KR20090107200A - 버섯에서 유래된 ｓｓｒ 프라이머 및 이의 용도 - Google Patents

버섯에서 유래된 ｓｓｒ 프라이머 및 이의 용도 Download PDF

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Abstract

본 발명은 버섯에서 분리한 SSR 프라이머 및 이의 용도에 관한 것으로서, 보다 상세하게는 서열번호 1 내지 서열번호 72로 이루어진 군에서 선택되는 2개의 염기서열을 갖는 SSR 프라이머쌍 및 이를 이용하여 PCR을 수행하는 것을 포함하는 버섯의 DNA 다형성 검출 방법에 관한 것이다. 본 발명에서 제공되는 SSR 프라이머쌍은 버섯의 DNA 다형성을 효과적으로 검출할 수 있으며, 버섯의 DNA 프로파일을 작성하는데 매우 유용하게 이용될 수 있다. 또한, 이를 통해 버섯의 유전자원을 효율적으로 평가함으로써 신규 유전자원 도입시 기존 보유자원과의 중복성 분석 및 신규성 확립을 효과적으로 수행할 수 있다.
SSR 프라이머, 버섯, DNA 다형성

Description

버섯에서 유래된 ＳＳＲ 프라이머 및 이의 용도{SSR primer derived from Oyster Mushroom and use of there}
본 발명은 버섯(Oyster Mushroom; Pleurotus Ostreatus Kummer)에서 분리한 SSR 프라이머 및 이의 용도에 관한 것이다.
본 발명은 버섯(Oyster Mushroom; Pleurotus Ostreatus Kummer)에서 분리한 SSR 프라이머 및 이의 용도에 관한 것으로서, 보다 상세하게는 서열번호 1 내지 서열번호 72로 이루어진 군에서 선택되는 2개의 염기서열을 갖는 SSR 프라이머쌍 및 이를 이용하여 PCR을 수행하는 것을 포함하는 버섯의 DNA 다형성 검출 방법에 관한 것이다.
육종에 이용되고 있는 대부분의 주요 작물 및 소재배 작물에서 해마다 많은 양의 유전자원이 수집되고 있다. 그러나, 이에 반해 유전자원에 대한 평가는 충분히 이루어지지 않고 있는 실정이다. 수집된 유전자원의 종간 및 아종간 품종의 신속한 판별은 정확한 유전자원의 관리 및 보호를 위하여 매우 중요하다. 또한 품종 의 판별과 함께 유전자원의 유형 형질 탐색과 분류, 그리고 유연관계의 규명은 유전자원의 보존이나 신품종의 창출 및 작물의 개량에 있어서 매우 중요하다.
최근 분자생물학의 급속한 발전으로 핵산(DNA) 수준에서 유전자원의 다양성(bio-diversity) 연구를 가능케 하는 핵산 지문 분석 방법 및 다양한 DNA 마커들이 개발되었다. 이를 통해 유용 형질 탐색, 생물의 종 판별, 품종 분류동정 및 집단 개체군의 유연관계 분석을 외부환경 등에 대하여 거의 영향을 받지 않고 간단하고 신속하게 수행할 수 있게 되었다. 지금까지 개발된 PCR(polymerase chain reaction)을 이용한 지문분석법(fingerprinting)에는 RAPD(randomly amplified polymorphic DNAs) 방법, AFLP(amplified fragment length polymorphic DNA) 방법, SSR(simple sequence repeat) 방법 등이 있다. 상기 방법 중 RAPD 방법은 비특이적 PCR 산물이 증폭되므로 재현성이 떨어지는 단점이 있고, AFLP 방법은 높은 DNA 다형성 검출로 각광받고 있지만 재현성이 떨어지는 밴드의 출현과 분석이 복잡하다는 단점이 있다. 이에 반해, SSR 방법은 DNA 반복 배열인 초위성체(microsatellite) 영역의 염기 배열 정보를 근거로 PCR 프라이머를 제작하여 이용하는 방법으로서, 초위성체 분석이 용이하고 높은 재현성을 가지는 장점으로 인하여 생물종의 동정에 자주 사용되고 있다. 특히 SSR 방법은 외부 환경의 영향을 전혀 받지 않는다는 장점이 있다. 이와 같은 SSR 방법의 우수성으로 인해 여러 주요작물 및 소재배 작물에서 SSR 마커를 개발하려는 연구가 한창 진행 중에 있다.
벼에서는 벼 게놈에 반복되는 SSR을 PCR 기술로 증폭하여 벼 품종의 유전자형을 동정하는 초위성체 마커들이 개발되었다(대한민국 특허출원번호 제2001-34003 호). 미국의 탕(Tang) 박사팀은 879개의 SSR 마커들을 개발하여 해바라기의 유전자 지도를 발표한 바 있다(Tang et al ., Theor . Appl . Genet., 105: 1124-1136, 2002). 이외에도 보리, 콩 등에서 많은 SSR 마커들이 개발되었다. 그러나, 버섯에서는 SSR 마커가 아직 국내에서 전혀 개발된 바 없으며, 외국에서도 이와 관련된 연구가 거의 이루어지지 않은 실정이다.
이에 본 발명자들은 버섯의 유전자원을 효율적으로 평가할 수 있는 SSR 마커를 개발하기 위하여 연구를 거듭하던 중, 다양한 버섯 계통들에서 다형성 변이를 많이 나타내는 SSR 프라이머쌍을 개발함으로써 본 발명을 완성하였다.
따라서, 본 발명의 목적은 버섯의 유전자원을 효율적으로 평가할 수 있는 SSR 마커 및 이의 용도를 제공하는 것이다.
상기와 같은 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 서열번호 1 내지 서열번호 72로 이루어진 군에서 선택되는 2개의 염기서열을 갖는 SSR 프라이머쌍을 제공한다.
본 발명의 다른 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 상기 SSR 프라이머쌍을 이용하여 PCR을 수행하는 것을 포함하는 버섯의 DNA 다형성 검출 방법 및 버섯의 품종 동정 방법을 제공한다.
본 발명의 또 다른 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 상기 SSR 프라이머쌍, DNA 중합효소 및 PCR 반응 완충용액을 포함하는 버섯의 DNA 다형성 검출용 키트 및 버섯의 품종 동정용 키트를 제공한다.
이하, 본 발명을 상세히 설명한다.
본 발명은 버섯의 유전적 다형성을 특이적으로 분석할 수 있는 SSR 마커를 제공하는 것을 특징으로 한다.
본 발명에서는 비오틴-스트렙타비딘 포획(biotin-streptavidin capture; Dixit et al., Mol. Eco. Note, 5: 736-738) 방법으로 버섯로부터 SSR 마커를 개발 하였다. 버섯에서 분리된 SSR 마커는 본 발명에 의해 처음으로 제공되는 것이다.
구체적으로, 본 발명의 SSR 마커는 다음과 같은 방법으로 개발되었다. 버섯로부터 추출한 게놈 DNA를 제한효소로 처리해 DNA 단편을 제조한 후 AP11 및 AP12의 2개의 어댑터와 라이게이션하였다.
라이게이션 산물을 비오틴이 표지된 SSR 탐침과 혼성화한 후 마그네틱 비드를 이용해 분리하였다. 이를 AP11 프라이머를 이용하여 PCR을 수행하여 증폭한 후 서열을 분석함으로써 버섯의 초위성체를 포함하고 있는 500개의 DNA단편을 수득하였다.
상기에서 수득한 DNA단편을 분석함으로써 5개 이상의 반복 유닛을 포함하고 있는 단편만을 선발하고 반복 유닛을 포함하는 부분을 기준으로 초위성체를 증폭 할 수 있는 양방향 프라이머 200쌍을 디자인 하였다. 상기 프라이머쌍을 사용하여 다양한 재배형 버섯 계통 및 품종들의 PCR을 통한 DNA 프로파일링을 수행함으로써 다형성 변이를 많이 나타내는 36쌍의 SSR 프라이머쌍을 선발하였다.
본 발명에서 제공하는 SSR 마커는 PCR 프라이머쌍을 말하며, 정방향 프라이머와 역방향 프라이머를 포함한다. 본 발명에서 제공되는 SSR 프라이머쌍은 서열번호 1 내지 서열번호 72로 이루어진 군에서 선택되는 2개의 염기서열을 가진다. 바람직하게는 GB-PO-001(서열번호 1과 2로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-006(서열번호 3과 4로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-011(서열번호 5와 6으로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-025(서열번호 7과 8로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-026(서열번호 9와 10으로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-028(서열번호 11과 12로 표시되는 프라이 머쌍), GB-PO-039(서열번호 13과 14로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-050(서열번호 15와 16으로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-051(서열번호 17과 18로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-061(서열번호 19와 20으로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-064(서열번호 21과 22로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-076(서열번호 23과 24로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-079(서열번호 25와 26으로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-080(서열번호 27과 28로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-086(서열번호 29와 30으로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-094(서열번호 31과 32로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-097(서열번호 33과 34로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-102(서열번호 35와 36으로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-113(서열번호 37과 38로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-115(서열번호 39와 40으로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-117(서열번호 41과 42로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-124(서열번호 43과 44로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-128(서열번호 45와 46으로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-131(서열번호 47과 48로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-134(서열번호 49와 50으로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-135(서열번호 51과 52로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-138(서열번호 53과 54로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-149(서열번호 55와 56으로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-152(서열번호 57과 58로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-154(서열번호 59와 60으로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-157(서열번호 61과 62로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-171(서열번호 63과 64로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-172(서열번호 65와 66으로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-173(서열번호 67과 68로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-181(서열번호 69와 70으로 표시되는 프라이머쌍) 및 GB-PO- 190(서열번호 71과 72로 표시되는 프라이머쌍)으로 이루어진 군에서 선택된다. 본 발명에서 제공되는 프라이머쌍 및 이들에 의해 증폭되는 초위성체에 존재하는 반복 모티브(repeat motif), 증폭되는 초위성체의 크기, Tm(℃) 및 초위성체가 존재하는 염색체 대립인자에 대한 정보를 하기 표 1에 기재하였다.
프라이머명 서열 서열 번호 반복모티브 증폭되는 초위성체의 크기의 범위(bp) Tm(℃) 대립인자의 수
GB-PO-001 F : CGCAAGCTACAAACGGAC 1 (GCA)3(ATTGGC)(GCA)1 307-313 52 2
R : AGCAGCAAGCACAAGAGC 2
GB-PO-006 F : TGTGGCAAACCCAAGTTC 3 (GGC)4(GAC)(GGC)1 203-206 52 2
R : CCCAAAGGATGAGGAAGG 4
GB-PO-011 F : TCCCATACCCTGACATCG 5 (CTG)4(TA)(CTG)1 166-235 52 5
R : ATCATCAAGCGCCACAAC 6
GB-PO-025 F : TGATCATGGCGAGTAGGG 7 (GGA)10 214-217 52 2
R : GGAACTGTCAGCAGACGC 8
GB-PO-026 F : AATCGCATGGGCTCTG 9 (TTG)3(TTC)(TTG)3 293-296 52 2
R : CTGTCCCTCCGTGTACCA 10
GB-PO-028 F : CTGGAGAATCGTAGCCCC 11 (GTC)13(CAT)5 291-318 52 5
R : ACAAGCGCTCGGAATACA 12
GB-PO-039 F : TGTGGATGTGATGTGATGTG 13 (GGT)2(GGC)(GGT)5 191-224 52 4
R : ACGTCCAGCGTCGAGTTA 14
GB-PO-050 F : CATCCGATACAGACCCGA 15 (GTT)5 145-175 52 5
R : AGGCATCCCACAACACTG 16
GB-PO-051 F : CATAGGGACGACAGCGAG 17 (GCT)6 272-278 52 3
R : ACTGAGCCTTCAGCACCA 18
GB-PO-061 F : TAACTTGGGCGCTTGAAA 19 (GCA)2(CAGTAC)(GCA)3 258-270 52 2
R : TGGAACGCGTAGACTTGG 20
GB-PO-064 F : GTTCTGAGGGTTGAGGGG 21 (GTT)5(ATT)(GTT)3 209-227 52 3
R : CCAACCACACTCTTCCCA 22
GB-PO-076 F : TCGATTGTCAGATTGTTGGA 23 (GGC)6 233-248 52 4
R : CGGAGAAGCAGTTGGTTG 24
GB-PO-079 F : ACCCAGACGATTTGGGAG 25 (GGA)4(AGA)(GGA)2 230-233 52 4
R : AGGCTGGCGTGGAATACT 26
GB-PO-080 F : CACCCATGTGCCTCAGTC 27 (GGC)6 203-233 52 2
R : TGTCTATGGGTTACGGCG 28
GB-PO-086 F : CATCTTCGATGAACCGGA 29 (GA)3(GGAGAAGC)(GA)3, (CGA)3 378-380 52 2
R : CGAAGATGAGCCAGCAAC 30
GB-PO-094 F : CGCGAGACAATTAAACGC 31 (CCT)2(TCT)(CCT)2 303-324 52 2
R : ACAGTTCCTGGAGCCCAT 32
GB-PO-097 F : CATGGAGAGAGGGCGG 33 (GGT)5 241-247 52 3
R : CGTTTCATCGTTCGCTGT 34
GB-PO-102 F : TGTCTATGGGTTACGGCG 35 (GCC)4(GC)(GCC)1 266-269 52 2
R : TGCAAAGCAAATCGGAAC 36
GB-PO-113 F : GTTCATCTGAACGCCGTC 37 (CGC)5 270-375 52 2
R : CCTATGACGAGGGGAAGG 38
GB-PO-115 F : TGGTAGCAGGTTGTTGGG 39 (TGC)5(GCTGGC)(TGC)4 213-228 52 3
R : CCGCTAAGCCACTGTTTG 40
GB-PO-117 F : TCAAACTCACGTGGTACGC 41 (TGC)7 218-224 52 3
R : TCACATATCCGCCGGTAG 42
GB-PO-124 F : TGCGTTTGCTCGGTTAAT 43 (CG)5 264-300 52 5
R : CGCTACTACGTCGATCCG 44
GB-PO-128 F : TGATTGGTTTGAATGGGC 45 (GTT)10 214-238 52 5
R : GCACGATGAGGATGCAGT 46
GB-PO-131 F : CTCCCTCCTCCGTGTACC 47 (CCT)2(CCCC)(CCT)2 200-212 52 3
R : CGTAACGTTCGCTTCCTG 48
GB-PO-134 F : GAGTGTGAAGAATCGGCG 49 (GA)2(GT)(GA)3 115-269 52 2
R : GTGCACTCTGCCTATCGC 50
프라이머명 서열 서열 번호 반복모티브 증폭되는 초위성체의 크기의 범위(bp) Tm(℃) 대립인자의 수
GB-PO-135 F : AGGAGGGGGTGCTTGATA 51 (GGA)2(GGGA)(GGA)2 244-271 52 2
R : TCCTCCGCCTTCTCTACC 52
GB-PO-138 F : TATGGAACGGTGCGAAGT 53 (CCG)4, (TTC)3 191-206 52 3
R : GCCGTCAAAAGGGAACTC 54
GB-PO-149 F : AGTGCATATGCCCGACAC 55 (TCC)8 193-205 52 3
R : CGTCGTAGATGCAGGCTC 56
GB-PO-152 F : ACTGAGCCTTCAGCACCA 57 (AGC)5 272-278 52 3
R : CATAGGGACGACAGCGAG 58
GB-PO-154 F : GTCGTAGCCAGCCATGAG 59 (CGA)7 254-266 52 4
R : AGGGTATCTCGGGTGCAT 60
GB-PO-157 F : ATGGACGTGGTGTTCTGC 61 (GCT)4 281-302 52 3
R : AAACCAAGCCTACCCAGC 62
GB-PO-171 F : TCTCGGGCATCATTCTTG 63 (TTG)3, (TA)4 295-310 52 4
R : ACGTCAGGGTGTCAAACG 64
GB-PO-172 F : GCAGAAGTTGCCCAAAGA 65 (TGC)2(TAC)(TGC)5 169-229 52 2
R : ATGTCCAGCGGAAGACCT 66
GB-PO-173 F : ATGAAGTGTGAGCCGTGG 67 (GT)8 294-309 52 4
R : TGTCCATTCATGCGTTCA 68
GB-PO-181 F : TTATTGTGAAGCCCCCG 69 (CAG)1(CAA)(CAG)5 240-246 52 3
R : GACATCGGCAGAAGGTCA 70
GB-PO-190 F : TTTCCATTTCCGTTGGTG 71 (TGC)3(TGT)(TGC)2 186-198 52 4
R : CAGGGGGTGATTATGCAA 72
aF: 정방향 프라이머 bR: 역방향 프라이머
본 발명에서 제공되는 SSR 프라이머쌍은 버섯에서 DNA 다형성을 검출하고 유전적 다양성을 분석하는데 유용하게 사용될 수 있다. 본 발명에 따른 SSR 프라이머를 이용하여 버섯의 유전자원을 효율적으로 평가 및 보존할 수 있다. 따라서 본 발명은 상기 SSR 프라이머쌍을 이용하여 PCR을 수행하는 것을 포함하는 버섯의 DNA 다형성 검출 방법을 제공한다.
구체적으로 버섯의 DNA 다형성 검출 방법은
(a) 버섯으로부터 게놈 DNA를 추출하는 단계;
(b) 추출된 게놈 DNA를 주형으로 하고 본 발명에서 제공하는 SSR 프라이머쌍을 이용하여 PCR을 수행하는 단계; 및
(c) PCR 산물을 크기별로 분리하는 단계를 포함한다.
상기 (a) 단계에서 게놈 DNA의 추출은 당업계에서 통상적으로 사용되는 페놀/클로로포름 추출법, SDS 추출법(Tai et al., Plant Mol . Biol . Reporter, 8: 297-303, 1990), CTAB 분리법(Cetyl Trimethyl Ammonium Bromide; Murray et al ., Nuc . Res ., 4321-4325, 1980) 또는 상업적으로 판매되는 DNA 추출 키트를 이용하여 수행할 수 있다.
또한 상기 (b) 단계에서 PCR은 PCR 반응에 필요한 당업계에 공지된 여러 성분을 포함하는 PCR 반응 혼합액을 이용하여 수행될 수 있다. 상기 PCR 반응 혼합액에는 분석하고자 하는 버섯에서 추출된 게놈 DNA와 본 발명에서 제공되는 SSR 프라이머쌍 이외에 적당량의 DNA 중합효소, dNTP, PCR 완충용액 및 물(dH2O)을 포함한다. 상기 PCR 완충용액은 트리스-HCl(Tris-HCl), MgCl2, KCl 등을 포함한다. 이 때 MgCl2 농도는 증폭의 특이성과 수량에 크게 영향을 주며, 바람직하게는 1.5-2.5 mM의 범위로 사용될 수 있다. 일반적으로 Mg2 +가 과량인 경우는 비특이적인 PCR 증폭산물이 증가하고, Mg2 +가 부족한 경우 PCR 산물의 산출율이 감소한다. 상기 PCR 완충용액에는 적당량의 트리톤 X-100(Triton X-100)이 추가로 포함될 수도 있다. 또한 PCR은 94-95℃에서 주형 DNA를 전변성시킨 후, 변성(denaturation); 결합(annealing); 및 증폭(extension)의 사이클을 거친 후, 최종적으로 72℃에서 연장(elongation)시키는 일반적인 PCR 반응 조건에서 수행될 수 있다. 상기에서 변성 및 증폭은 94-95℃ 및 72℃에서 각각 수행될 수 있으며, 결합시의 온도는 프라이머의 종류에 따라 달라질 수 있다. 바람직하게는 52-57℃이며, 보다 바람직하게는 55℃이다. 각 단계의 시간과 싸이클 수는 당업계에 일반적으로 행해지는 조건에 따라 정해질 수 있다. 본 발명에 따른 SSR 프라이머쌍을 이용한 PCR 수행시의 최적의 반응 조건은 다음과 같다: 95℃에서 3분간 주형 DNA를 전변성시킨 후, 95℃에서 30초; 55℃에서 30초; 및 72℃에서 1분 30초를 36 싸이클 반복 수행한 후, 최종적으로 72℃에서 5분간 반응시킨다.
상기 (c) 단계에서는 당업계에서 널리 공지된 방법에 따라 PCR 산물의 DNA를 크기별로 분리할 수 있다. 바람직하게는 아가로스 겔(agarose gel) 또는 폴리아크릴아미드 겔(polyacrylamide gel) 전기영동 또는 형광분석장치(ABI prism 3100 genetic analyzer-electropherogram)에 의해 확인할 수 있다. 이 때, 형광분석장치를 이용하기 위해서는 당업계에 공지된 형광 다이(dye)를 붙인 프라이머쌍을 이용하여 상기 (b)단계에서 PCR을 수행한다. PCR 증폭 결과는 바람직하게는 폴리아크릴아미드 겔 전기영동, 보다 바람직하게는 변성 폴리아크릴아미드 겔 전기영동에 의해 확인할 수 있다. 전기영동 후 실버 염색(silver staining)으로 전기영동 결과를 분석할 수 있다. 일반적인 PCR 수행 및 그 결과 분석 방법에 대해서는 당업계에 잘 알려져 있다.
아울러, 본 발명은 상기 SSR 프라이머쌍을 이용하여 PCR을 수행하는 것을 포함하는 버섯의 품종 동정 방법을 제공한다.
구체적으로 버섯의 품종 동정 방법은
(a) 버섯 및 대조군 버섯 품종으로부터 게놈 DNA를 추출하는 단계;
(b) 추출된 각 게놈 DNA를 주형으로 하고 본 발명에서 제공하는 SSR 프라이머쌍을 이용하여 PCR을 수행하는 단계;
(c) 각 PCR 산물을 크기별로 분리하는 단계; 및
(d) 상기 (c) 단계의 각각의 크기별 분리 결과를 서로 비교하는 단계를 포함한다.
(a) 내지 (c) 단계의 게놈 DNA 추출, PCR 수행 및 PCR 산물의 크기별 분리는 상기에서 기재한 바와 같으며, 상기 (d) 단계에서 버섯 및 대조군 버섯 품종에 대한 비교는 동일한 조합의 SSR 프라이머쌍에 대한 시료가 되는 버섯과 대조군 버섯 품종의 각각의 PCR 산물의 크기를 서로 비교하는 방법으로 수행된다. 각 SSR 프라이머쌍에 대한 크기 비교 결과를 종합하여 시료가 되는 버섯과 대조군 버섯 품종의 결과와 모두 일치하면 시료가 되는 버섯은 대조군 버섯 품종과 동일한 품종으로 동정할 수 있다. 이와 같은 품종의 동정 방법은 신규 유전자원 도입시 중복여부 판단 및 원산지 확인을 통한 원산지 표시 위반 여부의 판정 등 품종의 동정이 필요한 경우에 유용하게 이용될 수 있다.
대조군 버섯 품종에 대한 게놈 DNA 추출, PCR 수행 및 PCR 산물의 크기별 분리는 시료가 되는 버섯과 동시에 수행될 수도 있으나, 시료가 되는 버섯 보다 이전에 수행되어 동정의 기준표(reference)로 작성될 수도 있다. 이러한 기준표를 이용하면 시료가 되는 버섯에 대한 게놈 DNA 추출, PCR 수행 및 PCR 산물의 크기별 분리만을 수행하여 기준표와 비교할 수 있어 유용하게 이용할 수 있다.
또한 본 발명은 본 발명에 따른 SSR 프라이머쌍을 포함하는 버섯의 DNA 다형성 검출용 키트를 제공한다. 이외에 PCR 반응을 용이하게 수행할 수 있기 위해 DNA 중합효소 및 상기에서 기재한 조성의 PCR 반응 완충용액이 추가로 포함될 수 있으며, PCR 산물의 증폭 여부를 확인할 수 있는 전기영동 수행에 필요한 구성성분들이 본 발명의 키트에 추가로 포함될 수 있다.
또한, 본 발명은 본 발명에 따른 SSR 프라이머쌍을 포함하는 버섯의 품종 동정용 키트를 제공한다. 품종 동정 방법은 상기에서 기재한 바와 같다. 이외에 PCR 반응을 용이하게 수행할 수 있기 위해 DNA 중합효소 및 상기에서 기재한 조성의 PCR 반응 완충용액을 추가로 포함될 수 있으며, PCR 산물의 증폭 여부를 확인할 수 있는 전기영동 수행에 필요한 구성성분 또는 공지된 품종에 대한 동정 기준표들이 본 발명의 키트에 추가로 포함될 수 있다.
본 발명에 적용될 수 있는 버섯은 Pleurotus Ostreatus Kummer 및 이들의 변종일 수 있으며, 이에 제한되는 것은 아니다. 바람직하게는 Pleurotus Ostreatus Kummer 일 수 있다.
이상 살펴본 바와 같이, 본 발명에서는 버섯에서 처음으로 SSR 마커를 개발하였다. 본 발명에서 제공되는 SSR 프라이머쌍은 버섯의 DNA 다형성을 효과적으로 검출하여 버섯의 DNA 프로파일을 작성하는데 매우 유용하게 이용될 수 있다. 이를 통해 버섯의 유전자원을 효율적으로 평가함으로써 신규 유전자원 도입시 기존 보유자원과의 중복성 분석 및 신규성 확립을 효과적으로 수행할 수 있으며, 버섯의 품종을 판별할 수 있다.
이하, 본 발명을 실시예에 의해 상세히 설명한다.
단, 하기 실시예는 본 발명을 예시하는 것일 뿐, 본 발명의 내용이 하기 실시예에 한정되는 것은 아니다.
< 실시예 1> 게놈 DNA 추출
재배종 버섯(농업생명공학연구원 유전자원과, 보존번호 : PO06)로부터 SDS를 이용한 방법(Tai et al., Plant Mol . Biol . Reporter, 8: 297-303, 1990)에 따라 게놈 DNA를 추출하였다. 이를 상세히 설명하면 다음과 같다. 생육 1개월째의 어린 버섯 식물체로부터 0.5 g의 잎 조직을 채취하여 1.5 ㎖ 튜브에 넣고 액체질소로 급냉시켰다. 이후, 즉시 플라스틱 막대로 잎을 곱게 마쇄하였다. 마쇄된 잎이 녹기 전에 추출 완충용액(200 mM Tris-HCl (pH 8.0), 200 mM NaCl, 25 mM EDTA, 0.5% SDS) 750 ㎕를 첨가하고, 혼합액을 65℃에서 30분간 보관하였다. 여기에 동량의 페놀(phenol):클로로포름(chloroform):이소아밀알코올(isoamylalchol) (25:24:1) 용액을 추가로 첨가한 후, 약 15분간 교반하였다. 이를 13,000 rpm에서 15분간 원심 분리하였다. 상등액을 취하여 새 튜브에 옮겼다. 상기 튜브에 동량의 이소프로판올(-20℃)을 첨가하고, -20℃에서 1시간 보관하였다. 이후, 13,000 rpm에서 15분간 원심분리하였다. 상등액을 버린 후 침전된 DNA를 70% 에탄올로 세척하였다. DNA를 건조시킨 후, 약 300 ㎕의 RNase (50 ㎍/㎖)를 함유하는 TE 완충용액(10 mM Tris-Cl, 1 mM EDTA, pH 7.4)을 첨가하여 충분히 녹인 후, 37℃에서 1시간동안 보관하였다.
< 실시예 2> 어댑터와의 라이게이션( ligation )
상기 실시예 1에서 얻은 게놈 DNA 500 ng을 각 제한효소 제조사의 지침에 따라 EcoRV, DraI, SmaI, PvuI, AluI, HaeIII 및 RsaI로 절단하였다. 절단된 DNA를 1.2% 아가로스 겔에 전기영동한 후, 약 300-1500 bp 크기의 DNA 단편만을 겔로부터 일루션(elution)하여 수득하였다. 이후, 수득된 DNA 단편을 표 2에 나타낸 2개의 어댑터(adapter; AP-11 및 AP-12, 각 50ng)와 T4 DNA 라이게이즈(ligase; Promega, 미국)를 이용하여 12℃에서 하룻밤 동안 라이게이션시켰다. 이 때 라이게이션 효율을 높이기 위해 AP-12 어댑터는 알칼라인 포스파타제(alkaline phosphatase, Promega, 미국)로 5’ 말단을 인산화하였으며, 라이게이션시의 반응용액의 조성은 다음과 같다: 1X 라이게이션 버퍼(Promega, 미국), 50ng AP11 어댑터, 50ng AP12 어댑터, 150ng DNA 단편, 3 Unit T4 라이게이즈(Promega, 미국).
어댑터 명 염기서열 서열번호
AP-11 5'-CTCTTGCTTAGATCTGGACTA-3' 73
AP-12 5'-TAGTCCAGATCTAAGCAAGAGCACA-3' 74
< 실시예 3> 초위성체를 포함하고 있는 DNA 단편의 선발 및 분리
<3-1> 마그네틱 비드 준비
마그네틱 비드(magnetic bead; SA-PMPs, Promega, 미국; 1 mg/ml) 0.6 ml를 마그네틱 분리기(magnetic stand; Promega, 미국)로 수집한 후 용액을 제거하였다. 여기에 0.5x SSC(Saline-Sodium Citrate) 버퍼 0.6 ml를 넣어 세척을 하고 다시 마그네틱 분리기로 수집한 후 용액을 제거하였다. 0.5x SSC 버퍼를 이용한 세척은 3회 반복하여 실시하였다. 세척한 마그네틱 비드에 0.5x SSC 버퍼 100 ㎕를 넣은 후 30분이내에 사용하였다.
<3-2> 혼성화
상기 실시예 2에서 제조한 라이게이션 산물에 증류수를 넣어 500 ㎕가 되도록 한 후 65℃에서 10분간 변성(denature)시켰다. 여기에 바로 비오틴(biotin)이 표지된 SSR 탐침 1.5 ㎕(20ng)와 20x SSC 버퍼 13 ㎕를 넣고 상온에서 10분간 방치하여 결합을 유도하였다. 혼성화에 사용된 8개의 SSR 탐침은 하기 표 3에 기재하였으며, SSR 탐침은 당업계에 공지된 통상의 방법에 따라 비오틴으로 표지하였다.
서열 서열번호
Biotin-(GA)20 75
Biotin-(AT)20 76
Biotin-(CA)20 77
Biotin-(AGC)15 78
Biotin-(GGC)15 79
Biotin-(AAG)15 80
Biotin-(AAC)15 81
Biotin-(AGG)15 82
혼성화 반응을 통하여 게놈 DNA 단편 중 상기 반복염기서열을 가지고 있는 DNA 단편들은 비오틴이 표지된 SSR 탐침들과 상보적 결합을 할 것이고, 이를 SSR 탐침-템플릿(template) 혼성체(hybrid)라고 한다.
<3-3> 템플릿의 분리
<3-1>에서 제조한 마그네틱 비드 용액을 <3-2>에서의 SSR 탐침-템플릿 혼성체 용액에 넣고 상온에서 10분간 방치시킨다. 반응용액에서 마그네틱 분리기로 SSR 탐침-템플릿 혼성체가 결합된 마그네틱 비드를 수집하고 상등액을 제거하였다. 상기 SSR 탐침-템플릿 혼성체가 결합된 마그네틱 비드를 0.1x SSC 300 ㎕로 4회 세척한 후 증류수 50 ㎕를 넣고 90℃에서 5분간 가열하여 하기 템플릿을 분리하였다.
<3-4> PCR 반응
<3-3>에서 분리한 템플릿에 대해 AP-11 어댑터를 프라이머로 이용하여 PCR 반응을 수행하였다. PCR 반응 혼합물(20㎕)의 조성은 다음과 같다: 250 ng 어댑터-라이게이션된 DNA, 10 pmol AP11 프라이머, 2 mM dNTP, 2 units Taq DNA 중합효소, 5 ㎕ 10× 완충용액. PCR 반응은 72℃에서 2분, 94℃에서 3분동안 가열한 후 94℃에서 30초; 56℃에서 30초; 및 72℃에서 1분을 24 싸이클(cycle)로 반복 수행하고, 마지막으로 72℃에서 10분의 조건으로 수행하였다.
이와 같은 방법으로 본 발명에서는 초위성체를 함유하고 있는 500개의 DNA 단편을 분리하였다.
< 실시예 4> 분리된 DNA 단편의 서열분석 및 프라이머 디자인
상기 실시예 3에서 분리된 초위성체를 함유하고 있는 DNA 단편들을 pGEM T-easy vector 벡터(Promega, 미국)에 클로닝하여 이들의 서열을 분석하였다. 염기서열 분석은 (주)솔젠트에 의뢰하여 수행하였다. 분석된 서열을 기초로 하여 5개 이상의 반복 유닛(repeat unit)을 포함하고 있는 단편만을 선발하였다. 반복 유닛을 포함하는 부분을 기준으로 하여 초위성체를 증폭할 수 있는 양 방향의 프라이머를 디자인하였다. 총 200쌍의 프라이머쌍을 디자인하였다(결과미도시).
< 실시예 5> SSR 마커의 선발
상기 실시예 4에서 디자인된 프라이머쌍 중에서 다양한 버섯 계통에서 다형성 변이를 많이 나타내는 SSR 프라이머 조합을 선발하기 위하여, 하기 표 4에 기재된 16점의 재배형 버섯 또는 버섯 품종에 대하여 PCR을 통한 DNA 프로파일링(profiling) 분석을 수행하였다.
기탁번호 기탁기관 수집국 (원산지) 형(type)
PO06 농촌진흥청 대한민국 Pleurotus Ostreatus Kummer
PO01 농촌진흥청 대한민국 Pleurotus Ostreatus Kummer
PO03 농촌진흥청 대한민국 Pleurotus Ostreatus Kummer
PO07 농촌진흥청 대한민국 Pleurotus Ostreatus Kummer
PO16 농촌진흥청 대한민국 Pleurotus Ostreatus Kummer
PO18 농촌진흥청 대한민국 Pleurotus Ostreatus Kummer
PO19 농촌진흥청 대한민국 Pleurotus Ostreatus Kummer
PO24 농촌진흥청 대한민국 Pleurotus Ostreatus Kummer
PO25 농촌진흥청 대한민국 Pleurotus Ostreatus Kummer
PO26 농촌진흥청 대한민국 Pleurotus Ostreatus Kummer
PO28 농촌진흥청 대한민국 Pleurotus Ostreatus Kummer
PO34 농촌진흥청 대한민국 Pleurotus Ostreatus Kummer
PO35 농촌진흥청 대한민국 Pleurotus Ostreatus Kummer
PO54 농촌진흥청 대한민국 Pleurotus Ostreatus Kummer
PO62 농촌진흥청 대한민국 Pleurotus Ostreatus Kummer
PO73 농촌진흥청 대한민국 Pleurotus Ostreatus Kummer
각각의 PCR 반응 혼합물 (20㎕)의 조성은 다음과 같다: 실시예 1의 방법에 의해 분리한 버섯 주형 DNA 40ng, 정방향 프라이머 0.2μM, 역방향 프라이머 0.6μM, 형광물질이 표지된 M13 프라이머(TGTAAAACGACGGCCAGT, 서열번호 83) 0.6μM, 1X PCR 반응액 (10mM Tris-HCl (pH 8.8), 1.5mM MgCl2, 50mM KCl, 0.1% Triton X-100), 1 unit DNA 중합효소. PCR 반응은 94℃에서 3분간 주형 DNA를 전변성시킨 후, 94℃에서 30초; 각 프라이머의 Tm(표 1 참조)에 해당하는 온도에서 30초; 및 72℃에서 45초의 조건으로 35회 반복한 후, 다시 94℃에서 30초; 53℃에서 45초; 및 72℃에서 45초의 조건으로 15회 반복한 후, 마지막으로 72℃에서 15분의 조건으로 수행하였다.
각기 다른 형광물질로 증폭된 PCR 산물 단편의 크기를 분석하기 위해 자동 염기서열 분석 장치 (ABI 3130 Genetic Analyzer, Applied Biosystems, 미국)를 이용하였다. 분석을 위하여, PCR 산물 1.5㎕, Hi-di 포름아미드(formamide) 9.2㎕, 내부 크기 표준시약(Internal Size Standard; Genescan-500 ROX) 0.3㎕을 혼합한 후 94℃에서 3분간 변성하여 분석에 사용하였다.
그 결과, 국내 및 국외에서 수집된 버섯 재배형 및 버섯 품종들에서 다형성을 나타내는 SSR 프라이머쌍 36쌍을 확인하여 GB-PO-001(서열번호 1과 2로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-006(서열번호 3과 4로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-011(서열번호 5와 6으로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-025(서열번호 7과 8로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-026(서열번호 9과 10으로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-028(서열번호 11과 12로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-039(서열번호 13과 14로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-050(서열번호 15와 16으로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-051(서열번호 17과 18로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-061(서열번호 19와 20으로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-064(서열번호 21과 22로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-076(서열번호 23과 24로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-079(서열번호 25와 26으로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-080(서열번호 27과 28로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-086(서열번호 29와 30으로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-094(서열번호 31과 32로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-097(서열번호 33과 34로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-102(서열번호 35와 36으로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-113(서열번호 37과 38로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-115(서열번호 39와 40으로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-117(서열번호 41과 42로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-124(서열번호 43과 44로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-128(서열번호 45와 46으로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-131(서열번호 47과 48로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-134(서열번호 49와 50으로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-135(서열번호 51과 52로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-138(서열번호 53과 54로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-149(서열번호 55와 56으로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-152(서열번호 57과 58로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-154(서열번호 59와 60으로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-157(서열번호 61과 62로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-171(서열번호 63과 64로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-172(서열번호 65와 66으로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-173(서열번호 67과 68로 표시되는 프라이머쌍), GB-PO-181(서열번호 69와 70으로 표시되는 프라이머쌍) 및 GB-PO-190(서열번호 71과 72로 표시되는 프라이머쌍)을 선별하였다(표 1 참조). 상기 36쌍의 프라이머에 의해 증폭된 PCR 단편의 각각의 크기는 다음 표 5와 같다.
기탁번호 프라이머 PO06 PO01 PO03 PO07 PO16 PO18 PO19 PO24
GB-PO-001 307 307 307 313 307 307 307 307
GB-PO-006 203 203 206 203 206 203 203 203
GB-PO-011 175 235 190 235 181 190 235 190
GB-PO-025 217 217 214 217 214 217 217 217
GB-PO-026 296 296 296 296 296 296 296 296
GB-PO-028 300 303 291 300 300 318 300 300
GB-PO-039 206 206 206 197 206 224 197 206
GB-PO-050 145 169 175 145 175 145 169 163
GB-PO-051 272 272 278 278 275 272 272 272
GB-PO-061 258 258 258 258 270 258 258 258
GB-PO-064 227 227 227 227 227 227 227 227
GB-PO-076 248 236 233 236 248 248 236 236
GB-PO-079 323 320 320 296 323 230 320 320
GB-PO-080 230 230 230 230 230 230 230 230
GB-PO-086 378 378 380 378 378 378 378 378
GB-PO-094 324 324 324 324 303 324 324 324
GB-PO-097 244 241 244 244 247 244 241 241
GB-PO-102 266 269 266 266 266 266 269 266
GB-PO-113 270 270 270 270 375 270 270 270
GB-PO-115 228 225 213 225 228 228 213 213
GB-PO-117 224 218 224 218 221 221 218 221
GB-PO-124 294 294 294 278 264 294 272 278
GB-PO-128 214 232 223 232 214 214 232 229
GB-PO-131 212 212 200 200 200 200 200 209
GB-PO-134 269 115 115 115 115 115 115 115
GB-PO-135 244 244 244 244 244 244 244 244/271
GB-PO-138 194 194 206 194 206 191 206 194
GB-PO-149 193 205 196 205 193 193 205 196
GB-PO-152 272 272 278 278 275 275 272 272
GB-PO-154 254 266 266 266 254 254 254 257
GB-PO-157 281 281 293 302 293 302 302 281
GB-PO-171 301 301 295 301 298 310 301 301
GB-PO-172 169 169 169 169 229 169 169 169
GB-PO-173 306 300 306 294 300 309 300 300
GB-PO-181 243 243 246 243 240 246 243 243
GB-PO-190 186 189 186 186 195 186 186 198
기탁번호 프라이머 PO25 PO26 PO28 PO34 PO35 PO54 PO62 PO73
GB-PO-001 307 307 307 307 307 307 307 307
GB-PO-006 203 206 203 206 203 203 206 203
GB-PO-011 190 181 190 175 190 166 175 166
GB-PO-025 217 214 217 214 217 217 214 217
GB-PO-026 293 296 296 296 296 296 296 296
GB-PO-028 297 300 300 300 318 303 300 303
GB-PO-039 224 206 206 206 224 206 206 191
GB-PO-050 145 169 175 163 145 157 163 163
GB-PO-051 272 275 272 272 272 272 272 272
GB-PO-061 258 270 258 258 258 258 258 258
GB-PO-064 227 227 227 227 227 227 212 209
GB-PO-076 248 248 236 236 248 242 236 236
GB-PO-079 230 323 320 320 230 323 320 320
GB-PO-080 230 230 230 233 230 230 233 230
GB-PO-086 378 378 378 378 378 378 378 378
GB-PO-094 324 303 324 303 324 324 303 324
GB-PO-097 244 247 241 241 244 241 241 241
GB-PO-102 266 266 266 269 266 266 269 269
GB-PO-113 270 270 270 270 270 270 270 270
GB-PO-115 228 228 213 225 228 213 225 228
GB-PO-117 221 221 221 224 221 221 224 221
GB-PO-124 294 264 300 294 294 294 294 294
GB-PO-128 214 214 229 214 238 229 229 229
GB-PO-131 200 200 209 212 200 209 212 212
GB-PO-134 115 115 115 115 115 115 115 115
GB-PO-135 244 244 244 244 244 244 244 244/271
GB-PO-138 191 206 194 191 191 194 191 206
GB-PO-149 193 193 196 196 193 193 196 193
GB-PO-152 275 275 272 272 275 272 272 272
GB-PO-154 254 254 257 266 254 263 254 263
GB-PO-157 302 293 281 293 302 281 293 281
GB-PO-171 310 298 301 298 310 301 298 298
GB-PO-172 169 229 169 169 169 169 169 169
GB-PO-173 309 294 300 309 309 294 300 294
GB-PO-181 246 240 243 246 246 243 246 243
GB-PO-190 195 195 198 195 195 195 195 195
<110> Rural Development Administration <120> SSR primer derived from Oyster Mushroom and use of there <160> 83 <170> KopatentIn 1.71 <210> 1 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-001 <400> 1 cgcaagctac aaacggac 18 <210> 2 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> revese primer of GB-PO-001 <400> 2 agcagcaagc acaagagc 18 <210> 3 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-006 <400> 3 tgtggcaaac ccaagttc 18 <210> 4 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-006 <400> 4 cccaaaggat gaggaagg 18 <210> 5 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-011 <400> 5 tcccataccc tgacatcg 18 <210> 6 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-011 <400> 6 atcatcaagc gccacaac 18 <210> 7 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-025 <400> 7 tgatcatggc gagtaggg 18 <210> 8 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-025 <400> 8 ggaactgtca gcagacgc 18 <210> 9 <211> 16 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-026 <400> 9 aatcgcatgg gctctg 16 <210> 10 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-026 <400> 10 ctgtccctcc gtgtacca 18 <210> 11 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-028 <400> 11 ctggagaatc gtagcccc 18 <210> 12 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-028 <400> 12 acaagcgctc ggaataca 18 <210> 13 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-039 <400> 13 tgtggatgtg atgtgatgtg 20 <210> 14 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-039 <400> 14 acgtccagcg tcgagtta 18 <210> 15 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-050 <400> 15 catccgatac agacccga 18 <210> 16 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-050 <400> 16 aggcatccca caacactg 18 <210> 17 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-051 <400> 17 catagggacg acagcgag 18 <210> 18 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-051 <400> 18 actgagcctt cagcacca 18 <210> 19 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-061 <400> 19 taacttgggc gcttgaaa 18 <210> 20 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-061 <400> 20 tggaacgcgt agacttgg 18 <210> 21 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-064 <400> 21 gttctgaggg ttgagggg 18 <210> 22 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-064 <400> 22 ccaaccacac tcttccca 18 <210> 23 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-076 <400> 23 tcgattgtca gattgttgga 20 <210> 24 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-076 <400> 24 cggagaagca gttggttg 18 <210> 25 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-079 <400> 25 acccagacga tttgggag 18 <210> 26 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-079 <400> 26 aggctggcgt ggaatact 18 <210> 27 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-080 <400> 27 cacccatgtg cctcagtc 18 <210> 28 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-080 <400> 28 tgtctatggg ttacggcg 18 <210> 29 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-086 <400> 29 catcttcgat gaaccgga 18 <210> 30 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-086 <400> 30 cgaagatgag ccagcaac 18 <210> 31 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-094 <400> 31 cgcgagacaa ttaaacgc 18 <210> 32 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-094 <400> 32 acagttcctg gagcccat 18 <210> 33 <211> 16 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-097 <400> 33 catggagaga gggcgg 16 <210> 34 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-097 <400> 34 cgtttcatcg ttcgctgt 18 <210> 35 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-102 <400> 35 tgtctatggg ttacggcg 18 <210> 36 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-102 <400> 36 tgcaaagcaa atcggaac 18 <210> 37 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-113 <400> 37 gttcatctga acgccgtc 18 <210> 38 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-113 <400> 38 cctatgacga ggggaagg 18 <210> 39 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-115 <400> 39 tggtagcagg ttgttggg 18 <210> 40 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-115 <400> 40 ccgctaagcc actgtttg 18 <210> 41 <211> 19 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-117 <400> 41 tcaaactcac gtggtacgc 19 <210> 42 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-117 <400> 42 tcacatatcc gccggtag 18 <210> 43 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-124 <400> 43 tgcgtttgct cggttaat 18 <210> 44 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-124 <400> 44 cgctactacg tcgatccg 18 <210> 45 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-128 <400> 45 tgattggttt gaatgggc 18 <210> 46 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-128 <400> 46 gcacgatgag gatgcagt 18 <210> 47 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-131 <400> 47 ctccctcctc cgtgtacc 18 <210> 48 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-131 <400> 48 cgtaacgttc gcttcctg 18 <210> 49 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer GB-PO-134 <400> 49 gagtgtgaag aatcggcg 18 <210> 50 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-134 <400> 50 gtgcactctg cctatcgc 18 <210> 51 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-135 <400> 51 aggagggggt gcttgata 18 <210> 52 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-135 <400> 52 tcctccgcct tctctacc 18 <210> 53 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-138 <400> 53 tatggaacgg tgcgaagt 18 <210> 54 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-138 <400> 54 gccgtcaaaa gggaactc 18 <210> 55 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-149 <400> 55 agtgcatatg cccgacac 18 <210> 56 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-149 <400> 56 cgtcgtagat gcaggctc 18 <210> 57 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-152 <400> 57 actgagcctt cagcacca 18 <210> 58 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse pimer of GB-PO-152 <400> 58 catagggacg acagcgag 18 <210> 59 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-154 <400> 59 gtcgtagcca gccatgag 18 <210> 60 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-154 <400> 60 agggtatctc gggtgcat 18 <210> 61 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-157 <400> 61 atggacgtgg tgttctgc 18 <210> 62 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-157 <400> 62 aaaccaagcc tacccagc 18 <210> 63 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-171 <400> 63 tctcgggcat cattcttg 18 <210> 64 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-171 <400> 64 acgtcagggt gtcaaacg 18 <210> 65 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-172 <400> 65 gcagaagttg cccaaaga 18 <210> 66 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-172 <400> 66 atgtccagcg gaagacct 18 <210> 67 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-173 <400> 67 atgaagtgtg agccgtgg 18 <210> 68 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-173 <400> 68 tgtccattca tgcgttca 18 <210> 69 <211> 17 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-181 <400> 69 ttattgtgaa gcccccg 17 <210> 70 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-181 <400> 70 gacatcggca gaaggtca 18 <210> 71 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> forward primer of GB-PO-190 <400> 71 tttccatttc cgttggtg 18 <210> 72 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> reverse primer of GB-PO-190 <400> 72 cagggggtga ttatgcaa 18 <210> 73 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> adaptor, AP-11 <400> 73 ctcttgctta gatctggact a 21 <210> 74 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> adaptor, AP-12 <400> 74 tagtccagat ctaagcaaga gcaca 25 <210> 75 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Biotin-(GA)20 <400> 75 gagagagaga gagagagaga gagagagaga gagagagaga 40 <210> 76 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Biotin-(AT)20 <400> 76 atatatatat atatatatat atatatatat atatatatat 40 <210> 77 <211> 40 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Biotin-(CA)20 <400> 77 cacacacaca cacacacaca cacacacaca cacacacaca 40 <210> 78 <211> 45 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Biotin-(AGC)15 <400> 78 agcagcagca gcagcagcag cagcagcagc agcagcagca gcagc 45 <210> 79 <211> 45 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Biotin-(GGC)15 <400> 79 ggcggcggcg gcggcggcgg cggcggcggc ggcggcggcg gcggc 45 <210> 80 <211> 45 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Biotin-(AAG)15 <400> 80 aagaagaaga agaagaagaa gaagaagaag aagaagaaga agaag 45 <210> 81 <211> 45 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Biotin-(AAC)15 <400> 81 aacaacaaca acaacaacaa caacaacaac aacaacaaca acaac 45 <210> 82 <211> 45 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Biotin-(AGG)15 <400> 82 aggaggagga ggaggaggag gaggaggagg aggaggagga ggagg 45 <210> 83 <211> 18 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> M13 primer <400> 83 tgtaaaacga cggccagt 18

Claims (7)

  1. 서열번호 1 내지 서열번호 72로 이루어진 군에서 선택되는 2개의 염기서열을 갖는 SSR(simple sequence repeat) 프라이머쌍.
  2. 제1항에 있어서, 서열번호 1과 2로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 3과 4로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 5와 6으로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 7과 8로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 9와 10으로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 11과 12로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 13과 14로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 15와 16으로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 17과 18로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 19와 20으로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 21과 22로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 23과 24로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 25와 26으로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 27과 28로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 29와 30으로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 31과 32로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 33과 34로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 35와 36으로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 37과 38로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 39와 40으로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 41과 42로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 43과 44로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 45와 46으로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 47과 48로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 49와 50으로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 51과 52로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 53과 54로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 55와 56으로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 57과 58로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 59와 60으로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 61과 62로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 63과 64로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 65와 66으로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 67과 68로 표시되는 프라이머쌍; 서열번호 69와 70으로 표시되는 프라이머쌍 및 서열번호 71과 72로 표시되는 프라이머쌍으로 이루어진 군에서 선택되는 SSR 프라이머쌍.
  3. 제1항 또는 제2항에 있어서, 버섯(Oyster Mushroom; Pleurotus Ostreatus Kummer)로부터 유래된 것을 특징으로 하는 SSR 프라이머쌍.
  4. (a) 버섯로부터 게놈 DNA를 추출하는 단계;
    (b) 추출된 게놈 DNA를 주형으로 하고 제1항 또는 제2항의 SSR 프라이머쌍을 이용하여 PCR을 수행하는 단계; 및
    (c) PCR 산물을 크기별로 분리하는 단계를 포함하는 버섯의 DNA 다형성 검출 방법.
  5. (a) 버섯 및 대조군 버섯 품종으로부터 게놈 DNA를 추출하는 단계;
    (b) 추출된 각 게놈 DNA를 주형으로 하고 제1항 또는 제2항의 SSR 프라이머쌍을 이용하여 PCR을 수행하는 단계;
    (c) 각 PCR 산물을 크기별로 분리하는 단계; 및
    (d) 상기 버섯 및 대조군 버섯 품종의 크기별 분리 결과를 비교하는 단계를 포함하는 버섯의 품종 동정 방법.
  6. 제1항 또는 제2항의 SSR 프라이머쌍을 포함하는 버섯의 DNA 다형성 검출용 키트.
  7. 제1항 또는 제2항의 SSR 프라이머쌍을 포함하는 버섯의 품종 동정용 키트.
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