KR20230010143A - 면역증강, 항암, 항비만, 혈당 저하, 혈중 콜레스테롤 감소 효과를 보이는 커피와 버섯 균주를 활용한 신규한 베타글루칸 제조방법 및 이 제조방법에 의해 생산된 베타글루칸 함유 추출물을 활성성분으로 하는 조성물 - Google Patents
면역증강, 항암, 항비만, 혈당 저하, 혈중 콜레스테롤 감소 효과를 보이는 커피와 버섯 균주를 활용한 신규한 베타글루칸 제조방법 및 이 제조방법에 의해 생산된 베타글루칸 함유 추출물을 활성성분으로 하는 조성물 Download PDFInfo
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Abstract
본 발명은 영지버섯, 상황버섯, 차가버섯, 꽃송이버섯 및 동충하초로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 종균을 커피 생두에 접종 발효하여 베타글루칸이 현저하게 증진된 커피 생두 및 이 생두를 이용하여 제조되는 커피 원두와 커피 추출 조성물의 제조가 가능하여 커피의 품질 내지 기능성을 향상키는 효과를 보인다.
Description
본 발명은 인간 정상 세포의 면역기능을 활성화하여 암세포의 증식과 재발을 억제하고 혈당과 혈중 콜레스테롤을 감소시키며 지질대사를 개선하여 체지방 형성과 축적을 억제하는 베타글루칸의 함량이 증진된 생두, 원두, 커피 추출물 및 그 제조 방법에 관한 것이다.
베타글루칸(β-glucan)은 다당류의 일종으로 면역 증강작용이 있으며 효모의 세포벽, 버섯류, 곡류 등에 존재하며, 인간 정상 세포의 면역기능을 활성화하여 암세포의 증식과 재발을 억제하고 혈당과 혈중 콜레스테롤을 감소시키며 지질대사를 개선하여 체지방 형성과 축적을 억제하는 물질이다.
이와 같은 다당류의 일종인 베타글루칸은 미국의 루이스 필레머(Louis Pillemer) 박사가 효모의 세포벽에서 1941년 발견하여 자이모산(Zymosan)이라 명명하였고, 1960년대 초 미국의 니콜라스 딜루지오(Nicholas Diluzio) 박사가 효모 세포벽에서 추출한 고분자 다당을 베타글루칸이라 명명하였다.
면역 증강작용이 있는 베타글루칸은 포도당 중합체로서 포도당 단위체가 1, 3위치에 β-글리코시드 결합을 기본 구조로 가지고 있으며, 포도당이 결합하는 위치에 따라 구조 및 물리 화학적 성질이 다르며, 베타글루칸은 암세포를 직접 공격하지 않고 비특이적 면역반응으로 인간의 정상 세포의 면역기능을 활성화하여 암세포의 증식과 재발을 억제하고 대식세포(macrophage)를 활성화 시켜 암세포가 있는 체내로 들어가 여러 가지 사이토카인(Cytokine)의 분비를 촉진함으로써 면역세포인 T 세포와 B 세포의 면역기능을 활성화하여 준다.
이 외에도 베타글루칸은 혈당강하 및 혈중 콜레스테롤 감소 효과가 우수하며, 지질대사를 개선하여 체지방 형성과 축적을 억제함으로써 항 비만효과를 가지고 있는 것으로 보고되고 있다.
또한 커피(coffee)는 건조한 커피콩(coffee bean)을 가공한 것이거나 또는 이에 식품첨가물을 가한 기호성 식품을 말하는 것으로 그 어원은 아라비아어 gahweh로부터 터키어인 kahveh로 옮겨져 지금의 커피가 된 것이며, 17세기 초에 유럽에 소개되어 지금까지 인기 있는 음료로 널리 퍼졌다. 커피는 식물의 종자를 정제해 볶아서 분쇄한 가공식품으로, 성분은 카페인(caffeine)과 트리고넬린(trigonelline)과 클로로젠산(chlorogenic acid)을 함유하고 있으며 이중 카페인은 중추신경이나 근육을 자극하는 작용을 한다. 따라서, 커피를 마시면 상쾌한 느낌이나 흥분이 전해지며 피로 회복이나 각성 작용이 있다. 이뇨작용이 있으며, 두통, 특히 편두통에 약효가 있다. 커피의 쓴맛은 볶을 때에 당류가 탄 캐러멜에 의해서이다.
이와 같은 커피는 천초과에 속하는 아카네라 상록 관목의 과실이다. 아프리카부터 동남아시아의 열대지역에 재배되고 있다. 원산지는 에티오피아의 아라비카종(C. arabica), 콩고 원산의 로부스타종(C. canephore의 변종 C. robusta). 아프리카 서해안 원산의 리베리카종(C. liberica)이 있다. 세계 총생산액 중 아라비카종이 80%, 로브스타종이 약 20%이고 리베리카종은 많지 않다. 아라비카종은 풍미가 우수하지만 병충해에 약한 반면, 로브스타종은 풍미나 맛은 좋은 편은 아니지만 병해에 강한 아주 튼튼한 품종이다. 수용성 성분이나 카페인의 양이 다른 품종에 비하여 많아서 인스턴트커피 제조에 많이 사용하는 품종이다. 리베리카종은 강건한 성질을 갖고 있지만 향기가 아라비카종보다 떨어지기 때문에 생산량이 감소하는 추세이다.
커피는 원두의 선별-볶음-분쇄-추출-농축-건조 등의 과정을 거쳐 제조된다. 볶는 기술은 생콩을 화력으로 볶으면 커피콩에 함유되어 있는 유분이나 당분, 향기성분이 화학변화를 일으켜서 커피의 독특한 풍미나 향기, 진한 맛이 생긴다. 적게 볶을수록 쓴맛이 증가한다. 또한. 당분은 캐러멜화해서 커피 특유의 갈색이 나온다.
상술한 바와 같은 커피는 성인 평균 하루 1잔 이상 마실 정도로 소비량이 증가하고 있으며 이와 같은 커피에 다양한 생리 활성 물질을 함유시키려는 노력이 이루어지고 있으며, 그 예로 대한민국 특허 등록 제10-1371591호를 보면, 한약재를 혼합 및 파쇄하여 분말 한약재를 준비하는 단계, 증기를 이용하여 분말 한약재를 멸균한 후, 멸균된 분말 한약재에 동충하초 균주 액을 침지(浸漬)시키고, 분말 한약재를 증숙하여 증숙 한약재를 생성하는 단계, 증숙 한약재를 멸균 처리한 후, 멸균 처리된 증숙 한약재에 황국균 균주와 폴락토올리고당을 혼합하여 발효시켜 발효 한약재를 생성하는 단계, 발효 한약재와 에틸 알코올(Ethyl Alcohol)을 혼합하고, 에틸 알코올이 혼합된 발효 한약재를 추출하여 발효 한약재 추출액을 생성하는 단계, 발효 한약재 추출액을 고령토, 거름종이, 여과기 또는 글라스-필터-4G(Glss-Filter-4G)를 이용하여 발효 한약재 추출액을 여과한 후 감압 농축하는 단계, 감압 농축된 발효 한약재 추출액과 발아 커피콩을 혼합한 후, 증기를 통해 증숙하는 단계, 증숙된 발효 한약재 추출액과 발아 커피콩에 홍국균 또는 청국균을 접종하여 발효시킨 후, 건조시켜 기능성 커피콩을 완성하는 단계를 포함하는 방법이 개시되어 있다.
본 발명은 기능성 생두, 원두 내지 커피를 개발하는 과정에서 완성된 것으로서, 본 발명이 해결하고자 하는 과제는 인간 정상 세포의 면역기능을 활성화하여 암세포의 증식과 재발을 억제하고 혈당과 혈중 콜레스테롤을 감소시키며 지질대사를 개선하여 체지방 형성과 축적을 억제하는 베타글루칸의 함량이 증진된 생두, 원두, 커피 추출물 및 그 제조 방법을 제공하는 것이다.
상기 기술적 과제를 달성하기 위하여 본 발명은
영지버섯, 상황버섯, 차가버섯, 꽃송이버섯 및 동충하초로 이루어진 종균으로부터 선택되는 어느 하나 이상의 종균을 커피 생두에 접종하여 발효시키는 것을 특징으로 하여 베타글루칸 함량이 증진된 커피 생두 제조 방법을 제공한다.
상기 본 발명에 따른 베타글루칸 함량이 증진된 커피 생두 제조 방법에 있어서, 상기 커피 생두는 발아시킨 것일 수 있다.
상기 본 발명에 따른 베타글루칸 함량이 증진된 커피 생두 제조 방법에 있어서, 상기 영지버섯, 상황버섯, 차가버섯, 꽃송이버섯 및 동충하초로 이루어진 종균으로부터 선택되는 어느 하나 이상의 종균을 효모균에 접종을 한 후에 20 내지 40℃에서 70 내지 170시간 배양한 것일 수 있다.
상기 본 발명에 따른 베타글루칸 함량이 증진된 커피 생두 제조 방법에 있어서, 상기 발효는 온도 20 내지 45℃, 습도 35 내지 70%에서 12 내지 120시간 동안 상기 커피 생두에 접종된 복합 종균을 배양하는 것일 수 있다.
다른 기술적 과제를 달성하기 위하여 본 발명은 영지버섯, 상황버섯, 차가버섯, 꽃송이버섯 및 동충하초로 이루어진 종균으로부터 선택되는 어느 하나 이상의 종균이 접종 발효되어 베타글루칸 함량이 증진된 커피 생두를 제공한다.
또 다른 기술적 과제를 달성하기 위하여 본 발명은 영지버섯, 상황버섯, 차가버섯, 꽃송이버섯 및 동충하초로 이루어진 종균으로부터 선택되는 어느 하나 이상의 종균이 접종 발효된 커피 생두를 로스팅하여 제조된 베타글루칸 함량이 증진된 커피 원두를 제공한다.
또 다른 기술적 과제를 달성하기 위하여 본 발명은 영지버섯, 상황버섯, 차가버섯, 꽃송이버섯 및 동충하초로 이루어진 종균으로부터 선택되는 어느 하나 이상의 종균이 접종 발효된 커피 생두로 추출된 베타글루칸 함량이 증진된 추출 조성물을 제공한다.
또 다른 기술적 과제를 달성하기 위하여 본 발명은 영지버섯, 상황버섯, 차가버섯, 꽃송이버섯 및 동충하초로 이루어진 종균으로부터 선택되는 어느 하나 이상의 종균이 접종 발효된 커피 생두를 로스팅하여 제조된 커피 원두로 추출된 베타글루칸 함량이 증진된 추출 조성물을 제공한다.
본 발명은 영지버섯, 상황버섯, 차가버섯, 꽃송이버섯 및 동충하초로 이루어진 종균으로부터 선택되는 어느 하나 이상의 종균을 커피 생두에 접종 발효하여 베타글루칸이 현저하게 증진된 커피 생두 및 이 생두를 이용하여 제조되는 커피 원두와 커피 추출 조성물의 제조가 가능하여 커피의 품질 내지 기능성을 향상키는 효과를 보인다.
본 발명에 따른 커피를 복용하는 경우 함량이 증진된 베타글루칸에 의해 인간 정상 세포의 면역기능을 활성화하여 암세포의 증식과 재발을 억제하고 혈당과 혈중 콜레스테롤을 감소시키며 지질대사를 개선하여 체지방 형성과 축적을 억제할 수 있으며, 부수적으로 부드러운 초콜릿 향에 돋보이는 카카오향, 연하고 깊고 풍부한 맛과 향을 느낄 수 있다.
도 1은 본 발명에 따른 커피 생두 제조 방법에 대한 흐름도이다.
도 2 내지 7은 본 발명에 따라 5종 버섯 복합 종균 접종 후 배양 상태를 시간에 따라 커피 생두 사진이다.
도 2 내지 7은 본 발명에 따라 5종 버섯 복합 종균 접종 후 배양 상태를 시간에 따라 커피 생두 사진이다.
이하, 본 발명을 실시하기 위한 구체적 내용을 첨부 도면을 참조하여 상세하게 설명하기로 한다.
본 발명은 일차적으로 인간 정상 세포의 면역기능을 활성화하여 암세포의 증식과 재발을 억제하고 혈당과 혈중 콜레스테롤을 감소시키며 지질대사를 개선하여 체지방 형성과 축적을 억제하는 베타글루칸의 함량이 증진된 커피 생두를 제조할 수 있는 방법을 제공하며, 이에 따라 제조된 커피 생두, 이 생두를 로스팅하여 제조되는 커피 원두와 커피 원두를 이용하여 추출된 커피 추출 조성물을 제공한다. 따라서, 베타글루칸의 함량이 증진된 커피 생두 제조방법을 도 1을 참조하여 우선적으로 설명하기로 한다.
도 1은 본 발명에 따른 베타글루칸 함량이 증진된 본 발명에 따른 커피 생두 제조 방법에 대한 흐름도로서 먼저 영지버섯, 상황버섯, 차가버섯, 꽃송이버섯 및 동충하초로 이루어진 버섯 복합 종균에 대하여 설명하기로 한다.
베타글루칸 함량이 증진된 커피 생두를 제조하는 방법을 다양하게 연구한 끝에 영지버섯, 상황버섯, 차가버섯, 꽃송이버섯 및 동충하초로 이루어진 종균으로부터 선택되는 어느 하나 이상의 종균을, 특히 바람직하게는 영지버섯, 상황버섯, 차가버섯, 꽃송이버섯 및 동충하초의 5종 버섯 복합 종균을 사용하는 것이 생두에서 유효하게 배양 발효되어 베타글루칸의 함량을 현저하게 증진시키는 것을 확인하여 본 발명에 적용한 것이다.
상기 영지버섯, 상황버섯, 차가버섯, 꽃송이버섯 및 동충하초로 이루어진 5종 버섯 종균은 영지버섯 균사체, 상황버섯 균사체, 차가버섯 균사체, 꽃송이버섯 균사체 및 동충하초 균사체를 배양 배지에 각각 또는 2종 이상을 동시에 혼합하여 배양하여 얻어지는 것으로 가장 바람직한 것은 배양 단계에서부터 5종을 혼합하여 복합 배양하는 것이 바람직하며, 5종을 복합 배양할 때 이들의 비율은 특별한 제한이 없으나 바람직하게는 영지버섯 균사체 100중량을 기준으로 다른 균사체는 30 내지 150중량일 수 있다(S100).
즉 2종 이상을 복합 배양할 때는 하나의 균사체 100중량을 기준으로 다른 균체를 30 내지 150중량을 혼합하여 배양하는 것이 바람직하다.
또한, 본 발명에서는 배양하여 얻어진 상 버섯 종균을 커피 생두에 직접 접종하여 배양 발효할 수 있으나, 베타글루칸의 함량을 더욱 증진하고 원활한 배양 발효를 위하여 효모균에 버섯 종균을 접종하여 배양 배지에서 20 내지 40℃에서 70 내지 170시간 배양한 것을 사용하는 것이 바람직하다.
상기 버섯 종균의 배양방법의 배양 온도, 배양 배지, 진탕 속도 및 배양기간 등 본 발명이 속하는 기술 분양 널리 알려진 것이라면 특별한 제한 없이 이용이 가능하며, 배양 배지의 예를 들면 질소원과 무기질 원이 풍부한 배지에서 활발한 생육을 보이는바, MCM 배지 또는 YMPG 배지에서 배양할 수 있다.
이어서 커피 생두에서 잔류농약, 이물질을 제거하는 세척 및 생두 멸균하는데(S200), 커피 생두의 세척 및 멸균의 방법 내지 조건은 본 발명이 속하는 기술에 분야에서 널리 알려진 것이라면 특별한 제한이 없이 이용 가능하다.
다음으로, S 200에서 세척 멸균한 커피 생두에 상기 5종 버섯 복합 종균을 접종한다(S 300). 이때 종균의 접종은 각 버섯의 종균이 액상으로 되어 있으므로 포트(200ml 또는 500ml)에 커피 생두와 종균을 넣어 쉐이킹(shaking) 함으로써 접종된다. 커피 생두와 버섯의 종균의 중량비는 특별한 제한이 없으나 1:0.05~0.30인 것이 바람직하다.
또한, 본 발명에서는 베타글루칸 함량 증가의 효율성을 높이기 위하여 커피 생두를 발아한 후에 버섯 종균을 접종할 수 있는데, 발아 방법은 본 발명이 속하는 기술 분야에 널리 알려진 것이라면 특별한 제한이 없으며, 커피 생두와 물의 중량비를 1:1.0~2.5로 하여 3시간 내지 5시간 동안 36 내지 68℃에서 침지하여 발아시키는 방법을 예로 들 수 있다.
마지막으로, 버섯 종균이 접종된 커피 생두를 배양 발효 후 건조하게 되면(S 400), 본 발명에 따른 베타글루칸이 현저하게 증가한 커피 생두 제조방법은 완료된다.
상기 배양 발효는 접종한 커피 생두를 발효기에 넣고 온도 20 내지 45℃, 습도 35 내지 70%에서 12 내지 120시간 동안 실시하는 것이 바람직하며, 배양 발효를 시작하여 대략 12 내지 24시간 후부터 시큼한 발효된 식초 향이 올라오며 커피 생두 표면에 버섯 균주가 착상하는 것을 육안으로 확인이 가능하며, 커피 생두 표면에 배양된 버섯 균주가 피어나고 시큼한 발효된 식초 향이 강하게 올라오면 발효를 멈추면 되며 이때까지의 시간이 12 내지 120시간까지 다양한 폭으로 소요될 수 있다.
상술한 배양 발효의 예로서 발아된 커피 생두에 20중량%의 5종 복합 버섯 종균을 접종한 후에 발효기에 넣고 온도 25℃, 습도 60%에서 배양 발효하여 버섯 균주가 피어나는 상태에 사진을 도 2 내지 도 7로 나타냈다.
상술한 바와 같이 제조된 커피 생두 또는 이 생두를 로스팅하여 커피 원두를 제조하는 방법, 이 생두 내지 원두를 추출하여 추출물 내지 추출 조성물을 제조하는 방법은 본 발명이 속하는 기술 분야에 널리 알려진 것이라면 특별한 제한이 없으며, 추출 용매는 물 또는 에탄올을 사용할 수 있다.
이하 실시예와 실험예를 통하여 본 발명을 상세하게 설명하기로 한다.
<실시예 1>
영지버섯 균사체, 상황버섯 균사체, 차가버섯 균사체, 꽃송이버섯 균사체 및 동충하초 균사체를 동일 중량 비율로 하여 MCM 배지에 동시에 혼합한 후 23℃에서 168시간 동안 복합 배양하여 얻어진 5종 버섯 복합 종균을 세척 멸균한 커피 생두와 함께 포트에 넣어 쉐이킹(shaking)하여 접종하였다. 이때 커피 생두와 5종 버섯 복합 종균의 중량비는 1:0.2이었다.
이어서 발효기에 온도 29℃~39℃, 습도 46~60%에서 배양 발효하여 버섯 균주가 피어나는 상태를 확인하여 발효를 종료하였으며, 종료 때까지 총 발효 시간은 120시간 이었다.
<실시예 2>
실시예 1과 동일하며 다만 커피 생두를 멸균한 후에 커피 생두와 물의 중량비를 1:2로 하여 3시간~5시간 동안 36℃ 내지 68℃에서 침지하여 발아시킨 것을 사용하여 5종 버섯 복합 종균을 접종한 것에 차이가 있다.
<실시예 3>
상기 실시예 1과 동일하며 다만 배양한 효모균에 5종 버섯 복합 종균을 접종하여 36℃에서 168시간 동안 배양하여 커피 생두에 접종한 것에 차이가 있다.
<실시예 4>
실시예 1과 동일하며 영지버섯 균사체만을 사용한 것에 차이가 있다.
<실시예 5>
실시예 1과 동일하며 상황버섯 균사체만을 사용한 것에 차이가 있다.
<실시예 6>
실시예 1과 동일하며 차가버섯 균사체만을 사용한 것에 차이가 있다.
<실시예 7>
실시예 1과 동일하며 꽃송이버섯 균사체만을 사용한 것에 차이가 있다.
<실시예 8>
실시예 1과 동일하며 동충하초 균사체만을 사용한 것에 차이가 있다.
<실시예 9>
실시예 1과 동일하며 영지버섯 균사체. 상황버섯 균사체 및 동충하초 균사체 3종만을 사용한 것에 차이가 있다.
<실시예 10>
실시예 1과 동일하며 상황버섯 균사체, 차가버섯 균사체 및 꽃송이버섯 균사체 3종만을 사용한 것에 차이가 있다.
<실시예 11>
실시예 1과 동일하며 영지버섯 균사체, 차가버섯 균사체 및 동충하초 균사체 3종만을 사용한 것에 차이가 있다.
<실시예 12>
실시예 1과 동일하며 영지버섯 균사체, 상황버섯 균사체, 차가버섯 균사체, 및 동충하초 균사체 4종만을 사용한 것에 차이가 있다.
<실시예 13>
실시예 1과 동일하며 영지버섯 균사체, 상황버섯 균사체, 차가버섯 균사체, 및 꽃송이 버섯 균사체 4종만을 사용한 것에 차이가 있다.
<시험예 1: 로스팅 원두 추출물의 베타글루칸 함량 측정>
상기 실시예의 커피 생두를 건조한 후에 90℃ ~ 189℃ 21분, 189℃~ 198℃ 2분의 저온 로스팅하여 원두를 제조한 후 이를 분쇄하여 원두 분말을 제조하여 제조한 원두 분말에 대하여 베타글루칸 함량을 측정하였다. 측정은 Megazyme kit인 Mixed-Linkage β-glucan kit를 사용하였으며, 총 글루칸 함량(total-glucan)에서 알파글루칸 함량(α-glucan)을 빼는 방식으로 베타글루칸 함량을 측정하였다.
다시 말해, 우선 각 원두 분말 100mg씩에 15ml HCl을 각각 넣고 45분간 방치한 후 10ml의 물을 첨가하여 2시간 반응시키고 10ml의 2N KOH를 첨가한 다음, 200mM sodium acetate 완충액으로 100ml로 증액한 후 원심분리하여 상등액 0.1ml를 용액[(exo-1,3 β-glucanase)와 β-glucosidase의 혼합액]과 혼합하고 1시간 반응시켰다.
그 다음으로, 3ml GOPOD 혼합액(glucose reagent + glucose oxidase, peroxidase, 4- aminoantipyridine)을 넣고 20분간 반응시킨 후 510nm에서 흡광도를 측정하여 총 글루칸 함량을 확인하였다.
알파-글루칸 함량의 측정방법으로는 먼저 각 원두 분말 100mg씩에 2ml KOH를 각각 넣고, 혼합한 후 20분간 ice water bath에서 균질화 하였다. 다음으로, 8ml 12M sodium acetate buffer를 넣은 후 용액(50% glycerol + amyloglucosidase 1,630 U/ml + invertase 500 U/ml solution)을 0,2ml 혼합하여 30분 반응 후 원심분리하였다.
이후 상등액 0.1ml에 GOPOD 혼합액을 첨가하여 20분 반응 후 510nm에서 흡광도를 측정하여 알파-글루칸 함량을 확인하여 그 결과를 표 1에 나타냈으며, 대조군으로 아무 처리도 하지 않은 저온 로스팅한 커피 원두 분말로 하였다.
| 베타글루칸 함량(mg/g) | |
| 대조군 | 98.2 |
| 실시예 1 | 215.3 |
| 실시예 2 | 278.3 |
| 실시예 3 | 398.7 |
| 실시예 4 | 141.2 |
| 실시예 5 | 142.1 |
| 실시예 6 | 141.8 |
| 실시예 7 | 143.2 |
| 실시예 8 | 142.1 |
| 실시예 9 | 169.5 |
| 실시예 10 | 168.2 |
| 실시예 11 | 169.1 |
| 실시예 12 | 172.1 |
| 실시예 13 | 172.3 |
상기 표 1의 결과를 보면 대조군과 비교하여 현저하게 베타글루칸 함량이 증가한 것을 확인할 수 있었으며, 특히 5종의 복합 종균은 다른 실시예 보다 베타글루칸의 함량 차이가 매우 크다는 것을 알 수 있었습니다.
<시험예 2: 원두 추출물의 향 및 맛 평가>
시험예 1에서 사용한 커피 원두 분말과 동일한 분말을 이용하여 추출물을 제조한 후 관능검사 패널로는 해당 분야에 경험이 많은 숙련된 10명(20~30대 남자 5, 여자 5)을 모집하였고, 5점 척도법에 따라 탄맛, 쓴맛, 신맛 및 뒷맛과 바디감 등에 대한 종합 평가를 조사하여 그 결과를 표 2에 나타냈다.
| 관능 종합 평가 | |
| 대조군 | 2.4 |
| 실시예 1 | 4.1 |
| 실시예 2 | 4.4 |
| 실시예 3 | 4.9 |
| 실시예 4 | 3.2 |
| 실시예 5 | 3.2 |
| 실시예 6 | 3.1 |
| 실시예 7 | 3.2 |
| 실시예 8 | 3.5 |
| 실시예 9 | 3.3 |
| 실시예 10 | 3.4 |
| 실시예 11 | 3.4 |
| 실시예 12 | 3.8 |
| 실시예 13 | 3.8 |
상기 표 2의 결과에서도 본 발명에 따른 추출물에서 우수한 평가를 확인할 수 있었으며, 특히 본 발명에 추출물에 대해서는 부드러운 초콜릿 향에 돋보이는 카카오향, 연하고 깊고 풍부한 맛과 향을 느낄 수 있는 종합 평가를 내렸다.
<
시험예
3:
HepG2
및
HeLa
세포주를 이용한 항암 효과 평가>
상기 실시예의 커피 생두를 건조한 후 열수 추출한 추출물과 상기 실시예의 커피 생두를 건조한 후 90℃ ~ 189℃ 21분, 189℃~ 198℃ 2분의 저온 로스팅하여 원두를 열수 추출물의 항암 효과를 알아보기 위하여 미국 종균협회 ATCC(American Type Culture Collection)사로부터 입수한 인간 자궁 경부암 세포주(haman cervical carnoma cell line)인 HeLa 세포주 및 인간 간암 세포주(Hapatocellular carcinoma cell line)인 HepG2 세포주를 이용하여 세포수준에서의 종양세포 증식 억제 효과를 관찰하였다.
상기 추출물의 종양 세포 증식 억제 효과를 관찰하기 위해서 널리 사용되고 있는 MTT 분석법(MTT assay)을 이용하였다.
HeLa 세포주를 56℃로 불활성화시킨 10% FBS, 1% L-글루타민, 1% 항생제/항균제(10,000U/ml의 페니실린, 25㎍/㎖의 암포테신 D 또는 10mg/㎖의 스트렙토 마이신)가 첨가된 DMEM 배지에서 37℃의 온도로 가습된 5% CO2 상태를 유지하면서 24시간 동안 배양하였다. 다음으로, 1㎖당 1ⅹ105 개의 HeLa 세포를 24웰 배양 플레이트에 접종하고 12시간 동안 배양한 후 부착되지 않은 세포를 멸균 인산 완충액으로 3회 세척하고 상기 추출물을 500㎍/㎖의 농도로 처리한 후 37℃의 온도로 가습된 5% CO2 항온 반응기에서 48시간 배양하였다.
배양이 종료되기 4시간 전에 암세포가 배양되고 있는 각각의 웰에 3-(4,5-디메틸티아졸-2-일)-2,5-디페닐테트라졸리움브로마이드(이하, MTT라 함)(최종농도 0.5㎍/㎖)을 첨가하였다. 다음, 이소프로판올에 염산이 최종 농도 0.04N로 첨가된 용액 100ml를 넣고 약 20분간 실온에서 혼합한 후 ELISA 판독기를 사용하여 550nm 파장에서 흡광도를 측정하였다.
HepG2 세포에 대해서도 상기 MTT 방법과 동일한 방법으로 실시하여 측정된 암세포의 생존율로부터 종양 세포 증식 억제 효과를 평가하였다. 그 결과는 표 3에 나타냈으며, 대조군은 아무 처리도 하지 않은 건조 생두 추출물과 동일한 조건으로 저온 로스팅한 커피 원두 추출물로 하였다.
| HepG2 세포주 생존율(%) | HeLa 세포주 생존율(%) | |
| 대조군 생두 | 91.2±1.2 | 89.4±1.1 |
| 대조군 로스팅 원두 | 91.5±1.3 | 90.5±0.9 |
| 실시예 1 생두 | 24.1±1.3 | 23.4±1.3 |
| 실시예 1 로스팅 | 24.5±1.2 | 24.9±1.3 |
| 실시예 2 생두 | 20.1±1.3 | 20.5±1.2 |
| 실시예 2 로스팅 | 20.8±1.3 | 21.1±1.3 |
| 실시예 3 생두 | 17.2±1.1 | 17.1±1.3 |
| 실시예 3 로스팅 | 17.9±1.3 | 17.3±1.2 |
| 실시예 4 생두 | 44.1±1.1 | 44.3±1.3 |
| 실시예 4 로스팅 | 44.5±1.3 | 44.8±1.3 |
| 실시예 5 생두 | 43.9±1.2 | 43.1±1.1 |
| 실시예 5 로스팅 | 43.9±1.4 | 43.8±1.3 |
| 실시예 6 생두 | 44.2±1.3 | 44.9±1.2 |
| 실시예 6 로스팅 | 44.3±1.2 | 45.1±1.3 |
| 실시예 7 생두 | 44.1±1.2 | 44.9±1.2 |
| 실시예 7 로스팅 | 43.9±1.3 | 17.9±1.2 |
| 실시예 8 생두 | 44.4±1.3 | 17.9±1.2 |
| 실시예 8 로스팅 | 44.9±1.2 | 17.9±1.2 |
| 실시예 9 생두 | 35.1±1.2 | 35.4±1.3 |
| 실시예 9 로스팅 | 36.7±1.3 | 36.2±1.1 |
| 실시예 10 생두 | 36.4±1.2 | 36.7±1.3 |
| 실시예 10 로스팅 | 36.9±1.2 | 37.5±1.2 |
| 실시예 11 생두 | 34.1±1.3 | 35.1±1.2 |
| 실시예 11 로스팅 | 34.9±1.1 | 36.5±1.1 |
| 실시예 12 생두 | 31.4±1.3 | 31.8±1.3 |
| 실시예 12 로스팅 | 32.1±1.1 | 32.7±1.2 |
| 실시예 13 생두 | 30.9±1.1 | 31.4±1.1 |
| 실시예 13 로스팅 | 30.9±1.2 | 31.6±1.3 |
상기 표 3의 결과를 보면 대조군과 비교하여 본 발명의 추출물에서 HepG2 및 HeLa 세포의 암세포주의 생존율이 현격히 감소하여 암세포 생존율이 17~45%에 이르는 것을 확인할 수 있었으며, 복합 종균을 사용할수록 효과가 증가함을 알 수 있었다. 상기 시험 결과로부터 본 발명에 따른 실시예 추출물의 종양 세포 증식 억제효과가 우수함을 알 수 있다.
<
시험예
4: 시험동물을 이용한 항암 효과 평가>
상기 시험예 3에서 사용한 추출물의 항암 효과를 시험동물 단계에서 검토하였다.
시험동물은 생후 5주된 25~30g의 웅성 Balb/c 마우스를 대한 바이오 링크사로부터 구입하여 사용하였다. 시험 기간 동안 사료와 물은 자유롭게 섭취하도록 하였으며, 동물 시험실의 온도는 22± 1℃, 습도 55± 5%로 유지하였다. 또한, 12시간 마다 낮과 밤이 반복되도록 시험실 내 명암주기(light-dark cycle)를 조절하였다.
Balb/c 마우스의 복강내에서 1주일간 계대 배양하여 보존하고 있는 육종세포(sarcoma-180)를 시험용 종양세포로 사용하였다. 즉 시험 동물의 복강내에서 1주일간 배양된 sarcoma-180 세포를 복수와 함께 취하고 인산 완충 식염수(phosphate buffered saline:PBS)와 함께 원심분리(1,200rpm, 10min)하여 종양세포를 분리하였다.
분리된 세포를 다시 PBS에 부유시켜 재차 원심분리하여 상등액을 제거한 후 1.0×106 cells/㎖가 되도록 종양세포 부유액을 만들어 1㎖씩을 복강 주사하여 이식 보존하면서 시험에 사용하였다.
시료는 멸균된 PBS를 사용하여 조제하였으며 투여량은 마우스 ㎏당, 40㎎으로 하였다. 투여하지 않을 때는 냉동실에 보관하면서 사용하였다.
시험동물을 각 군 당 10마리씩으로 하여 시험실에서 1주일 간격으로 계대 보관 중인 종양세포 부유액 0.2㎖(5×106cells/mouse)씩을 시험 동물의 왼쪽 서혜부(left groin)에 피하 이식한 후 일주일 후부터 4주간 매일 1회씩 시료 용액를 복강으로 투여하였다.
종양세포 이식 35일째 되는 날 치사시켜 생성된 고형암을 적출하고 그 무게를 측정한 후, 다음 수학식 1에 따라 종양 성장 저해율(tumor growth inhibition ratio, IR: %)을 계산하였다.
<수학식 1>
(상기 수학식 1에서, Cw는 대조군의 평균 종양 무게이고, Tw는 처리군의 평균 종양 무게이다)
또한, 시험예 3의 추출물 대신에 멸균 PBS만 투여한 군을 대조군으로 하여 측정 결과를 하기 표 4에 나타내었다.
| 종양 성장 저해율(%) | |
| 대조군 | 0.8±1.2 |
| 실시예 1 생두 | 22.1±1.3 |
| 실시예 1 로스팅 | 22.5±1.2 |
| 실시예 2 생두 | 23.2±1.3 |
| 실시예 2 로스팅 | 23.5±1.3 |
| 실시예 3 생두 | 25.1±1.1 |
| 실시예 3 로스팅 | 25.2±1.3 |
| 실시예 4 생두 | 15.1±1.1 |
| 실시예 4 로스팅 | 15.5±1.3 |
| 실시예 5 생두 | 15.9±1.2 |
| 실시예 5 로스팅 | 15.9±1.4 |
| 실시예 6 생두 | 15.2±1.3 |
| 실시예 6 로스팅 | 15.3±1.2 |
| 실시예 7 생두 | 15.1±1.2 |
| 실시예 7 로스팅 | 15.9±1.3 |
| 실시예 8 생두 | 15.4±1.3 |
| 실시예 8 로스팅 | 15.9±1.2 |
| 실시예 9 생두 | 17.1±1.2 |
| 실시예 9 로스팅 | 17.7±1.3 |
| 실시예 10 생두 | 17.4±1.2 |
| 실시예 10 로스팅 | 17.9±1.2 |
| 실시예 11 생두 | 17.4±1.3 |
| 실시예 11 로스팅 | 17.8±1.1 |
| 실시예 12 생두 | 19.5±1.3 |
| 실시예 12 로스팅 | 20.2±1.1 |
| 실시예 13 생두 | 20.1±1.1 |
| 실시예 13 로스팅 | 19.5±1.2 |
상기 표 4의 결과를 보면 대조군과 비교하여 본 발명의 추출물에서 종양 성장 억제율이 15% 내지 25% 이르는 것을 확인할 수 있었으며, 복합 종균을 사용할수록 효과가 증가함을 알 수 있었다. 상기 시험 결과로부터 본 발명에 따른 실시예 추출물의 종양 성장 억제효과가 우수함을 알 수 있다.
<
시험예
5: 세포주를 이용한 면역기능 증강 효과>
상기 시험예 1의 면역 기능 증강 효과를 검토하기 위하여 선천성 면역과 후천성 면역의 두반응 모두에 관여하는 면역세포로 특히 비 특이적 면역에 있어 중추적인 역할을 담당하는 대식세포의 활성화를 측정하였다.
본 시험에서는 U937 세포(미국 종균협회 ATCC사로부터 입수)를 사용하여 리소좀성 효소(lysosomal enzyme)의 활성 증가를 산 포스파타아제 분석법(acid phosphatase assay: APL)로 측정하였다.
시험예 3의 추출물 처리하지 않았을 때의 산 포스파타아제의 활성도를 1로 하여, 처리 농도를 200㎍/㎖로 하였을 때 산 포스파타아제의 활성도를 상대비율을 측정하여 그 결과를 표 5에 나타냈으며, 대조군은 아무 처리도 하지 않은 건조 생두 추출물과 동일한 조건으로 저온 로스팅한 커피 원두 추출물로 하였다.
| 산 포스파타아제 활성도 상대비율 | |
| 대조군 생두 | 0.3 |
| 대조군 로스팅 원두 | 0.3 |
| 실시예 1 생두 | 1.7 |
| 실시예 1 로스팅 | 1.7 |
| 실시예 2 생두 | 1.6 |
| 실시예 2 로스팅 | 1.8 |
| 실시예 3 생두 | 2.1 |
| 실시예 3 로스팅 | 2.0 |
| 실시예 4 생두 | 1.1 |
| 실시예 4 로스팅 | 1.3 |
| 실시예 5 생두 | 1.2 |
| 실시예 5 로스팅 | 1.2 |
| 실시예 6 생두 | 1.3 |
| 실시예 6 로스팅 | 1.2 |
| 실시예 7 생두 | 1.2 |
| 실시예 7 로스팅 | 1.3 |
| 실시예 8 생두 | 1.3 |
| 실시예 8 로스팅 | 1.2 |
| 실시예 9 생두 | 1.4 |
| 실시예 9 로스팅 | 1.5 |
| 실시예 10 생두 | 1.5 |
| 실시예 10 로스팅 | 1.5 |
| 실시예 11 생두 | 1.4 |
| 실시예 11 로스팅 | 1.5 |
| 실시예 12 생두 | 1.5 |
| 실시예 12 로스팅 | 1.4 |
| 실시예 13 생두 | 1.4 |
| 실시예 13 로스팅 | 1.3 |
상기 표 5의 결과를 보면 결과를 보면 대조군과 비교하여 본 발명의 추출물에서 면역기능 증강 효과가 현저하게 상승하는 것을 확인할 수 있었으며, 특히 복합 종균을 사용할수록 효과는 더욱 증가한다.상기 시험 결과로부터 본 발명에 따른 실시예 추출물의 면역기능 증강 효과가 우수함을 알 수 있다.
<
시험예
6: 시험동물을 이용한 면역기능 증강 효과>
상기 시험예 3 추출물의 면역 기능 증강 효과를 시험동물 단계에서 검토하였다.
시험동물은 생후 5주된 25~30g의 웅성 Balb/c 마우스를 대한 바이오 링크사로부터 구입하여 사용하였다. 시험 기간 동안 사료와 물은 자유롭게 섭취하도록 하였으며, 동물 시험실의 온도는 22± 1℃, 습도 55± 5%로 유지하였다.
또한, 12시간 마다 낮과 밤이 반복되도록 시험실내 명암주기(light-dark cycle)를 조절하였다.
시료는 멸균된 생리식염수를 사용하여 조제하였으며 투여량은 마우스 ㎏당, 20㎎으로 하였으며, 투여하지 않을 때는 냉장실에 보관하면서 사용하였다.
시험동물을 각 군당 5마리씩으로 하여 시험실에서 전처리한 시료를 600㎕(1㎎/㎖)씩 매일 복강 주사하였다. 30시간 경과 후 마우스를 단두하여 혈액을 얻고 대식세포는 복강 세척으로 획득하여 시험에 적용하였다.
생쥐 복강에서 회수한 대식세포 수가 1× 106개/㎖ 이 되도록 RPMI-1640 배지에 재분산시키고, 이 분산액을 96-웰 플레이트 각 웰에 200㎕씩 분주한 다음 37℃에서 2시간 동안 CO2 배양하여 대식세포를 웰에 고정시킨 후 각 웰에 RPMI1640 완전배지(with 10% FBS)를 가하여 24시간 동안 배양시킨 후 활성화된 대식세포의 단일층에 0.1% 트리톤(Triton) X-100을 첨가하여 세포막을 용해시켜 이때 분비되는 리소좀성 포스파타아제의 양을 ELISA 판독기(ELISA reader)로 405nm에서 흡광도를 측정하여 대식세포의 활성능 정도를 평가하여 그 결과를 표 6에 나타냈으며, 식염수(saline)를 투여한 군을 대조군으로 하였다.
| 대식세포의 활성능 | |
| 대조군 | 100±1.2 |
| 실시예 1 생두 | 122.2±1.3 |
| 실시예 1 로스팅 | 121.5±1.2 |
| 실시예 2 생두 | 123.5±1.3 |
| 실시예 2 로스팅 | 123.1±1.3 |
| 실시예 3 생두 | 125.1±1.1 |
| 실시예 3 로스팅 | 125.2±1.3 |
| 실시예 4 생두 | 115.4±1.1 |
| 실시예 4 로스팅 | 115.1±1.3 |
| 실시예 5 생두 | 115.6±1.2 |
| 실시예 5 로스팅 | 115.6±1.4 |
| 실시예 6 생두 | 115.2±1.3 |
| 실시예 6 로스팅 | 115.3±1.2 |
| 실시예 7 생두 | 115.1±1.2 |
| 실시예 7 로스팅 | 115.9±1.3 |
| 실시예 8 생두 | 115.4±1.3 |
| 실시예 8 로스팅 | 115.9±1.2 |
| 실시예 9 생두 | 117.1±1.2 |
| 실시예 9 로스팅 | 117.7±1.3 |
| 실시예 10 생두 | 117.4±1.2 |
| 실시예 10 로스팅 | 117.9±1.2 |
| 실시예 11 생두 | 117.4±1.3 |
| 실시예 11 로스팅 | 117.8±1.1 |
| 실시예 12 생두 | 119.5±1.3 |
| 실시예 12 로스팅 | 120.2±1.1 |
| 실시예 13 생두 | 120.1±1.1 |
| 실시예 13 로스팅 | 119.5±1.2 |
상기 표 6의 결과를 보면 대조군과 비교하여 본 발명의 추출물에서 대식세포의 활성능 증강 효과가 현저하게 상승하는 것을 확인할 수 있었으며, 특히 복합 종균을 사용할수록 효과는 더욱 증가한다.상기 시험 결과로부터 본 발명에 따른 실시예 추출물의 면역기능 증강 효과가 우수함을 알 수 있다.
<
시험예
7: 시험 동물을 이용한 체중감소 효과>
시험동물은 3주령 스프래그 다우리(Sprague-Dawley)종 숫컷 흰쥐를 구입하여 정상 식이 군과 고지방 식이 군 두 군으로 나누었다.
정상 식이 군은 AIN-76A 식이 #100000 (Dyets Inc., Bethlehem, PA, USA)로 식이 총 열량의 11.7%를 지방으로 공급하였고, 고지방 식이 군은 지방 급원으로 우지(beef tallow)를 사용하여 AIN-76 고지방 식이 #100496 (Dyets Inc., Bethlehem, PA, USA)으로 총 열량의 40%를 지방으로 공급하여 사육하였다.
시험동물 4주령부터 10주령까지 6주간 정상 식이와 고지방 식이를 각각 공급하였으며, 10주령부터 4주간 고지방식이에 시험예 추출물을 각각 식이 무게의 3%를 함유한 식이를 공급하여 효과를 관찰하였다.
시험동물은 한 마리씩 분리하여 사육하였고, 물과 식이는 제한없이 공급하였다. 시험기간 동안 식이 섭취량과 체중은 일주일에 2회 측정하였다. 식이 효율 (Food Efficiency Ratio: FER)은 시험 식이 공급일로부터 희생일까지를 총 시험기간으로 하여 시험기간 동안의 체중 증가량을 시험기간 동안의 식이 섭취량으로 나누어 산출하여 그 결과를 표 7에 나타냈다.
| 식이 효율 | |
| 정상 식이 | 8.14 |
| 고지방 식이 | 12.10 |
| 실시예 1 생두 | 8.04 |
| 실시예 1 로스팅 | 8.04 |
| 실시예 2 생두 | 7.98 |
| 실시예 2 로스팅 | 8.01 |
| 실시예 3 생두 | 7.52 |
| 실시예 3 로스팅 | 7.68 |
| 실시예 4 생두 | 8.42 |
| 실시예 4 로스팅 | 8.41 |
| 실시예 5 생두 | 8.43 |
| 실시예 5 로스팅 | 8.41 |
| 실시예 6 생두 | 8.43 |
| 실시예 6 로스팅 | 8.43 |
| 실시예 7 생두 | 8.43 |
| 실시예 7 로스팅 | 8.45 |
| 실시예 8 생두 | 8.43 |
| 실시예 8 로스팅 | 8.46 |
| 실시예 9 생두 | 8.17 |
| 실시예 9 로스팅 | 8.17 |
| 실시예 10 생두 | 8.18 |
| 실시예 10 로스팅 | 8.20 |
| 실시예 11 생두 | 8.19 |
| 실시예 11 로스팅 | 8.21 |
| 실시예 12 생두 | 8.15 |
| 실시예 12 로스팅 | 8.16 |
| 실시예 13 생두 | 8.15 |
| 실시예 13 로스팅 | 8.15 |
상기 표 7의 결과를 보면, 본 발명의 추출물은 대조군의 고지방 식이 보다는 현저하게 체중 증가가 이루어지지 않았으며 거의 대조군의 정상 식이와 유사하였으며, 특히 5종 복합 종균을 사용하는 경우에는 대조군 정상 식이 보다 더 체중이 감소한 결과를 확인할 수 있었다.상기 결과로부터 본 발명 추출물의 현저한 체중 감소 효과를 확인하였다.
<
시험예
8: 시험 동물을 이용한 지방세포 크기 감소 효과>
시험예 7의 각 시험군에서 16주령이 될 때 각 4마리씩 무작위 추출하여 희생시켜 혈액과 장기를 채취하였다.
지방세포의 평균 크기는 적출한 부고환 지방조직을 가위로 약 30번 정도 자른 후, 4%(wt/vol) 알부민과 1.5 mg/ml 콜라지나제(collagenase)(Sigma, USA)를 함유한 배지 199 (Gibco BRL)에서 37℃에서 60분동안 균질화시킨 후, 현미경을 사용하여 약 30개 세포의 직경을 측정하여 결과값을 구하였으며, 이 결과를 하기 표 8에 나타냈다.
| 지방세포 크기(㎛) | |
| 정상 식이 | 10.73±3.03 |
| 고지방 식이 | 18.72±4.11 |
| 실시예 1 생두 | 8.46±1.15 |
| 실시예 1 로스팅 | 8.44±1.14 |
| 실시예 2 생두 | 8.27±1.13 |
| 실시예 2 로스팅 | 8.34±1.11 |
| 실시예 3 생두 | 8.07±1.15 |
| 실시예 3 로스팅 | 8.11±1.13 |
| 실시예 4 생두 | 10.17±1.15 |
| 실시예 4 로스팅 | 10.13±1.14 |
| 실시예 5 생두 | 10.21±1.15 |
| 실시예 5 로스팅 | 10.17±1.17 |
| 실시예 6 생두 | 10.20±1.15 |
| 실시예 6 로스팅 | 10.19±1.14 |
| 실시예 7 생두 | 10.19±1.14 |
| 실시예 7 로스팅 | 10.22±1.15 |
| 실시예 8 생두 | 10.22±1.15 |
| 실시예 8 로스팅 | 10.22±1.16 |
| 실시예 9 생두 | 9.75±1.12 |
| 실시예 9 로스팅 | 9.74±1.11 |
| 실시예 10 생두 | 9.81±1.13 |
| 실시예 10 로스팅 | 9.90±1.11 |
| 실시예 11 생두 | 9.89±1.11 |
| 실시예 11 로스팅 | 9.84±1.12 |
| 실시예 12 생두 | 9.32±1.11 |
| 실시예 12 로스팅 | 9.34±1.12 |
| 실시예 13 생두 | 9.30±1.11 |
| 실시예 13 로스팅 | 9.32±1.11 |
상기 표 8의 결과를 보면, 본 발명의 추출물은 대조군의 고지방 식이 보다는 현저하게 지방세포 크기가 감소하였으며 거의 대조군의 정상 식이와 유사하였으며, 특히 5종 복합 종균을 사용하는 경우에는 대조군 정상 식이 보다 더 감소한 결과를 확인할 수 있었다.상기 결과로부터 본 발명 추출물의 현저한 지방세포 크기 감소 효과를 확인하였다.
<
시험예
9 :
혈중
콜레스테롤 함량 변화>
시험예 8에서 채취한 혈액을 이용하여 콜레스테롤의 함량을 키트(Sigma Chemical Co. (St.Louis, MO))를 이용한 효소비색법으로 측정하여 그 결과를 표 9에 나타냈다.
| 총 콜레스테롤(mg/dl) | |
| 정상 식이 | 60.71±1.21 |
| 고지방 식이 | 73.10±1.11 |
| 실시예 1 생두 | 61.24±1.15 |
| 실시예 1 로스팅 | 61.18±1.14 |
| 실시예 2 생두 | 60.29±1.13 |
| 실시예 2 로스팅 | 60.17±1.11 |
| 실시예 3 생두 | 58.14±1.15 |
| 실시예 3 로스팅 | 58.29±1.13 |
| 실시예 4 생두 | 67.17±1.15 |
| 실시예 4 로스팅 | 67.13±1.14 |
| 실시예 5 생두 | 67.21±1.15 |
| 실시예 5 로스팅 | 67.17±1.17 |
| 실시예 6 생두 | 67.20±1.15 |
| 실시예 6 로스팅 | 67.31±1.14 |
| 실시예 7 생두 | 66.19±1.14 |
| 실시예 7 로스팅 | 66.58±1.15 |
| 실시예 8 생두 | 66.25±1.15 |
| 실시예 8 로스팅 | 66.22±1.16 |
| 실시예 9 생두 | 65.75±1.12 |
| 실시예 9 로스팅 | 65.74±1.11 |
| 실시예 10 생두 | 64.81±1.13 |
| 실시예 10 로스팅 | 64.90±1.11 |
| 실시예 11 생두 | 64.89±1.11 |
| 실시예 11 로스팅 | 64.84±1.12 |
| 실시예 12 생두 | 63.12±1.11 |
| 실시예 12 로스팅 | 63.19±1.12 |
| 실시예 13 생두 | 63.30±1.11 |
| 실시예 13 로스팅 | 63.32±1.11 |
상기 표 9의 결과를 보면, 본 발명의 추출물은 대조군의 고지방 식이 보다는 현저하게 총 콜레스테롤 함량이 감소하였으며 거의 대조군의 정상 식이와 유사하였으며, 특히 5종 복합 종균을 사용하는 경우에는 대조군 정상 식이 보다 더 감소한 결과를 확인할 수 있었다.
또한, 침전시약인 덱스트란 설페이트(dextran sulfate) MgCl2 를 이용하여서 LDL과 VLDL을 침전시킨 후 상등액의 콜레스테롤 함량을 키트(Sigma, USA)를 이용하여 비색정량하여 HDL 콜레스테롤을 측정한 본 결과 고지방 식이 군과 실시예 추출물 식이 군에서 차이가 없어 상기 표 9에서의 콜레스테롤 함량 감소는 LDL 콜레스테롤의 감소 따른 것이다.
이상에서 살펴본 바와 같이 본 발명은 영지버섯, 상황버섯, 차가버섯, 꽃송이버섯 및 동충하초로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 종균을 커피 생두에 접종 발효하여 베타글루칸이 현저하게 증진된 커피 생두 및 이 생두를 이용하여 제조되는 커피 원두와 커피 추출 조성물의 제조가 가능하여 커피의 품질 내지 기능성을 향상키는 효과를 보인다.
또한, 본 발명에 따른 커피를 복용하는 경우 함량이 증진된 베타글루칸에 의해 인간 정상 세포의 면역기능을 활성화하여 암세포의 증식과 재발을 억제하고 혈당과 혈중 콜레스테롤을 감소시키며 지질대사를 개선하여 체지방 형성과 축적을 억제할 수 있으며, 부수적으로 부드러운 초콜릿 향에 돋보이는 카카오향, 연하고 깊고 풍부한 맛과 향을 느낄 수 있다.
Claims (9)
- 영지버섯, 상황버섯, 차가버섯, 꽃송이버섯 및 동충하초로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 종균을 커피 생두에 접종하여 발효시키는 것을 특징으로 하여 베타글루칸 함량이 증진된 커피 생두 제조 방법.
- 제 1항에 있어서, 상기 커피 생두는 발아시킨 것임을 특징으로 하는 베타글루칸 함량이 증진된 커피 생두 제조 방법.
- 제 1항 또는 제 2항에 있어서, 상기 영지버섯, 상황버섯, 차가버섯, 꽃송이버섯 및 동충하초로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 종균은 효모균에 접종을 한 후에 20 내지 40℃에서 70 내지 170시간 배양한 것임을 특징으로 하는 베타글루칸 함량이 증진된 커피 생두 제조 방법.
- 제 1항 또는 제 2항에 있어서, 상기 발효는 상기 발효는 온도 20 내지 45℃, 습도 35 내지 70%에서 12 내지 120시간 동안 상기 커피 생두에 접종된 복합 종균을 배양하는 것임을 특징으로 하는 베타글루칸 함량이 증진된 커피 생두 제조 방법.
- 영지버섯, 상황버섯, 차가버섯, 꽃송이버섯 및 동충하초로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 종균이 접종 발효되어 베타글루칸 함량이 증진된 커피 생두.
- 제 5항에 있어서, 상기 커피 생두는 발아시킨 것임을 특징으로 하는 베타글루칸 함량이 증진된 커피 생두.
- 영지버섯, 상황버섯, 차가버섯, 꽃송이버섯 및 동충하초로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 종균이 접종 발효된 커피 생두를 로스팅하여 제조된 베타글루칸 함량이 증진된 커피 원두.
- 영지버섯, 상황버섯, 차가버섯, 꽃송이버섯 및 동충하초로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 종균이 접종 발효된 커피 생두로 추출된 베타글루칸 함량이 증진된 추출물.
- 영지버섯, 상황버섯, 차가버섯, 꽃송이버섯 및 동충하초로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 종균이 접종 발효된 커피 생두를 로스팅하여 제조된 커피 원두로 추출된 베타글루칸 함량이 증진된 추출물.
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|---|---|---|---|
| KR1020210090392A KR20230010143A (ko) | 2021-07-09 | 2021-07-09 | 면역증강, 항암, 항비만, 혈당 저하, 혈중 콜레스테롤 감소 효과를 보이는 커피와 버섯 균주를 활용한 신규한 베타글루칸 제조방법 및 이 제조방법에 의해 생산된 베타글루칸 함유 추출물을 활성성분으로 하는 조성물 |
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| KR1020210090392A KR20230010143A (ko) | 2021-07-09 | 2021-07-09 | 면역증강, 항암, 항비만, 혈당 저하, 혈중 콜레스테롤 감소 효과를 보이는 커피와 버섯 균주를 활용한 신규한 베타글루칸 제조방법 및 이 제조방법에 의해 생산된 베타글루칸 함유 추출물을 활성성분으로 하는 조성물 |
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Citations (1)
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|---|---|---|---|---|
| KR101371591B1 (ko) | 2012-03-05 | 2014-03-07 | 고재칠 | 기능성 커피콩 제조 방법 |
-
2021
- 2021-07-09 KR KR1020210090392A patent/KR20230010143A/ko not_active Application Discontinuation
Patent Citations (1)
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|---|---|---|---|---|
| KR101371591B1 (ko) | 2012-03-05 | 2014-03-07 | 고재칠 | 기능성 커피콩 제조 방법 |
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