상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 서열번호:5의 아미노산서열을 포함하는, 인간 4-1BB 분자에 대해 특이성이 있는 인간화 모노클로날 폴리펩티드를 제공한다.
본 발명은 서열번호:40 및 서열번호:42의 아미노산 서열을 포함하는, 인간 4-1BB 분자에 대해 특이성이 있는 인간화 모노클로날 폴리펩티드를 제공한다.
또한 본 발명은 상기 인간화 모노클로날 폴리펩티드를 유효성분으로 포함하는 자가면역질환 치료용 약학조성물 및 면역억제용 약학조성물을 제공한다.
이하, 본 발명을 상세히 설명한다.
본 발명에서는 중쇄 가변영역(heavy chain variable region, VH), 링커 및 경쇄 가변영역(light chain variable region, VL)에 해당하는 서열번호: 5 의 아미노산서열을 포함하고, 인간 4-1BB 분자에 대해 특이성이 있으며, 항-h4-1BB ScFv(single-chain fragment variable)형태인 인간화 모노클로날 폴리펩티드 Hu4785-2를 제공한다.
본 발명의 인간화 모노클로날 폴리펩티드는 중쇄 및 경쇄가 서열번호: 1 및 2의 아미노산 서열을 갖는 4-1BB에 대한 마우스 4785 모노클로날 항체를 인간화함으로써 제조할 수 있으며, 구체적으로 가변영역의 항원결합부위인 CDRs (complementarity determining regions) 서열 및 정준 잔기(canonical residue)는 마우스 단일클론항체의 서열과 일치하고, 프레임워크 영역(framework region, FR)의 서열 중 중쇄와 경쇄 사이에 존재하는 서열은 마우스 항체의 것과 일치하고, 특이적 서열은 인간 항체의 것과 일치하고, 용매 표출 잔기(solvent-exposed residue)는 마우스 항체의 것과 일치하도록 고안된 것이다.
상기와 같이 제조된 본 발명의 인간화 모노클로날 폴리펩티드들 중에서 인간의 4-1BB와 친화도가 가장 높은 것으로 나타난 Hu4785-2는 서열번호: 5의 아미노산 서열을 가지며, 이 아미노산 서열은 서열번호: 6의 염기서열에 의해 암호화될 수 있고, 본 발명의 인간화 모노클로날 폴리펩티드 Hu4785-2를 생산하는 세포주 TG1/Hu4785-2는 2002년 11월 12일자로 생명공학연구소 유전자은행(KCTC)에 기탁번호 제 KCTC 10365BP 호로서 기탁하였다.
또한, 본 발명은 상기 Hu4785-2 모노클로날 폴리펩티드를 암호화 하는 DNA 염기서열을 제공하며, 바람직하게는 서열번호: 6의 염기서열을 제공한다.
그리고, 본 발명은 인간화 모노클로날 폴리펩티드 Hu4785-2를 암호화하는 플라스미드 Hu4785-2/pCANTAB 5E(기탁번호: KCTC 10365BP)를 제공한다.
본 발명의 ScFv 형태인 인간화 모노클로날 폴리펩티드 Hu4785-2는 4-1BB 분자와의 친화도가 마우스 4785보다 약 1000배정도 높으며, 인간화된 ScFv는 경쟁적 ELISA 실험에서 원래의 모노클로날 항체와 같은 생물학적 효과를 나타냄으로써, 이를 유효성분으로 하는 조성물은 4-1BB와 4-1BB 리간드의 상호작용을 막을 수 있어, 장기이식 또는 자가면역질환에서 자기를 인지하는 자기항원에 의해 활성화된 세포독성 T 세포를 억제하는데 적용할 수 있다.
ScFv 형태의 인간화 모노클로날 폴리펩티드는 VH, 링커(linker), VL이 연결되어 있는 형태이고, ScFv는 뉴트랄 링커(neutral linker)로 인위적으로 연결되어있어서 한 가닥의 폴리펩티드로 발현되고, 대부분의 VH-Linker-VL ScFv 단백질은 15개의 아미노산링커인 (Gly4Ser)3를 가지고 있다. 이러한 유연 펩티드링커 (flexible peptide linker)는 VH 사슬의 카르복시말단(carboxy-terminus)과 VL 사슬의 아미노말단(amino terminus) 사이에 3.5nm 거리의 브릿지(bridge)를 형성하도록 특별히 고안된 것이다. 이러한 구조는 사슬간 페어링(chain pairing)을 촉진시키고 두 개의 사슬이 각각 발현되었을 때 발생하는 응집(aggregation)이나 리폴딩(refolding)을 최소화시킬 수 있다. (Gly4Ser)3잔기를 가지고 있는 ScFv는 친화도(affinity)와 안정성(stability)의 면에서 원래의 항체와 같다.
이에 항체의 불변영역(Constant region)을 연결하여 중쇄사슬 2개 및 경쇄사슬 2개가 연결된 H2L2 형태의 완전한 항체 형태를 제조함으로써, 그 효과를 극대화 시킬 수 있다.
또한 본 발명은 서열번호: 40 및 서열번호: 42의 아미노산서열을 포함하고, 인간 4-1BB 분자에 대해 특이성이 있으며, 항-h4-1BB H2L2 형태를 갖는 인간화 모노클로날 폴리펩티드 Hu4785-2H/Hu4785-2K를 제공한다.
본 발명의 인간화 모노클로날 폴리펩티드 Hu4785-2의 VH에 리더서열과 인간 IgG1의 불변영역을 연결시켜 진핵세포 발현벡터 내로 서브클로닝하여 제작한 Hu4785-2H/pcDNA는, 진핵세포주에서 발현시 Hu4785-2H를 생산하고, 이 폴리펩티드는 서열번호: 40의 아미노산 서열을 가지고 서열번호: 41의 염기서열에 의해 암호화된다.
본 발명의 인간화 모노클로날 폴리펩티드 Hu4785-2H를 생산하는 플라스미드 Hu4785-2H/pcDNA를 갖는 세포주 XL-1 Blue/Hu4785-2H는 2003년 3월 6일자로 생명공학연구소 유전자은행(KCTC)에 기탁번호 제 KCTC 10440BP 호로서 기탁하였다.
본 발명의 인간화 모노클로날 폴리펩티드 Hu4785-2의 VL 리더서열과 인간 카파사슬서열을 연결시켜 진핵세포 발현벡터 내로 서브클로닝하여 제작한 Hu4785-2K/pcDNA는, 진핵세포주에서 발현시 Hu4785-2K를 생산하고, 이 폴리펩티드는 서열번호: 42의 아미노산 서열을 가지고, 서열번호: 43의 염기서열에 의해 암호화된다.
본 발명의 인간화 모노클로날 폴리펩티드 Hu4785-2K를 생산하는 플라스미드 Hu4785-2K/pcDNA를 갖는 세포주 XL-1 Blue/Hu4785-2K는 2003년 3월 6일자로 생명공학연구소 유전자은행(KCTC)에 기탁번호 제 KCTC 10441BP 호로서 기탁하였다.
또한, 본 발명은 Hu4785-2H/Hu4785-2K 모노클로날 폴리펩티드를 암호화하는 DNA 염기서열을 제공하며, 바람직하게는 서열번호: 41 및 서열번호: 43의 염기서열을 제공한다.
그리고, 본 발명은 인간화 모노클로날 폴리펩티드 Hu4785-2를 포함하고 항체 중쇄 불변영역을 발현하기 위한 플라스미드 Hu4785-2H/pcDNA (기탁번호: KCTC 10440BP) 및 인간화 모노클로날 폴리펩티드 Hu4785-2를 포함하고 항체 경쇄 불변영역을 발현하기 위한 플라스미드 Hu4785-2K/pcDNA (기탁번호: KCTC 10441BP)를 제공한다.
상기 H2L2 형태의 인간화 모노클로날 폴리펩티드 Hu4785-2H/Hu4785-2K를 유효성분으로 함유하는 조성물은 장기이식 또는 자가면역질환에서 자기를 인지하는 자기항원에 의해 활성화된 세포독성 T 세포를 억제하는데 적용할 수 있다.
ScFv는 결합부위가 한개 이지만, H2L2 형태는 결합부위가 2개라서 더 효과적인 결합이 일어나며, ScFv 형태는 인간의 생체에 존재하지 않는 형태이므로, 생체에 존재하는 H2L2 형태가 항원성이 더 낮다. 그리고 인간화된 Hu4785-H2L2의 불변부위(constant region)의 이형(isotype)인 IgG1은 세포에 결합되고 나서 보체(complement)를 고정시키므로 Hu4785-H2L2 항체가 결합한 세포독성 T 세포를 죽이는 반응이 일어난다. 이것은 장기이식 또는 자가면역질환에서 자기를 인지하는 자기 항원에 의해서 활성화된 세포독성 T 세포를 특이적으로 사멸시킴으로서 장기이식 거부반응과 자가면역반응의 원인이 되는 자기반응세포독성 T 세포(self reactive cytotoxic T cell)를 완전히 제거할 수 있다. 그러므로 H2L2 형태로의 전환이 바람직하다.
그러므로, 본 발명의 인간화 모노클로날 폴리펩티드들은 인간 4-1BB에 대한 결합 친화도가 높으면서 인간의 항체와 유사한 서열을 가지므로 자가면역 질환의 치료제 또는 장기이식 거부반응 등에 대한 면역억제제로서 부작용 없이 효과적으로 사용될 수 있다.
본 발명은 인간화 모노클로날 폴리펩티드 Hu4785-2 또는 Hu4785-2H/Hu4785-2K를 유효성분으로 포함하는 자가면역질환 치료용 약학조성물을 제공한다.
또한, 본 발명은 인간화 모노클로날 폴리펩티드 Hu4785-2 또는 Hu4785-2H/Hu4785-2K를 유효성분으로 포함하는 장기 이식시 거부반응 방지 및 치료를 위한면역억제용 약학조성물을 제공한다.
상기 자가면역질환은 류마티스 관절염, 만성염증성관절염, 루퍼스성 홍진(lupus erythematosus), 쇼그랜증후군, 자가면역으로 인한 갑상선염 (thyroiditis)과 같은 갑상선질환, 자가면역 당뇨병 등을 포함한다.
이러한 목적으로, 본 발명의 인간화 모노클로날 폴리펩티드를 유효성분으로 포함하는 조성물은 약학적 조성물의 제조에 통상적으로 사용하는 적절한 담체, 부형제 및 희석제를 더 포함하여 자가면역질환의 치료용 또는면역억제용 약학조성물로 제조될 수 있다.
본 발명의 인간화 모노클로날 폴리펩티드를 포함하는 조성물에 포함될 수 있는 담체, 부형제 및 희석제로는, 락토즈, 덱스트로즈, 수크로스, 솔비톨, 만니톨, 자일리톨, 에리스리톨, 말티톨, 전분, 아카시아 고무, 알지네이트, 젤라틴, 칼슘 포스페이트, 칼슘 실리케이트, 셀룰로즈, 메틸 셀룰로즈, 미정질 셀룰로스, 폴리비닐 피롤리돈, 물, 메틸히드록시벤조에이트, 프로필히드록시벤조에이트, 탈크, 마그네슘 스테아레이트 및 광물유를 들 수 있다.
본 발명의 약학조성물은 통상적으로 사용되는 붕해제, 감미제, 활택제, 향미제 등을 추가로 포함할 수 있으며, 통상적인 방법에 의해 경구 투여용 제제 또는 비경구 투여용 제제와 같은 단위 투여형 또는 수회 투여형 약제학적 제제로 제형화될 수 있다.
본 발명에 따른 인간화 모노클로날 폴리펩티드를 포함하는 조성물은, 각각 통상의 방법에 따라 산제, 과립제, 정제, 캡슐제, 현탁액, 에멀젼, 시럽, 에어로졸등의 경구형 제형, 외용제, 좌제 및 멸균 주사용액의 형태로 제형화하여 사용될 수 있다.
본 발명의 인간화 모노클로날 폴리펩티드의 사용량은 사용목적, 환자의 나이, 성별, 체중에 따라 달라질 수 있으나, 0.01 내지 5mg/kg, 바람직하게는 0.1 내지 0.5 mg/㎏의 양을 일일 1회 내지 수회 투여할 수 있다. 또한 특정 환자에 대한 투여용량 수준은 사용될 특정 항체, 투여경로, 투여시간,배 설율, 건강상태, 질환의 중증도, 성별, 체중, 나이, 식이 등에 따라서 증감될 수 있다. 따라서, 상기 투여량은 어떠한 면으로든 본 발명의 범위를 한정하는 것은 아니다.
이하 하기 실시예에 의하여 본 발명을 좀더 상세하게 설명하고자 한다. 단. 하기 실시예는 본 발명을 예시하기 위한 것일 뿐 본 발명의 범위가 이들만으로 한정되는 것은 아니다.
실시예 1: 4-1BB의 제조
(단계 1) 하이브리도마 세포주 제조
사람의 4-1BB 분자를 코딩하는 cDNA(울산대 면역제어연구소, 권병세교수)와 글루타치온 S 트랜스퍼라제(GST) 중 글루타치온이 결합하는 부위를 코딩하는 DNA(Pharmacia LKB Biotechnology사)를 결합시켜서 pGEX3 발현벡터(Pharmacia LKB Biotechnology사)를 제작하였다. human 4-1 BB의 세포외 부위와 GST를 결합시켜서 pGEX3에 넣었다. 이 벡터로 대장균(Top1, Stratagene사)을 형질 전환시킨 후 형질전환된 대장균의 단일 콜로니(colony)를 1X LB에 접종한 다음 37℃에서 12시간 진탕배양하였다. 이 배양액을 1× LB 100분의 1 부피로 접종하고 37℃에서 3시간 동안 진탕배양하였다. 여기에 0.1mM의 IPTG를 처리하고, 25℃에서 5시간동안 진탕배양하여 4-1BB-GST 융합단백질의 발현을 유도한 다음 배양액을 글루타치온 세파로즈-4B 컬럼(Pharmacia LKB Biotechnology사)에 넣고 용출완충액인 0.5M 글리신-HCl으로 용출시킴으로써 4-1BB-GST 융합단백질을 정제하였다.
(단계 2) 면역
20㎍의 4-1BB-GST 융합단백질을 0.1㎖의 완전 프로인트 보조제(Freund complete adjuvant)와 섞어서 생후 4 내지 8주된 Balb/c 마우스의 복강 내에 주사하여 최소면역을 시켰다. 이 후 20㎍의 4-1BB-GST 융합단백질을 0.1㎖의 불완전 프로인트 보조제(Freund incomplete adjuvant)와 섞어서 3주 간격으로 2차례 복강내에 주사하여 면역화시켰다. 면역화시킨 최종일로부터 3일 후에 꼬리로부터 소량의 피를 채혈하여 효소면역 검정법에 의해 원하는 항체의 역가를 측정하였다, 면역가가 일정수준 이상이 되면 마우스로부터 비장을 적출하여 비장세포를 얻어 융합에 사용하였다.
(단계 3) 세포융합
면역화된 마우스로부터 얻은 비장세포를 SP2/0-Ag14 골수종 세포(ATCC CRL 1581)와 1:2로 혼합하고, 50% 폴리에틸렌글리콜 4000(Gibco BRL사)을 사용하여 융합시켰다(Mishell and SHiigi,Seledted Methods in Cellular Immunology,W. H.Freeman Company, 1980).
하이브리도마 세포주를 선별하기 위해, 융합시킨 세포 혼합물을 HAT 배지(15% 송아지 태아 혈청, 0.1mM 하이포크산틴, 0.4μM 아미노프테린, 16μM 티미딘이 보강된 RPMI 1640 배지)내에 재현탁시킨 다음 3 ×107세포/㎖의 농도로 96웰 마이크로 배양 트레이에 투입하여 5% CO2를 함유하는 37℃의 세포 배양기에서 배양하였다. 골수종세포 및 융합되지 않은 비장세포는 HAT 배지에서 잘 성장할 수 없으므로, 상기 배지에서 성장하는 세포는 융합이 이루어진 세포로 생각할 수 있다. 6, 7, 8일 후에 세포배양액의 1/2를 새로운 세포배양액으로 대체시켰다. 세포 증식 여부를 역상현미경을 이용하여 관찰하여 세포가 충분히 자랐을 때 96웰 마이크로 배양트레이로부터 항체를 포함하고 있는 상층액을 취하여 ELISA법을 수행하였다.
(단계 4) 하이브리도마 세포주 선별
4-1BB-GST 융합단백질을 인산염 완충액(PBS, pH 7.2)에 희석하여 200ng/0.1㎖의 농도로 ELISA 플레이트에 코팅시켰다. 코팅이 완료된 플레이트를 인산염 완충액으로 여러 번 씻고 난 후, 1% 소혈청 알부민이 포함된 인산염 완충액을 플레이트에 가하여 1시간 동안 방치하고 인산염 완충액으로 여러번 씻은 다음, 상기에서 얻은 세포 상층액을 넣고 2시간 동안 반응시켰다. 반응이 완료된 플레이트를 인산염 완충액으로 다시 여러 번 씻고 알카라인 포스파타제가 결합된 염소 항-마우스면역 글로불린(Southern Biotech사)을 1000배 희석하여 0.1㎖의 양으로 첨가하였다. 2시간 방치 후 인산염 완충액으로 여러 번 씻고, 기질(p-니트로페닐 인산 이나트륨염을 탄산염 완충액에 녹여서 1㎎/㎖로 만든 용액, pH 9.6) 0.1㎖을 첨가하여 실온에서 10분간 보존하였다. 이후 자동 마이크로 플레이트 기록계로 반응을 측정하고, 4-1BB 분자에 특이하게 작용하는 항체를 생성하는 하이브리도마 세포주를 4785(기탁번호:KCTC 0952BP)로 명명하였다.
(단계 5) 하이브리도마 세포주를 이용한 항체의 제조
상기 단계 4에서 제조된 4785 세포주 1 ×107개를 배양액에서 증식시킨 후 프리스테인(pristane : 2,6,10,14-테트라메틸펜타데칸, Sigma사) 0.5㎖로 미리 처리한 Balb/c 마우스의 복막에 주입하고 10일 후에 복수액을 수집하였다. 이 복수액을 프로테인-A 세파로즈 컬럼(Pharmacia사)을 이용하여 친화 크로마토그래피를 수행하여 모노클로날 항체를 분리하였다. 이 때 항체 생성율은 1㎖ 복수액 당 l㎎이었다.
항체 분석키트를 사용하여 측정한 결과 제조된 모노클로날 항체는 IgG1인 것으로 나타났으며 카파 경사슬(kappa light chain)의 이형(isotype)을 갖고 있음을 확인하였다.
실시예 2 : 생쥐의 모노클로날 항체 유전자의 클로닝
(단계 1) 4785 세포주의 mRNA 추출
2 ×108개의 4785 세포에서 총 RNA를 다음과 같은 방법으로 추출하였다. 먼저, 세포 펠렛(pellet)에 트리퓨어 분리시약(TriPure Isolation Reagent, Sigma사)을 처리하고 페놀/클로로포름으로 1회 추출하였다. 상층액에 이소프로판올을 처리하여 RNA를 침전시키고 75% 에탄올로 2회 세척한 후에 DEPC(Sigma사)를 처리한 증류수에 녹여 총 RNA를 수득하였다. 수득한 총 RNA에서의 mRNA 추출은 다이날비드(Dynalbeads) mRNA 정제 키트(DYNAL사)를 사용하여 mRNA를 분리, 정제하였다.
(단계 2) 4785 세포주의 cDNA 라이브러리 제작
4785세포주의 cDNA 라이브러리 제작을 위해서 ZAP-cDNA 합성 키트(STRATAGENE사) 및 ZAP-cDNA 기가팩 III 골드 클로닝 키트(Gigapack III Gold Cloning Kit, STRATAGENE사)를 사용하였다.
상기 단계 1에서 수득된 mRNA 5㎍, XhoI 인지서열을 갖는 서열번호: 19의 링커 프라이머 2.8㎍, RNase H-역전사효소(40U, Stratagene사), 메틸 뉴클레오타이드 혼합물(1.25mM) 및 RNase 억제제(40U, Stratagene사)를 37℃에서 1 시간 동안 반응시켜 첫 번째 가닥을 합성하였다. 이어서, RNase H(3U)와 DNA 중합효소 I(99U, Stratagene사)를 이용하여 16℃에서 2시간 30분 동안 반응시켜 두 번째 가닥을 합성하였다. 반응 후 페놀-클로로포름으로 추출하고 에탄올을 이용하여 농축시킨 다음, 70% 에탄올로 세척한 후 침전물을 물에 녹이고 울트라프리-프로바인드 필터(Ultrafree-Probind filter, SIGMA사)를 사용하여 단백질을 제거하고 클레나우 단편(Klenow fragment)과 dNTP를 이용하여 3' 및 5' 말단을 평활말단으로 만들고 울트라프리-프로바인드 필터를 이용하여 단백질을 제거하였다. 이어서, rATP 2mM, T4 DNA 리가제(2U)를 첨가하고 4℃에서 12 시간 동안 반응시킨 다음, 70℃에서 30분 동안 가열하여EcoRI 효소를 불활성화시켰다. 다시 rATP 2mM, T4 폴리뉴클레오타이드 키네이즈(10U)를 첨가하고, 37℃에서 30분 동안 반응시킨 다음 70℃에서 30분 동안 불활성화시켜EcoRI 말단을 키네이즈화시켰다. 이어서,XhoI을 이용하여 절단한 다음, 울트라프리-프로바인드 필터를 이용하여 단백질을 제거하여 cDNA를 수득하였다. 에티디움 브로마이드 플레이트 분석을 이용하여 cDNA의 양을 결정하였다. cDNA 100ng에 Uni-ZAP XR 벡터(Stratagene사) 125㎍, rATP(1mM) 및 T4 DNA 리가제(2U)를 혼합하여 12℃에서 12시간 동안 반응시켰다. 80℃에 보관하던 패키징 추출물(packaging extract, Stratagene사)을 꺼내어 녹기 시작하면 상기 연결된 DNA 2㎕를 넣고 거품이 생기지 않게 조심하면서 피펫을 이용하여 혼합한 다음, 상온에서 2시간 동안 반응시켰다. 여기에 SM 완충액(100mM NaCl, 10mM MgSO4. 7H2O, 50mM Tris-HCl pH 7.5, 0.01% gelatin) 500㎕, 클로로포름 20㎕을 넣고 혼합한 다음, 원심분리하여 상층액을 새 튜브에 옮겼다.
숙주 세포로는 대장균 XL-1 블루 MRF'(Stratagene사)를 이용하고, LB/테트라사이클린(50㎍/㎖) 플레이트에 도말하여 얻은 단일 콜로니를 10mM 황산마그네슘과 0.2% 말토즈를 포함하는 LB 배지에 접종하였다. 이를 37℃에서 OD600이 1.0이 넘지않게 200rpm으로 진탕하면서 키웠다. 이 배양액을 500×g에서 10분 동안 원심분리하면서 배지를 제거하고 세포 펠렛에 10mM 황산마그네슘을 가하여 OD600에서 0.5가 될 때까지 희석하였다. 이렇게 준비된 숙주세포는 4℃에 저장하면 48시간 동안 사용 가능하다.
숙주세포 200㎕에 1/10으로 희석한 패키징 반응산물(pakaged reaction)을 1㎕ 넣고, 37℃에서 15분 동안 부착시켰다. 여기에 48℃로 식힌 상층 아가(top agar)를 3㎖ 넣고 볼텍싱(vortexing)한 후에 예열한 LB 아가 플레이트에 즉시 부은 다음 37℃에서 10시간 동안 키운 후 플라크 수를 세어 ㎖당 pfu로 계산하였다. 그 결과 1.9 ×105pfu를 얻었다.
(단계 3) 중쇄 유전자와 카파 사슬 유전자의 스크리닝
(단계 2)에서 얻은 형질전환 세포주를 100mm 플레이트에 각각 약 200-300개의 플라크가 형성되도록 플레이팅하고 나일론 막으로 옮겨 UV 교차연결(crosslinking)하였다. 이 막을 이용하여 하이브리다이제이션을 실시하였다. 이 때 중쇄(heavy chain)와 경쇄(light chain) 카파(kappa) 사슬의 스크리닝을 위한 프로브로는 PCR로 클로닝한 각각의 불변영역의 단편을 사용하였다. 자세하게는, 중쇄 프로브를 얻기 위한 PCR 프라이머는 마우스 IgG1의 cDNA의 CH1 영역을얻기 위해서 서열번호 8의 G-1U: 5'-gaactctggatccctgtcca-3' 서열번호 9의 G-1D: 5'-tgcaaggcttacaaccacaa-3'를 사용했으며, 이를 이용하여 200bp의 PCR 산물을 얻어서 프로브로 사용하였다. 경쇄 프로브는 마우스 카파 사슬 cDNA의 CH1 영역을 얻기 위해서 서열번호 10의 K-1U: 5'- atcttcccaccatccagtga -3' 및 서열번호 11의 K-1D: 5'- cgtccttggtcaacgtgag -3'를 사용했으며, 이를 이용하여 200bp의 PCR 산물을 얻어서 프로브로 사용하였다. ECL 다이렉트 핵산 라벨링 및 검색 키트(direct nucleic acid labelling and detection kit)를 사용하여 하이브리다이제이션을 수행하였고, 이를 통해 수득된 클론들을 Exassit/SOLR 시스템을 사용하는 생체내 절제(in vivo excision)를 통하여 플라스미드로 전환시키고 서열을 확인하였다. 중쇄 유전자 및 카파 사슬의 아미노산 서열은 각각 서열번호: 38 및 39에 나타내었다.
실시예 3: 4785 클론의 중쇄가변영역(VH)과 경쇄가변영역(VL)의 인간화
인간 항체 유전자 중에서 마우스의 단백질을 코딩하는 4785 클론의 가변 영역의 염기서열과 가장 유사한 것을 데이터 베이스 검색을 통하여 선별하고 이 염기서열을 4785의 염기서열과 비교하여 조합 항체 라이브러리의 제작에 필요한 PCR 주형 겸 프라이머를 제작하는데 사용하였다.
4785 클론의 중쇄 및 경쇄의 CDR과 FR 영역의 위치를 결정하고 인간의 아미노산 잔기로 바꿀 것인지 마우스의 잔기를 그대로 사용할 것인지는 하기 표 1에 따라 결정하였다.
마우스 잔기 |
설 명 |
결 정 |
CDR |
Ig blast(http://www.ncbi.nlm.nih.gov) |
마우스 |
정준잔기(canonical residues) |
초티아 정준 지정 (Chothia canonical assignment)(http://www.cryst.bbk.ac.uk/~ubcg07s/) |
마우스 |
사슬간 패킹 잔기(Interchain packing residue) |
|
마우스 |
N-글리코실래이션 부위(N-glycosylation sites) |
|
인간 |
특이적 프레임워크 잔기(Unusual framework residues) |
CDR 잔기의 5-6 ?? 내에 있는 모든 잔기 |
마우스 |
모든 다른 잔기들 |
인간 |
용매-노출 잔기(Solvent-exposed residues) |
CDR, 정준, 사슬간 잔기들 |
마우스 |
모든 다른 잔기들(http://imgt.cines.fr:8104/textes/IMGTrepertoire.html) |
인간 |
중쇄 및 경쇄의 가변영역 서열 중에서 항원과 직접 결합하는 부분인 CDR 영역은 마우스의 서열로 그대로 두고, 정준 잔기(canonical residue)는 마우스의 서열, FR 영역에 존재하는 서열이라도 중쇄와 경쇄의 사이에 존재하는 서열은 마우스, 특이서열은 인간의 서열, 용매 표출 잔기는 마우스의 잔기로 하였다.
이를 근거로 하여 4785 클론의 인간화 뉴클레오타이드 서열을 결정하였으며 이러한 법칙에 따라 얻어진 아미노산 서열과 인간 주형의 아미노산 서열을 비교하여 도 1 및 2에 나타내었다.
실시예 4: 인간화된 4785 VH 및 VL 서열 결정
조합 항체 라이브러리를 만들기 위한 삽입체를 준비하기 위하여 4785 클론의 중쇄와 경쇄의 염기서열과 인간 주형의 염기서열을 비교해서 얻은 아미노산 서열을근거로 하여 서열번호: 11 내지 23의 서열을 갖는 4785 VH 조합 프라이머 및 서열번호: 24 내지 34의 서열을 갖는 4785 VL 조합 프라이머를 제작하였다.
이렇게 제작된 프라이머를 주형 겸 프라이머로 사용하여 도 3 및 4에 제시된 바와 같은 순서로 VH 영역 및 VL 영역의 PCR을 수행하였다. PCR 반응은 전-변성 94℃, 5분; 94℃, 1분; 55℃, 1분; 72℃, 2분; 후-신장 72℃, 7분으로 35회 실시하였다. 이렇게 얻어진 PCR 산물을 정제 분리(퀴아젠 젤 추출 키트, Qaigen사)로 분리하여 인간화 VH 및 VL의 PCR 산물을 얻었으며, 이의 각 서열은 서열번호 3 및 4에 나타내었다.
실시예 5: 조합 VH와 조합 VL의 연결 및 제한효소 부위의 첨가
PCR로 얻은 VH와 VL을 링커 DNA를 이용해서 단일가닥으로 연결시키고 5'- 및 3'- 에 효소 부위를 첨가하기 위해 중쇄 산물 50ng, 경쇄 산물 50ng, 서열번호: 35의 4785 VH-Sfi-U(5μM) 1㎕, 서열번호: 36의 4785 VL-NotI-D(5μM) 1㎕, 서열번호: 37의 링커 프라이머 2㎕, 10 ×PCR 완충액 5㎕, dNTP 혼합물 2.5㎕, 25mM MgCl25㎕ 및 ExTag(5U, Takara사) 1㎕을 마이크로 원심분리 튜브에 넣고 증류수로 총량을 50㎕으로 조절하여 PCR을 수행하였다. PCR 반응은 전-변성 94℃, 5분; 94℃, 1분; 55℃, 1분; 72℃, 2분; 후-신장 72℃, 7분으로 35회 실시하였다. 이렇게 얻어진 PCR 산물(4785 ScFv DNA)을 퀴아젠 젤 추출 키트(QIAGEN사)로 분리하였다.
실시예 6: ScFv DNA 삽입체의 제한효소 처리 및 정제
(단계 1)SfiI 절단반응
정제된 ScFv DNA(상기 실시예 5 에서 얻어진 ScFv DNA) 1㎍, 10 ×Sfi 반응 완충액(Roche사) 8.5㎕, 제한효소SfiI(10U/㎕, Roche사) 2㎕ 및 3차 증류수를 총량이 85㎕가 되도록 하는 양으로 혼합하고 85㎕의 미네랄 오일을 첨가하여 50℃에서 4 시간 동안 반응시켰다.
(단계 2)NotI 절단반응
단계1에서 준비된SfiI으로 절단된 ScFv에 3M 염화나트륨 3.6㎕, 10 ×완충액(NotI 반응 완충액 : 50mM Tris-HCl, 100mM NaCl, 10mM MgCl2,1mM dithioerythritol, pH7.5, Roche사) 1.5㎕, 제한효소NotI(10U/㎕, Roche사) 4㎕ 및 3차 증류수를 총량이 15㎕가 되도록 하는 양으로 혼합하여 37℃에서 4시간 동안 반응시켰다. 페놀/클로로포름으로 추출하고, 스펀-칼럼(Pharmacia Biotech사) 정제로 분리시켰다.
실시예 7: ScFv의 정량과 클로닝
0.75cm 두께의 1%의 아가로즈 젤에 12.5ng과 25ng의 ScFv 마커를 분리정제된 ScFv DNA와 같이 전기영동하여 비교함으로써 ScFv DNA를 정량한 후, 4785 ScFv DNA 150ng, 10 ×OPA 완충액 5㎕, pCANTAB 5E(50ng/㎕, Pharmacia Biotech사) 5㎕, 10mM ATP 5㎕, T4 DNA 리가제(4U/㎕) 2㎕ 및 3차 증류수를 총량이 50㎕가 되도록하는 양으로 혼합하여 16℃에서 1 시간 동안 반응시키고, 70℃에서 10분 동안 리가제를 열 불활성화시킨 다음, 얼음에서 5분 동안 식혔다.
실시예 8: 수용성 세포(Competent cell)의 준비
TG1 대장균(Pharmacia Biotech사)의 글리세롤 원료(glycerol stock)를 최소 배지 플레이트에 도말(streaking)하여 37℃에서 하룻밤 동안 배양하였다. 최소 배양배지 플레이트의 단일 콜로니를 5㎖ 2 ×YT 배지(Bacto-tryptone 17g, Bacto-yeast extract 10g, NaCl 5g in dH2O 1 liter)에 접종하고 37℃에서 12시간 동안 배양하였다. 수득된 배양액 1㎖을 100㎖의 2 ×YT 배지에 접종하고 250rpm으로 교반하면서 OD600이 0.4 내지 0.5에 이를 때까지 배양하였다. 이어서, 4℃, 2500 ×g에서 15분 동안 원심분리하고, 세포 침전물을 10㎖의 차가운 TSS(1g Bacto-tryptone, 0.5g Bacto-yeast extract, 0.5g NaCl, 10g PEG(M.W. 3350), 5㎖ dimethylsulfoxide, 5㎖ 1M MgCl2in 100㎖ 증류수(pH 6.5), 0.22㎛ 필터로 여과 후멸균)에서 재현탁시키고 얼음에서 보관하였다.
실시예 9: 형질전환과 라이브러리 제조.
상기에서 준비된 수용능력이 있는(competent) TG1 세포 1㎖에 연결 반응액을 첨가하고, 얼음에서 45분 동안 방치하였다. 이 혼합물을 42℃에서 2분 동안 배양한 다음, 얼음에서 식혔다. 이 중 100㎕에 900㎕의 LBG(Bacto-tryptone 1g, Bacto-yeast extract 0.5g, NaCl 0.5g / dH2O 100㎖, 2M glucose 1㎖ 첨가)를 첨가하여, 250rpm으로 교반하면서 배양하였다. 이렇게 형질전환된 세포를 여러 비율로 희석하여 SOBAG 플레이트(Bacto-tryptone 20g, Bacto-yeast extract 5g, NaCl 0.5g / dH2O 1 리터, 1M MgCl210㎖, 2M glucose 55.6㎖, 20㎎/㎖ 암피실린 5㎖, Bacto agar 15g)에 플레이팅하여 cfu를 확인한 결과 6 ×106cfu의 라이브러리를 수득하였다.
실시예 10: 4785 재조합 파지 항체 라이브러리로의 전환
상기에서 수득한 박테리아 라이브러리 900㎕에 9.1㎖의 2 ×YT-G 배지를 첨가하고, 250rpm으로 교반하면서 37℃에서 1 시간 동안 배양하였다. 세포를 침전시키기 위해서 1000×g에서 10분 동안 원심분리한 다음 상층액을 제거하였다.
침전물에 10㎖의 2 ×YT-AK 배지(2×YT 배지, 100㎍/㎖ 암피실린, 50㎍/㎖ 카나마이신)를 첨가하고, 250rpm으로 교반하면서 37℃에서 하룻밤 동안 배양하였다. 세포를 침전시키기 위해 1000×g에서 20분 동안 원심분리시키고 상층액을 50㎖의 원추형 멸균 튜브에 옮겼다. 이어서, 0.45㎛ 여과막을 통과시킨 후 4℃에서 보관하였다.
실시예 11: 재조합 파지의 PEG 침전
4785 재조합 파지 항체 라이브러리에 2㎖의 PEG/NaCl(PEG 8000 200g, NaCl146.1g 1 리터의 물에 녹이고 멸균한다.)를 가하고 잘 혼합한 다음 얼음에서 60분 동안 배양하였다. 이어서 4℃, 10000×g에서 20분 동안 원심분리하고 상층액을 제거하였다. 침전물에 16㎖의 2 ×YT 배지를 첨가하여 혼합한 다음, 0.45㎛의 여과막을 통과시킨 후 패닝(panning)을 실시하였다.
실시예 12: 항원-양성 재조합 파지 항체의 선택을 위한 패닝(panning)
0.05M 카보네이트 완충액(pH 9.6)에 4-1 BB단백질을 10㎍/㎖이 되게 희석시킨 후 상온에서 1-2 시간 동안 T25(Corning사) 플라스크에 코팅하였다. 이어서, PBS로 플라스크를 3회 세척한 다음, 블로킹 완충액(blocking buffer, 10% non fat milk in 1×PBS)으로 플라스크를 가득 채우고 상온에서 1 시간 동안 두었다. 이어서, PBS로 3회 세척한 다음, 0.01% 소디움 아지드를 포함하는 블로킹 완충액 14㎖에 PEG 침전된 재조합 파지 16㎖을 희석하고 상온에서 15분간 반응시켰다. 이 희석액 중 재조합 파지 20㎖를 플라스크에 넣고 37℃에서 2 시간 동안 반응시켰다. 이어서, 50㎖의 PBS로 플라스크를 20번 세척한 다음, 50㎖의 0.1% PBS-T로 20번 세척하였다. 대수기(log-phase)에 있는 TG1 세포(Pharmacia Biotech사) 10㎖를 플라스크에 넣고, 37℃에서 1 시간 동안 배양한 다음, 배양액 중 100㎕를 2×YT 배지로 1:10, 1:100 및 1:1000으로 희석하여, SOBAG 플레이트에 100㎕씩 플레이팅하고 30℃에서 하룻밤 동안 배양하였다.
상기 플레이트의 cfu를 계산하여 라이브러리 크기를 추정한 결과 9 ×104cfu를 수득하였다.
실시예 13: 스크리닝을 위한 단일 클론 제조
패닝 후에 얻어진 800개의 콜로니를 각각 200㎕의 2×YT-AG 배지(Bacto-tryptone 17g, Bacto-yeast extract 10g, NaCl 5g / dH2O 1 리터, 100㎍/㎖ 암피실린, 2% 글루코스 포함)가 함유된 96-웰 플레이트에 접종하여 250rpm으로 교반하면서 37℃에서 하룻밤 동안 배양하였다.
M13KO7 헬퍼 파지(Pharmacia Biotech사) 2.5 ×1010pfu가 포함된 2×YT-AG 배지 50㎖를 96 웰 플레이트에 200㎕씩 각각 분주하였다. 이 플레이트에 상기 하룻밤 동안 배양한 배양액을 40㎕ 씩 접종하였다. 접종한 플레이트를 150rpm으로 교반하면서 37℃에서 2 시간 동안 배양한 다음, 1500 ×g에서 상온에서 20분 동안 원심분리하여 상층액을 제거하고 200㎕의 2×YT-AK(2×YT medium, 100㎍/㎖ 암피실린 및 50㎍/㎖ 카나마이신 포함) 배지를 각 웰에 첨가하였다. 이어서, 250rpm으로 교반하면서 37℃에서 배양한 다음, 1500×g에서 상온에서 20분 동안 원심분리하고 상층액으로 ELISA를 실시하여 스크리닝하였다.
0.05M 카보네이트 완충액(pH 9.6)에 4-1 BB 단백질을 10㎍/㎖이 되게 희석한 후 상온에서 1-2시간동안 ELISA 플레이트에 200㎕ 씩 코팅하였다. 이어서, PBS로 플레이트를 3회 세척한 다음, 블로킹 완충액(10% non fat milk in 1×PBS) 200㎕씩 각 웰에 넣고 1 시간 동안 상온에서 반응시켰다. 이어서, 0.01% PBS-T로 플레이트를 3회 세척한 다음, 미리 블로킹된 미량 역가 플레이트 위에서 얻어진 상기 재조합 파지 항체 상층액 100㎕를 첨가하고, 여기에 블로킹 완충액을 동량 섞어서 상온에서 30 분 동안 반응시켰다.
희석된 재조합 파지 항체 상층액 200㎕를 항원 코팅된 웰에 넣고, 상온에서 1시간 동안 반응시켰다. 이어서, 0.01% PBS-T로 플레이트를 5회 세척한 다음, 블로킹 완충액에 HRP/항-M13 모노클로날 콘주게이트(Pharmacia Biotech사)를 1:5000으로 희석하여 각 웰에 200㎕씩 첨가하고, 상온에서 1시간 동안 반응시켰다. 이어서, 0.01% PBS-T로 플레이트를 6회 세척한 다음, 각 96웰 플레이트 당 36㎕의 30% H2O2를 첨가한 21㎖ 1×ABTS 원료액(Sigma사)을 각 웰당 200㎕ 씩 첨가하고, 20분간 상온에서 반응시킨 다음, 410nm에서 흡광도를 측정하여 0.2 이상의 흡광도를 가지는 19개의 클론을 수득하여 이를 양성 클론으로 정하였다. 하기 표 2는 ELISA를 통해서 얻어진 각 클론의 흡광도를 나타낸 것이다.
클론번호 |
1 |
2 |
7 |
10 |
11 |
13 |
14 |
15 |
16 |
17 |
A405-1。 |
0.807 |
0.543 |
0.747 |
1.636 |
0.901 |
1.698 |
0.393 |
0.549 |
0.137 |
0.663 |
A405-2。 |
0.625 |
0.802 |
0.736 |
1.103 |
0.520 |
0.215 |
0.464 |
0.185 |
0.670 |
2.122 |
클론번호 |
18 |
19 |
20 |
21 |
22 |
23 |
24 |
25 |
26 |
|
A405-1。 |
0.358 |
0.375 |
0.476 |
0.722 |
0.802 |
0.804 |
0.193 |
0.785 |
2.284 |
|
A405-2。 |
1.093 |
0.481 |
0.209 |
1.125 |
0.809 |
0.852 |
0.489 |
0.329 |
0.362 |
|
상기 19개의 클론의 전체 서열을 확인하고 비교하여 중복된 것을 제외시켜 8가지의 군으로 나누어 하기 표 3에 나타내었다.
그룹 1 |
Hu4785-1, Hu4785-7, Hu4785-10, Hu4785-13,Hu4785-15, Hu4785-16, Hu4785-22, Hu4785-23 |
그룹 2 |
Hu4785-11, Hu4785-18, Hu4785-26 |
그룹 3 |
Hu4785-14 |
그룹 4 |
Hu4785-24 |
그룹 5 |
Hu4785-19 |
그룹 6 |
Hu4785-2 |
그룹 7 |
Hu4785-17 |
그룹 8 |
Hu4785-21 |
상기의 Hu4785-2클론의 염기서열을 포함하는 pCANTAB/Hu4785-2 플라스미드로 형질전환된 TG1세포를 생명공학연구소 유전자은행에 KCTC 10365BP로 기탁하였다.
실시예 14: 단백질 발현과 정제
항원에 결합하는 것으로 밝혀진 8가지 군의 M13 파지를 수용성 ScFv 상태로 전환시키기 위해 대장균 HB2151(Pharmacia Biotech사)에 감염시켜 대장균을 형질전환시켰다. 각 세균성 클론들을 80㎖의 2×YT-AG에 접종하고 37℃에서 250rpm으로 교반하면서 하룻밤 동안 배양하였다. 이를 다시 800㎖의 2×YT-AG에 접종하고 37℃에서 250rpm으로 교반하면서 1시간 동안 배양한 다음, 5000rpm에서 10분 동안 원심분리하였다. 수득된 펠렛을 800㎖의 2×YT-AI 배지(Bacto-tryptone 17g, Bacto-yeast extract 10g, NaCl 5g/dH2O 1 리터)에 가하여 37℃에서 250rpm으로 교반하면서 4시간동안 배양한 후, 6000rpm에서 10분 동안 원심분리하였다. 수득된 펠렛에 차가운 1 ×TES(0.2M Tris-HCl(pH 8.0), 0.5mM EDTA, 0.5M 수크로즈) 8㎖을 넣어서 완전히 섞고 1/5 ×TES 12㎖을 첨가하여 잘 혼합한 후, 얼음 상에서 30분 동안 배양한 다음, 12000rpm에서 10분 동안 원심분리하여 상층액을 새 튜브로 옮기고 RPAS 정제 모듈(Pharmacia Biotech사, Cat.# 17-1362-01)을 사용하여 정제하여 그 결과는 도 5에 나타내었다. 도 5는 인간화된 항-h4-1BB ScFv를 항-E 태그 세파로스를 이용하여 인간화된 ScFv의 순수 분리한 결과를 나타낸 도이다.
실시예 15 : 각 ScFv의 친화력(affinity) 측정
ScFv의 친화력을 측정하기 위하여 SPR(Surface Plasmon Resonance)를 이용하여 생분자간 상호작용(biomolecular interaction)을 분석하는 장비인 BIAcore2000(BIAcore사)로 ScFv를 갖는 Hu4785 클론(항-h4-1BB ScFv)들과 4-1BB-GST 융합 단백질 사이의 분자간 상호작용을 분석하였다.
결과는 아래의 표 4와 같다. 결과에서 KD(equilibrium dissociate rate constant) 값을 비교해 보면, 4785는 2.94 ×109이며, Hu4785-2은 3.04 ×1012이며, Hu4785-10은 8.23 ×109인 것을 볼 수 있다. 이것은 친화도가 Hu4785-2은 마우스 4785보다 약 1000배 친화도가 높은 것을 나타내는 것이다.
|
ka |
kd |
KD(M) |
Chi2 |
마우스4785 |
1.04E+03 |
3.06E-06 |
2.94E-09 |
3.06 |
Hu4785-2 |
3.21E+04 |
9.76E-08 |
3.04E-12 |
0.30 |
Hu4785-10 |
5.20E+02 |
4.28E-06 |
8.23E-09 |
2.83 |
Hu4785-14 |
6.14E+02 |
8.21E-06 |
1.34E-08 |
1.61 |
Hu4785-17 |
4.95E+02 |
5.99E-06 |
1.21E-08 |
1.25 |
Hu4785-18 |
2.00E+02 |
4.85E-06 |
2.43E--08 |
204.00 |
Hu4785-24 |
9.72E+01 |
2.03E-06 |
2.09E-08 |
5.53 |
실시예 16: 경쟁적(Competitive) ELISA
4-1 BB-GST를 코팅 완충액에 5㎍/㎖로 희석하여 ELISA 플레이트에 코팅한 다음, PBS로 3회 세척하고 1% BSA-PBS로 실온에서 1 시간 동안 차단한 후 PBS로 3회 세척하였다. 동일한 농도의 8가지 ScFv와 바이오틴 표지된 항-4-1 BB mAb 4785를 50㎕에 4785를 0, 0.25, 0.5, 1, 2, 4, 8㎍/㎖ 첨가하고 총 부피를 1% BSA-PBS를 사용하여 100㎕로 조절한 후 15분 동안 반응시킨 후에 ELISA 플레이트에 첨가하여 실온에서 1 시간 동안 반응시킨 다음, PBS-0.05% 트윈으로 5회 세척하였다. 이에 대한 대조군 Ab로는 항-TR2 mAb인 108(Immunomics사/본사제조)을 사용하였다. 1:10000으로 희석한 HRP-콘쥬게이트된 항-E 태그 Ab(Pharmacia Biotech사) 100㎕를 처리하여 실온에서 1 시간 동안 반응시켰다. 이어서, PBS-0.05% 트윈으로 5회 세척한 다음, ABTS 기질 100㎕를 처리하고 405nm에서 흡광도를 측정하고 하기 수학식 1에 따라 억제율(%)을 계산하였으며, 그 결과는 도 6에 나타내었다.
억제율(%)= 100 ×(경쟁적 항체가 없는 경우의 OD405-경쟁적 항체가 있는 경우의 OD405)/경쟁적 항체가 없는 경우의 OD405
경쟁적 ELISA는 각 클론이 원래의 마우스 4785와 같은 에피토프(epitope)를 가지는가를 확인하기 위한 실험이다. 경쟁적 ELISA는 Ag에 인간화(humanization)하기 전의 마우스 단일클론항체(mouse mAb)의 농도가 증가됨에 따라 인간화된 ScFv의 결합이 얼마나 감소되는지를 % 억제율(% inhibition) 값으로 얻을 수 있다. 도 6의 결과에서 마우스 mAb의 농도가 증가함에 따라 % 억제율이 증가하는 것으로 보아 인간화된 ScFv가 원래의 mAb와 같은 에피토프을 가지고 경쟁하는 것을 증명할 수 있었으며, 이것은 인간화된 ScFv가 원래의 mAb와 같은 생물학적 효과(biological effect)를 가질 것이라는 것을 강력히 암시하는 것이다.
실시예 17: FACS를 이용한 결합 친화도의 측정
인간 Jurkat 8-1 세포주는 인간 4-1BB를 안정적으로 발현하도록 감염된 세포주로서, 형광활성세포분류기(fluorescent activated cell sorter, FACS) 분석에 사용되었다. 5x105개의 Jurkat 8-1 세포에 50㎕의 FACS 완충액(1XPBS, 0.1% sodium azide, 1% FBS)을 넣고 각각의 1차 항체를 처리하였다. 1차 항체로 마우스 4785(A)와 Hu4785-2 단백질(B)을 4℃에서 30분 동안 처리하였다. 마우스 IgG1은 비특이적인 반응을 알아보기 위한 이형대조군(isotype control)으로 사용하였다. 세포를FACS 완충액으로 세척한 다음, (A)은 FITC(fluorescein isothiocyanate)가 표지된 토끼 항마우스 IgG(Jackson ImmunoResearch Laboratory Inc.)를 4℃에서 30분 동안 처리하였으며, (B)는 항-E-태그 항체(anti-E-Tag antibody)와 항-마우스 IgG-FITC (anti-mouse IgG-FITC)를 차례로 처리하여 FACS 완충액으로 3회 세척한 후에 FACS 분석하였다. 그 결과를 도 7에 나타내었다.
도 7의 A와 B에서 가는 선은 이형 대조군이고 굵은 선은 각각 마우스 4785항체(A)와 Hu4785-2(b)를 처리하였다. 결과에서 굵은 선은 이형 대조군의 가는 선에 비해서 더 높은 FITC 수준을 보이고 있다. 이 결과로 마우스 4785와 Hu4785-2가 Jurkat 8-1에서 발현되는 인간 4-1 BB에 결합한다는 것을 확인할 수 있었다.
실시예 18: 인간화된 ScFv의 불변영역(constant region) 연결
4-1BB는 활성화된 T 세포의 표면에 발현하는 공동자극분자(costimulatory molecule)로써, CD8 T 세포에 생존시그날(survival signal)을 전달하고, CD8 T 세포 증식 및 세포독성(cytotoxic) T 세포 반응 유도에 관여하는 것으로 알려져 있다. 그러므로, 장기이식 또는 자가면역질환에서 자기(self)를 인지하는 자기 항원에 의해서 활성화된 세포독성 T 세포를 억제하기 위해서 인간화된 Hu4785 항체를 사용하려고 한다. 이러한 경우에 있어서 ScFv 형태만으로도 4-1BB와 4-1BB 리간드(ligand)의 상호작용을 막을 수 있어서 적용가능하지만, H2L2(heavy chain 2, light chain 2) 형태로 전환시키면, 그 효과를 극대화 시킬 수 있다. ScFv는 결합부위가 한개 이지만, H2L2 형태는 결합부위가 2개라서 더 효과적인 결합이 일어난다. ScFv 형태는 인간의 생체에 존재하지 않는 형태이므로, 생체에 존재하는 H2L2 형태가 항원성이 더 낮다. 그리고 인간화된 Hu4785-H2L2의 불변부위(constant region)의 이형(isotype)인 IgG1은 세포에 결합되고 나서 보체(complement)를 고정시키므로 Hu4785-H2L2 항체가 결합한 세포독성 T 세포를 죽이는 반응이 일어난다. 이것은 장기이식 또는 자가면역질환에서 자기를 인지하는 자기 항원에 의해서 활성화된 세포독성 T 세포를 특이적으로 사멸시킴으로서 장기이식 거부반응과 자가면역반응의 원인이 되는 자기반응세포독성 T 세포(self reactive cytotoxic T cell)를 완전히 제거할 수 있다. 그러므로 H2L2 형태로의 전환은 필수적이다.
각 Ab의 인간화 ScFv는 VH, 링커(linker), VL이 연결되어 있는 형태이다. 이것을 원래 항체의 형태인 H2L2형태로 만들기 위해서, VH에는 리더서열(leader sequence)과 인간 IgG1의 불변영역이 연결되고, VL에는 리더서열과 인간 카파사슬서열이 연결되었다. 각 절편의 연결은 PCR을 통해서 수행하였다. 연결된 후의 서열은 서열번호 40 내지 43에 기재하였으며, 도 8a 내지 도 8d와 같다.
실시예 19: H2L2를 이용한 ELISA
ScFv 형태에서 H2L2로 전환한 후에 ScFv의 결합 능력과 생물학적 효과가 그대로 남아 있는지 알아보기 위해서 실시예 19, 20, 21을 실시하였다.
불변영역까지 완전히 인간화된 유전자, 즉 상기 실시예 18의 Hu4785-2 중쇄 유전자(서열번호: 41)와 Hu4785-2의 경쇄 유전자(서열번호: 43)를 진핵세포발현벡터(eukaryotic expression vector)인 pcDNA에 서브클로닝하여 Hu4785-2H/pcDNA(기탁번호 KCTC 10440BP) 및 Hu4785-2K/pcDNA(기탁번호 KCTC 10441BP)를 수득하였으며, 이 두개의 플라스미드를 293EBNA 세포(ATCC)에 감염시키고(transfection), 감염된 세포(transfectant)의 배양상층액으로 ELISA를 수행하였다.
먼저 ELISA를 수행하였다. 항원으로는 4-1BB-GST를 사용하였으며, 각 50개의 감염세포의 배양상층액을 사용하였다. 50개 중에서 가장 높은 발현률을 보인 것은 B4 클론이며, 하기 표 5의 ELISA 결과에서 살펴보면 음성대조군보다 약 15배 높은 값을 보이고 있다.
시료 |
흡광도 |
Hu4785-2H/pcDNA, Hu4785-2K/pcDNA 감염된 293 EBNA 배양상층액(B4) |
1.935 |
293 EBNA 배양상층액 |
0.126 |
실시예 20:
H2L2를 이용한 웨스턴 블롯 분석
상기 실시예 18의 불변영역까지 완전히 인간화된 유전자를 진핵세포발현벡터인 pcDNA 또는 pD18에 서브클로닝하여 수득한 플라스미드를, Hu4785-2H/pcDNA + Hu4785-2K/pcDNA 또는 Hu4785-2H/pD18 + Hu4785-2K/pD18 과 같은 조합으로 293EBNA 세포(ATCC)에 감염시키고, 감염된 세포의 배양 상층액을 가지고 항체생성을 웨스턴블롯을 통해 확인하였다. 웨스턴 블롯 과정에 사용된 항원은 4-1BB-GST 이었다.
도 9는 H2L2를 이용한 웨스턴 블롯 결과사진으로, 레인 1은 Hu4785-2H/pcDNA + Hu4785-2K/pcDNA 감염세포(B4 클론)이고, 레인 2는 Hu4785-2H/pD18 + Hu4785-2K/pD18 감염세포이며, 레인 3은 293EBNA세포-음성대조군이다. 인간화가 완료된 항체가 인간 4-1BB에 잘 결합하는 것을 확인하였다.
실시예 21: H2L2의 순수분리
B4 클론의 배양배지 상층액에서 단백질 G 컬럼(protein G column)을 사용하여 완전히 인간화된 항체를 순수분리하여 SDS-PAGE하였다(도 10 참조).
실시예 22: 세포증식시험(Cell proliferation assay)
인간화된 ScFv와 H2L2의 생물학적 기능을 알아보기 위해서 세포증식시험법 (cell proliferation assay)을 실시하였다.
많은 경우에 있어서는 인간화 후의 항체가 인간화 전의 마우스 항체가 가지고 있던 생물학적 효과를 잃어버리는 경우가 있다. 그러므로 항체의 인간화를 완료한 후에 마우스 항체가 가지고 있던 생물학적 효과를 그대로 가지고 있는지를 증명하는 것이 필수적이다.
사람의 전혈에서 말초혈액단핵구세포(PBMC)를 분리하고, 각 Ab(마우스4785, Hu4785-2 및 Hu4785 H2L2)를 농도별(0, 1.25, 2.5 및 5㎍/㎖)로 처리하고, [3H] 인코포레이션 결과를 베타 카운터(beta counter)로 측정하였다. 마우스 4785는 인간 4-1BB에 결합하는 항체이다.
도 10a는 마우스4785를 농도별로 처리한 것으로서, PBMC의 증식을 용량 의존적으로 억제하는 것을 보이고 있다. 도 10b는 인간화된 Hu4785-2 ScFv를 처리한 것으로서 마우스4785와 같은 경향성을 보이고 있다. 도 10c는 인간화된 Hu4785-2 H2L2를 처리한 것으로서 마우스4785와 같은 경향성을 보이고 있다. 이것은 인간화 후의 항체가 원래 마우스 항체가 가지고 있는 생물학적 효과를 가지는 것을 증명하는 것이다.