KR101906510B1 - 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32 검출용 프라이머 세트, 조성물 키트 및 이를 이용한 검출 방법 - Google Patents

Abstract

본 발명에 따른 검출용 프라이머 세트를 이용하면 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32 균주를 특이적으로 검출할 수 있으므로, 동일 종(species)의 유산균 내에서도 상기 균주 만을 신속하게 검출할 수 있으며 균주를 검출하는데 소요되는 시간 및 경비를 획기적으로 절감할 수 있다. 또한, 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32 균주의 신속하고 정확한 검출은 김치와 같은 발효식품의 품질 조절에 활용하여 발효식품의 관리 기술에 기여 및 발효식품 산업의 경쟁력을 강화시킬 수 있다.

Description

류코노스톡 메센테로이드 WiKim32 검출용 프라이머 세트, 조성물 키트 및 이를 이용한 검출 방법{Primer set, composition and kit for detecting strains of Leuconostoc mesenteroides WiKim32, and methods using the same}

본 발명은 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32 균주의 검출용 프라이머 세트, 이를 포함하는 검출용 조성물, 키트 및 이를 이용한 상기 균주의 검출 방법에 관한 것이다.

김치는 비멸균 발효식품 중 하나이며, 원부재료에 존재하는 다양한 미생물의 상호작용에 의해 자연적으로 발효된다. 특히 미생물 군의 천이 양상과 군집발달은 김치품질을 결정하는 중요한 인자가 된다.

산업적으로 대량생산된 김치의 품질을 향상(품질유지기한 연장, 균일화, 위생성 향상, 기능성 부여 등) 시키기 위한 방법으로는 종균을 첨가하는 방법이 개발되고 있으며, 종균의 김치내 우점율 측정, 즉 종균의 관리 및 추적은 품질관리 및 유지 측면에서 대단히 중요한 문제로 여겨진다.

식품으로부터 특정 미생물, 즉 발효 종균을 확인 및 모니터하는 방법으로는 평판배양법이 대표적으로 사용되고 있으나, 평판배양법은 배양시간이 오래 걸리고, 선택배지를 사용해야 하며, 배양조건을 정해주어야 한다는 단점이 있다. 특히, 평판배양법에 의해서 유산균을 식별하기에는 유산균들 간 영양요구성과 배양조건이 거의 비슷하기 때문에 상호 간 구별이 매우 힘든 단점이 있다.

이러한 평판배양법의 대안으로는 PCR(polymerase chain reaction, 중합연쇄반응)을 근간으로 하는 RADP-PCR(random amplified polymorphic DNA-PCR), PCR-PFLP(PCR-restriction fragment length polymorphism), 16S rDNA-based PCR 등이 알려져 있으며, 혼합과정 중 미생물 측정방법으로 PCR 조각을 DGGE(denaturing gradient gel electrophoresis)하는 방법이 알려져 있다. 상기와 같은 PCR 방법은 평판배양법에 비하여 민감하고, 선택적이고, 빠르고, 경제적이고, 편리한 특징이 있는데, 그 중 다중 PCR(multiplex-PCR)은 한번에 많은 수의 미생물 측정이 가능하고, 비슷한 미생물간의 구별이 가능한 장점이 있다.

한편, 현재까지 개발된 프라이머 세트를 포함하는 PCR 검출법은 식품으로부터 특정 미생물 종(species)을 검출하거나(예시, 김치내 Weissella koreensis; 특허문헌 1), 같은 종 중에서도 특정 균주(strain)만을 검출하기 위한 프라이머 세트(예시, Bifidobacterium bifidum BGN4)가 개시되어 있다(특허문헌 2). 이들 프라이머들은 타겟 미생물의 염색체 DNA 또는 16S rRNA 서열에만 특이적으로 결합할 수 있게 개발되었다. 그러나 유산균의 경우 종(species)간의 염색체 DNA 염기서열이나 16S rRNA 서열의 상동성이 매우 높아 특정 균주(strain)를 구별할 수 있는 특이적 염기서열을 찾기 어렵다.

플라스미드(plasmid)는 세균의 세포 내에 있는 염색체와는 별개로 존재하면서 독자적으로 증식할 수 있는 DNA로, 같은 종(species)의 유산균이라 하더라도 균주(strain)에 따라 세포내 존재하는 플라스미드의 개수나 사이즈가 다르다(즉 염기서열이 다름).

이에, 본 발명은 특정 유산균이 지니고 있는 플라스미드 염기서열에 특이적으로 결합할 수 있는 프라이머 세트를 이용하여 시료 내 유산균을 신속하게 확인할 수 있는 기술을 제공하고자 한다.

한국 공개특허 제10-2013-0027604호 한국 등록특허 제10-1346739호

본 발명의 목적은 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32(Leuconostoc mesenteroides WiKim32; 수탁번호 KFCC11639P) 균주의 검출용 프라이머 세트, 검출용 조성물, 상기 균주의 검출방법, 상기 균주를 검출하기 위한 PCR 키트를 제공하는 것이다.

본 발명자들은 종(species) 간의 염색체 DNA 염기서열이나 16S rRNA 서열이 상동성이 높아 특정 균주(strain)를 구별하기 어려운 유산균에서 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32(Leuconostoc mesenteroides WiKim32)만을 특이적으로 검출하기 위해 연구를 진행하던 중, 특정 균주 만이 지니고 있는 플라스미드 염기서열에 특이적으로 결합하는 다중 복합 프라이머 세트를 이용하면 같은 종(species)의 유산균이라고 하더라도 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32 균주 만을 검출할 수 있다는 사실을 확인함으로써 본 발명을 완성하였다.

이하, 본 발명의 구성을 상세하게 설명한다.

본 발명은 SEQ ID NO: 1 및 2의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍;

SEQ ID NO: 3 및 4의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍;

SEQ ID NO: 5 및 6의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍; 및

SEQ ID NO: 7 및 8의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍으로 이루어지는 프라이머 세트를 포함하는 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32(Leuconostoc mesenteroides WiKim32; 수탁번호 KFCC11639P)의 검출용 프라이머 세트를 제공한다.

본 발명에 있어서, 상기 SEQ ID NO: 1 내지 SEQ ID NO: 8의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍은 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32 특이적 프라이머 쌍이다.

한 구체예에서, 상기 SEQ ID NO: 1 및 2의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍은 SEQ ID NO: 9의 염기서열로 이루어지는 유전자를 특이적으로 검출할 수 있으며, PCR 수행 시 742 bp의 증폭 산물을 생성할 수 있다. 상기 SEQ ID NO: 3 및 4의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍은 SEQ ID NO: 10의 염기서열로 이루어지는 유전자를 특이적으로 검출할 수 있으며, PCR 수행 시 1178 bp의 증폭 산물을 생성할 수 있다. 상기 SEQ ID NO: 5 및 6의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍은 SEQ ID NO: 11의 염기서열로 이루어지는 유전자를 특이적으로 검출할 수 있으며, PCR 수행 시 530 bp의 증폭 산물을 생성할 수 있다. 상기 SEQ ID NO: 7 및 8의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍은 SEQ ID NO: 12의 염기서열로 이루어지는 유전자를 특이적으로 검출할 수 있으며, PCR 수행 시 978 bp의 증폭 산물을 생성할 수 있다. 따라서, 상기 프라이머 세트를 이용하면 시료 내 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32 균주의 함유 여부를 확인할 수 있다.

본 발명에 따른 검출용 프라이머 세트는 상기 SEQ ID NO: 1 및 2의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍; SEQ ID NO: 3 및 4의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍; SEQ ID NO: 5 및 6의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍; 및 SEQ ID NO: 7 및 8의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍으로 이루어지는 4종의 프라이머 세트를 모두 포함함으로써, 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32 균주만을 특이적으로 검출할 수 있다.

본 명세서에서 사용된 용어, "프라이머"란 카피하려는 핵산 가닥에 상보적인 단일 가닥 올리고뉴클레오티드 서열을 말하며, 프라이머 연장 산물의 합성을 위한 개시점으로서 작용할 수 있다. 상기 프라이머의 길이 및 서열은 연장 산물의 합성을 시작하도록 허용해야 한다. 프라이머의 구체적인 길이 및 서열은 요구되는 DNA 또는 RNA 표적의 복합도(complexity) 뿐만 아니라 온도 및 이온 강도와 같은 프라이머 이용 조건에 의존할 것이다. 프라이머로서 이용된 올리고뉴클레오티드는 또한 뉴클레오티드 유사체(analogue), 예를 들면, 포스포로티오에이트(phosphorothioate), 알킬포스포로티오에이트 또는 펩티드 핵산(peptide nucleic acid)를 포함할 수 있거나 또는 삽입 물질(intercalating agent)를 포함할 수 있다. 바람직하게는, 프라이머는 디옥시리보뉴클레오타이드이며 단일쇄이다. 본 발명에서 이용되는 프라이머는 자연(naturally occurring) dNMP(즉, dAMP, dGMP, dCMP 및 dTMP), 변형 뉴클레오타이드 또는 비-자연 뉴클레오타이드를 포함할 수 있다. 또한, 프라이머는 리보뉴클레오타이드도 포함할 수 있다.

본 발명에서 이용되는 프라이머는 타겟 핵산에 상보적인 혼성화 뉴클레오타이드 서열을 포함한다. 용어 "상보적"은 소정의 어닐링 또는 혼성화 조건하에서 프라이머 또는 프로브가 타겟 핵산 서열에 선택적으로 혼성화 할 정도로 충분히 상보적인 것을 의미하며, 실질적으로 상보적(substantially complementary) 및 완전히 상보적(perfectly complementary)인 것을 모두 포괄하는 의미를 가지며, 바람직하게는 완전히 상보적인 것을 의미한다.

본 발명에 있어서, 시료란 류코노스톡 메센테로이드 균주를 함유하거나, 함유할 것으로 예상되는 모든 식품, 예컨대 김치와 같은 발효 식품 또는 김치 양념소와 같은 혼합 양념으로부터 얻은 시료일 수 있다. 한 구체예에서, 상기 시료는 김치로부터 얻은 시료일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.

또한, 본 발명은 상기 프라이머 세트를 포함하는 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32(Leuconostoc mesenteroides WiKim32; 수탁번호 KFCC11639P)의 검출용 조성물을 제공한다.

한 구체예에서, 상기 조성물은 표적 핵산을 증폭하기 위한 조성물일 수 있다. 증폭은 핵산 증폭을 위하여 알려진 방법일 수 있다. 증폭은 예를 들면, DNA 증폭 또는 RNA 증폭일 수 있다. 증폭 방법은 열순환(termal cycling)을 필요로 하는 것 또는 등온(isothermal)에서 수행되는 것일 수 있다. 상기 증폭방법은 폴리머라아제 연쇄 반응(polymerase chain reaction: PCR), 핵산 서열-기초 증폭(nucleic acid sequence-based amplification: NASBA), 리가제 연쇄 반응(ligase chain reaction: LCR), 가닥 치환 증폭(strand displacement amplificaton: SDA), 롤링 서클증폭(rolling circle amplification: RCA) 등을 포함할 수 있다. 증폭 방법은 또한, RNA 증폭 방법을 포함할 수 있다. 예를 들면, 역전사(reverse transcription: RT) 또는 역전사-PCR을 포함할 수 있다. 증폭이란 표적 핵산 서열 또는 그에 상보적인 서열의 카피 수를 증가시키는 것일 수 있다. "PCR"은 중합효소를 이용하여 표적 핵산에 특이적으로 결합하는 프라이머 쌍으로부터 표적 핵산을 증폭하는 방법일 수 있다.

상기 조성물은 표적 핵산의 증폭에 요구되는 알려진 물질을 더 포함할 수 있다. 예를 들면, 상기 조성물은 핵산 폴리머라아제, 그의 활성에 필요한 버퍼, 보조인자, 및/또는 기질을 더 포함할 수 있다. 상기 핵산 폴리머라아제는 DNA 폴리머라아제, RNA 폴리머라아제, 역전사 효소(reverse transcriptase) 및 이들의 조합일 수 있다. 역전사(reverse transcription)란 RNA를 주형으로 하여 RNA 서열에 상보적인 DNA 가닥을 합성하는 것일 수 있다.

상기 핵산 폴리머라아제는 가닥 치환 활성을 갖는 것일 수 있다. 예를 들면, 레트로바이러스, 예를 들면, HIV, MMLV, 및 AMV로부터 유래된 하나 이상의 역전사 효소일 수 있다. 상기 핵산 폴리머라아제는 3' → 5' 엑소뉴클레아제 활성(exonuclease activity)을 갖지 않는 것일 수 있다. 상기 조성물은 역전사 또는 PCR 증폭에 필요한 물질을 포함하는 것일 수 있다

또한, 본 발명은 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32(Leuconostoc mesenteroides WiKim32; 수탁번호 KFCC11639P)의 검출 방법을 제공한다.

구체적으로, 시료로부터 추출한 플라스미드 DNA를 상기 프라이머 세트를 이용하여 PCR을 수행하고 PCR 산물을 분석하는 단계를 포함하는 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32의 검출 방법을 제공한다.

보다 구체적으로, 상기 검출 방법은

1) 시료로부터 플라스미드 DNA를 추출하는 단계;

2) SEQ ID NO: 1 및 2의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍, SEQ ID NO: 3 및 4의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍, SEQ ID NO: 5 및 6의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍 및 SEQ ID NO: 7 및 8의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍을 포함하는 프라이머 세트를 제작하는 단계;

3) 단계 1)에서 추출한 DNA를 주형으로 하고, 단계 2)의 프라이머 세트를 이용하여 PCR(polymerase chain reaction)을 수행하는 단계; 및

4) 단계 3)의 PCR 수행에 의해 생성된 증폭 산물을 검출하는 단계를 포함할 수 있다.

상기 검출 방법에 있어서, 시료, SEQ ID NO: 1 내지 8의 염기서열로 이루어진 프라이머 세트, PCR 반응에 대한 모든 내용은 위에서 기술한 내용을 모두 적용 또는 준용할 수 있다.

상기 단계 1)에서 시료로부터 플라스미드 DNA를 추출하는 단계는 통상적으로 사용되는 플라스미드 DNA 추출 방법을 사용할 수 있으며, 특별히 제한되는 것은 아니다. 본 발명에 있어서, “플라스미드 DNA”는 염색체 외에서 자체 복제 능력이 있는 원형의 DNA를 의미한다.

상기 단계 2)에서, 상기 SEQ ID NO: 1 및 2의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍은 SEQ ID NO: 9의 염기서열로 이루어지는 유전자를 특이적으로 검출할 수 있으며, 상기 SEQ ID NO: 3 및 4의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍은 SEQ ID NO: 10의 염기서열로 이루어지는 유전자를 특이적으로 검출할 수 있고, 상기 SEQ ID NO: 5 및 6의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍은 SEQ ID NO: 11의 염기서열로 이루어지는 유전자를 특이적으로 검출할 수 있으며, 상기 SEQ ID NO: 7 및 8의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍은 SEQ ID NO: 12의 염기서열로 이루어지는 유전자를 특이적으로 검출할 수 있다.

상기 단계 2)에서는 SEQ ID NO: 1 및 2의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍; SEQ ID NO: 3 및 4의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍; SEQ ID NO: 5 및 6의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍; 및 SEQ ID NO: 7 및 8의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍으로 이루어지는 4종의 프라이머 세트를 모두 제작할 수 있다.

상기 단계 3)의 PCR은 다중(multiplex) PCR일 수 있으나, 이에 제한하지 않는다.

상기 단계 3)의 PCR은 어닐링(annealing) 온도 50 내지 65℃로 수행되는 것일 수 있고, 바람직하게는 어닐링 온도 60℃로 수행되는 것일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다. 상기 PCR 반응 조건은 통상적인 조건으로 수행될 수 있다. 또한, 상기 PCR과 다중 PCR 반응은 동일한 조건으로 수행될 수 있으며, 예를 들어 초기 변성을 96℃에서 5분간 1회 수행한 후, 변성(denaturation, 96℃에서 45초), 어닐링(annealing, 60℃에서 45초) 및 연장(extention, 72℃에서 60초)를 총 30 사이클 수행한 후, 최종 확장 반응을 72℃에서 5분 동안 실시할 수 있다. 예를 들어, 상기 SEQ ID NO: 1 및 2의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍, SEQ ID NO: 3 및 4의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍, SEQ ID NO: 5 및 6의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍 및 SEQ ID NO: 7 및 8의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍은 모두 PCR 수행시 어닐링 온도가 60℃로 동일할 수 있고, 이에 따라 다중 PCR 수행시 검출 효율이 우수할 수 있다.

상기 단계 4)의 증폭 산물은 SEQ ID NO: 1 및 2의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍에 의해 증폭된 742 bp의 증폭 산물; SEQ ID NO: 3 및 4의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍에 의해 증폭된 1178 bp의 증폭 산물; SEQ ID NO: 5 및 6의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍에 의해 증폭된 530 bp의 증폭 산물; 또는 SEQ ID NO: 7 및 8의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍에 의해 증폭된 978 bp의 증폭 산물인 것일 수 있다.

따라서, SEQ ID NO: 1 및 2의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍을 이용하여 742 bp의 PCR 산물이 증폭되거나;

SEQ ID NO: 3 및 4의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍을 이용하여 1178bp의 PCR 산물이 증폭되거나;

SEQ ID NO: 5 및 6의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍을 이용하여 530bp의 PCR 산물이 증폭되거나; 또는

SEQ ID NO: 7 및 8의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍을 이용하여 978bp의 PCR 산물이 증폭되는 경우, 시료 내 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32(Leuconostoc mesenteroides WiKim32; 수탁번호 KFCC11639P)가 함유된 것으로 결정할 수 있다.

상기 PCR 산물 분석은 PCR 산물을 전기영동하여 산물의 크기를 비교하거나, PCR 산물이 증폭되는지 증폭되지 않는지를 확인하여 분석할 수 있다.

상기 전기영동은 증폭 산물의 크기에 따라 아가로스 겔 전기영동 또는 아크릴아마이드 겔 전기영동을 이용할 수 있으나, 전기영동법이 이에 제한되는 것은 아니다.

본 명세서에서 사용된 용어 "증폭 반응"은 핵산 분자를 증폭하는 반응을 의미한다. 다양한 증폭 반응들이 당업계에 보고되어 있으며, 이는 중합효소 연쇄반응(PCR)(미국 특허 제4,683,195, 4,683,202, 및 4,800,159호), 역전사-중합효소 연쇄반응(RT-PCR)(Sambrook 등, Molecular Cloning. A Laboratory Manual, 3rd ed. Cold Spring Harbor Press(2001)), Miller, H. I.(WO 89/06700) 및 Davey, C. 등(EP 329,822)의 방법, 리가아제 연쇄 반응(ligase chain reaction; LCR)(17, 18), Gap-LCR(WO 90/01069), 복구 연쇄 반응(repair chain reaction; EP 439,182), 전사-중재 증폭(transcription-mediated amplification; TMA)(19) (WO 88/10315), 자가 유지 염기서열 복제(self-sustained sequence replication)(20)(WO 90/06995), 타깃 폴리뉴클레오티드 염기서열의 선택적 증폭(selective amplification of target polynucleotide sequences)(미국 특허 제6,410,276호), 컨센서스 서열 프라이밍 중합효소 연쇄 반응(consensus sequence primed polymerase chain reaction; CPPCR)(미국 특허 제4,437,975호), 임의적 프라이밍 중합효소 연쇄 반응(arbitrarily primed polymerase chain reaction; AP-PCR)(미국 특허 제5,413,909호 및 제5,861,245호), 핵산 염기서열 기반 증폭(nucleic acid sequence based amplification; NASBA)(미국 특허 제5,130,238호, 제5,409,818호, 제5,554,517호, 및 제6,063,603호), 가닥 치환 증폭(strand displacement amplification)(21, 22) 및 고리-중재 항온성 증폭(loopmediated isothermal amplification; LAMP)(23)를 포함하나, 이에 한정되지는 않는다. 사용 가능한 다른 증폭방법들은 미국특허 제5,242,794, 5,494,810, 4,988,617호 및 미국 특허 제09/854,317호에 기술되어 있다.

본 발명의 한 구체예에서, 상기 4종의 프라이머 세트를 동시에 사용하여 PCR을 수행한 결과, 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32 균주만을 특이적으로 검출하였다(도 3).

또한, 본 발명은 상기 프라이머 세트와 이의 PCR 반응 혼합물을 포함하는 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32(Leuconostoc mesenteroides WiKim32; 수탁번호 KFCC11639P) 검출용 PCR 키트를 제공한다.

상기 PCR 반응 혼합물로는 이 기술분야에서 널리 공지된 것 어느 것이나 포함될 수 있으며, 예를 들어, dNTP, DNA 폴리머라아제(polymerase) 및 버퍼 등을 포함할 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.

본 발명의 이점 및 특징, 그리고 그것들을 달성하는 방법은 상세하게 후술되어있는 실시예들을 참조하면 명확해질 것이다. 그러나 본 발명은 이하에서 개시되는 실시예들에 한정되는 것이 아니라 서로 다른 다양한 형태로 구현될 것이며, 단지 본 실시예들은 본 발명의 개시가 완전하도록 하고, 본 발명이 속하는 기술분야에서 통상의 지식을 가진 자에게 발명의 범주를 완전하게 알려주기 위해 제공되는 것이며, 본 발명은 청구항의 범주에 의해 정의될 뿐이다.

본 발명에 따른 검출용 프라이머 세트를 이용하면 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32 균주를 특이적으로 검출할 수 있으므로, 동일 종(species)의 유산균 내에서도 상기 균주만을 신속하게 검출할 수 있으며 균주를 검출하는데 소요되는 시간 및 경비를 획기적으로 절감할 수 있다. 또한, 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32 균주의 신속하고 정확한 검출은 김치와 같은 발효식품의 품질 조절에 활용하여 발효식품의 관리 기술에 기여 및 발효식품 산업의 경쟁력을 강화시킬 수 있다.

도 1은 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32의 유전체 지도로, WiKim32가 유전자의 길이가 2,017,582 bp 정도인 크로모좀과 약 48,128 bp, 32,747 bp, 25,881 bp 및 10,187 bp에 해당되는 4개의 플라스미드로 구성되어 있음을 나타낸다.
도 2는 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32에 특이적인 본 발명의 프라이머 세트를 이용한 PCR 수행 결과를 나타낸 것으로, 742bp, 1178bp, 530bp, 978bp의 PCR product를 확인하였다.
도 3은 본 발명의 프라이머 세트를 이용하여 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32를 특이적으로 검출하는지 확인하기 위하여, 타 균주들을 이용하여 PCR을 수행한 결과이다.
도 4는 본 발명의 프라이머 세트를 이용하여 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32를 종균으로 사용하여 제조된 김치 내 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32의 검출 감도를 나타낸 결과로, 김치내 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32가 10⁵ log CFU/mL 이상 존재시 4개의 밴드가 확연히 나타났으며, 김치내 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32의 농도에 따라 밴드의 굵기가 비례하는 것으로 나타나 김치내 종균으로 사용한 WiKim32 농도여부를 확인할 수 있음을 검증한 결과이다.
도 5는 본 발명의 프라이머 세트를 이용하여 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32를 종균으로 사용하여 제조된 김치 내 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32를 검출한 결과를 나타낸 것으로, 김치는 -2℃, 0℃, 6℃에서 12주간 저장하면서 김치 내 종균으로 사용한 WiKim32의 존재 여부를 검증한 결과이다.

이하, 본 발명을 실시예를 통해 상세히 설명한다. 하기 실시예는 본 발명을 예시하는 것일 뿐 본 발명의 범위가 하기 실시예에 한정되는 것은 아니다.

[ 실시예 1] 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32의 유전체 특징 분석

류코노스톡 메센테로이드 WiKim32(Leuconostoc mesenteroides WiKim32)에 특이적인 프라이머를 제작하기 위하여 유전체를 분석하였다.

구체적으로, 수탁번호 KFCC11639P의 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32(Leuconostoc mesenteroides WiKim32)의 유전체 염기서열 분석을 하였다. WiKim32의 DNA는 QIAcube(QIAGEN, Canada)를 이용하여 추출하였으며, ㈜마크로젠(대한민국, 서울)에 의뢰하여 20kb SMRTbell Templates library를 지닌 Pacific Biosciences RS Ⅱ platform을 사용하여 유전자 서열 정보를 분석하였다. Assembly는 RS hierarchical genome assembly process(HGAP) 프로토콜(ver. 3.0)를 사용하여 진행하였다. 총 2,017,852 bp의 크로모좀과 4개의 플라즈미드(48,128 bp, 32,747 bp, 25,881 bp 및 10,187 bp)로 구성되어 있는 것을 확인할 수 있었으며(표 1), 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32의 유전체 지도를 도 1에 나타내었다.

Contig Name	Length (bp)	GC ( % )	Alias
contig1	2,017,852	37.7	크로모좀
contig2	48,128	34.7	플라스미드 1
contig3	32,747	37.3	플라스미드 2
contig4	25,881	38.6	플라스미드 3
contig5	10,187	33.8	플라스미드 4
Total	2,134,525	37.60

[ 실시예 2] 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32의 특이적 프라이머 제작

류코노스톡 메센테로이드 WiKim32 균주만을 선택적으로 검출하기 위한 특이적 프라이머를 제작하기 위하여 NCBI의 BlastN 프로그램을 이용하여, 기존에 염기서열 분석이 완료된 타 류코노스톡 메센테로이드 균주들과 상기 WiKim32의 크로모좀 염기서열 비교분석을 수행하였다. 크로모좀 비교 분석에서는 WiKim32와 타 류코노스톡 메센테로이드 균주의 크로모좀과의 ANI(Average Nucleotide identity) 값이 대부분 99% 이상으로 확인되어 크로모좀에서는 WiKim32만의 특이적인 유전자를 찾을 수 없었다. 이에 크로모좀이 아닌 플라즈미드 유전자를 이용하여 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32의 특이적 프라이머를 제작하였다. WiKim32 플라즈미드에 특이적 프라이머 제작을 위하여 NCBI의 primer-BLAST(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/tools/primer-blast/)를 사용하였으며, 총 4쌍의 프라이머를 제작하였다(표 2). 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32의 유전자를 추출하고 이를 주형으로 제작된 프라이머 4세트를 이용하여 PCR를 시행한 결과(도 2), P1_742 F 및 R 프라이머 세트에 의해 특이적으로 검출되는 유전자 서열을 SEQ ID NO: 9로 나타내었고, P2_1178 F 및 R 프라이머 세트에 의해 특이적으로 검출되는 유전자 서열을 SEQ ID NO: 10으로 나타내었으며, P2_530 F 및 R 프라이머 세트에 의해 특이적으로 검출되는 유전자 서열을 SEQ ID NO: 11로 나타내었고, P4_978 F 및 R 프라이머 세트에 의해 특이적으로 검출되는 유전자 서열을 SEQ ID NO: 12로 나타내었다.

SEQ ID NO.	명칭	프라이머 종류	Sequence(5'→3')	Amplicon size(bp)	Reference
1	P1_742F	정방향	ACCTATTTGACCGCCACCAG	742	Contig2
2	P1_742R	역방향	CATTGCGTTAGTAAGCGGGC
3	P2_1178F	정방향	GGTCCCACGGCTGTTATCAA	1178	Contig3
4	P2_1178R	역방향	GCAATTAAGCGCACGGCATA
5	P2_530F	정방향	TGCATCACGAATGAGGTGCT	530	Contig3
6	P2_530R	역방향	AAATGGCCGTGTTTGTCGTG
7	P4_978F	정방향	AATGGGGCGCTAGGTTATCG	978	Contig5
8	P4_978R	역방향	CCATGCGTAAAACAGGTGCC

[ 실시예 3] 프라이머 세트를 이용한 다중- PCR 검정

상기 실시예 2에서 제작한 각각의 프라이머가 타 류코노스톡 메센테로이드 균주 및 종속이 다른 유산균주 중 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32만을 정확하게 검출 및 판별 가능한지 확인하기 위하여 다중 PCR(multiplex PCR)을 수행하였다. 본 발명자의 이전 연구(KR 등록 제10-1660847호)의 균주인 WiKim33 균주 포함, 류코노스톡 속(Leuconostoc sp.) 46종(도 3, lane 1-46), 락토바실러스 속(Lactobacillus sp.) 17종(도 3, lane 47-63), 락토코코스 속(Lactococcus sp.) 3종(도 3, lane 64-66), 페디오코코스 속(Pediococcus sp.) 2종(도 3, lane 67-68), 와이셀라 속(Weissella sp.) 8종(도 3, lane 69-76), 총 76종의 유산균에 대해서 각각의 프라이머 세트에 의한 PCR 수행 결과는 도 3에 나타내었다.

WiKim32로부터 DNA 추출은 MRS 액체배지에서 18시간 배양한 후 원심분리(13,000×g, 10 min)하여 얻은 균체를 멸균된 생리 식염수로 2회 세척한 후, DNA Prep kit(Quiagen, Valecia, CA, USA)를 사용하여 제조사의 protocol에 따라 DNA를 추출하였으며 중합연쇄 반응을 위한 주형으로 사용하였다.

중합연쇄반응은 전체 반응액을 20㎕로 하여 PCR 프리믹스(Taq DNA 폴리머라아제 1 U, dNTP 200㎕, MgCl₂ 1.5mM) 10㎕, 주형 DNA 10ng, 10pmol의 프라이머 세트를 각각 혼합하여 수행하였다. 중합연쇄반응 조건은 96℃에서 5분간 초기열처리(preheating)한 후, 96℃에서 45초 변성(denaturation), 60℃에서 45초간 어닐링(annealing), 72℃에서 60초간 신장(extention) 반응, 총 30 사이클 수행한 후, 최종 확장 반응을 72℃에서 5분 동안 실시하였다. 수득한 PCR 증폭산물은(product) 1.5% 아가로즈젤 상에서 전기영동하였고, UV 상에서 EtBr(Ethidium bromide)의 발색량을 검출하여 분석하였으며, 분자량은 분자량 래더마커(ladder marker)와 비교하였다.

도 3과 같이 WiKim32를 비롯하여 76종의 균주에 4종의 프라이머 세트로 다중 PCR을 시행한 결과, WiKim32와 같은 종속의 류코노스톡 메센테로이드 균주, 그리고 속종이 다른 유산균에서도 4개의 밴드가 생성되지 않음을 확인함으로써, 4종의 프라이머 세트를 이용한 다중 PCR은 WiKim32 만을 검출하기 위한 방법임을 확인할 수 있었다.

더욱이, 이전 연구(KR 등록 제10-1660847호)의 WiKim33 균주가 같은 종속임에도 4개의 밴드가 생성되지 않는 결과로부터 본 발명의 프라이머 세트와 교차 반응하지 않음을 확인할 수 있었다(도 3, lane 1). 이는 단일 종균 뿐만 아니라 복합 종균으로 WiKim32와 WiKim33을 조합하여 김치에 첨가하는 경우에도 각 종균별 프라이머 세트를 사용하여 각 종균을 검출할 수 있음을 나타내는 결과이다. 플라즈미드 염기서열을 이용한 종균별 PCR 프라이머 세트는 특정 균주(strain)만을 선택적으로 검출할 수 있는 방법임을 확인할 수 있었다.

[ 실시예 4] 4종 프라이머 세트-다중 PCR 검출법을 이용한 WiKim32 첨가 김치 내 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32 균주의 검출 감도

상기 실시예 2에서 제작한 각각의 프라이머가 김치내 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32를 검출할 수 있는 농도를 확인하기 위해, 제조 직후의 김치 국물에 종균 WiKim32 균주의 균체를 10⁰ log CFU/mL 내지 10⁹ log CFU/mL의 농도가 되도록 각각 넣고, 4종의 프라이머 세트로 다중 PCR을 시행하였다. 김치는 '한국 특허출원 제10-2017-0029912호'의 제조예 1, 실시예 2 내지 4의 방법으로 종균을 첨가하지 않고 제조하였다. 김치는 마쇄하여 거즈로 걸러낸 김치 국물에 WiKim32 균주의 균체를 농도 별로 첨가하였다.

그 결과, 도 4와 같이 WiKim32 균주의 농도가 10⁵ log CFU/mL가 되도록 첨가한 김치 국물의 구간부터 4개의 밴드가 확연하게 나타났으며, WiKim32 균주의 농도가 증가할수록 4개의 밴드가 비례적으로 진해지고 증가하는 것을 확인할 수 있었다.

[ 실시예 5] 4종 프라이머 세트-다중 PCR 검출법을 이용한 WiKim32 첨가 김치 내 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32 균주의 모니터링

본 발명에 따른 4종의 프라이머 세트를 동시에 이용한 다중 PCR 법을 사용하여 김치 내 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32 균주를 모니터링하기 위하여 WiKim32 첨가 김치를 제조하였다.

류코노스톡 메센테로이드 WiKim32를 종균으로 첨가하여 제조된 김치는 '한국 특허출원 제10-2017-0029912호'의 제조예 1, 실시예 2 내지 4의 방법으로 제조하였다. 이때, 대조군으로는 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32를 첨가하지 않은 김치를 제조하여 사용하였다. 김치는 -2℃, 0℃, 6℃에서 12주 동안 저장하면서 발효기간에 따른 김치 내 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32 균주를 모니터링하였다.

PCR 반응액은 각각의 김치 시료를 핸드 블렌더로 마쇄하여 얻은 김치여액 1 mL을 원심분리(13,000×g, 10 min)하여 얻은 pellet을 멸균된 생리 식염수로 2회 세척한 후, DNA Prep kit (Quiagen, Valecia, CA, USA)를 사용하여 제조사의 protocol에 따라 DNA를 추출하였으며 중합연쇄 반응을 위한 주형으로 사용하였다. 중합연쇄 반응조건은 상기 실시예 3의 방법과 동일한 방법으로 시행하였다.

본 발명에 따른 프라이머 4종 세트를 이용하여 다중 PCR 분석을 수행한 결과(도 5), WiKim32 첨가 김치에서는 종균으로 사용한 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32 균주가 김치는 -2℃, 0℃, 6℃의 각 저장온도에서 김치발효 초기부터 저장 12주까지 저장기간 동안 지속적으로 존재함을 확인할 수 있었으며, 대조군인 WiKim32를 첨가하지 않은 종균비첨가 김치에서는 WiKim32 균주에서 생성되는 밴드가 나오지 않았다.

따라서, 본 실시예를 통해 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32 균주의 플라스미드 특이적 프라이머 4종 세트를 이용한 다중 PCR 분석법은 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32 균주 만을 특이적으로 증폭함을 확인할 수 있었다. 이러한 플라스미드 특이적 프라이머를 이용한 PCR 방법은 종래의 도말 배양에 의한 콜로니의 형태나 수의 확인에 따르는 시간의 과다 소요뿐만 아니라 유산균 크로모좀 및 16S rRNA 염기서열 간의 매우 높은 상동성에 따른 검출의 부정확성을 극복할 수 있는 방법으로 특정 균주(strain)의 존재 여부를 손쉽고 정확하게 모니터링 할 수 있는 장점을 지닌다.

<110> Korea Food Research Institute <120> Primer set, composition and kit for detecting strains of Leuconostoc mesenteroides WiKim32, and methods using the same <130> P18R10C0065 <160> 12 <170> KoPatentIn 3.0 <210> 1 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> P1_742F <400> 1 acctatttga ccgccaccag 20 <210> 2 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> P1_742R <400> 2 cattgcgtta gtaagcgggc 20 <210> 3 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> P2_1178F <400> 3 ggtcccacgg ctgttatcaa 20 <210> 4 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> P2_1178R <400> 4 gcaattaagc gcacggcata 20 <210> 5 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> P2_530F <400> 5 tgcatcacga atgaggtgct 20 <210> 6 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> P2_530R <400> 6 aaatggccgt gtttgtcgtg 20 <210> 7 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> P4_978F <400> 7 aatggggcgc taggttatcg 20 <210> 8 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> P4_978R <400> 8 ccatgcgtaa aacaggtgcc 20 <210> 9 <211> 742 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Leuconostoc mesenteroides WiKim32 Target 1 <400> 9 acctatttga ccgccaccag caatggttga agaaattggt aaggctattg ccgttgttgc 60 cgcttgagga agcatagcaa tcgttgcaat ttttgataaa ccaaacaaac gtgagatgct 120 aaaaattaga aacaaagcga ttgttaagcc aacaaataaa gaagtaaaaa tacgtaacca 180 gtagcgtttc accaaatcac gacgtttgta tagtggtacc gcaaatgcca ttgttgctgg 240 atttaggaac caaaagatga aatctccgcc gactttgtac tgctggtaaa gggatatagt 300 ggattgttgt aataaactag ataaaccaag taaaatcaaa atacccaaca ccattccgat 360 gaataagggc tgaaatataa acactggata ttttttgaat aactgttgac caacccaata 420 aacaaaaagt gttaaaaaaa tgccccaaaa aggtgtactc aaaaataata acatagccct 480 actcctaact acctacaatt tgtgatgtat tttatcactg atttttgcca ccaattgaga 540 tgtatacgca actgataata aaagaacaac cgttgatata attaccacca cgataatttt 600 aattccctct tgtttaaata aggtcaatga actgataagt gagataccag aaggtacaaa 660 taacaaacca atcaatccaa ttaaatttgt cgataaactt tctacctgtt ccaatttaac 720 aagcccgctt actaacgcaa tg 742 <210> 10 <211> 1178 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Leuconostoc mesenteroides WiKim32 Target 2 <400> 10 ggtcccacgg ctgttatcaa tggaacagtc aacccatact tcgatgtcac aacacaaaaa 60 ataaggttac gttttttaaa tggtgctaac cgtcgggaat ggcgtttgca tttttccgat 120 gatttgccat ttgatcagat tgcgggggat tgttctctat tacccaagcc aatcaggctg 180 acaggtttaa tgttgagctg tgctgaacgt gcagaagtca ttattgattt tagccaatat 240 catgaaggtg atgaggtaac cttatatact gatcaagtgc cactattaaa gttccgcatt 300 cacaatttcg caaaagatac tacaaaaatt cccgatcatt taattaattt aaagaaaccg 360 acagttgaaa cgtcattacc cattcgacat gtcgtcatgc aaggaatgga tgaaagtgtt 420 gccatagatg acaagaaatt tgctatggaa cgcattgatg ccgagcaaat agttggagag 480 tatcagtatt gggatgtcac gaatagtaac gaaaaaccgg gaatggttca cccatttcac 540 atacacggca ctcgcttttt agtactaaca cgtaatggaa aagatccata tccaaatgag 600 aacggtttca aagacaccat tggagttaac ccaggggaaa ctgttcgaat actagttaag 660 tttgatttac ctggtattta tatgtatcat tgccatattt tagaacatga agatggtggt 720 atgatggcac aaatagagat agtagatcca aaaaagccgc atcagaagta tcagttaatg 780 gatatgaata ctttaatgaa tgcgttagct gaggagcgtg gtattgagtt atctaatctt 840 tggatggcag gtatggagtc gtacgaaaaa atgggaatga aaatgtaaga ttttgctaga 900 atacttccga tgaaaaatgg ttgatcaatc atattcgctg ttaaactatt ggtatgttaa 960 gattaaggga acaacatatt taggttcaaa gtcaaatggt actgatgacc ggtaaaattt 1020 aatattttga accttgctta ggcagctgac ttcacattgt tgaaatcagc tgccttttgc 1080 ttatagttca ttgagtagaa actattcttg aatgagataa gaatacgtag acggaagttt 1140 ttgaaactac ggaagccgta tgccgtgcgc ttaattgc 1178 <210> 11 <211> 530 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Leuconostoc mesenteroides WiKim32 Target 3 <400> 11 tgcatcacga atgaggtgct caatcggata ctcgcgacta tacccgtagc cggccagtac 60 ttgaagcgcc atatcgccgc accggaccgc cgaacgactt ccgtacgatt ttgccatcgc 120 ggcaacttgg gcatacgact gtcccgtgat cttcaactgt gccgcatgct gatacattag 180 ctccgtgttc tgacgggcaa tcgcgatttc tgaaattttt tcttgaatgg tttgtaattc 240 ataaagcggg gtatcgagtg ctttacgctg cttagaatag tcgaccgcaa tctgtaattc 300 gtgttccata atgcccgtga ggacggcgcc catcaaaatc cgcgcgtcgt cgtgggcgtt 360 atggccgatt tcgaggcctt ggccgatctg accaagtagg tggtaacccg gcaccttgat 420 atgatccatc acaatttcgc cgacaggtgt cccgcgtaga ccaatgaagt cttcacgctt 480 tccaaatgaa aaaccaggca tatcctgatc cacgacaaac acggccattt 530 <210> 12 <211> 978 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Leuconostoc mesenteroides WiKim32 Target 4 <400> 12 aatggggcgc taggttatcg ttcatcaaag agtcaatatg gtgatacaaa aaagacacat 60 cgcgaagcta agaaagcgac aaaggttgct aacgctatga aaaaggaagg ttggcagttt 120 gcatcgcatt cctggggtca tataaatatg actacggcca gtgttgatga tatcaaaaag 180 gacactgcac tttggcaaaa ggaagtacaa ccaattgttg gtaaaacacc agtattgatt 240 ttcccatttg gagcagatat tggctcattt acaaattaca caaatgataa tgcaaagtac 300 acttatctta agagtagcgg tttcagtatt ttcgataatg ttgatgcgtc acagacatca 360 tggggtcaat taacaaatga ttattatcgt aatgcgcgga taaatgtcga tggtattcgt 420 ttacatgaaa caatgactgg tgagaacacg gttctaaatg acttctttaa tacaaaagat 480 ttttatcatc gtgataaata atgaagagcg cgagacaaaa gtcgtttatg attatgtctc 540 taatcaatcc aacgaacaag gcactgaatt taatcaacct caaggttaaa tttgcttatg 600 aatgaaaagt ataataactt aattaagcaa cgtgataagg ctgaaaaaaa gattgaacaa 660 gctgatttca aagggcgctg attgtgcatc tcaacaagag actgcttaaa ttcttttttg 720 tatcgaatca tattaaaaaa tgctcctatg ctattagttt acagggcaga agaaaatctg 780 tccgtaaatc tagcataaga gcaagctggc gtaattagcc aaaatcaatt tgatctaaca 840 tcgtttcgcg actagcttgg tctaacccaa ggtaagtcag ggtcatggct tcactagaat 900 gattcaataa gtgcatgact aaaccaatgt tgtaattcga ctgcgtgtat acgcgatagg 960 tacgcatttt gtccacgg 978

Claims (7)

1. SEQ ID NO: 1 및 2의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍;
   SEQ ID NO: 3 및 4의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍;
   SEQ ID NO: 5 및 6의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍; 및
   SEQ ID NO: 7 및 8의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍으로 이루어지는 프라이머 세트를 포함하는 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32(Leuconostoc mesenteroides WiKim32; 수탁번호 KFCC11639P)의 검출용 프라이머 세트.
2. 제1항에 있어서,
   상기 SEQ ID NO: 1 및 2의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍은 SEQ ID NO: 9의 염기서열로 이루어지는 유전자를 특이적으로 검출하고,
   상기 SEQ ID NO: 3 및 4의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍은 SEQ ID NO: 10의 염기서열로 이루어지는 유전자를 특이적으로 검출하며,
   상기 SEQ ID NO: 5 및 6의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍은 SEQ ID NO: 11의 염기서열로 이루어지는 유전자를 특이적으로 검출하고,
   상기 SEQ ID NO: 7 및 8의 염기서열로 이루어지는 프라이머 쌍은 SEQ ID NO: 12의 염기서열로 이루어지는 유전자를 특이적으로 검출하는 것인 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32(Leuconostoc mesenteroides WiKim32; 수탁번호 KFCC11639P)의 검출용 프라이머 세트.
3. 제1항 또는 제2항에 따른 프라이머 세트를 포함하는 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32(Leuconostoc mesenteroides WiKim32; 수탁번호 KFCC11639P)의 검출용 조성물.
4. 시료로부터 추출한 플라스미드 DNA를 제1항 또는 제2항에 따른 프라이머 세트를 이용하여 PCR을 수행하고 PCR 산물을 분석하는 단계를 포함하는 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32(Leuconostoc mesenteroides WiKim32; 수탁번호 KFCC11639P)의 검출 방법.
5. 제4항에 있어서,
   SEQ ID NO: 1 및 2의 염기서열로 이루어지는 프라이머 세트를 이용하여 742 bp의 PCR 산물이 증폭되거나;
   SEQ ID NO: 3 및 4의 염기서열로 이루어지는 프라이머 세트를 이용하여 1178 bp의 PCR 산물이 증폭되거나;
   SEQ ID NO: 5 및 6의 염기서열로 이루어지는 프라이머 세트를 이용하여 530 bp의 PCR 산물이 증폭되거나; 또는
   SEQ ID NO: 7 및 8의 염기서열로 이루어지는 프라이머 세트를 이용하여 978 bp의 PCR 산물이 증폭되는 경우, 시료 내 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32(Leuconostoc mesenteroides WiKim32; 수탁번호 KFCC11639P)가 함유된 것으로 결정하는 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32(Leuconostoc mesenteroides WiKim32; 수탁번호 KFCC11639P)의 검출 방법.
6. 제1항 또는 제2항에 따른 프라이머 세트와 이의 PCR 반응 혼합물을 포함하는 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32(Leuconostoc mesenteroides WiKim32; 수탁번호 KFCC11639P)의 검출용 PCR 키트.
7. 제6항에 있어서,
   PCR 반응 혼합물은 dNTP, DNA 폴리머라아제 및 버퍼를 포함하는 류코노스톡 메센테로이드 WiKim32(Leuconostoc mesenteroides WiKim32; 수탁번호 KFCC11639P)의 검출용 PCR 키트.

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