KR20170068540A - 방법 - Google Patents

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Abstract

본 발명은 주형 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 변형시키기 위한 방법, 특히 나노 세공 서열 분석을 이용하여 그 특징을 규명하기 위한 방법에 관한 것이다. 이러한 방법은 주형으로부터 복수 개의 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 생성시킨다. 이어서, 이와 같이 변형된 폴리뉴클레오티드의 특징을 규명할 수 있다.

Description

방법 {METHOD}
본 발명은 주형 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 변형시키기 위한 방법, 특히 나노 세공 서열 분석을 이용하여 그 특징을 규명하기 위한 방법에 관한 것이다. 이러한 방법은 주형으로부터 복수 개의 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 생성시킨다. 이어서, 이와 같이 변형된 폴리뉴클레오티드의 특징을 규명할 수 있다.
핵산 라이브러리를 제조해야 하는 많은 상업적 상황이 있다. 이는 종종 트랜스포사제(transposase)를 사용하여 달성된다. 상기 라이브러리를 제조하기 위해 사용되는 트랜스포사제에 따라서, 라이브러리를, 예를 들어 서열 분석에 사용할 수 있기 전에 시험관 내에서 전위 현상을 복구시키는 것이 필요할 수 있다.
현재, 광범위한 응용 분야에 걸쳐 신속하고 저렴한 폴리뉴클레오티드 (예를 들어, DNA 또는 RNA) 서열 분석 및 확인 기술이 필요하다. 기존 기술은 주로, 다량의 폴리뉴클레오티드를 생성하기 위해 증폭 기술에 의존하고 시그널 검출을 위한 다량의 전문 형광 화학물질을 필요로 하기 때문에 느리고 비용이 많이 든다.
막횡단 세공 (나노 세공)은 중합체 및 각종의 작은 분자에 대한 직접 전기 바이오센서(biosensor)로서 큰 잠재력을 가지고 있다. 특히, 최근에는 잠재적인 DNA 서열 분석 기술로서 나노 세공에 초점이 맞추어져 왔다.
전위가 나노 세공에 걸쳐 인가될 때, 분석물, 예컨대 뉴클레오티드가 특정 기간 동안 배럴에 일시적으로 존재할 때 전류 흐름 상의 변화가 있다. 뉴클레오티드의 나노 세공 검출은 공지된 시그너처(signature)의 전류 변화와 지속 기간을 제공한다. 가닥 서열 분석 방법에서는, 단일 폴리뉴클레오티드 가닥이 상기 세공을 관통하고 뉴클레오티드의 실체가 도출된다. 가닥 서열 분석은 세공을 통한 폴리 뉴클레오티드의 이동을 제어하기 위한 폴리뉴클레오티드 결합성 단백질의 사용을 포함할 수 있다.
본 발명자들은 놀랍게도, 복수 개의 더 짧은 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 생성하기 위하여 주형 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 변형시키는 것이 가능하다는 것을 입증하였다. 이와 같이 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드는, 예를 들어 헤어핀 루프(hairpin loop) 또는 단일 가닥 리더 서열을 포함할 수 있다. 이들 변형은 상기 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드 각각을, 예컨대 가닥 서열 분석에 의해 그 특징을 규명하는 것이, 원래의 주형 폴리뉴클레오티드보다 더 용이하도록 설계될 수 있다. 연속해서 상기 변형된 폴리뉴클레오티드의 특징을 규명함으로써, 주형 폴리뉴클레오티드의 특질을 보다 용이하게 결정할 수 있게 된다.
본 발명의 변형 방법은 MuA 트랜스포사제, MuA 기질의 집단 및 폴리머라제를 이용하고, 이는 도 1에 요약되어 있다. MuA 기질은 반대 가닥에 오버행 및 헤어핀 루프를 포함한다. MuA 트랜스포사제는 주형 폴리뉴클레오티드를 단편화할 수 있고 양 말단에 오버행을 수반한 단편을 생성할 수 있다. MuA 트랜스포사제는 또한, 기질을 이중 가닥 단편의 한 말단 또는 양 말단에서의 오버행에 라이게이션할 수 있다. 오버행을 수반하지 않은 기질의 가닥은 전형적으로, 오버행을 수반한 단편의 가닥에 라이게이션된다. 이로써 생성되는 이중 가닥 구축물에는 단일 가닥 갭이 남게 된다. 이중 가닥 구축물은 또한, 이러한 갭으로부터의 반대 가닥에 헤어핀 루프를 갖는다.
폴리머라제는 주형으로서 헤어핀 루프를 포함하는 가닥을 사용할 수 있고 단일 가닥 갭을 함유하는 가닥을 옮겨놓을 수 있다. 이로써 생성되는 이중 가닥 구축물은 주형 폴리뉴클레오티드의 단편을 함유하는 두 상보적 가닥을 함유한다. 이러한 구축물 내의 두 가닥은 분리시킬 수 있고, 바람직하게는 이들 두 가닥을 동시에 주형으로서 사용하여, 주형 폴리뉴클레오티드의 단편을 포함하는 2개의 이중 가닥 구축물을 생성할 수 있는데, 상기 두 가닥은 헤어핀 루프에 의해 연결된다.
따라서, 본 발명은
(a) 주형 폴리뉴클레오티드를, 각각 (i) 적어도 하나의 오버행 및 (ii) 이러한 적어도 하나의 오버행을 포함하는 가닥으로부터 반대 가닥에 적어도 하나의 헤어핀 루프를 포함하는 이중 가닥 MuA 기질의 집단 및 MuA 트랜스포사제와 접촉시켜, 이러한 트랜스포사제가 주형 폴리뉴클레오티드를 단편화하고 기질을 이중 가닥 단편의 한 말단 또는 양 말단에 라이게이션함으로써, 복수 개의 단편/기질 구축물이 생성되도록 하는 단계;
(b) 상기 단편/기질 구축물을 폴리머라제와 접촉시켜, 이러한 폴리머라제가 오버행을 포함하는 가닥을 옮겨놓고 이들을, 헤어핀 루프를 포함하는 가닥을 보완하는 가닥으로 대체시킴으로써, 각각 주형 폴리뉴클레오티드의 이중 가닥 단편을 포함하는 복수 개의 이중 가닥 구축물을 생성시키도록 하는 단계; 및
(c) 이중 가닥 구축물의 두 가닥을 분리시키고 이러한 가닥을 주형으로 사용하여, 각각 적어도 하나의 헤어핀 루프에 의해 연결된 두 상보적 가닥을 포함하는 복수 개의 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 형성시키는 단계
를 포함하는, 주형 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 변형시키는 방법을 제공한다.
본 발명은 또한, 다음을 제공한다:
- 본 발명의 방법을 이용하여 생성된 복수 개의 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드;
- 주형 폴리뉴클레오티드를 변형시키기 위한 이중 가닥 폴리뉴클레오티드 MuA 기질의 집단 (여기서, 기질은 상기 정의된 바와 같다);
- a) 변형된 폴리뉴클레오티드를 막횡단 세공과 접촉시켜, 이러한 폴리뉴클레오티드의 적어도 하나의 가닥이 상기 세공을 통하여 이동하도록 하는 단계; 및
b) 적어도 하나의 가닥이 세공에 대하여 이동함에 따라 하나 이상의 측정치를 취함으로써 (여기서, 이러한 측정치는 적어도 하나의 가닥의 하나 이상의 특징을 나타낸다), 변형된 폴리뉴클레오티드의 특징을 규명하는 단계
를 포함하는, 본 발명의 방법을 이용하여 변형된 적어도 하나의 폴리뉴클레오티드의 특징을 규명하는 방법;
- a) 본 발명의 방법을 이용하여 주형 폴리뉴클레오티드를 변형시켜 복수 개의 변형된 폴리뉴클레오티드를 생성시키는 단계;
b) 각각의 변형된 폴리뉴클레오티드를 막횡단 세공과 접촉시켜, 각 폴리뉴클레오티드의 적어도 하나의 가닥이 세공을 통하여 이동하도록 하는 단계; 및
c) 각 폴리뉴클레오티드가 세공에 대하여 이동함에 따라 하나 이상의 측정치를 취함으로써 (여기서, 이러한 측정치는 각 폴리뉴클레오티드의 하나 이상의 특징을 나타낸다), 주형 폴리뉴클레오티드의 특징을 규명하는 단계
를 포함하는, 주형 폴리뉴클레오티드의 특징을 규명하는 방법; 및
- (a) 상기 정의된 바와 같은 MuA 기질의 집단, (b) MuA 트랜스포사제 및 (c) 폴리머라제를 포함하는, 주형 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 변형시키기 위한 키트.
도 1은 주형 이중 가닥 폴리뉴클레오티드 (a로 표지됨)를 변형시키는 방법을 나타내는 만화를 도시한 것이다. 단계 1은 주형 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 MuA 트랜스포사제 (b로 표지됨) 및 이중 가닥 MuA 기질의 집단 (c로 표지됨; 이중 가닥 MuA 기질은 각각 5' 헤어핀 루프를 함유하였다)과 접촉시켜, MuA 트랜스포사제가 주형 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 단편화하고 단편화 지점의 각 측면에 MuA 기질을 삽입하도록 하는 것을 포함하였다. 단계 2는 주형 가닥을, dNTP 및 폴리머라제 (e로 표지됨)로 처리하여 d로 표지된 DNA 단편을 옮겨놓았고 DNA 5' 헤어핀 루프에 대한 상보적 가닥을 생성시킨 것을 포함하였다. 단계 3은 f로 표지된 이중 가닥 DNA 구축물을 열 처리함으로써 이들 가닥을 변성시켜 단일 가닥 DNA (g로 표지됨)가 되도록 하는 것을 포함하였다. 최종적으로, 단계 4는 상보적 가닥을 형성하는 DNA 폴리머라제를 포함하였다.
도 2는 실시예 1에 요약된 주형 이중 가닥 폴리뉴클레오티드 (a로 표지됨)를 변형시키는 방법을 나타내는 만화를 도시한 것이다. 단계 1은 주형 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 MuA 트랜스포사제 (b로 표지됨) 및 이중 가닥 MuA 기질의 집단 (c로 표지됨; 이중 가닥 MuA 기질은 각각 5' 헤어핀 루프를 함유하였다)과 접촉시켜, MuA 트랜스포사제가 주형 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 단편화하고 단편화 지점의 각 측면에 MuA 기질을 삽입하도록 하는 것을 포함하였다. 단계 2는 주형 가닥을, dNTP 및 폴리머라제 (e로 표지됨)로 처리하여 d로 표지된 DNA 단편을 옮겨놓았고 DNA 5' 헤어핀 루프에 대한 상보적 가닥을 생성시킨 것을 포함하였다. 단계 3은 f로 표지된 이중 가닥 DNA 구축물을 열 처리함으로써 이들 가닥을 변성시켜 단일 가닥 DNA (g로 표지됨)가 되도록 하는 것을 포함하였다. 단계 4는 상보적 가닥을 형성하는 DNA 폴리머라제로 제2 처리하는 것을 포함하였다. 최종적으로, 단계 5는 단계 4에서 생성된 이중 가닥 DNA 구축물의 dA-테일링(tailing), 미리 결합된 효소 (h로 표지됨)를 이용한 어댑터의 라이게이션 및 콜레스테롤 테더(tether) (j로 표지됨)를 함유한 DNA 가닥 (i로 표지됨)의 혼성화를 포함하였다. 이로써, 실시예 1에 기재된 나노 세공 시스템에서 시험되었던 최종 DNA 구축물이 생성되었다.
도 3은 헬리카제 [T4 Dda - E94C/C109A/C136A/A360C (돌연변이 E94C/C109A/C136A/A360C를 수반한 서열식별번호 (SEQ ID NO): 24)]가 MspA 나노 세공을 통하여 DNA 샘플 6의 전위를 제어한 경우의 전류 추적 예 [y-축 표지 = 전류 (pA), x-축 표지 = 시간 (s)]를 도시한 것이다.
도 4는 애질런트(Agilent) 12,000 DNA 칩 추적을 도시한 것이다. 1로 표지된 라인은 처리되지 않은 MuA 단편화 DNA 입력 재료이고, 2로 표지된 라인은 68℃ 인큐베이션 단계 (실시예 1의 1.2에서 수행됨)를 진행하였고, 연속해서 실시예 1의 단계 1.3 모두를 진행하였던 분석물이며, 3으로 표지된 라인은 실시예 1의 단계 1.2에서 68℃ 인큐베이션을 진행하지 않았지만, 실시예 1의 단계 1.3 모두를 진행하였다. 영역 X는 이중 가닥 DNA 라이브러리에 상응하고, 영역 Y는 애질런트 12,000의 상부 마커에 상응하며 영역 Z는 애질런트 12,000 칩의 하부 마커에 상응하였다.
도 5는 주형 이중 가닥 폴리뉴클레오티드 (a로 표지됨)를 변형시키는 바람직한 방법을 나타내는 만화를 도시한 것이다. 도 5는 각 기질이 스페이서 (xxx; h로 표지됨)에 의해 헤어핀 루프로부터 분리된 리더 서열 (i로 표지됨)을 포함하는 것을 제외하고는 도 1과 동일하다. 리더 서열이 주형으로서 사용되지 않았는데, 이는 폴리머라제 (e로 표지됨)가 스페이서를 통과하여 이동할 수 없었기 때문이다.
도 6은 헬리카제 (T4 Dda - E94C/C109A/C136A/A360C)가 MspA 나노 세공을 통하여 DNA 샘플 7의 전위를 제어한 경우의 전류 추적 예 [y-축 표지 = 전류 (pA), x-축 표지 = 시간 (s)]를 도시한 것이다.
도 7은 주형 이중 가닥 폴리뉴클레오티드 (a로 표지됨)를 변형시키는 방법을 나타내는 만화를 도시한 것이다. 단계 1은 주형 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 MuA 트랜스포사제 (b로 표지됨) 및 이중 가닥 MuA 기질의 집단 [c로 표지됨; 이중 가닥 MuA 기질은 각각, G/C를 대체한 헤어핀 (h로 표지되고 흑색 원형으로서 도시됨) 내에 I/Z를 함유한 5' 헤어핀 루프를 함유하였다]과 접촉시켜, MuA 트랜스포사제가 주형 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 단편화하고 단편화 지점의 각 측면에 MuA 기질을 삽입하도록 하는 것을 포함하였다. 단계 2는 주형 가닥을, dNTP 및 폴리머라제 (e로 표지됨)로 처리하여 d로 표지된 DNA 단편을 옮겨놓았고 DNA 5' 헤어핀 루프에 대한 상보적 가닥을 생성시킨 (생성된 dsDNA는 f로 표지되었다) 것을 포함하였다. 폴리머라제에 의해 형성된 이중 가닥 영역 (1X로 표지됨)은 둘 다 헤어핀 루프를 형성할 수 있는 2개의 가닥으로 구성된다. 가닥 f2에 의해 형성된 헤어핀 루프는 이중 가닥 영역 1X의 Tm보다 더 높은 Tm을 가지는데, 이는 가닥 f2의 헤어핀 루프가 C/T/A/G로 구성되고 이중 가닥 영역 1X가 가닥 f1과 혼성화된 가닥 f2이기 때문이다 (여기서, 가닥 f1은 Z/T/A/I로 구성되는데, Z 및 I는 단지 2개의 수소 결합을 형성하는 반면, C/G는 3개의 수소 결합을 형성한다). 따라서, f2는 헤어핀 루프 (f2h로 표지됨)를 형성하고, f1은 헤어핀 루프 (f1h로 표지됨)를 형성하며, 가닥 f1에 의해 형성된 헤어핀 루프는 가닥 f2에 의해 형성된 헤어핀 루프보다 더 높은 Tm을 갖는다. 이어서, DNA 폴리머라제는 파선/점선으로서 도시된 상보적 가닥을 생성할 수 있다 (i1 및 i2로 표지된 전체 dsDNA 구축물). 따라서, 폴리머라제는 단계 2에서 생성된 (및 f2와 혼성화된 f1로 표지된) dsDNA를 가열할 필요 없이 상보적 가닥 (파선/점선으로서 도시됨)을 형성할 수 있었다.
도 8은 본 발명의 바람직한 방법을 나타내는 만화를 도시한 것이다. 단계 1 내지 4는 도 1에서와 동일하였다. 단계 5는 헤어핀 루프를 도 1에서 형성된 구축물에 부가하는 것을 포함하였다. 단계 6은 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 열 처리함으로써 이들 가닥을 변성시켜 단일 가닥 구축물이 되도록 하는 것을 포함하였다. 최종적으로, 단계 7은 상보적 가닥을 형성하는 DNA 폴리머라제를 포함하였다.
서열 목록에 관한 설명
서열식별번호: 1은 MS-B1 돌연변이체 MspA 단량체를 코딩하는 코돈 최적화된 폴리뉴클레오티드 서열을 제시한다. 이러한 돌연변이체에는 시그널 서열이 결여되고 다음 돌연변이를 포함한다: D90N, D91N, D93N, D118R, D134R 및 E139K.
서열식별번호: 2는 MspA 단량체의 MS-B1 돌연변이체의 성숙한 형태의 아미노산 서열을 제시한다. 이러한 돌연변이체에는 시그널 서열이 결여되고 다음 돌연변이를 포함한다: D90N, D91N, D93N, D118R, D134R 및 E139K.
서열식별번호: 3은 α-헤모리신-E111N/K147N (α-HL-NN; 문헌 [Stoddart et al., PNAS, 2009; 106(19): 7702-7707])의 하나의 단량체를 코딩하는 폴리뉴클레오티드 서열을 제시한다.
서열식별번호: 4는 α-HL-NN의 하나의 단량체의 아미노산 서열을 제시한다.
서열식별번호: 5 내지 7은 MspB, C 및 D의 아미노산 서열을 제시한다.
서열식별번호: 8은 Phi29 DNA 폴리머라제를 코딩하는 폴리뉴클레오티드 서열을 제시한다.
서열식별번호: 9는 Phi29 DNA 폴리머라제의 아미노산 서열을 제시한다.
서열식별번호: 10은 이. 콜라이 (E. coli)로부터의 sbcB 유전자로부터 유래된 코돈 최적화된 폴리뉴클레오티드 서열을 제시한다. 이는 이. 콜라이로부터의 엑소뉴클레아제 I 효소 (EcoExo I)를 코딩한다.
서열식별번호: 11은 이. 콜라이로부터의 엑소뉴클레아제 I 효소 (EcoExo I)의 아미노산 서열을 제시한다.
서열식별번호: 12는 이. 콜라이로부터의 xthA 유전자로부터 유래된 코돈 최적화된 폴리뉴클레오티드 서열을 제시한다. 이는 이. 콜라이로부터의 엑소뉴클레아제 III 효소를 코딩한다.
서열식별번호: 13은 이. 콜라이로부터의 엑소뉴클레아제 III 효소의 아미노산 서열을 제시한다. 이러한 효소는 3' - 5' 방향에서 이중 가닥 DNA (dsDNA)의 하나의 가닥으로부터의 5' 모노포스페이트 뉴클레오시드의 분배 소화를 수행한다. 한 가닥에서의 효소 개시에는, 대략 4개의 뉴클레오티드의 5' 오버행이 필요하다.
서열식별번호: 14는 티. 써모필루스 (T. thermophilus)로부터의 recJ 유전자로부터 유래된 코돈 최적화된 폴리뉴클레오티드 서열을 제시한다. 이는 티. 써모필루스로부터의 RecJ 효소 (TthRecJ-cd)를 코딩한다.
서열식별번호: 15는 티. 써모필루스로부터의 RecJ 효소 (TthRecJ-cd)의 아미노산 서열을 제시한다. 이러한 효소는 5' - 3' 방향에서 ssDNA로부터의 5' 모노포스페이트 뉴클레오시드의 진행성 소화를 수행한다. 한 가닥에서의 효소 개시에는, 적어도 4개의 뉴클레오티드가 필요하다.
서열식별번호: 16은 박테리오파지(bacteriophage) 람다 exo (redX) 유전자로부터 유래된 코돈 최적화된 폴리뉴클레오티드 서열을 제시한다. 이는 박테리오파지 람다 엑소뉴클레아제를 코딩한다.
서열식별번호: 17은 박테리오파지 람다 엑소뉴클레아제의 아미노산 서열을 제시한다. 이러한 서열은 삼량체로 어셈블리되는 3개의 동일한 서브유닛 중 하나이다. 상기 효소는 5'-3' 방향에서 dsDNA의 하나의 가닥으로부터의 뉴클레오티드의 고도의 진행성 소화를 수행한다 (http://www.neb.com/nebecomm/products/productM0262.asp). 한 가닥에서의 효소 개시에는, 5' 포스페이트를 수반한 대략 4개의 뉴클레오티드의 5' 오버행이 우선적으로 필요하다.
서열식별번호: 18은 Hel308 Mbu의 아미노산 서열을 제시한다.
서열식별번호: 19는 Hel308 Csy의 아미노산 서열을 제시한다.
서열식별번호: 20은 Hel308 Tga의 아미노산 서열을 제시한다.
서열식별번호: 21은 Hel308 Mhu의 아미노산 서열을 제시한다.
서열식별번호: 22는 TraI Eco의 아미노산 서열을 제시한다.
서열식별번호: 23은 XPD Mbu의 아미노산 서열을 제시한다.
서열식별번호: 24는 Dda 1993의 아미노산 서열을 제시한다.
서열식별번호: 25는 Trwc Cba의 아미노산 서열을 제시한다.
서열식별번호: 26 내지 28은 본 발명의 바람직한 MuA 기질의 서열을 제시한다.
서열식별번호: 29는 실시예 1에서 사용된 폴리뉴클레오티드 서열을 제시한다.
서열식별번호: 30은 실시예 1에서 사용된 폴리뉴클레오티드 서열을 제시한다. 이러한 서열은 그의 5' 말단에 부착된 다음 폴리뉴클레오티드 서열을 갖는다: GATCU.
서열식별번호: 31은 실시예 1에서 사용된, 엔테로박테리아 파지 λ의 폴리뉴클레오티드 서열을 제시한다. 이러한 서열은 주형 가닥의 5' 말단에 부착된 부가의 12개 염기 오버행을 함유한다. 여기에 제시된 서열은 주형 가닥만의 것이다 (주형 보체는 제시되지 않음).
서열식별번호: 32는 실시예 1에서 사용된 폴리뉴클레오티드 서열을 제시한다.
서열식별번호: 33은 실시예 1에서 사용된 폴리뉴클레오티드 서열을 제시한다.
서열식별번호: 34는 실시예 1에서 사용된 폴리뉴클레오티드 서열을 제시한다.
서열식별번호: 35는 실시예 1에서 사용된 폴리뉴클레오티드 서열을 제시한다.
서열식별번호: 36은 실시예 2에서 사용된 폴리뉴클레오티드 서열을 제시한다.
서열식별번호: 37은 실시예 2에서 사용된 폴리뉴클레오티드 서열을 제시한다.
개시된 생성물 및 방법의 상이한 적용이 관련 기술분야의 특이적 요구에 맞춰질 수 있음을 이해해야 한다. 본원에서 사용된 용어는 단지 본 발명의 특별한 실시양태를 설명하기 위한 것이며, 본 발명을 제한하는 것으로 의도되지 않는다는 것을 또한 이해해야 한다.
또한 본 명세서 및 첨부된 청구범위에서 사용된 바와 같이, 단수 형태는 그 내용이 명확하게 달리 지시하지 않는 한 복수 대상을 포함한다. 따라서, 예를 들어 "폴리뉴클레오티드"에 대한 언급은 "폴리뉴클레오티드들"을 포함하고, "기질"에 대한 언급은 2개 이상의 상기 기질을 포함하며, "막횡단 단백질 세공"에 대한 언급은 2개 이상의 상기 세공을 포함한다.
본원에 인용된 모든 공보, 특허 및 특허 출원은 상기 또는 후속 여부에 관계없이 그 전문이 본원에 참조로 포함된다.
본 발명의 변형 방법
본 발명은 주형 폴리뉴클레오티드의 변형 방법을 제공한다. 주형은 임의의 목적을 위해 변형될 수 있다. 상기 방법은 바람직하게, 그 특징을 규명하기 위하여, 예컨대 가닥 서열 분석을 위하여 주형 폴리뉴클레오티드를 변형시킨다. 주형 폴리뉴클레오티드는 전형적으로, 본 발명에 따라서 궁극적으로 그 특징이 규명되거나 또는 서열 분석될 폴리뉴클레오티드이다. 이는 다음에 보다 상세히 논의된다.
본 방법은 복수 개의 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드의 형성을 포함한다. 이들 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드는 전형적으로, 특히 가닥 서열 분석을 이용하여 주형 폴리뉴클레오티드보다 더 용이하게 그 특징이 규명된다. 복수 개의 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드는 주형 폴리뉴클레오티드의 특징 규명을 촉진시키기 위해 그 자체가 특징 규명될 수 있다. 예를 들어, 주형 폴리뉴클레오티드의 서열은 각각의 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 서열 분석함으로써 결정될 수 있다.
이러한 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드는 전형적으로, 주형 폴리뉴클레오티드보다 더 짧으므로, 가닥 서열 분석을 이용하여 그의 특징을 규명하는 것이 더 간단하다. 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드는 또한, 다음에 논의된 바와 같은 정보량의 2배를 포함한다.
변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드는 MuA 기질 내에 표지를 포함시킴으로써 선택적으로 표지될 수 있다. 적합한 표지는 교정 서열, 커플링 모이어티(moiety) 및 어댑터 결합된 효소를 포함하지만, 이에 제한되지 않는다.
일부 실시양태에서, 상기 방법은 가닥 서열 분석을 이용하여 이중 가닥 폴리뉴클레오티드의 특징 규명을 촉진시키는 변형을, 상기 이중 가닥 폴리뉴클레오티드 내로 도입시켜 준다. 나노 세공을 함유하는 막에 폴리뉴클레오티드를 커플링시키면, 그의 특징 규명 또는 서열 분석을 허용하는 데 필요한 폴리뉴클레오티드의 양을 수십 배 정도 낮출 수 있는 것으로 널리 정립되어 있다. 이는 국제 출원 번호 PCT/GB2012/051191 (WO 2012/164270으로서 공개됨)에 논의된다. 본 발명의 방법은 폴리뉴클레오티드를 막에 커플링시키기 위한 수단을 각각 포함하는 복수 개의 이중 가닥 폴리뉴클레오티드의 생성을 허용해 준다. 이는 다음에 보다 상세히 논의된다.
나노 세공을 사용하는 이중 가닥 폴리뉴클레오티드의 특징 규명은 전형적으로, 나노 세공 내로 우선적으로 삽입되도록 설계된 리더 서열의 존재를 필요로 한다. 본 발명의 방법은 각각 단일 가닥 리더 서열을 포함하는 복수 개의 이중 가닥 폴리뉴클레오티드의 생성을 허용한다. 이는 다음에 보다 상세히 논의된다.
헤어핀 루프와 같은 브릿징 모이어티에 의해 이중 가닥 폴리뉴클레오티드의 두 가닥을 연결함으로써 폴리뉴클레오티드의 양 가닥을 나노 세공에 의해 특징 규명하거나 또는 서열 분석할 수 있다는 것도 널리 정립되어 있다. 이는 단일 이중 가닥 폴리뉴클레오티드로부터 수득된 정보의 양을 2배로 하기 때문에 유리하다. 더욱이, 주형 보체 가닥 내의 서열은 주형 가닥의 서열과 반드시 직교하기 때문에, 두 가닥으로부터의 정보는 그 정보에 따라 조합될 수 있다. 따라서, 이러한 기전은 더 높은 신뢰도의 관찰을 제공하는 직교 교정 능력을 제공한다. 이는 국제 출원 번호 PCT/GB2012/051786 (WO 2013/014451로서 공개됨)에 논의된다. 본 발명의 방법은 헤어핀 루프를 사용하여 각 폴리뉴클레오티드의 두 가닥을 연결시킨, 복수 개의 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드의 생성을 허용한다.
주형 폴리뉴클레오티드
본 발명의 방법은 바람직하게 그 특징 규명을 위하여, 주형 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 변형시킨다. 주형 폴리뉴클레오티드는 전형적으로, 본 발명에 따라서 궁극적으로 특징 규명되거나 또는 서열 분석될 폴리뉴클레오티드이다. 이는 표적 이중 가닥 폴리뉴클레오티드 또는 관심 이중 가닥 폴리뉴클레오티드로 지칭될 수도 있다.
폴리뉴클레오티드, 예컨대 핵산은 2개 이상의 뉴클레오티드를 포함하는 거대 분자이다. 폴리뉴클레오티드 또는 핵산은 임의의 뉴클레오티드의 임의의 조합을 포함할 수 있다. 뉴클레오티드는 자연 발생적 또는 인공적일 수 있다. 폴리뉴클레오티드 내의 하나 이상의 뉴클레오티드는 산화되거나 또는 메틸화될 수 있다. 폴리뉴클레오티드 내의 하나 이상의 뉴클레오티드는 손상될 수 있다. 예를 들어, 폴리뉴클레오티드는 피리미딘 이량체를 포함할 수 있다. 이러한 이량체는 전형적으로, 자외선에 의한 손상과 연관되고, 피부 흑색종의 주요 원인이다. 폴리뉴클레오티드 내의 하나 이상의 뉴클레오티드는, 예를 들어 표지 또는 태그로 변형시킬 수 있다. 적합한 표지는 다음에 기재된다. 폴리뉴클레오티드는 하나 이상의 스페이서를 포함할 수 있다.
뉴클레오티드는 전형적으로, 핵염기, 당 및 적어도 하나의 포스페이트 기를 함유한다. 핵염기와 당은 뉴클레오시드를 형성한다.
핵염기는 전형적으로 헤테로사이클릭이다. 핵염기는 퓨린 및 피리미딘 및 보다 구체적으로 아데닌 (A), 구아닌 (G), 티민 (T), 우라실 (U) 및 시토신 (C)을 포함하지만, 이에 제한되지 않는다.
당은 전형적으로, 펜토스 당이다. 뉴클레오티드 당은 리보스 및 데옥시리보스를 포함하지만, 이에 제한되지 않는다. 당은 바람직하게, 데옥시리보스이다.
폴리뉴클레오티드는 바람직하게, 다음 뉴클레오시드를 포함한다: 데옥시아데노신 (dA), 데옥시우리딘 (dU) 및/또는 데옥시티미딘 (dT), 데옥시구아노신 (dG) 및 데옥시시티딘 (dC).
뉴클레오티드는 전형적으로 리보뉴클레오티드 또는 데옥시리보뉴클레오티드이다. 뉴클레오티드는 전형적으로 모노포스페이트, 디포스페이트 또는 트리포스페이트를 함유한다. 뉴클레오티드는 3개 초과의 포스페이트, 예컨대 4개 또는 5개의 포스페이트를 포함할 수 있다. 포스페이트는 뉴클레오티드의 5' 또는 3' 측면 상에 부착될 수 있다. 뉴클레오티드는 아데노신 모노포스페이트 (AMP), 구아노신 모노포스페이트 (GMP), 티미딘 모노포스페이트 (TMP), 우리딘 모노포스페이트 (UMP), 5-메틸시티딘 모노포스페이트, 5-히드록시메틸시티딘 모노포스페이트, 시티딘 모노포스페이트 (CMP), 사이클릭 아데노신 모노포스페이트 (cAMP), 사이클릭 구아노신 모노포스페이트 (cGMP), 데옥시아데노신 모노포스페이트 (dAMP), 데옥시구아노신 모노포스페이트 (dGMP), 데옥시티미딘 모노포스페이트 (dTMP), 데옥시우리딘 모노포스페이트 (dUMP), 데옥시시티딘 모노포스페이트 (dCMP) 및 데옥시메틸시티딘 모노포스페이트를 포함하지만, 이에 제한되지 않는다. 뉴클레오티드는 바람직하게, AMP, TMP, GMP, CMP, UMP, dAMP, dTMP, dGMP, dCMP 및 dUMP로부터 선택된다.
뉴클레오티드 탈염기성일 수 있다 (즉, 핵염기가 결여된다). 뉴클레오티드는 또한, 핵염기 및 당이 결여될 수 있다 (즉, 이는 C3 스페이서이다).
폴리뉴클레오티드 내의 뉴클레오티드는 임의의 방식으로 서로 부착될 수 있다. 뉴클레오티드는 전형적으로, 핵산에서와 같이 그의 당 및 포스페이트 기에 의해 부착된다. 뉴클레오티드는 피리미딘 이량체에서와 같이 그의 핵염기를 통해 연결될 수 있다.
폴리뉴클레오티드는 이중 가닥이다. 폴리뉴클레오티드의 적어도 특정 부분이 바람직하게 이중 가닥이다.
폴리뉴클레오티드는 핵산, 예컨대 데옥시리보핵산 (DNA) 또는 리보핵산 (RNA)일 수 있다. 폴리뉴클레오티드는 DNA의 하나의 가닥과 혼성화된 RNA의 하나의 가닥을 포함할 수 있다. 폴리뉴클레오티드는 관련 기술분야에 공지된 임의의 합성 핵산, 예컨대 펩티드 핵산 (PNA), 글리세롤 핵산 (GNA), 트레오스 핵산 (TNA), 고정 핵산 (LNA) 또는 뉴클레오티드 측쇄를 수반한 다른 합성 중합체일 수 있다. PNA 주쇄는 펩티드 결합에 의해 연결된 반복되는 N-(2-아미노에틸)-글리신 단위로 구성된다. GNA 주쇄는 포스포디에스테르 결합에 의해 연결된 반복되는 글리콜 단위로 구성된다. TNA 주쇄는 포스포디에스테르 결합에 의해 함께 연결된 반복되는 트레오스 당으로 구성된다. LNA는 리보스 모이어티 내의 2' 산소와 4' 탄소를 연결시키는 여분의 브릿지를 갖는, 상기 논의된 바와 같은 리보뉴클레오티드로부터 형성된다.
폴리뉴클레오티드는 가장 바람직하게 리보핵산 (RNA) 또는 데옥시리보핵산 (DNA)이다.
폴리뉴클레오티드는 임의의 길이일 수 있다. 예를 들어, 폴리뉴클레오티드는 그 길이가 적어도 10개, 적어도 50개, 적어도 100개, 적어도 150개, 적어도 200개, 적어도 250개, 적어도 300개, 적어도 400개 또는 적어도 500개의 뉴클레오티드 또는 뉴클레오티드 쌍일 수 있다. 폴리뉴클레오티드는 그 길이가 1000개 이상의 뉴클레오티드 또는 뉴클레오티드 쌍, 5000개 이상의 뉴클레오티드 또는 뉴클레오티드 쌍, 또는 100000개 이상의 뉴클레오티드 또는 뉴클레오티드 쌍일 수 있다.
본 발명을 이용하여 임의의 수의 폴리뉴클레오티드를 조사할 수 있다. 예를 들어, 본 발명은 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 20, 30, 50, 100개 또는 그 초과의 폴리뉴클레오티드의 특징을 규명하는 것에 관한 것일 수 있다. 2개 이상의 폴리뉴클레오티드의 특징을 규명하는 경우, 이는 상이한 폴리뉴클레오티드일 수 있거나 또는 동일한 폴리뉴클레오티드의 2개의 사례일 수 있다.
폴리뉴클레오티드는 자연 발생적 또는 인공적일 수 있다. 예를 들어, 상기 방법을 이용하여, 제작된 올리고뉴클레오티드의 서열을 검증할 수 있다. 상기 방법은 전형적으로, 시험관 내에서 수행된다.
주형 폴리뉴클레오티드는 전형적으로, 임의의 적합한 샘플에 존재한다. 본 발명은 전형적으로, 주형 폴리뉴클레오티드를 함유하는 것으로 공지되거나 또는 이를 함유하는 것으로 의심되는 샘플 상에서 수행된다. 또 다른 한편으론, 본 발명은 특정 샘플에서의 그의 존재가 공지되거나 또는 예상되는 하나 이상의 주형 폴리뉴클레오티드의 실체를 확증하기 위해 상기 샘플 상에서 수행될 수 있다.
샘플은 생물학적 샘플일 수 있다. 본 발명은 임의의 유기체 또는 미생물로부터 수득되거나 또는 추출된 샘플 상에서 시험관 내에서 수행될 수 있다. 이러한 유기체 또는 미생물은 전형적으로, 고세균, 원핵 생물 또는 진핵 생물이며 전형적으로, 다음 5개 계 중 하나에 속한다: 식물계, 동물계, 진균, 모네라계 및 원생 생물계. 본 발명은 임의의 바이러스로부터 수득되거나 또는 추출된 샘플 상에서 시험관 내에서 수행될 수 있다. 샘플은 바람직하게 유체 샘플이다. 샘플은 전형적으로, 환자의 체액을 포함한다. 샘플은 소변, 림프액, 타액, 점액 또는 양수이지만 혈액, 혈장 또는 혈청이 바람직하다. 전형적으로, 샘플은 그 기원이 인간이지만, 또 다른 한편으론 또 다른 포유류 동물, 예컨대 상업적으로 사육된 동물, 예컨대 말, 소, 양 또는 돼지로부터 유래될 수 있거나 또는 또 다른 한편으론, 애완 동물, 예컨대 고양이 또는 개로부터 유래될 수 있다. 또 다른 한편으론, 식물 기원의 샘플은 전형적으로, 상업 작물, 예컨대 곡물, 콩과 식물, 과일 또는 야채, 예를 들어 밀, 보리, 귀리, 카놀라, 옥수수, 콩, 쌀, 바나나, 사과, 토마토, 감자, 포도, 담배, 콩류, 렌틸, 사탕 수수, 코코아, 면화로부터 수득된다.
샘플은 비-생물학적 샘플일 수 있다. 비-생물학적 샘플은 바람직하게 유체 샘플이다. 비-생물학적 샘플의 예는 수술용 유체, 물, 예컨대 식수, 해수 또는 강물, 및 실험실 시험용 시약을 포함한다.
샘플은 전형적으로 본 발명에서 사용되기 전에, 예를 들어 원심 분리에 의해 또는 적혈구와 같은 원치 않는 분자 또는 세포를 걸러내는 막을 통과함으로써 처리된다. 샘플은 채취한 즉시 측정할 수 있다. 샘플은 또한 전형적으로 검정 이전에, 바람직하게는 -70℃ 아래에서 저장될 수 있다.
MuA 및 조건
주형 폴리뉴클레오티드는 MuA 트랜스포사제와 접촉시킨다. 이러한 접촉은 상기 트랜스포사제가 기능할 수 있게 해주는 조건, 즉 주형 폴리뉴클레오티드를 단편화할 수 있고 단편의 한 말단 또는 양 말단에 MuA 기질을 라이게이션할 수 있게 해주는 조건하에 일어난다. MuA 트랜스포사제는, 예를 들어 써모 사이언티픽 [Thermo Scientific; 카탈로그 번호 F-750C, 20 μL (1.1 μg/μL)]으로부터 시판되고 있다. MuA 트랜스포사제가 기능하게 될 조건은 관련 기술분야에 공지되어 있다. 적합한 조건은 본 실시예에 기재되어 있다.
기질의 집단
주형 폴리뉴클레오티드는 이중 가닥 MuA 기질의 집단과 접촉시킨다. 이러한 이중 가닥 기질은 폴리뉴클레오티드 기질이고, 상기 논의된 뉴클레오티드 또는 핵산 중 임의의 것으로부터 형성될 수 있다. 상기 기질은 전형적으로, 주형 폴리뉴클레오티드와 동일한 뉴클레오티드로부터 형성된다.
기질의 집단은 전형적으로 동질적이다 (즉, 전형적으로 복수 개의 동일한 기질을 함유한다). 기질의 집단을 이질적이다 (즉, 복수 개의 상이한 기질을 함유할 수 있다).
MuA 트랜스포사제에 적합한 기질은 관련 기술분야에 공지되어 있다 (Saariaho and Savilahti, Nucleic Acids Research, 2006; 34(10): 3139-3149 and Lee and Harshey, J. Mol. Biol., 2001; 314: 433-444).
각 기질은 전형적으로, 그의 활성을 MuA 트랜스포사제에 대한 기질로서 제공하는 이중 가닥 부분을 포함한다. 이러한 이중 가닥 부분은 전형적으로 각 기질에서 동일하다. 기질의 집단은 상이한 이중 가닥 부분을 포함할 수 있다.
각 기질 내의 이중 가닥 부분은 전형적으로, 그 길이가 적어도 50개의 뉴클레오티드 쌍, 예컨대 그 길이가 적어도 55개, 적어도 60개 또는 적어도 65개의 뉴클레오티드 쌍이다. 각 기질 내의 이중 가닥 부분은 바람직하게, 각 가닥의 3' 말단에 데옥시시티딘 (dC) 및 데옥시아데노신 (dA)을 포함하는 디뉴클레오티드를 포함한다. dC 및 dA는 전형적으로, 상기 이중 가닥 부분의 두 가닥에서 상이한 배향으로 존재하는데, 즉 5'에서 3'로 판독될 때 한 가닥은 3' 말단에 dC/dA를 갖고 다른 가닥은 3' 말단에 dA/dC를 갖는다.
이중 가닥 부분의 한 가닥은 바람직하게, 서열식별번호: 26에 제시된 서열을 포함하고, 이중 가닥 부분의 다른 가닥은 바람직하게, 서열식별번호: 27에 제시된 서열을 포함한다.
5'-GTTTTCGCATTTATCGTGAAACGCTTTCGCGTTTTTCGTGCGCCGCTTCA-3' (서열식별번호: 26)
3'-CAAAAGCGTAAATAGCACTTTGCGAAAGCGCAAAAAGCACGCGGCGAAGT-5' (서열식별번호: 27).
각 기질은 적어도 하나의 오버행을 포함한다. 오버행은 전형적으로 뉴클레오티드 오버행이다. 각 기질의 한 말단 또는 양 말단에 오버행이 존재할 수 있다. 각 기질 내의 이중 가닥 부분이 서열식별번호: 27에 제시된 서열과 혼성화된 서열식별번호: 26에 제시된 서열을 포함하는 경우, 적어도 하나의 오버행은 바람직하게, 서열식별번호: 27에 제시된 서열의 5' 말단에 있다.
각 기질은 2개의 오버행을 포함할 수 있는데, 즉 각 기질의 양 말단에 하나씩 포함할 수 있다. 기질의 양 말단에 오버행이 존재하는 경우, 각 오버행은 전형적으로, 이중 가닥 폴리뉴클레오티드 부분의 상이한 가닥 상에 있다. 오버행은 바람직하게, 이중 가닥 부분의 한 가닥의 5' 말단에 위치한다.
각 기질은 바람직하게 단 하나의 오버행을 포함한다. 단 하나의 오버행은 바람직하게, 이중 가닥 부분의 한 가닥의 5' 말단에 있다.
오버행은 그 길이가 적어도 3개, 적어도 4개, 적어도 5개, 적어도 6개 또는 적어도 7개의 뉴클레오티드일 수 있다. 오버행은 바람직하게 그 길이가 5개의 뉴클레오티드이다.
바람직한 실시양태에서, 기질의 한 가닥은 서열식별번호: 26에 제시된 서열을 포함하고, 기질의 다른 가닥은 서열식별번호: 28에 제시된 서열을 포함한다 (하기 참조).
5'-GTTTTCGCATTTATCGTGAAACGCTTTCGCGTTTTTCGTGCGCCGCTTCA-3' (서열식별번호: 26)
3'-CAAAAGCGTAAATAGCACTTTGCGAAAGCGCAAAAAGCACGCGGCGAAGTCTAG-5' (서열식별번호: 28).
집단 내의 기질은 국제 출원 번호 PCT/GB2014/052505에 개시된 구조 중 임의의 것을 가질 수 있다.
각 기질은 적어도 하나의 오버행을 포함하는 가닥으로부터 반대 가닥에 적어도 하나의 헤어핀 루프를 포함한다. 이러한 헤어핀 루프는 전형적으로, 기질의 두 가닥을 연결하지 않는다. 헤어핀 루프는 내부 헤어핀 루프일 수 있는데, 즉 적어도 하나의 오버행을 포함하는 가닥으로부터 반대 가닥의 말단에 있지 않는다. 내부 헤어핀 루프는 바람직하게, 본 발명의 방법에 사용된 임의의 폴리머라제가, 그를 통과하여 이동할 수 없는 스페이서에 인접해 있다. 스페이서는 헤어핀 루프의 어느 한 측면 상에 위치할 수 있다. 다음에 논의된 스페이서 중 임의의 것, 예컨대 하나 이상의 iSpC3 기 (즉, 당과 염기가 결여된 뉴클레오티드), 하나 이상의 스페이서 9 (iSp9) 기 또는 하나 이상의 스페이서 18 (iSp18) 기를 사용할 수 있다. 내부 헤어핀 루프는 바람직하게, 본 발명의 방법에 사용된 임의의 폴리머라제가, 그를 통과하여 이동할 수 없는 비-자연 뉴클레오티드, 예컨대 니트로인돌에 인접해 있다. 다음에 논의된 상이한 뉴클레오티드 종 중 임의의 것을 사용할 수 있다.
헤어핀 루프는 바람직하게, 적어도 하나의 오버행을 포함하는 가닥으로부터 반대 가닥의 말단에 또는 그 근처에 존재한다. 헤어핀 루프가 적어도 하나의 오버행을 포함하는 가닥으로부터 반대 가닥의 말단으로부터의 20개 이하의 뉴클레오티드, 15개 이하의 뉴클레오티드, 10개 이하의 뉴클레오티드 또는 5개 이하의 뉴클레오티드인 경우, 상기 헤어핀 루프는 적어도 하나의 오버행을 포함하는 가닥으로부터 반대 가닥의 말단 근처에 있다. 가닥의 말단의 줄기 부분 (혼성화된 부분)을 형성하는 마지막 뉴클레오티드 사이에 20개 이하의 뉴클레오티드가 존재하는 경우, 헤어핀 루프는 상기 가닥의 말단으로부터의 20개 이하의 뉴클레오티드이다. 헤어핀 루프는 바람직하게, 적어도 하나의 오버행을 포함하는 가닥으로부터 반대 가닥의 말단에 있다. 각 기질의 한 말단 또는 양 말단에 헤어핀 루프가 존재할 수 있다. 헤어핀 루프는 바람직하게, 적어도 하나의 오버행으로부터 기질의 반대 말단에 있다.
헤어핀 루프는 전형적으로 뉴클레오티드 헤어핀 루프이다. 각 기질 내의 이중 가닥 부분이 서열식별번호: 27에 제시된 서열과 혼성화된 서열식별번호: 26에 제시된 서열을 포함하는 경우, 적어도 하나의 헤어핀 루프는 바람직하게, 서열식별번호: 26에 제시된 서열의 5' 말단에 있다.
각 기질은 2개의 헤어핀 루프를 포함할 수 있는데, 즉 각 기질의 양 가닥 내에 하나씩 포함하거나 또는 각 기질의 양 말단에 하나씩 포함한다. 기질의 양 말단에 헤어핀 루프가 존재하는 경우, 각 헤어핀 루프는 전형적으로, 이중 가닥 폴리뉴클레오티드 부분의 상이한 가닥 위에 있다. 헤어핀 루프는 바람직하게, 이중 가닥 부분의 한 가닥의 5' 말단에 위치한다.
각 기질은 바람직하게, 단 하나의 헤어핀 루프를 포함한다. 단 하나의 헤어핀 루프는 바람직하게, 적어도 하나의 오버행을 포함하는 가닥으로부터 반대 가닥에 있다. 단 하나의 헤어핀 루프는 바람직하게, 적어도 하나의 오버행으로부터 기질의 반대 말단에 있고 적어도 하나의 오버행을 포함하는 가닥으로부터 반대 가닥 내에 있다. 단 하나의 헤어핀 루프는 바람직하게, 이중 가닥 부분의 한 가닥의 5' 말단에 있고 적어도 하나의 오버행을 포함하는 가닥으로부터 반대 가닥 내에 있다.
바람직한 실시양태에서, 각 기질은 이중 가닥 부분의 한 가닥의 5' 말단에 하나의 오버행을 포함하고 이중 가닥 부분의 다른 가닥의 5' 말단에 헤어핀 루프를 포함한다. 가장 바람직한 실시양태에서, 기질의 한 가닥은 서열식별번호: 26에 제시된 서열을 포함하고, 기질의 다른 가닥은 서열식별번호: 28에 제시된 서열을 포함하며 (상기 참조), 헤어핀 루프는 서열식별번호: 26에 제시된 서열의 5' 말단에 있다.
적합한 헤어핀 루프는 관련 기술분야에 공지된 방법을 이용하여 설계할 수 있다. 헤어핀 루프는 임의의 길이일 수 있다. 헤어핀 루프는 그 길이가 전형적으로, 110개 이하의 뉴클레오티드, 예컨대 100개 이하의 뉴클레오티드, 90개 이하의 뉴클레오티드, 80개 이하의 뉴클레오티드, 70개 이하의 뉴클레오티드, 60개 이하의 뉴클레오티드, 50개 이하의 뉴클레오티드, 40개 이하의 뉴클레오티드, 30개 이하의 뉴클레오티드, 20개 이하의 뉴클레오티드 또는 10개 이하의 뉴클레오티드이다. 헤어핀 루프는 그 길이가 바람직하게, 약 1 내지 110개, 2 내지 100개, 5 내지 80개 또는 6 내지 50개의 뉴클레오티드이다.
헤어핀 루프는 상기 논의된 뉴클레오티드 중 임의의 것으로부터 형성될 수 있다. 헤어핀 루프는 이중 가닥 부분과 동일한 뉴클레오티드로부터 형성될 수 있다. 헤어핀 루프는 바람직하게, 이중 가닥 부분보다 더 낮은 융점 (Tm)을 갖는 헤어핀 루프를 초래하는 뉴클레오티드로부터 형성된다. 융점은 일상적인 기술을 이용하여 측정할 수 있다. 이중 가닥 부분이 RNA를 포함하는 경우, 헤어핀은 바람직하게, 아데노신 (A), 우리딘 (U), 이노신 (I) 및 제불라린 (Z)을 함유하는 뉴클레오티드로부터 형성된다. 이중 가닥 부분이 DNA를 포함하는 경우, 헤어핀은 바람직하게, 데옥시아데노신 (dA), 데옥시티미딘 (dT), 데옥시이노신 (dI) 및 데옥시제불라린 (dZ)을 함유하는 뉴클레오티드로부터 형성된다. 구아노신 (G)/데옥시구아노신 (dG)을 이노신 (I)/데옥시이노신 (dI)으로 대체하고 시티딘 (C)/데옥시시티딘 (dC)을 제불라린 (Z)/데옥시제불라린 (dZ)으로 대체하면, 이중 가닥 부분과 비교해서 헤어핀의 Tm이 저하된다. I/dI와 Z/dZ는 단지 2개의 수소 결합을 형성하는 반면, G/dG와 C/dC는 3개의 수소 결합을 형성한다. 본 발명의 방법에서, 폴리머라제는 오버행 가닥을, 헤어핀 루프를 포함하는 가닥을 보완하는 새로운 가닥으로 대체시킨다. 더 낮은 Tm을 갖는 헤어핀 루프를 이용하여, 더 높은 Tm을 갖는 상보적 헤어핀, 즉 더 높은 Tm을 갖는 뉴클레오티드로부터 형성된 헤어핀을 형성할 수 있다. 폴리머라제는 오버행 가닥을, 헤어핀 루프를 포함하는 가닥을 보완하는 새로운 가닥으로 대체시킬 수 있는데, 여기서 새로운 가닥은 주형 가닥 내의 헤어핀 루프보다 더 높은 Tm을 갖는 헤어핀 루프를 포함한다. 예를 들어, 아데노신 (A)/데옥시아데노신 (dA), 우리딘 (U)/데옥시티미딘 (dT), 이노신(I)/데옥시이노신 (dI) 및 제불라린 (Z)/데옥시제불라린 (dZ)을 함유하는 뉴클레오티드로부터 형성된 헤어핀 루프를 이용하여, 상보적 RNA 또는 DNA 헤어핀 루프를 형성할 수 있다. 두 헤어핀 간의 Tm 상의 차이는 이들이 함께 혼성화되는 것보다는 개개의 헤어핀으로서 더 안정적이라는 것을 의미한다. 이는 두 헤어핀 루프가 함께 혼성화되는 것보다는 오히려 그들 각각의 루프를 형성한다는 것을 의미한다. 이는 이중 가닥 구축물의 두 가닥을 분리하고 주형으로서 사용하여, 각각 적어도 하나의 헤어핀 루프에 의해 연결된 두 상보적 가닥을 포함하는 복수 개의 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 형성시키는, 상기 방법의 마지막 단계를 촉진시켜 준다. 예를 들어, 분리는 실온에서 수행될 수 있다.
각 기질은 선택 가능한 결합성 모이어티를 포함할 수 있다. 존재하는 경우, 선택 가능한 결합성 모이어티는 바람직하게, 헤어핀 루프 내에 있다. 선택 가능한 결합성 모이어티는 그의 결합 특성을 기준으로 하여 선택될 수 있는 모이어티이다. 따라서, 선택 가능한 결합성 모이어티는 바람직하게, 표면과 특이적으로 결합하는 모이어티이다. 선택 가능한 결합성 모이어티가 본 발명에서 사용된 임의의 다른 모이어티보다 훨씬 더 큰 정도로 표면과 결합하는 경우에, 상기 선택 가능한 결합성 모이어티는 그 표면과 특이적으로 결합한다. 바람직한 실시양태에서, 상기 모이어티는 본 발명에서 사용된 다른 모이어티와 결합하지 않는 표면과 결합한다.
적합한 선택적 결합성 모이어티는 관련 기술분야에 공지되어 있다. 바람직한 선택적 결합성 모이어티는 비오틴, 핵산 서열, 항체, 항체 단편, 예컨대 Fab 및 ScSv, 항원, 핵산 결합성 단백질, 폴리 히스티딘 테일 및 GST 태그를 포함하지만, 이에 제한되지 않는다. 가장 바람직한 선택적 결합성 모이어티는 비오틴 및 선택 가능한 핵산 서열이다. 비오틴은 아비딘으로 코팅된 표면과 특이적으로 결합한다. 선택 가능한 핵산 서열은 상동 서열로 코팅된 표면과 특이적으로 결합한다 (즉, 혼성화한다). 또 다른 한편으론, 선택 가능한 핵산 서열은 핵산 결합성 단백질로 코팅된 표면과 특이적으로 결합한다.
각 기질은 리더 서열을 포함할 수 있다. 이러한 리더 서열은 전형적으로, 적어도 하나의 헤어핀 루프와 동일한 가닥 상에 있다. 리더 서열은 전형적으로, 헤어핀 루프와 동일한 기질의 말단에 있다. 리더 서열은 전형적으로, 적어도 하나의 헤어핀 루프를 포함하는 가닥의 말단에 위치한다 (즉, 헤어핀 루프는 단말 리더 서열과 나머지 기질 사이에 위치한다). 리더 서열은 전형적으로, 본 발명의 방법에서 사용된 임의의 폴리머라제가, 그를 통과하여 이동할 수 없는 스페이서에 의해 헤어핀 루프로부터 분리된다. 다음에 논의된 스페이서 중 임의의 것, 예컨대 하나 이상의 iSpC3 기 (즉, 당과 염기가 결여된 뉴클레오티드), 하나 이상의 스페이서 9 (iSp9) 기 또는 하나 이상의 스페이서 18 (iSp18) 기를 사용할 수 있다. 이러한 스페이서는 리더 서열이 단계 (b) 및 (c)에서 주형으로서 사용되지 않으므로, 상기 방법이 끝날 무렵 단일 가닥인 채로 있다는 것을 의미한다. 이로써, 리더 서열은 그의 기능을 수행할 수 있게 된다. 이의 한 예가 도 5에 도시된다.
리더 서열은 세공 내로 우선적으로 삽입된다. 리더 서열은 본 발명의 특징 규명 방법을 촉진시켜 준다. 리더 서열은 세공 내로 우선적으로 삽입됨으로써, 폴리뉴클레오티드가 세공을 통하여 이동하는 것을 촉진시키도록 설계된다. 리더 서열은 또한, 다음에 논의되는 바와 같은 하나 이상의 앵커(anchor)에 폴리뉴클레오티드를 연결시키기 위해 사용될 수 있다. 리더 서열은 전형적으로 중합체를 포함한다. 중합체는 바람직하게 음전하를 띤다. 중합체는 바람직하게 폴리뉴클레오티드, 예컨대 DNA 또는 RNA, 변형된 폴리뉴클레오티드 (예컨대 탈염기성 DNA), PNA, LNA, 폴리에틸렌 글리콜 (PEG) 또는 폴리펩티드이다. 리더는 바람직하게 폴리뉴클레오티드를 포함하고, 보다 바람직하게 단일 가닥 폴리뉴클레오티드를 포함한다. 리더 서열은 상기 논의된 폴리뉴클레오티드 중 임의의 것을 포함할 수 있다. 단일 가닥 리더 서열은 가장 바람직하게, 단일 가닥의 DNA, 예컨대 폴리 dT 섹션을 포함한다. 리더 서열은 바람직하게 하나 이상의 스페이서를 포함한다.
리더 서열은 임의의 길이일 수 있지만, 전형적으로 그 길이가 10 내지 150개의 뉴클레오티드, 예컨대 그 길이가 20 내지 150개의 뉴클레오티드이다. 리더의 길이는 전형적으로, 상기 방법에 사용된 막횡단 세공에 좌우된다.
단편화
트랜스포사제는 주형 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 단편화하여 복수 개의 이중 가닥 단편을 형성시킨다. 트랜스포사제는 또한, 기질을 이중 가닥 단편의 한 말단 또는 양 말단에 라이게이션시킴으로써 복수 개의 단편/기질 구축물을 생성시킨다. 트랜스포사제는 바람직하게, 기질을 이중 가닥 단편의 양 말단에 라이게이션시킴으로써, 각각 양 말단에 헤어핀 루프를 갖는 복수 개의 단편/기질 구축물을 생성시킨다. 이의 예가 도 1에 도시될 수 있다.
폴리머라제
트랜스포사제에 의해 생성된 단편/기질 구축물은 폴리머라제와 접촉시킨다. 다음에 논의된 폴리머라제 중 임의의 것을 사용할 수 있다. 폴리머라제는 바람직하게 클레나우(Klenow) 또는 9°노스(North)이다. 폴리머라제는 보다 바람직하게, LongAmp? Taq DNA 폴리머라제 [이는 뉴 잉글랜드 바이오랩스 인크.(New England Biolabs? Inc.)로부터 시판되고 있다], 푸션(Phusion?) 고 성능 DNA 폴리머라제 (이는 뉴 잉글랜드 바이오랩스? 인크.로부터 시판되고 있다) 또는 KAPA 하이파이(HiFi) [이는 KAPA 바이오시스템즈(Biosystems)로부터 시판되고 있다]이다.
상기 구축물은, 폴리머라제가 오버행 가닥을 옮겨놓고 보체 폴리뉴클레오티드를 형성할 수 있는 조건하에 폴리머라제와 접촉시킨다. 이러한 조건은 관련 기술분야에 공지되어 있다. 예를 들어, 구축물은 전형적으로, 시판용 폴리머라제 완충제, 예컨대 뉴 잉글랜드 바이오랩스? 또는 KAPA 바이오시스템즈로부터의 완충제 중의 폴리머라제와 접촉시킨다. 온도는 클레나우의 경우에는 바람직하게 20 내지 37℃이거나 또는 9°노스, LongAmp? Taq DNA 폴리머라제, 푸션? 고성능 DNA 폴리머라제 또는 KAPA 하이파이의 경우에는 60 내지 75℃이다.
폴리머라제는 상기 단편/기질 구축물로부터 오버행을 포함하는 가닥을 옮겨놓는다. 폴리머라제는 이러한 오버행 가닥을, 헤어핀 루프를 포함하는 가닥을 보완하는 새로운 가닥으로 대체시킨다. 이로써, 각각 주형 폴리뉴클레오티드의 이중 가닥 단편을 포함하는 복수 개의 이중 가닥 구축물이 생성된다. 폴리머라제에 의해 형성된 새로운 가닥의 일부가 전형적으로, 헤어핀 루프에 상보적이다. 이는 헤어핀 루프가 전형적으로, 구축물 내의 이중 가닥 폴리뉴클레오티드의 일부를 형성한다는 것을 의미한다. 이의 한 예가 도 1에 도시될 수 있다.
폴리머라제는 상기 및 하기에 논의된 뉴클레오티드 중 임의의 것을 포함하는 새로운 가닥을 형성시킬 수 있다. 폴리머라제는 헤어핀 루프를 포함하는 가닥 내의 뉴클레오티드를 보완하는 유리 뉴클레오티드의 집단에 제공된다. 폴리머라제는 유리 뉴클레오티드를 이용하여 새로운 가닥을 형성시킬 수 있다.
분리/복제
이중 가닥 구축물의 두 가닥을 분리시키고, 이러한 가닥을 주형으로서 사용하여, 각각 적어도 하나의 헤어핀 루프에 의해 연결된 두 상보적 가닥을 포함하는 복수 개의 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 형성시킨다. 이의 한 예가 도 1에 도시된다.
상기 두 가닥은, 이들을 주형으로서 사용하기 전에 완전히 분리시킬 수 있다. 두 가닥은 동일한 시간에 (즉, 동시에) 분리시키고 주형으로서 사용될 수 있다. 다시 말해서, 두 가닥은 이들을 주형으로서 사용하기 전에 완전히 분리시킬 필요가 없거나 또는 부분적으로 분리시킬 수 있다.
두 가닥은 임의의 방식으로 분리시킬 수 있다. 그 방법은 바람직하게, pH, 온도 및 이온 강도 중 하나 이상을 증가시킴으로써 이중 가닥 구축물의 두 가닥을 분리시키는 것을 포함한다. 증가된 온도가 바람직하다. 상기 방법은 바람직하게, 온도를 95℃로 증가시키는 것을 포함한다. 상기 방법은 바람직하게, 온도를 95℃로 증가시킨 다음, 온도를 55℃로 감소시키는 것을 포함한다. 상기 방법은 바람직하게, 온도를 95℃로 증가시키고, 온도를 55℃로 감소시키며, 온도를 68℃로 증가시키는 것을 포함한다. 상기 방법은 가장 바람직하게, 이중 가닥 구축물을 95℃에서 2분 동안, 55℃에서 30초 동안 및 68℃에서 30분 동안 인큐베이션하는 것을 포함한다. pH 상의 증가는 포름아미드 또는 수산화나트륨 (NaOH)을 이용하여 달성될 수 있다. 효소, 예컨대 헬리카제 또는 주형 가닥을 소화시키는 효소 (예를 들어, 그 가닥이 dT 대신 dU를 갖는 경우, USER)를 또한 이용하여 가닥을 분리시킬 수 있다. 다음에 논의되는 헬리카제 중 임의의 것을 사용할 수 있다.
다음에 보다 상세히 논의되는 바와 같이, 두 가닥은 폴리머라제를 이용하여 분리시킬 수 있다. 폴리머라제는 상기 또는 하기에 논의된 것 중 임의의 것일 수 있다.
임의의 방법을 이용하여, 주형으로서 상기 분리된 가닥을 사용하여 새로운 폴리뉴클레오티드를 형성할 수 있다. 이러한 방법은 바람직하게, 상기 가닥을 폴리머라제와 접촉시켜, 이러한 폴리머라제가 주형으로서 상기 가닥을 사용하여 복수 개의 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 형성하도록 하는 것을 포함한다. 상기 또는 하기에 논의된 폴리머라제 중 임의의 것을 사용할 수 있다.
또 다른 한편으론, 본 방법은 (i) 복수 개의 가닥을, 뉴클레오티드 올리고머가 이러한 가닥과 혼성화할 수 있는 조건하에 상기 가닥 내의 모든 뉴클레오티드에 상보적인 뉴클레오티드의 모든 가능한 조합을 포함하는 뉴클레오티드 올리고머의 집단과 접촉시키는 단계; 및 (ii) 상기 가닥과 혼성화하는 올리고머를 함께 라이게이션하여 복수 개의 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 형성시키는 단계를 포함할 수 있다. 혼성화를 허용하는 조건은 관련 기술분야에 널리 공지되어 있다 (예를 들어, 문헌 [Sambrook et al., 2001, Molecular Cloning: a laboratory manual, 3rd edition, Cold Spring Harbour Laboratory Press; and Current Protocols in Molecular Biology, Chapter 2, Ausubel et al., Eds., Greene Publishing and Wiley-lnterscience, New York (1995)]). 혼성화는 저 수준의 엄격성 조건하에, 예를 들어 37℃ 하에 30 내지 35% 포름아미드, 1 M NaCl 및 1% SDS (소듐 도데실 술페이트)의 완충 용액의 존재하에, 이어서 50℃ 하에 1 X (0.1650 M Na+) 내지 2 X (0.33 M Na+) SSC (표준 소듐 시트레이트)에서 세척함으로써 수행될 수 있다. 혼성화는 중간 수준의 엄격성 조건 하에, 예를 들어 37℃ 하에 40 내지 45% 포름아미드, 1 M NaCl, 및 1% SDS의 완충제 용액의 존재하에, 이어서 55℃ 하에 0.5 X (0.0825 M Na+) 내지 1 X (0.1650 M Na+) SSC에서 세척함으로써 수행될 수 있다. 혼성화는 고 수준의 엄격성 조건하에, 예를 들어 37℃ 하에 50% 포름아미드, 1 M NaCl 및 1% SDS의 완충 용액의 존재하에, 이어서 60℃ 하에 0.1 X (0.0165 M Na+) SSC에서 세척함으로써 수행될 수 있다. 바람직한 조건은 바람직하게, 10 mM 트리스-HCl, 50 mM NaCl, pH 7 중의 10 uM 올리고머 및 98℃로의 가열 후, 분당 2℃로 18℃까지 냉각시킨다.
집단 내의 올리고머는 전형적으로 2 내지 16개의 뉴클레오티드를 갖는다. 집단 내의 모든 올리고머는 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15 또는 16개의 뉴클레오티드를 가질 수 있다. 집단 내의 올리고머는 상이한 길이를 가질 수 있다. 집단 내의 모든 올리고머는 바람직하게 동일한 길이를 가질 수 있다. 이러한 올리고머는 상기 논의된 뉴클레오티드 중 임의의 것을 포함할 수 있다. 뉴클레오티드는 올리고머와 혼성화되는 가닥 내의 뉴클레오티드에 상보적이다. 관련 기술분야의 통상의 기술자가 이들 뉴클레오티드에 상보적인 뉴클레오티드를 확인하는 것은 간단한 일이다. 특정 뉴클레오티드가 염기쌍 형성, 바람직하게 왓슨 앤 크릭(Watson and Crick) 염기쌍 형성을 통하여 또 다른 뉴클레오티드와 혼성화되는 경우에, 이러한 뉴클레오티드는 또 다른 뉴클레오티드에 상보적이다. 상보적 뉴클레오티드는, 이와 상보적이지 않은 다른 뉴클레오티드와 혼성화될 수 있긴 하지만, 그와 상보적인 뉴클레오티드와 혼성화되는 것보다 더 적은 정도로 혼성화된다. N은 바람직하게, 핵염기 아데닌 (A), 우라실 (U), 구아닌 (G) 또는 시토신 (C)을 포함한다. 또 다른 한편으론, N은 바람직하게, 핵염기 A, 티민 (T), G 또는 C를 포함한다. A는 T 또는 U에 상보적이고 그 반대의 경우도 마찬가지이다. G는 C에 상보적이고 그 반대의 경우도 마찬가지이다.
상기 집단은 가닥 내의 모든 뉴클레오티드에 상보적인 뉴클레오티드의 모든 가능한 조합을 포함한다. 이는 올리고머의 서열이 무엇이든지 간에, 올리고머가 전부는 아니지만 대부분의 가닥과 혼성화될 것이라는 것을 의미한다. 예를 들어, N이 핵염기 아데닌 (A), 우라실 (U), 구아닌 (G) 또는 시토신 (C)을 포함하는 경우, 상기 집단은 A, U, G 및 C의 모든 가능한 조합을 포함한다. 유사하게, N이 핵염기 A, 티민 (T), G 또는 C를 포함하는 경우, 상기 집단은 A, T, G 및 C의 모든 가능한 조합을 포함한다.
필요한 조합을 갖는 올리고머의 집단을 설계하고 수득하는 것은 간단하다. 예를 들어, 집단 내의 모든 올리고머가 NN을 포함하거나 또는 이로 이루어지고 N이 A, T, G 또는 C인 경우, 상기 집단은 AT, AG, AC, TA, TG, TC, GA, GT, GC, CA, CT 및 CG를 포함한다. 유사하게, 집단 내의 모든 올리고머가 NNN을 포함하거나 또는 이로 이루어지고 N이 A, T, G 또는 C인 경우, 상기 집단은 ATG, ATC, AGT, AGC, ACT, ACG, TAG, TAC, TGA, TGC, TCA, TCG, GAT, GAC, GTA, GTC, GCA, GCT, CAT, CAG, CTA, CTG, CGA 및 CGT를 포함한다. 일단 일반식, 예컨대 NN 또는 NNN이 설계되면, N의 가능한 조합 모두를 포함하는 집단이, 예를 들어 인티그레이티드 DNA 테크놀러지(Intergrated DNA Technologies; IDT), 시그마(Sigma) 및 인비트로젠(Invitrogen)으로부터 시판되고 있다.
올리고머는 본 발명에 따라서 함께 라이게이션될 수 있다. 집단 내의 모든 올리고머는 바람직하게, 5' 말단에 포스페이트 기 또는 아데닐레이트 기를 갖는다.
혼성화된 올리고머는 관련 기술분야에 공지된 임의의 방법을 이용하여 함께 라이게이션할 수 있다. 이러한 올리고머는 바람직하게, 리가제, 예컨대 T4 DNA 리가제, 이. 콜라이 DNA 리가제, Taq DNA 리가제, Tma DNA 리가제 및 9°N DNA 리가제를 이용하여 라이게이션한다.
올리고머는 또한, 반응성 기가 올리고머의 말단 상에 존재하는 경우에는, 화학적으로 라이게이션할 수 있다. 이러한 실시양태에서는, 올리고머가 용액 중에서 서로 라이게이션되지 못하도록 하는 단계를 수행할 필요가 있다. 라이게이션 반응은 전형적으로, 프라이머로서 특정 가닥 상의 헤어핀을 사용하여 개시된다.
바람직한 실시양태에서, 본 방법은 바람직하게, 복수 개의 이중 가닥 구축물을 폴리머라제와 접촉시켜, 이러한 폴리머라제가 이중 가닥 구축물의 두 가닥을 동시에 분리시키고 주형으로서 이들 가닥을 사용하여 복수 개의 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 형성시키도록 하는 것을 포함한다. 상기 또는 하기에 논의된 폴리머라제 중 임의의 것을 사용할 수 있다. 폴리머라제는 상기 또는 하기에 논의된 뉴클레오티드 중 임의의 것을 포함하는 새로운 가닥을 형성할 수 있다. 폴리머라제는 주형 가닥 내의 뉴클레오티드를 보완하는 유리 뉴클레오티드의 집단에 제공된다. 폴리머라제는 유리 뉴클레오티드를 이용하여 새로운 가닥을 형성시킬 수 있다.
변형된 폴리뉴클레오티드
폴리머라제가 가닥을 주형으로서 사용하여 복수 개의 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 형성시키는 경우, 그 방법은 폴리머라제가 상기 가닥을 주형으로서 사용하여 복수 개의 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 형성시키는 조건하에, 가닥을 폴리머라제 및 유리 뉴클레오티드의 집단과 접촉시키는 것을 포함할 수 있는데, 여기서 폴리머라제는 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 형성시킬 때, 가닥 내의 뉴클레오티드 종 중 하나 이상을 상이한 뉴클레오티드 종으로 대체시킨다. 폴리머라제를 사용하여 상기 논의된 바와 같이 가닥을 동시에 분리시킬 수 있다. 이러한 유형의 변형은 UK 출원 번호 1403096.9에 기재되어 있다. 상기 또는 하기에 논의된 폴리머라제 중 임의의 것을 사용할 수 있다. 폴리머라제는 바람직하게 클레나우 또는 9°노스이다. 적합한 조건이 상기에 논의되어 있다.
막횡단 세공을 이용하여 폴리뉴클레오티드의 특징을 규명하는 것, 예컨대 서열 분석하는 것은 전형적으로, k 뉴클레오티드 (여기서, k는 양의 정수이다) [즉, 'k-량체(k-mer)']로 구성된 중합체 단위를 분석하는 것을 포함한다. 이는 국제 출원 번호 PCT/GB2012/052343 (WO 2013/041878로서 공개됨)에 논의되어 있다. 상이한 k-량체에 대한 전류 측정치 간을 명확히 분리하는 것이 바람직하지만, 이러한 측정치 중 일부는 중복되는 것이 일반적이다. 특히 k-량체 내의 중합체 단위의 수가 많으면, 즉 k 값이 높으면, 상이한 k-량체에 의해 생성된 측정치를 결정하는 것이 어려워질 수 있어, 폴리뉴클레오티드에 관한 정보, 예를 들어 폴리뉴클레오티드의 기본 서열의 추정을 유도하는 데에 손상이 초래된다.
가닥 내의 하나 이상의 뉴클레오티드 종을, 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드의 새로운 가닥 (즉, 폴리머라제를 이용하여 생성된 가닥) 내의 상이한 뉴클레오티드 종으로 대체함으로써, 새로운 가닥은 주형 가닥 내의 것과 상이한 k-량체를 함유한다. 새로운 가닥 내의 상이한 k-량체는 주형 가닥 내의 k-량체와는 상이한 전류 측정치를 생성시킬 수 있으므로, 새로운 가닥은 주형 가닥과 상이한 정보를 제공한다. 새로운 가닥으로부터의 부가의 정보는 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드의 특징을 규명하므로, 주형 폴리뉴클레오티드의 특징을 규명하는 것을 더 용이하게 만들 수 있다. 일부 경우에는, 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드 자체의 특징을 규명하는 것이 더 용이할 수 있다. 예를 들어, 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드는 그들의 전류 측정치 간의 증가된 분리 또는 명확한 분리를 수반하는 k-량체 또는 감소된 소음을 갖는 k-량체를 포함하도록 설계될 수 있다.
폴리머라제는 바람직하게, 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 형성시킬 때, 주형 가닥 내의 2개 이상의 뉴클레오티드 종을 상이한 뉴클레오티드 종으로 대체시킨다. 폴리머라제는 주형 가닥 내의 2개 이상의 뉴클레오티드 종 각각을 별개의 뉴클레오티드 종으로 대체시킬 수 있다. 폴리머라제는 주형 가닥 내의 2개 이상의 뉴클레오티드 종 각각을 동일한 뉴클레오티드 종으로 대체시킬 수 있다.
주형 가닥이 DNA인 경우, 상이한 뉴클레오티드 종은 전형적으로, 아데닌, 구아닌, 티민, 시토신 또는 메틸시토신과 상이한 핵염기를 포함하고/하거나 데옥시아데노신, 데옥시구아노신, 티미딘, 데옥시시티딘 또는 데옥시메틸시티딘과 상이한 뉴클레오시드를 포함한다. 주형 가닥이 RNA인 경우, 변형된 폴리뉴클레오티드 내의 상이한 뉴클레오티드 종은 전형적으로, 아데닌, 구아닌, 우라실, 시토신 또는 메틸시토신과 상이한 핵염기를 포함하고/하거나 아데노신, 구아노신, 우리딘, 시티딘 또는 메틸시티딘과 상이한 뉴클레오시드를 포함한다.
상이한 뉴클레오티드 종은 범용(universal) 뉴클레오티드일 수 있다. 범용 뉴클레오티드는 주형 가닥 내의 모든 뉴클레오티드와 어느 정도 혼성화되거나 또는 결합되는 것이다. 범용 뉴클레오티드는 바람직하게, 뉴클레오시드 아데노신 (A), 티민 (T), 우라실 (U), 구아닌 (G) 및 시토신 (C)을 포함하는 뉴클레오티드와 어느 정도 혼성화되거나 또는 결합되는 것이다. 범용 뉴클레오티드는 다른 뉴클레오티드 보다 일부 뉴클레오티드와 더 강력하게 혼성화되거나 또는 결합될 수 있다. 예를 들어, 뉴클레오시드인 2'-데옥시이노신을 포함하는 범용 뉴클레오티드 (I)는 I-C > I-A > I-G 대략 = I-T의 쌍형성의 우선 순위를 나타낼 것이다. 범용 뉴클레오티드가 집단 내의 뉴클레오티드 종을 대신하는 경우, 이러한 폴리머라제는 뉴클레오티드 종을 범용 뉴클레오티드로 대체시킬 것이다. 예를 들어, 유리 dAMP, dTMP, dCMP의 집단과 범용 뉴클레오티드를 접촉시키는 경우에는, 폴리머라제가 dGMP를 범용 뉴클레오티드로 대체시킬 것이다.
범용 뉴클레오티드는 바람직하게, 다음 핵염기 중 하나를 포함한다: 히포크산틴, 4-니트로인돌, 5-니트로인돌, 6-니트로인돌, 포르밀인돌, 3-니트로피롤, 니트로이미다졸, 4-니트로피라졸, 4-니트로벤즈이미다졸, 5-니트로인다졸, 4-아미노벤즈이미다졸 또는 페닐 (C6-방향족 환). 범용 뉴클레오티드는 보다 바람직하게, 다음 뉴클레오시드 중 하나를 포함한다: 2'-데옥시이노신, 이노신, 7-데아자-2'-데옥시이노신, 7-데아자-이노신, 2-아자-데옥시이노신, 2-아자-이노신, 2-O'-메틸이노신, 4-니트로인돌 2'-데옥시리보뉴클레오시드, 4-니트로인돌 리보뉴클레오시드, 5-니트로인돌 2' 데옥시리보뉴클레오시드, 5-니트로인돌 리보뉴클레오시드, 6-니트로인돌 2' 데옥시리보뉴클레오시드, 6-니트로인돌 리보뉴클레오시드, 3-니트로피롤 2' 데옥시리보뉴클레오시드, 3-니트로피롤 리보뉴클레오시드, 히포크산틴의 아사이클릭 당 유사체, 니트로이미다졸 2' 데옥시리보뉴클레오시드, 니트로이미다졸 리보뉴클레오시드, 4-니트로피라졸 2' 데옥시리보뉴클레오시드, 4-니트로피라졸 리보뉴클레오시드, 4-니트로벤즈이미다졸 2' 데옥시리보뉴클레오시드, 4-니트로벤즈이미다졸 리보뉴클레오시드, 5-니트로인다졸 2' 데옥시리보뉴클레오시드, 5-니트로인다졸 리보뉴클레오시드, 4-아미노벤즈이미다졸 2' 데옥시리보뉴클레오시드, 4-아미노벤즈이미다졸 리보뉴클레오시드, 페닐 C-리보뉴클레오시드, 페닐 C-2'-데옥시리보실 뉴클레오시드, 2'-데옥시네불라린, 2'-데옥시이소구아노신, K-2'-데옥시리보스, P-2'-데옥시리보스 및 피롤리딘. 범용 뉴클레오티드는 보다 바람직하게 2'-데옥시이노신을 포함한다. 범용 뉴클레오티드는 보다 바람직하게 IMP 또는 dIMP이다. 범용 뉴클레오티드는 가장 바람직하게 dPMP (2'-데옥시-P-뉴클레오시드 모노포스페이트) 또는 dKMP (N6-메톡시-2,6-디아미노퓨린 모노포스페이트)이다.
상이한 뉴클레오티드 종은 바람직하게, 그것이 대체하는 뉴클레오티드 종으로부터 부재하는 화학적 원자 또는 기를 포함한다. 이러한 화학적 기는 바람직하게, 프로피닐 기, 티오 기, 옥소 기, 메틸 기, 히드록시메틸 기, 포르밀 기, 카르복시 기, 카르보닐 기, 벤질 기, 프로파르길 기 또는 프로파르길아민 기이다. 화학적 기 또는 원자는 형광성 분자, 비오틴, 디곡시게닌, DNP (디니트로페놀), 광 불안정한 기, 알킨, DBCO, 아지드, 유리 아미노 기, 레독스 염료, 수은 원자 또는 셀레늄 원자일 수 있거나 또는 이를 포함할 수 있다.
자연 발생적 뉴클레오시드로부터 부재하는 화학적 기를 포함하는 시판용 뉴클레오시드는 6-티오-2'-데옥시구아노신, 7-데아자-2'-데옥시아데노신, 7-데아자-2'-데옥시구아노신, 7-데아자-2'-데옥시크산토신, 7-데아자-8-아자-2'-데옥시아데노신, 8-5'(5'S)-시클로-2'-데옥시아데노신, 8-아미노-2'-데옥시아데노신, 8-아미노-2'-데옥시구아노신, 8-중수소화-2'-데옥시구아노신, 8-옥소-2'-데옥시아데노신, 8-옥소-2'-데옥시구아노신, 에테노-2'-데옥시아데노신, N6-메틸-2'-데옥시아데노신, O6-메틸-2'-데옥시구아노신, O6-페닐-2'데옥시이노신, 2'-데옥시슈도우리딘, 2-티오티미딘, 4-티오-2'-데옥시우리딘, 4-티오티미딘, 5' 아미노티미딘, 5-(1-피레닐에티닐)-2'-데옥시우리딘, 5-(C2-EDTA)-2'-데옥시우리딘, 5-(카르복시)비닐-2'-데옥시우리딘, 5,6-디히드로-2'-데옥시우리딘, 5,6-디히드로티미딘, 5-브로모-2'-데옥시시티딘, 5-브로모-2'-데옥시우리딘, 5-카르복시-2'-데옥시시티딘, 5-플루오로-2'-데옥시우리딘, 5-포르밀-2'-데옥시시티딘, 5-히드록시-2'-데옥시시티딘, 5-히드록시-2'-데옥시우리딘, 5-히드록시메틸-2'-데옥시시티딘, 5-히드록시메틸-2'-데옥시우리딘, 5-아이오도-2'-데옥시시티딘, 5-아이오도-2'-데옥시우리딘, 5-메틸-2'-데옥시시티딘, 5-메틸-2'-데옥시이소시티딘, 5-프로피닐-2'-데옥시시티딘, 5-프로피닐-2'-데옥시우리딘, 6-O-(TMP)-5-F-2'-데옥시우리딘, C4-(1,2,4-트리아졸-1-일)-2'-데옥시우리딘, C8-알킨-티미딘, dT-페로센, N4-에틸-2'-데옥시시티딘, O4-메틸티미딘, 피롤로-2'-데옥시시티딘, 티미딘 글리콜, 4-티오우리딘, 5-메틸시티딘, 5-메틸우리딘, 피롤로시티딘, 3-데아자-5-아자-2'-O-메틸시티딘, 5-플루오로-2'-O-메틸우리딘, 5-플루오로-4-O-TMP-2'-O-메틸우리딘, 5-메틸-2'-O-메틸시티딘, 5-메틸-2'-O-메틸티미딘, 2',3'-디데옥시아데노신, 2',3'-디데옥시시티딘, 2',3'-디데옥시구아노신, 2',3'-디데옥시티미딘, 3'-데옥시아데노신, 3'-데옥시시티딘, 3'-데옥시구아노신, 3'-데옥시티미딘 및 5'-O-메틸티미딘을 포함하지만, 이에 제한되지 않는다. 상이한 뉴클레오티드 종은 이들 뉴클레오시드 중 임의의 것을 포함할 수 있다.
또 다른 한편으론, 상이한 뉴클레오티드 종은 바람직하게, 그것이 대체하는 뉴클레오티드 종에 존재하는 화학적 기 또는 원자가 결여된다.
상이한 뉴클레오티드 종은 바람직하게, 대체되는 하나 이상의 뉴클레오티드와 비교해서 변경된 전기 음성도를 갖는다. 변경된 전기 음성도를 갖는 상이한 뉴클레오티드 종은 바람직하게 할로겐 원자를 포함한다. 할로겐 원자는 상이한 뉴클레오티드 종 상의 임의의 위치, 예컨대 핵염기 및/또는 당에 부착될 수 있다. 할로겐 원자는 바람직하게 플루오린 (F), 염소 (Cl), 브로민 (Br) 또는 아이오딘 (I)이다. 할로겐 원자는 가장 바람직하게 F 또는 I이다.
할로겐을 포함하는 시판용 뉴클레오시드는 8-브로모-2'-데옥시아데노신, 8-브로모-2'-데옥시구아노신, 5-브로모우리딘, 5-아이오도우리딘, 5-브로모우리딘, 5-아이오도우리딘, 5'-아이오도티미딘 및 5-브로모-2'-O-메틸우리딘을 포함하지만, 이에 제한되지 않는다. 상이한 뉴클레오티드 종은 이들 뉴클레오시드 중 임의의 것을 포함할 수 있다.
방법은 바람직하게, 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드 내의 하나 이상의 상이한 뉴클레오티드 종으로부터 핵염기를 선택적으로 제거하는 것을 추가로 포함한다. 이로써, 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드 내에 탈염기성 뉴클레오티드가 초래된다. 탈염기성 뉴클레오티드는 핵염기가 결여된 뉴클레오티드이다. 탈염기성 뉴클레오티드는 전형적으로 당 및 적어도 하나의 포스페이트 기를 함유한다. 당은 전형적으로 펜토스 당, 예컨대 리보스 및 데옥시리보스이다. 탈염기성 뉴클레오티드는 전형적으로 탈염기성 리보뉴클레오티드 또는 탈염기성 데옥시리보뉴클레오티드이다. 탈염기성 뉴클레오티드는 전형적으로 모노포스페이트, 디포스페이트 또는 트리포스페이트를 함유한다. 포스페이트는 탈염기성 뉴클레오티드의 5' 또는 3' 측면 상에 부착될 수 있다.
핵염기는 관련 기술분야에 공지된 임의의 방법을 이용하여 선택적으로 제거할 수 있다. 예를 들어, 특정의 DNA 복구 단백질, 예컨대 인간 알킬아데닌 DNA 글리코실라제 (hAAG)는 뉴클레오티드로부터 3-메틸 아데닌, 7-메틸 구아닌, 1, N6-에테노아데닌 및 히포크산틴을 선택적으로 제거할 수 있다. 또한, dUMP는 우라실 DNA 글리코실라제를 이용하여 선택적으로 제거할 수 있다.
부가의 폴리머라제 단계
또 다른 바람직한 실시양태에서, 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드 내의 정보량은 주형 폴리뉴클레오티드의 특징 규명을 촉진시키기 위해 2배로 된다. 이의 한 예가 도 8에 도시된다. 그 방법은 바람직하게, (d) 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드의 두 가닥을 분리시키고; 이들 가닥을 주형으로서 사용하여, 각각 적어도 하나의 헤어핀 루프에 의해 연결된 두 상보적 가닥을 포함하는 복수 개의 개조된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 형성하는 단계 (여기서, 각 상보적 가닥은 2개의 상보적 서열을 포함한다)를 포함한다. 각 상보적 가닥 내의 2개의 상보적 서열 중 하나는 주형 이중 가닥 폴리뉴클레오티드로부터 유래된다. 단계 (d)는 전형적으로, 분리시키기 전에, 상보적 가닥을 연결시키는 적어도 하나의 헤어핀 루프로부터 상기 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드의 다른 말단에서 상기 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드에 헤어핀 루프를 부착시키는 것을 포함한다. 이러한 헤어핀 루프는 바람직하게, 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드의 가닥을 연결시키지 않는다. 헤어핀은 폴리머라제에 대한 핵형성 지점을 형성할 수 있다. 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드의 분리된 가닥이 주형으로서 사용될 때, 상기 부착된 헤어핀 루프가 또한 주형으로서 사용되고, 상기 개조된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드의 두 상보적 가닥을 연결시켜 주는데, 즉 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드로부터의 주형 가닥과 주형으로부터 형성된 새로운 가닥을 연결시켜 준다.
단계 (d)는 상기 논의된 방식 중 임의의 것으로 수행될 수 있다. 예를 들어, 단계 (d)는 pH, 온도 및 이온 강도 중 하나 이상을 증가시킴으로써, 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드의 두 가닥을 분리시키는 것을 포함할 수 있다. 단계 (d)는 상기 분리된 가닥을 폴리머라제와 접촉시켜, 이러한 폴리머라제가 상기 가닥을 주형으로서 사용하여 복수 개의 개조된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 형성하도록 하는 것을 포함할 수 있다. 단계 (d)는 (i) 복수 개의 분리된 가닥을, 뉴클레오티드 올리고머가 이러한 가닥과 혼성화할 수 있는 조건하에 상기 가닥 내의 모든 뉴클레오티드에 상보적인 뉴클레오티드의 모든 가능한 조합을 포함하는 뉴클레오티드 올리고머의 집단과 접촉시키는 단계; 및 (ii) 상기 가닥과 혼성화되는 올리고머를 함께 라이게이션하여 복수 개의 개조된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 형성시키는 단계를 포함할 수 있다. 단계 (d)는 복수 개의 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 폴리머라제와 접촉시켜, 이러한 폴리머라제가 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드의 두 가닥을 동시에 분리시키고 이들 가닥을 주형으로서 사용하여 복수 개의 개조된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 형성시키도록 하는 것을 포함할 수 있다. 상기 논의된 실시양태 중 임의의 것을 단계 (d)에 적용할 수 있다. 예를 들어, 단계 (d)는 주형 가닥 내의 하나 이상의 뉴클레오티드 종을 새로운 가닥 내의 상이한 뉴클레오티드 종으로 대체시키는 것을 포함할 수 있다.
Y 어댑터
각 기질이 리더 서열을 포함하지 않는 경우, 그 방법은 바람직하게는 복수 개의 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드에, 헤어핀 루프와는 반대 말단에서 Y 어댑터를 부착시키는 것을 추가로 포함한다. Y 어댑터는 전형적으로 폴리뉴클레오티드 어댑터이다. 이들은 상기 논의된 폴리뉴클레오티드 중 임의의 것으로부터 형성될 수 있다. Y 어댑터는 전형적으로, (a) 이중 가닥 영역 및 (b) 단일 가닥 영역; 또는 다른 말단에서 상보적이지 않은 영역을 포함한다. Y 어댑터는 이것이 단일 가닥 영역을 포함하는 경우에 오버행을 갖는 것으로서 기재될 수 있다. Y 어댑터 내에 비-상보적 영역이 존재함으로써 어댑터에 Y자 모양이 제공되는데, 이는 두 가닥이 전형적으로 이중 가닥 부분과는 달리 서로 혼성화되지 않기 때문이다. Y 어댑터는 다음에 보다 상세히 논의되는 바와 같은 하나 이상의 앵커를 포함할 수 있다.
Y 어댑터는 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드에 라이게이션될 수 있다. 라이게이션은 관련 기술분야에 공지된 임의의 방법을 이용하여 수행될 수 있다. 예를 들어, Y 어댑터는 리가제, 예컨대 T4 DNA 리가제, 이. 콜라이 DNA 리가제, Taq DNA 리가제, Tma DNA 리가제 및 9°N DNA 리가제를 이용하여 라이게이션될 수 있다.
본 발명의 생성물
본 발명은 또한, 주형 폴리뉴클레오티드를 변형시키기 위한 이중 가닥 MuA 기질의 집단을 제공하는데, 여기서 각 기질은 범용 뉴클레오티드의 적어도 하나의 오버행을 포함한다. 본 발명은 또한, 주형 폴리뉴클레오티드를 변형시키기 위한 이중 가닥 MuA 기질의 집단을 제공하는데, 여기서 각 기질은 (i) 적어도 하나의 오버행 및 (ii) 이러한 적어도 하나의 오버행을 포함하는 가닥으로부터 반대 가닥 내의 적어도 하나의 헤어핀 루프를 포함한다. 기질은 상기 논의된 것들 중 임의의 것일 수 있다. 기질은 바람직하게, 상기 정의된 바와 같은 이중 가닥 부분을 포함한다. 이중 가닥 부분은 바람직하게, 상기 논의된 바와 같은 서열식별번호: 26 및 27을 포함한다. 이중 가닥 부분은 보다 바람직하게, 상기 논의된 바와 같은 서열식별번호: 26 및 28을 포함한다. 본 발명의 바람직한 집단은 각 기질이 한 말단에 오버행을 포함하고 다른 말단에 헤어핀 루프를 포함하는 것이다.
본 발명은 또한, 본 발명의 방법을 이용하여 변형시킨 복수 개의 폴리뉴클레오티드를 제공한다. 복수 개의 폴리뉴클레오티드는 상기 논의된 형태 중 임의의 것으로 존재할 수 있다. 상기 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드는 헤어핀 루프에 의해 연결된 주형 폴리뉴클레오티드의 이중 가닥 단편을 포함하는 두 상보적 가닥을 포함한다.
집단 또는 복수 개는 분리하거나, 실질적으로 분리하거나, 정제하거나 또는 실질적으로 정제할 수 있다. 집단 또는 복수 개는 임의의 다른 성분, 예컨대 주형 폴리뉴클레오티드, 지질 또는 세공이 완전히 없는 경우에 단리되거나 또는 정제된다. 집단 또는 복수 개는 그의 사용 목적을 방해하지 않을 담체 또는 희석제와 혼합되는 경우에 실질적으로 단리된다. 예를 들어, 집단 또는 복수 개는 다른 성분, 예컨대 지질 또는 세공을 10% 미만, 5% 미만, 2% 미만 또는 1% 미만으로 포함하는 형태로 존재하는 경우에 실질적으로 단리되거나 또는 실질적으로 정제된다.
특징 규명 방법
본 발명은 또한, 본 발명의 방법을 이용하여 변형시킨 적어도 하나의 폴리뉴클레오티드의 특징을 규명하는 방법을 제공한다. 이러한 변형된 폴리뉴클레오티드는 막횡단 세공과 접촉시켜, 폴리뉴클레오티드의 적어도 하나의 가닥이 세공을 통하여 이동하도록 한다. 적어도 하나의 가닥이 세공에 대하여 이동함에 따라 하나 이상의 측정치를 취한다. 이러한 측정치는 적어도 하나의 가닥의 하나 이상의 특징을 나타내고, 이로써 변형된 폴리뉴클레오티드의 특징을 규명할 수 있다.
본 발명은 또한, 주형 폴리뉴클레오티드의 특징을 규명하는 방법을 제공한다. 주형 폴리뉴클레오티드는 본 발명을 이용하여 변형시켜, 복수 개의 변형된 폴리뉴클레오티드를 생성시킨다. 각각의 변형된 폴리뉴클레오티드는 막횡단 세공과 접촉시켜, 각 폴리뉴클레오티드의 적어도 하나의 가닥이 세공을 통하여 이동하도록 한다. 각 폴리뉴클레오티드가 세공에 대하여 이동함에 따라 하나 이상의 측정치를 취한다. 이러한 측정치는 각 폴리뉴클레오티드의 하나 이상의 특징을 나타내고, 이로써 주형 폴리뉴클레오티드의 특징을 규명할 수 있다.
바람직한 실시양태에서, 상기 각각의 변형된 폴리뉴클레오티드의 양 가닥은 세공을 통하여 이동한다. 양 가닥이 세공을 통하여 이동하는 경우, 두 가닥은 전형적으로 분리된다. 이러한 두 가닥은 관련 기술분야에 공지된 임의의 방법을 이용하여 분리시킬 수 있다. 예를 들어, 이들은 폴리뉴클레오티드 결합성 단백질에 의해 분리될 수 있거나 또는 탈혼성화를 선호하는 조건 (탈혼성화를 선호하는 조건의 예는 고온, 높은 pH, 및 수소 결합 또는 염기쌍 형성을 붕괴시킬 수 있는 작용제, 예컨대 포름아미드 및 우레아의 부가를 포함하지만, 이에 제한되지 않는다)을 이용하여 분리될 수 있다.
막횡단 세공
막횡단 세공은 막을 어느 정도 가로지르는 구조이다. 이는 인가된 전위에 의해 구동되는 수화된 이온이 막을 가로 질러 또는 막 내에서 흐르도록 허용한다. 막횡단 세공은 전형적으로, 전체 막을 가로지르므로, 수화된 이온이 막의 한 측면에서 막의 다른 측면으로 흐를 수 있다. 그러나, 막횡단 세공은 막을 가로지를 필요가 없다. 한쪽 말단이 닫혀있을 수 있다. 예를 들어, 상기 세공은 그를 따라 또는 그 내부로 수화된 이온이 흐를 수 있는 막 내의 웰, 갭, 채널, 트렌치 또는 슬릿(slit)일 수 있다.
하나 이상의 선택적으로 증폭된 프로브 또는 하나 이상의 증폭 생성물은 바람직하게, (i) 상기 프로브 또는 증폭 생성물을 막횡단 세공과 접촉시켜, 이러한 프로브 또는 증폭 생성물이 상기 세공을 통하여 이동하도록 하는 단계 및 (ii) 상기 프로브 또는 증폭 생성물이 세공에 대하여 이동함에 따라 하나 이상의 측정치를 취함으로써 (여기서, 이러한 측정치는 프로브 또는 증폭 생성물의 하나 이상의 특징을 나타낸다), 프로브 또는 증폭 생성물의 특징을 규명하는 단계에 의해 그 특징이 규명된다.
임의의 막횡단 세공이 본 발명에 사용될 수 있다. 세공은 생물학적 또는 인공적일 수 있다. 적합한 세공은 단백질 세공, 폴리뉴클레오티드 세공 및 고체 상태 세공을 포함하지만, 이에 제한되지 않는다. 세공은 DNA 오리가미(origami) 세공일 수 있다 (Langecker et al., Science, 2012; 338: 932-936).
막횡단 세공은 바람직하게 막횡단 단백질 세공이다.
본 발명에 따라서 사용하기 위한 막횡단 단백질 세공은 β-배럴 세공 또는 α-나선 번들 세공으로부터 유래될 수 있다. β-배럴 세공은 β-가닥으로부터 형성되는 배럴 또는 채널을 포함한다. 적합한 β-배럴 세공은 β 세공 형성성 독소, 예컨대 α-헤모리신, 탄저균 독소 및 류코시딘, 및 박테리아의 외막 단백질/포린, 예컨대 미코박테리움 스메그마티스 (Mycobacterium smegmatis) 포린 (Msp), 예를 들어 MspA, MspB, MspC 또는 MspD, 외막 포린 F (OmpF), 외막 포린 G (OmpG), 외막 포스포리파제 A 및 네이세리아 (Neisseria) 자동 수송체 지질단백질 (NalP), 및 다른 세공, 예컨대 리세닌(lysenin)을 포함하지만, 이에 제한되지 않는다. α-나선 번들 세공은 α-나선으로부터 형성되는 배럴 또는 채널을 포함한다. 적합한 α-나선 번들 세공은 내막 단백질 및 α 외막 단백질, 예컨대 WZA 및 ClyA 독소를 포함하지만, 이에 제한되지 않는다. 막횡단 세공은 리세닌으로부터 유래될 수 있다. 리세닌으로부터 유래된 적합한 세공은 국제 출원 번호 PCT/GB2013/050667 (WO 2013/153359로서 공개됨)에 개시된다. 막횡단 세공은 Msp, 예컨대 MspA로부터 유래되거나 또는 α-헤모리신 (α-HL)으로부터 유래될 수 있다. 야생형 α-HL 세공은 7개의 동일한 단량체 또는 서브유닛으로 형성된다 (즉, 이것은 7량체이다). α-헤모리신-NN의 하나의 단량체 또는 서브유닛의 서열이 서열식별번호: 4에 제시된다.
막횡단 단백질 세공은 바람직하게 Msp, 바람직하게 MspA로부터 유래된다. 이러한 세공은 올리고머성일 것이고, 전형적으로 Msp로부터 유래된 7, 8, 9 또는 10개의 단량체를 포함한다. 상기 세공은 동일한 단량체를 포함하는 Msp로부터 유래된 동종-올리고머성 세공일 수 있다. 또 다른 한편으론, 상기 세공은 다른 것과 상이한 적어도 하나의 단량체를 포함하는 Msp로부터 유래된 이종-올리고머성 세공일 수 있다. 바람직하게 상기 세공은 MspA 또는 그의 상동체 또는 파라로그(paralog)로부터 유래된다.
Msp로부터 유래된 단량체는 전형적으로, 서열식별번호: 2에 제시된 서열 또는 그의 변이체를 포함한다. 서열식별번호: 2는 MspA 단량체의 MS-(B1)8 돌연변이체이다. 이는 다음 돌연변이를 포함한다: D90N, D91N, D93N, D118R, D134R 및 E139K. 서열식별번호: 2의 변이체는 서열식별번호: 2의 서열에서 벗어나고 세공을 형성할 수 있는 그의 능력을 보유하고 있는 아미노산 서열을 갖는 폴리펩티드이다. 적합한 변이체가 국제 출원 번호 PCT/GB2012/050301 (WO 2012/107778로서 공개됨) 및 UK 출원 번호 1407809.1 (ONT IP 057)에 개시된다. 서열식별번호: 2의 바람직한 변이체는 N93D를 포함한다. 세공을 형성할 수 있는 변이체의 능력은 관련 기술분야에 공지된 임의의 방법을 이용하여 검정할 수 있다. 예를 들어, 상기 변이체는 다른 적절한 서브유닛과 함께 친양쪽성 층 내로 삽입할 수 있고, 세공을 형성하기 위해 올리고머화할 수 있는 그의 능력을 결정할 수 있다. 서브유닛을 막, 예컨대 친양쪽성 층 내로 삽입하기 위한 방법이 관련 기술분야에 공지되어 있다. 예를 들어, 서브유닛은 트리블록 공중합체 막을 함유하는 용액 중에 정제된 형태로 현탁시켜, 이것이 막으로 확산되고 막과의 결합과 기능적 상태로의 어셈블리에 의해 삽입되도록 한다. 또 다른 한편으론, 서브유닛은 문헌 [M.A. Holden, H. Bayley. J. Am. Chem. Soc. 2005, 127, 6502-6503] 및 국제 출원 번호 PCT/GB2006/001057 (WO 2006/100484로서 공개됨)에 기재된 "선택 및 배치" 방법을 이용하여 막 내로 직접 삽입할 수 있다.
서열식별번호: 2의 아미노산 서열의 전체 길이에 걸쳐, 변이체는 바람직하게, 아미노산 동일성에 근거하여 상기 서열과 적어도 50% 상동일 것이다. 보다 바람직하게, 변이체는 전체 서열에 걸쳐 서열식별번호: 2의 아미노산 서열과의 아미노산 동일성에 근거하여 적어도 55%, 적어도 60%, 적어도 65%, 적어도 70%, 적어도 75%, 적어도 80%, 적어도 85%, 적어도 90% 및 보다 바람직하게 적어도 95%, 97% 또는 99% 상동일 수 있다. 100개 이상, 예를 들어 125, 150, 175 또는 200개 또는 그 초과의 연속되는 아미노산의 연장물에 걸쳐 적어도 80%, 예를 들어 적어도 85%, 90% 또는 95%의 아미노산 동일성이 존재할 수 있다 ("하드 상동성").
본원에 기재된 단백질 중 임의의 것, 예컨대 막횡단 단백질 세공은 합성적으로 또는 재조합 수단에 의해 만들 수 있다. 예를 들어, 상기 세공은 시험관내 번역 및 전사 (IVTT)에 의해 합성될 수 있다. 이러한 세공의 아미노산 서열은 비-자연 발생적 아미노산을 포함하도록 변형되거나 또는 단백질의 안정성을 증가시키도록 변형될 수 있다. 단백질이 합성 수단에 의해 생성되는 경우, 이러한 아미노산은 생성 동안 도입될 수 있다. 세공은 또한, 합성 또는 재조합 생성 후에 변경될 수 있다.
특징 규명
본 방법은 변형된 또는 주형 폴리뉴클레오티드의 2개, 3개, 4개 또는 5개 또는 그 초과의 특징을 측정하는 것을 포함할 수 있다. 하나 이상의 특징은 바람직하게, (i) 폴리뉴클레오티드의 길이, (ii) 폴리뉴클레오티드의 실체, (iii) 폴리뉴클레오티드의 서열, (iv) 폴리뉴클레오티드의 2차 구조 및 (v) 폴리뉴클레오티드가 변형되는 지의 여부로부터 선택된다. 본 발명에 따라서 (i) 내지 (v)의 임의의 조합, 예컨대 {i}, {ii}, {iii}, {iv}, {v}, {i,ii}, {i,iii}, {i,iv}, {i,v}, {ii,iii}, {ii,iv}, {ii,v}, {iii,iv}, {iii,v}, {iv,v}, {i,ii,iii}, {i,ii,iv}, {i,ii,v}, {i,iii,iv}, {i,iii,v}, {i,iv,v}, {ii,iii,iv}, {ii,iii,v}, {ii,iv,v}, {iii,iv,v}, {i,ii,iii,iv}, {i,ii,iii,v}, {i,ii,iv,v}, {i,iii,iv,v}, {ii,iii,iv,v} 또는 {i,ii,iii,iv,v}을 측정할 수 있다. 제2 폴리뉴클레오티드와 비교한 제1 폴리뉴클레오티드에 대한 (i) 내지 (v)의 상이한 조합 (상기 열거된 조합 중 임의의 것을 포함함)을 측정할 수 있다.
(i)의 경우, 폴리뉴클레오티드의 길이는, 예를 들어 폴리뉴클레오티드와 세공 간의 상호 작용의 수 또는 폴리뉴클레오티드와 세공 간의 상호 작용의 지속 기간을 결정함으로써 측정될 수 있다.
(ii)의 경우, 폴리뉴클레오티드의 실체는 수많은 방식으로 측정될 수 있다. 폴리뉴클레오티드의 실체는 폴리뉴클레오티드의 서열의 측정과 연계하거나 또는 폴리뉴클레오티드의 서열의 측정과 연계하지 않고서 측정될 수 있다. 전자가 간단한데; 폴리뉴클레오티드를 서열 분석함으로써 실체를 확인한다. 후자는 여러 방식으로 수행될 수 있다. 예를 들어, 폴리뉴클레오티드 내의 특별한 모티프의 존재를 측정할 수 있다 (폴리뉴클레오티드의 나머지 서열은 측정하지 않는다). 또 다른 한편으론, 상기 방법에서 특별한 전기적 및/또는 광학 시그널의 측정은 폴리뉴클레오티드를 특별한 공급원으로부터 유래한 것으로서 확인할 수 있다.
(iii)의 경우, 폴리뉴클레오티드의 서열은 이전에 기재된 바와 같이 결정될 수 있다. 적합한 서열 분석 방법, 특히 전기적 측정을 이용하는 방법이 문헌 [Stoddart D et al., Proc Natl Acad Sci, 12;106(19):7702-7, Lieberman KR et al., J Am Chem Soc. 2010;132(50):17961-72] 및 국제 출원 WO 2000/28312에 기재되어 있다.
(iv)의 경우, 2차 구조는 각종 방식으로 측정될 수 있다. 예를 들어, 상기 방법이 전기적 측정을 포함하는 경우, 2차 구조는 세공을 통하여 흐르는 전류 상의 변화 또는 체류 시간 상의 변화를 이용하여 측정될 수 있다. 이로써, 단일 가닥 폴리뉴클레오티드의 영역과 이중 가닥 폴리뉴클레오티드의 영역이 구별될 수 있다.
(v)의 경우, 임의의 변형의 존재 또는 부재를 측정할 수 있다. 그 방법은 바람직하게, 폴리뉴클레오티드가 메틸화에 의해, 산화에 의해, 손상에 의해, 하나 이상의 단백질을 이용하거나 또는 하나 이상의 표지, 태그 또는 스페이서를 이용하여 변형되는 지의 여부를 결정하는 것을 포함한다. 특이적 변형은 다음에 기재되는 방법을 이용하여 측정될 수 있는 세공과의 특이적 상호 작용을 초래할 것이다. 예를 들어, 메틸시토신은 각 뉴클레오티드와의 상호 작용 동안 세공을 통하여 흐르는 전류를 근거로 하여 시토신과 구별될 수 있다.
폴리뉴클레오티드는 막횡단 세공과 접촉시킨다. 이러한 세공은 전형적으로, 막에 존재한다. 적합한 막은 다음에 논의된다. 그 방법은 세공이 막에 존재하는 막/세공 시스템을 조사하는 데 적합한 임의의 장치를 사용하여 수행될 수 있다. 상기 방법은 막횡단 세공 감지에 적합한 임의의 장치를 이용하여 수행될 수 있다. 예를 들어, 상기 장치는 수성 용액을 포함하는 챔버; 및 이러한 챔버를 2개의 섹션으로 분리시켜 주는 장벽을 포함한다. 장벽은 전형적으로, 세공을 함유하는 막이 형성되는 구멍을 갖는다. 또 다른 한편으론, 장벽은 세공이 존재하는 막을 형성한다.
상기 방법은 국제 출원 번호 PCT/GB08/000562 (WO 2008/102120)에 기재된 장치를 이용하여 수행될 수 있다.
각종 상이한 유형의 측정이 이루어질 수 있다. 이는 전기적 측정 및 광학적 측정을 포함하지만, 이에 제한되지 않는다. 가능한 전기적 측정은 전류 측정, 임피던스 측정, 터널링(tunnelling) 측정 (문헌 [Ivanov AP et al., Nano Lett. 2011 Jan 12; 11(1):279-85]), 및 FET 측정 (국제 출원 WO 2005/124888)을 포함한다. 광학적 측정은 전기적 측정과 조합될 수 있다 (Soni GV et al., Rev Sci Instrum. 2010 Jan; 81(1):014301). 측정은 막횡단 전류 측정, 예컨대 세공을 통하여 흐르는 이온성 전류의 측정일 수 있다.
전기적 측정은 문헌 [Stoddart D et al., Proc Natl Acad Sci, 12;106(19):7702-7, Lieberman KR et al., J Am Chem Soc. 2010;132(50):17961-72], 및 국제 출원 WO 2000/28312에 기재된 바와 같은 표준 단일 채널 녹음 장비를 이용하여 이루어질 수 있다. 또 다른 한편으론, 전기적 측정은, 예를 들어 국제 출원 WO 2009/077734 및 국제 출원 WO 2011/067559에 기재된 바와 같은 다채널 시스템을 이용하여 이루어질 수 있다.
본 방법은 바람직하게, 막에 걸쳐 인가된 전위를 이용하여 수행된다. 이와 같이 인가된 전위는 전압 전위일 수 있다. 또 다른 한편으론, 인가된 전위는 화학적 전위일 수 있다. 이의 한 예는 막, 예컨대 친양쪽성 층에 걸친 염 구배를 이용한다. 염 구배는 문헌 [Holden et al., J Am Chem Soc. 2007 Jul 11; 129(27):8650-5]에 개시된다. 일부 경우에, 폴리뉴클레오티드가 세공에 대하여 이동함에 따라 세공을 관통하는 전류를 이용하여, 폴리뉴클레오티드의 서열을 추정하거나 또는 결정한다. 이것이 가닥 서열 분석이다.
본 방법은 폴리뉴클레오티드가 세공에 대하여 이동함에 따라 세공을 관통하는 전류를 측정하는 것을 포함할 수 있다. 따라서, 이러한 방법에 사용된 장치는 또한, 전위를 인가할 수 있고 막 및 세공에 걸쳐 전기적 시그널을 측정할 수 있는 전기 회로를 포함할 수 있다. 상기 방법은 패치 클램프 또는 전압 클램프를 이용하여 수행될 수 있다. 상기 방법은 바람직하게, 전압 클램프의 사용을 포함한다.
본 발명의 방법은 폴리뉴클레오티드가 세공에 대하여 이동함에 따라 세공을 관통하는 전류를 측정하는 것을 포함할 수 있다. 막횡단 단백질 세공을 통하여 이온 전류를 측정하는 데 적합한 조건은 관련 기술분야에 공지되어 있고 본 실시예에 개시된다. 상기 방법은 전형적으로, 막 및 세공에 걸쳐 인가된 전압을 이용하여 수행된다. 사용된 전압은 전형적으로 +5 V 내지 -5 V, 예컨대 +4 V 내지 -4 V, +3 V 내지 -3 V 또는 +2 V 내지 -2 V이다. 사용된 전압은 전형적으로 -600 mV 내지 +600 mV 또는 -400 mV 내지 +400 mV이다. 사용된 전압은 바람직하게, -400 mV, -300 mV, -200 mV, -150 mV, -100 mV, -50 mV, -20 mV 및 0 mV로부터 선택된 하한치 및 +10 mV, +20 mV, +50 mV, +100 mV, +150 mV, +200 mV, +300 mV 및 +400 mV로부터 독립적으로 선택된 상한치를 갖는 범위 내에 있다. 사용된 전압은 보다 바람직하게, 100 mV 내지 240 mV의 범위 및 가장 바람직하게 120 mV 내지 220 mV의 범위 내에 있다. 증가된 인가된 전위를 이용함으로써 세공에 의해 상이한 뉴클레오티드들 간의 판별을 증가시킬 수 있다.
본 방법은 전형적으로, 임의의 전하 담체, 예컨대 금속 염, 예를 들어 알칼리 금속 염, 할라이드 염, 예를 들어 클로라이드 염, 예컨대 알칼리 금속 클로라이드 염의 존재하에 수행된다. 전하 담체는 이온성 액체 또는 유기 염, 예를 들어 테트라메틸 암모늄 클로라이드, 트리메틸페닐 암모늄 클로라이드, 페닐트리메틸 암모늄 클로라이드, 또는 1-에틸-3-메틸 이미다졸리움 클로라이드를 포함할 수 있다. 상기 논의된 예시적인 장치에서, 염은 챔버 내의 수성 용액에 존재한다. 염화칼륨 (KCl), 염화나트륨 (NaCl), 염화세슘 (CsCl) 또는 페로시안화칼륨과 페리시안화칼륨의 혼합물이 전형적으로 사용된다. KCl, NaCl 및 페로시안화칼륨과 페리시안화칼륨의 혼합물이 바람직하다. 전하 담체는 막에 걸쳐 비대칭적일 수 있다. 예를 들어, 전하 담체의 유형 및/또는 농도는 막의 각 측면에서 상이할 수 있다.
염 농도는 포화 상태일 수 있다. 염 농도는 3 M 이하일 수 있고, 전형적으로 0.1 내지 2.5 M, 0.3 내지 1.9 M, 0.5 내지 1.8 M, 0.7 내지 1.7 M, 0.9 내지 1.6 M 또는 1 M 내지 1.4 M이다. 염 농도는 바람직하게 150 mM 내지 1 M이다. 본 방법은 바람직하게, 적어도 0.3 M, 예컨대 적어도 0.4 M, 적어도 0.5 M, 적어도 0.6 M, 적어도 0.8 M, 적어도 1.0 M, 적어도 1.5 M, 적어도 2.0 M, 적어도 2.5 M 또는 적어도 3.0 M의 염 농도를 이용하여 수행된다. 높은 염 농도는 높은 시그널 대 소음 비를 제공하고, 정상적인 전류 변동의 배경에 대항하여 확인될 뉴클레오티드의 존재를 나타내는 전류를 허용한다.
본 방법은 전형적으로, 완충제의 존재하에 수행된다. 상기 논의된 예시적인 장치에서, 완충제는 챔버 내의 수성 용액에 존재한다. 임의의 완충제가 본 발명의 방법에 사용될 수 있다. 전형적으로, 완충제는 인산염 완충제이다. 다른 적합한 완충제는 HEPES 및 트리스-HCl 완충제이다. 상기 방법은 전형적으로, 4.0 내지 12.0, 4.5 내지 10.0, 5.0 내지 9.0, 5.5 내지 8.8, 6.0 내지 8.7 또는 7.0 내지 8.8 또는 7.5 내지 8.5의 pH에서 수행된다. 사용된 pH는 바람직하게 약 7.5이다.
본 방법은 0℃ 내지 100℃, 15℃ 내지 95℃, 16℃ 내지 90℃, 17℃ 내지 85℃, 18℃ 내지 80℃, 19℃ 내지 70℃, 또는 20℃ 내지 60℃에서 수행될 수 있다. 상기 방법은 전형적으로 실온에서 수행된다. 상기 방법은 임의로, 효소 기능을 지지해 주는 온도, 예컨대 약 37℃에서 수행된다.
폴리뉴클레오티드 결합성 단백질
본 방법은 바람직하게, 상기/각 폴리뉴클레오티드를 폴리뉴클레오티드 결합성 단백질과 접촉시켜, 이러한 단백질이 세공을 통한 상기/각 폴리뉴클레오티드의 적어도 하나의 가닥의 이동을 제어하도록 하는 것을 포함한다.
보다 바람직하게, 본 방법은 (a) 상기/각 폴리뉴클레오티드를 세공 및 폴리뉴클레오티드 결합성 단백질과 접촉시켜, 이러한 단백질이 세공을 통한 상기/각 폴리뉴클레오티드의 적어도 하나의 가닥의 이동을 제어하도록 하는 단계 및 (b) 상기/각 폴리뉴클레오티드가 세공에 대하여 이동함에 따라 하나 이상의 측정치를 취함으로써 (여기서, 이러한 측정치는 상기/각 폴리뉴클레오티드의 하나 이상의 특징을 나타낸다), 변형된 또는 주형 폴리뉴클레오티드의 특징을 규명하는 단계를 포함한다.
폴리뉴클레오티드 결합성 단백질은 폴리뉴클레오티드와 결합할 수 있고, 폴리뉴클레오티드가 세공을 통하여 이동하는 것을 제어할 수 있는 임의의 단백질일 수 있다. 특정 단백질이 폴리뉴클레오티드와 결합하는 지의 여부를 결정하는 것은 관련 기술분야에서 간단한 일이다. 이러한 단백질은 전형적으로, 폴리뉴클레오티드와 상호 작용하고 폴리뉴클레오티드의 적어도 하나의 특성을 변형시킨다. 상기 단백질은 폴리뉴클레오티드를 절단하여 개개의 뉴클레오티드 또는 더 짧은 쇄의 뉴클레오티드, 예컨대 디- 또는 트리뉴클레오티드를 형성시킴으로써, 이러한 폴리뉴클레오티드를 변형시킬 수 있다. 단백질은 폴리뉴클레오티드를 특이적 위치로 배향시키거나 또는 이동하게 함으로써, 즉 그의 이동을 제어함으로써 폴리뉴클레오티드를 변형시킬 수 있다.
폴리뉴클레오티드 결합성 단백질은 바람직하게, 폴리뉴클레오티드 핸들링 효소로부터 유래된다. 폴리뉴클레오티드 핸들링 효소는 폴리뉴클레오티드와 상호 작용할 수 있고 폴리뉴클레오티드의 적어도 하나의 특성을 변형시킬 수 있는 폴리펩티드이다. 이러한 효소는 폴리뉴클레오티드를 절단하여 개개의 뉴클레오티드 또는 더 짧은 쇄의 뉴클레오티드, 예컨대 디- 또는 트리뉴클레오티드를 형성시킴으로써, 이러한 폴리뉴클레오티드를 변형시킬 수 있다. 상기 효소는 폴리뉴클레오티드를 특이적 위치로 배향시키거나 또는 이동하게 함으로써 폴리뉴클레오티드를 변형시킬 수 있다. 폴리뉴클레오티드 핸들링 효소는 이것이 폴리뉴클레오티드와 결합할 수 있고 세공을 통한 그의 이동을 제어할 수 있는 한은 효소 활성을 나타내지 않아도 된다. 예를 들어, 상기 효소는 그의 효소 활성을 제거하도록 변형될 수 있거나 또는 효소로서 작용하지 못하게 하는 조건하에 사용될 수 있다. 이러한 조건은 다음에 보다 상세히 논의된다.
폴리뉴클레오티드 핸들링 효소는 바람직하게, 핵산분해 효소로부터 유래된다. 효소의 구축물에 사용된 폴리뉴클레오티드 핸들링 효소는 보다 바람직하게, 효소 분류 (EC) 군 3.1.11, 3.1.13, 3.1.14, 3.1.15, 3.1.16, 3.1.21, 3.1.22, 3.1.25, 3.1.26, 3.1.27, 3.1.30 및 3.1.31 중 임의의 것의 구성원으로부터 유래된다. 상기 효소는 국제 출원 번호 PCT/GB10/000133 (WO 2010/086603으로서 공개됨)에 개시된 것들 중 임의의 것일 수 있다.
바람직한 효소는 폴리머라제, 엑소뉴클레아제, 헬리카제 및 토포이소머라제, 예컨대 자이라제이다. 적합한 효소는 이. 콜라이로부터의 엑소뉴클레아제 I (서열식별번호: 11), 이. 콜라이로부터의 엑소뉴클레아제 III 효소 (서열식별번호: 13), 티. 써모필루스로부터의 RecJ (서열식별번호: 15) 및 박테리오파지 람다 엑소뉴클레아제 (서열식별번호: 17), TatD 엑소뉴클레아제 및 그의 변이체를 포함하지만, 이에 제한되지 않는다. 서열식별번호: 15에 제시된 서열 또는 그의 변이체를 포함하는 3개의 서브유닛은 상호 작용하여 삼량체 엑소뉴클레아제를 형성한다. 폴리머라제는 피로파지(PyroPhage?) 3173 DNA 폴리머라제 [이는 루시겐 코포레이션 (Lucigen? Corporation)으로부터 시판되고 있다], SD 폴리머라제 [바이오론(Bioron?)으로부터 시판되고 있다] 또는 그의 변이체일 수 있다. 상기 효소는 바람직하게, Phi29 DNA 폴리머라제 (서열식별번호: 9) 또는 그의 변이체이다. 토포이소머라제는 바람직하게, 모이어티 분류 (EC) 군 5.99.1.2 및 5.99.1.3 중 임의의 것의 구성원이다.
상기 효소는 가장 바람직하게, 헬리카제, 예컨대 Hel308 Mbu (서열식별번호: 18), Hel308 Csy (서열식별번호: 19), Hel308 Tga (서열식별번호: 20), Hel308 Mhu (서열식별번호: 21), TraI Eco (서열식별번호: 22), XPD Mbu (서열식별번호: 23) 또는 그의 변이체로부터 유래된다. 임의의 헬리카제가 본 발명에 사용될 수 있다. 헬리카제는 Hel308 헬리카제, RecD 헬리카제, 예컨대 TraI 헬리카제 또는 TrwC 헬리카제, XPD 헬리카제 또는 Dda 헬리카제일 수 있거나 또는 그로부터 유래될 수 있다. 헬리카제는 국제 출원 번호 PCT/GB2012/052579 (WO 2013/057495로서 공개됨); PCT/GB2012/053274 (WO 2013/098562로서 공개됨); PCT/GB2012/053273 (WO2013098561로서 공개됨); PCT/GB2013/051925 (WO 2014/013260으로서 공개됨); PCT/GB2013/051924 (WO 2014/013259로서 공개됨); PCT/GB2013/051928 (WO 2014/013262로서 공개됨) 및 PCT/GB2014/052736에 개시된 헬리카제, 변형된 헬리카제 또는 헬리카제 구축물 중 임의의 것일 수 있다.
헬리카제는 바람직하게, 서열식별번호: 25에 제시된 서열 (Trwc Cba) 또는 그의 변이체, 서열식별번호: 18에 제시된 서열 (Hel308 Mbu) 또는 그의 변이체 또는 서열식별번호: 24에 제시된 서열 (Dda) 또는 그의 변이체를 포함한다. 변이체는 막횡단 세공에 관하여 다음에 논의된 방식 중 임의의 것에서 천연 서열과 상이할 수 있다. 서열식별번호: 24의 바람직한 변이체는 (a) E94C 및 A360C 또는 (b) E94C, A360C, C109A 및 C136A를 포함한 다음, 임의로 (ΔM1)G1G2를 포함한다 (즉, M1을 결실시킨 다음, G1 및 G2를 부가한다).
가닥 서열 분석에서, 폴리뉴클레오티드는 인가된 전위와 함께 또는 그에 대항하여 세공을 통해 전위된다. 점진적으로 또는 순차적으로 이중 가닥 폴리뉴클레오티드에서 작용하는 엑소뉴클레아제는 세공의 시스 측에 사용되어 잔여 단일 가닥을 인가된 전위하에 공급할 수 있거나 또는 트랜스 측에 사용되어 역전 전위하에 공급할 수 있다. 마찬가지로, 이중 가닥 DNA를 풀어주는 헬리카제가 또한, 유사한 방식으로 사용될 수 있다. 폴리머라제를 사용할 수도 있다. 인가된 전위에 대항한 가닥 전위가 필요한 서열 분석 적용을 위한 가능성도 있지만, DNA는 역전 전위하에 또는 전위가 전혀 없는 상황하에 효소에 의해 먼저 "포착"되어야만 한다. 이어서, 결합 후에는 전위가 다시 전환되어, 가닥이 세공을 통과하여 시스에서 트랜스로 되며, 전류 흐름에 의해 확장된 입체 형태로 유지될 것이다. 단일 가닥 DNA 엑소뉴클레아제 또는 단일 가닥 DNA 의존성 폴리머라제는 최근에 전위된 단일 가닥을 세공을 통해 제어된 계단식 방식으로, 인가된 전위에 대항하여 트랜스에서 시스로 다시 끌어당기는 분자 모터로서 작용할 수 있다.
임의의 헬리카제를 상기 방법에 사용할 수 있다. 헬리카제는 세공에 대하여 두 가지 모드로 작동할 수 있다. 첫째, 인가된 전압으로부터 비롯되는 장을 이용하여 세공을 통해 폴리뉴클레오티드를 이동시키도록 헬리카제를 사용하여 상기 방법을 수행하는 것이 바람직하다. 이러한 모드에서는, 폴리뉴클레오티드의 5' 말단을 먼저, 세공 내에 포획시키고; 헬리카제가 폴리뉴클레오티드를 세공 내로 이동시켜, 폴리뉴클레오티드가 막의 트랜스 측으로 최종적으로 전위될 때까지 상기 장을 이용하여 폴리뉴클레오티드가 세공을 관통하도록 한다. 또 다른 한편으론, 상기 방법은 인가된 전압으로부터 비롯되는 장에 대항하여 헬리카제가 세공을 통해 폴리뉴클레오티드를 이동시키도록 수행하는 것이 바람직하다. 이러한 모드에서는, 폴리뉴클레오티드의 3' 말단을 먼저, 세공 내에 포획시키고; 헬리카제가 폴리뉴클레오티드를 세공을 통해 이동시켜, 최종적으로 막의 시스 측으로 다시 방출될 때까지 인가된 장에 대항하여 세공으로부터 인출되도록 한다.
헬리카제 (들) 및 분자 브레이크 (들)
바람직한 실시양태에서, 본 방법은
(a) 상기/각 폴리뉴클레오티드에, 이러한 상기/각 폴리뉴클레오티드에 부착된 하나 이상의 헬리카제 및 하나 이상의 분자 브레이크를 제공하는 단계;
(b) 상기/각 폴리뉴클레오티드를 막횡단 세공과 접촉시키고 이러한 세공에 걸쳐 전위를 인가하여, 하나 이상의 헬리카제와 하나 이상의 분자 브레이크를 합치게 하고 둘 다가 세공을 통한 상기/각 폴리뉴클레오티드의 적어도 하나의 가닥의 이동을 제어하도록 하는 단계;
(c) 상기/각 폴리뉴클레오티드가 세공에 대하여 이동함에 따라 하나 이상의 측정치를 취함으로써 (여기서, 이러한 측정치는 상기 폴리뉴클레오티드의 하나 이상의 특징을 나타낸다), 변형된 또는 주형 폴리뉴클레오티드의 특징을 규명하는 단계
를 포함한다.
이러한 유형의 방법은 국제 출원 PCT/GB2014/052737에 상세히 논의되어 있다.
스페이서
하나 이상의 헬리카제는 국제 출원 번호 PCT/GB2014/050175 (WO2014/135838로서 공개됨)에 논의된 바와 같이 하나 이상의 스페이서에서 지연될 수 있다. 상기 국제 출원에 개시된 하나 이상의 헬리카제 및 하나 이상의 스페이서의 임의의 입체 배치가 본 발명에 사용될 수 있다.
폴리뉴클레오티드의 일부가 세공 내로 유입되고 인가된 전위로부터 발생한 장을 따라 세공을 통해 이동하는 경우, 폴리뉴클레오티드가 세공을 통해 이동함에 따라, 하나 이상의 헬리카제가 세공에 의해 스페이서를 지나 이동된다. 이는 폴리뉴클레오티드 (하나 이상의 스페이서를 포함함)가 세공을 통해 이동되고 하나 이상의 헬리카제가 세공의 상단에 남아있기 때문이다.
하나 이상의 스페이서는 바람직하게는, 폴리뉴클레오티드의 일부이고, 예를 들어 폴리뉴클레오티드 서열을 방해한다. 하나 이상의 스페이서는 바람직하게, 폴리뉴클레오티드와 혼성화되는 하나 이상의 차단 분자, 예컨대 과속 방지턱의 일부가 아니다.
임의의 수의 스페이서, 예컨대 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10개 또는 그 초과의 스페이서가 폴리뉴클레오티드에 존재할 수 있다. 바람직하게 2개, 4개 또는 6개의 스페이서가 폴리뉴클레오티드에 존재한다. 하나 이상의 스페이서가 바람직하게 Y 어댑터 또는 리더 서열 내에 있다. 폴리뉴클레오티드의 상이한 영역 내에 하나 이상의 스페이서가 존재할 수 있는데, 예컨대 Y 어댑터 및/또는 헤어핀 루프 어댑터 내에 하나 이상의 스페이서가 존재할 수 있다.
하나 이상의 스페이서는 각각 하나 이상의 헬리카제가 활성 모드에서도 극복할 수 없는 에너지 장벽을 제공한다. 하나 이상의 스페이서는 헬리카제의 견인을 저하시킴으로써 (예를 들어, 폴리뉴클레오티드 내의 뉴클레오티드로부터 염기를 제거함으로써) 또는 하나 이상의 헬리카제의 이동을 물리적으로 차단시킴으로써 (예를 들어, 벌키 화학적 기를 이용함), 하나 이상의 헬리카제를 지연시킬 수 있다.
하나 이상의 스페이서는 하나 이상의 헬리카제를 지연시키는 임의의 분자 또는 분자의 조합물을 포함할 수 있다. 하나 이상의 스페이서는 하나 이상의 헬리카제가 폴리뉴클레오티드를 따라 이동하지 못하게 하는 임의의 분자 또는 분자의 조합물을 포함할 수 있다. 하나 이상의 헬리카제가 막횡단 세공 및 인가된 전위의 부재하에 하나 이상의 스페이서에서 지연되는 지의 여부를 결정하는 것은 간단한 일이다. 예를 들어, 헬리카제가 스페이서를 지나 이동할 수 있고 DNA의 상보적 가닥을 옮겨놓을 수 있는 능력은 PAGE에 의해 측정될 수 있다.
하나 이상의 스페이서는 전형적으로 선형 분자, 예컨대 중합체를 포함한다. 하나 이상의 스페이서는 전형적으로, 폴리뉴클레오티드와 상이한 구조를 갖는다. 예를 들어, 폴리뉴클레오티드가 DNA인 경우, 하나 이상의 스페이서는 전형적으로 DNA가 아니다. 특히, 폴리뉴클레오티드가 데옥시리보핵산 (DNA) 또는 리보핵산 (RNA)인 경우, 하나 이상의 스페이서는 바람직하게 펩티드 핵산 (PNA), 글리세롤 핵산 (GNA), 트레오스 핵산 (TNA), 고정 핵산 (LNA), 또는 뉴클레오티드 측쇄를 수반한 합성 중합체를 포함한다. 하나 이상의 스페이서는 폴리뉴클레오티드로부터 반대 방향으로 하나 이상의 뉴클레오티드를 포함할 수 있다. 예를 들어, 폴리뉴클레오티드가 5'에서 3' 방향으로 있는 경우에는, 하나 이상의 스페이서가 하나 이상의 뉴클레오티드를 3'에서 5' 방향으로 포함할 수 있다. 이러한 뉴클레오티드는 상기 논의된 것들 중 임의의 것일 수 있다.
하나 이상의 헬리카제는 각 선형 분자 스페이서에 의해 (즉, 스페이서 앞에서) 또는 이러한 스페이서 상에서 지연될 수 있다. 선형 분자 스페이서가 사용되는 경우, 폴리뉴클레오티드에는 바람직하게, 하나 이상의 헬리카제가 그를 지나 이동되어야 하는 각 스페이서의 말단에 인접한 폴리뉴클레오티드의 이중 가닥 영역이 제공된다. 선형 분자 스페이서가 사용되는 경우, 폴리뉴클레오티드에는 바람직하게, 하나 이상의 헬리카제가 그를 지나 이동되어야 하는 말단과 반대의 각 스페이서의 말단에 차단성 분자가 제공된다. 이는 하나 이상의 헬리카제가 각 스페이서 상에 여전히 지연된 채로 있다는 것을 보장하는 데 도움을 줄 수 있다. 이는 또한, 하나 이상의 헬리카제가 용액 중에 확산되는 경우에, 이러한 하나 이상의 헬리카제가 폴리뉴클레오티드 상에 유지되는 것을 도와줄 수 있다. 차단성 분자는 하나 이상의 헬리카제를 물리적으로 지연시켜 주는, 다음에 논의된 화학적 기 중 임의의 것일 수 있다. 차단성 분자는 폴리뉴클레오티드의 이중 가닥 영역일 수 있다. 차단성 분자는 BNA일 수 있다.
본 방법은 2개 이상의 헬리카제가 스페이서를 지나 이동하는 것에 관한 것일 수 있다. 이러한 경우, 스페이서의 길이는 전형적으로 후행 헬리카제가, 세공 및 인가된 전위의 부재하에 선도 헬리카제가 스페이서를 지나치지 못하도록 증가시킨다. 상기 방법이 2개 이상의 헬리카제가 하나 이상의 스페이서를 지나 이동하는 것에 관한 것이라면, 상기 논의된 스페이서 길이는 적어도 1.5배, 예컨대 2배, 2.5배 또는 3배 증가될 수 있다. 예를 들어, 상기 방법이 2개 이상의 헬리카제가 하나 이상의 스페이서를 지나 이동하는 것에 관한 것이라면, 스페이서 길이는 1.5배, 2배, 2.5배 또는 3배 증가될 수 있다.
본 발명에 사용된 세공은 막에 존재할 수 있다. 본 발명의 방법에서, 폴리뉴클레오티드는 전형적으로, 막 내의 세공과 접촉시킨다. 임의의 막이 본 발명에 따라서 사용될 수 있다. 적합한 막은 관련 기술분야에 널리 공지되어 있다. 막은 바람직하게 친양쪽성 층이다. 친양쪽성 층은 친수성 특성과 친지성 특성 둘 다를 갖는 친양쪽성 분자, 예컨대 인지질로부터 형성된 층이다. 친양쪽성 분자는 합성 또는 자연 발생적일 수 있다. 비-자연 발생적 친양쪽성체, 및 단층을 형성하는 친양쪽성체는 관련 기술분야에 공지되어 있고, 예를 들어 블록 공중합체를 포함한다 (Gonzalez-Perez et al., Langmuir, 2009, 25, 10447-10450). 블록 공중합체는 2개 이상의 단량체 서브유닛을 함께 중합시켜 단일 중합체 쇄를 창출시키는 중합체성 물질이다. 블록 공중합체는 전형적으로, 각 단량체 서브유닛에 의해 기인되는 특성을 갖는다. 그러나, 블록 공중합체는 개개의 서브유닛으로부터 형성된 중합체가 보유하고 있지 않은 독특한 특성을 가질 수 있다. 블록 공중합체는 단량체 서브유닛 중 하나가 소수성 (즉, 친지성)인 반면, 다른 서브유닛(들)이 수성 매질 중에서 친수성이 되도록 조작될 수 있다. 이러한 경우, 블록 공중합체는 친양쪽성 특성을 보유할 수 있고, 생물학적 막을 모방하는 구조를 형성할 수 있다. 블록 공중합체는 디블록 (2개의 단량체 서브유닛으로 이루어짐)일 수 있지만, 2개 초과의 단량체 서브유닛으로부터 구축되어, 친양쪽성체로서 행동하는 보다 복잡한 배열을 형성할 수 있다. 상기 공중합체는 트리블록, 테트라블록 또는 펜타블록 공중합체일 수 있다. 막은 바람직하게 트리블록 공중합체 막이다.
막은 가장 바람직하게, 국제 출원 번호 PCT/GB2013/052766 또는 PCT/GB2013/052767에 개시된 막 중 하나이다.
친양쪽성 분자는 폴리뉴클레오티드의 커플링을 촉진시키기 위해 화학적으로 변형될 수 있거나 또는 기능화될 수 있다.
커플링
상기/각 변형된 폴리뉴클레오티드는 바람직하게, 세공을 포함하는 막과 커플링된다. 본 방법은 상기/각 폴리뉴클레오티드를, 세공을 포함하는 막과 커플링시키는 것을 포함할 수 있다. 폴리뉴클레오티드는 바람직하게, 하나 이상의 앵커를 이용하여 막과 커플링시킨다. 폴리뉴클레오티드는 임의의 공지된 방법을 이용하여 막과 커플링시킬 수 있다.
각 앵커는 폴리뉴클레오티드과 커플링 (또는 결합)되는 기 및 막과 커플링 (또는 결합)되는 기를 포함한다. 각 앵커는 폴리뉴클레오티드 및/또는 막과 공유적으로 커플링 (또는 결합)될 수 있다. 폴리뉴클레오티드는 바람직하게, Y 어댑터 또는 리더 서열 및/또는 헤어핀 루프를 이용하여 막과 커플링시킨다.
폴리뉴클레오티드는 임의의 수의 앵커, 예컨대 2, 3, 4개 또는 그 초과의 앵커를 이용하여 막과 커플링시킬 수 있다. 예를 들어, 폴리뉴클레오티드는 2개의 앵커를 이용하여 막과 커플링시킬 수 있는데, 각 앵커는 폴리뉴클레오티드과 막 둘 다와 별도로 커플링 (또는 결합)된다.
하나 이상의 앵커는 하나 이상의 헬리카제 및/또는 하나 이상의 분자 브레이크를 포함할 수 있다.
막이 친양쪽성 층, 예컨대 공중합체 막 또는 지질 이중 층인 경우, 하나 이상의 앵커는 바람직하게, 막에 존재하는 폴리펩티드 앵커 및/또는 막에 존재하는 소수성 앵커를 포함한다. 소수성 앵커는 바람직하게 지질, 지방산, 스테롤, 탄소 나노튜브, 폴리펩티드, 단백질 또는 아미노산, 예를 들어 콜레스테롤, 팔미테이트 또는 토코페롤이다. 바람직한 실시양태에서, 하나 이상의 앵커는 세공이 아니다.
막의 성분, 예컨대 친양쪽성 분자, 공중합체 또는 지질은 하나 이상의 앵커를 형성하기 위해 화학적으로 변형될 수 있거나 또는 기능화될 수 있다. 막의 성분을 기능화하는 적합한 방식 및 적합한 화학적 변형의 예가 다음에 보다 상세히 논의된다. 막 성분의 임의의 분율, 예를 들어 적어도 0.01%, 적어도 0.1%, 적어도 1%, 적어도 10%, 적어도 25%, 적어도 50% 또는 100%를 기능화할 수 있다.
폴리뉴클레오티드는 막과 직접적으로 커플링될 수 있다. 폴리뉴클레오티드를 막과 커플링시키기 위해 사용된 하나 이상의 앵커는 바람직하게 링커를 포함한다. 하나 이상의 앵커는 하나 이상, 예컨대 2, 3, 4개 또는 그 초과의 링커를 포함할 수 있다. 하나의 링커를 사용하여 2개 이상, 예컨대 2, 3, 4개 또는 그 초과의 폴리뉴클레오티드를 막과 커플링시킬 수 있다.
바람직한 링커는 중합체, 예컨대 폴리뉴클레오티드, 폴리에틸렌 글리콜 (PEG), 폴리사카라이드 및 폴리펩티드를 포함하지만, 이에 제한되지 않는다. 이들 링커는 선형, 분지 또는 환상일 수 있다. 예를 들어, 링커는 환상 폴리뉴클레오티드일 수 있다. 폴리뉴클레오티드는 환상 폴리뉴클레오티드 링커 상의 상보적 서열과 혼성화될 수 있다.
링커의 사용은 다음에 논의되는 서열 분석 실시양태에 바람직하다. 폴리뉴클레오티드가 세공과 상호 작용할 때 언커플링(uncouple)되지 않는다는 의미에서 막과 영구적으로 직접 커플링되면 (즉, 단계 (b) 또는 (e)에서 언커플링되지 않음), 서열 분석 실행이 막과 세공 간의 거리로 인해 폴리뉴클레오티드의 말단까지 지속될 수 없기 때문에 일부 서열 데이터가 상실될 것이다. 링커를 사용되면, 폴리뉴클레오티드에 대한 처리를 완료할 수 있다.
커플링은 영구적이거나 또는 안정적일 수 있다. 다시 말해서, 폴리뉴클레오티드가 세공과 상호 작용할 때 막과 커플링된 채로 있도록 커플링을 수행할 수 있다.
커플링은 일시적일 수 있다. 다시 말해서, 폴리뉴클레오티드가 세공과 상호 작용할 때 막으로부터 분리될 수 있도록 커플링을 수행할 수 있다.
커플링의 적합한 방법은 국제 출원 번호 PCT/GB12/051191 (WO 2012/164270으로서 공개됨) 및 UK 출원 번호 1406155.0에 개시된다.
언커플링
본 발명의 방법은 다수의 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드의 특징을 규명하고 적어도 제1 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 언커플링하는 것을 포함할 수 있다.
바람직한 실시양태에서, 본 발명은 2개 이상의 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드의 특징을 규명하는 것을 포함한다. 이러한 방법은
(a) 제1 샘플 중의 제1 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 제공하는 단계;
(b) 제2 샘플 중의 제2 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 제공하는 단계;
(c) 하나 이상의 앵커를 이용하여, 제1 샘플 중의 제1 폴리뉴클레오티드를 막과 커플링시키는 단계;
(d) 제1 폴리뉴클레오티드를 막횡단 세공과 접촉시켜, 제1 폴리뉴클레오티드의 적어도 하나의 가닥이 세공을 통하여 이동하도록 하는 단계;
(e) 제1 폴리뉴클레오티드가 세공에 대하여 이동함에 따라 하나 이상의 측정치를 취함으로써 (여기서, 이러한 측정치는 제1 폴리뉴클레오티드의 하나 이상의 특징을 나타낸다), 제1 폴리뉴클레오티드의 특징을 규명하는 단계;
(f) 제1 폴리뉴클레오티드를 막으로부터 언커플링시키는 단계;
(g) 하나 이상의 앵커를 이용하여, 제2 샘플 중의 제2 폴리뉴클레오티드를 막과 커플링시키는 단계;
(h) 제2 폴리뉴클레오티드를 세공과 접촉시켜, 제2 폴리뉴클레오티드의 적어도 하나의 가닥이 세공을 통하여 이동하도록 하는 단계; 및
(i) 제2 폴리뉴클레오티드가 세공에 대하여 이동함에 따라 하나 이상의 측정치를 취함으로써 (여기서, 이러한 측정치는 제2 폴리뉴클레오티드의 하나 이상의 특징을 나타낸다), 제2 폴리뉴클레오티드의 특징을 규명하는 단계
를 포함한다.
이러한 유형의 방법은 UK 출원 번호1406155.0에 상세히 논의되어 있다.
다른 특징 규명 방법
또 다른 실시양태에서, 상기/각 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드는 폴리머라제가 뉴클레오티드를 상기 폴리뉴클레오티드 내로 혼입시킴에 따라 방출되는 표지된 종을 검출함으로써 그 특징이 규명된다. 폴리머라제는 상기 폴리뉴클레오티드를 주형으로서 사용한다. 각 표지된 종은 각 뉴클레오티드에 대해 특이적이다. 상기/각 폴리뉴클레오티드는 막횡단 세공, 폴리머라제 및 표지된 뉴클레오티드과 접촉시켜, 뉴클레오티드가 폴리뉴클레오티드(들)에 부가될 때 폴리머라제에 의해 포스페이트 표지된 종이 순차적으로 방출되도록 하는데, 여기서 포스페이트 종은 각 뉴클레오티드에 대해 특이적인 표지를 함유한다. 폴리머라제는 상기 논의된 것들 중 임의의 것일 수 있다. 포스페이트 표지된 종은 세공을 이용하여 검출되는데, 이로써 폴리뉴클레오티드의 특징을 규명한다. 이러한 유형의 방법은 유럽 출원 번호 13187149.3 (EP 2682460으로서 공개됨)에 개시된다. 상기 논의된 실시양태 중 임의의 것이 본 방법에 동등하게 적용된다.
키트
본 발명은 또한, 주형 폴리뉴클레오티드를 변형시키기 위한 키트를 제공한다. 이러한 키트는 (a) 본 발명의 MuA 기질의 집단 및 (b) MuA 트랜스포사제 및 (c) 폴리머라제를 포함한다. 본 발명의 방법 및 생성물과 관련하여 상기 논의된 실시양태 중 임의의 것이 키트에 동등하게 적용된다.
키트는 막의 성분, 예컨대 친양쪽성 층 또는 지질 이중 층의 성분을 추가로 포함할 수 있다. 키트는 막횡단 세공 또는 막횡단 세공의 성분을 추가로 포함할 수 있다. 키트는 폴리뉴클레오티드 결합성 단백질을 추가로 포함할 수 있다. 적합한 막, 세공 및 폴리뉴클레오티드 결합성 단백질은 상기 논의되어 있다.
본 발명의 키트는 상기 언급된 실시양태 중 임의의 것을 수행할 수 있게 해주는 하나 이상의 다른 시약 또는 기구를 부가적으로 포함할 수 있다. 이러한 시약 또는 기구는 다음 중 하나 이상을 포함한다: 적합한 완충제(들) (수성 용액), 대상체로부터 샘플을 수득하기 위한 수단 (예컨대, 용기, 또는 바늘을 포함하는 기구), 폴리뉴클레오티드를 증폭 및/또는 발현시키기 위한 수단, 상기 정의된 바와 같은 막, 또는 전압 또는 패치 클램프 장치. 시약은 키트 내에 건조 상태로 존재할 수 있으므로, 유체 샘플이 시약을 재현탁시키도록 한다. 키트는 또한 임의로, 이러한 키트가 본 발명의 방법에 사용될 수 있도록 해주는 설명서, 또는 본 발명의 방법이 사용될 수 있는 환자에 관한 세부 사항을 포함할 수 있다. 키트는 임의로, 뉴클레오티드를 포함할 수 있다.
다음 실시예가 본 발명을 예시한다.
실시예 1
본 실시예에는 주형 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 변형시키기 위한 방법, 특히 나노 세공 서열 분석을 이용하여 그 특징을 규명하기 위한 방법이 기재되어 있다. 본 실시예는 MuA 트랜스포사제가, 헤어핀 루프를 함유한 MuA 기질을 삽입시킬 수 있었다는 것을 보여준다. 이어서, 이러한 구축물 내의 갭은 폴리머라제를 이용하여 채운 다음, 이중 가닥 DNA를 용융시키기 위해 이중 가닥 구축물을 가열하였다. 이로써, 그로부터 폴리머라제가 보체를 생성시키는 헤어핀을 갖는 단일 가닥 DNA가 생성되었다. 이어서, 이러한 구축물을, 미리 결합된 효소를 이용하여 어댑터와 라이게이션하고, 최종적으로, 테더와 혼성화하였다. 이때, 이러한 DNA 구축물은 나노 세공을 통하여 헬리카제 제어된 DNA 이동을 나타내었다.
물질 및 방법
1.1 - MuA 트랜스포사제를 이용한 DNA 주형의 단편화
본 실시예에 사용되었던 MuA 어댑터 X는 5' 21 bp 헤어핀을 갖고 있었다 (도 2에서 c로 표지된 어댑터; 서열 GATCU의 5' 말단에서 3' 말단으로 부착된 상부 가닥 = 서열식별번호: 29, 하부 가닥 = 서열식별번호: 30). 상기 어댑터의 상부 가닥 및 하부 가닥을, 10 mM 트리스 pH 7.5, 50 mM NaCl 중에서 2℃ min-1 하에 95℃로부터 10 uM에서 어닐링시켰다.
MuA 단편화 반응물 (10 μL)을 하기 표 1에 기재된 바와 같이 설정하고, 이를 30℃ 하에 1시간 동안 인큐베이션하였다. 이어서, MuA 효소를 75℃ 하에 15분 동안 가열함으로써 열 불활성화시켰다. 최종적으로, 이로써 생성된 DNA를 1.5x SPRI 정제하고, 뉴클레아제 무함유 물에서 용출시켰다 (42 μL, 샘플 1).
<표 1>
Figure pct00001
1.2 - DNA 주형을 DNA 폴리머라제와 함께 인큐베이션함
MuA 단편화 과정 후, 상기 정제된 DNA를 DNA 폴리머라제와 함께 인큐베이션하여 상부 가닥 헤어핀을 카피하였다.
DNA 폴리머라제 반응물 (50 uL)을 하기 표 2에 기재된 바와 같이 설정하고, 이를 68℃ 하에 10분 동안 인큐베이션하였다. 최종적으로, 이로써 생성된 DNA를 1.5x SPRI 정제하고, 뉴클레아제 무함유 물에서 용출시켰다 (42 μL, 샘플 2).
<표 2>
Figure pct00002
1.3 - 열 변성 및 폴리머라제 채우기(fill-in)
헤어핀 카피 단계 후, 샘플 2를 단일 변성 단계 및 폴리머라제 채우기로 처리하였다. 폴리머라제 채우기 반응을 위하여, 폴리머라제에 dCTP/dGTP/dATP를 제공하였지만, 표준 dTTP는 상이한 뉴클레오티드 종 5-프로피닐-dU로 대체시켰다. 반응물 (50 μL)을 하기 표 3에 기재된 바와 같이 설정하고, 이를 95℃ 하에 2분 동안, 55℃ 하에 30초 동안 및 68℃ 하에 30분 동안 인큐베이션하였다. 최종적으로, 이로써 생성된 DNA를 1.5x SPRI 정제하고, 뉴클레아제 무함유 물에서 용출시켰다 (45 μL, 샘플 3).
<표 3>
Figure pct00003
1.4 - dA 테일링 반응
그 다음, 샘플 3을 하기 표 4에 기재된 바와 같이 dA-테일링시키고, 이를 37℃ 하에 30분 동안 인큐베이션하였다. 이로써 생성된 DNA를 1.5x SPRI 정제하고, 뉴클레아제 무함유 물에서 용출시켰다 (20 μL, 샘플 4).
<표 4>
Figure pct00004
1.5 - 미리 부하된 효소를 이용하여 어댑터를 라이게이션함
이어서, 샘플 4를, 하기 표 5에 기재된 바와 같이 미리 부하된 효소 [T4 Dda - E94C/A360C/C109A/C136A (돌연변이 E94C/A360C/C114A/C171A/C421D를 수반한 다음 (ΔM1)G1G2를 수반한 서열식별번호: 24)]를 이용하여 Y-어댑터 1 (상부 가닥 = 3' 말단에서 서열식별번호: 33에 부착되었던 4개의 iSp18 스페이서에 3' 말단에서 부착되었던 서열식별번호: 32에 3' 말단에서 부착된 20개의 iSpC3 스페이서; 하부 가닥 = 5' 포스페이트가 부착된 서열식별번호: 34)에 라이게이션하고, 이를 실온 하에 20분 동안 인큐베이션하였다. 이로써 생성된 DNA를 0.4x SPRI 정제하고, 완충제 (200 μL의 750 mM NaCl, 10% PEG 8000, 50 mM 트리스.HCl pH 8)로 세척하며, 완충제 (20 μL의 40 mM CAPS pH 10, 40 mM KCl 샘플 5)에서 용출시켰다.
<표 5>
Figure pct00005
1.6 - 테더의 어닐링
이어서, 샘플 5에 존재하는 DNA 분석물을 테더와 어닐링시켰다. 샘플 5를 실온 하에 10분 동안 DNA 테더 (서열 AACAACCT는 그의 5' 말단에서 3개의 iSp18 스페이서, 2개의 티민 및 5' 콜레스테롤 TEG에 부착되었고; 서열 AACAACCT는 그의 3' 말단에서, 서열식별번호: 35에 3' 말단에서 부착되는 3개의 iSp18 스페이서에 부착되었다) (500 nM, 5 μL)와 함께 인큐베이션하였다. 이로써 생성된 샘플이 샘플 6으로서 공지되었다.
1.7 - 전기 생리학 시험
실험을 설정하기 전에, DNA 샘플 6 (샘플 6의 총 용적의 1/4)을 완충제 [25 mM 인산칼륨 완충제 (pH 7.5), 500 mM KCl], MgCl2 (1 mM) 및 ATP (2 mM)에 부가하여, 총 150 μL의 용적을 제공하였다.
완충제 [25 mM 인산칼륨 완충제, 150 mM 페로시안화칼륨 (II), 및 150 mM 페리시안화칼륨 (III), pH 8.0] 중의 블록 공중합체 내에 삽입된 단일 MspA 나노 세공으로부터 전기적 측정치를 획득하였다. 상기 블록 공중합체 내에 삽입된 단일 세공을 달성한 후, 완충제 [2 mL, 25 mM 인산칼륨 완충제, 150 mM 페로시안화칼륨 (II), 150 mM 페리시안화칼륨 (III), pH 8.0]를 시스템 내로 유동시켜 임의의 과도한 MspA 나노 세공을 제거하였다. 이어서, 효소 (T4 Dda - E94C/C109A/C136A/A360C, 10 nM 최종 농도), DNA 샘플 6 및 연료 (MgCl2 2 mM 최종 농도, ATP 2 mM 최종 농도) 예비 혼합물 (총 150 μL)을 단일 나노 세공 실험용 시스템 내로 유동시켰다. 실험을 120 mV 하에 실행하였고, 헬리카제-제어된 DNA 이동을 6시간 동안 모니터링하였다.
결과
샘플 제조 과정이 끝날 무렵에 생성된 DNA (샘플 6)의 헬리카제 제어된 DNA 이동이 관찰되었다. 도 3은 헬리카제 제어된 DNA 이동의 한 예를 도시한 것이다.
애질런트 12,000 DNA 칩 추적을 이용하여, 샘플 제조 과정을 또한 분석하였다. 단계 1.2 (여기서, 5' 헤어핀이 전사되었다) 이전에, 68℃ 하에 미리 인큐베이션하지 않는다면, 가닥 해리 (열 변성 단계 1.3) 후에는 어떠한 합성 보체도 만들어지지 않았는데 (도 2의 단계 4 후에 파선/점선으로서 도시됨), 이는 그로부터 폴리머라제가 개시되는 필수 3' 헤어핀이 가닥에 결여되었기 때문이다. 이는 도 4에 도시된 애질런트 12,000 DNA 칩 추적에서 관찰되었는데, 여기서 1로 표지된 라인은 처리되지 않은 MuA 단편화 DNA 입력 재료이고, 2로 표지된 라인은 68℃ 인큐베이션 단계 (상기 1.2에서 수행됨)를 진행하였고, 연속해서 단계 1.3 모두를 진행하였던 분석물이며, 3으로 표지된 라인은 단계 1.2에서 68℃ 인큐베이션을 진행하지 않았지만, 단계 1.3 모두를 진행하였다. 따라서, 라인 3의 경우에는 dsDNA가 만들어지지 않았으므로, 편평한 라인 (X로 표지된 영역)이 애질런트 추적에서 관찰되었는데, 이는 95℃ 하에서의 가닥 해리 이전에 카피된 헤어핀이 없었기 때문이다. 그러나, 라인 2의 경우에는 헤어핀이 전사되었으므로, 가닥 해리시 폴리머라제가 새로운 3' 헤어핀으로부터 채우기를 개시하였다. 이는 라인 2가 상기 카피된 헤어핀으로부터 만들어진 dsDNA 생성물에 상응하는 영역 X에서 피크를 나타냈다는 것을 의미한다.
상기 과정을 상기 언급된 바와 같이 반복하였지만, 단계 1.3에서는 DNA 샘플 7을 생성시킨 5-프로피닐-dU 보다는 오히려 표준 DNA dNTP's - dCTP/dATP/dGTP/dTTP를 폴리머라제에 제공하였다. 도 6은 DNA 샘플 7 (이는 단계 1.3에서 표준 DNA dNTP's를 이용하여 생성되었다)에 대한 헬리카제-제어된 DNA 이동의 예를 도시한 것이다. 샘플 제조 과정은 성공적이었고, 헬리카제 제어된 DNA 이동이 이러한 샘플에 대하여 관찰되었다.
실시예 2
본 실시예에는 주형 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 변형시키기 위한 방법, 특히 나노 세공 서열 분석을 이용하여 그 특징을 규명하기 위한 방법이 기재되어 있다. 도 7은 하기 단계 2.1 및 2.2에 기재된 샘플 제조 단계를 나타내는 만화를 도시한 것이다. 본 실시예는 MuA 트랜스포사제가, MuA 어댑터의 헤어핀 루프 내에 dG 및 dC의 유사체를 함유한 헤어핀 루프를 함유한 MuA 기질을 삽입할 수 있었다는 것을 보여준다 (dG는 데옥시이노신으로 대체시켰고, dC는 데옥시제불라린으로 대체시켰다). 이어서, 오버행 가닥을, 헤어핀 루프를 포함하는 가닥을 보완시킨 새로운 가닥으로 대체시킨 폴리머라제를 이용하여, 구축물 내의 갭을 채웠다. 헤어핀 루프를 포함하는 가닥을 보완시킨 새로운 가닥은 또한, 헤어핀 루프를 형성할 수 있었다. 이러한 새로운 가닥의 헤어핀 루프는 A/T/Z/I (도 7에서 1X로 표지됨)로 제조된 헤어핀 루프와 상보적 가닥 간에 형성된 이중 가닥 영역보다 더 높은 Tm을 갖고 있었다. 따라서, 새로운 가닥 내에 헤어핀이 형성되었고 (도 7에서 f2h로 표지됨), A/T/Z/I로 제조된 헤어핀 루프가 또한 형성되었다 (도 7에서 f1h로 표지됨). 이때, 폴리머라제는 헤어핀 루프를 프라이머로서 사용하여 상보적 가닥을 만들었다. 따라서, 도 7의 단계 2 후에 생성된 dsDNA 구축물을 분리시키기 위한 부가의 가열 단계가 필요하지 않았다.
2.1 - MuA 트랜스포사제를 사용하는 DNA 주형의 단편화
본 실시예에서 사용된 MuA 어댑터는 5' 7 bp 헤어핀을 갖고 있는데, dG가 d이노신으로 대체되었고 dC가 d제불라린으로 대체되었다. 어댑터 P의 상부 가닥 [변형된 폴리뉴클레오티드 서열 IZITAZ (여기서, I는 데옥시이노신이고 Z는 데옥시제불라린이다)는 서열식별번호: 39의 5' 말단에 부착되는 변형된 폴리뉴클레오티드 서열 ITAZIZ (여기서, I는 데옥시이노신이고 Z는 데옥시제불라린이다)에 3' 말단에서 부착되는 비-변형된 폴리뉴클레오티드 서열 TTTTTA의 5' 말단에 부착된다] 및 하부 가닥 (서열식별번호: 38)을 10 mM 트리스 pH 7.5, 50 mM NaCl 중에서 2℃ min-1 하에 95℃로부터 10 uM에서 어닐링시켰다.
MuA 단편화 반응물 (10 μL)을, 어댑터 X 대신 어댑터 P를 이용하여 상기 표 1에 기재된 바와 같이 설정하고, 이를 30℃ 하에 1시간 동안 인큐베이션하였다. 이어서, MuA 효소를 75℃ 하에 15분 동안 가열함으로써 열 불활성화시켰다. 최종적으로, 이로써 생성된 DNA를 1.5x SPRI 정제하고, 뉴클레아제 무함유 물에서 용출시켰다 (42 μL).
2.2 - DNA 주형을 DNA 폴리머라제와 함께 인큐베이션함
MuA 단편화 과정 후, 상기 정제된 DNA를 DNA 폴리머라제와 함께 인큐베이션하여 상부 가닥 헤어핀을 카피하였다 (G/C를 I/Z로 대체시켰다).
이러한 단계 동안, 헤어핀 루프를 포함하는 가닥을 보완시킨 새로운 가닥이 헤어핀 루프를 형성하였다. 이는 새로운 가닥에 의해 형성된 헤어핀 루프가, dZ 및 dI의 유사체를 함유한 헤어핀 루프와 상보적 가닥 간에 형성된 이중 가닥 영역보다 더 높은 Tm을 갖고 있었다는 사실에 기인하였다. 따라서, 이중 가닥 DNA를 ssDNA로 분리시키기 위해서는 가열할 필요가 없었는데, 이는 더 높은 Tm을 갖는 헤어핀 루프가 우선적으로 형성되었고, 이때 폴리머라제는 이러한 헤어핀 루프를 프라이머로서 사용하여 상보적 가닥을 만들었기 때문이다.
DNA 폴리머라제 반응물 (50 uL)을 하기 표에 기재된 바와 같이 설정하고, 이를 37℃ 하에 30분 동안 인큐베이션하였다. 최종적으로, 이로써 생성된 DNA를 1.5x SPRI 정제하고, 뉴클레아제 무함유 물에서 용출시켰다 (42 μL).
<표 6>
Figure pct00006
이러한 가닥은 dA 테일링하고, 미리 부하된 효소를 이용하여 어댑터를 라이게이션하며, 테더를 혼성화함으로써 (실시예 1.4 내지 1.6에 기재된 바와 같음) 추가로 변형시켜, 나노 세공 시스템 (실시예 1.7에 기재된 바와 같음)을 이용하여 그 특징을 규명할 수 있었던 가닥을 생성할 수 있었다.
SEQUENCE LISTING <110> Oxford Nanopore Technologies Limited <120> Method <130> N404112WO <140> GB1418159.8 <141> 2014-10-14 <160> 37 <170> PatentIn version 3.5 <210> 1 <211> 558 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Mycobacterium smegmatis porin A mutant (D90N/D91N/D93N/D118R/D134R/E193K) <400> 1 atgggtctgg ataatgaact gagcctggtg gacggtcaag atcgtaccct gacggtgcaa 60 caatgggata cctttctgaa tggcgttttt ccgctggatc gtaatcgcct gacccgtgaa 120 tggtttcatt ccggtcgcgc aaaatatatc gtcgcaggcc cgggtgctga cgaattcgaa 180 ggcacgctgg aactgggtta tcagattggc tttccgtggt cactgggcgt tggtatcaac 240 ttctcgtaca ccacgccgaa tattctgatc aacaatggta acattaccgc accgccgttt 300 ggcctgaaca gcgtgattac gccgaacctg tttccgggtg ttagcatctc tgcccgtctg 360 ggcaatggtc cgggcattca agaagtggca acctttagtg tgcgcgtttc cggcgctaaa 420 ggcggtgtcg cggtgtctaa cgcccacggt accgttacgg gcgcggccgg cggtgtcctg 480 ctgcgtccgt tcgcgcgcct gattgcctct accggcgaca gcgttacgac ctatggcgaa 540 ccgtggaata tgaactaa 558 <210> 2 <211> 184 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Mycobacterium smegmatis porin A mutant (D90N/D91N/D93N/D118R/D134R/E139K) <400> 2 Gly Leu Asp Asn Glu Leu Ser Leu Val Asp Gly Gln Asp Arg Thr Leu 1 5 10 15 Thr Val Gln Gln Trp Asp Thr Phe Leu Asn Gly Val Phe Pro Leu Asp 20 25 30 Arg Asn Arg Leu Thr Arg Glu Trp Phe His Ser Gly Arg Ala Lys Tyr 35 40 45 Ile Val Ala Gly Pro Gly Ala Asp Glu Phe Glu Gly Thr Leu Glu Leu 50 55 60 Gly Tyr Gln Ile Gly Phe Pro Trp Ser Leu Gly Val Gly Ile Asn Phe 65 70 75 80 Ser Tyr Thr Thr Pro Asn Ile Leu Ile Asn Asn Gly Asn Ile Thr Ala 85 90 95 Pro Pro Phe Gly Leu Asn Ser Val Ile Thr Pro Asn Leu Phe Pro Gly 100 105 110 Val Ser Ile Ser Ala Arg Leu Gly Asn Gly Pro Gly Ile Gln Glu Val 115 120 125 Ala Thr Phe Ser Val Arg Val Ser Gly Ala Lys Gly Gly Val Ala Val 130 135 140 Ser Asn Ala His Gly Thr Val Thr Gly Ala Ala Gly Gly Val Leu Leu 145 150 155 160 Arg Pro Phe Ala Arg Leu Ile Ala Ser Thr Gly Asp Ser Val Thr Thr 165 170 175 Tyr Gly Glu Pro Trp Asn Met Asn 180 <210> 3 <211> 885 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> alpha-hemolysin mutant (E111N/K147N) <400> 3 atggcagatt ctgatattaa tattaaaacc ggtactacag atattggaag caatactaca 60 gtaaaaacag gtgatttagt cacttatgat aaagaaaatg gcatgcacaa aaaagtattt 120 tatagtttta tcgatgataa aaatcacaat aaaaaactgc tagttattag aacaaaaggt 180 accattgctg gtcaatatag agtttatagc gaagaaggtg ctaacaaaag tggtttagcc 240 tggccttcag cctttaaggt acagttgcaa ctacctgata atgaagtagc tcaaatatct 300 gattactatc caagaaattc gattgataca aaaaactata tgagtacttt aacttatgga 360 ttcaacggta atgttactgg tgatgataca ggaaaaattg gcggccttat tggtgcaaat 420 gtttcgattg gtcatacact gaactatgtt caacctgatt tcaaaacaat tttagagagc 480 ccaactgata aaaaagtagg ctggaaagtg atatttaaca atatggtgaa tcaaaattgg 540 ggaccatacg atcgagattc ttggaacccg gtatatggca atcaactttt catgaaaact 600 agaaatggtt ctatgaaagc agcagataac ttccttgatc ctaacaaagc aagttctcta 660 ttatcttcag ggttttcacc agacttcgct acagttatta ctatggatag aaaagcatcc 720 aaacaacaaa caaatataga tgtaatatac gaacgagttc gtgatgatta ccaattgcat 780 tggacttcaa caaattggaa aggtaccaat actaaagata aatggacaga tcgttcttca 840 gaaagatata aaatcgattg ggaaaaagaa gaaatgacaa attaa 885 <210> 4 <211> 293 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> alpha-hemolysin mutant (E111N/K147N) <400> 4 Ala Asp Ser Asp Ile Asn Ile Lys Thr Gly Thr Thr Asp Ile Gly Ser 1 5 10 15 Asn Thr Thr Val Lys Thr Gly Asp Leu Val Thr Tyr Asp Lys Glu Asn 20 25 30 Gly Met His Lys Lys Val Phe Tyr Ser Phe Ile Asp Asp Lys Asn His 35 40 45 Asn Lys Lys Leu Leu Val Ile Arg Thr Lys Gly Thr Ile Ala Gly Gln 50 55 60 Tyr Arg Val Tyr Ser Glu Glu Gly Ala Asn Lys Ser Gly Leu Ala Trp 65 70 75 80 Pro Ser Ala Phe Lys Val Gln Leu Gln Leu Pro Asp Asn Glu Val Ala 85 90 95 Gln Ile Ser Asp Tyr Tyr Pro Arg Asn Ser Ile Asp Thr Lys Asn Tyr 100 105 110 Met Ser Thr Leu Thr Tyr Gly Phe Asn Gly Asn Val Thr Gly Asp Asp 115 120 125 Thr Gly Lys Ile Gly Gly Leu Ile Gly Ala Asn Val Ser Ile Gly His 130 135 140 Thr Leu Asn Tyr Val Gln Pro Asp Phe Lys Thr Ile Leu Glu Ser Pro 145 150 155 160 Thr Asp Lys Lys Val Gly Trp Lys Val Ile Phe Asn Asn Met Val Asn 165 170 175 Gln Asn Trp Gly Pro Tyr Asp Arg Asp Ser Trp Asn Pro Val Tyr Gly 180 185 190 Asn Gln Leu Phe Met Lys Thr Arg Asn Gly Ser Met Lys Ala Ala Asp 195 200 205 Asn Phe Leu Asp Pro Asn Lys Ala Ser Ser Leu Leu Ser Ser Gly Phe 210 215 220 Ser Pro Asp Phe Ala Thr Val Ile Thr Met Asp Arg Lys Ala Ser Lys 225 230 235 240 Gln Gln Thr Asn Ile Asp Val Ile Tyr Glu Arg Val Arg Asp Asp Tyr 245 250 255 Gln Leu His Trp Thr Ser Thr Asn Trp Lys Gly Thr Asn Thr Lys Asp 260 265 270 Lys Trp Thr Asp Arg Ser Ser Glu Arg Tyr Lys Ile Asp Trp Glu Lys 275 280 285 Glu Glu Met Thr Asn 290 <210> 5 <211> 184 <212> PRT <213> Mycobacterium smegmatis <400> 5 Gly Leu Asp Asn Glu Leu Ser Leu Val Asp Gly Gln Asp Arg Thr Leu 1 5 10 15 Thr Val Gln Gln Trp Asp Thr Phe Leu Asn Gly Val Phe Pro Leu Asp 20 25 30 Arg Asn Arg Leu Thr Arg Glu Trp Phe His Ser Gly Arg Ala Lys Tyr 35 40 45 Ile Val Ala Gly Pro Gly Ala Asp Glu Phe Glu Gly Thr Leu Glu Leu 50 55 60 Gly Tyr Gln Ile Gly Phe Pro Trp Ser Leu Gly Val Gly Ile Asn Phe 65 70 75 80 Ser Tyr Thr Thr Pro Asn Ile Leu Ile Asp Asp Gly Asp Ile Thr Ala 85 90 95 Pro Pro Phe Gly Leu Asn Ser Val Ile Thr Pro Asn Leu Phe Pro Gly 100 105 110 Val Ser Ile Ser Ala Asp Leu Gly Asn Gly Pro Gly Ile Gln Glu Val 115 120 125 Ala Thr Phe Ser Val Asp Val Ser Gly Pro Ala Gly Gly Val Ala Val 130 135 140 Ser Asn Ala His Gly Thr Val Thr Gly Ala Ala Gly Gly Val Leu Leu 145 150 155 160 Arg Pro Phe Ala Arg Leu Ile Ala Ser Thr Gly Asp Ser Val Thr Thr 165 170 175 Tyr Gly Glu Pro Trp Asn Met Asn 180 <210> 6 <211> 184 <212> PRT <213> Mycobacterium smegmatis <400> 6 Gly Leu Asp Asn Glu Leu Ser Leu Val Asp Gly Gln Asp Arg Thr Leu 1 5 10 15 Thr Val Gln Gln Trp Asp Thr Phe Leu Asn Gly Val Phe Pro Leu Asp 20 25 30 Arg Asn Arg Leu Thr Arg Glu Trp Phe His Ser Gly Arg Ala Lys Tyr 35 40 45 Ile Val Ala Gly Pro Gly Ala Asp Glu Phe Glu Gly Thr Leu Glu Leu 50 55 60 Gly Tyr Gln Ile Gly Phe Pro Trp Ser Leu Gly Val Gly Ile Asn Phe 65 70 75 80 Ser Tyr Thr Thr Pro Asn Ile Leu Ile Asp Asp Gly Asp Ile Thr Gly 85 90 95 Pro Pro Phe Gly Leu Glu Ser Val Ile Thr Pro Asn Leu Phe Pro Gly 100 105 110 Val Ser Ile Ser Ala Asp Leu Gly Asn Gly Pro Gly Ile Gln Glu Val 115 120 125 Ala Thr Phe Ser Val Asp Val Ser Gly Pro Ala Gly Gly Val Ala Val 130 135 140 Ser Asn Ala His Gly Thr Val Thr Gly Ala Ala Gly Gly Val Leu Leu 145 150 155 160 Arg Pro Phe Ala Arg Leu Ile Ala Ser Thr Gly Asp Ser Val Thr Thr 165 170 175 Tyr Gly Glu Pro Trp Asn Met Asn 180 <210> 7 <211> 183 <212> PRT <213> Mycobacterium smegmatis <400> 7 Val Asp Asn Gln Leu Ser Val Val Asp Gly Gln Gly Arg Thr Leu Thr 1 5 10 15 Val Gln Gln Ala Glu Thr Phe Leu Asn Gly Val Phe Pro Leu Asp Arg 20 25 30 Asn Arg Leu Thr Arg Glu Trp Phe His Ser Gly Arg Ala Thr Tyr His 35 40 45 Val Ala Gly Pro Gly Ala Asp Glu Phe Glu Gly Thr Leu Glu Leu Gly 50 55 60 Tyr Gln Val Gly Phe Pro Trp Ser Leu Gly Val Gly Ile Asn Phe Ser 65 70 75 80 Tyr Thr Thr Pro Asn Ile Leu Ile Asp Gly Gly Asp Ile Thr Gln Pro 85 90 95 Pro Phe Gly Leu Asp Thr Ile Ile Thr Pro Asn Leu Phe Pro Gly Val 100 105 110 Ser Ile Ser Ala Asp Leu Gly Asn Gly Pro Gly Ile Gln Glu Val Ala 115 120 125 Thr Phe Ser Val Asp Val Lys Gly Ala Lys Gly Ala Val Ala Val Ser 130 135 140 Asn Ala His Gly Thr Val Thr Gly Ala Ala Gly Gly Val Leu Leu Arg 145 150 155 160 Pro Phe Ala Arg Leu Ile Ala Ser Thr Gly Asp Ser Val Thr Thr Tyr 165 170 175 Gly Glu Pro Trp Asn Met Asn 180 <210> 8 <211> 1830 <212> DNA <213> Bacillus subtilis phage phi29 <400> 8 atgaaacaca tgccgcgtaa aatgtatagc tgcgcgtttg aaaccacgac caaagtggaa 60 gattgtcgcg tttgggccta tggctacatg aacatcgaag atcattctga atacaaaatc 120 ggtaacagtc tggatgaatt tatggcatgg gtgctgaaag ttcaggcgga tctgtacttc 180 cacaacctga aatttgatgg cgcattcatt atcaactggc tggaacgtaa tggctttaaa 240 tggagcgcgg atggtctgcc gaacacgtat aataccatta tctctcgtat gggccagtgg 300 tatatgattg atatctgcct gggctacaaa ggtaaacgca aaattcatac cgtgatctat 360 gatagcctga aaaaactgcc gtttccggtg aagaaaattg cgaaagattt caaactgacg 420 gttctgaaag gcgatattga ttatcacaaa gaacgtccgg ttggttacaa aatcaccccg 480 gaagaatacg catacatcaa aaacgatatc cagatcatcg cagaagcgct gctgattcag 540 tttaaacagg gcctggatcg catgaccgcg ggcagtgata gcctgaaagg tttcaaagat 600 atcatcacga ccaaaaaatt caaaaaagtg ttcccgacgc tgagcctggg tctggataaa 660 gaagttcgtt atgcctaccg cggcggtttt acctggctga acgatcgttt caaagaaaaa 720 gaaattggcg agggtatggt gtttgatgtt aatagtctgt atccggcaca gatgtacagc 780 cgcctgctgc cgtatggcga accgatcgtg ttcgagggta aatatgtttg ggatgaagat 840 tacccgctgc atattcagca catccgttgt gaatttgaac tgaaagaagg ctatattccg 900 accattcaga tcaaacgtag tcgcttctat aagggtaacg aatacctgaa aagctctggc 960 ggtgaaatcg cggatctgtg gctgagtaac gtggatctgg aactgatgaa agaacactac 1020 gatctgtaca acgttgaata catcagcggc ctgaaattta aagccacgac cggtctgttc 1080 aaagatttca tcgataaatg gacctacatc aaaacgacct ctgaaggcgc gattaaacag 1140 ctggccaaac tgatgctgaa cagcctgtat ggcaaattcg cctctaatcc ggatgtgacc 1200 ggtaaagttc cgtacctgaa agaaaatggc gcactgggtt ttcgcctggg cgaagaagaa 1260 acgaaagatc cggtgtatac cccgatgggt gttttcatta cggcctgggc acgttacacg 1320 accatcaccg cggcccaggc atgctatgat cgcattatct actgtgatac cgattctatt 1380 catctgacgg gcaccgaaat cccggatgtg attaaagata tcgttgatcc gaaaaaactg 1440 ggttattggg cccacgaaag tacgtttaaa cgtgcaaaat acctgcgcca gaaaacctac 1500 atccaggata tctacatgaa agaagtggat ggcaaactgg ttgaaggttc tccggatgat 1560 tacaccgata tcaaattcag tgtgaaatgc gccggcatga cggataaaat caaaaaagaa 1620 gtgaccttcg aaaacttcaa agttggtttc agccgcaaaa tgaaaccgaa accggtgcag 1680 gttccgggcg gtgtggttct ggtggatgat acgtttacca ttaaatctgg cggtagtgcg 1740 tggagccatc cgcagttcga aaaaggcggt ggctctggtg gcggttctgg cggtagtgcc 1800 tggagccacc cgcagtttga aaaataataa 1830 <210> 9 <211> 608 <212> PRT <213> Bacillus subtilis phage phi29 <400> 9 Met Lys His Met Pro Arg Lys Met Tyr Ser Cys Ala Phe Glu Thr Thr 1 5 10 15 Thr Lys Val Glu Asp Cys Arg Val Trp Ala Tyr Gly Tyr Met Asn Ile 20 25 30 Glu Asp His Ser Glu Tyr Lys Ile Gly Asn Ser Leu Asp Glu Phe Met 35 40 45 Ala Trp Val Leu Lys Val Gln Ala Asp Leu Tyr Phe His Asn Leu Lys 50 55 60 Phe Asp Gly Ala Phe Ile Ile Asn Trp Leu Glu Arg Asn Gly Phe Lys 65 70 75 80 Trp Ser Ala Asp Gly Leu Pro Asn Thr Tyr Asn Thr Ile Ile Ser Arg 85 90 95 Met Gly Gln Trp Tyr Met Ile Asp Ile Cys Leu Gly Tyr Lys Gly Lys 100 105 110 Arg Lys Ile His Thr Val Ile Tyr Asp Ser Leu Lys Lys Leu Pro Phe 115 120 125 Pro Val Lys Lys Ile Ala Lys Asp Phe Lys Leu Thr Val Leu Lys Gly 130 135 140 Asp Ile Asp Tyr His Lys Glu Arg Pro Val Gly Tyr Lys Ile Thr Pro 145 150 155 160 Glu Glu Tyr Ala Tyr Ile Lys Asn Asp Ile Gln Ile Ile Ala Glu Ala 165 170 175 Leu Leu Ile Gln Phe Lys Gln Gly Leu Asp Arg Met Thr Ala Gly Ser 180 185 190 Asp Ser Leu Lys Gly Phe Lys Asp Ile Ile Thr Thr Lys Lys Phe Lys 195 200 205 Lys Val Phe Pro Thr Leu Ser Leu Gly Leu Asp Lys Glu Val Arg Tyr 210 215 220 Ala Tyr Arg Gly Gly Phe Thr Trp Leu Asn Asp Arg Phe Lys Glu Lys 225 230 235 240 Glu Ile Gly Glu Gly Met Val Phe Asp Val Asn Ser Leu Tyr Pro Ala 245 250 255 Gln Met Tyr Ser Arg Leu Leu Pro Tyr Gly Glu Pro Ile Val Phe Glu 260 265 270 Gly Lys 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gtttttcgtg cgccgcttca 100 <210> 30 <211> 48 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Sequence used in Example 1. <400> 30 gaagcggcgc acgaaaaacg cgaaagcgtt tcacgataat gcgaaaac 48 <210> 31 <211> 48502 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Sequence used in Example 1. <400> 31 gggcggcgac ctcgcgggtt ttcgctattt atgaaaattt tccggtttaa ggcgtttccg 60 ttcttcttcg tcataactta atgtttttat ttaaaatacc ctctgaaaag aaaggaaacg 120 acaggtgctg aaagcgaggc tttttggcct ctgtcgtttc ctttctctgt ttttgtccgt 180 ggaatgaaca atggaagtca acaaaaagca gctggctgac attttcggtg cgagtatccg 240 taccattcag aactggcagg aacagggaat gcccgttctg cgaggcggtg gcaagggtaa 300 tgaggtgctt tatgactctg ccgccgtcat aaaatggtat gccgaaaggg atgctgaaat 360 tgagaacgaa aagctgcgcc gggaggttga agaactgcgg caggccagcg aggcagatct 420 ccagccagga actattgagt acgaacgcca tcgacttacg cgtgcgcagg ccgacgcaca 480 ggaactgaag aatgccagag actccgctga agtggtggaa accgcattct gtactttcgt 540 gctgtcgcgg atcgcaggtg aaattgccag tattctcgac gggctccccc tgtcggtgca 600 gcggcgtttt ccggaactgg aaaaccgaca tgttgatttc ctgaaacggg atatcatcaa 660 agccatgaac aaagcagccg cgctggatga actgataccg gggttgctga gtgaatatat 720 cgaacagtca ggttaacagg ctgcggcatt ttgtccgcgc cgggcttcgc tcactgttca 780 ggccggagcc acagaccgcc gttgaatggg cggatgctaa ttactatctc ccgaaagaat 840 ccgcatacca ggaagggcgc tgggaaacac tgccctttca gcgggccatc atgaatgcga 900 tgggcagcga ctacatccgt gaggtgaatg tggtgaagtc tgcccgtgtc ggttattcca 960 aaatgctgct gggtgtttat gcctacttta tagagcataa gcagcgcaac acccttatct 1020 ggttgccgac ggatggtgat gccgagaact ttatgaaaac ccacgttgag ccgactattc 1080 gtgatattcc gtcgctgctg gcgctggccc cgtggtatgg caaaaagcac cgggataaca 1140 cgctcaccat gaagcgtttc actaatgggc gtggcttctg gtgcctgggc ggtaaagcgg 1200 caaaaaacta ccgtgaaaag tcggtggatg tggcgggtta tgatgaactt gctgcttttg 1260 atgatgatat tgaacaggaa ggctctccga cgttcctggg tgacaagcgt attgaaggct 1320 cggtctggcc aaagtccatc cgtggctcca cgccaaaagt gagaggcacc tgtcagattg 1380 agcgtgcagc cagtgaatcc ccgcatttta tgcgttttca tgttgcctgc ccgcattgcg 1440 gggaggagca gtatcttaaa tttggcgaca aagagacgcc gtttggcctc aaatggacgc 1500 cggatgaccc ctccagcgtg ttttatctct gcgagcataa tgcctgcgtc atccgccagc 1560 aggagctgga ctttactgat gcccgttata tctgcgaaaa gaccgggatc tggacccgtg 1620 atggcattct ctggttttcg tcatccggtg aagagattga gccacctgac agtgtgacct 1680 ttcacatctg gacagcgtac agcccgttca ccacctgggt gcagattgtc aaagactgga 1740 tgaaaacgaa aggggatacg ggaaaacgta aaaccttcgt aaacaccacg ctcggtgaga 1800 cgtgggaggc gaaaattggc gaacgtccgg atgctgaagt gatggcagag cggaaagagc 1860 attattcagc gcccgttcct gaccgtgtgg cttacctgac cgccggtatc gactcccagc 1920 tggaccgcta cgaaatgcgc gtatggggat gggggccggg tgaggaaagc tggctgattg 1980 accggcagat tattatgggc cgccacgacg atgaacagac gctgctgcgt gtggatgagg 2040 ccatcaataa aacctatacc cgccggaatg gtgcagaaat gtcgatatcc cgtatctgct 2100 gggatactgg cgggattgac ccgaccattg tgtatgaacg ctcgaaaaaa catgggctgt 2160 tccgggtgat ccccattaaa ggggcatccg tctacggaaa gccggtggcc agcatgccac 2220 gtaagcgaaa caaaaacggg gtttacctta ccgaaatcgg tacggatacc gcgaaagagc 2280 agatttataa ccgcttcaca ctgacgccgg aaggggatga accgcttccc ggtgccgttc 2340 acttcccgaa taacccggat atttttgatc tgaccgaagc gcagcagctg actgctgaag 2400 agcaggtcga aaaatgggtg gatggcagga aaaaaatact gtgggacagc aaaaagcgac 2460 gcaatgaggc actcgactgc ttcgtttatg cgctggcggc gctgcgcatc agtatttccc 2520 gctggcagct ggatctcagt gcgctgctgg cgagcctgca ggaagaggat ggtgcagcaa 2580 ccaacaagaa aacactggca gattacgccc gtgccttatc cggagaggat gaatgacgcg 2640 acaggaagaa cttgccgctg cccgtgcggc actgcatgac ctgatgacag gtaaacgggt 2700 ggcaacagta cagaaagacg gacgaagggt ggagtttacg gccacttccg tgtctgacct 2760 gaaaaaatat attgcagagc tggaagtgca gaccggcatg acacagcgac gcaggggacc 2820 tgcaggattt tatgtatgaa aacgcccacc attcccaccc ttctggggcc ggacggcatg 2880 acatcgctgc gcgaatatgc cggttatcac ggcggtggca gcggatttgg agggcagttg 2940 cggtcgtgga acccaccgag tgaaagtgtg gatgcagccc tgttgcccaa ctttacccgt 3000 ggcaatgccc gcgcagacga tctggtacgc aataacggct atgccgccaa cgccatccag 3060 ctgcatcagg atcatatcgt cgggtctttt ttccggctca gtcatcgccc aagctggcgc 3120 tatctgggca tcggggagga 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Claims (22)

  1. (a) 주형 폴리뉴클레오티드를, 각각 (i) 적어도 하나의 오버행 및 (ii) 적어도 하나의 오버행을 포함하는 가닥으로부터 반대 가닥에 적어도 하나의 헤어핀 루프를 포함하는 이중 가닥 MuA 기질의 집단 및 MuA 트랜스포사제와 접촉시켜, 트랜스포사제가 주형 폴리뉴클레오티드를 단편화하고 기질을 이중 가닥 단편의 한 말단 또는 양 말단에 라이게이션함으로써, 복수 개의 단편/기질 구축물이 생성되도록 하는 단계;
    (b) 상기 단편/기질 구축물을 폴리머라제와 접촉시켜, 폴리머라제가 오버행을 포함하는 가닥을 옮겨놓고 이들을, 헤어핀 루프를 포함하는 가닥을 보완하는 가닥으로 대체시킴으로써, 각각 주형 폴리뉴클레오티드의 이중 가닥 단편을 포함하는 복수 개의 이중 가닥 구축물을 생성시키도록 하는 단계; 및
    (c) 이중 가닥 구축물의 두 가닥을 분리시키고 가닥을 주형으로 사용하여, 각각 적어도 하나의 헤어핀 루프에 의해 연결된 두 상보적 가닥을 포함하는 복수 개의 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 형성시키는 단계
    를 포함하는, 주형 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 변형시키는 방법.
  2. 제1항에 있어서, 단계 (c)가, pH, 온도 및 이온 강도 중 하나 이상을 증가시킴으로써 이중 가닥 구축물의 두 가닥을 분리시키는 것을 포함하는 것인 방법.
  3. 제1항 또는 제2항에 있어서, 단계 (c)가 상기 분리된 가닥을 폴리머라제와 접촉시켜, 폴리머라제가 상기 가닥을 주형으로서 사용하여 복수 개의 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 형성하도록 하는 것을 포함하는 것인 방법.
  4. 제1항 또는 제2항에 있어서, 단계 (c)가 (i) 복수 개의 분리된 가닥을, 뉴클레오티드 올리고머가 가닥과 혼성화할 수 있는 조건하에 상기 가닥 내의 모든 뉴클레오티드에 상보적인 뉴클레오티드의 모든 가능한 조합을 포함하는 뉴클레오티드 올리고머의 집단과 접촉시키는 단계; 및 (ii) 상기 가닥과 혼성화하는 올리고머를 함께 라이게이션하여 복수 개의 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 형성시키는 단계를 포함하는 것인 방법.
  5. 제1항에 있어서, 단계 (c)가 복수 개의 이중 가닥 구축물을 폴리머라제와 접촉시켜, 폴리머라제가 이중 가닥 구축물의 두 가닥을 동시에 분리시키고 이들 가닥을 주형으로서 사용하여 복수 개의 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 형성시키도록 하는 것을 포함하는 것인 방법.
  6. 제1항 내지 제5항 중 어느 한 항에 있어서, 적어도 하나의 헤어핀 루프가 각 기질의 두 가닥을 연결시키지 않는 것인 방법.
  7. 제1항 내지 제6항 중 어느 한 항에 있어서, 적어도 하나의 오버행이, 그 길이가 4, 5 또는 6개의 뉴클레오티드인 방법.
  8. 제1항 내지 제7항 중 어느 한 항에 있어서, 각 기질이 선택 가능한 결합성 모이어티를 포함하는 것인 방법.
  9. 제1항 내지 제8항 중 어느 한 항에 있어서, 각 기질이, 막횡단 세공을 통하여 우선적으로 삽입될 수 있는 리더 서열을 포함하는 것인 방법.
  10. 제1항 내지 제8항 중 어느 한 항에 있어서, (d) 복수 개의 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드에, 헤어핀 루프와는 반대 말단에서 Y 어댑터를 부착시키는 단계를 추가로 포함하며, 여기서 Y 어댑터는 임의로, 막횡단 세공을 통하여 우선적으로 삽입될 수 있는 리더 서열을 포함하는 것인 방법.
  11. 제1항 내지 제10항 중 어느 한 항에 있어서, 하나 이상의 폴리뉴클레오티드 결합성 단백질을 복수 개의 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드와 결합시키는 것을 추가로 포함하는 방법.
  12. 제1항 내지 제11항 중 어느 한 항에 따르는 방법을 이용하여 생성된 복수 개의 변형된 이중 가닥 폴리뉴클레오티드.
  13. 주형 폴리뉴클레오티드를 변형시키기 위한, 제1항, 제6항, 제7항 및 제8항 중 어느 한 항에 정의된 바와 같은 이중 가닥 폴리뉴클레오티드 MuA 기질의 집단.
  14. a) 변형된 폴리뉴클레오티드를 막횡단 세공과 접촉시켜, 폴리뉴클레오티드의 적어도 하나의 가닥이 상기 세공을 통하여 이동하도록 하는 단계; 및
    b) 적어도 하나의 가닥이 세공에 대하여 이동함에 따라, 적어도 하나의 가닥의 하나 이상의 특징을 나타내는 하나 이상의 측정치를 취함으로써, 변형된 폴리뉴클레오티드의 특징을 규명하는 단계
    를 포함하는, 제1항 내지 제11항 중 어느 한 항에 따르는 방법을 이용하여 변형된 적어도 하나의 폴리뉴클레오티드의 특징을 규명하는 방법.
  15. a) 제1항 내지 제11항 중 어느 한 항에 따르는 방법을 이용하여 주형 폴리뉴클레오티드를 변형시켜 복수 개의 변형된 폴리뉴클레오티드를 생성시키는 단계;
    b) 각각의 변형된 폴리뉴클레오티드를 막횡단 세공과 접촉시켜, 각 폴리뉴클레오티드의 적어도 하나의 가닥이 세공을 통하여 이동하도록 하는 단계; 및
    c) 각 폴리뉴클레오티드가 세공에 대하여 이동함에 따라, 각 폴리뉴클레오티드의 하나 이상의 특징을 나타내는 하나 이상의 측정치를 취함으로써, 주형 폴리뉴클레오티드의 특징을 규명하는 단계
    를 포함하는, 주형 폴리뉴클레오티드의 특징을 규명하는 방법.
  16. 제14항 또는 제15항에 있어서, 상기/각 변형된 폴리뉴클레오티드의 양 가닥이 세공을 통하여 이동하는 것인 방법.
  17. 제11항 내지 제13항 중 어느 한 항에 있어서, 하나 이상의 특징이 (i) 폴리뉴클레오티드의 길이, (ii) 폴리뉴클레오티드의 실체, (iii) 폴리뉴클레오티드의 서열, (iv) 폴리뉴클레오티드의 2차 구조 및 (v) 폴리뉴클레오티드가 변형되는 지의 여부로부터 선택되는 것인 방법.
  18. 제14항 내지 제17항 중 어느 한 항에 있어서, 접촉 단계 (a) 또는 접촉 단계 (b)가, 상기/각 변형된 폴리뉴클레오티드를 폴리뉴클레오티드 결합성 단백질과 접촉시켜, 단백질이 세공을 통한 상기/각 폴리뉴클레오티드의 이동을 제어하도록 하는 것을 추가로 포함하는 것인 방법.
  19. 제18항에 있어서,
    (i) 상기/각 변형된 폴리뉴클레오티드를 막횡단 세공 및 하나 이상의 폴리뉴클레오티드 결합성 단백질과 접촉시켜, 상기/각 폴리뉴클레오티드의 적어도 하나의 가닥이 세공을 통하여 이동하고 하나 이상의 단백질이 세공을 통한 상기/각 폴리뉴클레오티드의 이동을 제어하도록 하는 단계; 및
    (ii) 상기/각 폴리뉴클레오티드가 세공에 대하여 이동함에 따라 세공을 관통하는, 상기/각 폴리뉴클레오티드의 하나 이상의 특징을 나타내는 전류를 측정함으로써, 폴리뉴클레오티드의 특징을 규명하는 단계
    를 포함하는 방법.
  20. 제19항에 있어서, 하나 이상의 폴리뉴클레오티드 결합성 단백질이 막횡단 세공과 접촉되기 전에, 상기/각 변형된 폴리뉴클레오티드와 결합되는 것인 방법.
  21. 제19항 또는 제20항에 있어서, 하나 이상의 폴리뉴클레오티드 결합성 단백질이 헬리카제로부터 유래되는 것인 방법.
  22. (a) 제1항, 제6항, 제7항 및 제8항 중 어느 한 항에 정의된 바와 같은 MuA 기질의 집단, (b) MuA 트랜스포사제 및 (c) 폴리머라제를 포함하는, 주형 이중 가닥 폴리뉴클레오티드를 변형시키기 위한 키트.
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