KR101206408B1 - 살모넬라 및 대장균 о157 균주를 동시에 사멸시킬 수 있는 박테리오파지 및 이를 포함하는 세균 사멸용 조성물 - Google Patents

Abstract

본 발명은 O157 대장균 및 살모넬라 균에 대해 숙주 감수성을 나타내는 박테리오파지 SFP10 (KCTC 11684BP) 및 이를 유효성분으로 포함하는 것을 특징으로 하는 세균 사멸용 조성물에 관한 것으로, 본 발명의 박테리오파지 SFP10 (KCTC 11684BP)은 강한 병원성을 지닌 O157 대장균 및 살모넬라균에 대하여 감염능을 나타내는데, 이를 이용할 경우 식품이나 가축의 오염으로 인한 식품산업이나 축산업의 경제 손실을 절감할 수 있고, 항생제 내성을 가진 O157 대장균 및 살모넬라균으로 인한 의료 문제의 해결에 이용될 수도 있으며, 새로운 개념의 항생제 내성균 제어 방법 개발을 통해 의료 안전을 향상시킬 수도 있다.

Description

살모넬라 및 대장균 О157 균주를 동시에 사멸시킬 수 있는 박테리오파지 및 이를 포함하는 세균 사멸용 조성물{Bacteriophage killing Salmonella and Escherichia coli O157 and bacteriocidal composition comprising the same}

본 발명은 박테리오파지 및 이를 포함하는 세균 사멸용 조성물에 관한 것으로, 더욱 상세하게는 대장균 중 독성이 강한 O157 대장균 및 대다수의 살모넬라균에 감염능력이 있어 이들을 사멸시킬 수 있는 신규의 박테리오파지 및 이를 포함하는 세균 사멸용 조성물에 관한 것이다.

식물바이러스와 동물바이러스 발견 후, 1915년 트워트가 포도상구균의 용균현상을 관찰하였고, 1917년 파스퇴르 연구소의 헤렐르가 적리균에서도 같은 현상을 관찰하게 되면서 이것이 세균에 감염하는 바이러스(세균바이러스)에 의한 것임을 알아내었다. 이후, 세균에 감염하는 바이러스는 "세균(Bacteria)"을 "먹는다(Phage)"의 의미에서 박테리오파지(bacteriophage)로 명명하였으며, 간단히는 "파지"로 불리고 있다.

파지의 생활환(life cycle)은 크게 용균 파지와 용원성 파지로 분류되며, 용균 사이클만 반복하는 것을 용균(virulent) 파지, 용원 사이클만 반복하는 것을 약독성(temperate) 파지로 정의한다.

약독성 파지는 숙주세균의 유전자에 파지의 유전자 정보를 넣어 파지의 모양은 사라지지만 숙주세균은 파괴되지 않으며, 이런 상태는 숙주세균이 좋은 환경 조건에 있는 한 지속되는데, 숙주세균의 환경이 악화되면 숙주세균의 유전자에 있던 일부의 파지 유전자는 용균 사이클로 바뀌어 새로운 파지를 만들고, 숙주세균을 용균시켜 숙주세포 밖으로 방출된다.

용균 사이클에 있는 파지의 경우, 세균 감염 약 30분 후에 100~200개의 새로운 파지를 만들어 세균의 막을 파괴하며 밖으로 나오는데, 세균의 증식속도보다 파지의 증식속도가 훨씬 높으므로 세균의 증식을 제한하는 중요한 요인이 될 수 있다.

파지는 이러한 특징이 있음에도 불구하고, 발견된 1910년부터 1930년대에 걸쳐 숙주특이성 문제 및 파지의 치료목적으로의 제조에 있어 숙주세균의 내독소, 외독소 문제 등 그 당시 과학적으로 풀지 못하는 문제로 인해 이용에 제한이 있었다.

한편, 1929년에 플래밍이 발견한 페니실린 및 1943년 워크스만이 발견한 스트렙토마이신은, 파지와 대조적으로 항균범위가 넓어 하나의 약으로 복수의 감염증에 효과를 나타냈으며, 처음에는 내성균 문제도 없었기 때문에 널리 사용되게 되었다.

따라서, 효과가 불확실한 파지요법은 점점 사라지게 되었으며, 결정적으로 '(1)파지의 숙주에 대한 감수성으로 임상에 감염성이 다른 다양한 파지주가 필요한 점, (2) 동물의 생체 내에서는 파지의 용균작용이 일어나기 어려운 점 및 (3) 파지내성균이 동일 세균집단에 존재한다'라는 이유로 1950년대에 WHO에 의해 파지요법이 무효 선언되었고, 동구권 일부와 구소련연방에서만이 명맥이 겨우 유지되어 왔다.

그런데, 1980년대에 들어 파지요법에 대한 생각이 바뀌게 되는데, 1982년 영국의 연구자그룹인 스미스와 휴긴스는 뇌막염 치료 모델실험으로 마우스를 이용하여 마우스의 피하 근육 내에 균을 주사하고 반대쪽의 피하에는 균의 특이적인 용균 파지를 주사하는 실험을 수행하였는데(Smith HW, Huggins MB, J.Gen.Microbiol, 1982 , Feb;128(2); 307-18), 파지를 주사하지 않은 대조군이 100% 폐사한 것에 비해, 파지를 주사한 실험군의 경우 100% 생존하였으며, 항생제(스트렙토마이신 등)의 효과보다도 우월한 결과를 확인할 수 있었다. 특히, 놀라운 것은 균을 직접 뇌 내에 주사한 경우와 파지를 근육주사 하는 경우 모두에서 파지가 뇌에서 회수가 되었는데, 이로부터 근육 주사한 파지가 혈류를 통해 뇌 조직으로 이동하여 혈액뇌관문 (blood-brain barrier)을 통과하는 사실을 확인할 수 있었다.

그 후, 용균성 파지를 이용하여 송아지의 대장균성 설사증, 어류의 다양한 질병, 반코마이신 내성 장구균 패혈증, 결핵균, 닭의 파라티푸스 및 대장균 O157:H7 감염 등의 다양한 질병에 대해 성공적인 예방 및 치료를 수행한 사례가 보고되었으며, 파지를 직접 사용하는 방법뿐만 아니라 파지가 숙주세균의 세포벽을 특이적으로 파괴하는데 작용하는 리신(lysin)을 이용하여 탄저, 폐렴구균 등에 특이적인 항생제 개발도 이루어지고 있는 실정이다.

한편, 상기의 파지요법 외에도 박테리오파지를 식품이나 가축에 처리하여 식품 안전성을 높이기 위한 용도로 사용할 수도 있는데, 파지가 동물세포(mammalian cell)에는 위해하지 않고, 높은 숙주 특이성을 보이기 때문이다.

식품에서 병원성 미생물을 제어하기 위해 박테리오 파지는 다음 4가지 정도의 적용 방법이 고려되고 있다.

첫 번째로, 박테리오파지를 가축에 직접 먹이는 방식이다. 이 방법의 대표적인 예는 가축사료에 박테리오파지를 첨가하는 것이다. 이를 통해 사람에게 독성을 유발할 수 있는 병원성 미생물을 가축 장내에서부터 저해할 수 있다. 이러한 방법은 가축을 사육하는 단계에서부터 병원성 미생물의 오염을 줄일 수 있는데, 일 예로 살모넬라(Salmonella) 균이나 캠피로박터(Campylobacter) 균을 제어하는 방안으로 이 방법의 사용 가능하다. 또한, 도살 직전의 가축에 파지(phage)를 섭취하게 할 수도 있는데, 일 예로 소에서 대장균(E. coli) O157를 저해하는 방법을 들 수 있다. 이 접근 방법은 사육단계에서부터 병원성 미생물을 저해할 수 있는 장점을 가지고 있다. 이 경우, 목표 미생물의 저해가 가축의 위생 향상에도 의미가 있다면 더욱 효율적인 적용이라고 할 수 있다.

두 번째로, 박테리오파지를 미가공 식품(Raw food)에 처리하는 방식이다. 살모넬라(Salmonella)균이나 캠필로박터(Campylobacter)균을 제어하기 위해 구이용 영계의 외피에 스프레이 분사 방법을 통해 박테리오파지의 적용이 시도되고 있다. 이와 비슷하게 대장균(E. coli) O157를 제어하기 위해 쇠고기 표면에 박테리오파지를 처리하는 방법도 시도되고 있다.

세 번째로, 박테리오파지를 신선 식품(Fresh-prepared food)에 처리하는 방식이 있다. 신선 식품(Fresh-prepared food)은 미가공 식품(Raw food)과는 대조적으로 섭취 전까지 살균 등의 공정을 처리하지 않는 식품을 의미하는데, 병원성 미생물의 오염이 발생한다면 이는 곧 소비자의 식중독 유발로 바로 이어질 가능성이 높은 것을 의미한다. 이러한 맥락에서 살모넬라(Salmonella)나 리스테리아(Listeria)균의 제어 방안으로 박테리오파지를 첨가하거나 식품 제조 공정상 박테리오파지를 사용하는 방법이 적극 검토되고 있다.

네 번째로, 박테리오파지를 식품의 부패를 막는 방법으로 사용하는 것이다. 몇몇 미생물은 질병을 유발하는 능력이 없어도 식품에서 번식하여 불쾌감을 유발하는 경우가 있다. 이러한 미생물들은 식품이 제조된 시점과 소비자가 섭취하는 시점 사이에 증식하여 불쾌한 냄새나 맛의 변질을 유도한다. 이러한 식품 내 부패 미생물의 번식은 식품의 유통기한의 감소로 이어지는데, 부패 미생물의 증식을 막는 방법으로 박테리오파지를 사용하는 방법이 고려되고 있다.

이상에서 살펴본 바와 같이, 박테리오 파지는 기존 항생제를 대체할 수 있는 물질 또는 항생제 내성 세균 제어 방법으로서 유력 후보군 중 하나이며, 식품의 병원성균 오염을 방지할 수 있는 대안이 될 수 있다.

이에 본 발명은 식품 산업에서 경제적으로 악영향을 미치는 병원성 미생물을 제어할 수 있고, 항생제 내성 세균을 제어할 수 있는 새로운 박테리오파지를 개발하여 제공하는데 그 목적이 있다.

상기의 목적을 달성하기 위해 본 발명은 박테리오파지 SFP10 (KCTC 11684BP)을 제공한다.

또한, 본 발명은 박테리오파지 SFP10 (KCTC 11684BP)을 유효성분으로 포함하는 것을 특징으로 하는 세균 사멸용 조성물을 제공한다.

이하, 본 발명의 내용에 대해 상세히 설명하고자 한다.

본 발명에서는 식품 산업에서 경제적으로 악영향을 미치는 병원성 미생물을 제어할 수 있고, 항생제 내성 세균을 제어할 수 있는 새로운 박테리오파지를 분리하고자 예의 노력하였는데, 그 결과 대장균 중 독성이 강한 O157 균주 및 대다수의 살모넬라균에 대하여 숙주 특이성을 나타내어 감염가능하고, 사멸효과를 나타내는 박테리오파지 SFP10 (KCTC 11684BP)을 서울 숲 생태 늪지대의 물로부터 분리하였다.

분리된 박테리오파지 SFP10는 2010년 4월 22일에 한국생명공학연구원(KCTC)에 기탁하고, 11684BP의 기탁번호를 부여받았다.

본 발명에서 분리한 박테리오파지 SFP10(11684BP)는 형태를 관찰한 결과, 수축성이 있는 긴 꼬리(a long contractile tail)를 갖는 복합형의 마이오비리대(Myoviridae)에 속하는 것으로 동정되었고, 볼티모어 분류법에 의할 경우, 이중 나선 DNA (double-stranded DNA)를 갖는 것으로 확인되어 제1형 바이러스로 분류되었다.

한편, 상기로부터 분리 및 동정된 본 발명의 박테리오파지 SFP10(KCTC 11684BP)은 사람 및 가축 등에 식중독, 장티푸스, 살모넬라증 등의 질병을 일으키는 대표적인 박테리아인 살모넬라(Salmonella) 및 대장균 (Escherichia coli) 균 중 HUS(hemolytic uremic syndrom)같은 치명적인 병을 일으키는 O157 균주에 대해 숙주 감수성을 가져 이들을 사멸시킬 수 있음이 하기 실험예로부터 확인되었다. 대장균 균주를 넓게 감염시키는 박테리오파지가 우리 몸에 들어가 장내 상재하는 대장균까지 감염시켜 사멸시키는 데에 반해, 본 발명의 박테리오파지 SFP10은 대장균 중에서 생명에 치명적인 영향을 주는 O157균주를 특정하게 사멸시키는 특징이 있다.

따라서, 본 발명의 박테리오파지는 O157 대장균 또는 살모넬라균이 감염된 부분에 직접 투여하거나 적절한 형태의 조성물로 제조하여 투여함으로써 대장균 또는 살모넬라균의 사멸을 위한 용도로 사용할 수 있다.

한편, 본 발명은 상기의 박테리오파지 SFP10 (KCTC 11684BP)을 유효성분으로 포함하는 것을 특징으로 하는 세균 사멸용 조성물을 제공하는데, 상기 세균은 바람직하게 O157 대장균 또는 살모넬라균이고, 상기 살모넬라균의 일 예로는 살모넬라 타이피뮤리움(Salmonella typhimurium) 또는 살모넬라 엔테리티디스 (Salmonella enteritidis)가 있다.

한편, 본 발명의 세균 사멸용 조성물의 제제는 바람직하게 액상 또는 반고체상 또는 분말상인 것이 좋다. 액상 제제는 현탁제 또는 주사액제 등이 있고, 반고체상 제제는 크림, 로션, 젤, 페이스트 등이 있으며, 고체상 제제는 분말제, 과립제, 정제 등이 있다. 본 발명의 세균 사멸용 조성물은 유효성분인 박테리오파지 SFP10 (KCTC 11684BP) 외에 필요에 따라 담체, 기타 보조제 등을 포함할 수 있는데, 상기 담체는 생리식염수, 증류수, 사료, 박테리아용 배지(예, Luria broth 등) 등이 될 수 있으며, 보조제는 pH 교정 등의 목적으로 완충액 등을 첨가하여 사용할 수 있다.

본 발명에 의한 세균 사멸용 조성물은 통상적인 미생물 제제 제조방법으로 제제화될 수 있는데, 가축 또는 어류에 투여하는 경우 수의학에서 허용하는 범위 내에서 제제화하고 그에 따라 투여경로를 정할 수 있다. 본 발명의 세균 사멸용 미생물 제제의 투여량은 투여 대상에서 O157 대장균 또는 살모넬라균을 사멸시키는 효과를 발휘하는데 요구되는 양을 의미한다. 따라서, 제형의 종류 및 투여 대상의 연령, 체중, 일반 건강 상태, 성별 및 식이, 투여 경로, 투여 시간 및 기간을 비롯한 다양한 인자에 따라 조절될 수 있다.

한편, 본 발명의 박테리오파지 SFP10 (KCTC 11684BP) 또는 이를 포함한 세균 사멸용 조성물은 기존 항생제에 대한 내성 여부와 상관없이 O157 대장균 및 살모넬라균을 사멸시킬 수 있으므로, 대장균 및 살모넬라균의 감염에 의한 질환의 치료용으로 사용할 수도 있고, 특히 항생제 내성을 갖는 대장균 및 살모넬라균에 사용 시 기존 항생제로 제거할 수 없었던 항생제 내성균을 사멸시킬 수 있으므로, 기존 항생제 대체물로 유용하게 활용될 수 있다. 특히, 축산 분야에서 문제가 되는 각종 세균성 질병을 제어할 수 있는 파지 제제를 개발하여 항생제를 대체하게 되면 항생제 내성균 문제의 해결과 더불어 국내 소비자에게 우리 축산물의 안전성에 대한 신뢰를 보장할 수 있을 뿐만 아니라 우리 축산물의 수출을 증대시킴으로써 국내 축산물의 부가가치를 향상시키고 국내 축산업 전반을 활성화시킬 수 있을 것이다.

또한, 식품업계에서도 식품의 가공, 보관 과정에서 박테리오파지를 처리함으로써 식품의 병원성 세균으로 인한 오염을 막고, 부패를 일으키는 세균을 사멸시켜, 식품의 부패로 인한 악취를 없애고, 유통기한을 늘릴 수 있는 등의 경제적으로 많은 이익을 가져올 수 있다.

상기에서 살펴본 바와 같이 본 발명의 박테리오파지 SFP10 (KCTC 11684BP) 및 이를 함유하는 세균 사멸용 조성물은 강한 병원성을 지닌 O157 대장균 및 살모넬라균에 대하여 감염능을 나타내기 때문에, 살모넬라만 감염시키는 박테리오파지(st104a, st104b)나 O157 대장균만 감염시키는 기존 박테리오파지(KH1, KH4 및 KH5)보다 넓은 감염성을 지니고 있다.

또한, 우리 몸에 들어가 몸에 이로운 대장균까지 감염시켜서 사멸시키는 일반적인 박테리오파지에 비해, 본 발명의 박테리오파지 SFP10(KCTC 11684BP)은 대장균 중에서 생명에 치명적인 영향을 주는 O157균주를 특정하게 사멸시킨다.

따라서, 본 발명의 박테리오파지 SFP10(KCTC 11684BP) 및 이를 함유하는 세균 사멸용 조성물은 식품산업과 축산업에 식품 오염으로 인한 경제적 손실을 절감할 수 있으며, 기존 항생제에 대한 내성 여부와 상관없이 독성이 강한 O157 대장균 및 살모넬라균을 사멸시킬 수 있으므로, 독성이 강한 O157 대장균 및 살모넬라균의 감염에 의한 질환의 치료용으로 사용할 수 있다. 특히, 본 발명의 박테리오파지 SFP10(KCTC 11684BP)은 항생제 내성을 갖는 독성이 강한 O157 대장균 및 살모넬라균에 사용 시 기존 항생제로 제거할 수 없었던 항생제 내성균을 사멸시킬 수 있으므로, 기존 항생제 대체물로 유용하게 활용될 수 있다.

도 1은 본 발명의 박테리오파지 SFP10를 에너지 여과 투과 전자현미경(JEOL, JEM1010)을 이용하여 관찰한 결과이다.

이하, 본 발명의 내용을 하기 실시 예를 통해 더욱 상세히 설명하지만, 본 발명의 권리범위가 하기 실시 예에만 한정되는 것은 아니고, 이와 등가의 기술적 사상의 변형까지를 포함한다.

실시예 1: 본 발명의 박테리오파지 SFP10 의 분리 및 동정

(1) 박테리오파지의 분리

살모넬라 및 대장균에 대해 감수성을 보이는 박테리오파지를 분리하기 위해, 서울 숲 생태 늪지대의 물을 취하여 박테리오파지를 분리하는 실험을 수행하였다. 먼저 상기 생태 늪지대의 물을 여과하되, 박테리아는 걸러내지만 박테리오파지는 통과시킬 수 있는 구멍 크기인 0.45 μm 막필터로 여과시켰다. 그 후, 생성된 여과액과 10배 농축된 액체 배지(LB broth; NaCl 1%, Yeast Extract 0.5%, Tryptone 1%, Micro Agar 1.5%)를 혼합하였고, 살모넬라 타이피뮤리움(S.typhimurium)과 대장균(Escherichia coli) 배양액을 첨가하였다. 첨가 후, 12시간 동안 37℃에서 배양하였고, 그 다음 8000 rpm의 속도로 원심 분리하여 상등액을 취한 후, 0.22 μm 막필터로 다시 여과시켰다. 이 후, 여과액 0.1 mL과 12시간 이상 배양한 박테리아(살모넬라와 대장균)의 현탁액 0.1 m를 섞어 혼합액을 제조하였고, 농도가 낮은 아가(0.4%) 배지와 함께 섞어서 1.5% 아가 배지를 포함하는 플레이트에 부었다. 이 후, 상기 플레이트를 37℃에서 하룻밤 동안 배양하였다.

박테리오파지가 플레이트 상에 나타난 경우 독립되고 투명한 플락(plaque)가 관찰되었다. 이 플라그 영역을 파이펫 팁을 이용하여 분리해낸 다음, 새로운 박테리아 배양액에 넣어 37℃에서 배양하였는데, 배양액이 맑아짐을 확인할 수 있었다. 그 후, 배양액을 원심분리하고, 상등액만을 0.22 μm 막필터로 여과시켜 용해물에 남아있는 모든 박테리아를 제거함으로써, 여과액만을 취하였다. 이 여과액은 박테리오파지만을 포함하는데, 상기의 방법으로 얻은 박테리오파지 용액을 아가 배지 상에서 다르게 희석하여 주입하는 플라그 재분리를 3회 수행하였다.

상기와 같은 방법으로 순수한 박테리오파지 12개를 얻을 수 있었다.

(2) 박테리오파지 SFP10 의 형태 관찰 및 분류

상기 (1)에서 획득한 박테리오파지들 중에서 살모넬라와 O157 대장균을 특이적으로 감염시키는 파지를 선별해냈고, 그 중에서 박테리오파지 SFP10이라고 명명한 파지를 가지고 전자현미경 사진을 분석하였다. 전자현미경은 에너지 여과 투과 전자현미경(Energy-Filtering Transmission Electron Microscope)을 사용하였다.

관찰하고자 하는 박테리오파지 샘플을 탄소를 입힌 구리 그리드(grid)에 올리고, 2% 액상 우라닐 아세테이트(uranyl acetate)로 음성 염색을 하였다. 염색된 시료를 100 kV의 전압으로 에너지 여과 투과 전자현미경(JEOL, JEM1010)을 이용하여 관찰하였고, 도 1에 그 결과를 나타내었다.

도 1에 관찰된 박테리오파지는 모양으로 분류하는 기준으로 보았을 때, 수축성이 있는 긴 꼬리(a long contractile tail)를 갖고, 시스(sheath)가 있으므로, 복합형의 마이오비리데(Myoviridae)에 속하는 것으로 분류하였다.

또한, 볼티모어 분류법(Baltimore classification)에 따를 경우, 박테리오파지의 유전정보가 이중가닥 DNA로 되어 있어, 제1형 바이러스로 분류할 수 있었다.

실시예 2. 박테리오파지 SFP10 의 숙주별 감수성( susceptibility ) 확인

숙주별 감수성은 연속 희석 적하법(serial dilution dropping method)을 사용하여 확인하였다(Adams, M.H. 1959. Bacteriophage, pp27-34. Interscience Publishers Inc., New York).

2시간 배양한 박테리아 배양액과 0.4%의 아가 배지를 섞어 플레이트 상에 부은 후, 37℃에서 15분간 건조하였고, 그 위에 희석배수별로 희석된 박테리오파지 SFP10를 떨어뜨린 후, 상온에서 말렸다. 이 후, 37℃에서 10시간 정치 배양시켰다.

균주가 파지에 대해 감수성을 갖는 경우 플레이트 상에 투명한 영역, 플라그가 보이는데, 이는 박테리아 세포가 완전하게 용해(lysis)되어 사멸된 결과이다. 감수성이 약한 경우는 뿌옇게 영역이 생기거나 독립적인 볼드 스팟이 나타난다.

하기 표 1은 본 발명의 박테리오파지 SFP10을 사용하여 대장균과 살모넬라를 대상으로 숙주 감수성을 실험한 결과를 나타낸 것이다.

숙주 균주 (Host strain)	숙주 범위(Host range)	숙주 균주 (Host strain)	숙주 범위 (Host range)	숙주 균주 (Host strain)	숙주 범위 (Host range)
S. typhimurium 3068	C	E. coli ATCC25922	-	E. coli E7b	-
S. typhimurium 7586	C	E. coli MC4100	-	E. coli FS575	-
S. typhimurium 43174	C	E. coli MC4100	-	E. coli GM1	-
S. typhimurium DT104	C	E. coli MG1655	-	E. coli GM119	-
S. typhimurium SL1344	C	E. coli RPI	-	E. coli HB101	-
S. typhimurium 14025	C	E. coli S.Y327	-	E. coli JM103	-
S. typhimurium UK1	C	E. coli TGI	-	E. coli K-12 2B	-
S. typhimurium LT2	C	E. coli W3110	-	E. coli K802	-
S. typhimurium frm strain	C	E. coli WADDL2701	-	E. coli LE392	-
S. typhimurium 7414	C	E. coli WADDL2735	-	E. coli O157:H7 2026	C
S. typhimurium NCTC12023	C	E. coli WADDL2902	-	E. coli O157:H7 2027	C
S. typhimurium isolate 1	I	E. coli WADDL2983	-	E. coli O157:H7 2029	I
S. typhimurium isolate 2	I	E. coli WADDL3406	-	E. coli O157:H7 2257	C
S. typhimurium isolate 3	C	E. coli WADDL3463	-	E. coli O157:H7 2264	CC
S. typhimurium isolate 4	C	E. coli WADDL3502	-	E. coli O157:H7 2321	C
S. typhimurium isolate 5	I	E. coli WADDL3811	-	E. coli O157:H7 2324	C
S. typhimurium isolate 6	C	E. coli WADDL3977	-	E. coli O157:H7 2336	C
S. typhimurium isolate 7	I	E. coli WADDL4036	-	E. coli O157:H7 2559	C
S. typhimurium isolate 8	C	E. coli WADDL4083	-	E. coli O157:H7 2788	C
S. typhimurium isolate 9	C	E. coli WADDL4064	-	E. coli O157:H7 3041	CC
S. typhimurium isolate 10	C	E. coli WADDL4190	-	E. coli O157:H7 3042	CC
S. typhimurium isolate 11	C	E. coli WADDL4241	-	E. coli O157:H7 3046	C
S. enteriridis 4059	C	E. coli B/1	-	E. coli O157:H7 3110	C
S. enteriridis 308	C	E. coli B/4	-	E. coli O157:H7 8624	C
S. enteriridis chicken	C	E. coli B4a	-	E. coli O157:H7 7NE	C
S. enteriridis ATCC 13076	C	E. coli C-660	-	E. coli O157:H7 ATCC 35150	C
S. enteriridis isolation NO.1	-	E. coli C600	-	E. coli O157:H7 ATCC 43888	I
S. enteriridis isolation NO.2	C	E. coli DH5α	-	E. coli O157:H7 ATCC 43889	C
S. enteriridis isolation NO.5	T	E. coli DH10B	-	E. coli O157:H7 ATCC 43890	C
S. enteriridis isolation NO.6	C	E. coli E-2g	-	E. coli O157:H7 ATCC 43894	C
S. enteriridis isolation NO.7	C	E. coli E-2j	-	E. coli O157:H7 ATCC 43895	I
S. enteriridis isolation NO.8	C	E. coli E-34	-	E. coli O157:H7 NM 3204-92	C
S. enteriridis isolation NO.9	C	-	-	E. coli O157:H7 NM H-0482	C
S. enteriridis isolation NO.10	C	-	-	-	-
C:Clear phage plaque, CC: very clear phage plaque, T: Turbid plaque, I: Inhibition

실험결과(표 1), 본 발명의 박테리오파지 SFP10은 살모넬라(S. typhimurium, S. enteritidis) 및 독성이 강한 O157 대장균을 폭넓게 용해시키는 것으로 확인되었고, 이로부터 세균 사멸능이 있는 것으로 확인되었다. 특히, 대장균 중에서 독성이 강한 O157 대장균만 특이적으로 감염시키는 것을 확인할 수 있었고, 인간 장내에서 분리해낸 살모넬라 엔테리티디스(S. enteritidis)와 동물에서 분리해낸 살모넬라 타이피뮤리움(S. typhimurium)에도 감수성을 가짐을 확인할 수 있었다.

한국생명공학연구원 KCTC11684 20100422

Claims (5)

1. 박테리오파지 SFP10 (KCTC 11684BP)
   
2. 박테리오파지 SFP10 (KCTC 11684BP)을 유효성분으로 포함하는 것을 특징으로 하는 O157 대장균 사멸용 조성물.
   
3. 박테리오파지 SFP10 (KCTC 11684BP)을 유효성분으로 포함하는 것을 특징으로 하는 살모넬라 타이피뮤리움 (Salmonella typhimurium) 사멸용 조성물.
   
4. 박테리오파지 SFP10 (KCTC 11684BP)을 유효성분으로 포함하는 것을 특징으로 하는 살모넬라 엔테리티디스 (Salmonella enteritidis) 사멸용 조성물.
   
5. 제2항 내지 제4항 중 선택되는 어느 하나의 항에 있어서,
   상기 조성물은,
   액상 또는 반고체상 또는 분말상인 것을 특징으로 하는 조성물.

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