이트를 웰 당 150㎕ 용적의 1xTBST로 3회 세척한 다음, 웰 당 150㎕의 1x 판독 완충제 T(MSD)를 첨가하였다. 플레이트를 MSD 섹터 이미저에서 판독하고 나서, 얻어진 TTR F87M/L110M 교정 곡선을 생성하였다.
s. 식세포작용 분석
TTR-F87M/L110M, 천연 TTR 또는 낮은-pH 응집 TTR-V30M의 1-㎎/㎖ 샘플을 제조업자의 명세서(써모 사이언티픽)에 따라 단백질:염료비 대략 15:4로 15분 동안 37℃에서 pHrodo 염료에 아민 결합시켰다. 10K 분자량 컷오프(피어스 써모사(Pierce Thermo))로 회전 농축기에서 정용여과에 의해 과량의 pHrodo-표지를 제거하고 나서, pHrodo-TTR을 1x PBS 중에서 재현탁시켰다.
THP-1 인간 단핵구를 세포 배양물 배지(RMPI, 10% 낮은 IgG 혈청, 페니실린/스트렙토마이신)에서 배양시켰다. 1:1 용적비로 5E+04 THP-1 세포의 첨가 전에 30분 동안 세포 배양물 배지에서 37℃에서 40㎍/㎖ 항체와 함께 pHrodo-표지된 TTR의 20㎍/㎖ 분취액을 별도로 사전 인큐베이션하였다. 조직 배양물 인큐베이션(3시간) 후에, 세포를 세포 배양물 배지로 3회 세척하고 나서, 10분 동안 배지에서 인큐베이션시키고, 이어서 2회 세척하고 나서, FACS 완충제(PBS 중의 1% FBS) 중에서 재현탁시켰다. 텍사스 레드(Texas Red) 채널 필터를 이용하여 레드 pHrodo 형광 강도를 검출하였다. 형광현미경을 유사한 방식으로 수행하였다. FACS 분석 후에, 남아있는 세포를 유리 챔버 슬라이드에 옮기고 나서, 도립현미경에 의해 영상화하였다. 각각의 개개 세포의 상대적 형광 강도를 평균화함으로써 평균 형광 강도를 자동으로 계산하였다.
실시예 12. THP-1 세포에 의한 TTR의 항체-의존적 흡수
TTR-F87M/L110M을 pH-민감 형광 염료 pHrodo로 공유적으로 표지하였다. pHrodo 태그는 생리학적 pH 하에 최소 형광을 갖지만, 형광은 식세포 작용 소포낭의 낮은 pH 환경 내로 탐식(engulfment) 시 향상되며, 따라서 태그된 입자의 세포 흡수를 표시한다. 14G8 또는 아이소타입 대조군 항체 중 하나에 의한 처리 후에 THP-1 단핵구를 pHrodo-태그된 TTR(천연 또는 비천연, TTR-F87M/L110M)에 첨가하였다. 천연 TTR과 함께 인큐베이션한 항체에 의해, 그리고 비천연 TTR과 함께 대조군 항체의 인큐베이션 후에 낮은 수준의 형광을 관찰하였다. 그러나, 비천연 TTR과 함께 14G8 인큐베이션 후에(도 7A), 형광은 증가되었는데 이는 비천연 TTR이 기저 조건 하에 효율적으로 식세포 작용하지 않았지만, 그러나 미스-TTR 항체의 첨가는 비천연 TTR의 식세포작용을 특이적으로 유발한다는 것을 시사한다.
TTR의 pHrodo-표지된, 거대 응집 피브릴 입자의 용량 의존적 식세포작용을 또한 각각의 미스-TTR mAb에 대해 입증하였다(도 7B). 최대 항체-의존적 흡수는 각각의 미스-TTR mAb에 대해 가변적이었고(6C1>9D5 14G8> 5A1), 5 내지 10㎍/㎖의 mAb 농도에서 안정기에 도달되었다. 가변 항체 효능은 4개의 미스-TTR mAb 중에서 아이소타입 차이 및 효과기 기능의 관련된 변화를 반영한다. 비처리 세포 또는 IgG1 아이소타입 대조군으로 처리한 것을 포함하는 대조군은 각각 검출 가능한 또는 향상된 형광을 입증하지 않았다.
실시예 13. 유전자 이식 마우스 모델에서 미스-TTR 항체의 평가
응집된 hTTR의 결합 및 제거에서 항-TTR 항체의 효능을 평가하기 위해 인간화된 유전자 이식 마우스 모델 V30M hTTR에서 생체내 연구를 수행한다(Inoue et al., (2008) Specific pathogen free conditions prevent transthyretin amyloidosis in mouse models. Transgenic Research 17:817-826).
표준 절차를 이용하여 유전자 이식 마우스를 사육하고, 그들의 순환 hTTR 수준을 ELISA에 의해 평가한다. 후속 효능 연구를 위해 200 내지 400㎍/㎖의 hTTR의 혈청 수준을 갖는 마우스를 사용한다. 연구의 제1 설정은 유전자 이식 마우스에서 hTTR의 천연 침착을 시험한다. hTTR 침착물의 검출을 12개월령에 시작하고, 이후에 3 내지 6개월마다 반복한다. 일단 허용 가능한 수준의 응집물이 유전자 이식 마우스에서 보이면, 효능 연구를 개시한다. 동물을 3개의 처리군(n=10/그룹)으로 나누고 나서, 비히클, 대조군 항체(아이소타입 대조군, 10 mpk) 또는 항-hTRR 항체(10 mpk)의 IP 용량으로 4주 동안 매주 처리한다. 마지막 처리의 1주 후에, 마우스를 안락사시키고 나서, 조직을 수집하고, 가공한 다음에, 염색하여 남아있는 TTR 침착물의 수와 크기를 평가한다. 정량적 방법 및 통계를 사용하여 그룹 중에서 보이는 클리어런스 정도를 결정한다.
대안의 접근에서, hTTR 응집물을 시험관 내에서 준비하고, 이어서, 새로운 응집물의 침착을 파종하기 위해 유전자 이식 마우스의 신장에 주사한다. 본 출원인은 이들 제제의 주사가 예측 가능한 방식으로 새로운 응집물의 침착을 더 신속히 처리할 수 있다는 것을 결정하였다. 이들 발견에 기반하여, 동물에게 진정제를 투여하고, 좌측 신장을 노출시키고 나서, 사전 응집된 hTTR 물질을 신장의 피질에 주사하였다. 적합한 회복 기간 후에, 동물을 3개의 처리군(n=10/그룹)으로 나누고 나서, 비히클, 대조군 항체(아이소타입 대조군, 10 mpk) 또는 항-hTRR 항체(10 mpk)의 IP 용량으로 48주 동안 매주 처리한다. 마지막 처리의 1주 후에, 마우스를 안락사시키고 나서, 신장을 수집하고, 가공한 다음에, 염색하여 TTR 침착물의 수와 크기를 평가한다. 정량적 방법 및 통계를 사용하여 그룹 중에서 보이는 변화 정도를 결정한다.
실시예 14. 매트리겔(Matrigel) 이식물 모델에서 미스-TTR 항체의 평가
본 출원인은 사전 응집된 hTTR이 매트리겔(BD 바이오사이언시즈(BD Bioscience), 카탈로그 번호 354263)에서 현탁되어, 고형화되고, 이어서 마우스의 피하에 놓일 수 있다는 것을 결정하였다. 이식 후 4주에, 매트리겔 이식물은 그의 그조를 유지하였고, 응집된 hTTR은 여전히 이식물 내에 존재하였다. 게다가, 이식물은 마우스에 의해 잘 용인되었고, 항-hTTR 항체는 매트리겔 중에서 현탁되는 응집물에 침투하고 결합할 수 있었다. 이들 발견에 기반하여, 항체 효능 연구를 수행한다. 동물에 진정제를 투여하고, 매트리겔에서 현탁시킨 사전 응집된 hTTR을 함유하는 이식물을 마우스에 피하로 넣었다. 적합한 회복 기간 후에, 동물을 3개의 처리군(n=10/그룹)으로 나누고 나서, 비히클, 대조군 항체(아이소타입 대조군, 10 mpk) 또는 항-hTRR 항체(10 mpk)의 IP 용량으로 24주 동안 매주 처리한다. 마지막 처리 후에, 마우스를 안락사시키고 나서, 이식물을 함유하는 피부를 수집하고 나서, 가공하고, 이어서, 조직학 및/또는 생화학적 방법을 이용하여 남아있는 TTR 침착물의 양을 평가하였다. 정량적 분석 및 통계를 사용하여 그룹 중에서 보이는 클리어런스 정도를 결정한다.
SEQUENCE LISTING <110> PROTHENA BIOSCIENCES LIMITED <120> ANTI-TRANSTHYRETIN ANTIBODIES <130> WO/2016/120810 <140> PCT/IB2016/050415 <141> 2016-01-28 <150> US 62/109,002 <151> 2015-01-28 <150> US 62/266,556 <151> 2015-12-11 <160> 118 <170> FastSEQ for Windows Version 4.0 <210> 1 <211> 124 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> m9D5VH <400> 1 Glu Val Lys Leu Val Glu Ser Gly Gly Gly Leu Val Gln Pro Gly Gly 1 5 10 15 Ser Leu Lys Leu Ser Cys Ala Ala Ser Gly Phe Thr Phe Ser Ser Tyr 20 25 30 Thr Met Ser Trp Val Arg Gln Thr Pro Glu Lys Arg Leu Glu Leu Val 35 40 45 Ala Glu Ile Ser Asn Ser Gly Asp Thr Thr Tyr Tyr Pro Asp Thr Val 50 55 60 Lys Gly Arg Phe Thr Phe Ser Arg Asp Asn Ala Lys Asn Thr Leu Tyr 65 70 75 80 Leu Gln Met Ser Ser Leu Lys Ser Glu Asp Thr Ala Met Tyr Tyr Cys 85 90 95 Ala Arg His Tyr Tyr Tyr Gly Gly Gly Tyr Gly Gly Trp Phe Phe Asp 100 105 110 Val Trp Gly Thr Gly Thr Thr Val Thr Val Ser Ser 115 120 <210> 2 <211> 123 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> 1SEQ_H 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ggactctact ccctcagcag cgtggtgacc gtgccctcca gcagcttggg cacccagacc 240 tacatctgca acgtgaatca caagcccagc aacaccaagg tggacaagag agttgagccc 300 aaatcttgtg acaaaactca cacatgccca ccgtgcccag cacctgaact cctgggggga 360 ccgtcagtct tcctcttccc cccaaaaccc aaggacaccc tcatgatctc ccggacccct 420 gaggtcacat gcgtggtggt ggacgtgagc cacgaagacc ctgaggtcaa gttcaactgg 480 tacgtggacg gcgtggaggt gcataatgcc aagacaaagc cgcgggagga gcagtacaac 540 agcacgtacc gtgtggtcag cgtcctcacc gtcctgcacc aggactggct gaatggcaag 600 gagtacaagt gcaaggtctc caacaaagcc ctcccagccc ccatcgagaa aaccatctcc 660 aaagccaaag ggcagccccg agaaccacag gtgtacaccc tgcccccatc ccgggaggag 720 atgaccaaga accaggtcag cctgacctgc ctggtcaaag gcttctatcc cagcgacatc 780 gccgtggagt gggagagcaa tgggcagccg gagaacaact acaagaccac gcctcccgtg 840 ctggactccg acggctcctt cttcctctat agcaagctca ccgtggacaa gagcaggtgg 900 cagcagggga acgtcttctc atgctccgtg atgcatgagg ctctgcacaa ccactacacg 960 cagaagagcc tctccctgtc cccgggtaaa 990 <210> 107 <211> 321 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Human kappa light chain constant region <400> 107 cgaactgtgg ctgcaccatc tgtcttcatc ttcccgccat ctgatgagca gttgaaatct 60 ggaactgcct ctgttgtgtg cctgctgaat aacttctatc ccagagaggc caaagtacag 120 tggaaggtgg ataacgccct ccaatcgggt aactcccagg agagtgtcac agagcaggac 180 agcaaggaca gcacctacag cctcagcagc accctgacgc tgagcaaagc agactacgag 240 aaacacaaag tctacgcctg cgaagtcacc catcagggcc tgagctcgcc cgtcacaaag 300 agcttcaaca ggggagagtg t 321 <210> 108 <211> 318 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Human kappa light chain constant region <400> 108 actgtggctg caccatctgt cttcatcttc ccgccatctg atgagcagtt gaaatctgga 60 actgcctctg ttgtgtgcct gctgaataac ttctatccca gagaggccaa agtacagtgg 120 aaggtggata acgccctcca atcgggtaac tcccaggaga gtgtcacaga gcaggacagc 180 aaggacagca cctacagcct cagcagcacc ctgacgctga gcaaagcaga ctacgagaaa 240 cacaaagtct acgcctgcga agtcacccat cagggcctga gctcgcccgt cacaaagagc 300 ttcaacaggg gagagtgt 318 <210> 109 <211> 147 <212> PRT <213> Homo sapiens <400> 109 Met Ala Ser His Arg Leu Leu Leu Leu Cys Leu Ala Gly Leu Val Phe 1 5 10 15 Val Ser Glu Ala Gly Pro Thr Gly Thr Gly Glu Ser Lys Cys Pro Leu 20 25 30 Met Val Lys Val Leu Asp Ala Val Arg Gly Ser Pro Ala Ile Asn Val 35 40 45 Ala Val His Val Phe Arg Lys Ala Ala Asp Asp Thr Trp Glu Pro Phe 50 55 60 Ala Ser Gly Lys Thr Ser Glu Ser Gly Glu Leu His Gly Leu Thr Thr 65 70 75 80 Glu Glu Glu Phe Val Glu Gly Ile Tyr Lys Val Glu Ile Asp Thr Lys 85 90 95 Ser Tyr Trp Lys Ala Leu Gly Ile Ser Pro Phe His Glu His Ala Glu 100 105 110 Val Val Phe Thr Ala Asn Asp Ser Gly Pro Arg Arg Tyr Thr Ile Ala 115 120 125 Ala Leu Leu Ser Pro Tyr Ser Tyr Ser Thr Thr Ala Val Val Thr Asn 130 135 140 Pro Lys Glu 145 <210> 110 <211> 127 <212> PRT <213> Homo sapiens <400> 110 Gly Pro Thr Gly Thr Gly Glu Ser Lys Cys Pro Leu Met Val Lys Val 1 5 10 15 Leu Asp Ala Val Arg Gly Ser Pro Ala Ile Asn Val Ala Val His Val 20 25 30 Phe Arg Lys Ala Ala Asp Asp Thr Trp Glu Pro Phe Ala Ser Gly Lys 35 40 45 Thr Ser Glu Ser Gly Glu Leu His Gly Leu Thr Thr Glu Glu Gln Phe 50 55 60 Val Glu Gly Ile Tyr Lys Val Glu Ile Asp Thr Lys Ser Tyr Trp Lys 65 70 75 80 Ala Leu Gly Ile Ser Pro Phe His Glu His Ala Glu Val Val Phe Thr 85 90 95 Ala Asn Asp Ser Gly Pro Arg Arg Tyr Thr Ile Ala Ala Leu Leu Ser 100 105 110 Pro Tyr Ser Tyr Ser Thr Thr Ala Val Val Thr Asn Pro Lys Glu 115 120 125 <210> 111 <211> 127 <212> PRT <213> Homo sapiens <400> 111 Gly Pro Thr Gly Thr Gly Glu Ser Lys Cys Pro Leu Met Val Lys Val 1 5 10 15 Leu Asp Ala Val Arg Gly Ser Pro Ala Ile Asn Val Ala Val His Val 20 25 30 Phe Arg Lys Ala Ala Asp Asp Thr Trp Glu Pro Phe Ala Ser Gly Lys 35 40 45 Thr Ser Glu Ser Gly Glu Leu His Gly Leu Thr Thr Glu Glu Gln Phe 50 55 60 Val Glu Gly Ile Tyr Lys Val Glu Ile Asp Thr Lys Ser Tyr Trp Lys 65 70 75 80 Ala Leu Gly Ile Ser Pro Phe His Glu His Ala Glu Val Val Phe Thr 85 90 95 Ala Asn Asp Ser Gly Pro Arg Arg Tyr Thr Ile Ala Ala Leu Leu Ser 100 105 110 Pro Tyr Ser Tyr Ser Thr Thr Ala Val Val Thr Asn Pro Lys Glu 115 120 125 <210> 112 <211> 138 <212> PRT <213> Homo sapiens <400> 112 Met Ala Ser His Arg Leu Leu Leu Leu Cys Leu Ala Gly Leu Val Phe 1 5 10 15 Val Ser Glu Ala Gly Pro Thr Gly Thr Gly Glu Ser Lys Cys Pro Leu 20 25 30 Met Val Lys Val Leu Asp Ala Val Arg Gly Ser Pro Ala Ile Asn Val 35 40 45 Ala Val His Val Phe Arg Lys Ala Ala Asp Asp Thr Trp Glu Pro Phe 50 55 60 Ala Ser Gly Lys Thr Ser Glu Ser Gly Glu Leu His Gly Leu Thr Thr 65 70 75 80 Glu Glu Glu Phe Val Glu Gly Ile Tyr Lys Val Glu Ile Asp Thr Lys 85 90 95 Ser Tyr Trp Lys Ala Leu Gly Ile Ser Pro Phe His Glu His Ala Glu 100 105 110 Val Val Phe Thr Ala Asn Asp Ser Gly Pro Arg Arg Tyr Ser Tyr Ser 115 120 125 Thr Thr Ala Val Val Thr Asn Pro Lys Glu 130 135 <210> 113 <211> 9 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Transthyretin residues 89-97 <400> 113 Glu His Ala Glu Val Val Phe Thr Ala 1 5 <210> 114 <211> 15 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Potential transthyretin immunogen <400> 114 Gly Gly Glu His Ala Glu Val Val Phe Thr Ala Gly Gly Lys Gly 1 5 10 15 <210> 115 <211> 12 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Potential transthyretin immunogen <400> 115 Cys Gly Gly Glu His Ala Glu Val Val Phe Thr Ala 1 5 10 <210> 116 <211> 12 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Potential transthyretin immunogen <400> 116 Glu His Ala Glu Val Val Phe Thr Ala Cys Gly Gly 1 5 10 <210> 117 <211> 10 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> 9D5 CDRH1 - Composite Chothia-Kabat <400> 117 Gly Phe Thr Phe Ser Ser Tyr Thr Met Ser 1 5 10 <210> 118 <211> 10 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> 14G8 CDRH1 - Composite Chothia-Kabat <400> 118 Gly Phe Thr Phe Ser Ser Tyr Thr Met Ser 1 5 10

Claims (11)

  1. 중쇄 및 경쇄를 포함하는 인간 트랜스티레틴에 결합하는 항체로서, 중쇄는 C-말단 라이신이 있거나 없는 서열번호 103의 아미노산 서열을 포함하는 중쇄 불변 영역에 융합된 서열번호 65의 아미노산 서열을 포함하는 성숙 중쇄 가변 영역을 포함하고,
    경쇄는 서열번호 105의 아미노산 서열을 포함하는 경쇄 불변 영역에 융합된 서열번호 76의 아미노산 서열을 포함하는 성숙 경쇄 가변 영역을 포함하는, 항체.
  2. 제1항에 있어서, 중쇄의 아미노산 서열은 C-말단 라이신이 있거나 없는 서열번호 82로 구성되고, 경쇄의 아미노산 서열은 서열번호 86으로 구성되는, 항체.
  3. 제1항 또는 제2항의 항체와 약학적으로 허용되는 담체를 포함하는, 트랜스타이레틴-매개 아밀로이드증을 치료하거나 예방하기 위한, 또는 트랜스타이레틴-매개 아밀로이드증의 발병을 지연시키기 위한 약학적 조성물.
  4. 제1항 또는 제2항에 기재된 항체의 중쇄 및 경쇄를 코딩하는 핵산(들).
  5. 제4항에 있어서, 성숙 중쇄 가변 영역을 코딩하는 핵산은 서열번호 92를 포함하고, 중쇄 불변 영역을 코딩하는 핵산은 서열번호 106을 포함하며,
    성숙 경쇄 가변 영역을 코딩하는 핵산은 서열번호 96을 포함하고, 경쇄 불변 영역을 코딩하는 핵산은 서열번호 108을 포함하는, 핵산(들).
  6. 제4항의 핵산(들)을 포함하는 재조합 발현 벡터(들).
  7. 제6항의 재조합 발현 벡터(들)로 형질전환된 숙주 세포.
  8. (a) 항체의 중쇄 및 경쇄를 코딩하는 핵산으로 형질전환된 세포를 배양하여 상기 세포가 항체를 분비하도록 하는 단계; 및 (b) 세포 배양 배지로부터 상기 항체를 정제하는 단계를 포함하는, 항체의 생산 방법으로서, 상기 항체는 제1항 또는 제2항의 항체인, 방법.
  9. 제1항 또는 제2항에 있어서, 대상체에서 트랜스타이레틴-매개 아밀로이드증을 진단하는 시험관내 방법에 사용하기 위한 항체로서, 상기 방법은 대상체 유래 생물학적 샘플을 항체와 접촉시키는 것을 포함하는, 항체.
  10. 제9항에 있어서, 생물학적 샘플이 혈액, 혈청, 혈장 또는 고형 조직인, 항체.
  11. 제10항에 있어서, 고형 조직이 심장, 말초신경계, 자율신경계, 신장, 눈 또는 위장관에서 유래된 것인, 항체.
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