KR20220121220A - Her2-gst-이리노테칸 복합체, 및 이를 포함하는 암 예방 또는 치료용 약학적 조성물 - Google Patents

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Abstract

글루타치온―Ｓ―전이효소 및 표적 세포 또는 표적 단백질 결합능을 갖는 단백질을 포함하는 융합 단백질 및 이의 약물 전달체 및 약학적 조성물로서의 용도에 관한 것으로, 일 양상에 따른 융합 단백질 및 그를 포함하는 약물 전달체에 의하면, 생체 내 잔존 시간을 지속시킬 수 있을 뿐 아니라, 표적 세포로의 표적능이 향상되어 타겟으로 하는 세포로 효과적으로 전달될 수 있으므로, 표적 치료제로서 유용하게 사용될 수 있는 효과가 있다.

Description

HER2-GST-이리노테칸 복합체, 및 이를 포함하는 암 예방 또는 치료용 약학적 조성물{HER2-GST-irinotecan complex, and pharmaceutical composition for preventing or treating cancer comprising the same}
글루타치온―Ｓ―전이효소 및 표적 세포 또는 표적 단백질 결합능을 갖는 단백질을 포함하는 융합 단백질 및 이의 약물 전달체 및 약학적 조성물로서의 용도에 관한 것이다.
나노파티클은 생물학적 분포능이 우수하며 약물 방출 정도를 조절할 수 있어 영상화 장비나 표적 치료제 등의 분야에서 유용한 도구로 사용되고 있다. 통상적으로 나노파티클은 200 ㎚의 직경을 가질 때 종양 주위의 혈관 근처로 유출될 수 있으며, 종양 주위에서는 림프관이 형성되지 않아 압력이 낮기 때문에 유출된 나노파티클이 종양 조직 내에 계속 잔존할 수 있는 것으로 알려져 있다. 이러한 과정은 EPR 효과(enhanced permeability and retention effect)라 하며, 이를 통해 약물 전달체의 투과성 및 잔존성이 개선될 수 있다.
현재 상업적으로 사용되는 나노파티클로서, Abraxane 및 Doxil을 대표적인 예로 들 수 있다. 그러나, 이들은 종양마다 혈관의 투과성이 각기 다양하며, 나노파티클을 정맥투여하였을 때 단핵식세포계(mononuclear phagocyte system, MPS)가 이를 제거하기 위해 간과 비장과 같은 세망내피계 조직(reticuloendothelial organ)에 빠르게 축적된다는 제한점을 가질 수 있다. 이로 인해, 나노파티클을 적용하는 표적 치료제는 치료 효과가 저감될 수 있으며, 나노파티클의 독성으로 인해 부작용을 나타낼 수 있다.
이러한 단점을 극복하기 위해서, 폴리에틸렌 글리콜화(poly(ethylene glycol) ylation, PEGylation)하여 나노파티클을 둘러싸는 방법이 개발되었다. 이러한 방법을 사용하였을 때, 생체 내 순환기에서 나노파티클이 순환될 수 있는 시간이 길어질 수 있다는 장점이 있으나, 반대로 표적 세포 내로 유임될 수 있는 가능성이 감소하고 비-특이적인 결합을 통해 표적 세포 이외의 세포를 표적할 수 있어 이 또한 치료 효율이 낮아질 수 있다.
나노파티클을 약물전달체로 사용함에 있어서, 약물 전달을 위한 표적능과 함께 EPR 효과를 증진시키기 위해, 나노파티클의 구조적인 변화를 유도하고자 하는 전략이 제시되고 있다. 구체적으로, 나노파티클의 표면에 암세포에서 과발현되는 수용체와 결합할 수 있는 항체, 단백질 또는 펩티드로 코팅하는 등의 구조적 변화를 유도하여 약물전달체의 표적능을 향상시키고자 하는 시도가 계속되었다. 그러나, 이러한 방법을 통해서도 종양 표적 효율이 효과적으로 증가되지 않고, 오히려 MPS를 통한 체내 면역 반응을 통해 나노파티클이 보다 빠르게 제거될 수 있는 타겟 리간드를 제공하게 되어, 전체적인 종양 치료 효과 면에서 유의적인 치료 효과를 나타내지는 못한다는 한계가 있다.
이론적으로는, 생리적 환경에 노출되었을 때, 엔트로피에 따르는 물분자의 배치, 파티클 표면의 전하의 보정(charge compensation)이나 소수성 부분이 노출되는 점 등이 복합적으로 작용하여 표면 에너지를 낮추는 방향으로 나노파티클의 표면은 자연적으로 다른 생물분자에 의해 둘러싸이게 된다. 이 때, 나노파티클의 표면의 표면에 다양한 생물분자들이 비-특이적으로 흡착되는데, 이러한 형태를 단백질 코로나(protein corona)라고 한다. 단백질 코로나는 다른 분자들에 둘러싸여 본연의 분자적 특징이 변화하고, 표적 세포 또는 기관으로의 표적능과 나노파티클이 나타내는 다양한 생물학적 기능이 차단된다. 때문에, 나노파티클을 표적 치료제로서 임상 수준에서 적용할 수 있도록 단백질 코로나를 조절하고자 하는 연구가 계속 진행되고 있다.
따라서, 나노파티클을 기반으로 하는 표적 치료제를 제조하는 과정에서, 나노파티클의 표면에 단백질 코로나를 먼저 형성하여 이를 조절하는 방법이 개발되었다. 이를 위해, 단백질 코로나에 의해 표적능이 차단되는 것을 피하기 위해서, 나노파티클의 표면을 쌍성 이온(zwitterionic), PEG 및 탄수화물 잔기 등으로 변경하여 혈청 내 단백질과의 상호작용을 최소화하고자 하는 방법이 공지된 바 있다. 이 외에도, 나노파티클을 dysopsonic 단백질로 전코팅하여 혈장 내의 원하는 단백질의 순환을 통해 단백질 코로나를 조절할 수 있다. 이에 따라, 단백질 코로나로 전코팅된 나노파티클은 콜로이드 상태의 안정성이 증가되어 MPS에 의해 제거되지 않고 혈액 내에서 순환 시간을 지속할 수 있는 효과를 가진다. 그러나, 이러한 방법을 통하여도 표적으로의 타겟능이 제한될 수 있고, 전코팅에 사용되는 단백질과 나노파티클 간의 생물학적 상호작용을 통한 생물화학적인 작용이 알려지지 않았다는 점에서 임상으로의 적용에서 제한을 가진다.
Monopoli, M. P., Aberg, C., Salvati, A. & Dawson, K. A. Nat Nanotechnol 7, 779-786, doi:10.1038/nnano.2012.207 (2012).
일 양상은 글루타치온-S-전이효소(glutathione-S-transferase, GST) 분자; HER2(human epidermal growth factor receptor2)에 결합능을 갖는 애피바디(affibody) 또는 다이아바디(diabody) 분자; 상기 글루타치온-S-전이효소와 상기 애피바디 또는 다이아바디를 연결하고, 프로테아제가 결합하지 않는 링커; 및 상기 글루타치온-S-전이효소와 GSH(Glutathione) 분자에 의해 결합된 이리노테칸(Irinotecan) 분자를 함유하는 약물 전달체를 제공하는 것이다.
다른 양상은 글루타치온-S-전이효소(glutathione-S-transferase, GST) 분자; HER2(human epidermal growth factor receptor2)에 결합능을 갖는 애피바디(affibody) 또는 다이아바디(diabody) 분자; 상기 글루타치온-S-전이효소와 상기 애피바디 또는 다이아바디를 연결하고, 프로테아제가 결합하지 않는 링커; 및 상기 글루타치온-S-전이효소와 GSH(Glutathione) 분자에 의해 결합된 이리노테칸(Irinotecan) 분자를 포함하는 암 예방 또는 치료용 약학적 조성물을 제공하는 것이다.
또 다른 양상은 글루타치온-S-전이효소(glutathione-S-transferase, GST) 분자; HER2(human epidermal growth factor receptor2)에 결합능을 갖는 애피바디(affibody) 또는 다이아바디(diabody) 분자; 상기 글루타치온-S-전이효소와 상기 애피바디 또는 다이아바디를 연결하고, 프로테아제가 결합하지 않는 링커; 및 상기 글루타치온-S-전이효소와 GSH(Glutathione) 분자에 의해 결합된 이리노테칸(Irinotecan) 분자를 함유하는 약물전달체를 그를 필요로 하는 개체에 투여하는 단계를 포함하는 개체 내 약물을 전달하는 방법을 제공하는 것이다.
또 다른 양상은 글루타치온-S-전이효소(glutathione-S-transferase, GST) 분자; HER2(human epidermal growth factor receptor2)에 결합능을 갖는 애피바디(affibody) 또는 다이아바디(diabody) 분자; 상기 글루타치온-S-전이효소와 상기 애피바디 또는 다이아바디를 연결하고, 프로테아제가 결합하지 않는 링커; 및 상기 글루타치온-S-전이효소와 GSH(Glutathione) 분자에 의해 결합된 이리노테칸(Irinotecan) 분자를 함유하는 약물전달체를 그를 필요로 하는 개체에 투여하는 단계를 포함하는 암을 예방 또는 치료하는 방법을 제공하는 것이다.
일 양상은 글루타치온-S-전이효소(glutathione-S-transferase, GST) 분자; HER2(human epidermal growth factor receptor2)에 결합능을 갖는 애피바디(affibody) 또는 다이아바디(diabody) 분자; 상기 글루타치온-S-전이효소와 상기 애피바디 또는 다이아바디를 연결하고, 프로테아제가 결합하지 않는 링커; 및 상기 글루타치온-S-전이효소와 GSH(Glutathione) 분자에 의해 결합된 이리노테칸(Irinotecan) 분자를 함유하는 약물 전달체를 제공한다.
본 명세서에서 용어 "애피바디 분자(affibody molecule)"는 특정 타겟 단백질(수용체)에 결합할 수 있는, 항체 모사체를 의미할 수 있다. 일반적으로 애피바디 분자는 20 내지 150의 아미노산 잔기로 구성되며, 2 내지 10개의 알파 헬릭스로 구성된 것일 수 있다. 더욱 상세하게는 상기 애피바디 분자는 항-ErbB 애피바디 분자(ab31889), HER2-특이적 애피바디 분자(ZHER2:342), 항-EFFR 애피바디 분자(ZEGFR:2377) 등을 포함할 수 있다. 또한, 이에 한정되지 않고, 세포의 특정 수용체 또는 표적 단백질을 인식할 수 있는 애피바디 분자를 모두 포함한다. 상기 애피바디 분자가 인식할 수 있는 표적 수용체 또는 표적 단백질의 예는, 아밀로이드 베타 펩티드, 시누클레인(예를 들면, 알파-시누클레인), 아포리포프로테인(예를 들면, 아포리포프로테인 A1), 보체 인자(Complement factor)(예를 들면, C5), 탄산무수화효소(Carbonic anhydrase)(예를 들면, CAIX), 인터루킨-2 수용체 알파 사슬(IL2RA; CD25), 세포 표면의 CD 항원(예를 들면, CD28), 또는 c-Jun, Factor VIII, 프비르노겐, GP120, H-Ras, Her2, Her3, HPV16 E7, IAPP(Human islet amyloid polypeptide), 이뮤노글로불린 A(IgA), IgE, IgM, 인터루킨(예를 들면, IL-1, IL-6, IL-8, IL-17), 인슐린, 스타필로코커스 단백질 A 도메인(Staphylococcal protein A domain), Raf-1, LOV 도메인(Light-oxygen-voltage-sensing domain), 또는 RSV G 단백질일 수 있다. 상기 애피바디에 대한 정보는 Stefan Stahl et al., Affibody Molecules in Biotechnological and Medical Applications, Trends in Biotechnology, August 2017, Vol 35, No 8에 기재되어 있으며, 상기 문헌은 그 전체가 참조로서 본 명세서에서 포함된다.
일 구체예에 있어서, 상기 링커는, 1 내지 400개, 1 내지 200개, 또는 2 내지 200개의 임의의 아미노산으로 이루어진 폴리펩티드일 수 있다. 상기 펩티드 링커는 Gly, Asn 및 Ser 잔기를 포함할 수 있으며, Thr 및 Ala과 같은 중성 아미노산들도 포함될 수 있다. 펩티드 링커에 적합한 아미노산 서열은 당업계에 공지되어 있다. 또한 기능적 일부분 사이의 적절한 분리를 달성하기 위하여 또는 필수적인 내부-일부분(inter-moiety)의 상호작용을 유지하기 위한　링커의 최적화를 고려하여 카피 수 "n"을 조절할 수 있다. 해당 기술분야에서 다른 가요성　링커들이 알려져 있는데, 예를 들어 수용성을 향상시키기 위하여 극성 아미노산 잔기를 추가하는 것뿐만 아니라 유연성을 유지하기 위하여 T 및 A와 같은 아미노산 잔기를 추가한 G 및 S　링커가 있을 수 있다. 따라서 일 구체예에 있어서, 상기　링커는 G, S, 및/또는 T 잔기를 포함하는 유연성　링커일 수 있다. 상기　링커는 (GpSs)n 및 (SpGs)n으로부터 선택되는 일반식을 가질 수 있고, 이 경우, 독립적으로, p는 1 내지 10의 정수이고, s = 0 내지 10의 0 또는 정수이고, p + s는 20 이하의 정수이고, 및 n은 1 내지 20의 정수이다. 더욱 구체적으로 링커의 예는 (GGGGS)n (서열번호 2), (SGGGG)n　(서열번호 3), (SRSSG)n (서열번호 4), (SGSSC)n (서열번호 5), (GKSSGSGSESKS)n (서열번호 6), (RPPPPC)n (서열번호 7), (SSPPPPC)n (서열번호 8), (GSTSGSGKSSEGKG)n (서열번호 9), (GSTSGSGKSSEGSGSTKG)n (서열번호 10), (GSTSGSGKPGSGEGSTKG)n　(서열번호 11), 또는 (EGKSSGSGSESKEF)n (서열번호 12)이고, 상기 n은 1 내지 20, 또는 1 내지 10의 정수이다.
또 다른 양상은 상기 GST 분자와 HER2에 결합능을 갖는 애피바디 또는 다이아바디 분자가 결합된 융합 단백질을 암호화하는 폴리뉴클레오티드를 제공한다.
용어 "폴리뉴클레오티드(polynucleotide)"는 단일가닥 또는 이중가닥 형태로 존재하는 디옥시리보뉴클레오티드 또는 리보뉴클레오티드의 중합체를 의미한다. RNA 게놈 서열, DNA(gDNA 및 cDNA) 및 이로부터 전사되는 RNA 서열을 포괄하며, 특별하게 다른 언급이 없는 한 자연의 폴리뉴클레오티드뿐만 아니라 당 또는 염기 부위가 변형된 그의 유사체(analogue)도 포함한다. 일 구체예에서, 상기 폴리뉴클레오티드는 단쇄 폴리뉴클레오티드이다.
또 다른 양상은 상기 폴리뉴클레오티드를 포함하는 벡터를 제공한다.
본 명세서에서 사용되는 용어, "벡터"는 적당한 숙주세포에서 목적 단백질을 발현할 수 있는 벡터로서, 유전자 삽입물이 발현되도록 작동 가능하게 연결된 조절 요소를 포함하는 유전자 작제물을 지칭한다. 일 실시예에 따른 벡터는 프로모터, 오퍼레이터, 개시코돈, 종결코돈, 폴리아데닐화 시그널, 및/또는 인핸서와 같은 발현 조절 요소를 포함할 수 있으며, 벡터의 프로모터는 구성적 또는 유도성일 수 있다. 또한, 상기 벡터는, 숙주 세포 내에서 안정적으로 상기 융합 단백질을 발현시킬 수 있는, 발현용 벡터일 수 있다. 상기 발현용 벡터는 당업계에서 식물, 동물 또는 미생물에서 외래의 단백질을 발현하는 데 사용되는 통상의 것을 사용할 수 있다. 상기 재조합 벡터는 당업계에 공지된 다양한 방법을 통해 구축될 수 있다. 예를 들어, 상기 벡터는 벡터를 함유 하는 숙주세포를 선택하기 위한 선택성 마커를 포함하고, 복제 가능한 벡터인 경우, 복제 기원을 포함할 수 있다. 또한, 벡터는 자가 복제하거나 숙주 DNA에 도입될 수 있으며, 상기 벡터는 플라스미드, 렌티바이러스, 아데노바이러스, 아데노-관련 바이러스, 레트로바이러스, 헤르페스 심플렉스 바이러스, 및 배시니아 바이러스로 구성되는 군으로부터 선택되는 것일 수 있다.
상기 벡터는 동물세포, 예를 들어, 포유동물 세포에서 작동가능한 프로모터를 포함한다. 일 실시예에 따라 적합한 프로모터는 포유동물 바이러스로부터 유래된 프로모터 및 포유동물 세포의 지놈으로부터 유래된 프로모터를 포함하며, 예컨대, CMV (Cytomegalovirus) 프로모터, U6 프로모터 및 H1 프로모터, MLV(Murine Leukemia Virus) LTR(Long terminal repeat) 프로모터, 아데노바이러스 초기 프로모터, 아데노바이러스 후기 프로모터, 백시니아 바이러스 7.5K 프로모터, SV40 프로모터, HSV의 tk 프로모터, RSV 프로모터, EF1 알파 프로모터, 메탈로티오닌 프로모터, 베타-액틴 프로모터, 인간 IL-2 유전자의 프로모터, 인간 IFN 유전자의 프로모터, 인간 IL-4 유전자의 프로모터, 인간 림포톡신 유전자의 프로모터, 인간 GM-CSF 유전자의 프로모터, 인간 포스포글리세레이트 키나아제(PGK) 프로모터, 마우스 포스포글리세레이트 키나아제(PGK) 프로모터 및 설바이빈 (Survivin) 프로모터를 포함할 수 있다.
또한, 상기 벡터에서, 전술한 융합 단백질은 프로모터에 작동 가능하게 연결되어 있을 수 있다. 본 명세서에서 사용된 용어, "작동 가능하게 연결된"은 핵산 발현 조절 서열(예: 프로모터, 시그널 서열, 또는 전사조절인자 결합 위치의 어레이)과 다른 핵산 서열사이의 기능적인 결합을 의미하며, 이에 의해 상기 조절 서열은 상기 다른 핵산 서열의 전사 및/또는 번역을 조절하게 된다.
또 다른 양상은 상기 융합 단백질, 폴리뉴클레오티드, 또는 벡터를 포함하는, 숙주 세포를 제공한다.
상기 세포, 예를 들면, 진핵 세포는 효모, 곰팡이, 원생동물 (protozoa), 식물, 고등 식물 및 곤충, 또는 양서류의 세포, 또는 CHO, HeLa, HEK293, 및 COS-1과 같은 포유 동물의 세포일 수 있고, 예를 들어, 당업계에서 일반적으로 사용되는, 배양된 세포 (인 비트로), 이식된 세포 (graft cell) 및 일차 세포 배양 (인 비트로 및 엑스 비보(ex vivo)), 및 인 비보 (in vivo) 세포, 및 또한 인간을 포함하는 포유동물의 세포 (mammalian cell)일 수 있다. 또한, 상기 유기체는 효모, 곰팡이, 원생동물, 식물, 고등 식물 및 곤충, 양서류, 또는 포유 동물일 수 있다. 또한, 상기 세포는 동물 세포 또는 식물세포일 수 있다.
상기 글루타치온-S-전이효소와 이리노테칸의 결합은 GSH(Glutathione)에 의한 것일 수 있다. 즉, 상기 이리노테칸은 GSH(Glutathione)가 결합된 이리노테칸일 수 있다. 상기 GSH는 글루타치온-S-전이효소의 결합 부위로 작용하여 이리노테칸과 글루타치온-S-전이효소를 연결할 수 있다.
약물 전달체를 사용하여 개체 내로 전달할 수 있는 약학적 활성 성분의 종류는 항암제, 조영제(염료), 호르몬제, 항호르몬제, 비타민제, 칼슘제, 무기질 제제, 당류제, 유기산 제제, 단백질 아미노산 제제, 해독제, 효소 제제, 대사성 제제, 당뇨 병용제, 조직 부활 용약, 클로로필 제제, 색소제제, 종양 용약, 종양 치료제, 방사성 의약품, 조직 세포 진단제, 조직 세포 치료제, 항생 물질 제제, 항바이러스제, 복합항생물질제제, 화학요법제, 백신, 독소, 톡소이드, 항독소, 렙토스피라혈청, 혈액 제제, 생물학적 제제, 진통제, 면역원성 분자, 항히스타민제, 알레르기 용약, 비특이성 면역원 제제, 마취제, 각성제, 정신 신경 용제, 저분자 화합물, 핵산, 앱타머, 안티센스 핵산, 올리고뉴클레오타이드, 펩타이드, siRNA 및 마이크로 RNA 등을 포함할 수 있다.
상기 이리노테칸은 항암제일 수 있으며 이의 약학적으로 허용가능한 염을 포함할 수 있다.
다른 구체예에 있어서, 상기 이리노테칸은 이리노테칸이 담지된 또는 이리노테칸을 담지할 수 있는 나노파티클일 수 있다. 나노파티클은 종래의 기술에 따라 약물 전달체로서 적용할 수 있는 나노파티클이라면 제한없이 적용될 수 있다. 구체적으로, 다공성 실리카 나노파티클(mesoporous silica nanoparticle, MSN), 골드 나노파티클(gold nanoparticle), 마그네틱 나노파티클(magnetic nanoparticle), 핵산-금속유기 금속체 나노파티클(Nucleic acid-Metal Organic Framework nanoparticle) 및 중합체 나노파티클(polymer nanoparticle)로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나인 것일 수 있다. 또한, 상기 나노파티클에 GSH(Glutathione)이 결합된 것일 수 있다. 이에 의해, 상기 나노파티클은 GST를 포함하는 융합 단백질과 결합할 수 있다.
다른 양상은 글루타치온-S-전이효소(glutathione-S-transferase, GST) 분자; HER2(human epidermal growth factor receptor2)에 결합능을 갖는 애피바디(affibody) 또는 다이아바디(diabody) 분자; 상기 글루타치온-S-전이효소와 상기 애피바디 또는 다이아바디를 연결하고, 프로테아제가 결합하지 않는 링커; 및 상기 글루타치온-S-전이효소와 GSH(Glutathione) 분자에 의해 연결된 이리노테칸 분자를 포함하는 암 예방 또는 치료용 약학적 조성물을 제공한다.
또 다른 양상은 글루타치온-S-전이효소(glutathione-S-transferase, GST) 분자; HER2(human epidermal growth factor receptor2)에 결합능을 갖는 애피바디(affibody) 또는 다이아바디(diabody) 분자; 상기 글루타치온-S-전이효소와 상기 애피바디 또는 다이아바디를 연결하고, 프로테아제가 결합하지 않는 링커; 및 상기 글루타치온-S-전이효소와 GSH(Glutathione) 분자에 의해 결합된 이리노테칸 분자를 함유하는 약물전달체를 그를 필요로 하는 개체에 투여하는 단계를 포함하는 개체 내 약물을 전달하는 방법을 제공하는 것이다.
또 다른 양상은 글루타치온-S-전이효소(glutathione-S-transferase, GST) 분자; HER2(human epidermal growth factor receptor2)에 결합능을 갖는 애피바디(affibody) 또는 다이아바디(diabody) 분자; 상기 글루타치온-S-전이효소와 상기 애피바디 또는 다이아바디를 연결하고, 프로테아제가 결합하지 않는 링커; 및 상기 글루타치온-S-전이효소와 GSH(Glutathione) 분자에 의해 결합된 이리노테칸 분자를 함유하는 약물전달체를 그를 필요로 하는 개체에 투여하는 단계를 포함하는 암을 예방 또는 치료하는 방법을 제공하는 것이다.
용어 "대상체", "개체" 및 "환자"는 척추동물, 바람직하게는 포유동물, 더욱 바람직하게는 인간을 지칭하기 위해 본원에서 상호교환가능하게 사용된다. 포유동물은 쥣과, 원숭이, 인간, 농장 동물, 스포츠 동물 및 애완동물을 포함하나 이들에 한정되지 않는다. 생체내에서 수득되거나 시험관내에서 배양된 생물학적 엔티티(entity)의 조직, 세포 및 그들의 자손도 또한 포함된다.
용어 "치료제" 또는 "약학적 조성물"는, 대상체로의 투여 시에 몇몇 유리한 효과를 부여하는 분자 또는 화합물을 지칭한다. 유리한 효과는 진단적 결정을 가능하게 하는 것; 질병, 증상, 장애 또는 병태의 개선; 질병, 증상, 장애 또는 질환의 발병의 감소 또는 예방; 및 일반적으로 질병, 증상, 장애 또는 병태의 대응을 포함한다.
본원에 사용되는 바와 같이, "치료" 또는 "치료하는" 또는 "완화하는" 또는 "개선하는"은 상호교환가능하게 사용된다. 이들 용어는 치료 이익 및/또는 예방 이익을 포함하나 이들에 한정되지 않는 유리한 또는 요망되는 결과를 수득하는 방법을 지칭한다. 치료 이익은 치료 하의 하나 이상의 질병, 질환 또는 증상의 임의의 치료적으로 유의미한 개선 또는 그에 대한 효과를 의미한다. 예방 이익에 있어서, 조성물은 특정 질병, 질환 또는 증상이 발생할 위험이 있는 대상체에게 또는 질병, 질환 또는 증상이 아직 나타나지 않을지라도, 질병의 하나 이상의 생리학적 증상을 보고하는 대상체에게 투여될 수 있다.
용어 "유효량" 또는 "치료적 유효량"은 유리한 또는 요망되는 결과를 야기하기에 충분한 작용제의 양을 지칭한다. 치료적 유효량은 치료되는 대상체 및 병태, 대상체의 체중 및 연령, 병태의 중증도, 투여 방식 등 중 하나 이상에 따라 달라질 수 있으며, 이는 당업자에 의해 용이하게 결정될 수 있다. 또한, 상기 용어는 본원에 기술된 영상화 방법 중 임의의 것에 의한 검출을 위한 이미지를 제공할 용량에 적용된다. 특정 용량은 선택된 특정 작용제, 뒤따르는 투여 요법, 그것이 다른 화합물과 병용하여 투여되는지 여부, 투여 시기, 영상화되는 조직 및 그것을 운반하는 신체 전달 시스템 중 하나 이상에 따라 달라질 수 있다.
상기 암은 폐암(예를 들면, 비소세포성 폐암), 췌장암, 위암, 간암, 대장암, 뇌암, 유방암, 갑상선암, 방광암, 식도암, 또는 자궁암일 수 있다. 또한, 상기 암은 항암제에 대한 내성(예를 들면, 다제 내성)을 갖는 위암, 유방암, 폐암, 간암, 식도암 및 전립선암으로 이루어진 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상인 것일 수 있다.
상기 약학적 조성물은 임상투여시 비경구로 투여가 가능하며 일반적인 의약품 제제의 형태로 사용될 수 있다. 비경구 투여는 직장, 정맥, 복막, 근육, 동맥, 경피, 비강(Nasal), 흡입, 안구 및 피하와 같은 경구 이외의 투여경로를 통한 투여를 의미할 수 있다. 본 발명의 상기 약학적 조성물을 의약품으로 사용하는 경우, 추가로 동일 또는 유사한 기능을 나타내는 유효성분을 1종 이상 함유할 수 있다.
상기 약학적 조성물을 제제화할 경우에는 보통 사용하는 충진제, 증량제, 결합제, 습윤제, 붕해제, 계면활성제 등의 희석제 또는 부형제를 사용하여 조제된다. 비경구투여를 위한 제제에는 멸균된 수용액, 비수성용제, 현탁제, 유제, 동결건조제제, 좌제가 포함된다. 비수성용제, 현탁용제로는 프로필렌글리콜(Propylene glycol), 폴리에틸렌 글리콜, 올리브 오일과 같은 식물성 기름, 에틸올레이트와 같은 주사 가능한 에스테르 등이 사용될 수 있다. 좌제의 기제로는 위텝솔(Witepsol), 마크로골, 트윈(Tween) 61, 카카오지, 리우린지, 글리세로제라틴 등이 사용될 수 있다.
또한, 상기 약학적 조성물은 생리식염수 또는 유기용매와 같이 약제로 허용된 여러 전달체(Carrier)와 혼합하여 사용될 수 있고, 안정성이나 흡수성을 증가시키기 위하여 글루코스, 수크로스 또는 덱스트란과 같은 탄수화물, 아스코르브산(Ascorbic acid) 또는 글루타치온(Glutathione)과 같은 항산화제(Antioxidants), 킬레이트화제(Chelating agents), 저분자 단백질 또는 다른 안정화제(Stabilizers)들이 약제로 사용될 수 있다.
상기 약학적 조성물의 유효용량은 0.01 내지 100 ㎎/㎏이고, 바람직하게는 0.1 내지 10 ㎎/㎏ 이며, 하루 1회 내지 3회 투여될 수 있다.
또 다른 양상은 하기의 구성을 포함하는, 단백질 코로나 외층(protein corona shield)을 가지는 나노파티클(protein corona shield nanoparticle, PCSN)을 제공한다:
a) 약물을 담지할 수 있는 나노파티클; b) 나노파티클의 표면에 결합된, 글루타치온-S-전이효소(glutathione-S-transferase, GST) 포함 융합 단백질.
또한, 본 발명은 상기 나노파티클의 내부에 약물이 담지된, 단백질 코로나 외층을 가지는 나노파티클 약물 전달체를 제공한다.
또한, 본 발명은 하기 i) 내지 iii) 단계를 포함하는, 단백질 코로나 외층을 가지는 나노파티클 약물 전달체의 제조 방법을 제공한다:
i) 나노파티클 표면에 링커(예를 들면, GSH)를 결합시키는 단계; ii) 상기 단계 i)에서 링커와 결합된 나노파티클의 내부 또는 표면에 약물을 담지시키는 단계; 및 iii) 상기 단계 ii)에서 약물을 담지한 나노파티클 표면에 GST 융합 단백질을 코팅하여 단백질 코로나 외층(PCS)을 형성시키는 단계.
상기 단백질 코로나 외층(protein corona shield)을 가지는 나노파티클은 융합 단백질로 표면이 전-코팅된 단백질 코로나 외층을 먼저 생성하였기 때문에 체내 환경에서 혈청 단백질에 의해 둘러싸이는 코로나층이 형성되지 않아, 대식 세포에 의한 면역 반응을 회피할 수 있어 스텔스 효과(stealth effect)를 유의적으로 가질 수 있다. 따라서, 상기 단백질 코로나 외층을 가지는 나노파티클(PCSN)은 생체 내 잔존 시간을 지속시킬 수 있을 뿐 아니라, 표적 세포로의 표적능이 향상되어 타겟으로 하는 세포로 효과적으로 전달될 수 있으므로, 표적 치료제로서 유용하게 사용될 수 있다.
일 양상에 따른 융합 단백질 및 그를 포함하는 약물 전달체에 의하면, 생체 내 잔존 시간을 지속시킬 수 있을 뿐 아니라, 표적 세포로의 표적능이 향상되어 타겟으로 하는 세포로 효과적으로 전달될 수 있으므로, 표적 치료제로서 유용하게 사용될 수 있는 효과가 있다.
도 1은 본 발명에서 단백질 코로나 외층을 가지는 나노파티클(protein corona shield nanoparticle, PCSN)을 제조하기 위한 과정을 나타낸다:
도 1a는 생체 내에서 약물 전달체가 표적 세포에 대하여 유의적인 약물 전달능을 나타내지 못하는 한계를 극복하기 위한, 본 발명의 PCSN 제조 전략을 나타내는 모식도이며; 및 도 1b는 GST-Afb 융합 단백질로 코로나 외층이 형성된 PCSN의 제조 과정을 나타내는 모식도이다.
도 2는 정제한 융합 단백질의 분자량을 확인한 결과를 나타낸다.
도 3은 유방암 세포주인 SKBR3에 대한 KMD110의 세포 독성 효과를 확인한 결과를 나타낸다.
도 4는 위암 세포주인 NCI-N87, SNU216 및 MKN74에 대한 KMD110의 세포 독성 효과를 확인한 결과를 나타낸다.
도 5는 인간 위암 세포주 NCI-N87를 이식한 마우스 동물모델에서 KMD110의 항종양 효과를 확인한 결과 그래프이다.
이하, 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 예시하기 위한 것으로서, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되는 것으로 해석되지 않는 것은 당업계에서 통상의 지식을 가진 자에 있어서 자명할 것이다.
실시예 1. 애피바디(affibody) 및 글루타치온-S-전이효소(glutathione-S-transferase, GST) 융합 단백질의 제조
본 발명에서는 약물 전달체로 사용하기 위한 나노파티클의 표면에 단백질 코로나의 외층을 형성시켜, 생체 내 환경에서도 안정성 및 표적능이 향상된 약물 전달체를 제조하고자 하였다. 이를 위해, 먼저 단백질 코로나 외층을 구성할 수 있는 융합 단백질(fusion protein)을 제조하였다. 융합 단백질은 암세포 표면의 수용체에 특이적으로 결합할 수 있는 애피바디(affibody, Afb)와 GST가 결합된 형태가 되도록 발현하였다.
구체적으로, 본 발명에서는 Afb로서 HER2에 특이적으로 결합하는 HER2 Afb를 사용하였다. GST 단백질은 서열번호 13의 human GSTP1-1 (P09211)을 도입하였으며 GST의 C-terminal 말단에 링커 서열 SGGGSGGGSGGGSGGGSGGGSGGG(서열번호 1)을 결합시킨 다음 서열번호 14의 HER2-affibody (ZHER2:342)를 도입하였다. 서열번호 15의 HER2-affibody-GST 융합단백질의 아미노산 서열을 기본으로 하여 대장균에서 발현을 유도하기 위한 codon optimization을 수행한 후 Invitrogen GeneArt 유전자 합성(ThermoFisher)을 통해 암호화된 유전자를 합성하고 (서열번호 16) 단백질 발현 플라스미드인 pET151/D-TOPO에 삽입하였다.
상기 구축된 플라스미드를 E. Coli BL21(DE3) 균주에 삽입하여 배양하였다. 융합단백질은 배양액에 IPTG를 처리하여 발현을 유도하였으며 30℃에서 16 시간 동안 배양하고 세포를 원심분리하여 수득하였다. 수득한 배양세포를 50 mM PBS에 현탁한후 고압세포파쇄기를 이용해 세포를 파쇄하였다. 파쇄 후 원심분리하여 융합단백질을 포함한 상등액을 분리 회수한 다음 FPLC 장비를 사용하여 NI-NTA affinity chromatography로 HER2-affibody-GST를 정제하였다. 정제된 단백질은 SDS-PAGE 분석을 통해 단백질의 순도 및 분자량을 분석하였다.
그 결과, 도 2에서 나타난 바와 같이 GST-HER2 Afb를 발현하고 이의 분자량을 확인하였다.
실시예 2. 단백질 코로나 외층(PCN)을 가지는 약물 전달체의 제조
<2-1> 다공성 실리카 나노파티클 준비
약물 전달체의 기본 구조로서, 다공성 실리카 나노파티클(mesoporous silica nanoparticle, MSN)을 준비하였다.
먼저, 직경 50 ㎚ 이하의 MSN을 준비하기 위해 1.53 g의 CTAB 및 0.3 g의 수산화테트라에틸암모늄 용액(Tetraethylammonium hydroxide, TEAH)을 100 g의 탈이온수에 가한 후, 80℃에서 1 시간 동안 교반하여 이를 용해시켰다. CTAB 및 TEAH가 완전히 용해되면, 14.45 g의 TEOS를 가하고 2 시간 동안 800 rpm으로 추가 교반하였다. 교반된 교반액이 백색의 고체상을 나타내면 이를 진공 필터로 여과한 다음, 탈이온수로 세척하고, 70℃의 공기중에서 건조시켜 건조물을 수득하였다. 수득한 건조물은 마노 절구(agate mortar)에서 균질화한 다음, 550℃에서 5 시간 동안 하소(calcine)하여 최종적으로 다공성 실리카 나노파티클(MSN)을 수득하였다.
<2-2> GSH를 표면 결합시킨 나노파티클의 제조
본 발명의 단백질 코로나 외층을 가지는 나노파티클을 제조하기 위한 과정으로서, 표면에 글루타치온(glutathione, GSH)을 티올-엔 클릭 화학반응(thiol-ene click chemistry)으로 결합시킨 나노파티클(GSH-modified particle, MMSN)을 제조하였다.
상기 실시예 <2-2>에서 제조된 MSN 100 ㎎ 및 1 ㎖의 3-(트리메톡시실일)프로필 아크릴레이트(3-(trimethoxysilyl) propyl acrylate)를 18 ㎖ 톨루엔에 혼합하였다. 혼합된 혼합액은 60℃에서 24 시간 동안 교반하여 반응시켰다. 반응 후, 에탄올 및 탈이온수로 반응된 MSN를 세척한 다음, 16 ㎖의 DMF에 가하여 MSN을 준비하였다. 외층을 이루기 위한 GSH는 100 ㎎의 GSH를 2 ㎖의 탈이온수에 용해하여 준비하였다. 그런 다음, 상기 준비한 MSN 포함 용액 및 GSH 수용액을 혼합하고, 40 ㎕의 피리딘을 가하여 볼텍싱하여 교반하였다. 교반후, 혼합액은 실온에서 72 시간 동안 방치하여 반응을 유도하였다. 반응 종료 후, 나노파티클을 에탄올로 3 회 세척하고 실온에서 진공 건조하여, GSH가 표면에 결합된 나노파티클(MMSN)을 최종적으로 수득하였다.
<2-3> GST-Afb 단백질 코로나 외층을 가지는 나노파티클의 제조
본 발명에서 약물 전달체로 사용하고자 하는, 단백질 코로나 외층을 가지는 나노파티클(protein corona shield nanoparticle, PCSN)을 제조하기 위해, 단백질 코로나 외층으로서 GST-Afb를 적용한 나노파티클을 제조하였다. MSN은 내부 및 표면에 화학 작용기를 통해 물질을 담지할 수 있는 전달체로서 사용되므로, 본 발명에서는 MSN 표면에 GSH를 결합하여 MMSN를 제조하고, 이에 GST를 통해 결합된 단백질 코로나 외층을 형성하여, 도 1b의 과정을 통해 PCSN을 제조하였다.
구체적으로, 상기 실시예 <2-2>에서 제조된 GSH-MSN에 약물을 담지하기 위하여 5 mg의 GSH-MSN을 1 ml DMSO에 분산 시킨 후 이리노테칸(irinotecan)이 녹아 있는 DMSO 용액(10 mg/ml) 1 ml에 천천히 첨가하고 실온에서 12 시간 교반하였다. 교반 후 이리노테칸이 담지된 GSH-이리노테칸 MSN은 원심분리하여 회수하고 D.I water로 3회 세척 후 진공 건조하였다. 약물이 담지된 비율은 아래의 식으로 계산하였다.
약물 담지 효율: Drug loading capacity (%) = Mass of drug in GSH-MSN / Mass of GSH-MSN x 100
그 다음, 단백질 코로나 외층을 가지는 나노파티클(PCSN)을 제조하기 위해 HER2-affibody-GST 단백질 1 mg을 준비하여 2 ml의 PBS에 용해하여 준비하였다. 이리노테칸을 담지한 GSH-이리노테칸 MSN 1 mg을 3 ml의 PBS에 분산 시킨 후 준비한 단백질 용액을 4℃에서 교반하면서 한방울씩 천천히 가하여 혼합하고 2 시간 동안 추가로 교반하였다. 교반 후 원심분리하여 결합되지 않은 단백질을 제거하고 PBS로 3회 세척하여 최종적으로 HER2-affibody-GST-이리노테칸 MSN인 PCSN (KMD110)을 수득하고 PBS에 보관하면서 하기의 효능평가 실험에 사용하였다.
실험예 1. HER2-affibody-GST-이리노테칸 MSN (KMD110)의 표적 세포에 대한 세포 독성 확인
KMD110의 표적세포로의 약물 전달능을 확인하기 위해 표적 세포에 대한 세포 독성을 확인하였다.
먼저, 실험에 사용된 세포는 한국세포주은행에서 구입한 인간 유방암 세포주인 SKBR3와 인간 신장 세포주인 HEK293, 인간 위암 세포주인 NCI-N87, SNU216, MKN74를 이용하였다. 10% fetal bovine serum (FBS, Hyclone, Logan, UT, USA), 1% stereptomycin-peniciline (Invitrogen, Carlsbad, CA, USA)을 첨가한 RPMI-1640(Thermo fisher scientific, USA)과 EMEM(ATCC, USA) 배지를 사용하여 37℃, 5% CO2 incubator에서 배양하였다. 각 실험에 사용된 세포는 80%-90% 정도의 밀도로 자랐을 때 계대 배양하였다.
그 다음, 세포 독성을 확인하기 위해서 SKBR3와 HEK293 세포 및 인간 위암 세포주인 NCI-N87, SNU216, MKN74 세포를 96-well plate에 1Х104 cell/well로 분주한 후 24시간 동안 배양한 후 KMD110을 농도별로 처리하여 72시간 동안 배양하였다. 배양된 plate에 cck-8(Dojindo, Japan)를 10 μL씩 96-well에 처리 한 후 1시간 동안 배양하였다. 이 때, 수용성이 높은 테트라 졸륨염 WST-8은 세포의 탈수소 효소 활성에 의해 감소되어 조직 배양 배지에 용해되는 황색 포르마잔 염료를 생성한다. 흡광도 측정한 값은 생존세포 수와 비례한다. Microplate reader (Multiskan SkyHigh Microplate Spectrophotometer, Thermo fisher scientific, USA)로 450 nm에서 흡광도를 측정하여 대조군과 비교하여 세포 생존률을 나타내었다.
상기와 같은 방법으로 먼저 KMD110에 대한 Her2 양성인 유방암 세포 SKBR3, Her2 음성인 신장세포 HEK293에서의 세포 생존율을 확인하였다.
상기와 같이 SKBR3, HEK293를 96 well plate에 접종하여 24시간 동안 배양한 후, 이리노테칸을 담지한 나노입자인 KMD110을, 이리노테칸의 최종 농도가 50 μM이 되도록 각각의 세포에 농도별로 처리하였다.
그 결과, KMD110이 Her2발현이 낮은 HEK293 세포에 대하여는 독성을 나타내지 않으나, Her2발현이 높은 유방암 세포주인 SKBR3 세포에만 결합하는 결합능을 나타내어 Her2양성 암세포 특이적인 표적능을 나타내는 것으로 확인하였다(도 3). 이를 통해, Her2양성 암 세포에 대하여 특이적으로 세포 사멸 효과를 나타낼 수 있어, 약물 전달체로서 사용하였을 때 유의적인 항암 효과를 나타낼 수 있을 것으로 확인하였다.
그 다음, 상기와 같은 방법으로 인간 위암 세포주인 NCI-N87, SNU216, MKN74에 대한 KMD110의 세포 독성을 확인하였다.
이리노테칸을 담지한 KMD110을, 이리노테칸 농도를 기준으로 3.1, 6.2, 12.5, 25, 50, 100 및 200μM로 하여 배양된 인간 위암 세포주인 NCI-N87, SNU216, MKN74 세포에 각각 처리한 후, 72 시간 동안 배양하였다. 배양 종료 후, cck-8 kit를 사용하여 세포 생존률을 확인하였다.
그 결과, 도 4에서 나타낸 바와 같이 KMD110을 처리한 경우에 농도 의존적으로 세포 사멸이 나타났으며, KMD110 최고 처리 농도 200 μM에서 NCI-N87은 66%, SNU126은 72%, MKN74는 68%의 세포 사멸을 보였다. KMD110이 위암 세포주에서 50%이상의 세포 사멸을 보였으므로 위암 치료제로서 유의적인 효과를 나타낼 수 있을 것을 확인하였다. 또한, Graphpad prism으로 KMD110의 IC50값을 구했을때, 표 1에 나타낸것과 같이 SKBR3는 로딩된 이리노테칸 농도 기준 11.46 μM, NCI-N87은 12.87 μM, SNU216은 11.08 μM, MKN74는 20.10 μM인 것을 확인하였다. 반면에 각 세포의 이리노테칸 IC50값은 NCI-N87은 14.52 μM, SNU216은 17.8 μM, MKN74는 28.92 μM로 확인하였다. 이를 통해, KMD110의 Her2 afb의 선택적 치료와 위암 치료제로서의 효과를 확인하였다.
Cell line KMD110 IC50 (μM) Irinotecan IC50 (μM)
Gastric cancer NCI-N87 10.16 to 15.41 12.59 to 16.76
Gastric cancer SNU216 9.740 to 12.62 15.35 to 20.65
Gastric cancer MKN74 17.11 to 23.61 24.58 to 34.03
실험예 2. HER2-affibody-GST-이리노테칸 MSN (KMD110)의 in vivo 효능 확인
KMD110의 표적 종양 세포에 대한 항암 효과를 확인하기 위하여 인간 위암 세포주를 이식한 마우스 동물모델(mouse xenograft model)을 이용하여 생체 내(in vivo) 환경에서 다음과 같이 실험을 수행하였다.
구체적으로, 먼저 5 주령 BALB/c nude 마우스를 구매하여 사료 및 음수를 자유롭게 급여할 수 있는 환경에서 사육하면서 10일 이상 순화한 뒤 종양 세포를 이식하였다. 종양 세포는 HER2 positive 위암 NCI-N87 세포를 개체별로 5x106 cells/100 μL (serum free media 50 μL + Matrigel 50 μL)로 왼쪽 옆구리 부분 일정한 위치에 피하투여 하고, 1주 경과 이후부터 시험물질 투여개시 전까지 종양측정을 실시하여 종양의 크기가 약 100-200 mm3에 도달하는 개체를 선별하여 각 시험군에 무작위 분배한 후 투여를 개시하였다.
시험군은 대조군인 PBS 투여군과 시험물질 KMD110 (Irinotecan 기준 2.4 mg/kg) 투여군으로 각각 5 마리씩 나누고 21일간 3일 1회, 총 8회 정맥투여 하였으며, 투여 후부터 종료일까지 주 2회 종양크기 및 체중을 측정하였다. 종양의 크기, 상대 종양 부피(Relative tumor volume, RTV) 및 종양 성장 억제율(Tumor growth inhibition %, TGI %)은 종양의 장축 및 단축 길이를 측정 하여 아래의 식으로 산출하였다.
[식 1]
Tumor size (mm3) = (length x width2)/2, (L: 장축, W: 단축)
[식 2]
RTV = (tumor size on final day)/(tumor size on initial day)
[식 3]
TGI % = [1 - (RTV of the treated group)/(RTV of the control group)] x 100 (%)
그 결과, 도 5에 나타난 바와 같이 KMD110 투여군이 대조군과 비교하여 종양 크기가 현저하게 줄어드는 것을 확인하였다. KMD110 투여 후 21일의 상대 종양 부피(RTV)는 2.4로 확인 되었으며, 대조군은 RTV가 3.3으로 나타났다. 또한, KMD110 투여군은 대조군 대비 종양 성장 억제율(TGI %)이 22.6%로 종양의 진행이 억제되는 것을 확인할 수 있었다.
이러한 결과는, KMD110이 우수한 항암 효과를 나타내어 암 표적 치료제로서 유용하게 사용될 수 있음을 나타낸다.
<110> Fusion Biotechnology KMD Bio <120> HER2-GST-irinotecan complex, and pharmaceutical composition for preventing or treating cancer comprising the same <130> PN220121KR <160> 16 <170> KoPatentIn 3.0 <210> 1 <211> 24 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Linker domain <400> 1 Ser Gly Gly Gly Ser Gly Gly Gly Ser Gly Gly Gly Ser Gly Gly Gly 1 5 10 15 Ser Gly Gly Gly Ser Gly Gly Gly 20 <210> 2 <211> 5 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Linker 1 <400> 2 Gly Gly Gly Gly Ser 1 5 <210> 3 <211> 5 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Linker 2 <400> 3 Ser Gly Gly Gly Gly 1 5 <210> 4 <211> 5 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Linker 3 <400> 4 Ser Arg Ser Ser Gly 1 5 <210> 5 <211> 5 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Linker 4 <400> 5 Ser Gly Ser Ser Cys 1 5 <210> 6 <211> 12 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Linker 5 <400> 6 Gly Lys Ser Ser Gly Ser Gly Ser Glu Ser Lys Ser 1 5 10 <210> 7 <211> 6 <212> PRT <213> Artificial 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Ile Ser Phe Ala Asp Tyr Asn Leu Leu Asp Leu Leu 145 150 155 160 Leu Ile His Glu Val Leu Ala Pro Gly Cys Leu Asp Ala Phe Pro Leu 165 170 175 Leu Ser Ala Tyr Val Gly Arg Leu Ser Ala Arg Pro Lys Leu Lys Ala 180 185 190 Phe Leu Ala Ser Pro Glu Tyr Val Asn Leu Pro Ile Asn Gly Asn Gly 195 200 205 Lys Gln Ser Gly Gly Gly Ser Gly Gly Gly Ser Gly Gly Gly Ser Gly 210 215 220 Gly Gly Ser Gly Gly Gly Ser Gly Gly Gly Val Asp Asn Lys Phe Asn 225 230 235 240 Lys Glu Met Arg Asn Ala Tyr Trp Glu Ile Ala Leu Leu Pro Asn Leu 245 250 255 Asn Asn Gln Gln Lys Arg Ala Phe Ile Arg Ser Leu Tyr Asp Asp Pro 260 265 270 Ser Gln Ser Ala Asn Leu Leu Ala Glu Ala Lys Lys Leu Asn Asp Ala 275 280 285 Gln Ala Pro Lys 290 <210> 16 <211> 876 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> nucleic acid sequence of HER2-affibody-GST <400> 16 atgcctccgt ataccgttgt ttattttccg gttcgtggtc gttgtgcagc actgcgtatg 60 ctgctggcag atcagggtca gagctggaaa gaagaagttg ttaccgttga aacctggcaa 120 gaaggtagcc tgaaagcaag ctgtctgtat ggtcagctgc cgaaatttca ggatggtgat 180 ctgacactgt atcagagcaa taccattctg cgtcatctgg gtcgtaccct gggcctgtat 240 ggtaaagatc agcaagaagc agcactggtt gatatggtta atgatggtgt tgaagatctg 300 cgctgcaaat atatcagcct gatctatacc aattatgagg caggcaaaga tgattacgtt 360 aaagcactgc caggtcagct gaaaccgttt gaaaccctgc tgagccagaa tcaaggtggt 420 aaaaccttta ttgtgggtga tcagattagc ttcgcagatt ataacctgct ggatctgctg 480 ctgattcatg aagttctggc accgggttgt ctggatgcat ttccgctgct gagcgcctat 540 gttggtcgtc tgagcgcacg tccgaaactg aaagcatttc tggcaagtcc ggaatatgtt 600 aacctgccga ttaatggtaa tggtaaacag agcggtggtg gttcaggtgg tggtagcggt 660 ggcggtagtg gcggtggcag tggcggaggt tctggtggcg gtgttgataa caaatttaac 720 aaagaaatgc gcaacgccta ttgggaaatt gcactgctgc cgaatctgaa taatcagcag 780 aaacgtgcat ttatccgtag cctgtatgat gatccgagcc agagcgcaaa tctgctggcc 840 gaagcaaaaa aactgaatga tgcacaggca ccgaaa 876

Claims (6)

  1. 글루타치온-S-전이효소(glutathione-S-transferase, GST) 분자;
    HER2(human epidermal growth factor receptor2)에 결합능을 갖는 애피바디(affibody) 또는 다이아바디(diabody) 분자;
    상기 글루타치온-S-전이효소와 상기 애피바디 또는 다이아바디를 연결하고, 프로테아제가 결합하지 않는 링커; 및
    상기 글루타치온-S-전이효소와 GSH(Glutathione) 분자에 의해 결합된 이리노테칸(Irinotecan) 분자를 함유하는 약물 전달체.
  2. 청구항 1에 있어서, 상기 이리노테칸은 나노파티클에 담지된 것인 약물 전달체.
  3. 청구항 2에 있어서, 상기 나노파티클은 다공성 실리카 나노파티클(mesoporous silica nanoparticle, MSN), 골드 나노파티클(gold nanoparticle), 마그네틱 나노파티클(magnetic nanoparticle), 핵산-금속유기 금속체 나노파티클(Nucleic acid-Metal Organic Framework nanoparticle) 및 중합체 나노파티클(polymer nanoparticle)로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나인 것인 약물 전달체.
  4. 글루타치온-S-전이효소(glutathione-S-transferase, GST) 분자;
    HER2(human epidermal growth factor receptor2)에 결합능을 갖는 애피바디(affibody) 또는 다이아바디(diabody) 분자;
    상기 글루타치온-S-전이효소와 상기 애피바디 또는 다이아바디를 연결하고, 프로테아제가 결합하지 않는 링커; 및
    상기 글루타치온-S-전이효소와 GSH(Glutathione) 분자에 의해 연결된 이리노테칸(Irinotecan) 분자를 포함하는 암 예방 또는 치료용 약학적 조성물.
  5. 청구항 4에 있어서, 상기 이리노테칸은 나노파티클에 담지된 것인 약학적 조성물.
  6. 청구항 5에 있어서, 상기 나노파티클은 다공성 실리카 나노파티클(mesoporous silica nanoparticle, MSN), 골드 나노파티클(gold nanoparticle), 마그네틱 나노파티클(magnetic nanoparticle), 핵산-금속유기 금속체 나노파티클(Nucleic acid-Metal Organic Framework nanoparticle) 및 중합체 나노파티클(polymer nanoparticle)로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나인 것인 약학적 조성물.
KR1020220024476A 2021-02-24 2022-02-24 Her2-gst-이리노테칸 복합체, 및 이를 포함하는 암 예방 또는 치료용 약학적 조성물 KR20220121220A (ko)

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