JPWO2014136781A1 - 蛍光プローブ - Google Patents
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Abstract
Description
より具体的には、フルオレセイン骨格を化学修飾することにより、分子内光誘起電子移動を利用した蛍光off/on型プローブであって、赤色のバイオイメージングを高感度で行うことができる新規な蛍光プローブを提供することが本発明の課題である。
[1]下記の一般式(I):
(式中、R1はベンゼン環上に存在する1ないし4個の同一又は異なる一価の置換基(ただし該置換基のうちの少なくとも1個は測定対象物質に対する捕捉基として作用する置換基である)を示し;R2及びR3はそれぞれ独立に水素原子、炭素数1〜6個のアルキル基、又はハロゲン原子を示し;R4及びR5はそれぞれ独立に炭素数1〜6個のアルキル基又はアリール基を示し;R6及びR7はそれぞれ独立に水素原子、炭素数1〜6個のアルキル基、又はハロゲン原子を示し;R8は測定対象物質に対する捕捉基として作用する置換基、水素原子、アルキルカルボニル基、又はアルキルカルボニルオキシメチル基を示し;Xは珪素原子、ゲルマニウム原子、又はスズ原子を示す)で表される化合物又はその塩。
[2]Xが珪素原子又はゲルマニウム原子である[1]に記載の化合物又はその塩。
[3]R1のうち捕捉基がプロトン、金属イオン、低酸素環境、又は活性酸素種を捕捉するための捕捉基である[1]又は[2]に記載の化合物又はその塩。
[4]R1のうち捕捉基がカルシウムイオンを捕捉するための捕捉基である[1]〜[3]のいずれか1項に記載の化合物又はその塩。
[5]R1のうちの捕捉基がスペーサーを介してベンゼン環に結合している[1]〜[4]のいずれか1項に記載の化合物又はその塩。
[6]以下の一般式(Ia):
(式中、R2〜R8及びXは、上記で定義した通りであり;
R201、R202、R203、及びR204が、カルボキシ基又はアルカノイルオキシアルキルオキシカルボニル基であり;
R205及びR206がそれぞれ独立に水素原子、C1−6アルキル基、ニトロ基、又はハロゲン原子を示す)で表される、請求項1に記載の化合物又はその塩。
[7]以下の一般式(Ib):
(式中、R2〜R8及びXは、上記で定義した通りである)で表される、[6]に記載の化合物又はその塩。
[8]R8のうち捕捉基がプロトン、活性酸素種、糖加水分解酵素を捕捉するための捕捉基である[1]〜[7]のいずれか1項に記載の化合物又はその塩。
[9][1]〜[8]のいずれか1項に記載の化合物又はその塩を含む蛍光プローブ。
[10](a)4ブロモイソフタル酸とt−ブチルアルコールとを反応させて4−ブロモイソフタル酸ジ−tert−ブチルを得る工程、
(b)4−ブロモイソフタル酸ジ−tert−ブチルとsec−ブチルリチウムとを反応させ、その直後に、以下の式(II)で表される化合物を添加し、その後、酸を添加して式(III)の化合物を得る工程、
(式中、R2〜R7及びXは、上記で定義した通りである)
(式中、R2〜R8及びXは、上記で定義した通りである)
を含む、式(I)の化合物を調製する方法。
[11]測定対象物質の測定方法であって、下記の工程:(a)[1]〜[8]のいずれか1項に記載の化合物又はその塩と測定対象物質とを接触させる工程、及び(b)上記工程(a)で生成した測定対象物質の捕捉後の化合物の蛍光強度を測定する工程を含む方法。
を、提供するものである。
また、本発明により提供される一般式(Ia)、(Ib)で表される化合物又はその塩は、水溶性が高く、細胞内へ取り込まれやすいため、カルシウムイオンを高感度に測定可能な蛍光プローブとして有用である。更に、本発明の一般式(Ia)、(Ib)で表される化合物又はその塩により、長波長でカルシウムイオンを測定できる蛍光プローブを提供することができるため、青色蛍光プローブ等と併用することができ、細胞のダイナミックな変化を追跡することが可能となる。
「TokyoMagenta」は、一般式(I)において、ベンゼン環の2位にカルボキシ基を有さず、R1が水素原子であり、R2及びR3が水素原子であり、R4及びR5がメチル基であり、R6及びR7が水素原子であり、R8が水素原子であり、Xが珪素原子である化合物を意味しており、この化合物を「TM」と略す場合がある。
(A−1)
(式中、R101、R102、R103、及びR104はそれぞれ独立に水素原子、アルキル基、2−ピリジルメチル基、2−ピリジルエチル基、2−メチル−6−ピリジルメチル基、又は2−メチル−6−ピリジルエチル基を示すが、R101、R102、R103、及びR104からなる群から選ばれる基のうち少なくとも1つは2−ピリジルメチル基、2−ピリジルエチル基、2−メチル−6−ピリジルメチル基、及び2−メチル−6−ピリジルエチル基からなる群から選ばれる基を示し;R105は水素原子であるか、又はベンゼン環上に存在する1ないし4個の同一又は異なる一価の置換基を示し;m及びnはそれぞれ独立に0又は1を示すが、m及びnが同時に0となることはない)で表される捕捉基。
上記の捕捉基は特許4402191号公報及びJ.Am.Chem.Soc.,127,pp.10197−10204,2005に開示されている。
上記の捕捉基の好適な例としては、以下の式で表される捕捉基が挙げられる。
(a-1-1)
また、これらの捕捉基は、後述するように、例えば−CO−NH−などのスペーサーを介してベンゼン環に結合していてもよい。例えば、式(a-1-1)の捕捉基が−CO−NH−のスペーサーを介してベンゼン環に結合する場合は以下の式で表される。
(a-1-2)
(式中、R111、R112及びR133はそれぞれ独立にカルボキシ基及びその塩を示し、R114は水素原子であるか、又はベンゼン環上に存在する1ないし3個の同一又は異なる一価の置換基を示す)で表される捕捉基。
上記の捕捉基はJ.Am.Chem.Soc.,124,pp.776−778,2002に開示されている。
(式中、R115は水素原子であるか、又はベンゼン環上に存在する1ないし4個の同一又は異なる一価の置換基を示す)で表される捕捉基。
上記の捕捉基は米国特許第5648270号明細書に記載されている。
(式中、R121及びR122はそれぞれ独立にカルボキシ基及びその塩を示し;R123はC1−6アルキル基を示し;R124はベンゼン環上に存在する1ないし3個の同一又は異なる水素原子を含む一価の置換基を示す)で表される捕捉基。
上記の捕捉基はCell Calcium,31,pp.245−251,2002に開示されている。
(式中、R125は水素原子であるか、又はベンゼン環上に存在する1ないし4個の同一又は異なる水素原子を含む一価の置換基を示す)で表される捕捉基。
上記の捕捉基は特開2000−239272号公報に開示されている。
(式中、R131及びR132はベンゼン環上の隣接した位置に置換する置換基を示し、それぞれ独立にアミノ基又はC1−6アルキルモノ置換アミノ基を示すが、R131及びR132が同時にC1−6アルキルモノ置換アミノ基を示すことはなく;R133は水素原子であるか、又はベンゼン環上に存在する1ないし3個の同一又は異なる一価の置換基を示す)で表される捕捉基。
上記の捕捉基は特許第3200024号公報、米国特許第6441197号明細書、米国特許第675623号明細書、及び特許第3967943号公報に開示されている。
(D−1)
[式中、R151及びR152はそれぞれ独立に水素原子又は炭素数1ないし6個のアルキル基を示し、R151及びR152は互いに結合して炭素数2ないし6個のアルキレン基となってもよく;Y1は炭素数1ないし6個のアルキレン基を示し;X1は単結合、−CO−、又は−SO2−を示し;X2は−O−Y2−N(R154)−(式中、Y2は炭素数1ないし6個のアルキレン基を示し、R154は水素原子又は炭素数1ないし6個のアルキル基を示す)を示し;rは0又は1を示し;p−C6H4−はp−フェニレン基を示し;Arはアリールジイル基を示し;R153はモノアルキルアミノ基又はジアルキルアミノ基を示す]で表される捕捉基。
上記の捕捉基は国際公開WO2010/026743に開示されている。
(式中、R161はベンゼン環上に存在する1個又は2個以上の電子吸引性置換基を示す)で表される捕捉基。
上記の捕捉基は国際公開WO2009/110487号公報に開示されている。
(式中、R171及びR172それぞれ独立にC1−4アルキル基又はアリール基を示し;R173は水素原子であるか、又はベンゼン環上に存在する1ないし3個の同一又は異なる一価の置換基を示す)で表される捕捉基。
上記の捕捉基は特許第4373608号公報及び国際公開WO2002/018362に開示されている。
(式中、R181、R182、R183はそれぞれ独立に水素原子、置換基を有していてもよいC1−6アルキル基、若しくは置換基を有していてもよいアリール基であるか、又はR181とR182とが結合してC1−3アルキレン基を示すか、若しくはR181とR183とが結合してC1−3アルキレン基を示し;Aは置換基を有していてもよいC1−3アルキレン基を示し;R184は水素原子であるか、又はベンゼン環上に存在する1ないし4個の同一又は異なる一価の置換基を示す)で表される捕捉基。
上記の捕捉基は国際公開WO2008/099914号公報及び国際公開WO2008059910号公報に開示されている。
(式中、R191、R192及びR193はそれぞれ独立にカルボキシ基及びその塩を示し;R194は水素原子であるか、又はベンゼン環上に存在する1ないし3個の同一又は異なる一価の置換基を示す)で表される捕捉基。
上記の捕捉基はAmerican Journal of Physiology,256,C540−548,1989に開示されている。
(式中、R195は水素原子であるか、又はベンゼン環上に存在する1ないし3個の同一又は異なる一価の置換基を示す)で表される捕捉基。
上記の捕捉基はBioorg.Med.Chem.Lett.,15,pp.1851−1855,2005に開示されている。
R1のうちの捕捉基又はR1が結合するベンゼン環とR1との組み合わせで形成される捕捉基が式(j−1)で表される捕捉基である場合(式中、R201、R202、R203及びR204はそれぞれ独立にカルボキシ基及びその塩を示し;R205、R206及びR207はそれぞれ独立に水素原子、ハロゲン原子(フッ素原子、塩素原子及び臭素原子)、C1−6アルキル基、又はニトロ基を示し;R208は水素原子であるか、又はベンゼン環上に存在する1ないし3個の同一又は異なる一価の置換基を示す)。これらの捕捉基は、例えば−CO−NH−などのスペーサーを介してベンゼン環に結合していてもよい。
(式中、R2〜R8及びXは、上記で定義した通りであり;
R201、R202、R203、及びR204が、カルボキシ基又はアルカノイルオキシアルキルオキシカルボニル基であり;
R205及びR206がそれぞれ独立に水素原子、C1−6アルキル基、ニトロ基、又はハロゲン原子を示す)
(1)R2、R3、R6、及びR7がそれぞれ独立に水素原子、フッ素原子、又は塩素原子であり、R4及びR5がそれぞれ独立にメチル基、エチル基などのC1−6アルキル基であり、R8が水素原子であり、R201、R202、R203、及びR204がカルボキシ基であり、R205及びR206がそれぞれ独立に水素原子、メチル基などのC1−6アルキル基、ニトロ基、又はフッ素原子である化合物;
(2)R2、R3、R6、及びR7がそれぞれ独立に水素原子、フッ素原子、又は塩素原子であり、R4及びR5がそれぞれ独立にメチル基、エチル基などのC1−6アルキル基であり、R8が水素原子、アセチル基などのアルカノイル基、又はアセトキシメチル基などのアルカノイルオキシアルキル基であり、R201、R202、R203、及びR204がアセトキシメチルオキシカルボニル基などのアルカノイルオキシアルキルオキシカルボニル基であり、R205及びR206がそれぞれ独立に水素原子、メチル基などのC1−6アルキル基、ニトロ基、又はフッ素原子である化合物;
などを挙げることができる。
Xは珪素原子、ゲルマニウム原子、又はスズ原子を示すが、珪素原子であることが好ましい。
本発明の一般式(I)の化合物は、下記の合成スキームの工程(a)及び(b)を含む方法により合成することができる。以下においては、本発明の一般式(Ib)の化合物を例にして説明するが、それ以外の化合物も同様の方法により合成することができる。
4−ブロモイソフタル酸を、DCC、DMAPと共にジクロルメタン等の溶媒中に加え撹拌し、そこにtBuOHを溶かしたジクロルメタンを加え室温で一晩程度攪拌することにより、4−ブロモイソフタル酸ジ−tert−ブチルを合成することができる。
乾燥させアルゴン置換したフラスコに、工程(a)で得た4−ブロモイソフタル酸ジ−tert−ブチルと脱水THFを加え、−78℃に冷却後、0.5〜0.7当量のsec−BuLiを滴下し、その直後(好ましくは、10秒〜30秒後)に一般式(II)で表される化合物を脱水THF5mLに溶解したものを加え、室温に戻す。室温で1時間攪拌後、HClなどの酸を加えて攪拌し、ジクロルメタン等の溶媒で抽出し、乾燥させたのちに残渣にTFA5mLを加え室温で1時間撹拌することにより、一般式(III)で表される化合物を合成することができる。
なお、一般式(II)で表される化合物は、国際公開WO2012/111817等を参照して合成することができる。
工程(b)で得られた一般式(III)で表される化合物、2当量の5−アミノBAPTA−テトラアセトキシメチルエステル、2.5当量のHATU、2.5当量のHOBt、をDMF等の溶媒に溶解させ、室温で一晩程度撹拌することにより、一般式(Ib)で表される化合物を得ることができる。
(1)ZnTM−1(5−[[[4−[[2−[ビス(2−ピリジニルメチル)アミノ]エチル]アミノ]フェニル]アミノ]カルボニル]−2−(1,8−ジフルオロ−2,9−ジヒドロ−7−ヒドロキシ−9,9−ジメチル−2−オキソ−9−シラアントラセン−10−イル)−安息香酸)の合成
以下のスキーム1に従って、Zn2+検出蛍光プローブZnTM−1を合成した。
1H-NMR (300 MHz, CDCl3): δ 1.59 (s, 9H), 1.62 (s, 9H), 7.66 (d, 1H, J = 8.1 Hz), 7.86 (dd, 2H, J = 8.1, 2.1 Hz), 8.24 (d, 1H, J = 2.1 Hz);
HRMS (ESI+): m/z Found 379.0552, calculated 379.0521 for [M+Na]+ (3.1 mmu).
1H-NMR (300 MHz, CD3COCD3): δ 0.69 (s, 3H), 0.82 (s, 3H), 6.81 (d, 2H, J = 8.8 Hz), 7.04 (dd, 2H, J = 10.3, 8.8 Hz), 7.32 (d, 1H, J = 8.1 Hz), 8.31 (dd, 1H, J = 8.1, 1.5 Hz), 8.47 (s, 1H)
HRMS (ESI+): m/z Found 455.0750, calculated 455.0763 for [M+H]+ (-1.3 mmu).
1H-NMR (300 MHz, CDCl3 ): δ 2.79 (d, 2H, J = 5.1 Hz), 3.29 (s, 3H), 3.93 (s, 4H), 4.54 (t, 1H, J = 5.1 Hz), 7.14 (t, 2H, J = 5.9 Hz), 7.56 (d, 2H, J = 8.1 Hz), 7.66 (td, 2H, J = 7.7, 1.5 Hz), 8.52 (d, 2H, J = 4.4 Hz);
13C-NMR (75 MHz, CDCl3): δ 53.5, 55.6, 60.9, 103.6, 121.9, 123.0, 136.3, 148.9, 159.7;
HRMS (ESI+): m/z Found 310.1490, calculated 310.1532 for [M+Na]+ (-4.2 mmu).
1H-NMR (400 MHz, CD3OD ): δ 2.73 (t, 2H, J = 4.8 Hz), 3.92 (d, 2H, J = 2.4 Hz), 4.65 (t, 1H, J = 4.8 Hz), 7.26 (dd, 2H, J = 6.4, 4.8 Hz), 7.63 (d, 2H, J = 8.0 Hz), 7.78 (td, 2H, J = 7.6, 1.6 Hz), 8.42 (d, 2H, J = 4.8 Hz)
13C-NMR (75 MHz, CD3OD): δ 60.4, 61.8, 98.4, 123.7, 124.9, 138.6, 149.3, 160.7
HRMS (ESI+): m/z Found 264.1094, calculated 264.1113 for [M-H2O+Na]+ (-1.9 mmu)
1H-NMR (300 MHz, CDCl3 ): δ 1.52 (s, 9H), 6.63 (d, 2H, J = 8.8 Hz), 7.13 (d, 2H, J = 8.8 Hz);
13C-NMR (75 MHz, CDCl3): δ 28.3, 79.9, 115.5, 120.9, 139.6, 142.3, 153.3;
HRMS (ESI+): m/z Found 209.1322, calculated 209.1290 for [M+H]+ (3.2 mmu).
1H-NMR (300 MHz, CD3OD ): 0.69 (s, 3H), 0.82 (s, 3H), 6.71 (d, 2H, J = 8.8 Hz), 6.90 (t, 2H, J = 9.2 Hz), 7.23-7.25 (m, 3H), 7.79 (d, 2H, J = 8.8 Hz), 8.20 (d, 1H, J = 8.1 Hz), 8.47 (s, 1H);
HRMS (ESI+): m/z Found 545.1382, calculated 545.1344 for [M+H]+ (3.8 mmu).
1H-NMR (400 MHz, acetone-d6 ): 0.69 (s, 3H), 0.82 (s, 3H), 3.47-3.62 (m, 4H), 4.63 (s, 4H), 6.67 (d, 2H, J = 8.8 Hz), 6.79 (d, 2H, J = 8.8 Hz), 7.05 (t, 2H, J = 9.3 Hz), 7.32 (d, 1H, J = 8.3 Hz), 7.44 (t, 2H, J = 6.1 Hz), 7.56 (d, 2H, J = 8.8 Hz), 7.65 (d, 2H, J = 7.3 Hz), 7.92 (td, 2H, J = 7.7, 2.1 Hz), 8.28 (d, 1H, J = 8.3 Hz), 8.45 (s, 1H), 8.62 (d, 2H, J = 3.4 Hz)
HRMS (ESI+): m/z Found 770.2591, calculated 770.2610 for [M+H]+ (-1.9 mmu).
得られたZnTM−1の光学特性、吸収、蛍光スペクトルのpHによる変化を図1に示す。また、ZnTM−1のZn2+添加時の吸収、蛍光スペクトルの変化を図2に示す。
pHによる変化の測定は15%DMSOを含む0.1Mリン酸ナトリウムバッファー中でZnTM−1(1μM)にて行った。
Zn2+の添加実験は15%DMSOを含む0.1MHEPESバッファー中(pH7.4)中にZnTM−1(1μM)を加えた溶液に、ZnSO4を添加することによって行った。
pKaは吸収極大波長の吸光度を用いて2相性のフィッティングによって求めた。Zn2+未添加時の量子収率の測定時には微量の金属イオンの影響を除外するためにEDTA(100μM)を加えて測定した。表1にZnTM−1の光学特性を示す。
ZnTM−1を用いて細胞イメージングを行った。1%のDMSOを含むハンクス平衡塩溶液(HBSS)中でHela細胞を10μMのZnTM−1とともに37℃で30分間インキュベーションした。HBSSで1回洗浄した後にHBSSを加えて落射蛍光顕微鏡IX−71(オリンパス)を用いて、励起波長565−585nm、蛍光波長600−690nmにて観察した。30秒おきに観察し、観察を開始してから2分30秒後にZnSO4(50μM)とイオノフォアであるピリチオン(pyrithione)(5μM)を加え、観察を開始してから6分後に細胞膜透過性の亜鉛キレーターであるTPEN(100μM)を加えた。
図3に細胞イメージングの結果を示す。また、図3の各細胞イメージング中での各ROIにおける平均蛍光強度を図4に示す。
図3及び4から、ZnTM−1は細胞内に取り込まれ、Zn2+検出蛍光プローブとして有効に機能することが確認された。
(1)CaTM−3−AM(5−[[[4−[ビス[2−[(アセチルオキシ)メトキシ]−2−オキソエチル]アミノ]−5−[2−[2−[ビス[2−[(アセチルオキシ)メトキシ]−2−オキソエチル]アミノ]フェノキシ]エトキシ]−フェニル]アミノ]カルボニル]−2−(1,8−ジクロロ−2,9−ジヒドロ−7−ヒドロキシ−9,9−ジメチル−2−オキソ−9−シラアントラセン−10−イル)−安息香酸)の合成
以下のスキーム2に従って、Ca2+検出蛍光プローブCaTM−3−AMを合成した。
1H-NMR (300 MHz, CD3OD): δ 0.91 (s, 6H), 6.87 (d, 2H, J = 8.8 Hz), 6.91 (d, 2H, J = 8.8 Hz), 7.05 (d, 1H, J = 8.1 Hz), 8.21 (dd, 1H, J = 8.1, 1.5 Hz), 8.49 (d, 1H, J = 1.5 Hz)
13C-NMR (100 MHz, CD3OD): δ -0.1, 0.5, 91.4, 119.7, 124.0, 124.9, 127.8, 128.0, 128.3, 133.5, 135.6, 135.9, 137.5, 154.4, 162.3, 167.7, 171.9
HRMS (ESI+): m/z Found 487.0210, calculated 487.0171 for [M+H]+ (3.9 mmu).
2,4−diCOOH DCTM(9.8mg、0.020mmol)、5−アミノBAPTA−テトラアセトキシメチルエステル(31.2mg、0.040mmol)、HATU(18.5mg、0.050mmol)、HOBt(7.7mg、0.050mmol)、をDMF(1mL)に溶解させ、室温で一晩撹拌した。溶媒を除去した後、HPLCで精製してCaTM−3−AM(8.6mg、0.0069mmol、収率34%)を得た。
1H-NMR (300 MHz, CD3OD): δ 0.84 (s, 3H), 1.00 (s, 3H), 2.00 (s, 6H), 2.02 (s, 6H), 4.17 (s, 8H), 4.30 (s, 4H), 5.58 (s, 4H), 5.59 (s, 4H), 6.83-7.09 (m, 9H), 7.08 (d, 1H, J = 8.1 Hz), 7.17 (dd, 1H, J = 8.8, 2.2 Hz), 7.46 (d, 1H, J = 2.2 Hz), 8.11 (dd, 1H, J = 8.1, 1.5 Hz), 8.44 (s, 1H);
HRMS (ESI+): m/z Found 1248.2420, calculated 1428.2451 for [M+H]+ (-3.1 mmu).
CaTM−3−AMを用いて生細胞Ca2+イメージングを行った。その有用性について検討するために、ベンゼン環の2位がカルボキシ基ではなくメチル基であるCaTM−2−AM(N−[2−[(アセチルオキシ)メトキシ]−2−オキソエチル]−N−[2−[2−[2−[ビス[2−[(アセチルオキシ)メトキシ]−2−オキソエチル]アミノ]−5−[[4−(1,8−ジクロロ−2,9−ジヒドロ−7−ヒドロキシ−9,9−ジメチル−2−オキソ−9−シラアントラセン−10−イル)−3−メチルベンゾイル]アミノ]フェノキシ]エトキシ]フェニル]−グリシン(アセチルオキシ)メチルエステル)と比較した。0.03%のDMSOを含むハンクス平衡塩溶液(HBSS)中でHela細胞を3μMのCaTM−2−AMまたはCaTM−3−AMとともに37℃で30分間インキュベーションした。HBSSで3回洗浄した後にHBSSを加えて共焦点顕微鏡SP5(Leica)で、励起波長590nm、蛍光波長610−680nmにて観察した。その結果を図5に示す。
図5から、ベンゼン環の2位がカルボキシ基を導入したCaTM−3−AMではCaTM−2−AMに比べてより明るい蛍光像が得られていることが分かる。このことから、CaTM−3−AMでは細胞内により多くの量の蛍光プローブが取り込まれていることが示される。
また、CaTM−3−AMを加えた細胞を用いてヒスタミンとイオノマイシンによる刺激時のCa2+イメージングを行った。観察を開始してから1分後にヒスタミン塩酸塩(1μM)を加え、観察を開始してから4分後にイオノマイシン(5μM)を加えた。その結果を図6に示す。また、図6中のa,b,cの各時点での蛍光像を図7に示す。図6及び7から、CaTM−3−AMを用いることにより、ヒスタミンとイオノマイシンによる刺激時の細胞内でのCa2+の変化を的確に捉えることができることが示される。
Claims (11)
- 下記の一般式(I):
(式中、R1はベンゼン環上に存在する1ないし4個の同一又は異なる一価の置換基(ただし該置換基のうちの少なくとも1個は測定対象物質に対する捕捉基として作用する置換基である)を示し;R2及びR3はそれぞれ独立に水素原子、炭素数1〜6個のアルキル基、又はハロゲン原子を示し;R4及びR5はそれぞれ独立に炭素数1〜6個のアルキル基又はアリール基を示し;R6及びR7はそれぞれ独立に水素原子、炭素数1〜6個のアルキル基、又はハロゲン原子を示し;R8は測定対象物質に対する捕捉基として作用する置換基、水素原子、アルキルカルボニル基、又はアルキルカルボニルオキシメチル基を示し;Xは珪素原子、ゲルマニウム原子、又はスズ原子を示す)で表される化合物又はその塩。 - Xが珪素原子又はゲルマニウム原子である請求項1に記載の化合物又はその塩。
- R1のうち捕捉基がプロトン、金属イオン、低酸素環境、又は活性酸素種を捕捉するための捕捉基である請求項1又は2に記載の化合物又はその塩。
- R1のうち捕捉基がカルシウムイオンを捕捉するための捕捉基である請求項1〜3のいずれか1項に記載の化合物又はその塩。
- R1のうちの捕捉基がスペーサーを介してベンゼン環に結合している請求項1〜4のいずれか1項に記載の化合物又はその塩。
- R8のうち捕捉基がプロトン、活性酸素種、糖加水分解酵素を捕捉するための捕捉基である請求項1〜7のいずれか1項に記載の化合物又はその塩。
- 請求項1〜8のいずれか1項に記載の化合物又はその塩を含む蛍光プローブ。
- 測定対象物質の測定方法であって、下記の工程:(a)請求項1〜8のいずれか1項に記載の化合物又はその塩と測定対象物質とを接触させる工程、及び(b)上記工程(a)で生成した測定対象物質の捕捉後の化合物の蛍光強度を測定する工程を含む方法。
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