이하, 본 발명을 좀 더 구체적으로 설명하면 다음과 같다.
일반적으로 로도투룰라 균은 사과, 배 등에서 과실의 변패의 원인균으로, 문헌 (대한신장학지 11(1) 85-87, 1992)에 의하면, 외래복막투석 환자에 있어 복막염을 일으키는 매우 드문 원인균으로서, 비경제적인 균으로 알려져 왔다. 그러나, 본 발명에서는 발효식품인 메주에서 분리한 로도투룰라 글루티니스 균을 이용하여, 이소플라본 아글루콘의 생산능을 실험한 결과, 기존의 이소플라본 아글루콘 전환능을 지닌 다른 균과 비교하여 성능이 결코 뒤지지 않음을 발견하였고, 이에 기초하여 종래에 기탁된 로도투룰라 글루티니스를 실험한 결과, 이소플라본 아글루콘 전환능이 우수한 장점을 갖고 있음을 발견하였다.
균의 선발은 경기도 일원에서 수집한 각각의 메주를 분쇄하여 시료를 멸균증류수로 10, 100배 희석한 후 희석액을 감자 덱스트로우즈(Potato dextrose agar)배지에 도말하여 30℃에서 배양하여 성장속도가 빠르고, 형태학적 특성이 다른 균주를 1차 선발하였고, 이들 선별된 균주들을 대두 및 대두배아 추출액이 포함된 평판배지(추출액85%, agar15%)에서 배양시켜 2차 선발하였다. 2차 선발에서 선별된 균주들을 이소플라본 전환능이 우수하고, 생산성이 높은 균주를 3차 선발하였다.
이렇게 선발된 균주의 동정은 형태학적 및 생리학적 특성을 조사하였고, 바넷 (Barnett)등 (Yeast:Characteristics and identification. 캠브리지 대학 출판부, 런던, 1983)의 분류방법에 따라 동정하여 본 균주를 로도투룰라 글루티니스로 동정하여 1999. 10. 13.자에 한국종균협회에 국제 기탁하였다(기탁번호 KCCM-10172호).
성장배지로는 감자 덱스트로우즈(Potato dextrose) 배지를 사용하였고, 플라스크의 발효배지로는 대두 또는 대두배아 추출액을 사용하였다. 본 발명에서 사용된 대두 및 대두배아 추출액은 β-글리코시다아제, α-글리코시다아제, 펙티나아제 등을 사용시 이소플라본 아글루콘으로 전환됨을 보여주었으며, 이로부터 본 발명의 로도투룰라 글루티니스는 상기 효소들을 생산하는 것으로 판단된다. 상기 추출액의 고형분 농도는 8∼20g/l이 바람직하며, 상기 농도가 8g/l미만이면 전환율은 높으나 산업화시 설비용량이 커져 비경제적인 문제가 발생하고, 20g/l를 초과하면 설비용량은 낮아지지만 발효에 의한 전환율이 낮아지는 문제가 있다.
종배양은 냉동 보관된 균주를 감자 덱스트로우즈 배지에 접종하여, 진탕배양기에서 성장시켰다. 발효조 배양에서는 발효초기에 대두 및 대두배아 추출액을 배지로 사용하였다. 발효과정중 교반속도는 300∼600rpm으로 조절하였고, 통기량은 0.5∼2.5vvm으로 조절하였다. pH는 발효 전과정 동안 4.0∼8.0으로 조절하였으며, 만일 상기 pH가 4.0이하로 떨어질 경우 균체의 성장이 늦어지면서 생산성이 낮아지는 문제가 발생하며, 8.0을 초과하면 균의 성장은 가능하나 효소활성이 떨어져 전환능이 낮아지는 문제가 발생한다. 배양온도는 25∼35℃로 조절하였으며, 만일 상기온도 범위를 벗어날 경우, 균체성장에 영향을 주어 전환능이 낮아지는 문제가 발생한다. 배양시간은 바람직하게는 30∼54시간이다.
발효과정동안 용존산소는 인골드(Ingold)(Swiss, polarographic type)의 용존산소전극을 사용하여 측정하였으며, 발효시점에서는 350∼400rpm으로 하고, 발효진행시 감소하는 용존산소를 발효 초기 용존산소 100%에 대하여 적어도 20%이상으로 높여주기 위해 회전수를 400∼600rpm으로 조절하였으며, 주입공기량도 이에 맞추어 조절하였다. 만일, 용존산소가 상기 20%이하로 낮아질 경우 균체량이 감소하는 문제가 발생할 수 있다.
이소플라본 아글루콘의 주성분인 다이드제인, 글라이시테인 및 제니스테인의 농도는 SUPELCOSIL LC-18 (SUPELCO, USA)칼럼이 장착된 HPLC (Water, USA)에 UV 검출기를 이용하여 260nm에서 측정하였다. 이때, 용매는 아세트나이트릴, 물, 초산을 70:30:0.1로 혼합한 액을 사용하였고, 상온에서 유속은 1.0ml/min이였다. 균체 농도는 탁도계를 이용하여 600nm에서 현탁도를 측정하여 미리 측정한 표준곡선을 이용하여 건조 중량으로 환산하였다.
이하 실시예를 통하여 본 발명을 좀 더 구체적으로 설명하지만, 하기 실시예에 본 발명의 범주가 한정되는 것은 아니다.
실시예 1
종 배양 : 균주 로도투룰라 글루티니스 (한국종균협회 KCCM-10172호)를 감자 덱스트로우즈 배지 50ml가 들어있는 250ml 플라스크에 접종하여 240rpm 30℃로 24시간 배양하였다.
본 배양 : 종 배양액을 추출액 50ml가 들어있는 250ml 플라스크에 접종한 후, 진탕배양기로 220rpm에서 30℃로 배양하였고, 배지의 pH는 발효 초기에 5.0로 조절한 후 유지시켰다. 시간 경과에 따른 이소플라본 아글루콘의 생산을 살펴본 결과를 하기 표 1에 나타내었다. 배양시간 6일째에서 최대의 이소플라본 아글루콘이 생산되었다.
250ml 플라스크에서 분리균주의 시간에 따른 이소플라본 아글루콘 생성량
배양일 |
배당체농도(ppm/l) |
아글루콘 농도(ppm/l) |
전환율(%) |
생산성(ppm/l-일) |
순도(%) |
0 |
100 |
0.50 |
0 |
0 |
9 |
2 |
73 |
15 |
30 |
7.5 |
17 |
4 |
42 |
27 |
54 |
6.75 |
39 |
5 |
25 |
38 |
76 |
7.6 |
60 |
6 |
0 |
48.0 |
96 |
8.0 |
100 |
전환율(%) :((이소플라본 아글루콘X2)/이소플라본 배당체) X100.
생산성(ppm/L-일) :이소플라본 아글루콘 (ppm/l) / 일(day).
순도(%): (이소플라본 아글루콘/(이소플라본 아글루콘+이소플라본 배당체)) X 100.
실시예 2
배양 방법은 실시예 1과 같고, 본 배양에서 추출액의 농도를 변화시켜 6일 (144시간) 동안 배양한 결과를 하기 표 2에 표시하였다.
250ml 플라스크에서 추출액 농도별 이소플라본 아글루콘의 생성량
추출액 고형분(g/l) |
초기배당체농도(ppm/l) |
아글루콘(ppm/l) |
전환율(%) |
생산성(ppm/l-시) |
순도(%) |
5 |
1150 |
525 |
91.3 |
3.65 |
84.0 |
10 |
1980 |
912 |
92 |
6.3 |
85.4 |
20 |
4050 |
1850 |
91.3 |
12.85 |
84.1 |
25 |
4550 |
1550 |
68.1 |
10.76 |
51.6 |
전환율(%) :((이소플라본 아글루콘 X2)/이소플라본 배당체) X100.
생산성(ppm/L-시) :이소플라본 아글루콘 (ppm/l) / 시간.
순도(%): (이소플라본 아글루콘/(이소플라본 아글루콘+이소플라본 배당체)) X 100.
실시예 3
종 배양은 실시예 1과 같고, 본 배양에서 고형분 농도가 10%인 추출액을 배지로 하고 발효액이 10 l인 15 l발효조를 사용하여 배양하였다. 배양온도 30℃에서 pH를 변화시켜 실험을 수행하였다. 통기량은 1.0vvm이었고, 교반속도는 350rpm으로 조절하여 pH를 변화시켜 48시간 배양한 결과를 하기 표 3에 표시하였다.
15 l 발효조에서 pH 별 이소플라본 아글루콘의 생성량
pH |
초기 배당체농도(ppm/l) |
아글루콘(ppm/l) |
전환율(%) |
생산성(ppm/l-시) |
순도(%) |
3.0 |
1980 |
300 |
30 |
6.25 |
17.9 |
5.0 |
470 |
47 |
9.79 |
31.1 |
7.0 |
430 |
43 |
8.96 |
27.7 |
9.0 |
310 |
31.3 |
8.33 |
18.6 |
전환율(%) :((이소플라본 아글루콘X2)/이소플라본 배당체) X100.
생산성(ppm/L-시) :이소플라본 아글루콘 (ppm/l) / 시간.
순도(%): (이소플라본 아글루콘/(이소플라본 아글루콘+이소플라본 배당체)) X 100.
실시예 4
배양방법과 발효배지는 실시예 3과 같고, 배양 pH는 최적 배양 pH인 5.0으로 하고, 통기량은 1.0vvm이었고, 교반속도는 350rpm으로 조절하여 하기와 같이 배양온도를 변화시키면서 48시간 발효를 수행하였고, 배양한 결과를 표 4에 표시하였다.
15 l 발효조에서 온도별 이소플라본 아글루콘의 생성량
온도(℃) |
초기 배당체(ppm/l) |
아글루콘(ppm/l) |
전환율(%) |
생산성(ppm/l-시) |
순도(%) |
20 |
1980 |
350 |
35.4 |
7.29 |
21.4 |
25 |
480 |
48.5 |
10.0 |
32 |
30 |
500 |
50.5 |
10.41 |
33.8 |
35 |
320 |
32.3 |
6.67 |
19.3 |
40 |
200 |
20.2 |
4.16 |
11.2 |
실시예 5
선정된 최적조건에서 이소플라본 아글루콘의 생산량을 경과시간에 따라 전환율이 최고점에 이르는 실험을 실시하였다. 추출액 10 l를 15 l 발효조에서 고형분 농도(10%), 용존산소는 교반속도를 300∼600rpm으로 조절하여 20%이상 유지되도록 조절하였다. pH는 발효 전과정 동안 5.0으로 조절하였고, 배양온도는 30℃이었다. 시간에 따른 이소플라본 아글루콘의 생산은 표 5에 나타내었다. 이러한 방법으로 추출액 내에 배당체 형태로 존재하는 이소플라본으로부터 발효를 이용하여 배당체가 제거된 아글루콘 형태의 이소플라본(아글루콘 순도 90%이상)을 얻었다.
15 l 발효조에서 추출액 10 l로부터 시간별 아글루콘의 생성량
시간 |
배당체 농도(g/l) |
아글루콘 농도(ppm/l) |
전환율(%) |
생산성(ppm/l-시) |
순도(%) |
0 |
2000 |
0 |
- |
- |
- |
6 |
2000 |
0 |
- |
- |
- |
12 |
1800 |
50 |
5 |
4.16 |
0.02 |
18 |
1150 |
500 |
50.2 |
27.8 |
30.4 |
24 |
900 |
550 |
55 |
22.9 |
37.9 |
30 |
500 |
700 |
70 |
23.3 |
58.3 |
36 |
240 |
850 |
85 |
23.61 |
78.0 |
42 |
50 |
970 |
97 |
23.10 |
95.1 |
48 |
0 |
900 |
90 |
18.75 |
100 |
54 |
0 |
760 |
76 |
14.07 |
100 |
실시예 6
종래의 로도투룰라 글루티니스와 본원 발명의 로도투룰라 글루티니스의 이소플라본 아글루콘 전환율을 비교하여 보았다. 초기 배당체의 농도는 1980ppm/l로 동일한 추출액을 사용하였다. 발효조건은 본원 발명의 조건으로 하였으며, 40시간 발효한 결과를 표 6에 나타내었다.
15 l 발효조에서 추출액 10 l로부터 시간별 아글루콘의 생성량
균주명 |
아글루콘 농도(ppm/l) |
전환율(%) |
생산성(ppm/l-시) |
순도(%) |
KCCM-50262(ATCC-2527) |
810 |
81 |
20.25 |
69.2 |
KCCM50531(IFO1501) |
780 |
78 |
19.5 |
65.0 |
KCCM50528(IFO 1099) |
790 |
79 |
19.75 |
66.4 |
KCCM-10172 |
970 |
97 |
24.5 |
96.0 |