KR20220100546A - 암세포의 항암 면역치료를 위한 항체-폴리에틸렌글리콜-광감각제 접합체 - Google Patents

암세포의 항암 면역치료를 위한 항체-폴리에틸렌글리콜-광감각제 접합체 Download PDF

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Abstract

본 발명은 특정 수용체를 과발현하는 암세포의 항암 면역치료를 위한 항체-폴리에틸렌글리콜-광감각제 컨쥬게이트에 관한 것이다. 상기 컨쥬게이트는 항체의 암세표 표적능을 개선하고, 일항산소 생성능이 우수하며, 수지상세포의 성숙 및 암세포 식세포 작용을 촉진하고, 암 조직 내 면역세포의 침투 또한 촉진하여 현저히 우수한 항암 효과를 나타내며, 생체 내에 투여 후 레이저 조사에 의해 광역학 치료 효과를 나타낸다.

Description

암세포의 항암 면역치료를 위한 항체-폴리에틸렌글리콜-광감각제 접합체{ANTIBODY-POLYETHYLENE GLYCOL-PHOTOSENSITIZER CONJUGATE FOR ANTI-CANCER IMMUNOTHERAPY OF CANCER CELLS}
본 발명은 특정 수용체를 과발현하는 암세포의 항암 면역치료를 위한 항체-폴리에틸렌글리콜-광감각제 접합체에 관한 것이다.
전 세계적으로 암 발병과 사망률은 매년 증가하고 있으며 대표적인 치료법에는 외과적 수술, 방사선 조사, 화학요법 등이 있다. 특히 전통적으로 활용되고 있는 세포독성 항암제부터 최근 개발된 표적 항암제까지 다양한 종류의 항암화학요법이 임상에서 활용되고 있다. 기존의 세포독성 항암제는 암세포뿐만 아니라 정상 세포에도 영향을 주어 전신 독성과 세포독성이 나타나며 이에 따라 다양한 부작용을 일으킨다.
세포독성 항암제의 한계점을 극복하고자 암세포만 표적하여 사멸시키는 단일클론항체 치료제에 대한 연구 및 개발이 지속적으로 이루어지고 있으며, 이미 미국 식품의약국 (Food and Drug Administration, FDA)에서 승인된 치료제들이 존재한다. 승인된 단일클론항체에는 세툭시맙 (cetuximab), 아벨루맙(avelumab), 리툭시맙 (rituximab), 트라스투주맙 (trastuzumab), 알렘투주맙 (alemtuzumab), 베바시주맙 (bevacizumab), 이필리무맙 (ipilimumab) 등이 있다.
하지만 최근 임상 결과에 의하면 일부 단일클론항체는 세포 내 신호전달 체계에서 수용체 하방에 위치한 유전자 돌연변이를 갖는 환자에서는 그 효과가 현저히 감소한다고 알려져 있어, 상기 항체들을 대체할 수 있는 개선된 치료용 항체의 개발이 요구되고 있다.
한편, 광역학 치료는 광감작제가 빛과 산소와 화학적 반응을 일으킬 때 발생하는 일항 산소(singlet oxygen)와 이에 의해 유발되는 자유라디칼 (free radical) 상태의 산소로 주변 세포성분과 혈관 조직을 화학적으로 파괴함으로써 암세포의 세포자멸괴사 (apoptosis)와 세포괴사 (necrosis)를 유도하는 치료법이다. 또한, 종양 부위의 혈관내피세포 손상, 혈전 형성, 백혈구 침착, 혈관 수축, 혈관 침투성 증가 등의 병리학적 장애를 일으켜 혈류의 감소와 혈행 정지를 유발함으로써 궁극적으로 산소결핍에 의한 종양 괴사를 유도하기도 한다.
아울러 광역학 치료에 따른 염증반응으로 인지질가수분해효소 A2 (phospholipase A2)가 활성화되고, 종양 혈관의 상피세포 손상으로 노출된 기저막에 호중구와 혈소판들이 침착하게 된다. 이는 결과적으로 종양 혈관 손상과 다양한 염증 매개물질들을 발생시켜 적혈구의 혈관 유출, 백혈구의 침윤을 야기하는 면역학적 효과를 유발하며, 유발된 면역 체계에 의해 장기적인 항암 특이적 면역효과로 암의 재발과 전이를 저해할 수 있다.
또한, 수지상 세포는 생체 내 면역 체계에서 가장 중심이 되는데 항원과 항체의 결합물인 면역 복합체(immune complex)에서 항체의 Fc 부분이 수지상 세포의 Fc 감마 리셉터 (FcγR receptor)에 인지되면 수지상 세포가 항원을 정확하고 빠르게 인지하여 효과적인 항원 특이적인 면역을 유발한다.
1. 대한민국 등록특허 제10-2199383호
이미 기술한 바와 같이 현재 암 표적 치료에 사용되는 단일클론항체는 세포 내 신호전달 체계에서 하방에 위치한 유전자 돌연변이를 갖는 환자에서는 그 효과가 감소하므로 상기 항체들의 효과를 개선할 수 있는 방법이 요구되고 있다.
이에 본 발명자는 암세포에서 과발현되는 표적에 특이적으로 결합하는 항체에 광감각제를 접합한 컨쥬게이트를 제조하여 그 효과를 확인하였다. 그 결과 상기 컨쥬게이트가 기존의 항체 단독보다 더욱 효과적인 항암 효과를 유발하고, 광감각제에 의한 광역학 치료 효과도 우수하며, 항원 특이적 면역반응을 유도하고, 항체-항원 복합체 인지를 통해 수지상 세포를 성숙시켜 장기적인 항암 면역 치료 효과를 야기할 수 있다는 것을 확인하여 본 발명을 완성하게 되었다.
따라서, 본 발명의 목적은 암세포에서 과발현되는 표적에 특이적으로 결합하는 항체; 상기 항체에 공유결합으로 연결된 링커; 및 상기 링커에 공유결합으로 연결된 폴리에틸렌글리콜을 포함하는 컨쥬게이트, 상기 컨쥬게이트를 포함하는 암 치료용 약학 조성물을 제공하는 것이다.
상기 목적을 달성하기 위하여 본 발명의 일 양상은 암세포에서 과발현되는 표적에 특이적으로 결합하는 항체; 상기 항체에 공유결합으로 연결된 링커; 및 상기 링커에 공유결합으로 연결된 폴리에틸렌글리콜을 포함하는 컨쥬게이트를 제공한다.
본 발명의 일 구체예에 있어서, 암세포에서 과발현되는 표적은 상피 증식인자 수용체(epidermal growth factor receptor, EGFR), 1형 세포 예정사 리간드 (Programmed death ligand 1, PD-L1) 및 인간 상피 증식인자 수용체 2형 (human epidermal growth factor receptor 2, HER2)로 이루어진 군에서 선택될 수 있으나 이에 제한되지 아니한다.
상피 증식인자 수용체(epidermal growth factor receptor, EGFR)는 170 kDa 크기의 제 1형 막 단백질로 폐암, 유방암, 결장암, 위암, 뇌암, 방광암, 두부암, 경부암, 난소암 및 전립선암에서 과잉 발현되는 것으로 알려져 있다. 상피 증식인자 수용체가 과잉 발현된 종양 세포는 상피 증식인자 수용체의 리간드인 상피 증식인자(epidermal growth factor, EGF) 및 형질전환 성장 인자-α(transforming growth factor-α, TGF-α)를 생산한다. 이때, 생산된 리간드는 상피 증식인자 수용체에 결합하여 암세포 증식과 종양 성장을 유도한다. 따라서, 상피 증식인자 수용체에 대한 항체로 상피 증식인자 수용체와 상피 증식인자의 결합을 저해하면 암세포의 성장을 억제하여 암을 치료할 수 있으며, 이는 상피 증식인자 수용체에 대한 단일클론항체를 대상으로 하여 이미 실험적으로 증명되었다. 상피 증식인자 수용체에 대한 단일클론항체의 예로는 세툭시맙 (cetuximab)이 있다.
세툭시맙은 세포 표면의 상피세포 증식 인자 수용체(EGFR)에 결합하여 리간드의 결합을 방해함으로써 수용체 활성화를 저해하고, 세포 내부로의 함입을 증대시키며, 수용체의 발현을 감소시킨다. 그 결과 세포 주기를 G0~G1에서 정지시키며, Rb (retinoblastoma) 유전자의 탈인산화를 유도한다. 또한, 암세포 증식을 저해하고, 암세포의 자멸사를 유도하며, 혈관 내피 생장 인자 (vascular endothelial growth factor, VEGF)와 같은 혈관 신생인자의 생성을 억제한다.
1형 세포 예정사 리간드 (programmed death ligand 1, PD-L1)는 40 kDa의 타입 1 막관통 수용체 단백질로 암세포에서 많이 발현되는 단백질의 일종이다. T 세포 표면에 존재하는 PD-1과 상호작용하여 면역세포의 공격을 피하는 역할을 한다. PD-L1과 PD-1의 상호작용은 림프절에서 항원 특이적 T세포의 증식을 감소시키면서 동시에 조절 세포의 세포자멸사를 감소시켜 암세포의 항암 면역 반응을 회피할 수 있게 한다. 1형 세포 예정사 리간드에 대한 단일클론항체의 예로는 아벨루맙(avelumab)이 있다.
아벨루맙은 면역관문억제제의 하나로서, 암세포에 과발현된 PD-L1을 표적으로 하는 인간 단일클론항체이다. 이 항체는 면역세포 표면의 PD-1과 암세포 표면의 PD-L1의 결합을 방해하여 면역체크포인트 역할을 하는 PD-L1 수용체 활성화를 저해하므로 암세포 종류과 관계없이 PD-L1이 발현되어 있는 암에 대해 효과를 발휘하는 장점이 있다.
인간 상피 증식인자 수용체 2형 (human epidermal growth factor receptor 2, HER2)은 세포 표면에 존재하는 분자량 185kDa의 티로신 인산화 성장인자 수용체이다. HER2 분자 내에 리간드 결합 부위가 존재하지는 않으나, EGFR, HER3, HER4와 같은 다른 수용체와 쉽게 이합체를 이루어 활성화된다. 수용체-리간드의 접합으로 다양한 세포 신호전달 경로를 통하여 세포증식, 세포생존, 전이, 혈관 신생 등의 작용을 나타낸다. 유방암의 20~30%, 위암, 난소암, 폐암, 전립선암 등 다양한 암종에서 과발현된다. 이들의 과발현으로 세포의 생존, 증식, 혈관 생성 및 전이를 촉진하는 기능이 더욱 증진된다.
세툭시맙, 아벨루맙 및 트라스트주맙과 같은 항체 치료제는 항체의존 세포매개 독성을 통하여 종양세포를 사멸시키고, 독소루비신, 파크리탁셀, 토포테칸, 아리노테칸 등 다양한 항암제에 대한 종양세포의 감수성을 향상시킨다.
본 발명자들은 세툭시맙 또는 아벨루맙에 링커 및 폴리에틸렌글리콜을 결합시켜도 항체의 표적능에 변화가 없고, 이러한 표적능은 암세포의 EGFR 또는 PD-1 발현량에 비례하는 것을 확인하였다 (도 11 및 도 12).
본 명세서에 사용된 용어, "링커(linker)"는 항체와 폴리에틸렌글리콜을 연결시키는 물질을 말하며, 말레이미드, 석시닉 안하이드라이드 및 엔-하이드록시석신이미드 에스터로 이루어진 군에서 선택될 수 있다. 바람직하게는 말레이미드일 수 있다.
본 발명의 일 구체예에서, 상기 폴리에틸렌글리콜(polyethylene glycol, PEG)은 평균 분자량이 1,000 내지 10,000 달톤(Da)일 수 있으며, 바람직하게는 1,500 내지 9,000 달톤일 수 있다. 상기 폴리에틸렌글리콜은 소수성인 광감각제의 수용성을 개선시키는 역할을 하며, 실시예에서는 클로린 e6(분자량 600 Da)의 소수성을 극복하기 위해 분자량 2,000의 폴리에틸렌글리콜을 사용하였다.
본 발명의 일 구체예에서, 항체와 링커, 링커와 폴리에틸렌글리콜은 각각 공유결합에 의해 연결될 수 있다. 공유결합은 아마이드 결합(amide bond), 카보닐 결합(carbonyl bond), 에스터 결합(ester bond), 황화 에스터 결합(thioester bond), 설폰 아마이드 결합(sulfonamide bond) 및 우레탄 결합(urethane bond)으로 이루어진 군에서 선택될 수 있다.
본 발명의 일 구체예에서, 상기 컨쥬게이트는 링커와 폴리에틸렌글리콜을 먼저 결합시킨 후 항체를 추가로 결합시키거나, 항체와 링커를 먼저 결합시키고 폴리에틸렌글리콜을 결합시키는 방법으로 제조될 수 있다.
또한, 본 발명의 일 구체예에 따르면, 상기 컨쥬게이트는 일 말단에 광감각제를 추가로 포함할 수 있으며, 바람직하게는 폴리에틸렌글리콜의 말단에 광감각제가 결합될 수 있다.
본 발명에서, 상기 광감각제는 클로린류 (chlorins), 박테리오클로린류 (bacteriochlorins), 포르피린류 (phorphyrins), 포르피센류 (porphycenes) 및 프탈로시아닌류 (phthalocyanine)로 이루어진 군에서 선택될 수 있다. 예를 들어, 포르피린류 광감각제로는 메조테트라 아미노페닐 포르피린, 아연프로토포르피린, 프로토포르피린, 헤마토포르피린이 사용될 수 있고, 프탈로시아닌류 광감각제로는 알루미늄 프탈로시아닌이 사용될 수 있다.
본 발명의 일 구체예에 따르면, 상기 클로린류 광감각제는 클로린 e6일 수 있다. 상기 클로린 e6는 이미 언급한 바와 같이 폴리에틸렌글리콜의 말단에 결합될 수 있다.
본 발명의 일 구체예에 따르면, 항체, 링커 및 폴리에틸렌콜 컨쥬게이트와 광감각제의 결합은 광감각제의 활성화에 영향을 미치지 않는다 (도 8 및 도 9).
한편, 광감각제가 추가로 결합된 컨쥬게이트는 항체 자체의 항암 효과가 증가할 뿐만 아니라 광역학 치료 효과를 발휘하므로 항암 효과가 추가로 상승한다. 구체적으로 광감각제가 추가로 결합된 컨쥬게이트는 일항산소 생성능(도 10)이 우수하고, 수지상세포의 성숙 및 암세포 식세포 작용을 촉진하며(도 19 내지 도 21), 암 조직 내 면역세포의 침투 또한 촉진하며(도 22), 생체 내에 투여 후 레이저 조사에 의해 광역학 치료 효과를 나타낸다 (도 13, 도 15 내지 18).
따라서, 본 발명의 다른 양상은 상기 컨쥬게이트를 유효성분으로 포함하는 암 치료용 약학적 조성물을 제공한다. 이 약학적 조성물은 상기 컨쥬게이트를 유효성분으로 사용하므로 이 둘 사이에 중복되는 내용은 명세서의 과도한 복잡을 피하기 위해 그 기재를 생략한다.
본 발명에서, 상기 암은 직장암(rectal cancer), 두경부암(head and neck cancer), 전이성 메르켈세포암(Merkel cell carcinoma), 요로상피세포암(urothelial carcinoma), 교모세포종(glioblastoma), 폐암, 유방암, 결장암, 위암, 방광암, 뇌암, 난소암 및 전립선암으로 이루어진 군에서 선택될 수 있으나, 이에 제한되지 아니한다.
본 발명의 약학적 조성물은 유효성분 이외에 약학적으로 허용되는 담체를 포함할 수 있다. 이때, 약학적으로 허용되는 담체는 제제시 통상적으로 이용되는 것으로서, 락토스, 덱스트로스, 수크로스, 솔비톨, 만니톨, 전분, 아카시아, 고무, 인산칼슘, 알기네이트, 젤라틴, 규산 칼슘, 미세 결정성 셀룰로스, 폴리비닐 피로리돈, 셀룰로스, 물, 시럽, 메틸 셀룰로스, 메틸히드록시벤조에이트, 프로필 히드록시벤조에이트, 활석, 스테아르산 마그네슘 및 미네랄 오일 등을 포함하나, 이에 한정되는 것은 아니다. 또한, 상기 성분들 이외에 윤활제, 습윤제, 감미제, 향미제, 유화제, 현탁제, 보존제 등을 추가로 포함할 수 있다.
본 발명의 약학적 조성물은 목적하는 방법에 따라 경구 투여하거나 비경구 투여(예를 들어, 정맥 내, 피하, 복강 내 또는 국소에 적용)할 수 있다. 경구 투여의 목적으로 본 발명의 유효성분을 정제, 캅셀제, 츄잉정, 분말제, 액제, 현탁제 등의 제제로 제형화하는 경우, 아라비아 고무, 옥수수 전분, 미세결정질 셀룰로스 또는 젤라틴과 같은 결합제, 인산이칼슘 또는 락토스와 같은 부형제, 알긴산, 옥수수 전분 또는 감자 전분과 같은 붕해제, 스테아르산마그네슘과 같은 활택제, 슈크로스 또는 사카린과 같은 감미제 및 페퍼민트, 메틸 살리실산염 또는 과일향과 같은 향미제가 포함될 수 있다.
본 발명의 약학적 조성물은 약학적으로 유효한 양으로 투여한다. 본 발명에 있어서 '약학적으로 유효한 양'은 의학적 치료에 적용 가능한 합리적인 수혜/위험 비율로 질환을 치료하기에 충분한 양을 의미하며, 유효용량 수준은 환자의 질환의 종류, 중증도, 약물의 활성, 약물에 대한 민감도, 투여 시간, 투여 경로 및 배출 비율, 치료기간, 동시 사용되는 약물을 포함한 요소 및 기타 의학 분야에 잘 알려진 요소에 따라 결정될 수 있다. 본 발명에 따른 약학적 조성물은 개별 치료제로 투여하거나 다른 치료제와 병용하여 투여될 수 있고 종래의 치료제와 순차적 또는 동시에 투여될 수 있으며, 단일 또는 다중 투여될 수 있다. 상기 요소들을 모두 고려하여 부작용 없이 최소한의 양으로 최대 효과를 얻을 수 있는 양을 투여하는 것이 중요하며, 이는 당업자에 의해 용이하게 결정될 수 있다.
본 발명의 컨쥬게이트는 항체의 암세표 표적능을 개선하고, 일항산소 생성능이 우수하며, 수지상세포의 성숙 및 암세포 식세포 작용을 촉진하고, 암 조직 내 면역세포의 침투 또한 촉진하여 현저히 우수한 항암 효과를 나타내며, 생체 내에 투여 후 레이저 조사에 의해 광역학 치료 효과를 나타낸다.
도 1은 본 발명의 일 실시예에 따라 제조한 PEG2K-Ce6의 1H-NMR 스펙트럼을 확인한 결과이다.
도 2는 본 발명의 일 실시예에 따라 제조한 Mal-PEG2K-Ce6의 1H-NMR 스펙트럼을 확인한 결과이다.
도 3은 본 발명의 일 실시예에 따라 제조한 PEG6K-Ce6의 1H-NMR 스펙트럼을 확인한 결과이다.
도 4는 본 발명의 일 실시예에 따라 제조한 Mal-PEG6K-Ce6의 1H-NMR 스펙트럼을 확인한 결과이다.
도 5는 본 발명의 일 실시예에 따라 제조한 CTX-Mal-PEG2K-Ce6의 분자량을 MALDI-TOF로 확인한 결과이다.
도 6은 본 발명의 일 실시예에 따라 제조한 CTX-Mal-PEG6K-Ce6의 분자량을 MALDI-TOF로 확인한 결과이다.
도 7은 본 발명의 일 실시예에 따라 제조한 AVE-Mal-PEG8K-Ce6의 분자량을 MALDI-TOF로 확인한 결과이다.
도 8은 세툭시맙-말레이미드-폴리에틸렌글리콜6K-클로린 e6 접합체(A) 및 아벨루맙-말레이미드-폴리에틸렌글리콜6K-클로린 e6 접합체(B)의 형광 강도를 나타낸 결과이다: 세툭시맙-말레이미드-폴리에틸렌글리콜6K-클로린 e6 접합체=CTX-Mal-PEG6K-Ce6; 말레이미드-폴리에틸렌글리콜6K-클로린 e6 접합체=Mal-PEG6K-Ce6; 및 아벨루맙-말레이미드-폴리에틸렌글리콜6K-클로린 e6 접합체=AVE-Mal-PEG6K-Ce6.
도 9는 아벨루맙-말레이미드-폴리에틸렌글리콜-클로린 e6 접합체의 형광 강도를 수치로 확인한 결과이다.
도 10은 아벨루맙-말레이미드-폴리에틸렌글리콜-클로린 e6 접합체의 수용액상에서의 일항산소 생성능을 확인한 결과이다.
도 11은 SKOV-3, A-2780, NIH-3T3 세포에서 세툭시맙-말레이미드-폴리에틸렌글리콜2K-클로린 e6 접합체의 상피세포 증식인자 수용체 표적능을 확인한 결과이다: MPC=말레이미드-폴리에틸렌글리콜2K-클로린 e6 접합체(Mal-PEG2K-Ce6) 처리군; 및 CMPC=세툭시맙-말레이미드-폴리에틸렌글리콜2K-클로린 e6 접합체 (CTX-Mal-PEG2K-Ce6) 처리군.
도 12는 NIH-3T3, PANC1 및 Mia-PaCa2 세포에서 아벨루맙-말레이미드-폴리에틸렌글리콜8K-클로린 e6 접합체의 1형 세포예정사 리간드 수용체 표적능을 확인한 결과이다.
도 13은 NIH-3T3, PANC1 및 Mia-PaCa2 세포에서 아벨루맙-말레이미드-폴리에틸렌글리콜8K-클로린 e6 접합체(AVE-Mal-PEG8K-Ce6)의 레이저 세기에 따른 광독성을 확인한 결과이다: L-=레이저 비조사; L+=레이저 조사.
도 14에서 A는 ASPC-1, PANC-1 및 CAPAN-1 세포에서 상피세포 증식인자 수용체의 발현 수준을 확인한 결과이고, B는 상기 발현 수준을 수치화한 결과이다.
도 15는 쥐 암 모델에 세툭시맙-말레이미드-폴리에틸렌글리콜2K-클로린 e6 접합체를 투여한 후 시간 경과에 따른 체내 분포를 형광 이미지로 확인한 결과이다.
도 16에서 A는 쥐 암 모델의 모식도이고, B는 쥐 암 모델에서 세툭시맙-말레이미드-폴리에틸렌글리콜2K-클로린 e6 접합체의 시간 경과에 따른 체내 분포를 수치화한 결과(B)이다.
도 17은 쥐 암 모델에 세툭시맙-말레이미드-폴리에틸렌글리콜2K-클로린 e6 접합체를 투여한 후 시간 경과에 따른 암 조직의 크기(A) 및 마우스 체중(B)을 측정한 결과이다: Free CTX=세툭시맙 단독 투여군; MPC-=말레이미드-폴리에틸렌글리콜2K-클로린 e6 접합체 투여 및 레이저 비조사군; MPC+= 말레이미드-폴리에틸렌글리콜2K-클로린 e6 접합체 투여 및 레이저 조사군; CMPC-=세툭시맙-말레이미드-폴리에틸렌글리콜2K-클로린 e6 접합체 투여 및 레이저 비조사군; 및 CMPC+=세툭시맙-말레이미드-폴리에틸렌글리콜2K-클로린 e6 접합체 투여 및 레이저 조사군.
도 18은 쥐 암 모델에 세툭시맙-말레이미드-폴리에틸렌글리콜2K-클로린 e6 접합체를 투여한 후 암 조직을 염색하여 암세포의 사멸 정도를 확인한 결과이다: CTX=세툭시맙 단독 투여군; MPC(-)=말레이미드-폴리에틸렌글리콜2K-클로린 e6 접합체 투여 및 레이저 비조사군; MPC(+)=말레이미드-폴리에틸렌글리콜2K-클로린 e6 접합체 투여 및 레이저 조사군; CMPC(-)=세툭시맙-말레이미드-폴리에틸렌글리콜2K-클로린 e6 접합체 투여 및 레이저 비조사군; 및 CMPC(+)=세툭시맙-말레이미드-폴리에틸렌글리콜2K-클로린 e6 접합체 투여 및 레이저 조사군.
도 19는 세툭시맙-말레이미드-폴리에틸렌글리콜2K-클로린 e6 접합체에 의한 미성숙 수지상 세포의 성숙도를 확인한 결과이다.
도 20은 암세포와 세툭시맙-말레이미드-폴리에틸렌글리콜2K-클로린 e6 접합체의 복합체에 대한 수지상 세포의 식세포 작용을 확인한 결과이다.
도 21은 암세포와 세툭시맙-말레이미드-폴리에틸렌글리콜2K-클로린 e6 접합체의 복합체에 대한 수지상 세포의 식세포 작용을 형광 현미경으로 확인한 결과이다.
도 22는 쥐 암 모델에 세툭시맙-말레이미드-폴리에틸렌글리콜2K-클로린 e6 접합체를 투여한 후 림프 조직의 수지상 세포 분포(A), 암 조직 내로 침투한 NK 세포의 분포(B), CD3+CD8+ T 세포 및 CD3+CD4+ T 세포의 비율(C 및 D)을 확인한 결과이다.
이하 하나 이상의 구체예를 실시예를 통하여 보다 상세하게 설명한다. 그러나 이들 실시예는 하나 이상의 구체예를 예시적으로 설명하기 위한 것으로 본 발명의 범위가 이들 실시예에 한정되는 것은 아니다.
실시예 1: 수용성 증진을 위한 폴리에틸렌옥사이드 포함 고분자-광감작제 접합체 제조
1-1. 폴리에틸렌글리콜 2K-클로린 e6 접합체 제조
클로린 e6 (chlorin e6, Ce6) 223.7 ㎎, 디사이클로헥실카보디이미드 (dicyclohexylcarbodiimide, DCC) 92.8 ㎎, N-하이드록시숙신이미드 (N-hydrosuccinimide, NHS) 51.7 ㎎을 디클로로메탄 (dichloromethane, DCM) 5 ㎖에 넣고 녹였다. 폴리에틸렌글리콜 (polyethylene glycol, PEG; 2 kDa) 500 ㎎을 디클로로메탄 10 ㎖에 넣어 용해시켰다. 각 용액을 6시간 동안 교반시킨 후, 두 용액을 섞어 상온에서 24시간 동안 추가로 교반시킨 후, 디에틸에테르 (diethylether) 45 ㎖에 결정화시켰다. 침전물 이외의 상층액을 버리고 다시 디에틸에테르를 넣어 재결정시키는 과정을 총 3번 진행하여 반응하지 않은 부산물들을 제거한 후, 감압 건조하여 분말을 얻었다. 정제를 위해 이 분말을 다시 메탄올(methanol)에 20 ㎎/㎖의 농도로 녹이고 열린 컬럼 크로마토그래피를 이용하여 합성된 폴리에틸렌글리콜 2K-클로린 e6 (이하, PEG2K-Ce6로 기재함)를 수득하였다. 결과는 핵자기공명스펙트럼 (1H-NMR)으로 확인하였다 (도 1).
1-1-1. 말레이미드-폴리에틸렌글리콜 2K-클로린 e6 접합체 제조
6-말레이미도헥사노익에시드 (6-maleimidohexanoic acid, Mal) 163 ㎎, 디사이클로헥실카보디이미드 (DCC) 191 ㎎, N-하이드록시숙신이미드 (NHS) 106 ㎎을 디메틸포름아마이드 (dimethylformamide, DMF) 3 ㎖에 넣어 용해시켰다. 폴리에틸렌글리콜 2K-클로린 e6 접합체 200 ㎎을 디메틸포름아마이드 5 ㎖에 넣어 녹였다. 각 용액을 6시간 동안 교반시킨 후, 말레이미도헥사노익에시드가 용해된 용액을 폴리에틸렌글리콜-클로린 e6 접합체가 용해된 수용액에 첨가하여 24시간 동안 상온에서 교반시켰다. 반응이 끝난 후 정제를 위해, 디에틸에테르 45 ㎖에 결정화시켰다. 침전물 이외의 상층액을 버리고 다시 디에틸에테르를 넣어 재결정시키는 과정을 총 3번 진행하여 반응하지 않은 부산물들을 제거하고, 감압 건조하여 말레이미드-폴리에틸렌글리콜 2K-클로린 e6 (이하, Mal-PEG2K-Ce6로 기재함) 분말을 얻었다. 합성 결과는 핵자기공명스펙트럼 (1H-NMR)으로 확인하였다 (도 2).
1-2. 폴리에틸렌글리콜 6K-클로린 e6 접합체 제조
클로린 e6 4.6 ㎎, 디사이클로헥실카보디이미드 (DCC) 30.9 ㎎, N-하이드록시숙신이미드 (NHS) 17.3 ㎎을 디클로로메탄 (DCM) 5 ㎖에 넣고 녹였다. 폴리에틸렌글리콜 (6kDa) 500 ㎎을 디클로로메탄 10 ㎖에 넣어 용해시켰다. 각 용액을 6시간 동안 교반시킨 후, 두 용액을 섞어 상온에서 24시간 동안 추가로 교반시킨 후, 디에틸에테르 45 ㎖에 결정화시켰다. 침전물 이외의 상층액을 버리고 다시 디에틸에테르를 넣어 재결정시키는 과정을 총 3번 거쳐 반응하지 않은 부산물들을 제거한 후, 감압 건조하여 분말을 얻었다. 정제를 위해 이 분말을 다시 메탄올에 20 ㎎/㎖의 농도로 녹이고 열린 컬럼 크로마토그래피를 이용하여 합성된 폴리에틸렌글리콜 6k-클로린 e6 (이하, PEG6K-Ce6로 기재함)를 수득하였다. 합성 결과는 핵자기공명스펙트럼 (1H-NMR)으로 확인하였다 (도 3).
1-2-1. 말레이미드-폴리에틸렌글리콜 6K-클로린 e6 접합체 제조
6-말레이미도헥사노익에시드 (Mal) 63.9 ㎎, 디사이클로헥실카보디이미드 (DCC) 75 ㎎, N-하이드록시숙신이미드 (NHS) 41.8 ㎎을 디메틸포름아마이드 (DMF) 3 ㎖에 넣어 녹였다. 폴리에틸렌글리콜 6K-클로린 e6 접합체 200 ㎎을 디메틸포름아마이드 5 ㎖에 넣어 용해시켰다. 각 용액을 6시간 동안 교반시킨 후, 말레이미도헥사노익에시드가 용해된 용액을 PEG6K-Ce6가 용해된 수용액에 첨가하여 24시간 동안 상온에서 교반시켰다. 반응이 끝난 후 정제를 위해, 디에틸에테르 45 ㎖에 결정화시켰다. 침전물 이외의 상층액을 버리고 다시 디에틸에테르를 넣어 재결정시키는 과정을 총 3번 진행하여 반응하지 않은 부산물들을 제거하고, 감압 건조하여 분말 말레이미드-폴리에틸렌글리콜 6K-클로린 e6 (이하, Mal-PEG6K-Ce6로 기재함)을 얻었다. 합성 결과는 핵자기공명스펙트럼 (1H-NMR)으로 확인하였다 (도 4).
실시예 1-1 및 1-2와 동일한 방법으로 분말 말레이미드-폴리에틸렌글리콜 8K-클로린 e6 (이하, Mal-PEG8K-Ce6로 기재함)을 얻었다.
실시예 2: 항체-말레이미드-폴리에틸렌글리콜-광감각제 접합체 제조
2-1. 세툭시맙-말레이미드-폴리에틸렌글리콜-클로린 e6 접합체 제조
세툭시맙 주사 제형을 0.1 M 붕산염 버퍼(borate buffer; pH 8.5)를 이동상 용매로 하여 PD10 컬럼(column)으로 정제하여 부형제나 첨가물을 제거하였다. 1 ㎖씩 수득물을 회수하여 Bicinchoninic acid (BCA) 방법으로 항체 농도를 정량하였다. 2 ㎎의 트라웃 시약(Traut's reagent)을 18 ㎕만 따서 세툭시맙 수용액 (항체 함량 4 ㎎)에 분산시켜 4시간 동안 항체의 아민(amine)기를 티올화(thiolation) 시켰다. 4시간 후 세툭시맙 수용액을 다시 PD10 컬럼으로 정제하여 트라웃 시약을 제거하였다. 이후 Mal-PEG2K-Ce6 또는 Mal-PEG6K-Ce6를 항체 몰수의 20배만큼 세툭시맙 수용액에 첨가하여 24시간 동안 4℃에서 교반시켰다. 반응이 끝난 후 반응물을 아미콘 울트라 (Amicon Ultra 15 ㎖, molecular weight cut-off size: 100,000 Da) 튜브로 옮기고 원심분리 (3000 rpm, 20분)하여 미 반응물을 제거하였다. 최종 산물인 세툭시맙-말레이미드-폴리에틸렌글리콜2K-클로린 e6 (이하, CTX-Mal-PEG2K-Ce6로 기재함) 및 세툭시맙-말레이미드-폴리에틸렌글리콜6K-클로린 e6 (이하, CTX-Mal-PEG6K-Ce6로 기재함)는 냉장 보관하였다.
2-2. 아벨루맙-말레이미드-폴리에틸렌글리콜-클로린 e6 접합체 제조
아벨루맙 항체를 사용하는 것을 제외하고 상기 실시예 2-1과 동일한 방법으로 아벨루맙-말레이미드-폴리에틸렌글리콜2K-클로린 e6 (이하, Ab-Mal-PEG2K-Ce6로 기재함) 및 아벨루맙-말레이미드-폴리에틸렌글리콜6K-클로린 e6 (이하, AVE-Mal-PEG6K-Ce6로 기재함)를 제조하였다. 최종 산물은 냉장보관하였다.
또한, 동일한 방법으로 아벨루맙-말레이미드-폴리에틸렌글리콜 8K-클로린 e6 (이하, AVE-Mal-PEG8K-Ce6로 기재함)을 얻었다.
실험예 1: 항체 기반 광감각제 조성물의 말디 토프 분석
상기 실시예 2에서 제조한 접합체의 접합 여부를 확인하기 위하여 말디 토프 (MALDI-TOF) 분석 기기로 분자량을 측정하였다.
측정 결과, CTX-Mal-PEG2K-Ce6 접합체의 분자량은 세툭시맙(152 kDa)과 Mal-PEG2K-Ce6 (2811 g/mol)의 분자량을 더한 약 154 kDa으로 측정되었고(도 5), CTX-Mal-PEG6K-Ce6 접합체의 분자량은 세툭시맙(152 kDa)과 Mal-PEG6K-Ce6 (6,811 g/mol)의 분자량을 더한 약 160 kDa으로 측정되었다(도 6). 또한, AVE-Mal-PEG8K-Ce6 접합체의 분자량이 아벨루맙(147 kDa)과 Mal-PEG8K-Ce6 (6,811 g/mol)의 분자량을 더한 약 153 kDa으로 측정되었다 (도 7).
상기 결과로부터 항체 기반 광감각제 접합체가 제대로 합성된 것을 확인하였다.
실험예 2: 항체 기반 광감각제 접합체의 형광 강도 측정
상기 실시예 2에서 제조된 항체 기반 광감각제 접합체의 자체 형광 강도를 확인하였다. 인산완충식염수, Mal-PEG6K-Ce6를 대조군으로 하고 광감각제의 농도를 같게 하여 각 접합체를 1 ㎖ 튜브에 담았다. 이후 FOBI(Fluorescence labeled Organism Bioimaging, NeoScience, Suwon, Korea) 기기로 각 샘플의 형광 이미지를 확인하였다.
확인 결과, Mal-PEG6K-Ce6, CTX-Mal-PEG6K-Ce6 및 AVE-Mal-PEG2K-Ce6 모두 형광 광도가 비슷한 것을 확인하여 항체를 접합시켜도 클로린 e6의 형광에는 영향이 없는 것을 알 수 있었다(도 8A 및 8B).
또한, 각 접합체를 광감각제의 농도(0.005 ㎍/㎖)를 같게 하여 형광분광광도계로 Ex 400 ㎚, Em 600-700 ㎚ 파장에서 형광 수치를 확인하였다. 확인 결과, Mal-PEG-Ce6 접합체보다 항체가 접합된 AVE-Mal-PEG-Ce6 접합체의 형광 수치가 더 높은 것을 알 수 있었다 (도 9).
실험예 3: 항체 기반 광감각제 접합체의 일항 산소 생성능 분석
일항 산소와 반응하여 형광이 증가하는 singlet oxygen sensor green (SOSG)를 2 μM 농도로 제조하여 1 ㎖을 샘플 1 ㎖과 혼합하였다. 이에 671 ㎚ 파장의 레이저를 50 mw/㎠의 세기로 설정하여 10초 간격으로 조사하면서 형광분광광도계로 Ex 504 ㎚, Em 525 ㎚ 파장에서 SOSG의 형광을 측정하였다.
형광 측정 결과, AVE-Mal-PEG-Ce6 접합체가 Mal-PEG-Ce6 접합체보다 높은 광활성을 나타내는 것을 확인하여 일항 산소 생성능이 더 우수한 것을 알 수 있었다 (도 10).
실험예 4: 항체 기반 광감각제 접합체의 암 세포 수용체 발현 정도에 따른 표적능 정량 평가
상기 실시예 2-1에서 제조한 CTX-Mal-PEG2K-Ce6 접합체의 세포 표적능을 상피세포 증식인자 수용체(epidermal growth factor receptor, EGFR)의 발현량이 상이한 세포에서 비교하였다.
정상세포이며 상피세포 증식 인자 수용체를 발현하지 않는 NIH-3T3, 암세포이며 상피세포 증식 인자 수용체 발현량이 낮은 A2780 및 암세포이며 상피세포 증식 인자 수용체 발현량이 높은 SKOV3 세포주를 배양한 후, Mal-PEG2K-Ce6 또는 CTX-Mal-PEG2K-Ce6 접합체를 처리하였다. 2시간 후 세포를 완충용액으로 세척하고 유세포 분석기를 이용하여 세포에 따른 표적능을 분석하였다.
분석 결과, NIH-3T3 세포주는 Mal-PEG2K-Ce6 (MPC) 또는 CTX-Mal-PEG2K-Ce6 (CMPC) 처리에 상관없이 형광 차이가 없는 것으로 나타났고, A2780 세포주는 그 차이가 미미한 것으로 나타났다. 그러나 EGFR 발현량이 가장 높은 SKOV3 세포주는 Mal-PEG2K-Ce6 접합체 처리군과 비교하여 CTX-Mal-PEG2K-Ce6 접합체 처리 후 형광이 약 41배 증가한 것을 정량적으로 확인할 수 있었다 (도 11).
상기 결과로부터 세툭시맙 기반 광감각제 접합체가 EGFR을 발현하는 암세포를 표적화할 수 있음을 확인하였다.
실험예 5: 항체 기반 광감각제 접합체의 시간에 따른 표적능 정량 평가
상기 실시예 2-2에서 제조한 AVE-Mal-PEG8K-Ce6 접합체의 세포 표적능을 1형 세포 예정사 리간드 (PD-L1) 발현량이 다른 세포에서 비교하였다.
정상세포이며 PD-L1을 발현하지 않는 NIH-3T3, 암세포이면서 PD-L1을 발현하는 PANC-1 및 Mia-PaCa2 세포주를 배양한 후, Mal-PEG8K-Ce6 또는 AVE-Mal-PEG8K-Ce6 접합체를 처리하였다. 2시간 후 세포를 완충용액으로 세척하고 유세포 분석기를 이용하여 세포에 따른 표적능을 분석하였다.
분석 결과, 정상세포인 NIH-3T3 세포주에서는 AVE-Mal-PEG8K-Ce6 접합체 처리군 대비 Mal-PEG8K-Ce6 접합체 처리군의 형광 신호가 높게 나타났다 (도 12A; 처리시간 120분 기준). 그러나 암세포인 PANC-1 및 Mia-PaCa2 세포주에서는 Mal-PEG8K-Ce6 접합체 처리군 대비 AVE-Mal-PEG8K-Ce6 접합체 처리군의 형광 신호가 높게 나타났다 (도 12B 및 12C).
상기 결과로부터 아벨루맙 기반 광감각제 접합체가 PD-L1을 발현하는 암세포를 표적화할 수 있음을 확인하였다.
실험예 6: 항체 기반 광감각제 접합체의 세포 광독성 확인
상기 실시예 2-2에서 제조한 AVE-Mal-PEG8K-Ce6 접합체의 수용체 특이적인 광독성을 확인하였다.
정상세포인 NIH-3T3, PD-L1을 발현하는 암세포인 PANC-1 및 Mia-PaCa2를 배양한 후 아벨루맙(AVE), Mal-PEG8K-Ce6 또는 AVE-Mal-PEG8K-Ce6 접합체를 처리하였다. 2시간 후 레이저를 다양한 세기(1, 2, 3 및 4 J/㎠)로 조사한 후 24시간 동안 추가로 배양하였다. 배양이 끝난 세포에 MTT 시약을 처리하여 3시간 동안 배양한 후 배양액과 MTT 시약을 모두 제거하고, 디메틸설폭사이드를 가하여 세포에 형성된 포르마잔을 용해시켰다. 그 후 570 ㎚에서 흡광도를 측정하고 형성된 포르마잔 양을 비교하여 각 세포의 생존율 및 AVE-Mal-PEG8K-Ce6 접합체의 세포 독성을 확인하였다.
그 결과, 정상세포인 NIH-3T3에서는 광독성이 나타나지 않는 반면 (도 13A), 암세포에서는 AVE-Mal-PEG8K-Ce6 접합체의 광독성이 레이저 세기에 따라 증가하는 것을 알 수 있었다 (도 13B 및 13C).
실험예 7: 항체 기반 광감각제 접합체의 생체 내 거동 확인
상기 실시예 2-1에서 제조한 CTX-Mal-PEG2K-Ce6 접합체의 암 조직 유입 효과를 EGFR 발현량이 다른 암세포를 이용하여 정량적으로 확인하였다.
EGFR 발현량을 확인하기 위해, 인간 췌장암 세포 (ASPC-1, PANC-1, CAPAN-1)의 세포 추출물로 웨스턴 블롯을 수행하였다. 세포 추출물 20 ㎍을 전기영동한 후, 겔로부터 니트로셀룰로오스 멤브레인으로 단백질을 웨스턴블롯킷 (Bio-Rad, USA)을 이용하여 제조사의 사용설명서에 따라 이동시켰다. 단백질이 붙어 있는 니트로셀룰로오스 멤브레인을 EGFR 1차 항체와 상온에서 2시간 동안 반응시켰다. 반응이 끝나면 니트로셀룰로오스 멤브레인을 세척하고, 1차 항체에 결합하는 2차 항체와 상온에서 2시간 동안 반응시켰다. 이후 니트로셀룰로오스 멤브레인에 2차 항체를 인지할 수 있는 용액 (BCL Western blotting detection reagent, USA)을 처리하여 2~10분간 암실에서 반응시킨 다음, Chemi-Doc 단백질의 발현정도를 측정하였다. 이때 세포에서 동일한 양으로 발현된다고 알려진 단백질인 베타-액틴에 대한 항체로 웨스턴 블럿을 수행하여, EGFR의 발현량을 보정하였다.
그 결과, ASPC-1 세포가 다른 세포주들에 비해 월등히 많은 양의 EGFR을 발현하고, 그 다음으로는 PANC-1, CAPAN-1의 순서로 발현량이 많은 것을 확인하였다 (도 14A). 웨스턴 블롯을 3번 반복한 후 발현량을 수치화한 결과 또한 동일하였다 (도 14B).
이를 토대로, 수컷 무흉선 누드 쥐(BALB/c nude mouse, 5주령)의 왼쪽 다리에는 CAPAN-1 암세포 1Х107개를, 오른쪽 다리에는 ASPC-1 암세포 1Х107개를 피하주사 하였다. 15일 뒤, 암의 크기가 80 ㎣에 도달하였을 때, 상기 실시예 2-1에서 제조한 CTX-Mal-PEG2K-Ce6 접합체를 클로린 e6 기준 2 ㎎/㎏ 농도로 정맥 주사하였다 (도 16A). 이후 FOBI(Fluorescence labeled Organism Bioimaging, NeoScience, Suwon, Korea) 기기로 접합체의 거동을 72시간 동안 기록하였다.
그 결과, CTX-Mal-PEG2K-Ce6 접합체 처리군(CMPC)에서는 쥐의 오른쪽 암 조직이 왼쪽 암 조직보다 더욱 밝은 형광을 띄는 것을 통해 CTX-Mal-PEG2K-Ce6 접합체가 EGFR 발현량에 비례하여 암세포를 표적화하는 것을 확인하였다. 반면 비교군인 Mal-PEG2K-Ce6 접합체 처리군(MPC)은 CTX-Mal-PEG2K-Ce6 접합체 처리군(CMPC)보다 형광이 약했으며, 왼쪽, 오른쪽 암 조직의 형광 또한 유사한 것을 확인하였다 (도 15). 도 15는 마우스 등쪽을 위로 하여 촬영한 것이다.
상기 형광을 수치로 표현한 결과에서도 CTX-Mal-PEG2K-Ce6 접합체 처리군(CMPC)은 CAPAN-1 세포 유래 암 조직보다 ASPC-1 세포 유래의 암 조직에서 약 1.8배 정도 형광이 강한 것을 확인하였다 (도 16).
실험예 8: 항체 기반 광감각제 접합체의 생체 내 광역학 항암 효과
실시예 2-1에서 제조한 CTX-Mal-PEG2K-Ce6 접합체의 생체 내 광역학 항암 효과를 다음과 같이 확인하였다.
Balb/c 쥐의 피하에 ASPC-1 (Human pancreatic carcinoma) 세포 1Х107개를 주사하고, 암 조직의 크기가 약 50 ㎣에 도달하였을 때 세툭시맙, Mal-PEG2K-Ce6 또는 CTX-Mal-PEG2K-Ce6 접합체를 클로린 e6 기준 1 ㎎/㎏의 농도로 정맥 주사하였다. 주사 12시간 및 24시간 후에 암 조직에 200 mW/㎠의 에너지로 500초 (100 J/㎠) 동안 레이저를 조사하였다. 이후 15일 동안 암 조직의 크기를 측정하여 광역학 항암 효과를 확인하였다.
확인 결과, 세툭시맙 단독 처리군(Free CTX)은 대조군(PBS)에 비해 암이 느리게 자라지만 계속적으로 성장하는 것을 확인한 반면, CTX-Mal-PEG2K-Ce6 접합체+레이저 조사군(CMPC +)은 광역학 매개 항암 효과가 나타나 암세포 성장이 크게 저해되는 것을 확인하였다 (도 17).
또한, 각 실험군에서 쥐의 몸무게가 일정한 것을 확인하여 각 제형이 생체 내 독성을 나타내지 않는 것을 확인하였다.
실험예 9: 항체 기반 광감각제 접합체의 항암 효능 확인
실험예 8과 동일한 방법으로 실험을 진행하고, 암 조직을 적출하여 Terminal deoxynucleotidyl transferase dUTP nick end labeling (TUNEL) 방법으로 암세포 사멸 여부를 확인하였다.
그 결과, 다른 실험군과 비교하여 CTX-Mal-PEG2K-Ce6 접합체+레이저 조사군(CMPC +)의 암 조직에서 암세포 사멸이 현저한 것을 알 수 있었다 (도 18).
실험예 10: 항체 기반 광감각제 조성물의 수지상세포 성숙 효과
C57BL/6 마우스로부터 골수세포를 분리하고, IL-4와 GM-CSF가 첨가된 배지에서 6일 동안 배양하여 미성숙 수지상 세포를 얻었다. ASPC-1 암세포 1Х105개에 CTX-Mal-PEG2K-Ce6 접합체를 2시간 동안 처리하여 항원(암세포)-항체 복합체를 형성시켰다. 이후 이 복합체를 상기 미성숙 수지상 세포가 담긴 6 웰 플레이트에 처리하여 24시간 동안 배양하였다. 배양이 끝나면 세포를 수거하여 FITC-CD11c, APC-CD80 항체로 염색하고 유세포 분석기로 분석하였다. 분석 결과는 평균 형광 강도(Mean Fluorescence Intensity, MFI)로 표현하였다. MFI 수치가 높을수록 표면인자의 발현 수준이 높고, 수지상 세포의 성숙도가 증가함을 의미한다. CD11c는 수지상 세포에서 선택적으로 발현되는 표면인자이며, CD80은 수지상 세포가 성숙할수록 많이 발현되는 표면인자이다.
분석 결과, 다른 실험군과 비교하여 CTX-Mal-PEG2K-Ce6 접합체+레이저 조사군(CMPC +)에서 미성숙 수지상 세포의 Fcγ 수용체를 통한 항원-항체 복합체 인지 및 광매개 암세포 사멸에 의한 사이토카인 분비가 활발한 것을 알 수 있었다 (도 19). 이는 CTX-Mal-PEG2K-Ce6 접합체+레이저 조사군(CMPC +)에서 수지상세포의 표면인자 발현률이 가장 많이 증가하고, 수지상 세포의 성숙도 또한 가장 월등하다는 것을 의미한다.
실험예 11: 항체 기반 광감각제 접합체 매개 수지상세포의 암세포 식세포 작용
실험예 11과 동일한 방법으로 미성숙 수지상 세포를 얻었다. 핵 염색 염료(nuclear stain dye)로 염색시킨 ASPC-1 세포 2Х105개에 CTX-Mal-PEG2K-Ce6 접합체를 2시간 동안 처리하여 항원-항체 복합체를 형성시켰다. 2시간 후 원심분리로 세포를 회수하여 빛을 조사하였다 (2 J/㎠). 이후 미성숙 수지상 세포가 있는 12 웰 플레이트에 상기 항원-항체 복합체를 처리하여 2시간 동안 배양하였다. 배양이 끝나면 세포를 수거하고 FITC-CD11c 항체로 수지상 세포를 염색하여 유세포 분석기로 분석하였다. 그래프를 4면으로 나누었을 때 오른쪽 상단의 2사분면에 있는 세포를 식세포 작용에 의해 암세포의 형광을 같이 띄는 미성숙 수지상세포로 볼 수 있다. 또한 같은 실험을 진행한 후 공초점 현미경 (Confocal laser scanning microscopy)으로 세포를 시각적으로 확인하였다.
확인 결과, 다른 실험군과 비교하여 CTX-Mal-PEG2K-Ce6 접합체+레이저 조사군(T+CMPC+L+DC 4h)에서 2사분면에 분포하는 세포가 현저히 많은 것을 알 수 있었다 (도 20). 이는 CTX-Mal-PEG2K-Ce6 접합체+레이저 조사군(CMPC +)에서 미성숙 수지상 세포의 Fcγ 수용체를 통한 항원-항체 복합체 인지 및 광매개 암세포 사멸에 의한 사이토카인 분비로 인해, 수지상 세포가 활발하게 암세포를 식세포 작용으로 섭취한 것을 의미한다.
또한, CTX-Mal-PEG2K-Ce6 접합체+레이저 조사군(T+CMPC+L+DC 4h)에서 시간 경과에 따라 수지상 세포가 암세포를 식세포 작용으로 융합시키는 것을 알 수 있었다 (도 21; 수지상 세포-녹색 형광, 암세포-적색 형광).
실험예 12: 항체 기반 광감각제 조성물의 생체 내 암 조직 침투 면역 세포 분석
Balb/c 쥐의 피하에 ASPC-1 (Human pancreatic carcinoma) 세포 1Х107개를 주사하고, 암 조직의 크기가 약 50 ㎣에 도달하였을 때 세툭시맙, Mal-PEG2K-Ce6 또는 CTX-Mal-PEG2K-Ce6 접합체를 클로린 e6 기준 1 ㎎/㎏의 농도로 정맥 주사하였다. 주사 12시간 및 24시간 후에 암 조직에 200 mW/㎠의 에너지로 500초 (100 J/㎠) 동안 레이저를 조사하였다. 이후 15일 동안 암 조직의 크기를 측정하여 광역학 항암 효과를 확인하였다. 1일 후 암 조직과 림프절을 적출하여 세포를 수거하고 FITC-CD3, APC-CD49b 항체 및 FITC-CD11c, APC-CD80 항체로 각 조직에서 얻어낸 세포들을 염색하여 유세포 분석기로 분석하였다. CD3-CD49b+은 NK 세포를 의미하고, CD11c+CD80+는 성숙 수지상 세포를 의미한다.
분석 결과, 다른 실험군과 비교하여 CTX-Mal-PEG2K-Ce6 접합체+레이저 조사군(CMPC+)의 림프 조직에서 항원을 제시하고 세포 독성 T세포를 활성화할 수 있는 능력을 가진 성숙한 수지상 세포의 숫자가 현저히 증가한 것을 확인하였다 (도 22A). 또한, 다른 실험군과 비교하여 CTX-Mal-PEG2K-Ce6 접합체+레이저 조사군(CMPC+)의 암 조직에서는 항원을 죽이는 역할을 할 수 있는 NK세포의 비율도 증가하였다 (도 22B). CD3+CD8+ T 세포 및 CD3+CD4+ T 세포의 비율 또한 CTX-Mal-PEG2K-Ce6 접합체+레이저 조사군(CMPC+)에서 현저히 높았다 (도 26C 및 22D).

Claims (11)

  1. (a) 암세포에서 과발현되는 표적에 특이적으로 결합하는 항체;
    (b) 상기 항체에 공유결합으로 연결된 링커; 및
    (c) 상기 링커에 공유결합으로 연결된 폴리에틸렌글리콜;을 포함하는 컨쥬게이트.
  2. 제1항에 있어서, 상기 암세포에서 과발현되는 표적은 상피 증식인자 수용체(epidermal growth factor receptor, EGFR), 1형 세포 예정사 리간드 (Programmed death ligand 1, PD-L1) 및 인간 상피 증식인자 수용체 2형 (human epidermal growth factor receptor 2, HER2)로 이루어진 군에서 선택되는, 컨쥬게이트.
  3. 제1항에 있어서, 상기 암세포에서 과발현되는 표적에 특이적으로 결합하는 항체는 세툭시맙(cetuximab), 아벨루맙 (avelumab) 및 트라스투주맙 (trastuzumab)으로 이루어진 군에서 선택되는, 컨쥬게이트.
  4. 제1항에 있어서, 상기 (b)의 링커는 말레이미드(maleimide), 석시닉 안하이드라이드(succinic anhydride) 및 엔-하이드록시석신이미드 에스터 (n-hydroxysuccinimide ester)로 이루어진 군에서 선택되는, 컨쥬게이트.
  5. 제1항에 있어서, 상기 폴리에틸렌글리콜은 평균 분자량이 1,000 내지 10,000 달톤(Da)인 것인, 컨쥬게이트.
  6. 제1항에 있어서, 상기 공유결합은 아마이드 결합(amide bond), 카보닐 결합(carbonyl bond), 에스터 결합(ester bond), 황화 에스터 결합(thioester bond), 설폰 아마이드 결합(sulfonamide bond) 및 우레탄 결합(urethane bond)으로 이루어진 군에서 선택되는, 컨쥬게이트.
  7. 제1항에 있어서, 상기 컨쥬게이트는 일 말단에 광감각제가 추가로 결합된 것인, 컨쥬게이트.
  8. 제7항에 있어서, 광감각제는 클로린류, 박테리오클로린류, 포르피린류, 포르피센류 및 프탈로시아닌류로 이루어진 군에서 선택되는, 컨쥬게이트.
  9. 제8항에 있어서, 상기 클로린류 광감각제는 클로린 e6인, 컨쥬게이트.
  10. 제1항의 컨쥬게이트를 유효성분으로 포함하는 암 치료용 약학적 조성물.
  11. 제10항에 있어서, 상기 암은 직장암(rectal cancer), 두경부암(head and neck cancer), 전이성 메르켈세포암(Merkel cell carcinoma), 요로상피세포암(urothelial carcinoma), 교모세포종(glioblastoma), 폐암, 유방암, 결장암, 위암, 방광암, 뇌암, 난소암 및 전립선암으로 이루어진 군에서 선택되는, 암 치료용 약학적 조성물.
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