KR102699320B1 - 수용성 메탄 모노옥시게나제의 환원효소 변이체 및 이를 이용한 탄화수소의 산화물 생산 방법 - Google Patents

수용성 메탄 모노옥시게나제의 환원효소 변이체 및 이를 이용한 탄화수소의 산화물 생산 방법 Download PDF

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Abstract

본 발명은 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체에 관한 것으로, 메틸로시너스(Methylosinus) 속 미생물 유래의 서열번호 1의 아미노산 배열에서 159번째 세린(Serine, S), 161번째 세린, 184번째 세린 중 적어도 어느 하나가 각각 독립적으로 다른 아미노산으로 치환된 메탄 모노옥시게나제 변이체, 이를 암호화하는 유전자를 제공한다. 본 발명의 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체는 종래의 메탄 모노옥시게나제 환원효소에 비해 효소 활성이 우수하여 보다 친환경적이면서도 높은 수율로 생산할 수 있는 장점이 있다.

Description

수용성 메탄 모노옥시게나제의 환원효소 변이체 및 이를 이용한 탄화수소의 산화물 생산 방법{Reductase variant of soluble methane monooxygenase and method for producing hydrocarbon oxide using the same}
본 발명은 수용성 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체 구성을 통한 반응성 증대에 관한 것이다.
지구 온난화를 유발하는 온실가스 중 하나인 메탄가스는 온실가스의 대부분을 차지하는 이산화탄소에 비하여 구성 비율은 낮다. 하지만, 메탄가스는 이산화탄소에 비해 약 33배 높은 열용량을 가지고 있어 지구 온난화 현상을 방지하기 위해 메탄가스의 저감 기술 개발의 필요성이 대두되고 있다.
현재 공업 분야에서 이용되고 있는 메탄의 산화 공정들은 강하게 결합하고 있는 탄소-수소간 결합(104.9 kcal/mol)을 활성화시키기 위하여 높은 압력과 온도를 필요로 하며, 공정에 발생하는 비용적인 측면과 부수물을 처리하기 위한 추가 공정이 필요하다는 점에서 경제적으로 비효율성을 갖는다. 따라서, 이러한 문제의 대안으로 메탄가스 전환을 위한 생물학적 공정의 적용이 요구되어지며, 효소의 바이오 에너지 전환 및 바이오 전환을 목적으로 한 생물 공학적 연구가 활발히 진행되고 있다. 생물학적 공정의 경우 상온·대기압 조건에서 반응을 진행할 수 있어 비용적인 측면에서 높은 장점을 갖으며, 반응 부수물이 발생하지 않는다는 장점이 있어 다양한 산업화의 응용이 가능할 것으로 기대된다.
상기와 같이 생물학적 공정을 수행하기 위해 효소는 메탄을 기질로 하여 효소 촉매 회로에 따라 메탄의 히드록실화가 진행되어지며, 메탄가스를 유일한 탄소 에너지원으로 이용하는 메탄균의 경우 세포 내에서 메탄 모노옥시게나제를 이용하여 메탄을 메탄올로 산화시킨다. 메탄 모노옥시게나제는 수용성 메탄 모노옥시게나제와 미립자 메탄 모노옥시게나제의 두 가지 형태로 발현되며, 메탄 균주의 배양에 있어 구리 이온이 배제된 2형 메탄균 상태에서만 수용성 메탄 모노옥시게나제로 발현되는 특징을 갖는다.
수용성 메탄 모노옥시게나제에서 발생하는 기질의 산화에는 세 가지 효소가 관여한다. 활성 부위(이철 부위)를 포함하여 메탄의 산화가 이루어지는 수산화효소(MMOH), 수산화효소에 결합하여 메탄 모노옥시게나제의 반응을 촉진시키는 조절효소(MMOB), 메탄의 지속적인 산화를 위하여 활성 부위에 전자를 공급하고, 이철을 환원된 형태로 전환시키는 환원효소(MMOR)로 구성된다. 수용성 메탄 모노옥시게나제의 경우 메탄을 비롯한 알칸, 알킨, 할로겐 화합물 등 다양한 탄화수소 화합물을 산화시킬 수 있으며, 이에 따라 생물공학적인 방법으로 각 기질의 특성에 따른 알콜 및 산화물을 생성시킬 수 있는 장점이 있다.
수용성 메탄 모노옥시게나제는 생화학적·분자생물학적 접근이 용이하지 않은 효소라는 측면에서 구조적·기능적 연구를 진행하기에 한계가 있었다. 또한 종래에 수용성 메탄 모노옥시게나제의 잠재적 이용 가능성을 파악하기 위해 진행하였던 효소 활성 연구 또한 수용성 메탄 모노옥시게나제의 효소 활성만을 측정할 수 있었으며, 효소 반응으로부터 형성되는 생성물을 정량화하기 어려워 산업적으로 이용하기 불충분하였다.
이에 따라, 수용성 메탄 모노옥시게나제의 산업적 활용을 위하여 구조적·기능적 연구 및 촉매로서의 잠재적 이용 가능성을 파악하기 위한 효소 활성 증대를 위한 연구 개발이 요구되고 있다.
본 발명의 목적은 수용성 메탄 모노옥시게나제 환원효소의 변이체로부터 화학 반응 기작을 파악하고, 이를 이용하여 탄화수소 산화물을 생산하는 방법을 제공하는 것이다.
상기의 목적을 달성하기 위하여, 본 발명의 일 측면은 서열번호 1의 아미노산 서열에서 159번째 세린(Serine, S)이 알라닌(Alanine, A)으로 치환되거나, 161번째 세린(Serine, S)이 알라닌(Alanine, A)으로 치환되거나, 184번째 세린(Serine, S)이 알라닌(Alanine, A)으로 치환된 수용성 메탄 모노옥시게나제 환원효소(reductase), MMOR 변이체를 제공한다.
또한, 상기의 목적을 달성하기 위하여 본 발명의 다른 측면은 상기 수용성 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체를 암호화하는 유전자를 제공한다.
또한, 상기의 목적을 달성하기 위하여 본 발명의 또 다른 측면은 상기 유전자를 포함하는 재조합 발현 벡터 및 상기 재조합 발현 벡터가 수용성세포에 도입된 형질전환체를 제공한다.
또한, 상기의 목적을 달성하기 위하여 본 발명의 또 다른 측면은 상기 수용성 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체를 통하여 진행한 단백질 간 결합 능력 측정 및 효소 활성 측정 결과로부터 전자전달에 관여하는 잔기를 규명하고, 인 비트로(in vitro)에서의 최적의 활성을 갖는 탄화수소 산화물 생산 방법을 제공한다.
아울러, 상기 목적을 달성하기 위하여 본 발명의 또 다른 측면은 상기 형질전환체를 프로필렌(propylene)이 존재하는 환경에서 인 비트로(in vitro)에서의 수용성 메탄 모노옥시게나제에 의하여 형성된 프로필렌 옥사이드(propylene oxide)의 생산 방법을 제공한다.
본 발명의 수용성 메탄 모노옥시게나제의 환원효소의 변이체로부터 수용성 메탄 모노옥시게나제의 전자전달에 관여하는 잔기를 규명하였으며, 이는 생화학적·분자생물학적 촉매 모사 연구에 적용되어 메탄을 포함한 탄화수소 기질로부터 탄화수소 산화물을 생산해 내는데 이용될 수 있다. 또한, 상온·대기압 조건에서 기질로부터 산화물을 생성하는 과정에서 부수물을 형성하지 않으므로 경제적·환경적인 측면에서 유리하게 작용할 수 있다.
본 발명을 통하여 최적의 조건에서 수용성 메탄 모노옥시게나제에 의하여 생성되는 탄화수소 산화물을 정량적으로 수치화하였으며, 이를 통해 수용성 메탄 모노옥시게나제의 촉매로써의 잠재적 가능성을 확인하여 산업 공정에서 유용하게 이용할 수 있을 것으로 기대한다.
다만 본 발명의 효과는 상기에서 언급한 효과로 제한되지 아니하며, 본 발명으로부터 기대할 수 있는 또 다른 효과들은 하기의 기재로부터 당업자에게 명확히 이해될 수 있을 것이다.
도 1은 형질전환체에서 과발현되어 정제 및 분리된 서열번호 1, 3, 5 및 7의 아미노산 서열을 갖는 단백질을 SDS-PAGE로 확인한 사진이다.
도 2는 서열번호 1, 3, 5 및 7의 아미노산 서열을 갖는 단백질의 특성 및 단백질에 포함된 보조인자 함량 파악을 위한 UV-Vis를 측정한 그래프이다.
도 3은 서열번호 1, 3, 5 및 7의 아미노산 서열을 갖는 단백질에 포함된 보조인자인 철(Fe)과 플라빈 아데닌 다이뉴클레오타이드(flavin adenine dinucleotide, FAD) 함량을 확인한 결과를 나타내는 그래프이다.
도 4는 프로필렌을 기질로 이용하는 경우에 서열번호 1, 3, 5 및 7의 아미노산 서열을 갖는 단백질과 수용성 메탄 모노옥시게나제에 의한 프로필렌옥사이드 화합물의 생성 정도를 확인한 결과를 나타낸 그래프이다.
도 5는 서열번호 1, 3, 5 및 7의 아미노산 서열을 갖는 단백질과 수용성 메탄 모노옥시게나제의 수산화효소(MMOH) 간 결합 특성을 나타낸 그래프이다.
먼저, 본 발명의 명세서에서 이용한 용어를 설명한다.
본 발명에서 일컫는 ‘수용성 메탄 모노옥시게나제’는 하기 반응식과 같이 메탄으로부터 메탄올을 생성하는 활성을 가진 효소를 의미한다.
[반응식]
이하, 본 발명을 상세히 설명한다.
1. 수용성 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체
본 발명의 일 측면은 서열번호 1의 아미노산 서열에서 하나의 아미노산이 다른 아미노산으로 치환된 수용성 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체를 제공한다.
상기 서열번호 1의 아미노산 서열은 메틸로시너스(Methylosinus) 속 미생물, 보다 구체적으로는 메틸로시너스 스포리움 5(Methylosinus sporium 5)으로부터 유래한 것으로서 메탄 모노옥시게나제 환원효소의 활성을 갖는 단백질이다.
본 발명의 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체는 상기 서열번호 1의 아미노산 서열에서 159번째 세린(serine, S), 161번째 세린, 184번째 세린이 각각 독립적으로 다른 아미노산으로 치환된 것이다.
상기 변이체에서, 상기 서열번호 1의 아미노산 중 159번째 세린은 알라닌(alanine, A)으로 치환될 수 있다. 구체적으로 상기 변이체는 서열번호 3의 아미노산 서열을 가지는 것일 수 있다.
상기 변이체에서, 상기 서열번호 1의 아미노산 중 161번째 세린은 알라닌으로 치환될 수 있으며, 구체적으로 상기 변이체는 서열번호 5의 아미노산 서열을 가지는 것일 수 있다.
상기 변이체에서, 상기 서열번호 1의 아미노산 중 184번째 세린은 알라닌으로 치환될 수 있으며, 구체적으로 상기 변이체는 서열번호 7의 아미노산 서열을 가지는 것일 수 있다.
상기 변이체들은 기본적으로 메탄 모노옥시게나제로서 환원효소의 활성을 가진다. 따라서 상기 변이체는 메탄을 포함한 저급 탄화수소를 탄화수소 산화물로 변환하고, 상기 저급 탄화수소는 탄소수 1 내지 3, 예를 들어 메탄 또는 프로필렌일 수 있다. 상기 변이체들은 메탄 모노옥시게나제로서의 활성 및 저급 탄화수소의 변환을 위해 기체를 공급할 수 있으며, 예를 들어 산소(oxygen)일 수 있다.
또한, 상기 변이체들은 종래의 메탄 모노옥시게나제 환원효소, 예컨대 서열번호 1의 아미노산 서열을 갖는 메탄 모노옥시게나제 환원효소와 기질 친화도가 유사하다. 또한, 상기 변이체들은 종래의 메탄 모노옥시게나제 환원효소, 예컨대 서열번호 1의 아미노산 서열이 갖는 메탄 모노옥시게나제 환원효소와 비교하였을 때 메탄 모노옥시게나제의 산화효소 간 결합 특성이 유사하다.
또한, 상기 변이체들은 상기와 같은 기질 친화도와 결합 특성에 영향을 미치지 않는 범위 내에서 추가적으로 변형될 수 있다. 상기와 같은 특성에 영향을 미치지 않는 단백질 또는 펩타이드 수준에서의 변형은 당해 분야에 공지되어 있고, 예컨대 인산화(phosphorylation), 황화(sulfation), 아크릴화(acrylation), 당화(glycosylation), 메틸화(methylation), 파네실화(farnesylation) 등으로 변형될 수 있다.
본 발명의 구체적인 실시예에서, 본 발명자들은 메틸로시너스 스포리움 5(Methylosinus sporium 5)에서 유래한 서열번호 1의 아미노산 서열의 159번째 서열을 세린에서 알라닌으로, 상기 서열번호 1의 아미노산 서열의 161번째 세린을 알라닌으로, 상기 서열번호 1의 아미노산 서열의 184번째 세린을 알라닌으로 각각 치환한 3개의 환원효소 변이체(S159A, S161A, S184A)를 제작하였고, 상기 변이체들 모두 서열번호 1의 아미노산 서열을 갖는 야생형의 메탄 모노옥시게나제와 유사한 보조인자 함량, 구체적으로 철과 플라빈 아데닌 다이뉴클레오다이드 함량을 확인하였다(도 3 참고).
아울러, 상기와 같은 3개의 환원효소 변이체를 대상으로 100 μM 수준의 니코틴아마이드 아데닌 다이뉴클레오타이드(NADH)를 이용하여 전자전달에 의한 산화물 생성 정도를 확인하였으며, 프로필렌을 기질로 이용하여 반응시킬 때 산소 공급을 제어하여 활성을 증대하고자 하였다. 상기 변이체 중 1개의 환원효소 변이체(S161A)에서는 서열번호 1의 아미노산 서열을 갖는 야생형의 메탄 모노옥시게나제에 비해 유의미한 수준으로 활성이 증가하는 것을 확인하였다(도 4 참고).
추가적으로, 상기와 같은 3개의 환원효소 변이체를 대상으로 메탄 모노옥시게나제의 산화효소 간 결합 친화도를 측정하여 결합 특성을 확인한 결과, 상기 변이체들 모두 상기 서열번호 1의 아미노산 서열을 갖는 야생형의 메탄 모노옥시게나제와 유사한 결합 특성을 갖는 것을 확인하였다(도 5 참고).
2. 수용성 메탄 모노옥시게나제의 유전자, 발현 벡터 및 형질전환체
본 발명의 다른 측면은 상기 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체를 암호화하는 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체의 유전자를 제공한다.
예컨대, 상기 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체의 유전자는 서열번호 4, 서열번호 6 및 서열번호 8로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나의 염기 서열로 이루어지는 것일 수 있다. 그러나, 상기 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체의 유전자는 암호화 영역으로부터 발현되는 상기 변이체의 아미노산 서열을 변화시키지 않는 범위 내에서 암호화 영역에 다양한 변형이 이루어질 수 있고, 암호화 영역을 제외한 부분에서도 유전자의 발현에 영향을 미치지 않는 범위 내에서 다양한 변이가 이루어질 수 있다. 결국, 상기 메탄 모노옥시게나제의 유전자는 이와 동등한 활성을 갖는 단백질을 암호화하는 한, 하나 이상의 핵산 염기가 치환, 결실, 삽입 또는 이들의 조합에 의해 변이될 수 있으며, 이러한 변이 유전자 역시 본 발명의 범위에 포함된다.
본 발명의 또 다른 측면은 본 발명의 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체의 유전자가 포함된 재조합 발현 벡터 및 상기 발현 벡터가 도입된 형질전환체를 제공한다.
본 발명의 재조합 발현 벡터는 상기 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체의 유전자를 포함한다.
상기 발현 벡터는 플라스미드 벡터, 코스미드 벡터, 박테리오파지 벡터 및 바이러스 벡터 등을 포함하나 이에 한정되지 않는다.
상기 재조합 발현 벡터는 본 발명의 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체를 발현 또는 생산하고자 하는 숙주 세포의 종류에 따라 프로모터(promoter), 터미네이터(terminator), 인핸서(enhancer) 등과 같은 발현조절서열, 또는 분비를 위한 서열 등을 적절히 목적에 따라 조합할 수 있다.
상기 발현 벡터는 벡터가 도입된 숙주 세포를 선택하기 위한 선택 마커를 추가로 포함할 수 있고, 복제 가능한 발현 벡터인 경우 복제 기원을 포함할 수 있다.
또한, 상기 재조합 발현 벡터는 발현 단백질의 정제를 용이하게 하기 위한 서열을 포함할 수 있으며, 구체적으로 본 발명의 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체를 암호화하는 유전자에 작동 가능하도록 분리정제용 태그를 암호화하는 유전자가 연결될 수 있다. 이때, 상기 분리정제용 태그는 GST, poly-Arg, FLAG, 히스티딘-태그(His-tag), MBP 및 c-myc 등이 단독으로 사용되거나 이들 중 두 개 이상을 순차적으로 연결하여 사용할 수도 있다.
상기 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체를 암호화하는 유전자는 제한효소 절단 위치를 통해 클로닝될 수 있으며, 상기 벡터에 단백질 절단효소 인식 부위를 암호화하는 유전자가 사용된 경우에는 상기 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체의 유전자와 틀이 맞도록(in frame) 연결되어, 상기 효소를 수득한 후 단백질 절단효소로 절단 시, 본 발명의 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체가 생산될 수 있도록 할 수 있다.
본 발명의 구체적인 실시예에서, 본 발명의 메탄 모노옥시게나제의 유전자를 플라스미드 벡터인 pET30a(+)에 삽입함으로써 재조합 클로닝 벡터를 제조하였다. 상기 클로닝 벡터의 제조에 이용된 pET30a(+) 이외에도 다양한 원핵세포용 벡터 또는 진핵세포용(pPICpPICZ 등) 벡터가 알려져 있으므로 발현의 목적에 따라 상기 벡터 이외의 다양한 발현 벡터를 이용할 수 있다.
본 발명의 상기 재조합 발현 벡터는 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체의 유전자가 포함되어 있어 이를 생산할 수 있는 벡터로서 유용하게 이용될 수 있다.
또한, 본 발명의 형질전환체에는 메탄 모노옥시게나제를 암호화하는 유전자를 포함하는 재조합 발현 벡터가 도입된다.
본 발명에 따른 상기 재조합 발현 벡터를 발현 목적에 따라 박테리아, 효모, 대장균, 진균류, 식물 세포 및 동물 세포로 구성된 군으로부터 선택되는 어느 하나의 적절한 숙주 세포에 형질 전환시킴으로써 형질전환체를 제조할 수 있다. 예컨대, 상기 숙주 세포는 대장균(E. coli BL21(DE3), DH5α 등) 또는 효모 세포(Hansenula 속, Saccharomyces 속 등) 등일 수 있다. 이때, 숙주 세포의 종류에 따라 적절한 배양 방법 및 배지 조건 등은 당해 분야의 공지 기술로부터 당업자가 용이하게 선택할 수 있다.
본 발명의 형질전환체 제조를 위한 재조합 발현 벡터의 도입 방법은 공지의 기술, 즉 열충격법, 전기충격법 등을 사용할 수 있다.
본 발명의 구체적인 실시예에서, 대장균을 숙주 세포로 하여 본 발명의 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체를 암호화하는 유전자를 포함하는 재조합 발현 벡터를 대장균에 형질전환 시켜 형질전환체를 제조하였다.
상기 형질전환체로부터 발현된 단백질은 신규의 환원효소 변이체이므로, 상기 형질전환체를 대량 배양하여 상기 유전자를 발현시킴으로써 상기 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체의 대량 생산을 용이하게 할 수 있다.
3. 수용성 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체의 생산 방법
아울러, 본 발명의 또 다른 측면은 본 발명의 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체를 암호화하는 유전자를 포함하는 재조합 발현 벡터가 도입된 형질전환체를 이용하여 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체를 생산하는 방법을 제공한다.
본 발명의 메탄 모노옥시게나제의 생산 방법은 1) 본 발명의 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체를 암호화하는 유전자를 포함하는 재조합 발현 벡터가 도입된 형질전환체를 배양하는 단계, 2) 상기 단계 1)에서 배양된 형질전환체에서 상기 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체를 암호화하는 유전자의 발현을 유도하는 단계 및 3) 상기 단계 2)에서 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체의 유전자 발현이 유도된 형질전환체의 배양물로부터 메탄 모노옥시게나제를 분리하는 단계를 포함한다.
상기 단계 1)의 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체를 암호화하는 유전자의 N-말단 및 C-말단에는 분리정제용 태그를 암호화하는 유전자 또는 단백질 절단효소 절단 위치가 추가로 연결될 수 있고, 이로 인해 재조합 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체의 정제 또는 본 발명의 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체의 수득이 가능할 수 있다.
상기 단계 1)의 형질전환체의 배양은 공지된 방법에 따라서 수행될 수 있고, 배양 온도, 배양 시간, 및 배지의 pH 등의 조건은 적절하게 조절될 수 있다. 또한, 배양 방법에는 회분식 배양(batch culture), 연속식 배양(continuous culture) 및 유가식 배양(fed-batch culture)이 포함될 수 있다. 사용되는 배양 배지는 특정한 균주의 요구 조건을 적절하게 충족시켜야 한다.
상기 단계 3)의 상기 배양에 의해 생성된 배양물로부터 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체의 분리는 원심분리, 여과 등 당해 분야에서 통상적으로 수행되는 방법을 실시할 수 있다. 또한, 상기 방법으로 분리된 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체는 통상의 방식으로 정제될 수 있으며, 예를 들어, 염석(예를 들어 황산암모늄 침전, 인산나트륨 침전 등), 용매 침전(아세톤, 에탄올 등을 이용한 단백질 분획 침전), 투석, 겔 여과, 이온 교환, 역상 칼럼 크로마토그래피와 같은 크로마토그래피 및 한외여과 등의 기법을 단독 또는 조합하여 본 발명의 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체를 정제할 수 있다.
본 발명의 구체적인 실시예에서 상기와 같이 정제된 3개 환원효소 변이체(S159A, S161A, S184A)에서 상기 서열번호 1의 아미노산 서열을 갖는 야생형의 메탄 모노옥시게나제와 유사한 보조인자 함량을 나타냄을 확인하였다(도 2 참고). 상기와 같은 결과로부터, 본 발명의 생산 방법에 따라 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체의 대량 생산이 가능함을 알 수 있다.
4. 탄화수소 산화물의 생산 방법 및 탄화수소 산화물 생산용 조성물
본 발명의 또 다른 측면은 본 발명의 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체를 이용하여 탄화수소로부터 탄화수소 산화물을 인 비트로(in vitro)에서 생산하는 방법 및 인 비트로(in vitro)에서 탄화수소 산화물의 생산에 이용되는 탄화수소 산화물 생산용 조성물을 제공한다.
본 발명의 탄화수소 산화물 생산용 조성물은 본 발명의 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체를 포함한다.
또한, 본 발명의 탄화수소 산화물의 인 비트로(in vitro) 생산 방법은 1) 본 발명의 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체를 탄화수소와 반응시키는 단계 및 2) 상기 단계 1) 에서의 반응 결과 생성된 반응 생성물로부터 탄화수소 산화물을 회수하는 단계를 포함한다.
상기 탄화수소 산화물의 생산 방법 및 탄화수소 산화물 생산용 조성물은 인 비트로(in vitro)에서 본 발명의 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체의 효소 활성을 이용하는 것이므로, 상기 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체를 이용하여 그 기질인 탄화수소로부터 탄화수소 산화물을 생성하는 것이다. 따라서 상기 기질로 이용되는 탄화수소의 종류에 따라 생성되는 탄화수소 산화물의 종류 또한 달라지는 것이고, 저급 탄화수소를 기질로 이용하는 경우 저급 탄화수소 산화물이 생성된다. 예컨대, 기질로 메탄이 이용되는 경우에는 탄화수소 산화물로 메탄올이 생성되고, 기질로 프로필렌이 이용되는 경우에는 탄화수소 산화물로 프로필렌옥사이드가 생성되는 것이다.
상기 단계 1)의 반응은 20°C 내지 55°C의 온도 범위, 바람직하게는 22°C 내지 50°C의 온도 범위, 더욱 바람직하게는 25°C 내지 45°C의 온도에서 수행될 수 있으나, 이에 한정되지 아니한다. 또한, 상기 단계 1)의 반응은 5 내지 8의 pH 범위, 바람직하게는 6 내지 7.5의 pH 범위, 더욱 바람직하게는 6.5 내지 7의 pH에서 수행될 수 있으나, 이에 한정되지 아니한다.
또한, 상기 단계 1)의 반응에는 상기 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체의 활성을 향상시키기 위해 상기 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체와 기체 형태의 산소 분자가 포함될 수 있다.
상기 단계 1)의 반응에서 기질인 상기 탄화수소는 외부에서 주입되는 것이 바람직하고, 상기 탄화수소는 목적하는 탄화수소 산화물의 양에 맞추어 충분한 양이 주입되어야 한다. 상기 탄화수소의 주입은 연속적으로 수행될 수 있다. 특히 상기 탄화수소가 연속적으로 주입되는 경우, 상기 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체에 의하여 탄화수소 산화물을 지속적으로 생성할 수 있다.
이하, 본 발명의 실시예에 의하여 상세히 설명한다. 단, 하기 실시예는 본 발명을 구체적으로 예시하는 것이며, 본 발명의 내용이 하기 실시예에 의해 한정되지 아니한다.
실시예 1
메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체의 제조
[1-1] 서열번호 4의 염기 서열을 갖는 유전자의 클로닝 및 형질전환
서열번호 1의 아미노산 서열에서, 159번째 세린을 알라닌으로 치환한 서열번호 3의 아미노산 서열을 갖는 S159A 환원효소 변이체의 단백질을 얻기 위하여, 서열번호 2의 염기 서열을 갖는 유전자를 주형으로 하기 표 1에 기재된 바와 같은 S159A의 프라이머 쌍과 Q5 Site-Directed Mutagenesis Kit (NEW ENGLAND BioLabs)을 이용하여 PCR을 수행함으로써 서열번호 4의 염기서열을 포함하는 PCR 산물이 삽입된 재조합 발현 벡터를 제작하였다.
증폭대상 프라이머 쌍 서열 (5‘->3’)
S159A 정방향 프라이머 cgcgccgcgcctattccatggcctcg
S159A 역방향 프라이머 ccatggaataggcgcggcgcgtatgcgtgcc
상기와 같이 제작된 재조합 발현 벡터를 대상으로 염기 서열 분석(sequencing)(㈜코스모진텍)을 수행한 결과, 상기 서열번호 4의 염기 서열이 제대로 삽입되었음을 확인하였으며, 이를 대장균 BL21(DE3) 균주(Novagen, 미국)에 형질전환 하였다. 상기와 같이 얻어진 형질전환체는 10 mL의 LK 고체 배지(LB 배지+50 μg/mL 카나마이신)에 선접종하고 37°C에서 12시간 이상 배양하였다. 고체 배지에 나타나는 하나의 콜로니를 단집락 분리 과정으로 5 mL의 LB 배지와 50 μg/mL 카나마이신이 포함된 시험관(test tube)에 접종하고 37°C의 진탕 배양기로 12시간 이상 종균 배양을 실시하였다. 상기와 같이 얻어진 형질전환체는 이용하기 전에 15% 글리세린 용액을 첨가하여 냉동 보관하였다.
[1-2] 서열번호 3의 아미노산 서열을 갖는 단백질의 과발현 및 정제
상기 실시예 [1-1]에서 냉동 보관된 형질전환체를 200 mL의 LB 배지와 50 μg/mL 카나마이신이 포함된 시험관(test tube)에 접종하고 37°C의 진탕 배양기로 12시간 이상 종균 배양을 실시하였다. 그 후, 상기 종균 배양된 배양액 5 mL를 500 mL의 LK 배지가 포함된 2,000 mL 플라스크에 첨가하여 총 2 L의 본 배양을 실시하였고, 600 nm에서의 흡광도가 0.6이 될 때 최종 농도 0.5 mM이 되도록 IPTG(isopropyl-1-thio-β-D-galactopyranoside)를 첨가하여 상기 서열번호 3의 아미노산 서열을 갖는 단백질의 과발현을 유도하였다. 상기와 같이 서열번호 3의 아미노산 서열을 갖는 단백질을 유도하는 과정에서, 교반 속도는 200 rpm이, 배양 온도는 37°C가 유지되도록 조정하였고, IPTG 첨가 후에는 교반 속도를 180 rpm으로, 배양 온도를 18°C로 조정하여 20시간 동안 배양하였다.
또한, 상기와 같이 서열번호 3의 아미노산 서열을 갖는 단백질의 과발현이 유도된 형질전환체의 배양액을 500 mL의 PP 튜브(PP tube, Hanil Scientific Inc., 한국)에 분주하고, 4°C에서 8,000 rpm으로 20분 동안 원심분리하여 상층액을 분리해 낸 펠렛에 완충 용액 (25 mM MOPS, 50 mM NaCl, 5 mM MgCl2, 1 mM DTT, 0.01 μL/mL DNaseⅠ, 0.002 mg/mL, pH 6.5) 50 mL을 첨가하고, 소니케이션(sonication) 방법으로 세포를 파쇄함으로써 형질전환체의 세포 용해물(cell lysate)를 수득하였다.
상기와 같이 수득된 세포 용해물을 4°C에서 14,000 rpm으로 1시간 동안 원심분리하여 상층액을 수득하였고, Q sepharose 이온 교환 컬럼(Cytiva, 독일) 및 Superdex 75(Cytiva, 독일)이 장착된 고속 단백질 액체 크로마토그래피(Fast Protein Liquid Chromatpgraphy)(Cytiva, 독일)를 이용하여 상기와 같이 수득된 상층액으로부터 과발현된 서열번호 3의 아미노산 서열을 갖는 단백질을 분리하였다.
이렇게 분리된 단백질을 SDS-PAGE를 통해 확인한 결과, 상기와 같은 일련의 과정에 의하여 약 37 kDa의 서열번호 3의 아미노산 서열을 갖는 단백질이 과발현되고, 형질전환체의 세포 용해물로부터 정제 및 분리되었음을 확인하였다(도 1).
[1-3] 서열번호 5, 7의 아미노산 서열을 갖는 단백질의 제조
추가적으로, 서열번호 1의 아미노산 서열에서 161번째 세린을 알라닌으로 치환한 서열번호 5의 아미노산 서열을 갖는 S161A 환원효소 변이체, 184번째 세린을 알라닌으로 치환한 서열번호 7의 아미노산 서열을 갖는 S184A 환원효소 변이체의 단백질을 얻기 위하여, 서열번호 6, 8의 염기 서열을 설계하였다. 또한, 상기 실시예 [1-1] 및 [1-2]와 동일한 방법으로 하기 표 2의 프라이머 쌍을 이용하여 서열번호 6, 8의 염기 서열을 갖는 유전자를 클로닝하고, 서열번호 5, 7의 아미노산 서열을 갖는 단백질을 각각 분리 및 정제하였다.
증폭대상 프라이머 쌍 서열 (5‘->3’)
S161A 정방향 프라이머 ggtcgcggaggatggtcg
S161A 역방향 프라이머 gaggccatggcataggagcgg
S184A 정방향 프라이머 gcgcacgcaggcgagcgt
S184A 역방향 프라이머 agataattggcgaaagcgccgtccggcag
[1-4] 서열번호 1의 아미노산 서열을 갖는 단백질의 제조
대조군으로 이용하기 위하여, 서열번호 2의 염기 서열을 주형으로 하여 상기 실시예 [1-1] 및 [1-2]와 동일한 방법으로, 하기 표 3의 프라이머 쌍을 이용하여 서열번호 2의 염기 서열을 갖는 유전자를 클로닝하고, 서열번호 1의 아미노산 서열을 갖는 단백질을 각각 분리 및 정제하였다.
증폭대상 프라이머 쌍 서열 (5‘->3’)
서열번호 1 정방향 프라이머 cgcatatgtaccagatcg
서열번호 1 역방향 프라이머 ataagcttcagccgctcg
실시예 2
메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체의 보조인자 함량 확인
상기 실시예 [1-2] 및 [1-3]에서 분리 및 정제한 3개의 단백질 각각, 즉 서열번호 3, 5, 7의 아미노산 서열을 갖는 각각의 단백질을 완충용액(25 mM MOPS, 50 mM NaCl, pH 6.5)에 첨가하고, 첨가한 완충용액에 아스코르브산(ascorbic acid)과 트리클로로아세트산(trichloroacetic acid)을 각각 1.5 mM, 0.7 M이 되도록 혼합하여 4°C, 4,000 rpm, 25분 동안 원심분리하여 상층액을 분리한다. 상층액에 암모늄아세테이트(ammonium acetate)와 페러진(ferrozine disulfonic acid disodium salt)을 각각 1.3 M, 6.17 mM 첨가한 뒤 UV/Vis spectrophotometer (Cary60, Agilent Technologies Inc., 미국)를 이용하여 562 nm 파장에서 흡광도를 측정하고(도 2), 측정값을 standard curve를 통해 얻은 추세선에 대입하여 보조인자 함량을 측정하였다.
상기 실시예 [1-4]에서 분리 및 정제한 서열번호 1의 아미노산 서열을 갖는 단백질에 대해서도 상기와 동일한 실험을 수행하여 그 결과를 대조군으로 삼았다.
단백질 Fe 함량 FAD 함량
서열번호 1 1.9 ± 0.0 1.0 ± 0.0
S159A 1.7 ± 0.1 1.6 ± 0.1
S161A 2.1 ± 0.1 2.1 ± 0.1
S184A 1.7 ± 0.1 1.7 ± 0.0
그 결과, 상기 실시예 [1-2] 및 [1-3]에서 정제 및 분리한 서열번호 3, 5, 7의 아미노산 서열을 갖는 단백질이 상기 서열번호 1의 아미노산 서열을 갖는 야생형 메탄 모노옥시게나제와 유사한 보조인자 함량을 갖는 것을 확인하였다(도 3).
실시예 3
메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체의 효소 활성 확인
상기 실시예 [1-2] 및 [1-3]에서 분리 및 정제한 3개의 단백질 각각, 즉 서열번호 3, 5, 7의 아미노산 서열을 갖는 각각의 단백질 0.04 mg/mL를 메탄 모노옥시게나제 산화효소 및 조절효소와 함께 완충용액(25 mM MOPS, 50 mM NaCl, pH 6.5)에 첨가하고 30°C에서 30초 동안 반응시킨 다음, 니코틴아마이드 아데닌 다이뉴클레오타이드 산화물 생성량을 UV/Vis spectrophotomer를 통하여 확인하였다.
상기 실시예 [1-4]에서 분리 및 정제한 서열번호 1의 아미노산 서열을 갖는 단백질에 대해서도 상기와 동일한 실험을 수행하여 그 결과를 대조군으로 삼았다.
단백질 Specific Enzyme Activity (mU/mg)
서열번호 1 648.4 ± 22.8
S159A 462.4 ± 20.9
S161A 864.6 ± 50.3
S184A 627.3 ± 7.1
그 결과, 상기 실시예 [1-2] 및 [1-3]에서 정제 및 분리한 서열번호 3, 5, 7의 아미노산 서열을 갖는 단백질이 탄화수소로부터 탄화수소 산화물을 생성하는 메탄 모노옥시게나제로서의 활성을 갖는 것을 확인하였다. 또한, 상기 실시예 [1-2] 및 [1-3]에서 분리 및 정제한 3개의 단백질 중 서열번호 5의 아미노산 서열을 갖는 환원효소 변이체 S161A는 상기 서열번호 1의 아미노산 서열을 갖는 야생형 메탄 모노옥시게나제에 비해 우수한 활성을 가짐을 확인하였다(도 4).
실시예 4
메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체의 결합 특성 분석
상기 실시예 [1-2] 및 [1-3]에서 분리 및 정제한 3개의 단백질 각각, 즉 서열번호 3, 5, 7의 아미노산 서열을 갖는 각각의 단백질을 메탄 모노옥시게나제 산화효소 0.8 mg/mL이 포함된 완충용액(25 mM MOPS, 50 mM NaCl, pH 6.5)에 적정하였다. Spectrofluorometer (FP-8300, JASCO Inc., 일본)를 이용한 형광 강도 측정을 수행하여, 메탄 모노옥시게나제 산화요소와 환원효소 변이체 간 결합친화도 및 결합 특성을 확인하였다.
상기 실시예 [1-4]에서 분리 및 정제한 서열번호 1의 아미노산 서열을 갖는 단백질에 대해서도 상기와 동일한 실험을 진행하여 그 결과를 대조군으로 삼았다.
단백질 K d1 (μM) K d2 (μM)
서열번호 1 0.38 ± 0.04 6.72 ± 0.16
S159A 0.24 ± 0.05 6.51 ± 0.94
S161A 0.15 ± 0.02 9.94 ± 0.26
S184A 0.34 ± 0.02 7.78 ± 0.32
그 결과, 서열번호 1의 아미노산 서열을 갖는 야생형의 메탄 모노옥시게나제 환원효소와 산화효소 간 결합친화도와, 상기 3종의 환원효소 변이체들(S159A, S161A, S184A)의 결합친화도가 유사함을 확인하였으며 이를 통해 결합 특성 또한 유사함을 확인하였다(도 5).
상기와 같은 결과로부터, 본 발명의 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체들은 기질, 구체적으로 탄화수소가 존재하는 환경에서 효소 반응을 일으킬 수 있을 정도로 기질 친화도 및 결합 특성이 유사함을 확인하였다. 또한, 상기 서열번호 5의 아미노산 서열을 갖는 환원효소 변이체 S161A의 경우 상기 서열번호 1의 아미노산 서열을 갖는 야생형 메탄 모노옥시게나제에 비해 효소 활성이 증가함을 확인하였다.
상기에서는 본 발명의 바람직한 실시예를 예시적으로 설명하였으나, 본 발명의 범위는 상기와 같은 특정 실시예에만 한정되지 아니하며, 해당 분야에서 통상의 지식을 가진 자라면 본 발명의 특허 청구범위에 기재된 범주 내에서 적절하게 변경이 가능할 것이다.
<110> INDUSTRIAL COOPERATION FOUNDATION CHONBUK NATIONAL UNIVERSITY <120> Reductase variant of soluble methane monooxygenase and method for producing hydrocarbon oxide using the same <130> DHP21-409 <160> 8 <170> KoPatentIn 3.0 <210> 1 <211> 343 <212> PRT <213> Methylosinus sporium 5 <400> 1 Met Tyr Gln Ile Val Ile Glu Thr Glu Asp Gly Glu Thr Cys Ser Phe 1 5 10 15 Glu Cys Gly Pro Ser Glu Asp Val Ile Ser Ala Gly Leu Arg Gln Ser 20 25 30 Val Ile Leu Leu Ala Ser Cys Arg Ala Gly Gly Cys Ala Thr Cys Lys 35 40 45 Ala Asp Cys Thr Asp Gly Glu Tyr Glu Leu Ile Asp Val Lys Val Gln 50 55 60 Ala Leu Pro Pro Asp Glu Glu Glu Asp Gly Lys Val Leu Leu Cys Arg 65 70 75 80 Thr Phe Pro Arg Ser Asp Leu His Leu Ile Val Pro Tyr Thr Tyr Asp 85 90 95 Arg Ile Ser Phe Glu Ala Ile Gln Thr Asn Trp Leu Ala Glu Ile Val 100 105 110 Glu Cys Asp Arg Val Ser Ser Asn Val Val Arg Leu Leu Leu Gln Pro 115 120 125 Leu Thr Ala Asp Gly Ala Ala Pro Ile Ser Leu Asn Phe Ala Pro Gly 130 135 140 Gln Phe Val Asp Ile Glu Ile Pro Gly Thr His Thr Arg Arg Ser Tyr 145 150 155 160 Ser Met Ala Ser Val Ala Glu Asp Gly Arg Leu Glu Phe Phe Ile Arg 165 170 175 Leu Leu Pro Asp Gly Ala Phe Ser Asn Tyr Leu Arg Thr Gln Ala Ser 180 185 190 Val Gly Gln Arg Val Ala Leu Arg Gly Pro Ala Gly Ser Phe Phe Leu 195 200 205 His Lys Ser Glu Arg Pro Arg Phe Phe Val Ala Gly Gly Thr Gly Leu 210 215 220 Ser Pro Val Leu Ser Met Ile Arg Gln Leu Lys Lys Glu Ala Asp Pro 225 230 235 240 Gln Pro Ala Thr Leu Phe Phe Gly Val Thr Asn Tyr Glu Glu Leu Phe 245 250 255 Tyr Val Glu Glu Leu Arg Ala Leu Gln Lys Ala Met Pro Ser Leu Asp 260 265 270 Val Gln Val Ala Val Val Asn Ala Thr Glu Ala Asn Gly Val Ala Lys 275 280 285 Gly Thr Val Ile Asp Leu Met Arg Ala Glu Leu Glu Lys Leu Arg Gly 290 295 300 Ala Pro Asp Ile Tyr Leu Cys Gly Pro Pro Gly Met Ile Glu Ala Ala 305 310 315 320 Phe Asp Ala Ala Ala Thr Ala Gly Val Pro Lys Glu Gln Val Tyr Leu 325 330 335 Glu Lys Phe Leu Ala Ser Gly 340 <210> 2 <211> 1032 <212> DNA <213> Methylosinus sporium 5 <400> 2 atgtaccaga 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Arg Ala Tyr 145 150 155 160 Ser Met Ala Ser Val Ala Glu Asp Gly Arg Leu Glu Phe Phe Ile Arg 165 170 175 Leu Leu Pro Asp Gly Ala Phe Ser Asn Tyr Leu Arg Thr Gln Ala Ser 180 185 190 Val Gly Gln Arg Val Ala Leu Arg Gly Pro Ala Gly Ser Phe Phe Leu 195 200 205 His Lys Ser Glu Arg Pro Arg Phe Phe Val Ala Gly Gly Thr Gly Leu 210 215 220 Ser Pro Val Leu Ser Met Ile Arg Gln Leu Lys Lys Glu Ala Asp Pro 225 230 235 240 Gln Pro Ala Thr Leu Phe Phe Gly Val Thr Asn Tyr Glu Glu Leu Phe 245 250 255 Tyr Val Glu Glu Leu Arg Ala Leu Gln Lys Ala Met Pro Ser Leu Asp 260 265 270 Val Gln Val Ala Val Val Asn Ala Thr Glu Ala Asn Gly Val Ala Lys 275 280 285 Gly Thr Val Ile Asp Leu Met Arg Ala Glu Leu Glu Lys Leu Arg Gly 290 295 300 Ala Pro Asp Ile Tyr Leu Cys Gly Pro Pro Gly Met Ile Glu Ala Ala 305 310 315 320 Phe Asp Ala Ala Ala Thr Ala Gly Val Pro Lys Glu Gln Val Tyr Leu 325 330 335 Glu Lys Phe Leu Ala Ser Gly 340 <210> 4 <211> 1032 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> S159A <400> 4 atgtaccaga 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Arg Ser Tyr 145 150 155 160 Ser Met Ala Ser Val Ala Glu Asp Gly Arg Leu Glu Phe Phe Ile Arg 165 170 175 Leu Leu Pro Asp Gly Ala Phe Ala Asn Tyr Leu Arg Thr Gln Ala Ser 180 185 190 Val Gly Gln Arg Val Ala Leu Arg Gly Pro Ala Gly Ser Phe Phe Leu 195 200 205 His Lys Ser Glu Arg Pro Arg Phe Phe Val Ala Gly Gly Thr Gly Leu 210 215 220 Ser Pro Val Leu Ser Met Ile Arg Gln Leu Lys Lys Glu Ala Asp Pro 225 230 235 240 Gln Pro Ala Thr Leu Phe Phe Gly Val Thr Asn Tyr Glu Glu Leu Phe 245 250 255 Tyr Val Glu Glu Leu Arg Ala Leu Gln Lys Ala Met Pro Ser Leu Asp 260 265 270 Val Gln Val Ala Val Val Asn Ala Thr Glu Ala Asn Gly Val Ala Lys 275 280 285 Gly Thr Val Ile Asp Leu Met Arg Ala Glu Leu Glu Lys Leu Arg Gly 290 295 300 Ala Pro Asp Ile Tyr Leu Cys Gly Pro Pro Gly Met Ile Glu Ala Ala 305 310 315 320 Phe Asp Ala Ala Ala Thr Ala Gly Val Pro Lys Glu Gln Val Tyr Leu 325 330 335 Glu Lys Phe Leu Ala Ser Gly 340 <210> 8 <211> 1032 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> S184A <400> 8 atgtaccaga tcgtcatcga aactgaggac ggagaaacct gttcgttcga atgcggaccg 60 agcgaggacg tcatttccgc ggggcttcgt cagagcgtca ttctgctcgc ctcctgccgc 120 gccggcggct gcgcgacctg caaggccgat tgcacggatg gcgaatacga gctcatcgac 180 gtcaaggttc aggctctgcc gccggacgag gaggaggacg gaaaggttct gctgtgccgc 240 acctttccgc gcagcgacct tcatctcatc gtgccctaca cctatgatcg catctccttc 300 gaggcgatcc agaccaattg gctcgccgag atcgtcgaat gcgatcgcgt gtcgtccaat 360 gtcgtgcggc tcctgctgca gcccctcacc gcagatggcg cagcgcccat ctcgttgaac 420 ttcgctcccg ggcaattcgt cgacatcgaa attcccggca cgcatacgcg ccgctcctat 480 tccatggcct cggtcgcgga ggatggtcgg ctcgaattct tcatccgcct gctgccggac 540 ggcgctttcg ccaattatct gcgcacgcag gcgagcgtcg gccagcgcgt cgcgctgcgc 600 gggccggccg gctccttctt tctgcacaag agcgagcggc cgcgcttctt cgtcgccggc 660 ggcacgggcc tctcacccgt tctgtcgatg attcggcaat tgaaaaagga agccgatccg 720 caaccggcga ccttgttctt cggcgtcacc aattatgagg agctcttcta tgtcgaggag 780 ctgagggcgc tgcagaaggc catgccgagc ctcgatgtgc aggtggcggt cgtcaatgcg 840 acggaggcga atggcgtcgc caagggaacg gtcatcgatc tcatgcgcgc cgagctcgag 900 aagctgcgcg gcgcgccgga catctacctt tgcggtccgc ccggcatgat cgaggccgcc 960 ttcgacgccg cagcgacggc cggcgttccc aaggagcagg tctatctcga gaaattcctg 1020 gcgagcggct ga 1032

Claims (10)

  1. 서열번호 1의 아미노산 서열에서 161번째 세린(Serine, S)이 알라닌(Alanine, A)으로 치환된 것을 특징으로 하는 메탄 모노옥시게나제 환원효소(methane monooxygenase reductase) 변이체.
  2. 제1항에 있어서,
    상기 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체는 탄화수소에 대한 효소 활성이 있으며, 상기 탄화수소는 탄소수 1 내지 3인 것을 특징으로 하는 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체.
  3. 제2항에 있어서,
    상기 탄화수소는 메탄 또는 프로필렌인 것을 특징으로 하는 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체.
  4. 제1항 내지 제3항 중 어느 한 항의 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체를 암호화하는 것을 특징으로 하는 유전자.
  5. 제4항의 유전자를 포함하는 것을 특징으로 하는 재조합 발현 벡터.
  6. 제5항의 재조합 발현 벡터가 숙주세포에 도입된 것을 특징으로 하는 형질전환체.
  7. 제6항의 형질전환체를 배양하는 단계; 및
    상기 배양된 형질전환체의 배양물로부터 메탄 모노옥시게나제 환원효소를 분리하는 단계를 포함하는 것을 특징으로 하는 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체의 생산 방법.
  8. 제1항 내지 제3항 중 어느 한 항의 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체를 유효성분으로 포함하는 것을 특징으로 하는 탄화수소 산화물 생산용 조성물.
  9. 제1항 내지 제3항 중 어느 한 항의 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체를 탄화수소와 함께 반응시키는 단계를 포함하는 것을 특징으로 하는 인 비트로(in vitro)에서의 탄화수소 산화물의 생산 방법.
  10. 제9항에 있어서,
    상기 메탄 모노옥시게나제 환원효소 변이체와 탄화수소의 반응 생성물로부터 탄화수소 산화물을 회수하는 단계를 더 포함하는 것을 특징으로 하는 인 비트로(in vitro)에서의 탄화수소 산화물의 생산 방법.
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