KR100563017B1 - 유리한 당화 프로필을 갖는 재조합 사람 에리트로포이에틴 및 이를 포함하는 약제학적 조성물 - Google Patents
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Abstract
본 발명은 변형된 당화 프로필로 인한 개선된 반감기 및 생물학적 활성을 갖고 에리트로포이에틴의 1차 구조 형태의 일부 또는 전부를 갖고 에리트로포이에틴의 생물학적 특성을 갖는 폴리펩타이드에 관한 것이다. 또한 본 발명은 진핵 숙주 세포에서 DNA 서열을 발현시키는 조절 성분과 작동적으로 연결된 상기 폴리펩타이드의 아미노산 서열을 암호화하는 DNA 서열 및 이러한 DNA 서열을 포함하는 벡터를 제공한다. 추가로 본 발명은 상기 DNA 서열 및 벡터를 포함하는 숙주 세포 및 상기 폴리펩타이드를 생산하기 위한 이의 용도에 관한 것이다. 본 발명은 본 발명의 폴리펩타이드, DNA 서열 또는 벡터를 포함하는 약제학적 조성물 및 진단용 조성물을 제공한다. 본 발명은 에리트로포이에틴의 결핍으로 인한 모든 종류의 빈혈 치료용 약제학적 조성물을 제조하기 위한 상기 폴리펩타이드, DNA 서열 및 벡터의 용도에 관한 것이다.
재조합 사람 에리트로포이에틴, 빈혈증, 뮤테인 rhuEpo, 시알화된 rhuEpo, 빈혈 치료용 약제학적 조성물
Description
본 발명은 에리트로포이에틴의 1차 구조 형태 전부 또는 일부를 갖고 변형된 당화 프로필에 따른 개선된 생체내 반감기 및 생물학적 활성을 갖는 폴리펩타이드에 관한 것이다. 본 발명은 또한 진핵 숙주 세포내에서 DNA 서열을 발현시키는 조절 성분과 작동적으로 연결된, 상기 폴리펩타이드의 아미노산 서열을 암호화하는 DNA 서열 뿐만 아니라 상기 DNA 서열을 포함하는 벡터를 제공한다. 본 발명은 또한 상기 DNA 서열 및 벡터를 포함하는 숙주 세포 및 상기 폴리펩타이드를 생산하기 위한 숙주 세포의 용도에 관한 것이다. 추가로 본 발명은 상기 폴리펩타이드, DNA 서열 및 벡터를 함유하는 약제학적 조성물 및 진단용 조성물에 관한 것이다. 본 발명은 또한 에리트로포이에틴 결핍으로 인한 모든 종류의 빈혈 치료용 약제학적 조성물을 제조하기 위한, 상기 폴리펩타이드, DNA 서열 및 벡터의 용도에 관한 것이다.
지금까지 적혈구는 혈액중에 가장 일반적인 형태의 세포이다. 성숙 시기에 적혈구는 헤모글로빈으로 충만되고 실질적으로 어떠한 통상적인 세포 기관을 함유하지 않는다. 성체 포유동물의 적혈구는 심지어 핵, 소포체, 미토콘드리아 및 리보솜을 갖고 있지 않으며 이것은 세포의 발생 과정중에 세포로부터 배출되기 때문 이다. 따라서 적혈구는 성장하거나 분열할 수 없고 보다 많은 적혈구를 만들기 위한 유일한 방법은 간(stem) 세포를 사용하는 것이다. 더욱이, 적혈구는 사람에게 있어서 약 120일의 제한된 수명을 갖고 있다. 수명을 다한 적혈구는 간과 췌장에서 대식세포에 의해 식작용을 받아 분해되고 사람마다 하루 1011개 이상의 노화된 적혈구가 제거된다. 산소의 결핍 또는 적혈구의 결핍은 신장에서 세포를 자극하여 증가된 양의 에리트로포이에틴을 합성하고 혈류내로 분비한다. 이어서 에리트로포이에틴은 보다 많은 적혈구의 생산을 자극한다. 혈류내로의 신생 적혈구의 방출율의 변화가 혈류내의 에리트로포이에틴 농도가 증가된지 1일 또는 2일 후와 같은 조기에 관찰되기 때문에 호르몬은 성숙한 적혈구 바로 이전 단계의 전구체인 세포에 작용해야만 한다. 에리트로포이에틴에 응답하는 세포는 골수 세포를 에리트로포이에틴의 존재하에 반고체 매트릭스에서 배양시킴으로써 동정될 수 있다. 수일 이내에 약 60개의 적혈구 콜로니가 나타나고 이들 각각은 단일 유래된 적혈구 전구세포를 기초로 형성된 것이다. 상기 세포는 적혈구 콜로니 형성 세포 또는 CFC-E로서 공지되어 있고 약 6회 미만의 분열 사이클후에 성숙한 적혈구로 성장한다. CFC-E는 여전히 헤모글로빈을 포함하지 않고 이들은 증식이 에리트로포이에틴에 의존하지 않는 초기 유형의 전구 세포로부터 유래한다. CFC-E 자체는 이의 생존력 뿐만 아니라 증식을 위해 에리트로포이에틴에 의존한다: 에리트로포이에틴이 배양물로부터 제거된다면 세포는 신속하게 프로그램화된 세포 사멸 과정으로 진행한다. 또 다른 콜로니 자극 인자로서 에리트로포이에틴은 낮은 농도(약 10-12 M)에서 특이적 세포-표면 수용체에 결합함으로써 작용하는 당 단백질이다. 이들 수용체는 "사이토킨 수용체 계"로 지칭되는 거대 수용체 계에 속하고 이의 구성원은 보통 2개 이상의 서브유니트로 구성되며 서브유니트중 하나는 흔히 여러 수용체 유형중에 할당된다. 성숙한 사람 에티트로포이에틴은 분자량이 34 내지 38kD이고 166개의 아미노산(AS)으로 구성되는 당 단백질이고 글리코실 잔기가 분자량의 약 40%를 차지한다. 에리트로포이에틴은 적혈구의 재생을 위해 요구되기 때문에 상기 호르몬은 특히 투석 또는 세포 증식의 억제를 기초로한 치료의 결과 또는 선천성 또는 후천성 에리트로포이에틴 생산 결핍에 의한 적혈구계의 세포의 감소에 의해 유발될 수 있는 빈혈 및 저산소증을 앓는 환자의 질적인 생활을 위해 필수적이다. 에리트로포이에틴을 암호화하는 사람 유전자를 동정함으로써 이종성 숙주 세포내에서 상기 단백질을 재조합적으로 발현시키고 상기 질환의 치료에 충분한 양의 재조합 사람 에리트로포이에틴(rhuEpo)을 제공할 수 있다.
그러나, 단백질의 1차 구조와는 별도로 분자의 당 측쇄의 구조가 유기체내에서 Epo의 상호작용에 특히 중요하다. 예를 들어, 탈시알화된 Epo는 동물에 투여시 어떠한 효과도 나타내지 않지만 수용체에 결합하여 전구 세포를 자극한다. 생체내 아시알로(asialo)-Epo의 활성 저하는 탈시알화된 Epo에 감수적인 갈락토실 잔기에 대해 특이성을 갖는 수용체를 통해 간에서 제거된다는 사실에 의해 설명될 수 있다.
치료학적으로 사용되어 왔던 야생형 Epo는 몇몇 환자에서 혈압을 증가시키는 효과를 갖고 있고 이것은 치료에 불리하다. 또한 Epo는 혈압 조절에 관여하는 것 으로 추측된다. 따라서 상기 바람직하지 못한 특성을 나타내지 않으면서도 전구 세포의 적혈구로의 분화 및 분열 속도를 자극시키는 자유 재량의 Epo의 생리학적 효과를 갖는 단백질을 수득하는 것이 바람직하다. 추가로, 몇몇 환자에서 관찰되는 Epo의 부작용은 거핵구를 자극하여 혈소판을 형성한다는 것이다. 따라서, Epo를 사용한 치료과정중에는 혈전증의 잠재 위험성이 있게 되어 즉시 중단해야만 한다. 이경우에 사용되는 Epo의 특이성이 보다 높은것이 바람직하다.
따라서, 본 발명에 내재하는 기술적인 과제는 천연적으로 존재하고 지금까지 사용되어왔던 rhuEpo와 비교하여 개선된 생물학적 활성 및 생체내 반감기를 갖는 rhuEpo를 제공하는 것이다.
상기 기술적인 과제는 청구항에서 특징화된 양태를 제공함으로써 해결되었다.
따라서, 본 발명은 골수 세포가 망상적혈구 및 적혈구의 생산을 증가시키고 헤모글로빈 합성 또는 철 흡수를 증가시키도록 하는 생물학적 성질을 갖는 에리트로포이에틴 1차 구조 형태의 일부 또는 전부를 갖는 폴리펩타이드에 관한 것이고 이때 폴리펩타이드는 외인성 DNA 서열을 진핵세포에서 발현시킨 생성물로서 하기의 물리화학적 성질을 갖는다:
(i) 아미노산 서열은 서열 1에 나타낸 아미노산 서열 또는 서열 1에 나타낸 아미노산 서열의 아미노산 결실, 치환, 삽입, 첨가 및/또는 대체에 의한 이의 임의의 단편 또는 유도체를 포함하고, 이때 보존성(consensus) N-연결된 당화 부위중 하나 이상이 보존성 N-연결된 당화 부위 이외의 것으로 변형되며;
(ii) 당화되어 있고;
(iii) N-글리칸 구조의 5% 이상이 황화되고;
(iv) 전체 N-글리칸 전하 Z 대 N-당화 부위 수의 비율 Z*는 170을 초과한다.
사람 Epo는 시알화된 하나의 O-연결된 글리코실 잔기(서열 1의 Ser 126) 및 3개의 N-연결된 글리코실 잔기(서열 1의 Asn 24, Asn 38 및 Asn 83)를 갖는다1. 이들 당 잔기의 적당한 시알화는 생체내 반감기 및 이에 따른 Epo 의 효능에 있어서 중요하다는 것이 입증되었다2. 더욱이, rhuEpo의 상이한 당화 부위는 복합적인 당 구조 및 시알화와 관련하여 상이하게 당화된다7,8. 유전자 조작된 글리코뮤테인의 분석은, rhuEpo 분자(서열 1)의 당화 부위 Asn 24의 제거로 글리코뮤테인 rhuEpo(Gln24)(서열 2)을 생성시켜 이것이 발현 및 생체내 효능 모두에 있어서 유리하다는 것을 보여준다4. 현재 놀랍게도 당화 부위당 황화된 N-글리칸 구조 및 N-글리칸 전하수의 측면에서 변형된 당화 프로필을 갖는 rhuEpo는 지금 까지 기술된 rhuEpo 또는 또 다른 임의의 rhuEpo 글리코뮤테인과 비교하여 개선된 생체내 반감기 및 생물학적 활성을 갖는 것으로 밝혀졌다3,4. 본 발명은 뮤테인 rhuEpo(Gln24)(서열 2)의 당화 프로필이 CHO 세포에서 소 파필로마바이러스 1(BPV-1) 벡터 pHOEBE 40-7의 조절 성분의 통제하에 상응하는 DNA 서열을 발현시킴으로써 훨씬 개선될 수 있다는 발견을 토대로 한다. 하나의 N-당화 부위를 결핍시킬지라 도 폴리펩타이드(서열 2)는 rhuEpo(wt)보다 높은 전체 전하수를 포함하고 이전에 기술된 rhuEpo(Gln24)4,5,6 보다 훨씬 높은 전체 전하수를 포함하여 상당히 높은 Z*를 나타낸다(실시예 9의 표 II 참조). 본 발명의 폴리펩타이드는 당화 부위당 다량의 시알화된/황화된 당 구조를 포함하고 있어 간-특이적 아시알로갈락토실-수용체에 의한 분자의 제거를 감소시킨다. 더욱이, 특정 투여량의 rhuEpo(wt)의 동일한 생물학적 효과가 보다 낮은 투여량의 본 발명의 폴리펩타이드에 의해 수득된다(도 1 B 참조). 추가로, 사람 뇨의 Epo가 상당한 양의 황화된 올리고사카라이드를 포함하는 것으로 발견9되었기 때문에 본 발명의 폴리펩타이드는 지금까지 사용되어 왔던 임의의 다른 rhuEpo보다 사람 뇨의 Epo와 매우 밀접하게 유사하다.
예를 들어, 상기 DNA의 부위 지시된 돌연변이 유발에 의한 단일 및/또는 다중 아미노산 결실(들), 치환(들), 삽입(들), 첨가(들) 및/또는 대체(들)에 의해 다양하게 변형된 본 발명의 폴리펩타이드의 다양한 유도체를 제조하기 위해 재조합 DNA 기술을 사용할 수도 있다. 재조합 DNA 기술은 당해 분야의 기술자에게 널리 공지되어 있다. 필수 당화 프로필을 유지하며 골수 세포가 망상적혈구 및 적혈구의 생산을 증가시키고 헤모글로빈의 합성 또는 철 흡수를 증가시키도록 하는 생물학적 성질을 갖고, 즉 N-글리칸 구조의 5% 이상이 황화되고 전체 N-글리칸 전하 Z와 N-당화 부위 수와의 비율 Z*가 170을 초과하는 에리트로포이에틴의 1차 구조 형태를 보유한 유도체의 제조를 포함한다.
바람직한 양태에서 본 발명은 보존성 N-당화 부위의 하나 이상이 결실되고/되거나 상이한 아미노산으로 대체되는 상기 언급된 폴리펩타이드에 관한 것이다.
또 다른 바람직한 양태에서, 보존성 N-당화 부위의 하나 이상이 상기 언급된 폴리펩타이드에 첨가된다.
특히 바람직한 양태에서, 서열 1에 나타낸 아미노산 서열의 아미노산 위치 24(Asn)에서의 당화 부위는 서열 1에 나타낸 아미노산 서열 24 위치에서의 아미노산 Asn을 예를 들어, 서열 2의 아미노산 서열중에 나타낸 아미노산 Gln으로 대체시킴으로써 결실된다.
상기 기술된 바와 같이, 본 발명의 폴리펩타이드는 전체 N-글리칸 전하 Z 대 N-당화 부위 수의 비율 Z*가 170을 초과한다. 바람직한 양태에서 Z*은 180 초과, 예를 들어, 183, 바람직하게는 190 초과, 예를 들어 194이다.
더욱이, 본 발명은 진핵 숙주 세포에서 상기 폴리펩타이드의 아미노산 서열을 암호화하는 DNA 서열을 발현시키는 소 파필로마바이러스 1(BPV-1)의 조절 성분과 작동가능하게 연결된 상기 DNA 서열에 관한 것이다. 본 발명의 범위내에서 수행되는 실험은 뮤테인 rhuEpo(Gln24)가 BPV-1 발현 시스템을 통해 CHO 세포에서 발현되는 경우 당화 패턴이 pABE-40-7 발현 벡터를 통해 CHO 세포에서 발현되는 뮤테인 rhuEpo(Gln24)와는 상당히 상이하다는 것을 밝혔다(표 2의 C3 및 C4/C5 참조). BPV-1 발현 시스템을 사용함으로써 rhuEpo(Gln24)는 더 높은 시알화를 포함하고 황화를 통해 새로운 특성의 전하를 포함한다(표 II 참조). 예상되는 재조합 단백질 뿐만 아니라, BPV-1 발현 벡터는 추가로 여러개의 작용성 활성 인자, 예를 들어, 상호작용 인자 및 숙주 시스템의 세포 활성을 조절할 수 있는 기타 인자를 발현할 수 있다. 그러나, 놀랍게도 이것은 또한 해독후 변형, 예를 들어, CHO 세포에서 rhuEpo(Gln24)의 당화 또는 황화의 패턴을 명백하게 조절할 수 있다.
바람직한 양태에서, 상기 언급된 DNA 서열은 추가로 메탈로티오네인 1(MT-1) 유전자의 조절 성분을 포함한다. 추가로 가능한 조절 성분의 예는 SV40 프로모터 및 인핸서 성분과 같은 바이러스성 조절 성분이다.
본 발명은 또한 벡터, 바람직하게는 상기 언급된 DNA 서열을 포함하는 발현벡터에 관한 것이다.
바람직한 양태에서, 발현 벡터는 하기의 실시예에서 기술되는 BPV-1 벡터 pPHOEBE-40-7이다.
추가로 본 발명은 본 발명의 DNA 서열 또는 벡터를 포함하는 숙주 세포에 관한 것이다. 숙주 세포에 존재하는 본 발명의 DNA 서열 또는 벡터는 숙주 세포의 게놈에 통합되거나 염색체외적인 몇몇 형태로 유지될 수 있다. 숙주 세포는 CHO, BHK, C127i 및 기타의 진핵 세포일 수 있다. 바람직한 숙주 세포는 CHO 세포이다.
본 발명의 또 다른 요지는 골수 세포가 망상적혈구 및 적혈구의 생산을 증가시키고 헤모글로빈 합성 또는 철 흡수를 증가시키도록 하는 생물학적 성질을 갖는 에리트로포이에틴의 1차 구조 형태의 일부 또는 전부를 갖는 본 발명의 폴리펩타이드의 제조 방법에 관한 것이고 이때 제조방법은 본 발명의 숙주 세포를 배양하고 임의로 배양물로부터 상기 폴리펩타이드를 분리하는 단계를 포함한다.
사용되는 특정 작제물과 조건에 따라, 폴리펩타이드는 세포, 배양배지 또는 이들 모두로부터 회수될 수 있다. 당해 분야의 기술자는 천연 폴리펩타이드를 발현시킬 수 있을 뿐만 아니라 융합 단백질로서 폴리펩타이드를 발현시키거나 폴리펩타이가 숙주 세포의 특정 부위로 이동하도록 지시하여 폴리펩타이드가 배양물로 분비되도록 하는 시그날 서열을 첨가할 수 있다는 것을 인지하고 있다. 바람직하게, 본 발명의 폴리펩타이드는 rhuEpo 분자상에 huEpo-수용체 결합 부위에 대해 특이적인 모노클로날 항체를 사용하는 친화성 크로마토그래피에 의해 정제된다10. 상기 모노클로날 항체는 당해 기술 분야에 공지된 통상적인 방법에 따라 수득될 수 있다.
따라서, 본 발명은 상기 언급된 방법에 의해 수득될 수 있는 폴리펩타이드에 관한 것이다. 본 발명의 폴리펩타이드는, 골수 세포가 망상적혈구 및 적혈구의 생산을 증가시키고 헤모글로빈 합성 또는 철 흡수를 증가시키도록 하는 생물학적 활성을 갖지만 본 발명의 폴리펩타이드와 같이 상기 언급된 유리한 당화 프로필을 갖지 않는 에리트로포이에틴의 1차 구조 형태의 일부 또는 전부를 갖는 동일한 폴리펩타이드와 비교하여 증가된 반감기 및 생체내 생활성을 갖는 것이 특징이다.
더욱이, 본 발명은 단독으로 또는 배합된 상기 언급된 본 발명의 폴리펩타이드, DNA 서열 및/또는 벡터중 하나 이상 및 임의로 약제학적으로 허용되는 담체 또는 부형제를 함유하는 약제학적 조성물에 관한 것이다. 적합한 약제학적 담체의 예는 당해 기술 분야에 널리 공지되어 있고 인산 완충된 식염수 용액, 물, 에멀젼( 예: 오일/물 에멀젼), 다양한 유형의 습윤제 및 살균 용액등을 포함한다. 상기 담체를 함유하는 조성물은 통상적인 방법에 의해 제형화될 수 있다. 약제학적 조성물은 적합한 투여량으로 환자에게 투여될 수 있다. 투여 섭생은 담당 의사가 환자의 상태, 질환의 중증성 및 기타 임상학적 요소를 고려하여 결정될 수 있다. 적합한 투여량 범위는 예를 들어, 1,000 내지 10,000 단위이고, 바람직하게는 3,000 내지 6,000 단위이고 보다 바람직하게는 4,000 단위이다. 진행정도는 헤마토크리트 수치, 망상적혈구의 수, 적혈구의 수 및 환자의 일반적인 건강 상태를 정기적으로 검진하여 조사할 수 있다. 적합한 조성물은 상이한 방법, 예를 들어, 정맥내, 직장내, 피하내, 근육내, 국소적 또는 경피내 투여로 투여될 수 있다.
또한 본 발명은 단독으로 또는 배합된 상기 언급된 폴리펩타이드, DNA 서열 및/또는 벡터의 하나 이상 및 임의로 적합한 검출 수단을 함유하는 진단용 조성물에 관한 것이다. 상기 진단용 조성물은 항-사람 Epo 항체 또는 Epo 수용체를 검출하기 위한 방법에 사용될 수 있다. 진단용 조성물에 함유되는 본 발명의 폴리펩타이드는 퍼옥시다제 또는 99Tc와 같은 임의의 리포터 시스템과 커플링될 수 있다.
추가의 양태에서, 본 발명은 에리트로포이에틴의 결핍으로 발병되는 모든 빈혈(예: 신장 빈혈)을 치료하기 위해 유기체의 작용성 적혈구의 전체 수를 증가시키는 약제학적 조성물을 제조하기 위해, 단독으로 또는 배합된, 상기 언급된 폴리펩타이드, DNA 서열 및/또는 벡터 하나 이상의 용도에 관한 것이다. 예를 들어, 투석과정중에 적혈구 세포는 파괴되어 투석 환자가 빈혈증을 나타낼 수 있다. 이들 환자의 신장은 흔히 기능부전 및 비-기능성이 되기 때문에 적절한 에리트로포이에 틴 공급이 보장되지 않아 투석 환자는 rhuEpo 치료로 충분한 rhuEpo 농도를 제공받아 계속적으로 파괴된 적혈구를 대체할 필요가 있다. 본 발명의 약제학적 조성물 및 이의 용도에 있어서, 본 발명의 폴리펩타이드는 캐리어[예: 키홀 림페트 헤모시아닌 및/또는 임의의 효능인자 시스템(예: 리신 또는 99Tc)]에 공유적으로 또는 비공유적으로 커플링될 수 있다.
도 1은 상이한 농도의 rhuEpo(WT) 및 rhuEpo(Gln24)의 생물학적 활성을 나타낸다:
A. 상이한 농도의 rhuEpo wt 및 rhuEpo(Gln24)의 생물학적 활성은 사람 골수 적색 콜로니 검정에서 테스트한다. GM-CSF 및 배지 샘플을 대조구로서 동시에 검정한다. 적색 콜로니의 수는 각 샘플을 배양한지 2주 후에 평가한다.
B. 상이한 농도의 rhuEpo wt 및 본 발명의 rhuEpo(Gln24)의 생물학적 활성은 사람 골수 적색 콜로니 검정에서 테스트한다. 배지 샘플을 대조구로서 동시에 검정한다. 적색 콜로니의 수를 각각의 샘플을 배양한지 2주 후에 평가한다.
실시예 1: 발현 벡터 pHOEBE-40-7(rhuEpo(Gln24))의 작제
CHO 세포에서 에리트로포이에틴의 발현을 위해 BPV-1 발현 벡터 pCES로부터 유래된 발현 시스템을 사용한다11. Kozak12에 따라 해독 개시 부위를 최적화하기 위해 ACC 트리플렛을 부위 지시된 돌연변이 유발로 Epo 암호화 서열의 제 1 ATG 코돈의 상부에 직접 삽입한다. 이어서 벡터 pCES의 rhuEpo(wt)-암호화 서열(BamHI-BgIII 단편)을 최적의 전사 개시 부위를 갖는 Epo 서열로 대체하여 발현 벡터 pHOEBE-40-1을 수득한다. 또한 코작(Kozak) 서열을 포함하는, 뮤테인 rhuEpo(Gln24)를 암호화하는 서열을 발현 벡터에 클로닝하여 pHOEBE-40-7을 수득한다. 추가의 실험에서 pABE-40 발현 벡터 시스템4을 사용하여 CHO 세포에서 발현시킨다. 뮤테인 서열 및 코작 서열을 부위 지시된 돌연변이 유발13로 수득하고 서열 분석에 의해 서열을 확인한다. BPV-1 발현 시스템 pHOEBE-40은 상이한 기원의 DNA 단편을 포함한다. 상이한 성분은 다음과 같다:
a) 앰피실린 내성 유전자(Amp), 세균성 복제 오리진(이. 콜라이 ORI)을 포함하는, 세균성 플라스미드 pML-1의 서열을 함유하는 플라스미드 pJYM14로부터 유래된 2317 bp의 SalI-EcoRI 단편;
b) 역 배향으로 마우스 메탈로티오네인 1(MT-1) 프로모터 및 뮤린 MT-1 유전자의 3' 비암호 영역을 함유하는 2801 bp의 EcoRI-BamHI 단편(이때, 클로닝 전략에 따라 MT-1 유전자의 2개의 부위가 벡터 pJYM14의 짧은 pBR322-유래된 서열(HindIII - EcoRI로 격리된다);
c) rhuEpo(Gln24) c-DNA(E40-7)4 및 상부의 최적화된 해독 개시 부위를 포함하는 766bp의 BamHI-Bgl II 단편;
d) SV 40 레이트 폴리아데닐화 시그날15을 포함하는 242 bp의 Bgl II- BamH I 단편;
e) 소 파필로마 바이러스 BPV-1의 전체 게놈 서열을 포함하는 BamHI - Sal I 단편(100% BPV-1 게놈 BamHI-단편에 상응함)16. 이러한 서열은 약 100bp의 단편(BPV-1 게놈의 7900bp-52bp, 1 위치에서 Hpa I 부위에 인접해 있음)에 위치된 진핵성 복제 오리진을 함유한다. 더욱이, 이 서열은 BPV-1-특이적 복제 인자, 전사 인자 및 형질전환 인자를 암호화하는 개방 판독 프레임을 포함한다. 이들 인자는 해독후 변형 과정을 조절할 수 있다고 제안된다.
실시예 2: CHO dhfr- 세포의 형질감염 및 일시적인 발현 수준의 검출
CHO dhfr- 세포를 10% 태아소 혈청(FCS)를 함유하는 듈베코 변형된 이글스 배지(DMEM)중에 성장시킨다. CHO dhfr_ 세포를 그라함 및 반데르 Eb17(Graham and Van der Eb)의 방법에 따라 형질감염시킨다. 10㎍/ml의 rhuEpo 발현 벡터 DNA(pABE-40-7)4를 형질감염시킨지 24시간, 48시간 및 72시간후에 일시적인 발현 및 분비를 검정한다. 각각의 일시적인 발현 실험에서, SV40 프로모터19,20의 통제하에 평활 절단된 사람 IgG1Fc(rhu IgG1Fc)의 암호 서열을 갖는 벡터 p4EGD18을 동시에 형질감염시키고 rhuEpo 및 rhu IgG1Fc 모두의 발현 비율을 각각 특이적 ELISAs21,10을 사용하여 결정한다. rhuEpo 뮤테인의 상대적인 분비를 rhuEpo(wt) 및 rhu IgG1Fc의 분비율로 표준화한다(표 I 참조).
| 1 | 2 | 3 | 4 | ||
| 시간(형질감염 후 시간) | rhuEpo 뮤테인 | 절대적 분비(ng/ml) | 분비(%) | 분비(%) | |
| rhuEpo | Fc | Fc에 대한 상대적인 값 | rhuEpo(wt)에 대한 상대적인 값 | ||
| 24 | rhuEpo(wt) rhuEpo(Gln24) | 2.9 23.0 | 4.9 13.7 | 59.2 167.9 | 100.0 283.6 |
| 48 | rhuEpo(wt) rhuEpo(Gln24) | 7.2 53.0 | 14.0 21.0 | 51.4 252.4 | 100.0 491.0 |
| 72 | rhuEpo(wt) rhuEpo(Gln24) | 9.7 74.0 | 23.0 31.0 | 42.2 238.7 | 100.0 565.6 |
일시적인 형질감염체에 있어서, 각각 24시간, 48시간 및 72시간에 형질감염 후(p.t.) 분비된 대조 단백질로서 IgG1 Fc 융합 단백질에 상대적인 rhuEpo(wt) 및 rhuEpo(Gln24)의 발현을 테스트한다. 각각의 형질감염 세트에서 절대적인 분비 수준의 3회 측정값의 평균값을 평균한다. 3회 측정값의 오차는 rhuEpo/rhuEpo 뮤테인 분비 또는 rhuEpoRFc 분비(칼럼 2)중 하나에 대해 5% 이하이다. 이들 데이터로부터 IgG1Fc(Fc, 100%) 발현과 상대적인 rhuEpo 발현 수준을 각각의 실험(칼럼 3) 에 대해 평균 기본값으로 계산한다. 이들 값으로부터 rhuEpo(Gln24) 분비 수준을 각각의 실험(칼럼 4)에 대한 평균 값으로 rhuEpo(wt)와 상대적으로 평가한다.
실시예 3: 일시적인 rhuEpo(wt), rhuEpo(Gln24) 뮤테인 및 rhuIgG1Fc 발현 수준의 검출
rhuEpo-특이적 ELISA21,10을 사용하여 rhuEpo(wt) 또는 rhuEpo 뮤테인 함량에 대해 일시적으로 또는 안정하게 형질감염된 배양물의 상등액을 테스트한다. 폴리클로날 래빗 항혈청을 기준으로 하기와 같이 상기 검정을 수행한다: 미세역가 플레이트를 500ng/ml의 래빗 항-rhuEpo 면역글로불린 분획으로 밤새 코팅한다. 이어서, 플레이트를 트윈20 0.01%를 함유하는 PBS로 3회 세척하고 37℃에서 통기 건조시킨다. 사용전에, 플레이트를 소 혈청 알부민(BSA) 0.05%(w/v)를 함유하는 PBS로 포화시킨다. 이어서 플레이트를 PBS-트윈20으로 3회 세척하고 상등액 샘플로 30분 동안 항온처리한다. BSA 0.05%(w/v)를 함유하는 PBS로 3회 세척한후에 결합된 rhuEpo 또는 rhuEpo 뮤테인을 퍼옥시다제-표지된 래빗 항-rhuEpo 면역글로불린 분획(Ig-POD)으로 검출한다. 30분 동안 항온처리한 후에 미세역가 플레이트를 세척하고 포획된 rhuEpo에 상응하는 잔여 퍼옥시다제 활성을 기질로서 테트라메틸벤즈이딘(TMB)을 사용하여 밝혀낸다. 이어서 H2SO4를 첨가하여 반응을 종료하고 플레이트를 베링 ELISA 프로세서 II(Berhingwerke AG, Marburg, FRG)로 측정한다.
일시적으로 형질감염된 세포 배양물의 상등액을 IgG1Fc의 분비에 대해 검색 하여 상이한 rhuEpo 뮤테인의 상대적인 분비를 결정한다. 이를 위해 미세역가 플레이트를 고트(goat) 항-사람 Fc 폴리클로날 면역글로불린 분획으로 코팅한다. 세척하고 포화시킨후(상기 참조) 플레이트를 1시간 동안 상등액으로 항온처리한다. 이어서 포획된 IgG1Fc 분자를 상기한 바와 같이 퍼옥시다제(POD)로 표지된 고트 항-사람 Fc 항체를 사용하여 검출한다.
실시예 4: 안정한 rhuEpo(Gln24) 뮤테인 발현 세포 클론의 생산
메톡트레세이트18에 대해 내성을 부여하는 디하이드로폴레이트 리덕타제 유전자를 발현하는 벡터 pSV2 dhfr과 함께 발현 벡터 pABE-40-1, pABE-40-7, pHOEBE-40-1 또는 pHOEBE-40-7로 동시에 형질감염시켜 rhuEpo(Gln24) 뮤테인을 분비하는 세포 클론을 수득한다. 형질감염후 메토트렉세이트 존재하에 배양물을 선별한다. 2 내지 3주후 세포 콜로니를 성장시키고 단일 세포 클론을 클로닝 실린더 또는 제한 희석 방법에 따라 클로닝시킨다. 생산된 rhuEpo(Gln24)을 실시예 2에서 기술한 바와 같이 검정한다.
실시예 5: 세포 클론 생산의 증대
생산을 위해 적합한 세포 클론을 추가로 배양하고 최종적으로 롤러 바틀(roller bottle) 배양으로 증대시킨다. 에리트로포이에틴을 생산하기 위해 각각의 씨드 로트(seed lots)로부터의 세포를 롤러 바틀에서 군집을 이루도록 증대시 킨다. 이어서, 성장 배지를 생산 단계 말기에 수거된 무혈청 DMEM으로 대체한다.
실시예 6: rhuEpo(Gln24)의 정제
정제된 rhuEpo 및 글리코뮤테인을 모노클로날 항체 146/005610을 사용하는 친화성 크로마토그래피로 수득한다. 상기 항체를 Fibi10에 따라 세파로스 CL4B(Pharmacia, Uppsala, Sweden)에 공유적으로 커플링시킨다. pH 2.5에서 1ml의 1M 트리스-HCl(pH 9.5)로 용출시킨후에 샘플을 PBS(pH 7.0)에 대해 투석한다. 단백질 농도를 O.D. 280nm에서 계산하고 폴리아크릴아미드 겔중에서 분리시킨후 이어서 은 염색(Phast System, Pharmacia)한 후에 제제의 순도를 가시적으로 통제한다.
실시예 7: SDS-Page 및 은 염색
레인보우 마커 단백질 및 골드-표지된 항체 방법(모두 제조회사(Amersham-Bucheler, Braunschweig, FRG)에서 구입)을 사용하는 것을 제외하고 최근에 기술된1바와 같이 페이스트 시스템(Phast system)을 사용하여 SDS-PAGE 및 웨스턴 블롯팅을 수행한다.
실시예 8: 사람 적혈구계의 전구체 콜로니 검정
사람 골수 세포의 현탁액을 인산염 완충된 식염수중에서 골수 표본으로부터 제조한다. 현탁액중에 농도 구배로 정제된 중간기 세포를 12℃에서 25분 동안 2200rpm으로 원심분리한후 수거한다. 세포를 3회 세척하고 보체와 항생제로서 세르토마이신과 함께 MEM-알파 배지중에 재현탁시킨다. 세포수를 1.1 x 106/ml로 조정하고 세포를 4ml의 rhuEpo 배지(19.1 ml FCS/15.2ml 트랜스페린/BSA/FeCl3/13.7ml의 MEM-알파 배지) 및 0.7ml 한천(약 70℃)과 혼합한다. 한천 세포 현탁액 200㎕를 시험 샘플의 희석물을 포함하는 24웰 조직 배양 플레이트의 웰에 첨가한다. 배양물을 시험 샘플과 혼합하고 7% CO2 및 10% O2를 함유하는 대기에서 14일 동안 37℃에서 배양한다.
실시예 9: 당 분석
문헌[참조: Nimtz7]에 기술된 바와 같이 PNGase F를 사용하여 rhuEpo로부터 N-글리칸을 유리시킨다. 이전에 기술된 시알화된 글리칸에 대해 설정되고 최적화된 표준 농도 구배 "S"를 사용하여 펄스 전류계 검출기(HPAE-PAD)와 함께 고 pH 음이온 교환 크로마토그래피로 유리된 N-글리칸 풀을 측정한다22. 가정된 N-글리칸 전하 Z는 문헌[참조: Hermentin23,24]에 기술된 바와 같이 결정한다. 간략하게 rhuEpo 샘플의 가정된 N-글리칸 전하는 다음과 같은 단계로 수득한다:
i) PNGase F를 사용하여 당단백질로부터 N-글리칸-풀을 유리시키는 단계;
ii) HPAE-PAD를 통해 N-글리칸 풀을 측정하는 단계;
iii) 전하에 의해 분리되는 피크의 그룹 면적(A)을 %로 계산하는 단계;
iv) 중성(아시알로, as), 모노시알로-(MS), 디시알로-(DiS), 트리시알로-(TriS), 테트라시알로(TetraS) 및 펜타시알로(PentaS) 영역중에 피크 그룹의 면적 %에 각각 0(아시알로), 1(MS), 2(DiS), 3(TriS), 4(TetraS) 및 5(황화된)를 곱하는 단계;
v) 각각의 산출값을 정리하는 단계;
[이때 Z는 아시알로(as), 모노시알로(MS), 디시알로(DiS), 트리시알로(TriS), 테트라시알로(TetraS) 및 황화된 영역중에 각각의 면적(A)에 대한 산출값의 합으로서 정의되고 이의 각각은 100%와 동등한 전체 피크 면적 세트의 %로 계산되고 각각에 상응하는 전하를 곱한다:
Z = A(as)*0 + A(MS)*1 + A(DiS)*2 + A(TriS)*3 + A(TetraS)*4 + A(펜타 S 또는 황화된)*5]
vi) Z를 당화 부위의 수로 나누어 Z*를 산출하는 단계.
Z*는 N-당화 부위당 전하수 및 당화 부위의 전하 등급을 평가한 것이다.
지금까지 상업적으로 유용한 rhuEpo의 당 분석의 결과 및 본 발명의 rhuEpo(칼럼 C4 및 C5)은 표 II에서 비교한다.
| 오르가논(Organon) rhuEpo(CHO)pABE-40형 | 암겐*(Amgen) rhuEpo(CHO)pABE-40형 | 베링거(Boehringer) rhuEpo(CHO)pABE-40형 | 베링-뮤테인 rhuEpo(Gln24)(CHO) pABE-40-7 | |||||
| C3 | ||||||||
| 적분한 면적(피크 그룹) | 피크 그룹 면적(%) | 전하 수 값 | 피크 그룹 면적(%) | 전하 수 값 | 피크 그룹 면적(%)0950579 K.D07 | 전하 수 값 | 피크 그룹 면적(%)0950576K.DO4 | 전하 수 값 |
| 아시알로 | 3.1 | 0 | ||||||
| 모노시알로 | 6.1 | 6.0 | ||||||
| 디시알로 | 15 | 30.0 | 6.4 | 12.8 | 5.4 | 10.7 | 11.3 | 23.0 |
| 트리시알로 | 32 | 96.0 | 20.7 | 62.1 | 25.5 | 76.5 | 23.7 | 71.0 |
| 테트라시알로 | 40 | 160.0 | 72.9 | 291.6 | 69.2 | 276.6 | 55.9 | 223.0 |
| 황화 | n.d. | n.d. | 0.0 | 0 | ||||
| N-글리칸 전하 수 Z(전체) | (a) | 286 | (b) | 367 | 364 | 323 | ||
| Z* | 95.3 | 122.3 | 121.3 | 162.5 | ||||
| 베링-뮤테인 rhuEpo(Gln24)(CHO)pHOEBE-40-7 | 머클레(Merckle)rhuEpo(BHK)pABE-40 형 | |||||||
| C4 | C5 | Nimtz | ||||||
| 적분 면적(피크 그룹) | 피크 그룹 면적(%)0950576K.D04 | 전하 수 값 | 피크 그룹 면적(%)0950546K.D20 | 전하 수 값 | 피크 그룹 면적(%) | 전하 수 값 | 피크 그룹 면적(%) | 전하 수 값 |
| 아시알로 | ||||||||
| 모노시알로 | 2.8 | 2.8 | 1.8 | 1.8 | 4.7 | 4.7 | n.d. | |
| 디시알로 | 3.2 | 6.3 | 8.6 | 17.3 | 14.5 | 29.0 | 21.1 | 42.2 |
| 트리시알로 | 13.8 | 41.4 | 20.2 | 60.6 | 33.9 | 101.7 | 35.0 | 105.0 |
| 테트라시알로 | 64.0 | 256.0 | 60.6 | 242.4 | 46.8 | 187.2 | 40.9 | 163.6 |
| 황화 | 16.2 | 81.2 | 8.7 | 43.5 | ||||
| N-글리칸 전하 수 Z(전체) | 388 | 366 | (c) | 323 | (d) | 311 | ||
| Z* | 194 | 183 | 107 | 103 | ||||
| a) 문헌[참조: Hokke25]으로부터 계산됨 b) 문헌[참조: Watson26]으로부터 계산됨 c) 4개의 상이한 배치의 평균; 각각 1HPAE-PAD 수행 d) 문헌[참조: Nimtz7]으로부터 계산됨 Z* 전체 N-글리칸 전하 수 Z/N-당화 부위 수 n.d.: 측정 안됨 | ||||||||
rhuEpo(CHO)에 대해서 최초로 문헌[참조: Sasaki et al1]에 기술되고 rhuEpo(BHK)에 대해서는 최초로 문헌[참조: Tsuda28]에 기술된 rhuEpo의 탄수화물 검정은 최근에 문헌[참조: Hokke25, Watson26(CHO-rhuEpo) and Nimtz7(BHK-rhuEpo)]에 따른 연구에 의해 진전되었다. 새로운 방법에 따르면 가정된 N-글리칸 전하 Z는 문헌[참조: Hermentin23,24]에 기술된 바와 같이 결정될 수 있다. 이러한 변수는 적당히 시알화된 N-글리칸에 대해 덜 시알화된 N-글리칸의 양을 우수하게 평가한다는 것이 입증되었다. rhuEpo의 글리칸은 주로 0 내지 3개의 LacNAc 반복 단위체를 갖는 테트라 안테나 구조로 이루어져 있다는 것이 공지되어 있기 때문에 Z는 가정된 N-글리칸 전하 수가 300 내지 400이 되도록하는 값이다. 실질적으로, CHO-rhuEpo(베링거 만하임)의 N-글리칸 전하는 Z가 323 +/-2 (CV = 0.6%)(n=6, 각각 2개의 HPAE-PAD 작동과 함께 3개의 상이한 실험)인 것으로 결정되었고 BHK-rhuEpo(Merckle)의 N-글리칸 전하는 Z가 323 +/- 2(CV=0.7%)(n=4; 4개의 상이한 로트; 4개의 상이한 실험; 각각 하나의 HPAE-PAD 실행)인 것으로 결정되었다[표 II 참조]24. 이어서, 머클레로부터 구입한 BHK-rhuEpo의 보다 작은 Z 값은 명백하게 덜 시알화된 N-글리칸의 보다 큰 값을 반영한다. N-글리칸의 34%는 하나가 부족하고 N-글리칸의 12%는 2개의 말단 시알산 잔기가 부족하다. 상기 구조는 40.9%의 테트라시알화된 구조, 35.0%의 트리시알화된 구조 및 21.1%의 디시알화된 구조로 이루어져 있다[참조문헌: Nimtz7). 상기 문헌으로부터의 이들 데이터를 사용하여 Z가 311인 N-글리칸 전하를 계산할 수 있고 이것은 머클레로부터 구입한 동일한 rhuEpo(BHK)를 사용하여 예를 들어 Z가 323인 방정식 1에 따라 결정된 N-글리칸 전하와 우수하게 일치(오차 < 4%)한다[표 II 참조]. 암겐으로부터 구입한 CHO-rhuEpo에서, 주요(>95%) 디-, 트리- 및 테트라- 안테나 구조가 완전히 시알화된다26. PNGase F-유리된 N-글리칸의 전하에 따라 이를 분리(글리코팩 DEAE 칼럼)함으로써 Z가 367인 N-글리칸의 전하를 계산할 수 있고 이것은 상기 연구에서 사용되는 베링거 만하임으로부터 구입한 rhuEpo(CHO)의 글리칸 전하(Z=364, 표 II 참조)와 우수하게 일치한다. 이와는 반대로 오르가논 테크니카에서 구입한 CHO-rhuEpo를 조사하는 문헌[참조: Hokke et al25]에 따른 연구는 N-글리칸의 18 내지 20%는 하나가 부족하고 N-글리칸의 3%는 2개의 시알산 잔기가 부족하다는 것을 보여준다. 이들을 구조적으로 검정하여 Z가 286인 N-글리칸 전하를 계산할 수 있고 이것은 암겐(Z=367) 또는 베링거(Z=364)로부터 구입한 CHO-rhuEpo 보다 상당히 작은 전하이다(표 II 참조)24.
참조문헌
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<151> 1997-09-01
<160> 2
<170> KOPATIN 1.5
<210> 1
<211> 166
<212> PRT
<213> human erythropoietin
<220>
<221> PEPTIDE
<222> (1)..(166)
<223> amino acid, single, linear, non-hypothetical sequence, non-antisense
<400> 1
Ala Pro Pro Arg Leu Ile Cys Asp Ser Arg Val Leu Glu Arg Tyr Leu
1 5 10 15
Leu Glu Ala Lys Glu Ala Glu Asn Ile Thr Thr Gly Cys Ala Glu His
20 25 30
Cys Ser Leu Asn Glu Asn Ile Thr Val Pro Asp Thr Lys Val Asn Phe
35 40 45
Tyr Ala Trp Lys Arg Met Glu Val Gly Gln Gln Ala Val Glu Val Trp
50 55 60
Gln Gly Leu Ala Leu Leu Ser Glu Ala Val Leu Arg Gly Gln Ala Leu
65 70 75 80
Leu Val Asn Ser Ser Gln Pro Trp Glu Pro Leu Gln Leu His Val Asp
85 90 95
Lys Ala Val Ser Gly Leu Arg Ser Leu Thr Thr Leu Leu Arg Ala Leu
100 105 110
Arg Ala Gln Lys Glu Ala Ile Ser Pro Pro Asp Ala Ala Ser Ala Ala
115 120 125
Pro Leu Arg Thr Ile Thr Ala Asp Thr Phe Arg Lys Leu Asp Arg Val
130 135 140
Tyr Ile His Pro Phe Arg Gly Lys Leu Lys Leu Tyr Thr Gly Glu Ala
145 150 155 160
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165
<210> 2
<211> 166
<212> PRT
<213> human erythropoietin
<220>
<221> PEPTIDE
<222> (1)..(166)
<223> amino acid, single, linear, hypothetical sequence, non-antisense
<400> 2
Ala Pro Pro Arg Leu Ile Cys Asp Ser Arg Val Leu Glu Arg Tyr Leu
1 5 10 15
Leu Glu Ala Lys Glu Ala Glu Gln Ile Thr Thr Gly Cys Ala Glu His
20 25 30
Cys Ser Leu Asn Glu Asn Ile Thr Val Pro Asp Thr Lys Val Asn Phe
35 40 45
Tyr Ala Trp Lys Arg Met Glu Val Gly Gln Gln Ala Val Glu Val Trp
50 55 60
Gln Gly Leu Ala Leu Leu Ser Glu Ala Val Leu Arg Gly Gln Ala Leu
65 70 75 80
Leu Val Asn Ser Ser Gln Pro Trp Glu Pro Leu Gln Leu His Val Asp
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100 105 110
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Tyr Ile His Pro Phe Arg Gly Lys Leu Lys Leu Tyr Thr Gly Glu Ala
145 150 155 160
Cys Arg Thr Gly Asp Arg
165
Claims (23)
- 소 파필로마바이러스 1(BPV-1) 발현 시스템을 이용한 외인성 DNA 서열의 진핵세포 발현 생성물이고,(i) 서열 2에 제시된 아미노산 서열을 갖고;(ii) 당화되고;(iii) N-글리칸 구조의 5% 이상이 황화되고;(iv) 전체 N-글리칸 전하 Z 대 N-당화 부위 수의 비율 Z*가 170을 초과하는 물리화학적 특성을 갖는, 에리트로포이에틴의 1차 구조 형태를 갖는 폴리펩타이드.
- 삭제
- 삭제
- 삭제
- 삭제
- 삭제
- 삭제
- 제1항에 있어서, Z*가 180 초과인 폴리펩타이드.
- 제1항에 있어서, Z*가 190 초과인 폴리펩타이드.
- 삭제
- 삭제
- 진핵 숙주 세포에서 DNA를 발현시키도록 하는, 소 파필로마바이러스 1(BPV-1)-특이적 복제 인자, 전사 인자 및 형질전환 인자를 암호화하는 개방 판독 프레임으로 구성되는 서열을 갖는 BPV-1의 조절 성분들과 작동가능하게 연결된 제1항에 따른 폴리펩타이드의 아미노산 서열을 암호화하는 DNA 서열을 포함하는 BPV-1 벡터 pHOEBE-40-7.
- 제12항에 있어서, DNA 서열이 마우스 메탈로티오네인 1(MT-1) 프로모터 및 뮤린 MT-1 유전자의 3' 비-암호화 영역인 MT-1 유전자의 조절 성분들을 추가로 포함하는, BPV-1 벡터 pHOEBE-40-7.
- 제12항 또는 제13항의 벡터를 포함하는 진핵 숙주 세포.
- 제14항에 있어서, CHO 세포인 숙주 세포.
- 제14항 또는 제15항의 숙주 세포를 배양하고 임의로 배양물로부터 폴리펩타이드를 분리하는 단계를 포함하여, 골수 세포가 망상적혈구 및 적혈구의 생산을 증가시키고 헤모글로빈 합성 또는 철 흡수를 증가시키도록 하는 생물학적 활성을 갖는 에리트로포이에틴의 1차 구조 형태를 갖는 제1항, 제8항 및 제9항 중 어느 한 항에 따른 폴리펩타이드의 제조방법.
- 제16항의 방법에 의해 수득될 수 있는 폴리펩타이드.
- 제1항 또는 제17항에 있어서,(a) 증가된 생체내 반감기; 및/또는(b) 170 미만의 Z*를 갖는 동일한 폴리펩타이드와 비교하여 증가된 생활성을 가짐을 특징으로 하는 폴리펩타이드.
- 제1항 또는 제17항에 따른 폴리펩타이드, 및 임의로 약제학적으로 허용되는 담체를 포함하는, 에리트로포이에틴 결핍으로 인한 모든 종류의 빈혈 치료용 약제학적 조성물.
- 제12항 또는 제13항의 벡터, 및 임의로 약제학적으로 허용되는 담체를 포함하는, 에리트로포이에틴 결핍으로 인한 모든 종류의 빈혈 치료용 약제학적 조성물.
- 삭제
- 삭제
- 삭제
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