KR101440112B1 - 애기뿔소똥구리로부터 분리된 ｃｏｐｒｉｓｉｎ 항생펩타이드의 항균, 항염제로서의 용도 - Google Patents

Abstract

본 발명은 딱정벌레목에 속하는 애기뿔소똥구리(Copris tripartitus)유충으로부터 분리된 43개 잔기서열을 가지는 항균펩타이드 coprisin의 용도 및 작용기작에 관한 것이다. 본 발명의 항균 펩타이드 1종은 그람 음성균 및 그람 양성균, 내성균등에 항균 활성을 나타내고 염증 유도물질 나이트라이트 옥사이드와 사이토카인의 생성을 억제함으로 항염 활성을 나타낸다. 또한 본 발명의 펩타이드는 세포 독성이 거의 없으므로 인체에 안전한 항생제와 염증치료제로서 유용하게 사용될 수 있다.

Description

애기뿔소똥구리로부터 분리된 ｃｏｐｒｉｓｉｎ 항생펩타이드의 항균, 항염제로서의 용도{A use of the peptide, Coprisin isolated from Copris tripartitus larvae and as antibacterial and antiinflammatory agent}

본 발명은 인체에 항생제로서 유용하게 사용될 수 있는 애기뿔소똥구리(dung beetle, Copris tripartitus, larvae)로부터 분리된 coprisin 항생펩타이드의 항생제 및/또는 항염제로서의 용도에 관한 것이다.

페니실린 이후 수많은 종류의 항생제가 개발되어 생체에 외부침입의 세균을 퇴치를 위하여 사용되어 왔다. 그러나 최근에 들어서 이들 항생제에 내성을 가지는 균주들이 등장하여 큰 문제로 여겨진다. 생명에 위협을 가할 수 있는 엔테로코쿠스 패칼리스 (Enterococcus faecalis), 마이코박테리움 투버쿨로시스 (Mycobacterium tuberculosis) 및 슈도모나스 애루기노사 (Pseudomonas aeruginosa) 등의 세균 종들은 지금까지 알려진 모든 항생제에 대한 저항력을 키워왔다 (Stuart, B. Levy, Scientific American, 46-53, 1998). 페니실린, 세파로스포린등과 같은 종래의 화학항생제는 미생물의 세포벽 또는 단백질의 합성저해에 의하여 항생작용을 나타낸다. 이들 내성균주를 퇴치할 수 있는 새로운 작용 메카니즘을 가지는 항생제의 개발이 시급한 실정이며 종래의 화학 항생제와 상이한 항생기전을 나타내는 항생펩타이드들은 새로운 개념의 차세대 항생제로서 주목을 받고 있다 (Zasloff, M. Curr Opin Immunol., 3-7, 1992; Boman, H. G. Cell, 205, 1991; Boman, H. G. J. Intern. Med., 197-215, 2003; Hancock, R. E., & Scott, M. G. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A., 8856-8861, 2000; Zasloff, M., Nature, 389-395, 2002).

넓은 의미로서 면역반응으로 불리어지는 항원항체 반응은 인간을 포함한 무척추동물에 있어서 생체방어의 주된 역할을 해 왔다. 그러나 곤충은 항원 항체반응과 같은 후천적 면역기구와는 다른 선천적 면역기구를 강화하는 것으로 자신을 보호하고 있다. 이와 같이 선천적 면역은 곤충뿐만 아니라 사람을 포함한 척추동물에 있어서도 초기감염에 대해 중요한 방어계로서 역할을 하고 있다. 곤충의 선천적 면역기구의 아주 중요한 수단은 다양한 미생물에 대해 살균, 불활성화작용을 가진 물질을 획득한다는 것이다. 그 중에서도 항균성 펩타이드를 중심으로한 항미생물작용을 가진 펩타이드나 단백질은 우리 인간을 포함한 가축 등의 질병 방제에 대해서 이용 가능성 높다. 이러한 곤충유래 항병원성 단백질은 인간 및 가축의 질병에 대한 가치뿐만 아니라 각종 병원균의 감염에 의해 야기되는 농작물의 피해 방지 및 치료를 위해서도 매우 유용하게 사용될 수 있을 것이다.

항생 펩타이드는 구조에 따라 세 개의 그룹으로 나눌 수 있다. 첫 번째는 시스테인이 풍부한 (cysteine-rich) 베타-쉬트(sheet) 펩타이드이고, 두 번째는 알파-나선형 (helical)의 양친매성 펩타이드 분자이며, 세 번째는 프롤린이나 트립토판등의 특정 아미노산이 풍부한 (proline-rich, Trp-rich) 펩타이드이다 (Mayasaki, Int. J. Antimicrob. Agents, 269-280, 1998; Andreu, D. & Rivas, L., Biopolymers 415-433, 1998). 이들 항균 펩타이드들은 숙주 방어 및 선천적 면역계에 있어서 중요한 역할을 담당하는 것으로 알려져 있다.

항생 펩타이드는 포유류, 양서류, 곤충류 등을 포함한 다양한 종으로부터 발견되었다 (Bulet, P. Immunol. Rev. 169-184, 2004; Hancock, R. E., and Letrer, R. Trends Biotechnol. 82-88, 1998; Blondelle, S. E. Biochim Biophys. Acta. 89-108, 1999). 그 중에서 현재까지 발견된 곤충의 항균단백질 및 펩타이드는 Boman 박사 연구팀에 의해세크로피아나방에서세크로핀이최초로보고된이래약 200여종이 곤충으로부터 분리되어졌는데 이들은 구조와 크기에 따라 크게 세크로핀류, 디펜신류, 플로린 및 글리신 아미노산을 많이 포함하고 있는 펩타이드로 나눌 수 있다.

주요 곤충유래 항균 단백질로는 쉬파리과(Sarcophagaperegrina)에서 발견된 sacotoxin (Baba et al., Biochem., 69-74, 1987) 노랑초파리(Drosophilamelanogaster)에서 발견된 diptericin (Wicker et al., Biol. Chem., 22493-22498, 1990) 참검정풍뎅이(Holotrichiadiomphalia)에서 발견된 holotricin 3 (Lee et al., Biol. Pharm. Bull., 1049-1052, 1995), 갈색거저리(Tenebriomolitor)에서 발견된 tenecin 3 (Lee et al., Biochem. Biophys. Res. Commun., 6-11, 1996), 장수풍뎅이(Allomirinadichotoma)에서 발견된 Defensin, Coleoptericin A 및 B (Miyanoshita et al., Biochem. Biophys. Res. Commun., 526-531, 1996; Sakisaca et al., Insect Mol. Biol., 293-302, 2001) 담배나방아과의 Heliothis virescens에서 발견된 heliomicin (Lamberty et al., J. Biol. Chem. 9320-9326, 1999), 남방장수풍뎅이(Oryctesrhinoceros)에서 발견된 Rhinocerosin, Scarabaecin (Yang J et al., European Journal of Biochemistry, 734-738, 1998; Tomie et al., Biochemical Biophysical Research Communications, 261-266, 2003), 매미아과의 Cicada flammata에서 발견된cicadin(Wang and Ng, Peptides, 7-11, 2002), 큰우단 하늘소(Acaloleptaluxuriosa)로부터 발견된 Cecropin(Saito et al., Comp. Biochem. Physiol., B142 :317323, 2005), 담배 거세미 나방(Spodoptera litura)으로부터 발견된 Moricin analogue(Oizumi Y et al., Biochimica Biophysica Acta., 83-92, 2005)등이 밝혀져 있다.

디펜신은 세개의 disulfide결합으로 안정화된 베타-sheet구조를 가진 항생 펩타이드로서, 포유류로부터 분리 된 대부분의 디펜신은 병원성 세균과 곰팡이에 대해 항균활성을 가지고 있다고 알려져 있다 (Seleted, M. E. Infect. Immun., 150-154, 1884; Seleted, M. E. Infect. Immun., 202-206, 1885). 포유류의 디펜신은 6개의 시스테인 사이의 길이에 따라 구조상 알파, 베타, 쎄타의 3개로 나뉘어져 있으며, 알파와 베타-디펜신은 3개의 disulfide결합을 가진 베타-sheet으로 구성되어 있고 쎄타-디펜신은 9개의 아미노산이 연결된 구조로 되어있다. 이에 반해 곤충의 디펜신은 알파-나선구조와 3개의 시스시테인 (1-4, 2-5, 3-6)이 연결된 베타-sheet으로 구성되어 있다. 곤충의 디펜신에 비해 포유류의 디펜신은 많은 연구가 진행되었는데, 호중성 혈구 디펜신은 염증반응에 관여하는 것으로 알려져 있으며, 감염된 세포에서 디펜신은 고농도로 존재하여 디펜신이 축척된 세포는 염증관련 신호를 발생시킨다 (van de wetering, M. Cell, 789-799, 1997; Zhang, L. Science, 995-1000, 2001). 또한 호중성 백혈구가 감염된 곳으로 유입되는 현상도 디펜신이 관여하는 것으로 알려져 있으며 (Echtenacher, B. Nature, 75-77, 1996; Malaviya, R. Nature, 77-80, 1996), 인간의 디펜신인 HNP1, 2, 3는 사이토카인 TNF-알파와 IL-1의 생산량을 증가시키는 반면 IL-10의 생산량은 감소시키는 것으로 알려져있다 (Chaly, Y. V. Eur. Cytokine Netw. 257-266, 2000). 이런 결과는 알파-디펜신은 염증 전달체를 자극하여 국지적인 염증반응과 관련되었음을 뒷받침하는 결과라고 할 수 있다. 인간의 베타-디펜신 HBD2는 리포폴리사카라이드(LPS)와 펩티도글라이칸의 자극에 의해 TLR2와 TLR4의 발현이 유도되어 JNK의 신호전달 과정과 연관됨을 알 수 있다 (Vora, P., J. Immunol. 5398-5405; Wehkamp, J. Infect. Immun. 5750-5758, 2004).HBD2는 또한 Salmonella enteritidis의 flagellin에 의해 TLR5가 자극되어 p38과 ERK의 신호 전달과정과 연관되었다는 연구가 진행되었다 (Ogushi, K. J. Biol. Chem. 12213-12219, 2004). HBD2와 HBD3는 TNF-알파와 IFN-감마에 의해 자극이 유도되어 신호전달체가 활성화되어 전사인자인 STAT1과 NF-κB의 신호전달 과정을 활성화시킨다고 알려져있다 (Albanesi, C. J. Immunol. 984-992, 2007). 그러나 인간을 비롯한 포유류의 항염활성에 관해서는 많은 연구가 진행된 것에 반해 곤충의 디펜신에 관한 연구는 거의 없는 상태이다.

관련 선행특허로 대한민국 특허공개번호 제1020080044689호 '신균주인 바실러스 서브틸리스 에스원, 이로부터 정제한 신규 펩타이드 및 이의 용도'는 신규 분리, 동정한 바실러스 서브틸리스 에스원(Bacillus subtilis S1), 이로부터 분리한 신규 펩타이드 및 이의 용도에 관한 것으로서, 구체적으로는 토양으로부터 분리, 동정한 신균주인 바실러스 서브틸리스 에스원(Bacillus subtilis S1), 이로부터 분리 정제한 항진균용 신규 펩타이드인 S1-14, S1-19, S1-23 및 이의 용도에 관한 것이고, 신규 펩타이드인 S1-14, S1-19 및 S1-23은 항진균 활성이 우수하고 독성이 없으므로 항균제, 항진균제 뿐 아니라 생물농약, 기능성 화장품, 화장품 보존제, 식품 또는 의약품 보존제로 유용하게 사용될 수 있다고 기재되어 있으며,

다른 관련 선행특허로 대한민국 특허공개번호 제1019950013528호 '신규항생물질프로테신및그제조방법'은 흰점박이꽃무지로부터 분리한 신규 항생물질 프로테신, 그의 제조방법 및 이를 유효성분으로 하는 항생제에 관한 것으로, 프로테신은 자연 상태의 흰점박이꽃무지로부터, 또는 물리적 자극, 미생물 또는 기타 이물질을 주입한 흰점박이꽃무지로 부터 추출할 수 있으며 지금까지 알려지지 않은 신규의 항생물질이다고 기재되어 있다.

본 발명은 상기의 필요성에 의하여 안출된 것으로 본 발명의 목적은 곤충으로부터 분리한 항균활성 뿐만 아니라 항염활성과 항염활성을 유도하는 펩타이드를 제공하는 것이다.

상기의 목적을 달성하기 위하여 본 발명은 서열번호 1에 기재되는 펩타이드를 유효 성분으로 포함하는 약학적 조성물을 제공한다.

본 발명의 일 구체예에 있어서, 조성물은 인간의 적혈구 세포 또는 표유류 정상세포에 대하여 독성을 가지지 않는 것이 바람직하다.

또한 본 발명은 서열번호 1에 기재되는 펩타이드를 유효 성분으로 포함하는 미생물에 대한 항균용 조성물을 제공한다.

본 발명의 일 구체예에 있어서, 상기 미생물은 그람 양성균, 그람 음성균, 또는 항생제 내성균주인 것이 바람직하고, 상기 그람 양성균은 B. subtilis , S. aureus, 또는 S. epidermidis이고, 그람 음성균은 E. coli , P. aeruginosa , 또는 S. typhimurium이며, 상기 항생제 내성균주는 MRSA(3089, 3090, 3108, 3114, 3126), MDRST(8003, 8007, 8009), 또는 MDREC(1229)인 것이 더욱 바람직하나 이에 한정되지 아니한다.

또한 본 발명은 서열번호 1에 기재되는 펩타이드를 유효성분으로 포함하는 염증 물질에 대한 항염증용 조성물을 제공한다.

본 발명의 일 구체예에 있어서, 상기 항염증 활성은 유도물질 나이트레이트 옥사이드와 사이토카인의 생성을 억제함으로 수행되는 것을 특징으로 한다.

본 발명의 일 구체예에 있어서, 상기 항염증용 조성물은 인간의 적혈구 세포 또는 표유류 정상 세포에 대하여 독성을 가지지 않는 것이 바람직하다.

또 본 발명은 서열번호 1에 기재되는 펩타이드를 유효 성분으로 포함하는 사료용 조성물을 제공한다.

이하 본 발명을 설명한다.

본 발명에서는 43개 잔기를 가지는 항균펩타이드 coprisin의 삼차원 구조가 시스테인으로 안정화된 알파-helix와 베타-sheet구조를 가짐을 규명하고, 다양한 표준균주(6종) 및 내성 균주(9종)에서의 항균활성과 인간의 적혈구 또는 표유류의 정상세포에서 독성 여부를 판단하고, 염증유발 물질 nitrite oxide와 사이토카인의 생성억제기작 활성을 확인 및 항염활성을 나타내는 메커니즘을 확인하였다.

이하 본 발명을 단계에 따라 보다 구체적으로 설명하고자 한다.

본 발명에서는 딱정벌레목 소똥구리과 곤충에 속하는 소똥구리 (Copris tripartitus) 유충으로부터 분리된 항균펩타이드 coprosin을 합성하여 6종의 박테리아에 대한 항생활성을 검정하였다. 그 결과 항균 펩타이드 coprisin은 6종의 균들의 생장을 매우 효과적으로 억제하였다. 한편 항균 활성이 있는 상기 펩타이드들에 대해 세포 독성을 나타내는지를 확인하기 위하여 적혈구의 파괴능을 조사한 결과, coprisin은 펩타이드 농도 100μM에서 전혀 용혈활성을 보이지 않아 뛰어난 항균 활성을 가지면서도 세포 독성이 적은 높은 선택성을 보임을 확인할 수 있었다.

펩타이드	아미노산서열
서열번호 1 : coprisin	VTCDVLSFEAKGIAVNHSACALHCIALRKKGGSCQNGVCVCRN-NH2

상기 표 1은 coprisin의 잔기서열이다.

우선, 위의 잔기서열의 항균 펩타이드가 상기 용도로 사용될 수 있는지 확인하기 위하여 본 발명자들은 항균 펩타이드에 대하여 그람 음성균 (3종류의 균주), 그람 양성균 (3종류의 균주)에 대하여 항균 활성을 측정하였다. 항균 활성은 균체가 분열되지 않는 펩타이드의 최소성장 억제농도 (minimal inhibitory concentration: MIC, 이하 MIC라 약칭함)를 측정하여 관찰하였다. 그람 양성균으로써 Bacillus subtilis, Staphylococcus aureus , Staphylococcus epidermidis를, 그람 음성균으로써 Escherichia coli, Psedomonas aeruginosa, Salmonella typhimurium를 그 대상으로 하였다. 대조 펩타이드로 melittin의 활성을 함께 관찰하였다.

coprisin 항생펩타이드는 모든 균에 대해 항생활성을 나타내었다. (표 2 참조).

항균 펩타이드 coprisin의 인간의 적혈구에 대한 독성을 조사한 결과 대조군인 melittin은 독성이 높은 반면 coprisin 펩타이드는 고농도에서도 용혈활성을 나타내지 않았다 (도 1 참조).

위의 결과와 마찬가지로 정상세포인 마우스의 대식세포(RAW264.7 Cell)에 대하여 coprisin 항생펩타이드는 항균활성을 보이는 범위 농도에서 독성이 전혀 없으며, 고농도에서도 매우 높은 생존율을 보였다 (도 2 참조).

한편 형광염료(fluorescent dye) 칼세인(calcein)을 포획시킨 박테리아 세포막을 모방하는 음성지질인 EYPE/EYPG (7:3, w/w)와 인간의 적혈구를 모방하는 중성지질인 EYPC/CH (10:1, w/w)리포좀에 대해 본 발명의 펩타이드 coprisin에 의한 % 염료방출(dye leakage)을 펩타이드 농도에 따라 나타낸 것이다. melittin은 아주 저 농도에서도 100% 염료방출을 나타내 독성이 높으며, 펩타이드 coprisin은 인간의 세포막을 모방하는 중성지질에서는 melittin 보다 적은 염료방출을 나타내고 음성지질막에는 더 높은 염료방출을 나타내어 인간의 세포에는 독성이 적고 박테리아 세포 선택성을 가짐을 알 수 있다. (도 3 참조).

또한 그람 음성균과 양성균 모두에서 뛰어난 항균활성을 가진 coprisin은 pathogen인 LPS로 자극된 마우스 대식세포 RAW264.7 cell에서 생성되는 염증 유발 물질 nitric oxide (NO)와 염증 유도 사이토카인 mMIP-2와 mTNF-알파를 탁월하게 억제하였고, 이들 사이토카인을 암호화하는 mRNA발현과 LPS에 의해 유도되는 막 단백질인 TLR4와 전사인자인 NF-κB의 발현과 MAPK의 subtype의 인산화의 증대가 항균 펩타이드인 coprisin을 처리함으로서 효과적으로 억제됨을 보임으로서 항염증 펩타이드로서의 효능과 그 메커니즘을 증명하였다 (도 4, 5, 6, 7 참조).

자기공명분광학을 이용하여 coprisin의 3차원 구조가 수용액에서 N-terminal의 flexible loop에 이어 두 개의 disulfide bond에 의해 안정화된 알파-helix(Ala19-Arg28)와 anti-parcelled 베타-sheet(Gly31-Gln35, Val38-Arg42)구조로 이루어짐을 되어있음을 규명하였다. (도 8 참조).

또한 본 발명의 약학 조성물은 약학적으로 허용되는 부형제, 담체, 희석제 등을 추가로 포함할 수 있다.

본 발명에서 사용가능한 담체로는 리포좀, 다당, 폴리락트산, 폴리글리콜산,중합체성아미노산, 및 아미노산 공중합체와 같이 천천히 대사되는 거대분자를 들 수 있다. 예를 들면, 하이드로클로라이드, 하이드로브로마이드, 포스페이트 및 설페이트와 같이 무기산의 염; 아세테이트, 프로피오네이트, 말로네이트 및 벤조에이트와 같은 유기산의 염과 같은 약제학적으로 허용가능한 염; 물, 염수, 글리세롤 및 에탄올과 같은 액체, 및 수화제, 유화제 또는 pH 완충 물질과 같은 보조적 물질을 사용할 수 있다.

약제학적으로 허용가능한 담체에 관해서는 문헌 [Remingtion's Pharmaceutical Sciences, Mack Publishing Company, 1991]에 기재되어 있다.

또한, 상기 조성물은 약학적 분야에서 통상의 방법에 따라 환자의 신체 내 투여에 적합한 단위투여형의 제제, 바람직하게는 펩타이드 의약품의 투여에 유용한 제제 형태로 제형화시켜 당업계에서 통상적으로 사용하는 투여방법을 이용하여 경구, 또는 피부, 정맥내, 근육내, 동맥내, 골수내, 수막강내, 심실내, 폐, 경피, 피하, 복강내, 비강내, 소화관내, 국소, 설하, 질내 또는 직장 경로를 포함하는 비경구투여 경로에 의하여 투여될 수 있으나, 이들에 한정되는 것은 아니다.

즉, 본원 발명의 펩타이드는 실제로 비경구의 여러 가지 제형으로 투여될 수 있는데, 제제화할 경우에는 보통 사용하는 충진제, 증량제, 결합제, 습윤제, 붕해제, 계면활성제 등의 희석제 또는 부형제를 사용하여 조제된다. 비경구투여를 위한 제제에는 멸균된 수용액, 비수성용제, 현탁제, 유제, 동결건조제제, 좌제가 포함된다. 비수성용제, 현탁용제로는 프로필렌글리콜(Propylene glycol), 폴리에틸렌 글리콜, 올리브 오일과 같은 식물성 기름, 에틸올레이트와 같은 주사 가능한 에스테르 등이 사용될 수 있다. 좌제의 기제로는 위텝솔(witepsol), 마크로골, 트윈(tween) 61, 카카오지, 라우린지, 글리세로제라틴 등이 사용 될 수 있다.

또한, 상기 펩타이드는 생리식염수 또는 유기용매와 같이 약제로 허용된 여러 전달체(carrier)와 혼합하여 사용될 수 있고, 안정성이나 흡수성을 증가시키기 위하여 글루코스, 수크로스 또는 덱스트란과 같은 카보하이드레이트, 아스코르브 산(ascorbic acid) 또는 글루타치온과 같은 항산화제(antioxidants), 킬레이팅 물질(chelating agents), 저분자 단백질 또는 다른 안정화제(stabilizers)들이 약제로 사용될 수 있다.

상기 펩타이드의 유효용량은 0.001 내지 20mg /kg체중이고, 바람직하게는 0.01 내지 10mg/kg 체중이며, 하루 1 내지 3회 투여될 수 있다.

본 발명의 약학적 조성물에서 서열번호 1로 기재되는 펩타이드 및 그의 유도체의 총 유효량은 거환(bolus) 형태 혹은 상대적으로 짧은 기간 동안 확산(infusion) 등에 의해 단일 투여량(single dose)으로 환자에게 투여될 수 있으며, 다중 투여량(multiple dose)이 장기간 투여되는 분할 치료 방법(fractionated treatment protocol)에 의해 투여될 수 있다. 상기 펩타이드의 농도는 약의 투여 경로 및 치료 횟수뿐만 아니라 환자의 나이 및 건강상태 등 다양한 요인들을 고려하여 환자의 유효 투여량이 결정되는 것이므로 이러한 점을 고려할 때, 이 분야의 통상적인 지식을 가진 자라면 상기 펩타이드의 약학적 조성물로서의 특정한 용도에 따른 적절한 유효 투여량을 결정할 수 있을 것이다.

본 발명의 항생 펩타이드를 첨가하여 이루어지는 사료는, 포유류, 조류,파충류, 양서류, 어류 등의 동물, 바람직하게는 포유류에 대한 사료로서 사용된다. 예를 들면, 본 발명의 사료는 개, 고양이, 쥐 등의 애완 동물용 사료, 소, 돼지 등의 가축용 사료, 닭, 칠면조 등의 가금용 사료, 도미, 방어 등의 양식어용 사료 등으로서 사용되고, 바람직하게는 애완 동물용 사료 또는 가축용 사료로서 사용된다.

본 발명의 사료는 사료 원료에 본 발명의 펩타이드를 적절하게 배합하여 만들 수 있다. 사료 원료로서는 곡물류, 조강류, 식물성 유박류, 동물성 사료 원료, 기타 사료 원료, 정제품 등을 들 수 있다.

곡물류로서는, 예를 들면 마이로, 밀, 보리, 귀리, 호밀, 현미, 메밀, 조, 수수, 피, 옥수수, 대두 등을 들 수 있다.

조강류로서는, 예를 들면 쌀겨, 탈지 쌀겨, 밀기울, 말분, 밀, 배아, 보리겨, 스크리닝, 펠렛, 옥수수겨, 옥수수 배아 등을 들 수 있다.

식물성 유박류로서는, 예를 들면 대두박, 콩가루, 아마박, 면실박, 낙화생 박, 홍화박, 야자박, 팜박, 호마박, 해바라기박, 유채박, 케이폭박, 겨자박 등을 들 수 있다.

동물성 사료 원료로서는, 예들 들면 어분(북양 밀, 수입 밀, 홀 밀, 연안 밀), 피쉬솔불, 육분, 어골분, 혈분, 분해모, 골분, 가축용 처리 부산물, 페더 밀, 누에, 탈지 분유, 카제인, 건조 유장 등을 들 수 있다.

그 밖의 사료 원료로서는 식물 경엽류(알팔파, 헤이큐브, 알팔파잎 분말, 유사 아카시아 분말 등), 옥수수 가공 공업부산물(콘 글루텐, 밀, 콘 글루텐 피드, 콘스테이프리카 등), 전분 가공품, 설탕, 발효 공업 산물(효모, 맥주박, 맥아근,알코올박, 장유박 등), 농산 제조 부산물(감귤 가공박, 두부박, 커피박, 코코아박 등), 그 외(카사바, 잠두콩, 구아밀, 해조, 크릴, 스피룰리나, 클로렐라, 광물 등) 등을 들 수 있다.

정제품으로서는 단백질(카제인, 알부민 등), 아미노산, 당질(전분, 셀룰로오스, 슈크로우스, 글루코오스 등), 미네랄,비타민 등을 들 수 있다.

본 발명의 동물용 사료를 동물에게 일상적으로 섭취시킴으로써 병원성 미생물에 대한 감염 등을 예방할 수 있다.

상기에서 살펴본 바와 같이, 본 발명의 서열번호 1로 기재되는 펩타이드는 그람 양성균, 그람 음성균에서 항균작용을 나타낸다. 또한 coprisin은 항균활성이 탁월함과 동시에 대조군 펩타이드인 melittin 펩타이드와 비교했을 때 광범위한 항균 스펙트럼을 가진다고 할 수 있으며, 박테리아의 세포막을 선택적으로 파괴하는 작용기작을 가진다. 동시에 항염증작용에서 1μM에서 20μM까지 농도가 증가 할수록 점차적으로 증가되는 활성을 보였다. 항염활성을 나타내는 메커니즘은 막 단백질인 TLR4와 신호전달 단백질인 MAPK와 NF-κB를 기반으로 신호가 전달됨을 알 수 있었다. 이것으로써 펩타이드 coprisin은 세포독성을 거의 나타내지 않고, 항균 또는 항염증작용을 하는 인체에 안전한 항생제 또는 항염증제로 유용하게 사용될 수 있다.

도 1은 서열번호 1의 항생 펩타이드를 인간의 적혈구 세포에 처리한 후, 펩타이드 농도에 따른 펩타이드의 용혈활성을 % hemolysis로 나타낸 것이고, 여기서는 대조군 (용혈활성을 나타내는 펩타이드)으로 항균 펩타이드 melittin을 사용하였다.
도 2는 서열번호 1의 항생 펩타이드를 마우스 대식세포(RAW264.7 cell)에 대해 처리하여 펩타이드 농도에 따른 펩타이드의 독성을 측정하여 % survival rate로 나타낸 것이고, 여기서는 대조군으로 항균 펩타이드 melittin을 사용하였다.
도 3은 서열번호 1 항생 펩타이드 coprisin에 의한 형광염료(fluorescent dye) 칼세인(calcein)을 포획시킨, 박테리아 세포를 모방하는 EYPE/EYPG (7:3, w/w)와 인간의 적혈구를 모방하는 중성지질인 EYPC/CH (10:1,w/w) 리포좀에 대한 % 염료방출(dye leakage)을 펩타이드 농도에 따라 나타낸 것이고, 여기서는 대조군(세포막 표적의 작용기작을 나타내는 펩타이드)으로 항균 펩타이드 melittin을 사용하였다.
도 4는 서열번호 1의 항생 펩타이드를 처리한 마우스 대식세포 RAW264.7 cell에 염증을 일으키는 pathogen으로 알려진 LPS(lipopolysaccharide)로 자극을 주어 생성되는 염증 유발 물질 nitric oxide (NO)양을 펩타이드 농도에 따라 측정하였다.
도 5는 서열번호 1~3 항생 펩타이드를 처리한 마우스 대식세포 RAW264.7 cell에 염증을 일으키는 pathogen인 LPS의 자극에 의해 분비되는 염증유도 사이토카인 mMIP-2와 mTNF-알파의 양을 sandwich ELISA 방법으로 측정하였다.
도 6는 서열번호 1 항생 펩타이드 coprisin을 처리한 마우스 대식세포 (RAW264.7 cell)에 염증을 일으키는 pathogen인 LPS의 자극에 의해 분비되는 염증유도 사이토카인을 암호화하는 mRNA발현을 억제하는 정도를 나타낸 것으로 대조군은 GAPDH를 이용하였다.
도 7은 서열번호 1 항생 펩타이드 coprisin을 처리한 마우스 대식세포 (RAW264.7 cells)에 LPS로 염증을 유도하여 발현되는 사이토카인의 발현 억제 정도를 나타낸 것으로 대조군으로는 베타-엑틴을 이용하였다.
도 8는 서열번호 1 항생 펩타이드 coprisin의 20개의 lowest 구조를 superimpose한 구조, 삼차원 리본구조 및 펩타이드 표면의 전자밀도분포를 나타내었다. 파란색은 양전하, 빨간색은 음전하를 나타낸다.

이하, 본 발명을 하기 실시예에 의해 더욱 상세하게 설명한다.

단, 하기 실시예는 본 발명을 예시하는 것일 뿐, 본 발명의 범위는 하기 실시예에 의하여 한정되는 것은 아니다.

실시예 1: 펩타이드들의 합성 및 분리정제

서열번호 1로 기재되는 항균 펩타이드는 Fmoc (9-fluorenyl -methoxycarbonyl)-chemistry를 이용한 고상 펩타이드 합성법(solid phase peptidesynthesis) (Merrifield, R. B. Science 232: 341-347)에 의하여 제조하였다. 각 Fmoc-아미노산 및 Fmoc-Nlys(Boc)-OH의 coupling에 의한 펩타이드 chain의 연장은 Coupling시약인 N-hydroxybenzotriazole(HOBt) 및 dicyclohexycarbodiimide (DCC) 를 사용하였다. 각 펩타이드의 아미노 말단의 Fmoc-아미노산인 Fmoc-Val-OH을 coupling 시킨 후, 20% piperidine/N-methyl pyrolidone (NMP)용액으로 Fmoc기를 제거하고 NMP 및 dichoromethane (DCM)으로 여러 번 씻어준 다음 질소 가스로 말렸다. 여기에 TFA (trifluoroacetic acid)-phenol-thioanisole-ethanedithiol-H₂O (82.5: 5: 5: 2.5: 5, vol./vol.) 용액을 가하고 실온에서 2시간 반응시켜 보호기의 제거 및 수지(resin)으로 부터 펩타이드를 분리시킨 다음, diethylether로 펩타이드를 침전화 시켰다. 이렇게 하여 얻은 crude 펩타이드는 정제형 역상 칼럼 (Vydac C18, 300Å, 15μm, 2.2 cm X 25 cm)이 부착된 0.05% TFA가 포함된 CH₃CN(acetonitrile) gradient로 하는 크로마토그래피(HPLC)로 정제하였다. 정제를 완료한 순수한 펩타이드는 MALDI 질량 분석법(Hill, et al. Rapid Commun. Mass Spectrometry, 5, 395, 1991)을 이용하여 얻은 분자량이 아미노산 서열로부터 계산하여 얻은 분자량과 일치하므로 정확한 아미노산 서열을 가지는 펩타이드가 합성되었음을 확인하였다.

실험예 1: 항균활성의 측정

서열번호 1로 표기되는 펩타이드의 항균활성을 측정하기 위하여 다음과 같이 실시하였다. 한국생명공학연구원의 Korean Collection for Type Cultures(KCTC)로부터 분양받은 그람 양성균으로써 Bacillus subtilis ( KCTC 3068), Staphylococcus aureus ( KCTC 1621), Staphylococcus epidermidis ( KCTC1917 )를, 그람 음성균으로써 Escherichia coli ( KCTC 1682]), Psedomonas aeruginosa ( KCTC 1637), Salmonella typhimurium ( KCTC 1926)를 그 대상으로 하였다. 세균수가 ml 당 2x10⁶ colony-forming units (CFUs)가 되도록 1% peptone으로 희석하고 50㎕ 씩 96-웰 마이크로적정 플레이트(microtiter plate)에 분주한 후, 1% peptone으로 희석한 펩타이드 용액 (2:1 단계적으로 희석된 용액)을 각 웰에 50㎕ 씩 첨가한다. 플레이트를 37℃에서 18시간 동안 배양 한 후 ELISA판독기 (Bio-Tek Instruments)로 620nm에서 각 웰의 흡광도를 측정하여 펩타이드의 최소성장억제농도(MIC: minimal inhibitory concentration)를 결정한다. 대조군의 펩타이드로서 항균 펩타이드로 알려진 melittin을 사용하였다. 그 결과 coprisin 펩타이드는 6종의 표준균주에 대하여 뛰어난 활성을 보였다. 그람 음성균에서는 melittin과 비교하였을 때 비슷하거나 2~4배 뛰어난 항균활성을 보였다.

이들에 대한 내성균주에 대한 활성을 측정하기 위해 서울여자대학교 Culture Collection of Antibiotic-Resistant Microbes(CCARM) 내성균주은행에서 분양받은 MRSA ( CCARM3089 , 3090, 3108, 3114, 3126), MDRST(CCARM8003, 8007, 8009), MDREC ( CCARM1229 , 1238)에 대해 활성을 측정하였다.

그 결과 coprisin 펩타이드는 내성균주에서는 대조군 펩타이드 melittin과 비슷하거나 2~4배 높은 활성을 가짐을 확인하였다.

Peptides	최소 생장 억제 농도 MIC(μM)
	E. coli	S. typhimurium	P. aeruginosa	S. aureus	B. subtilis	S. epidermidis
서열번호 1 : coprisin	0.50	2.0	8.0	2.0	2.0	16
비교펩타이드 : Melittin	1.0	8.0	8.0	2.0	1.0	1.0

표 2는 그람 양성균 및 그람 음성균에 대한 항생 펩타이드의 항균 활성을 나타낸 표이다.

Peptides	최소 생장 억제 농도 MIC(μM)
	S. aureus 3089(R)	S. aureus 3090(R)	S. aureus 3108(R)	S. aureus 3114(R)	S. aureus 3126(R)	S. typhimu . 8003(R)	S. typhimu . 8007(R)	S. typhimu . 8009(R)	E. coli 1229(R)	E. coli 1238(R)
서열번호 1 : coprisin	1.0	0.50	1.0	2.0	0.50	8.0	4.0	4.0	0.50	2.0
비교펩타이드 : Melittin	2.0	2.0	1.0	1.0	2.0	8.0	8.0	8.0	2.0	4.0

표 3은 내성균주에 대한 항생 펩타이드의 항균 활성을 나타낸 표이다.

실험예 2: 용혈활성의 측정

서열번호 1로 표기되는 펩타이드에 대하여, 사람의 적혈구 용혈활성을 통하여 세포독성 여부를 판별하기 위하여 다음과 같이 실시하였다. 사람의 적혈구(human erythrocytes)를 PBS(phosphate-buffered saline: 35 mM 포스페이트 완충용액/150 mM NaCl의 혼합용액, pH 7.4)으로 희석한 후 원심력 1000Xg로 10분간 원심분리 하는 것에 의하여 3회 세척한다. PBS로 희석한 8.0% 적혈구 용액을 96-웰 마이크로적정 플레이트(microtiter plate)에 100㎕ 씩 로딩한 후, 펩타이드 용액 100 ㎕ 씩 섞어 준 후, 37℃에서 1 시간 동안 배양한 후, 96-웰 마이크로적정 플레이트를 원심력 1000Xg로 5분간 원심분리 한다. 상층액 100㎕ 씩 취하여 다른 96-웰 마이크로적정 플레이트에 옮긴 후, 405 nm에서의 흡광도를 측정하였다. 또한, 대조군 펩타이드로, melittin을 사용하였다. 이때, 0.1% 트리톤 X-100로 처리하였을 경우의 값을 100% 용혈로 계산하고, 펩타이드의 용혈활성(세포파괴 정도)을 % hemolysis로서 수학식 1에 의하여 산출하였다. 여기서 A는 펩타이드 용액에서의 405 nm의 흡광도이고, B는 0.1% 트리톤 X-100에서의 405 nm의 흡광도이고, C는 PBS 용액에서의 405 nm의 흡광도를 나타낸다. 이 때 대조군의 펩타이드로서 강한 용혈활성을 나타내는 항균 펩타이드로서는 melittin를 사용하였다.

도 1에 나타낸 바와 같이 서열번호 1로 표기되는 펩타이드 coprisin은 MIC보다 훨씬 높은 농도인 100uM의 고농도에서 용혈활성을 나타내지 않아 높은 박테리아 세포 선택성을 가짐을 알 수 있었다.

수학식 1

실험예 3: 마우스 대식세포에 대한 세포독성 측정

서열번호 1에 해당하는 펩타이드에 대해 다음과 같은 방법으로 세포독성을 측정하였다. 마우스 대식세포(RAW264.7 cell line)은 10% 소태아혈청 (FBS: fetal bivine serum)을 포함하는 RPMI1640 배양액으로, 37℃의 5% CO₂ 배양기에서 배양하였다. 96-웰 마이크로적정 플레이트(microtiter plate)의 각 웰에 2X 10⁴ 세포수가 되도록 RPMI1640 배양액 100㎕ 씩 분주한다. 세포가 분주된 플레이트를 37℃의 5% CO₂ 배양기에서 하룻밤 (overnight)동안 배양한 후, 배지를 제거한 플레이트에 100M부터 2배의 농도로 희석한 펩타이드를 분주한 후, 37℃의 5% CO₂ 배양기에서 하룻밤 (overnight)동안 배양한다. 이때 음성 대조군으로는 펩타이드를 처리한지 않고 배양액만을 넣은 것으로 비교하였다. MTT [3-(4, 5-dimethyl-2-thiazolyl)-2,5-diphenyl-2H-tetrazolium bromide]용액 (MTT를 5mg/ml되게 PBS에 녹인 용액) 20㎕ 씩을 플레이트 각 웰에 분주하고 37℃에서 4시간 동안 배양한다. 생존세포의 미토콘드리아 효소에 의해 생성된 MTT formazan에 100의 DMSO(Dimethyl sulfoxide)을 처리한 후, 각 웰의 생존세포율 (% Survival)을 ELISA판독기로 570nm에서 흡광도를 측정하였다. 펩타이드를 처리한 웰의 흡광도 값을 펩타이드를 처리하지 않는 대조군 세포가 들어 있는 흡광도 값으로 나눈 백분율로 펩타이드의 세포독성을 측정하였다. 도 2에 나타낸 바와 같이 서열번호 1로 표기되는 펩타이드는 항균활성뿐만 아니라 항염활성을 나타내는 농도 보다 더 높은 농도에서도 높은 생존율을 보여 독성이 없음을 확인하였다.

실험예 4: 칼세인 염색약의 유출량 측정

서열번호 1로 표기되는 coprisin이 칼세인을 품은 세균을 모방한 지질과 적혈구를 모방한 지질을 만들기 위해 세균을 모방한 지질 (egg yolk L--phosphatidylehanolamine (PE)/egg yolk L--phosphatidylglycerol (PG) (7:3, w/w))과 적혈구를 모방한 지질 (egg yolk L--phosphatidylcholine (PC)/cholesterol (CH) (10:1, w/w))의 조성으로 choloroform에 녹여 하루 동안 건조시킨 지질을 70mM 칼세인을 포함한 완충액 (10 mM Tris (pH 7.4), 150 mM NaCl, 0.1 mM EDTA)에 녹여 액체질소와 50~60℃의 물에 번갈아 10회 동안 얼렸다가 녹임을 반복한다. 이 용액은 polycarbonate filter를 통과시킨 후 Sephadex G-50 컬럼을 이용하여 지질에 의해 둘러싸이지 않은 칼세인을 제거시킨다. 칼세인 유출은 흡수파장 490 nm에서부터 방출파장 520 nm를 사용하여 RF-5301PC 형광분광 광도계를 이용하여 검출하였다. 이때, 0.1% 트리톤 X-100로 처리하였을 경우의 값을 100% 칼세인 유출로 계산하고, 펩타이드로 인한 칼세인 유출을 % dye leakage로서 수학식 2에 의하여 산출하였다. 여기서 A는 펩타이드를 처리시의 용액에서의 칼세인 용출 형광도이고, B는 10 % 트리톤 X-100에서의 칼세인 용출 형광도이고, C는 무처리시 칼세인 용출 형광도를 나타낸다.

도 3은 coprisin이 인간의 세포막을 모방하는 중성지질에서는 melittin 보다 적은 염료방출을 나타내고 음성지질막에는 더 높은 염료방출을 나타내어 박테리아 세포 선택성을 가짐을 확인하였다.

실험예 5: Raw264 .7 cell 에서 Pathogen LPS 자극에 의해 생성되는 NO ( nitrite oxide )의 생산 억제 측정

서열번호 1로 표기되는 펩타이드에 대하여 항염증 활성작용에 효과적인지 알아보기 위하여 다음과 같이 실시하였다. 마우스의 대식세포 Raw264.7세포를 10% 소태아혈청 (FBS: fetal bovine serum), 1% antibiotics (100U/mL penicillin, 100ug/mL streptomycin)를 포함하는 RPMI1640배양액으로 5% CO₂ 존재 하에서 37℃에서 배양하였다. 96-웰 마이크로적정 플레이트(microtiter plate)의 각 웰에 1X10⁵ 세포수가 되도록 RPMI1640배양액 200㎕ 씩 분주한다. 이때 음성 대조군으로는 배양액만을 넣은 것을 사용하였고, 양성 대조군은 LPS 처리한 배양액만 넣은 것을 사용하였다. 96-웰 마이크로적정 플레이트를 5% CO₂ 배양기에서 37℃에서 하룻밤(overnight) 배양한 후, cell proliferation assay에 의해 펩타이드 최고농도(25uM)에서 세포독성이 전혀 없음을 확인한 coprisin을 마우스 대식세포 (RAW264.7 cell)에서 한 시간 반응시키고, 이후 그람 음성균 세포벽을 구성하는 성분이며, 염증을 일으키는 pathogen으로 알려진 LPS(lipopolysaccharide)로 자극을 주어 24시간 배양한다. 24시간 배양 이후 배양 상등액 50ul와 동량의 Griess Reagent 시약으로 반응시킴으로 배양 상등액에 녹아져 있는 NO(nitrite oxide)양을 ELISA판독기 (Molecular Devices, Sunnyvale, CA)를 이용하여 540nm에서 흡광도를 측정하였다. NO양은 standard (NaNO₂)의 흡광도 값과 비교하여 정량한다.

도 4에서 확인할 수 있듯이 서열번호 1로 표기되는 펩타이드는 LPS 처리하지 않은 control의 NO수치와 비교했을 때 1μM에서 20μM 농도까지 NO생산을 점차적으로 억제하는 활성을 나타내었으므로 항생펩타이드 coprisin은 nitrite oxide에 의한 염증반응에 탁월한 펩타이드라고 예측할 수 있다.

실험예 6: Raw264 .7 cell 에서 Pathogen LPS 자극에 의해 생성되는 염증유도 Cytokine의 생산 억제 측정

서열번호 1로 표기되는 펩타이드가 염증유도 사이토카인 mMIP-2와 mTNF-알파를 특이적으로 억제하는지 알아보기 위해 다음과 같이 실시하였다. 마우스의 대식세포 Raw264.7세포를 10% 소태아혈청 (FBS: fetal bovine serum), 1% antibiotics (100U/mL penicillin, 100ug/mL streptomycin)를 포함하는 RPMI1640배양액으로 5% CO₂ 존재 하에서 37℃에서 배양하였다. 96-웰 마이크로적정 플레이트(microtiter plate)의 각 웰에 1X10⁵ 세포수가 되도록 RPMI1640배양액 200㎕ 씩 분주한다. 이때 음성 대조군으로는 배양액만을 넣은 것을 사용하였고, 양성 대조군은 LPS 처리한 배양액만 넣은 것을 사용하였다. 96-웰 마이크로적정 플레이트를 5% CO₂ 배양기에서 37에서 하룻밤(overnight) 배양 한 후, cell proliferation assay에 의해 펩타이드 최고농도(25uM)에서 세포독성이 전혀 없음을 확인한 coprisin을 마우스 대식세포 RAW264.7 cells에서 세 시간 반응시키고, 이후 그람 음성균 세포벽을 구성하는 성분이며, 염증을 일으키는 pathogen으로 알려진 LPS(lipopolysaccharide)를 농도별로 자극을 주어 18~24시간 배양한다. 이후 Immuno plate을 mMIP-2와 mTNF-알파를 인식하는 각각의 1차 항체로 하룻밤(overnight) coating하고 washing 후 비 특이적인 반응의 정지를 위해 blocking buffer(5%BSA in PBS)로 4℃에서 blocking한다. 1차 항체로 coating처리된 플레이트에 18~24시간 배양을 끝낸 LPS자극을 받은 Raw264.7 세포의 배양 상등액을 50ul씩 따서 플레이트에 처리하고, 2시간 배양한다. 이후 mMIP-2와 mTNF-알파를 인식하는 발색 가능한 2차 항체를 처리하고 두 시간 후, 발색효소(streptavidin HRP)를 붙여 40분 후 TMB(3,3`,5,5`-tetramethybensidine) solution으로 발색시킨다. 발색 10~15min 진행 후 H₂SO₄로 발색정지 시킨 후 배양 상등액에 녹아져 있는 mMIP-2와 mTNF-알파 양을 ELISA판독기 (Molecular Devices, Sunnyvale, CA)로 540nm에서 흡광도를 측정하였다. mMIP-2와 mTNF-알파 양은 standard의 흡광도 값과 비교하여 정량한다.

도 5에서 확인할 수 있듯이 LPS 20ng/ml농도일 때 염증유도 사이토카인 mMIP-2와 mTNF-알파는 coprisin에 의해서 효과적으로 저해되는 것을 볼 수 있었으며, 이것으로써 항균 펩타이드인 coprisin이 고기능성 항염증펩타이드로 사용될 수 있다는 것을 나타내고 있다.

실험예 7: Raw264 .7 cell 에서 Pathogen LPS 자극에 의해 생성되는 염증유도 Cytokine 의 mRNA 억제

서열번호 1로 표기되는 coprisin이 염증유도 사이토카인을 암호화하는 mRNA를 근본적으로 억제하는지 알아보기 위해 다음과 같이 실시하였다. 마우스의 대식세포 Raw264.7세포를 10% 소태아혈청 (FBS: fetal bovine serum), 1% antibiotics (100U/mL penicillin, 100ug/mL streptomycin)를 포함하는 RPMI1640배양액으로 5% CO₂ 존재 하에서 37℃에서 배양하였다. 6-웰 플레이트의 각 웰에 1X10⁶ 세포수가 되도록 RPMI1640 배양액 2ml 분주한다. 이때 음성 대조군으로는 배양액만을 넣은 것을 사용하였고, 양성 대조군은 LPS 처리한 배양액만 넣은 것을 사용하였다. 6-웰 플레이트를 5% CO₂ 배양기에서 37℃에서 하룻밤(overnight) 배양 한 후, cell proliferation assay에 의해 펩타이드농도 25uM에서 세포독성이 전혀 없음을 확인한 coprisin을 마우스 대식세포 RAW264.7 cells에서 세 시간 반응시키고, 이후 그람 음성균 세포벽을 구성하는 성분이며, 염증을 일으키는 pathogen으로 알려진 LPS(lipopolysaccharide)로 자극을 주어 6시간 배양한다. 이후 마우스 대식세포 Raw264.7세포를 harvest하여 Superscript III Kit (invitrogen) 이용하여 total RNA 추출한다. 추출한 RNA에 50~250ng oligo dT 15mer primer넣고 70℃에 10분 두었다가 원심분리 후 시료를 모아 5X first strand buffer, 0.1M DTT, 10mM dNTP, RTase 시약을 첨가한다. 이후 42℃에서 50~60분 반응시키고, 70℃에서 15분 두어 효소를 불활성화시킨다. 이것으로 합성된 cDNA을 template로 하여 taq polymerase, 10X buffer, dNTP, gene specific primer 넣고 Predenaturation 단계 94℃에서 5min, 40cycle(denaturation 94℃, 1min, Annealing 55℃, 1.5min, elongation 72℃, 1min) Postelongation단계 72℃에서 5min으로 PCR수행한다. PCR로 얻은 샘플을 1% agarose gel에서 전기영동하여 mRNA 발현을 확인한다.

도 6에서 볼 수 있듯이 coprisin은 무처리 비교군과 비교했을 때 mTNF-알파, mMIP-1, mMIP-2, miNOS, mIL-1 사이토카인을 암호화하는 mRNA발현을 모두 저해함으로 coprisin이 염증유도 사이토카인의 저해 활성기작을 가짐을 알 수 있다.

실험예 8: Raw264 .7 cell 에서 Pathogen LPS 자극에 의해 생성되는 염증유도 Cytokine 단백질 억제

서열번호 1로 표기되는 coprisin이 염증유도 사이토카인을 근본적으로 억제하는지 알아보기 위해 다음과 같이 실시하였다. 마우스의 대식세포 Raw264.7세포를 10% 소태아혈청 (FBS: fetal bovine serum), 1% antibiotics (100U/mL penicillin, 100ug/mL streptomycin)를 포함하는 RPMI1640배양액으로 5% CO₂ 존재 하에서 37℃에서 배양하였다. 6-웰 플레이트의 각 웰에 3X10⁶ 세포수가 되도록 RPMI1640 배양액 2ml 분주한다. 이때 음성 대조군으로는 배양액만을 넣은 것을 사용하였고, 양성 대조군은 LPS 처리한 배양액만 넣은 것을 사용하였다. 6-웰 플레이트를 5% CO₂ 배양기에서 37℃에서 하룻밤(overnight) 배양 한 후, cell proliferation assay에 의해 펩타이드농도 25uM에서 세포독성이 전혀 없음을 확인한 coprisin을 마우스 대식세포 RAW264.7 cells에서 세 시간 반응시키고, 이후 그람 음성균 세포벽을 구성하는 성분이며, 염증을 일으키는 pathogen으로 알려진 LPS(lipopolysaccharide)로 자극을 주어 6시간 배양한다. 이후 마우스 대식세포 Raw264.7세포를 harvest하여 lysis버퍼 (1 % Triton X-100, 1 % deoxycholate, 0.1 % NaN₃)를 이용하여 단백질을 추출하여 Bradford시약을 이용하여 25μg의 단백질을 SDS-PAGE를 이용하여 전기영동 시켜 크기별로 분리된 단백질을 polyvinylidene fluoride (PVDF)멤브레인으로 전달한 후 멤브레인을 TLR4, phospho-p38, NF-κB의 안티바디와 그의 특이적인 2차 안티바디의 관계를 이용하여 western blotting을 실행하였다. LPS에 의해 유도되는 막 단백질인 TLR4와 전사인자인 NF-κB의 발현과 MAPK의 subtype의 인산화의 증대가 coprisin을 처리함으로서 효과적으로 억제됨을 보임으로서 TLR4와 신호전달 단백질인 MAPK와 NF-κB를 기반으로 신호가 전달됨을 알 수 있었다.(도 7)

실험예 9: 핵자기공명분광법을 이용한 항균 펩타이드의 삼차원구조연구

coprisin의 삼차원 구조를 규명하기 위해 핵자기공명실험을 수행하였다. 1mM의 펩타이드를 물에 녹여 시료를 만든다(pH 4.3). DQF-COSY, TOCSY, NOESY등의 2차원 NMR 실험을 수행하여 주파수를 지정하였다. NOESY 스펙트럼으로부터 거리에 대한 정보를 얻고 DQF-COSY실험으로 부터 이면각 구속조건을 얻었다. 293, 298, 303, 308 K로 온도를 변화시키며 NMR 스펙트럼에서의 화학적이동의 변화를 관측하여 이차구조의 안정성을 측정하고 중수소치환속도를 측정하여 수소결합에 대한 정보를 얻었다. 이러한 데이터를 구속조건으로 하여 Cyana2.1 프로그램을 이용하여 삼차원 구조를 계산하였다. 모든 NMR 실험은 건국대학교 400MHz NMR기기와 기초과학 지원센터의 500MHz 분광기를 이용하여 수행되었다. 도8에 나타낸 바와 같이 coprisin은 N-terminal의 flexible loop에 이어 두 개의 disulfide bond에 의해 안정화된 알파-helix(Ala19-Arg28)와 anti-parcelled 베타-sheet(Gly31-Gln35, Val38-Arg42)구조로 이루어짐을 되어있음을 규명하였다. 전자밀도분포도를 통해 helix의 끝부분과 sheet이 시작되기 전 turn영역의 Arg28, Lys29, Lys30의 positive 영역이 음이온성의 박테리아막과 상호작용에 중요한 역할을 할 것임을 예측할 수 있다.

<110> Konkuk University Industrial Cooperation Corp. <120> A use of the peptide, Coprisin isolated from Copris tripartitus larvae and as antibacterial and antiinflammatory agent <160> 1 <170> KopatentIn 1.71 <210> 1 <211> 43 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> coprisin <400> 1 Val Thr Cys Asp Val Leu Ser Phe Glu Ala Lys Gly Ile Ala Val Asn 1 5 10 15 His Ser Ala Cys Ala Leu His Cys Ile Ala Leu Arg Lys Lys Gly Gly 20 25 30 Ser Cys Gln Asn Gly Val Cys Val Cys Arg Asn 35 40

Claims (9)

1. 삭제
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5. 삭제
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7. 인 비트로에서 대식 세포에 1에서 20uM의 서열번호 1에 기재되는 펩타이드를 처리하여 해당 세포에서 리포폴리사카라이드로 자극에 의하여 생성되는 일산화 질소의 양을 억제하는 방법.
8. 제7항에 있어서, 상기 펩타이드의 양은 20uM인 것을 특징으로 하는 방법.
9. 삭제

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