KR20040049830A

KR20040049830A - 간, 폐 및 식도의 암 및 전암 상태의 치료 및 예방

Info

Publication number: KR20040049830A
Application number: KR10-2003-7017116A
Authority: KR
Inventors: 제바스필립시.; 미카엘리도브; 그라임스스티븐
Original assignee: 애프톤 코포레이션
Priority date: 2001-07-09
Filing date: 2002-07-09
Publication date: 2004-06-12
Also published as: EP1416964A4; AU2002326356A1; CN1525868A; WO2003005955A2; WO2003005955A3; US20110117108A1; EP1416964A2; US20030021786A1; JP2004536835A; CA2450898A1

Abstract

본 발명은 환자를 펩타이드 호르몬 가스트린 및/또는 예를 들어, CCK-B/가스트린 수용체와 같은 가스트린 수용체에 대해 능동적 및/또는 수동적으로 면역시켜 간, 폐 및 식도의 암 및/또는 전암 상태를 치료 및/또는 예방하는 것에 관한 것이다.

Description

간, 폐 및 식도의 암 및 전암 상태의 치료 및 예방{TREATMENT AND PREVENTION OF CANCEROUS AND PRE-CANCEROUS CONDITIONS OF THE LIVER, LUNG AND ESOPHAGUS}

가스트린은 위, 결장, 직장, 췌장, 간세포 및 뉴런의 악성종양을 포함하는 다양한 암 뿐만 아니라, 정상적인 위장관의 점막의 성장을 촉진하는 것으로 나타난 성장 인자이다. 특히, 가스트린은 현재 예를 들어, 전이를 포함하는 가스트린종(gastrinoma) 및 결장직장 선암(colorectal adenocarcinomas)과 같은 특정 인간 종양에 대한 잘 알려진 성장 인자이다{문헌(Watson et al. 2000 for a review, Smith et al. 1989, Seitz et al. 1991 and Wong et al. 1991) 참조}. (본문에서 재인용되지 않은 본 명세서에 인용된 참조문헌의 전체 인용문은 특허청구범위 앞의 참조문헌 부분에 제공된다). 결장직장암에 걸린 환자에서 총가스트린의 혈장 수준이 상승되며, 특히, 수많은 결장직장 종양에서 가스트린 항혈청을 사용하여 호르몬 전구물질인 프로가스트린의 양이 증가된 것으로 검출되었다(Ciccotosto et al. 1995). 본 명세서에 사용된 바와 같이, "결장직장"은 위장관의 부분(subset)이다.

결장직장 종양에서 증가된 가스트린 수준은 부분적으로, 결장직장 종양 세포 에서의 가스트린 유전자의 변종 발현에 기인한다(Hoosein et al. 1990, Baldwin et al. 1992 and Finely et al. 1993). 가스트린-유사 펩타이드는 이러한 세포에서 확인되었으며(Hoosein et al. 1990, Baldwin et al. 1991 and Finley et al. 1993), 전구물질인 가스트린종인 것으로 확인되었다(Van-Solinge et al. 1993 and Nemeth et al. 1993).

혈청-관련 G17은 CCK-B/가스트린 수용체에 의해 매개되는 내분비 방식으로 결장직장 종양의 성장을 자극할 가능성이 있다(Watson et al. 1993). G17은 다른 가스트린 호르몬종에 비해 종양 세포상의 가스트린/콜레사이토키닌(CCK)-B 수용체에 대한 친화력이 증가될 수 있기 때문에, 특히 결장직장 선암의 성장을 자극하는 것과 관련된다(Rehfeld, J.F. 1972). CCK-B/가스트린 수용체는 인간의 초기 결장직장 종양의 56.7%에 높은 친화 형태로 발현되는 것으로 밝혀졌다(Upp et al. 1989). 최근 전구물질 가스트린 문자인, 글리신-연장 가스트린 17(G17-Gly)가 위장관 종양 세포주의 성장을 자극하는 것으로 밝혀짐에 따라, 이러한 종양에 의한 전구물질 가스트린 펩타이드의 내인성 생성으로 인한 잠재적인 자가분비 루프가 존재할 수도 있는 것으로 생각된다(Van-solinge et al. 1993 and Nemeth et al. 1993).종양에 대한 G17-Gly의 영양적 효과는 CCK-B/가스트린 수용체가 아닌 다른 수용체에 의해 매개되는 것으로 나타났으며, 가스트린 전구물질을 포함할 수 있는 자가분비 성장 루프는 위장관 종양의 증식에 관여되는 것으로 생각되었다(Seva et al. 1994).

수술은 수술가능한 결장암을 치료하기 위한 가장 효과적인 방법이다. 발견할 수 없는 "숨어있는 종양(occult)" 또는 "미세전이"가 존재할 수 있기 때문에, 결장직장 부분에서의 일차 종양의 절제는 예를 들어, 항상 모든 악성 조직을 제거하는 것은 아니다. 또한, 일차 종양을 절단하는 물리적 행위를 하는 동안, 종양 세포가 분리되고 순환을 통해 이동하여, 그 자체가 간 또는 체내의 다른 부위에 자리를 잡는다. 결장직장 선암은 가장 일반적으로 간으로 전이한다.

결장직장암에 걸린 환자에서의 간 전이의 외과적 치료는 합병증을 유발한다. 간은 재생하기 때문에, 간 절제는 인슐린, 글루카곤, 소마토스타틴(Jung et al. 1977), 섬유아세포 성장 인자(FGF), 상피 성장 인자(EGF)(Gutman et al. 1994-95), 형질전환 성장 인자 a(TGFa), 인터류킨-6, 간세포 성장 인자, 및 종양 괴사 인자(de Jung et al. 1996)을 포함하는, 간 재생에 기여하는 것으로 생각되는 수많은 영양제의 방출을 촉진한다(Leith et al. 1992, Mizutani et al. 1992, Ballantyne Et al. 1993, Vaillant et al. 1993, Ledda-Columbano et al. 1993, Matsumata et al. 1995, Slooter et al. 1995, Hananel et al. 1995).

또한 가스트린 17은 정상 및 재생된 간세포 및 알콜 손상 또는 간 수술과 같은 손상 후의 간세포에 영양적 효과를 나타내는 것으로 밝혀졌다. 간 손상 후 가스트린 수준의 2배 내지 5배 증가가 기록되었으며, 최대 가스트린 수준은 손상 후 24 내지 72시간에 발견되었다. 손상 후 간 조직이 재생될 수 있기 때문에, 간세포를 자극하거나 유도하여 증식시키는 데 높은 수준의 가스트린이 필요한 것으로 생각된다. 가스트린 수준은 간 손상 후 72시간에서 시작하여 점차적으로 정상 수준으로 감소한다. 가스트린은 또한 전이성 결장직장 선암 세포가 간에 적절히 자리를 잡는데에도 필요하다. 또한, 일반적으로 "간종양"으로 알려져 있는 일차 간암 또는 간세포 암종의 세포는 가스트린 수용체를 가지므로, 가스트린에 대한 반응이 증가된다. 대부분의 간 종양은 CCK-B/가스트린 수용체 및 가스트린의 전구물질 형태를 발현한다(Caplin 1999).

수술이 결장직장 종양, 간종양 및 간에서의 전이성 종양을 치료하기 위한 가장 효과적인 방법이라 할지라도(Supe et al. 1994, Fong et al. 1993, de Jung et al. 1996, Vauthey et al. 1995, Scheele et al. 1991, Ballantyne et al. 1993, Katoh et al. 1990), 많은 경우 종양이 국소적이지 않거나 수술할 수 없는 해부학상 부위에 존재하기 때문에, 간에 이러한 종양이 있는 환자의 약 90%는 수술로 치료될 수 없다. 이러한 환자들은 이들의 종양이 진단된 지 1년 내에 사망한다. 절제가능한 종양을 갖고 있는 간 결장직장 간 전이 또는 간종양이 있는 환자의 나머지 10%에 대해서는, 종양의 재발이 관찰되지 않음으로써 약 50%가 치유되는 것으로 보고되었다(Goletti et al. 1992 and Katoh et al. 1990). 그러나, 임상적 데이터는, 절제가능한 종양이 있는 나머지 50%의 환자에 대해 수술로 환자의 수명이 연장된다고 할지라도, 이들 모두는 수술한 지 2년 후에 종양이 재발할 것이며, 상기 환자의70%는 수술한지 5년 후에 종양이 재성장할 것이다. 종양이 재성장한 환자는 간 내에 50%의 종양 및 폐, 장 및 복막과 같은 신체의 다른 곳에 50%의 종양을 가진다(Scheele et al. 1991, Vauthey et al. 1995, Ballantyne et al. 1993). 따라서, 간절제는 현재 간종양 및 간 결장직장 전이의 치료를 위한 가장 효과적인 치료법이다.

현재 간 절제 후의 표준 치료법에는 5-플루오로우라실, 류코보린, 시스플라틴, 종양 괴사 알파 인자(Fong et al., 1995) 및 프로글루마이드, 가스트린 길항제(Kameyama et al. 1994)과 같은 화학요법제를 사용한 치료가 포함된다. 대부분의 경우, 이러한 종양은 방사선 또는 화학요법 치료계획에 잘 반응하지 않으므로, 현재의 방법을 보완하기 위한 새로운 치료법이 필요하다. 수술가능한 종양에 대해, 모든 악성종양 조직이 제거되는지 또는 수술 전 또는 수술하는 동안 전이성 세포가 종양으로부터 분리되었는지, 또는 환자에 체내의 다른 부분에 종양이 재성장할 수 있는 전이가 존재하는지는 알려져 있지 않다.

가스트린-의존 종양에 대해, 생체외 및 생체내 모두에서 가스트린-의존성 종양 성장에 대한 외인성 가스트린의 효과를 효과적으로 중화시키는 것으로 나타난 L-365,260(Block et al. 1989) 및 CI(Hughes et al. 1990)와 같은 수많은 고친화성 CCK-B/가스트린 수용체 길항제가 기재되어 왔다(Watson et al., Kameyana et al. and Romani et al. 1994). 그러나, 상기 길항제들은 가스트린-34(G34) 및 CCK와 같은 수용체의 모든 잠재적인 리간드의 작용을 차단하기 때문에 특이성이 없다. 또한, 가스트린 전구물질인 G17-Gly를 인식하고 결합하는 세포 수용체는 시험된 모든저해제에 결합하지 않는다(Seva et al. 1994). 따라서, 별개의 수용체가 자가분비 성장 캐스케이드에 관여할 경우, 가스트린 길항제는 이러한 종양 성장 촉진 메카니즘을 차단할 수 없을 것이다. 방사능표지화된 가스트린- 및 콜레사이토키닌-관련 펩타이드는 또한 CCK-B/가스트린 수용체 발현 종양에 대한 생체 내 표적화제로 사용되는 것으로 조사되었다. 본 명세서에 참조병합되는 문헌(Behr et al., Cholecytokinin-B/gastrin receptor binding peptides: preclinical development and evolution of their diagnostic and therapeutic potential, Clin Cancer Res (1999) Oct: 5(10 Suppl): 3124s-3138s)을 참조한다.

성숙 및 글리신-연장 전구물질 형태 모두에서 가스트린 17 호르몬의 생물학적 활성을 선택적으로 면역적으로 중화시키는 치료방법은 과도한 가스트린 17 호르몬 생성으로부터 야기된 가스트린-의존성 종양 재성장을 제어 또는 예방하는 효과적인 방법을 제공할 것이다.

본 명세서에 참조 병합되는, 공동-양도된 미국 특허 제 5,023,077호 및 제 5,468,494호는 항-가스트린 항체를 생성함으로써 환자 내의 G17 및 G34 수준을 제어하는 데 유용한 면역원성 조성물, 및 위 및 십이지장 궤양 및 가스트린-유도된 암의 치료를 위한 이러한 조성물의 용도를 개시한다. 본 발명은 또한 수술 후, 특히, 간 절제술 후의 종양의 재발이 흔한 문제이기 때문에, 가스트린 17에 의해 종양의 재성장이 자극되는 것을 특징으로 하는, 간 절제 후의 종양 재성장 및/또는 전이성 암의 발생의 예방에 있어서 미국 특허 제 5,023,077호 및 제 5,468,494호에 개시된 항-G17 면역원성 조성물의 용도에 관한 것이다. 본 발명은 또한 종양 세포상의 수용체의 활성화를 차단하기 위한 CCK-B/가스트린 수용체에 대한 면역화에 관한 것이다. 공동-양도된 미국 출원 제 09/076,372호는 CCK-B/가스트린 수용체에 대한 항체 반응을 유도하는 면역원의 제조 방법을 개시하고 있으며, 이는 본 명세서에 참조병합된다.

기재된 암 치료법과 같은 전이성 종양 성장 또는 종양 재성장을 예방하기 위한 본 발명의 방법은 현재의 치료 방법에 비해 여러 가지 이점을 가진다. 이 방법은 비-침략적이며, 선택적으로 가역적이며, 정상 조직을 손상시키지 않으며, 자주 반복되는 치료를 필요로 하지 않으며, 혈액 뇌 장벽(blood brain barrier)을 횡단하지 않는다.

가스트린은 폐에서 일어나는 폐암과 관련이 있다. 본 명세서에 참조병합되는 문헌(Gocyk et al., 2000)을 참조한다. 상기한 간암과 유사하게, 가스트린은 또한 위장관 악성종양으로부터 전이된 폐암과 관련이 있다. 본 발명은 종양 세포 상에 발현된 CCK-B/가스트린 수용체의 가스트린-의존 활성화를 차단함으로써 폐암을 치료하고 폐로의 전이를 예방하는 것에 관한 것이다. 또한, 본 발명은 소세포 폐암(SCLC; small cell lung cancer) 및 비-소세포 폐암(NSCLC; non-small cell lung cancer) 모두의 치료를 위한 것이다. SCLC 및 NSCLC에 대한 다양한 형태의 치료 계획의 개발이 지속되고 있다. 본 명세서에 참조 병합되는 문헌(Reddy, 2000 for SCLC Evans, 2001 for NSCLC)을 참조한다.

바렛 식도(Barrett's esophagus)는 위식도역류(GERD) 환자의 10 내지 20%에서 일어나는 전암 상태이다. 대략적으로, 2000만명의 미국 시민들이 GERD으로 고생하고 있다. 바렛 식도 환자의 약 5 내지 10%가 암 상태, 구체적으로는 선암으로 진행할 것이다{문헌(National Institutes of Health publication No. 99-4546, May 1999) 참조}. 현재의 예방 요법 및 치료요법적 치료는 본 명세서에 참조병합되는 문헌(Fennerty, 2001)에 기재되어 있다. 바렛 식도 장애(lesion)에서 가스트린 및/또는 가스트린 분비 세포의 존재를 제안하는 연구들이 있으며, 따라서, 가스트린이 이의 암 상태, 즉 선암으로의 진행을 촉진하는 역할을 하는 것으로 제안되었다. 예를 들어, 전체 내용이 본 명세서에 참조병합되는 문헌{Buchanan et al. Regulatory peptides in Barrett's oesophagus, J. Pathol (1985) Jul; 146(3): 227-34: and Trakal et al., Diagnosis and etiology of Barrett's esophagus: Presence of gastrin secreting cells, Acta Gastroenterol Latinoam (1985); 15(2): 67-80}을 참조한다. 본 발명은 바렛 식도의 치료 및 바렛 식도가 식도 선암으로 진행되는 것을 예방 또는 지연시키는 것에 관한 것이다. 본 발명은 또한 이미-존재하는(pre-existing) 식도 선암 및 식도의 다른 악성종양에 관한 것이다.

본 출원은 2001년 7월 9일에 출원된 미국 가특허출원 제 60/303,868호로부터 우선권을 주장한다.

본 발명은 간, 폐 및 식도의 암 및 전암 상태의 치료 및 예방을 위한 방법 및 조성물에 관한 것이다. 본 발명은 또한 가스트린-유도 악성종양의 간, 폐 또는 식도 내의 부위로의 전이의 예방 및/또는 저해에 관한 것이다.

본 발명은, 펩타이드 호르몬 가스트린 및/또는 가스트린 수용체, 예를 들어 CCK-B/가스트린 수용체에 대해 능동적 및/또는 수동적으로 환자를 면역화시킴으로써 간, 폐 및 식도의 암 및/또는 전암 상태를 치료 및/또는 예방하는 것에 관한 것이다. 본 발명의 면역은 단일요법, 보조요법, 또는 예를 들어, 화학요법제 및/또는 방사선요법제를 사용하는 조합요법의 일부로 사용될 수 있다.

본 발명은 가스트린 촉진 종양 세포가 예를 들어, 위장관 악성종양으로부터간, 폐 및 식도로 전이되는 것을 저해하는 조성물 및 방법을 제공한다. 본 발명은 또한 간, 폐 및 식도의 가스트린-촉진 악성종양의 치료를 위한 조성물 및 방법을 제공한다. 본 발명은 소세포 폐암 및 비-소세포 폐암의 치료를 위한 조성물 및 방법을 제공한다. 본 발명은 또한 도세탁셀과 같은 탁산의 투여와 함께 가스트린 및/또는 이의 수용체에 대한 능동 및/또는 수동 면역화를 포함하여 이루어지는 비-소세포 폐암의 치료를 위한 조합요법을 제공한다. 본 발명은 또한 간, 폐 또는 식도의 전-악성종양(전암) 세포가 암 상태로 전이하는 것을 저해하기 위한 조성물 및 방법을 제공한다.

이 방법은 폐, 간 또는 식도의 암 및/또는 전암 상태의 진행을 치료 또는 예방하기 위해, 환자의 가스트린 17 수준을 조절하기 위해 가스트린 17 호르몬에 대한 항체 또는 항-G17 면역원을 사용한 환자의 능동 또는 수동 면역화를 포함하여 이루어진다. 본 발명은 또한 가스트린-의존성 종양 세포가 간, 폐 및 식도로 성공적으로 전이되는 것을 예방하는 것에 관한 것이다. 미국 특허 제 5,023,077호 및 제 5,785,970호는 가스트린에 대해 환자를 능동적으로 및 수동적으로 면역시키는 방법을 개시하고 있으며 본 명세서에 참조병합된다.

본 발명의 면역화는 단일요법, 수술에 대한 보조요법, 또는 예를 들어, 화학요법제, 방사선요법제, 변형된 바이러스와 같은 생물제제를 포함하여 이루어지는 조합요법의 일부, 및/또는 광역학요법 치료법으로 사용될 수 있다.

환자에서 항-가스트린 17 항체를 유도함으로써, 호르몬 가스트린 17 및 프로호르몬 프로가스트린 G17-Gly은 이들의 생리학적 효과를 저해하기 위해 생체 내에서 중화된다. 특히, G17의 중화는 호르몬이 이의 생리학적 수용체에 결합하는 것을 예방하여, 이로 인해 종양 세포의 성장을 저해한다.

항-G17 면역원은 스페이서 펩타이드에 의해, 디프테리아 톡소이드(DT)와 같은 면역원성 담체에 접합된 G17의 N-말단 아미노산의 면역유사(immunomimic) 단편을 포함하여 이루어지고, G17에 결합하고 중화시키는 항체를 증가시킨다.

본 발명의 일실시형태에서, G17에 대한 면역화의 방법은 본 발명의 면역원을 사용하여 환자를 면역시키는 것을 특징으로 하는 능동 면역을 포함하여 이루어진다. 면역원은 면역화된 환자에서 G17에 대한 항체의 생성을 자극하여, 수술에 대한 반응으로 환자의 간 세포에 의해 생성된 암-영양 호르몬 수준을 제한하도록 G17의 생리학적 효과를 중화시키고 저해하기 위해 충분한 항체 역가를 유도한다. 환자에 생성된 항-17 항체에 의한 G17 호르몬의 생리학적 중화는 가스트린을 저해하고, 이로 인해 성장 자극제 또는 유도제로서 G17에 의존하는 종양 세포의 재성장을 예방한다. 본 발명의 치료 방법은 특히 간 절제 후의 G17-반응성 가스트린-의존성 전이 종양 세포의 치료에 적합하다.

본 발명의 면역원은 두 개의 기능성 영역: 면역유사 영역 및 스페이서 영역으로 구성된 펩타이드를 포함하여 이루어진다. G17과 면역학적으로 가교-반응하는 면역유사 영역의 기능은 표적화된 G17 호르몬에 결합하는 면역화된 동물에서 항체를 유도하여, 이로 인해 G17 기능을 저해하고 G17-의존성 종양 세포의 성장을 정지시키는 것이다. 본 면역원은 시험된 모든 면역화된 동물에서 면역원의 투여 후 생물학적으로 유효한 면역 반응을 유도한다. 본 발명의 면역유사성 펩티트-스페이서는 넓은 범위의 펩타이드 대 담체 치환 비율에 대해 면역학적 담체에 결합될 수 있으며 유효 면역원을 생성할 수 있다.

실시예 1

미국 특허 제 5,785,970호에 나타난 바와 같이, G17에 대해 특이적인 면역 반응을 유도하기 위한 펩타이드는 예를 들어, 하기와 같은 표준 고체 상태 합성법으로 제조될 수 있다.

하기의 아미노산 서열을 갖는 펩타이드를 합성하였다:

펩타이드 1--인간 G17 (1-6): pGlu-Gly-Pro-Trp-Leu-Glu-Pro-Pro-Pro-Pro-Cys (SEQ ID NO: 1)

펩타이드 2--인간 G17 (1-5): pGlu-Gly-Pro-Trp-Leu-Arg-Pro-Pro-Pro-Pro-Cys (SEQ ID NO: 2)

펩타이드 3--인간 G17 (1-4): pGlu-Gly-Pro-Trp-Arg-Pro-Pro-Pro-Pro-Cys (SEQ ID NO: 3)

펩타이드 4--인간 G17 (1-9): pGlu-Gly-Pro-Trp-Leu-Glu-Glu-Glu-Glu-Ser-Ser-Pro-Pro-Pro-Pro-Cys (SEQ ID NO: 4)

상기에 나타난 각각의 펩타이드는 G17의 아미노산-말단 단편, 예를 들어, 펩타이드 1-4에 있는 인간 G17의 첫번째 4-9 아미노산, 및 카르복실-말단 스페이서 펩타이드 부분, Arg-Pro-Pro-Pro-Pro-Cys(SEQ ID NO: 5), 또는 Ser-Ser-Pro-Pro-Pro-Pro-Cys(SEQ ID NO: 6)으로 구성된다. 각각의 합성 펩타이드는 면역원을 제조하기 전의 순도 및 아미노산 함량에 대해 특징지워졌다.

각각의 이러한 펩타이드는, 결합제의 한쪽 말단에는 숙신이미딜 에스테르를 함유하고 다른쪽 말단에는 말레이미드를 함유하는 헤테로이작용성(heterobifuctional) 결합제를 사용하는 말단 펩타이드 시스테인 잔기를 통해 디프테리아 톡소이드("DT")와 같은 담체에 존재하는 아미노기에 접합되었다.

실시예 2

예를 들어, 상기 펩타이드 1-4 중 어느 하나와 담체 간의 결합을 수행하기 위해, 건성 펩타이드를 30몰 과량의 디티오스레이톨("DTT")과 함께 0.1M 인산나트륨 완충제(pH 8.0)에 용해시켰다. 상기 용액을 수포화 질소 기체 대기 하에서 4시간 동안 교반하였다. 0.2M 아세트산을 사용하여 평형을 유지시킨 G10 세파덱스(Sephadex) 컬럼 상에서의 크로마토크래피에 의해, 다른 성분으로부터 환원된 시스테인을 함유하는 펩타이드를 분리해냈다. 상기 펩타이드를 동결건조시키고 사용할 때까지 진공 하에 저장하였다. 예를 들어, 담체 10⁵분자량 당 약 25개의 유리 아미노기의 활성화를 달성하기에 충분한 비율로, 엡실론-말레이미도카프로산 N-하이드록시숙신이미드 에스테르("EMCS")와 같은 헤테로이작용성 결합제로 처리하여 담체를 활성화시켰다. 디프테리아 톡소이드의 구체적인 경우에, 이는 각각의 디프테리아 톡소이드 20 mg에 EMCS 6.18 mg(순도 75%)을 첨가하는 것에 해당한다.

각각의 20 mg 분량의(aliquot) 디프테리아 톡소이드를 0.2M 인산나트륨 완충제(pH 6.45) 1 ㎖에 용해시켜, 디프테리아 톡소이드를 활성화시켰다. EMCS 6.18 mg의 분량을 디메틸 포름아미드("DMF") 0.2 ㎖에 용해시켰다. 어둡게 한 조건 하에서, 교반하면서 EMCS를 50 마이크로리터("㎕")의 양으로 DT에 적가하였다. 어둠 속에서 2시간 동안 배양한 후, 0.1 mM EDTA를 함유하는 0.1M 시트르산나트륨 완충제(pH 6.0)를 사용하여 평형을 유지시킨 G50 세파덱스 컬럼 상에서 상기 혼합물을 크로마토크래피하였다.

EMCS 활성화된 디프테리아 톡소이드를 함유하는 분획을 어두운 조건 하에서 PM 10 한외여과막 상에서 농축시켰다. 로우리법 또는 브래드포드법(Lowry or Bradford method) 중 어느 하나에 의해 농축물의 단백질 함량을 확인하였다. 시스테인-HCl을 갖는 활성화된 담체를 배양한 후 10 mM 엘만(Elman) 시약 5,5'디티오-비스(2-니트로벤조산) 10 mM과 반응시켜 담체의 EMCS 함량을 확인하였다. 412 nm에서 5-티오-2-니트로벤조산에 대해 13.6 x 10³의 몰흡광계수(molar extinction coefficient)를 사용하여, 시스테인-HCl을 함유하는 블랭크 튜브 및 시스테인-HCl과 담체를 함유하는 시료 튜브 간의 광학 밀도 차이를 EMCS기 함량으로 변환하였다.

또한 엘만 시약을 사용하여 펩타이드의 감소된 시스테인 함량(--SH)을 확인하였다. 약 1 mg의 펩타이드를 질소 기체 포화수(nitrogen gas saturated water) 1 ㎖에 용해시키고 이 용액의 0.1 ㎖ 분량을 엘만 시약과 반응시켰다. 5-티오-2-니트로-벤조산(13.6 x 10⁶)의 몰흡광계수를 사용하여, 유리 시스테인 --SH를 계산하였다. 담체 상의 각각의 25개의 EMCS 활성화된 아미노기와 반응시키기에 충분한 유리 --SH를 함유하는 양의 펩타이드를 0.1 mM의 EDTA를 함유하는 0.1M 시트르산 나트륨 완충제(pH 6.0)에 용해시키고, 어둡게 한 조건 하에서 EMCS 활성화된 담체에 적가하였다. 모든 펩타이드 용액을 담체에 첨가한 후, 혼합물을 어둠 속에서 수포화 질소 가스 대기 하에서 밤새도록 배양하였다.

0.2M 중탄산암모늄을 사용하여 평형을 유지시킨 G50 세파덱스 컬럼 상에서 크로마토크래피하여, EMCS를 통해 담체에 결합된 펩타이드의 접합체를 혼합물의 다른 성분으로부터 분리시킨다. 컬럼 내 빈 부피(void volume)에 용리된 접합체를 동결건조시키고 사용할 때까지 -20℃에서 건조 저장한다.

상기 접합체는 중량 수득(weigh gain), 아미노산 분석 등을 포함하는 당업자에게 공지된 수많은 방법에 의해 펩타이드 함량에 관해 특징화된다. 이러한 방법들로 생성된 펩타이드 1-3과 디프테리아 톡소이드의 접합체는 10⁵몰중량의 담체 당 20 내지 25몰의 펩타이드를 갖는 것으로 확인되었으며 이들 모두는 동물의 면역화를 위한 면역원으로 적합한 것으로 생각된다.

실시예 3

다른 방법으로, 펩타이드-담체 조성물을 제조, 접합, 분리 및 정제하는 폐쇄-시스템 방법(closed-system method)를 사용할 수도 있다. 이러한 방법 및 시스템은, 전체 개시내용이 본 명세서에 참조병합되는 US 6,359,114에 개시되어 있다. 상기 방법은 폐쇄된 액체 시스템에서 수행되며 필수적으로,

(a) 접합 및 비접합 펩타이드와 다른 분자의 혼합물을 형성하기 위해, 액체 반응 혼합물 중에서 스페이서가 있거나 없는 펩타이드 면역원을 면역원성 담체 분자에 접합시키는 단계;

(b) 한외 여과 수단인 한외여과기 상의 접합된 펩타이드 분자의 보유물(retentate)을 분리시키기 위해 접합 및 비접합 펩타이드 및 다른 분자를 함유하는 액체 반응 혼합물을 한외여과하는 단계;

(c) 한외여과기 상의 접합된 펩타이드 분자의 분리된 보유물을 탈염수, 물 또는 다른 완충 용액으로 세척하는 단계;

(d) 완충 용액을 사용하여 역세 저장소(backwash reservoir)로부터 한외여과 수단을 역세하여 한외여과 수단으로부터 접합된 펩타이드 분자의 보유물을 배출시키고 분산시키는 단계;

(e) 접합된 펩타이드 분자가 실질적으로 비접합된 펩타이드 분자로부터 유리될 때까지 단계 (c)와 (d)를 반복하여 접합된 펩타이드 분자를 정제하는 단계; 및

(f) 한외여과 수단으로부터 접합된 펩타이드 분자의 보유물을 회수하거나, 추가 변형을 위해 보유물을 한외여과 수단에서 반응 용기로 재운반하는 단계로 구성된다.

상기 장치는 밸브 또는 펌프와 같은 흐름 제어 수단이 있는 관(tubing)과 같은 적합한 유동 경로를 통해 유동적으로 반응 용기와 한외여과/투석여과(diafiltration) 장치 사이에 연결된다. 시약 및 생성물을 함유하는 반응 혼합물의 액체 상은 적합한 연동 펌프를 통해 반응 용기로부터 여과 유닛 내로 이동될 수 있다. 투석여과 저장소는 반응 용기를 통해 여과 유닛의 막 상에 축적된 보유물의 세척/헹굼을 위한 여과 유닛에 연결된다. 투과물 또는 여과물은 여과 유닛으로부터 저장소로 유출될 수 있다. 백플러시(backflush) 저장소는 한외여과 유닛을 통해 반응 용기 또는 다른 적합한 저장소 내에서 역흐름(counterflow) 방향으로 보유물을 제거하기 위한 해결책을 제공한다. 선택적으로, 몰중량의 크기 차이의 순서로 몰중량 컷오프(cutoff)를 갖거나 생성물을 분리하는 데 필요한 바와 같은 여과기를 사용하여, 반응 생성물을 함유하는 단백질 또는 펩타이드의 분획화는 크기-등급의 분획으로 순차적으로 분리될 수 있다.

단계 및 실시형태의 몇 가지 조합은 단백질, 펩타이드, 또는 탄수화물과 같은 비단백질 분자와 같은 하나 이상의 다른 성분과 접합/결합시키는 것과 같은 연이은 변형 반응에 관여된 하나 이상의 성분의 첫번째 정제를 포함하는 것으로 생각될 수 있다.

상기 장치의 다양한 구성성분에 대해 구체적인 부분 번호 및 제조자가 나열되어 있지만; 그러나, 상기 장치의 효율을 감소시키지 않고, 다른 상업적 공급원으로부터의 유사한 장비가 대체될 수 있는 것으로 인식되며, 상기 장치는 본 발명의 원리로부터 벗어나지 않고 임의의 필요한 수준을 생산할 때까지 크기를 증가시킬 수 있을 것으로 이해된다.

상기 시스템의 일실시형태는 하기와 같이 보다 상세히 기재될 수 있다. 반응 용기는 2000 ㎖의 제 1형 유리(type 1 glass)로 된 호박색의 넓은 입구 병(wide mouth bottle; Wheaton)이다. 이 용기는 하기의 기준에 기초하여 선택되었다: (i)2000 ㎖ 용량은 100 ㎖ 내지 1800 ㎖의 반응 부피를 수용하고; (ⅱ) 제 1형 유리는 약제학적 제조를 위한 USP 표준에 일치하고; (ⅲ) 반응 용기의 호박색 유리는 합성에 사용되는 빛에 민감한 화학 가교결합제를 열화시킬 수 있는 빛의 투과를 제한하고; (ⅳ) 넓은 입구는 3개의 튜브에 맞는 마개에 대한 틈(clearance)을 제공하며, 이는 시약 첨가 및 시료화(sampling)에 대한 용이한 접근을 가능하게 한다. 반응 용기 벽은 용기 내의 용액의 부피가 100 ㎖의 증액으로 표시되어 있다. 반응 용기는, 균일한 간격으로 배열되고 마개를 가로질러 대각선으로 위치한 3개의 구멍이 뚫려 있는 네오프렌 마개로 덮여 있다.

적합한 I.D.의 제 1형 보로실리케이트 유리관은 마개에 있는 3개의 구멍을 각각 통과한다. 반응 용기는 적합한 관이 제공되고, 펌프로 연결되고, 펌프 작동시 용기 함유물을 효과적으로 배출하도록 용기 내에 놓여진다.

관 구획의 정확한 길이는 장치의 작동에 중요하지 않지만; 그러나, 튜브 내의 부피를 최소화하는 데 실제 사용될 수 있을 만큼 짧은 튜브 길이를 유지하는 것이 바람직하다. 밸브는 폴리프로필렌 및 테플론으로 제조된다.

연동 펌프는 Model LP1(Amicon)이다. 이는 필터 투입 압력을 조정할 수 있는 가변적 속도, 형태이며, 이는 가역적이다.

한외여과 유닛은 적합한 몰중량 컷오프를 갖는 나선형으로 감긴 막 카트리지에 맞는 나선형 막 카트리지 투석여과 농축기(#54118, Amicon)로 구성된다. 이의 용량은 이 실시형태의 작은 부피 용량의 일반적인 반응 부피와 양립할 수 있기 때문에 투석여과 농축기를 선택했다.

역세 저장소는 통합적인 투웨이 콕마개 밸브를 포함하는 500 ㎖ 유리 분리기("Buchner") 깔때기(#6402, Pyrex)로 구성된다.

작업 1: 반응.

예를 들어, 상기 반응 용기에서 짧은 펩타이드를 더 큰 단백질에 화학적으로 접합시키는 것과 같은 반응을 수행한다. 투석여과 픽업 튜브(26a)는 투석여과 저장소(27)로 침지되지 않는다. 개구(101)를 통해 용기에 반응물을 첨가한다. (필요시, 시약 첨가용 관 및 시료 제거용 관을 반응 용기 구조에 첨가할 수 있다.) 반응하는 동안 개구(101)를 폐쇄한다. 반응 혼합물을 교반하고, 반응을 진행시켜 완료시킨다. 반응 용기로부터 시료를 꺼내 반응의 진행을 관찰할 수 있다.

작업 2: 정제.

투석여과에 의해 정제를 수행한다. 투석여과 용액 저장소를 투석여과 용액으로 충전시키고 투석여과 용액 픽업용 유리관(26a)을 투석여과 용액 저장소의 바닥에 닿도록 삽입한다. 정제할 물질을 반응 용기에 첨가하고 나서, 폐쇄한다. 운반 용액을 주입부를 통해 한외여과 유닛 내로 펌프한다. 바람직한 유입 및 역압(backpressure) 하에 제조자의 권고사항에 따라 펌프 속도 및 한외여과 유닛의 완전 역압 밸브를 조절하여 한외여과 유닛을 작동시킨다.

세척 용액 뿐만 아니라 반응 용액의 여과물 배출을 수용하는 투과 저장소에 이르는 관으로부터 얻어진 시료를 시험하여 정제의 진행을 관찰한다. 용액이 낮아질 경우 투석여과 용액 저장소를 재충전시키고; 적절한 경우 투과 저장소를 비우거나 대체한다.

투과 시험이 정제가 완료됨을 나타낼 경우, 예를 들어, 투석여과 용액 공급 용기에서 투석여과 용액 밖으로 관을 세움으로써 투석여과 용액 흡입이 종결되고, 잔여 용액이 반응 용기 내로 통과된다. 따라서 밸브가 폐쇄된다. 그리고 나서 배출 또는 백플러시에 의해 한외여과 유닛 내의 시험 용액 및 관이 반응 용기 내에서 모일 수 있다.

정제 작업은 또한 완충제를 교환하기 위해 사용될 수도 있다. 새로운 용매/완충제가 투석여과 용액 저장소에 첨가된다는 것을 제외하고는 정제와 동일한 과정이 수반된다. 정제 과정은 이전의 용매/완충제가 대체될 때까지 진행된다.

작업 3: 농축.

반응 용기 내의 용액을 농축시키기 위해, 적절한 완충제 또는 저장 용액을 반응 용기에 첨가한다. 밸브를 열어 투과물이 한외여과 유닛에서 투과 저장소로 흐르게 한다. 투석여과 흡입관을 투석여과 용액 저장소 내에 놓는다(공기가 튜브를 통과할 수 있게 하기 위함.) 그리고 나서, 펌프 및 한외여과 유닛을 정제 작업에 대해서와 같이 작동시킨다. 농축 과정 동안, 용액 수준이 떨어질 때 관이 여전히 용액에 침지되어 있는지를 확인하기 위해 반응 용기 내의 용액의 수준을 관찰해야 한다. 농축이 완료되면, 펌프의 스위치를 끄고 모든 밸브를 폐쇄한다. 그리고 나서 한외여과 유닛 내의 용액(반응 생성물을 함유함) 및 관을 반응 용기 내로 배출 또는 백플러시할 수 있다.

작업 4: 배출/백플러싱

정제 및 농축 작업의 종료 시 한외여과 유닛 및 관으로부터 반응 생성물을함유하는 용액을 회수하기 위해, 이 용액을 이러한 구성성분으로부터 반응 용기 내로 배출시킬 필요가 있다. 이 작업 단계를 수행하기 위해서는, 투석여과 흡입 튜브가 투석여과 용액 저장소 속으로 낮아지지 않아, 이로 인해 공기가 투석여과 튜브를 통과할 수 있다. 밸브를 폐쇄한다. 그리고 나서, 밸브를 열어 공기가 밸브를 통해 역세 저장소(비어 있음)에서 밸브로 통과되게 한다. 그리고 나서, 밸브를 열어 공기가 밸브에서 반응 용기로 통과하도록 하여 이들 관을 배출시킨다. 한외여과 유닛을 배출시키기 위해, 공기가 밸브에서 한외여과 유닛(13)으로 통과하도록 밸브를 조정한다. 반응 생성물이 있는 용액이 한외여과 유닛으로부터 펌프를 통해 반응 용기 내로 흐르도록, 펌프를 역모드(reverse mode)로 활성화시킨다. 배출이 완료되면, 펌프의 스위치를 끄고 밸브를 폐쇄한다.

한외여과 유닛을 백플러시하기 위해, 원하는 부피의 역세 용액이 역세 저장소에 첨가되는 것을 제외하고는 한외 여과의 배출에 대해서와 같은 과정이 수반된다. 따라서, 밸프 개방 시, 역세 용액 뿐만 아니라, 공기도 역세 저장소로부터 밸브를 통해 한외여과 유닛 내로 흘러 결국 용기와 같은 반응 용기 내로 흘러 들어갈 것이다. 역세 완료되면(예를 들어, 생성물이 제거되면), 펌프의 스위치를 끄고 밸브를 폐쇄한다.

이 실시예의 과정은, 인간의 가스트린 17("hG17")에 대한 항체 반응의 유도에 사용되는 펩타이드-단백질 접합체의 합성을 위해 설계된다. 이 폐쇄 과정은 이하에 하기와 같이 보다 상세히 설명된다:

실시예 4

단계 1: DT 정제.

0.3 M 글리신 및 0.01% 티메로살을 포함하는 다른 저분자량 구성성분을 함유하는 용액에 DT를 넣는다. 접합 과정이 시작되기 전에 이러한 다른 구성성분을 제거한다. 한외여과 유닛을 사용하여 일련의 투석여과 및 농축 단계에 의해 DT를 정제한다. 각각의 투석여과에는 다량의 탈이온화수인, 반응 용기에 존재하는 시료 부피의 5배에 해당하는 투석여과 용액이 사용된다. 필터가 막히는 것을 방지하기 위해, 백플러싱을 이용하여 저장소로부터의 역세 절차를 투석여과 과정에도 도입한다. 일단 DT 정제를 위한 투석여과 절차가 완료되면, EMCS(엡실론--말레이미도카프로산 N-하이드록시숙신이미드 에스테르)와의 DT 활성화 반응을 준비하기 위해 투석여과의 3회 순환을 사용하여 5배의 부피로 인산염 완충제(0.5M 인산나트륨)를 대체한다. 단계 1이 종료되면, 투과물 세척 용액을 적절히 제거하고 순수한 DT를 반응 용기 내로 백플러싱함으로써, 상기 용액을 한외여과 유닛(30,000 MW 컷오프의 나선형으로 감긴 막 카트리지가 장치됨; Amicon, YM30S1)에서 약 20-25 mg DT/㎖로 농축시킨다. HPLC에 의해 DT 순도를 분석하고 DT의 농도를 확인한다.

단계 2: EMCS를 사용한 정제된 DT의 활성화.

다음으로, 정제된 DT를 EMCS로 활성화시켜, 말레이미도-DT(MDT)를 생성한다. 이 단계에서, EMCS의 숙신이미딜 잔기를 유리 DT 상의 c-아미노기와 반응시켜, EMCS 말레이미도기가 펩타이드에 결합되어 남아 있도록 DT에 EMCS를 결합시킨다(단계 4).

10⁵몰중량의 DT 단백질 당 존재하는 약 40개의 아미노기 중에, 약 25개가 본 실시예의 합성에서 활성화된다. 이러한 활성화의 수준을 달성하기 위해, DT 아미노기에 대해 4배의 몰의 과량의 EMCS가 요구된다. 활성화될 DT의 농도를 20 mg/㎖(+/-0.5 mg/㎖)로 조절하고 반응 용기에 재첨가한다. EMCS를 첨가하고 2시간의 반응 시간 동안 말레이미도 DT(MDT)를 형성한다.

단계 3: MDT의 정제.

다음에, 반응 용기로부터 한외여과 장치를 통해 시트레이트 세척 용액을 순환시키는 단계, 여과물을 저장소로 제거하는 단계, 선택적으로 저장소(22)로부터 역세하고 장치 내에 보유된 MDT를 농축시키는 단계를 포함하고, 최종적으로 정제된 MDT를 반응 용기에 저장하는 일련의 투석여과, 역세 및 농축 단계(상기한 바와 같음)를 통해, 반응 용기로부터 반응 혼합물을 운반함으로써, 반응되지 않고 가수분해된 EMCS를 MDT 용액으로부터 제거한다. 이 절차의 과정에서, 시트레이트(0.1M 시트르산나트륨) 결합 완충제를 완전히 인산염 완충제로 대체시킨다. 이 단계의 종료시, MDT의 양 및 이의 활성화 정도를 확인한다.

단계 4: hG17 면역원성 펩타이드와 MDT의 접합.

hG17 면역원성 펩타이드 500 mg을 질소 기체 포화 0.1 M 시트르산나트륨(SC)에 용해시키고, 반응 용기 내의 20 mg/㎖ 0.1 MSC에서 MDT 1.17 g을 함유하는 정제된 MDT 용액에 점차적으로 정제된 펩타이드 용액을 첨가하고 적합한 시간 동안 결합 반응을 진행시켜 완료함으로써, 활성화된 MDT에 결합시킨다. 펩타이드:말레이미도기(MDT 중의) 1.1:1 몰비로 펩타이드를 첨가하여 25몰 펩타이드의 원하는 치환비를 달성한다.

단계 5: 접합체 정제 및 동결건조.

0.2 M 중탄산암모늄 용액(AB)을 사용하여 접합체 반응 용액(83.5 ㎖)을 1.0 L-부피까지 희석시킨 후 약 5배의 농도로 약 100 ㎖의 부피로 만들었다. 그 후, 접합체만을 효과적으로 보유하고 있는 AB 용액 500 ㎖를 사용하여 한외여과 유닛(13) 내의 30,000 Da 컷-오프의 나선형으로 감긴 막 상에서 상기 용액을 폐쇄 시스템 투석여과하고, AB 용액 100 ㎖로 역세하고 나서 생성물 용액을 다시 100 ㎖로 농축시켰다. 이 투석여과-역세-농축 과정을 2회 이상 반복한 후, 이증류수 중에서 투석여과-역세-농축 과정을 3회 순환시켰다. 이러한 최종 처리 후, 시스템 관 및 막 카트리지를 배출시켜 미량의 AB를 제거하였다. 반응 용기에서 접합체 용액 자체를 제거하고 H₂O에 약 2 mg/㎖로 희석시키고 나서 동결건조하여 임의의 잔사 AB를 승화시켰다. 접합체의 수율은 1.4 gm인 것으로 밝혀졌다.

접합체는 HPLC에 의해 분석되었고 균질성을 나타내는 단일 피크를 포함하는 것으로 밝혀졌다. 대조적으로, 종래의 방법에 의해 제조된 접합체는 약 3개의 뚜렷한 피크를 포함했기 때문에, HPLC 분석에 의해 순수하지 않은 것으로 나타났다. 또한, 본 실시예에서의 합성은 완성하기까지 단지 1.5일이 걸렸으며, 이는 종래 방법에 의해 합성을 수행하는 데 3일이 필요한 것에 비해 훨씬 우수하다.

접합 및 정제의 방법에 관계 없이, 본 발명의 면역원성 조성물은 예를 들어,산제, 액체 용액제, 현탁제, 좌제, 및 주사가능한 용액 및 주입가능한 용액과 같은 고체, 반고체 및 액체 투여 형태와 같은 다양한 형태를 취할 수 있다. 상기 조성물은 본 발명의 면역원 및 적합한 약제학적으로 허용가능한 성분을 포함하여 이루어질 수 있으며, 다른 약제, 담체, 보조제, 부형제 등을 포함할 수 있다. 적합한 보조제에는, 이에 제한되지는 않으나, 노르-뮤라밀 디펩타이드(nor-muramyl dipeptide; nor-MDP, Peninsula Labs., CA), 및 몬타나이드 ISA 703(Montanide ISA 703; Seppic, Inc., Paris, France)과 같은 오일이 포함되며, 이는 표준 절차를 사용하여 혼합될 수 있다.

본 발명의 다른 실시형태에서, 치료 방법은 G17에 대한 항체를 비결합 G17을 순환시키는 수준을 감소시키는 데 충분한 농도로 환자에 투여하는 수동 면역화를 포함하여 이루어진다. 항-G17 항체 투여의 결과로서 환자의 순환 혈액에서 유리 G17 및 G17-Gly의 감소된 수준은 눈에 보이지 않는 종양 또는 미세전이성 종양 세포의 성장을 저해한다. 수동 면역 요법에 사용하기 위한 항-G17 항체는 예를 들어, 숙주를 실시예 1의 면역원으로 면역화한 후 예비 친화 크로마토그래피와 같은 표준 방법으로 숙주의 혈청으로부터 항-G17 항체를 분리시켜 생성될 수 있다. 선택적으로, 수동 면역 요법을 위한 항-G17 항체는, 당해 기술분야에 주지된 생물공학적 방법으로 제조된 키메라, 인간화된, 또는 인간의 모노클로날 항체일 수 있다.

본 발명은 또한 예를 들어, CCK-B/가스트린 수용체와 같은 가스트린 수용체에 대해 환자를 능동적 및/또는 수동적으로 면역함으로써, 폐, 간, 및 식도의 암 및/또는 전암 상태를 치료 및/또는 예방하는 것에 관한 것이다. CCK-B/가스트린 수용체에 대한 면역화는 단독으로 또는 가스트린 그 자체에 대한 면역화와 조합하여 사용될 수 있다. CCK-B/가스트린 수용체에 대한 치료 항체의 제조를 위한 면역원 제조 방법은, 전체 개시내용이 본 명세서에 참조 병합되는 미국 특허 출원 제 09/076,372호에 상세히 개시되어 있다. 수동 면역을 위한 본 발명의 항체는 식염수와 같은 약제학적으로 허용가능한 담체, 예를 들어, 인산염-완충 염수를 사용하여 또는 다른 방법에 의해 환자에 정맥내 투여될 수 있다.

실시예 5

미국 특허 출원 제 09/076,372호에 나타난 바와 같이, 면역화된 숙주에서 CCK-B/가스트린 수용체에 대한 항체 반응을 생성하기 위해 면역원성 담체 분자에 접합된 CCK-B/가스트린-수용체로부터의 펩타이드를 포함하여 이루어지는 면역원을 사용할 수도 있다. 이러한 반응을 유도하기 위해, 예를 들어, 면역원성 펩타이드 단편 KLNRSVQGTGPGPGASL(서열 목록의 SEQ ID NO.: 7, CCK-B/가스트린-수용체 서열의 아미노산 5 부터 21에 대응함) 또는 GPGAHRALSGAPISF(서열 목록의 SEQ ID NO.: 8, CCK-B/가스트린 수용체의 네번째 세포외 도메인에 대응함)을 사용할 수 있다. 본 발명의 일실시형태에서, 이러한 면역원성 펩타이드는 SSPPPPC(서열 목록의 SEQ ID NO.: 6)과 같은 카르복시-말단 스페이서 펩타이드 서열을 더 포함하여 이루어진다. 면역원성 담체는 예를 들어, 디프테리아 톡소이드, 파상풍 톡소이드 및 소혈청알부민으로 구성된 그룹으로부터 선택될 수 있다. 본 발명의 일실시형태에서, 스페이서를 갖는 CCK-B/가스트린-수용체 면역원성 펩타이드는 본 명세서의 실시예 1에 기재된 바와 동일한 방법으로 면역원성 담체인 디프테리아 톡소이드에 접합된다.

면역원성 조성물의 유효 투여량은 위장관암의 치료를 위해 환자에 투여되는 0.001 내지 10 mg의 범위를 포함한다. 본 발명의 다른 실시형태에서는, 0.001 내지 2 g의 투여량이 사용된다. 또한 상기 수용체에 대한 항체 역가 수준은 환자로부터 채취한 혈액의 시료로부터 확인될 수 있다. 유효 항체 역가를 유지하는 데 필요한 경우 2차(booster) 면역이 주어질 수 있다.

또한 수동 면역 요법을 위한 항-CCK-B/가스트린 수용체 항체는, 숙주를 CCK-B/가스트린 수용체 면역원성 펩타이드 조성물로 면역화하거나 또는 당해 기술 분야에 공지된 임의의 다른 방법에 의해 제조될 수도 있다.

하기의 본 발명의 실시형태는, 이들 모두가 환자를 G17 가스트린 및/또는 CCK-B/가스트린 수용체에 대해 능동적 및/또는 수동적으로 면역화하는 것을 포함하는 것과 관련된다.

본 발명의 일실시형태는 암이 간으로 전이되는 것을 예방하기 위한 것이다. 예를 들어, 위장관 악성종양에 걸린 환자와 같이 간의 전이성 종양이 발병할 위험이 있는 환자를 G17 가스트린 및/또는 CCK-B/가스트린 수용체에 대해 능동적으로 및/또는 수동적으로 면역화한다. 본 발명의 다른 실시형태는 암이 폐로 전이되는 것을 예방하기 위한 것이다. 예를 들어, 위장관 악성종양에 걸린 환자와 같이 폐의 전이성 종양이 발병할 위험이 있는 환자를 G17 가스트린 및/또는 CCK-B/가스트린 수용체에 대해 능동적 및/또는 수동적으로 면역화한다.

본 발명의 또다른 실시형태는, 간 자체 내에서 발생하거나 체내의 다른 부위에서 간으로 전이된 것 중의 하나인 간암의 치료를 위한 것이다. 본 발명의 유사한실시형태는, 폐 자체 내에서 발생하거나 체내의 다른 부위에서 폐로 전이된 것 중의 하나인 폐암의 치료를 위한 것이다. 본 발명의 또다른 실시형태는, 식도 자체 내에서 발생하거나 체내의 다른 부위에서 식도로 전이된 것 중의 하나인 식도암의 치료를 위한 것이다.

관련 실시형태에서, G17 가스트린 및/또는 CCK-B/가스트린 수용체에 대한 능동 및/또는 수동 면역화와 함께, 도세탁셀(Taxotere) 또는 파클리탁셀(Taxol)과 같은 탁산을 포함하여 이루어지는 조합(동시 또는 순차적) 요법에 의해 폐암을 치료한다. 본 발명에 따르면, 비-소세포 폐암의 치료에서는, 가스트린 및/또는 가스트린 수용체에 대한 면역화 뿐만 아니라, 1-1000 mg/㎡의 투여량의 도세탁셀 또는 파클리탁셀을 3주에 한번씩 정맥내 투여한다. 본 발명의 다른 실시형태에 따르면, G17 가스트린 및/또는 CCK-B/가스트린 수용체에 대한 능동 및/또는 수동 면역과 함께, 시스플라틴, 카르보플라틴 또는 옥사로플라틴과 같은 백금 화합물을 포함하여 이루어지는 조합(동시 또는 순차적) 요법에 의해 폐암을 치료한다. 본 발명은 또한 간, 폐 또는 식도의 전암 상태 뿐만 아니라, 간암 및 식도암의 치료를 위한 이러한 조합 요법을 제공한다. 단독으로 또는 본 발명의 면역과 조합하여 복합적으로 사용될 수 있는 다른 화학요법제에는, 이에 제한되는 것은 아니나, 이리노테캄, 토포테칸, 5-플루오로우라실+류코보린, 및 젬시타빈이 포함된다.

본 발명의 또다른 실시형태는 전-악성종양(전암) 상태, 바렛 식도의 치료를 위한 것이다. 본 발명의 관련 실시형태는 바렛 식도가 암 상태, 예를 들어, 선암으로 진행되는 것을 예방 또는 지연시키기 위한 것이다.

참조문헌

Claims

G₁₇이 전암 또는 암 세포 상의 이의 수용체에 결합하는 것을 저해하는 G₁₇및/또는 CCK-B/가스트린 수용체에 대한 항체를 환자 내에서 유도하는 면역원을 이를 필요로 하는 환자에 투여하는 단계를 포함하여 이루어지는, 폐, 식도 또는 간의 암 또는 전암 상태의 치료 방법.
생체 내에서 펩타이드 호르몬 G₁₇을 선택적으로 중화시키거나 생체 내에서 항-CCK-B/가스트린 수용체의 활성화를 저해하는 항-G₁₇항체 및/또는 항-CCK-B/가스트린 수용체 항체를 환자에 투여하는 단계를 포함하여 이루어지는, 폐, 식도 또는 간의 암 또는 전암 상태의 치료 방법.
환자의 고유한 G₁₇에 선택적으로 결합하여 중화시키는 충분한 역가의 항체를 환자에서 유도할 수 있는 면역원을 이를 필요로 하는 환자에 투여하는 단계를 포함하여 이루어지는, 폐, 식도 또는 간의 암 또는 전암 상태의 치료 방법.
폐, 간 또는 식도 내의 암 또는 전암 세포에 발현된 CCK-B/가스트린 수용체 분자에 선택적으로 결합하여 중화시키는 충분한 역가의 항체를 환자에서 유도할 수 있는 면역원을 면역원을 이를 필요로 하는 환자에 투여하는 단계를 포함하여 이루어지는, 폐, 식도 또는 간의 암 또는 전암 상태의 치료 방법.
제 2항 내지 제 4항 중 어느 한 항에 있어서,

상기 상태가 적어도 부분적으로 가스트린-촉진된 폐암인 것을 특징으로 하는 방법.
제 5항에 있어서,

상기 폐암이 폐에서 기원한 것을 특징으로 하는 방법.
제 5항에 있어서,

상기 폐암이 전이성 기원을 갖는 것을 특징으로 하는 방법.
제 7항에 있어서,

상기 폐암의 전이성 기원이 위장관 악성종양인 것을 특징으로 하는 방법.
제 2항 내지 제 4항 중 어느 한 항에 있어서,

상기 상태가 간암인 것을 특징으로 하는 방법.
제 9항에 있어서,

상기 간암이 간에서 기원한 것을 특징으로 하는 방법.
제 9항에 있어서,

상기 간암이 전이성 기원을 갖는 것을 특징으로 하는 방법.
제 11항에 있어서,

상기 간암의 전이성 기원이 위장관 악성종양인 것을 특징으로 하는 방법.
제 2항 내지 제 4항 중 어느 한 항에 있어서,

상기 상태가 전암 상태인 것을 특징으로 하는 방법.
제 13항에 있어서,

상기 상태가 바렛 식도인 것을 특징으로 하는 방법.
제 14항에 있어서,

상기 치료 방법이 바렛 식도가 암 상태로 진행되는 것을 예방하거나 지연시키는 것을 특징으로 하는 방법.
G₁₇이 종양 상의 이의 생리학적 수용체에 결합하는 것을 저해하도록 G₁₇의 아미노 말단에 위치한 에피토프에 결합하는 항-G₁₇항체를 환자에 투여하는 단계를 포함하여 이루어지는, 생체 내에서 펩타이드 호르몬 G₁₇을 선택적으로 중화시킴으로써 환자에서 폐, 간 또는 식도의 가스트린-유도 종양 또는 전암 손상의 성장을 치료하는 방법.
헤파데카가스트린(G₁₇)과 선택적으로 결합하는 항체를 환자에 투여하는 단계를 포함하여 이루어지는, 폐, 간 또는 식도의 가스트린-유도 장애의 치료 방법.
생체 내에서 호르몬 G₁₇을 중화시키는 치료제를 투여하는 단계를 포함하여 이루어지는, 포유류에서의 폐, 간 또는 식도 장애의 암 또는 전암 상태의 치료 방법.
CCK-B/가스트린 수용체에 대한 환자 내에서의 항체를 상승시키는 면역원을 이를 필요로 하는 환자에게 투여하는 단계를 포함하여 이루어지고 상기 항체가 가스트린이 수용체에 결합함으로써 야기된 가스트린 수용체의 활성화를 차단하는 것을 특징으로 하는, 폐, 간 또는 식도의 암 또는 전암 상태의 치료 방법.
가스트린이 수용체에 결합함으로써 야기된 가스트린 수용체의 활성화를 차단하는 항-CCK-B/가스트린 수용체 항체를 환자에 투여하는 단계를 포함하여 이루어지는, 폐, 간 또는 식도의 암 또는 전암 상태의 치료 방법.
제 22항 또는 제 23항에 있어서,

G₁₇에 대한 항체를 상승시키는 면역원을 투여하는 단계를 더 포함하여 이루어지는 것을 특징으로 하는 방법.
제 22항 또는 제 23항에 있어서,

생채 내에서 펩타이드 호르몬 G₁₇을 선택적으로 중화시키는 항-G₁₇항체를 투여하는 단계를 더 포함하여 이루어지는 것을 특징으로 하는 방법.
제 1항 또는 제 2항에 있어서,

상기 상태가 식도의 암인 것을 특징으로 하는 방법.
제 26항에 있어서,

상기 암이 선암(adenocarcinoma)인 것을 특징으로 하는 방법.
제 1항에 있어서,

시스플라틴, 카르보플라틴, 옥살로플라틴, 이리노테칸, 토포테칸, 5-플루오로우라실, 류코보린, 젬시타빈, 및/또는 탁산의 투여를 포함하여 이루어지는 보조 화학요법을 더 포함하여 이루어지는 것을 특징으로 하는 방법.
(a) 제공 및/또는 유도된 항체가 G₁₇이 전암 세포 상의 이의 수용체에 결합하는 것을 저해하거나 및/또는 상기 수용체의 활성화를 저해하는 것을 특징으로 하는, G₁₇가스트린 및/또는 CCK-B/가스트린 수용체에 대해 환자를 능동적으로 및/또는 수동적으로 면역시키는 단계; 및

(b) 유효량의 도세탁셀을 환자에 동시에 또는 순차적으로 투여하는 단계를 포함하여 이루어지는, 비-소세포 폐암의 치료 방법.