JPWO2013129334A1 - 運動効果模倣作用剤並びにＡＭＰＫ及びＰＰＡＲδ共活性化剤 - Google Patents

Abstract

本発明は、運動効果模倣作用剤並びにＡＭＰＫ及びＰＰＡＲδの共活性化剤を提供することを目的とする。本発明は、マンゴスチン抽出物を含有する運動効果模倣作用剤並びにマンゴスチン抽出物を含有するＡＭＰＫ及びＰＰＡＲδ共活性化剤を提供する。

Description

本発明は、マンゴスチン抽出物及び／又はマンゴスチン由来の特定の化合物を含有する運動効果模倣作用剤並びにＡＭＰＫ及びＰＰＡＲδ共活性化剤に関する。

近年の高齢者人口の増加、運動不足や過剰な脂質摂取等にみられる生活習慣の変化による平均寿命と健康寿命の乖離が社会的な問題として顕在化しつつあり、その対策として、代謝機能改善作用や運動器機能改善作用が期待できる運動の重要性が再認識されてきている。

一方で、最近の研究により、ＡＭＰＫ（ＡＭＰ−ａｃｔｉｖａｔｅｄ ｐｒｏｔｅｉｎ ｋｉｎａｓｅ）がエネルギー代謝調節に極めて重要な役割を担っていることが明らかとなりつつある。ＡＭＰＫは、骨格筋運動のように細胞内ＡＭＰ／ＡＴＰ比が上昇するような状況下においてリン酸化されることにより活性化され、糖及び脂質の代謝を促進する。

更に近年：ＡＭＰＫ活性化により、運動持久力の向上がみられるが、ＰＰＡＲδ（ｐｅｒｏｘｉｓｏｍｅ ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｏｒ−ａｃｔｉｖａｔｅｄ ｒｅｃｅｐｔｅｒ ｄｅｌｔａ、ペルオキシソーム増殖剤応答性受容体）欠損細胞ではＡＭＰＫを活性化してもこのような効果が認められないこと；ＰＰＡＲδのみ活性化させても積極的に運動させない場合は持久力の向上が認められないこと；そしてＡＭＰＫの活性化をＰＰＡＲδの活性化と組み合わせることにより、運動持久力の向上など、運動時に認められる好ましい生体応答がもたらされることが報告された（例えば、特許文献１〜２及び非特許文献１参照）。

これまでにＡＭＰＫを活性化する化合物として、糖尿病治療薬のメトホルミンやＡＩＣＡＲ（５−ａｍｉｎｏｉｍｉｄａｚｏｌｅ−４−ｃａｒｂｏｘａｍｉｄｅ ｒｉｂｏｎｕｃｌｅｏｓｉｄｅ）等が知られている。また、天然由来の化合物として数種のポリフェノールがＡＭＰＫを活性化することが知られている（例えば、特許文献３及び非特許文献２参照）。

一方、ＰＰＡＲδを活性化する化合物としてはＧＷ５０１５１６が知られており、合成アゴニストとして基礎実験の場で用いられている。また、ある種のピロール誘導体がＰＰＡＲδアゴニスト活性を有することが知られている（例えば、特許文献４参照）。

しかし、現在までにＡＭＰＫとＰＰＡＲδを共に活性化する天然物由来の化合物及び組成物は知られていない。

マンゴスチン（Ｍａｎｇｏｓｔｅｅｎ、学名：Ｇａｒｃｉｎｉａ ｍａｎｇｏｓｔａｎａ Ｌ．）は、東南アジアを原産とするオトギリソウ科の植物である。マンゴスチンの果実又は果皮は伝統的に、赤痢や伝染性下痢症の治療薬、抗菌や寄生虫駆除、マラリア、尿路感染症、梅毒、淋病の治療薬などとして使用されている（例えば非特許文献３参照）。また、５α−レダクターゼ阻害剤（例えば特許文献５参照）、美白・抗炎症作用（例えば特許文献６参照）及びＩκＢキナーゼ阻害剤（例えば特許文献７参照）としての利用法も知られている。更に、マンゴスチン中の１成分であるα−マンゴスチンをマウスに投与した場合に、体重及び体重に対する体脂肪量が低下し、体重に対する除脂肪体重及び特定の筋群の割合が増加し、運動時における持久力が向上したことが報告されている（例えば特許文献８参照）。

また、マンゴスチンジュースの製造工程において搾汁残渣や果皮が多量に発生するが、通常はほとんどが廃棄されている。搾汁残渣や果皮は、腐敗しやすく、公害防止の観点からも処理策が求められている。

特表２０１０−５１４８０４号公報 特表２０１１−５０７９７０号公報 特開２００７−３１４４４６号公報 特開２００３−１７１２７５号公報 特開平５−１７３６５号公報 特開平４−２４４００４号公報 特開２０１０−１９５８３１号公報 特表２００９−５３６１６７号公報

Ｃｅｌｌ，ｖｏｌ．１３４，ｐ４０５−４１５，２００８ Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．ｖｏｌ．３８８，ｐ３７７−３８２，２００９ Ｆｏｏｄ ａｎｄ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｔｏｘｉｃｏｌｏｇｙ ２００８ Ｖｏｌ．４６ ３２２７−３２３９

以上のとおり、現在までにＡＭＰＫとＰＰＡＲδを共に活性化する天然物由来の化合物及び組成物は知られていない。単一の天然物由来の抽出物又は組成物が、ＡＭＰＫとＰＰＡＲδを共に活性化する場合、複数素材の摂取による意図しない副作用の発症などが起こりにくいため、安全性を確保しやすく、安心して長期に亘って服用できる作用剤を提供することができると考えられる。

また、骨格筋重量の増加、脂肪蓄積抑制、熱産生促進、筋肉分化促進、運動持久力向上、筋萎縮抑制等、本来運動を行った時に認められる好ましい生体応答を、運動を行うことなく、又はより少ない運動で得ることができる、安全性の高い作用剤（運動効果模倣作用剤）は、例えば運動の出来ない高齢者の筋力低下による寝たきり患者の防止、骨折等の入院患者の筋力低下の防止、宇宙（低重力）空間における筋力低下の防止、遺伝的疾患による筋力低下（例えば筋ジストロフィー）の抑制、少ない運動でより効率よく基礎代謝量を向上させることによるダイエットなど、様々な分野において、利用できる可能性がある。

以上のような背景のもと、本発明は、ＡＭＰＫ及びＰＰＡＲδを共に活性化することができる、安全性の高い共活性化剤を提供することを目的とする。本発明はまた、本来運動を行った時に認められる好ましい生体応答を、運動を行うことなく、又はより少ない運動で得ることができる、安全性及び効果の高い運動効果模倣作用剤を提供することも目的とする。更に、本発明は、上記の剤を、安価に提供すること、及び継続摂取に好適な形態で提供することも目的とする。

上記の課題を解決するために、本発明者は鋭意研究を重ね、マンゴスチン由来の抽出物及び該抽出物中に含まれる特定の化合物が、ＡＭＰＫ及びＰＰＡＲδを共に活性化する作用を有することを見出した。また、マンゴスチン由来の抽出物をラットに投与すると、本来運動を行った時に認められる好ましい生体応答を、運動を行うことなく得ることができることも見出した。更に、上記の作用を有するマンゴスチン抽出物をマンゴスチンの果皮等からも簡便に得ることができること、及びマンゴスチン抽出物を配合した飲食品が、継続摂取に好適な呈味の飲食品なることも見出し、本発明を完成させた。

本発明者による前記の知見に基づく本発明は、以下のとおりである。
［１］
マンゴスチン抽出物を含有する運動効果模倣作用剤。
［２］
マンゴスチン抽出物を含有するＡＭＰＫ及びＰＰＡＲδ共活性化剤。
［３］
脂肪蓄積抑制剤、熱産生促進剤、筋肉分化促進剤、運動持久力向上剤又は筋萎縮抑制剤である、［１］に記載の作用剤。
［４］
マンゴスチン抽出物が、下記式（Ｉ）
（式中、
Ｒ^１及びＲ^４は、互いに独立してＣ_１〜Ｃ_５−アルキル又はアルケニルであり；
Ｒ^２及びＲ^３は、互いに独立してヒドロキシ又はＣ_１〜Ｃ_６−アルコキシであり；
ここで、Ｒ^１とＲ^２は、互いに結合して、環原子として、炭素原子に加えて酸素原子を含む５〜８員環を形成してもよい。）
で表される化合物を含有する、［１］〜［３］のいずれかに記載の剤。
［５］
マンゴスチン抽出物が、α−マンゴスチン、γ−マンゴスチン及び３−イソマンゴスチンからなる群から選択される１以上の化合物を含有する、［１］〜［４］のいずれかに記載の剤。
［６］
［１］〜［５］のいずれかに記載の剤を配合した飲食品であって、マンゴスチン抽出物の含有量が、０．００１〜１０重量％である飲食品。
［７］
［５］に記載の剤を配合した飲食品であって、
０．００１〜５０重量％のα−マンゴスチンを含有し；かつ
０．０００１〜５０重量％のγ−マンゴスチンを含有する；
飲食品。
［８］
果汁、野菜ジュース、トマト加工飲料、ミックスジュース又は豆乳である、［６］又は［７］に記載の飲食品。
［９］
γ−マンゴスチンを含有する運動効果模倣作用剤。
［１０］
α−マンゴスチン及びγ−マンゴスチンを含有する運動効果模倣作用剤。
［１１］
γ−マンゴスチンを含有するＡＭＰＫ及びＰＰＡＲδ共活性化剤。
［１２］
α−マンゴスチンを含有するＡＭＰＫ及びＰＰＡＲδ共活性化剤。
［１３］
３−イソマンゴスチンを含有するＰＰＡＲδ活性化剤。

［１４］
マンゴスチン抽出物の含有量が、０．００１〜１００重量％である、［１］〜［５］のいずれかに記載の剤。
［１５］
マンゴスチン抽出物が、β−マンゴスチン、ガルタニン及び８−デオキシガルタニンからなる群から選択される１以上の化合物を更に含む、［５］に記載の剤。
［１６］
マンゴスチン抽出物が、マンゴスチン果皮抽出物を含む、［１］〜［５］のいずれかに記載の剤。
［１７］
マンゴスチンの果実、果汁、濃縮果汁、搾汁残渣、果皮及びこれらの乾燥物からなる群から選択される１以上の原料を、エタノール溶媒を用いて抽出する工程を含む、マンゴスチン抽出物を含む、運動効果模倣作用剤又はＡＭＰＫ及びＰＰＡＲδ共活性化剤の製造方法。

［１８］
マンゴスチン抽出物の有効量を対象に投与する工程を含む、運動効果模倣作用を発揮させる方法。
［１９］
マンゴスチン抽出物の有効量を対象に投与する工程を含む、ＡＭＰＫ及びＰＰＡＲδ共活性化方法。
［２０］
運動効果模倣作用が、脂肪蓄積抑制、熱産生促進、筋肉分化促進、運動持久力向上又は筋萎縮抑制である、［１８］に記載の方法。
［２１］
γ−マンゴスチンの有効量を対象に投与する工程を含む、運動効果模倣作用を発揮させる方法。
［２２］
α−マンゴスチン及びγ−マンゴスチンの有効量を対象に投与する工程を含む、運動効果模倣作用を発揮させる方法。
［２３］
γ−マンゴスチンの有効量を対象に投与する工程を含む、ＡＭＰＫ及びＰＰＡＲδ共活性化方法。
［２４］
α−マンゴスチンの有効量を対象に投与する工程を含む、ＡＭＰＫ及びＰＰＡＲδ共活性化方法。
［２５］
３−イソマンゴスチンの有効量を対象に投与する工程を含む、ＰＰＡＲδ活性化方法。

本発明によれば、ＡＭＰＫ及びＰＰＡＲδを共に活性化することができ、安全性の高い共活性化剤を提供することができる。更に、本発明によれば、本来運動を行った時に認められる好ましい生体応答を、運動を行うことなく、又はより少ない運動で得ることができる、安全性及び効果の高い運動効果模倣作用剤を提供することもできる。本発明の剤の有効成分は、マンゴスチンから得ることができる成分であり、安全に摂取することができる。また、本発明によれば、上記の剤を、継続摂取に好適な呈味の飲食品として提供することもできる。更に、本発明によれば、効果の高い上記の剤を、マンゴスチンの果皮等より容易に効率よく得ることができるため、廃棄物の有効利用が可能である。

α−マンゴスチン、γ−マンゴスチン又はマンゴスチン抽出物による、Ｃ２Ｃ１２細胞におけるリン酸化されたＡＭＰＫ（ｐ−ＡＭＰＫ、活性化型）の亢進を示す（実施例２）。 マンゴスチン抽出物による、腓腹筋における熱産生に関わる遺伝子発現の上昇を示す（実施例５）。 マンゴスチン抽出物による、腓腹筋における筋肉分化に関わる遺伝子発現の上昇を示す（実施例５）。 α−マンゴスチンによる、Ｃ２Ｃ１２細胞における筋肉分化に関わる遺伝子発現の上昇を示す（実施例６）。 マンゴスチン抽出物又はＢＣＡＡ（ポジティブコントロール）を含む飼料を与えたマウスにおける、運動持久力の測定結果を示す（実施例８）。 マンゴスチン抽出物又はＢＣＡＡ（ポジティブコントロール）を含む飼料を与えたマウスにおける、廃用性筋萎縮率の測定結果を示す（実施例１０）。 マンゴスチン抽出物による、廃用性筋萎縮に関わる遺伝子（Ａｔｒｏｇｉｎ−１）発現の抑制を示す（実施例１１）。 マンゴスチン抽出物による、廃用性筋萎縮に関わる遺伝子（ＭｕＲＦ−１）発現の抑制を示す（実施例１１）。

以下、本発明を実施するための形態について詳細に説明する。なお、本発明は以下の実施の形態に限定されるものではなく、その要旨の範囲内で種々変形して実施することができる。

本発明は、運動効果模倣作用剤；ＡＭＰＫ及びＰＰＡＲδ共活性化剤；脂肪蓄積抑制剤；熱産生促進剤；筋肉分化促進剤；運動持久力向上剤；筋萎縮抑制剤；ＡＭＰＫ活性化剤；ＰＰＡＲα活性化剤；ＰＰＡＲδ活性化剤；並びにＰＰＡＲα及びＰＰＡＲδ共活性化剤に関する。以下、これらを単に「本発明の剤」ともいう。

一態様において、本発明の剤は、マンゴスチン抽出物を有効成分として含有する。

上記のマンゴスチン抽出物は、マンゴスチン果実、果汁、濃縮果汁、搾汁残渣、果皮及び／又はこれらの乾燥物から選ばれる１種又は２種以上の原料（以下、単に「マンゴスチン原料」と略記する場合がある）を極性溶媒で抽出した処理物である（以下、極性溶媒を用いた抽出処理をして得られる処理物を単に「マンゴスチン抽出物」と略記する場合がある）。マンゴスチンには、キサントン類と総称される約４０種類のポリフェノールが含まれることが知られており、上記のマンゴスチン抽出物は、これらのキサントン類を高濃度で含有すると考えられる。

マンゴスチン原料は、特に限定されず、マンゴスチン果実や果皮等の固形分を含んでいてもよく、マンゴスチン果実や果皮等の固形分をろ過により除去した溶液であってもよい。

マンゴスチンジュースなどに用いるマンゴスチンの搾汁液は、マンゴスチン果実を洗浄し、果皮を除き、破砕したのち、これを搾汁して得られる。この搾汁の過程において、搾汁残渣や果皮が発生する。搾汁残渣や果皮（特に果皮）にはキサントン類が豊富に含まれている。上記搾汁残渣や果皮は、一般的に廃棄されるか、家畜飼料となるが、この搾汁残渣や果皮を用いれば、廃棄原料を有効利用でき、しかも高濃度のキサントン類を含む組成物を容易に効率よく得ることができるため、廃棄原料の有効利用の観点から好ましい。一態様において、本発明の剤におけるマンゴスチン抽出物は、マンゴスチン果皮抽出物であることが好ましい。

マンゴスチン原料の極性溶媒を用いた抽出の温度は、０℃〜極性溶媒の沸点程度であり、通常は常温で行う。例えば、極性溶媒としてエタノールを使用する場合、抽出効率の観点から、０℃以上５５℃未満が好ましく、５℃以上４０℃以下がより好ましい。作業容易性の観点から、室温程度の２５℃前後で抽出を行うことが特に好ましい。例えば、極性溶媒として水を使用する場合、抽出効率の観点から、０℃以上１００℃以下が好ましく、２５℃以上１００℃以下がより好ましい。

抽出時間は、１分〜２４時間が好ましいが、これより長時間抽出を行ってもよい。抽出は、静置、攪拌のいずれの手法を用いてもよい。極性溶媒の濃度によっても異なるが、マンゴスチン原料（乾燥品換算）に１〜５０倍量、好ましくは２〜２０倍量程度の極性溶媒を加え抽出することによって、マンゴスチン抽出物を得ることができる。抽出効率を高めるため、マンゴスチン原料は乾燥品であってもよい。

極性溶媒としては、食品添加物の抽出溶剤となり得る極性溶媒であれば特に限定されず、例えば、アセトン、エタノール、エチルメチルケトン、グリセリン、酢酸エチル、酢酸メチル、ジエチルエーテル、シクロヘキサン、ジクロロメタン、食用油脂、１，１，１，２−テトラフルオロエタン、１，１，２−トリクロロエテン、１−ブタノール、２−ブタノール、１−プロパノール、２−プロパノール、プロピレングリコール、ヘキサン、水、メタノール等から選択される１又は複数の有機溶媒を用いることができる。
これらのうち好ましくは、エタノール（１０体積％以上１００体積％以下）、メタノール（１０体積％以上９９．５体積％未満）、１−ブタノール（３０体積％以上９９．５体積％未満）、ヘキサン（５体積％７０体積％未満）及び水から選択される有機溶媒を用いることができ、より好ましくは、エタノール又は水を用いることができ、最も好ましくはエタノールを用いることができる。

例えば、極性溶媒として、１０体積％以上１００体積％以下のエタノール溶媒を用いることができ、好ましくは５０体積％以上１００体積％以下のエタノール溶媒を用いることができ、より好ましくは７０体積％程度のエタノール溶媒用いることができる。なお、７０体積％のエタノール溶媒とは、水とエタノールの体積比３：７の混合物を指す。

一態様において、本発明の剤に含まれるマンゴスチン抽出物は、上記のとおり、マンゴスチンの有機溶媒抽出物であることが好ましく、マンゴスチンのアルコール抽出物であることがより好ましく、マンゴスチンのエタノール抽出物であることが特に好ましい。

本発明におけるマンゴスチン抽出物は、溶液状やピューレ状であってもよく、適当な濃度まで減圧濃縮又は膜濃縮することによって濃厚な液状組成物とすることも可能である。マンゴスチン抽出物を乾燥させて得られる固形物であってもよい。例えば、乾燥物は、溶液状抽出物をドラム式乾燥、噴霧乾燥又は凍結乾燥等公知の手法を用いて乾燥させて、得ることができる。乾燥物とすることにより保存安定性に優れたマンゴスチン抽出物となる。

上記のマンゴスチン抽出物は、精製度によっても多少異なるが、特異的な味及び臭いが少ないことから、比較的広範な濃度で本発明の剤に添加することができる。

本発明におけるマンゴスチン抽出物は、乾燥重量換算でキサントン類（好ましくは、α−マンゴスチン、γ−マンゴスチン及び３−イソマンゴスチンからなる群から選択されるキサントン類）を０．０１重量％以上含有することが望ましく、０．１重量％以上含有することが好ましく、０．５重量％以上含有することがより好ましく、１重量％以上含有することが更に好ましい。キサントン類は、４０種類以上が知られるが、その中でも含有量の多いα−マンゴスチン、β−マンゴスチン、γ−マンゴスチン、ガルタニン、８−デオキシガルタニン及び３−イソマンゴスチンの総量をキサントン類の総量として規定することができる。これらのキサントン類はいずれも抗酸化力を有すると考えられる。
マンゴスチン抽出物中のキサントン類は、当業者に公知の手法を用いて分析することができ、例えば後述の実施例１に記載の手法を参照して高速液体クロマトグラフを用いて分析することができる。

本発明の好ましい態様において、マンゴスチン抽出物は、下記式（Ｉ）で表される化合物を含有する。本発明の剤の有効成分となることができる。例えば、式（Ｉ）で表される化合物は、ＰＰＡＲδ活性化剤の有効成分となることができる。

式（Ｉ）中、
Ｒ^１及びＲ^４は、互いに独立して、Ｃ_１〜Ｃ_６−アルキル又はアルケニルであり、好ましくは、Ｃ_１〜Ｃ_５−アルキル又はアルケニルであり、より好ましくは、Ｃ_１〜Ｃ_５−アルケニルであり、更に好ましくはＣ_５−アルケニルであり、例えば、−ＣＨ_２−ＣＨ＝Ｃ（ＣＨ_３）_２であり；
Ｒ^２及びＲ^３は、互いに独立してヒドロキシ又はＣ_１〜Ｃ_６−アルコキシであり、好ましくは、ヒドロキシ又はメトキシであり；
ここで、Ｒ^１とＲ^２は、互いに結合して、環原子として、炭素原子に加えて酸素原子を含む５〜８員環（好ましくは５又は６員環）を形成してもよく、該５〜８員環は、置換基を有してもよく、好ましくは、酸素原子を含む６員環を形成してもよい。

一態様において、上記式（Ｉ）で表される化合物は、下記式（ＩＩ）で表される化合物であり、式（ＩＩ）中、Ｒ^３及びＲ^４は、上記式（Ｉ）について定義したとおりである。

マンゴスチン抽出物に含まれるキサントン類のうち、α−マンゴスチンは、上記式（Ｉ）中、Ｒ^１及びＲ^４が−ＣＨ_２−ＣＨ＝Ｃ（ＣＨ_３）_２であり、Ｒ^２がＯＨであり、Ｒ^３が−Ｏ−ＣＨ_３で表される化合物である。γ−マンゴスチンは、上記式（Ｉ）中、Ｒ^１及びＲ^４が−ＣＨ_２−ＣＨ＝Ｃ（ＣＨ_３）_２であり、Ｒ^２及びＲ^３がＯＨで表される化合物である。３−イソマンゴスチンは、上記式（ＩＩ）中、Ｒ^３が−Ｏ−ＣＨ_３であり、Ｒ^４が−ＣＨ_２−ＣＨ＝Ｃ（ＣＨ_３）_２で表される化合物である。

本発明者らは、上記式（Ｉ）で表される化合物が本発明の剤の有効成分となることを見出し、特に、後述の実施例に記載のとおり、α−マンゴスチン及びγ−マンゴスチンはいずれもそれぞれ単独で本発明の剤（特にＡＭＰＫ及びＰＰＡＲδ共同時活性化剤）の有効成分となることを見出し、α−マンゴスチン、γ−マンゴスチン及び３−イソマンゴスチンはいずれもそれぞれ単独で本発明の剤（特にＰＰＡＲδ活性化剤）の有効成分となることを見出し、特にγ−マンゴスチンは非常に高いＰＰＡＲδ活性化作用を有することを見出している。よって、本発明の一態様において、より高い所望の効果を得るという観点から、本発明の剤又は本発明の剤が含有するマンゴスチン抽出物は、上記式（Ｉ）で表される化合物を含有することが好ましく、α−マンゴスチン、γ−マンゴスチン及び３−イソマンゴスチンからなる群から選択される１以上の化合物を含有することがより好ましく、α−マンゴスチン、γ−マンゴスチン及び３−イソマンゴスチンからなる群から選択される２以上の化合物を含有することが更に好ましく、α−マンゴスチン、γ−マンゴスチン及び３−イソマンゴスチンをいずれも含有することが特に好ましい。

一態様において、本発明の剤又は本発明の剤が含有するマンゴスチン抽出物は、所望の効果を発揮するという観点から：α−マンゴスチンを、好ましくは０．００１重量％以上１００重量％以下、より好ましくは０．０１重量％以上１００重量％以下；γ−マンゴスチンを、好ましくは０．０００１重量％以上１００重量％以下、より好ましくは０．０１重量％以上１００重量％以下；並びに／或いは３−イソマンゴスチンを、好ましくは０．００１重量％以上１００重量％以下、より好ましくは０．０１重量％以上１００重量％以下；含有する。本発明の剤を例えば飲食品に配合する場合、例えば、α−マンゴスチンであれば０．０００１重量％以上、γ−マンゴスチンであれば０．００００１重量％以上、３−イソマンゴスチンであれば０．０００１重量％以上含有する飲食品とすることが望ましく、例えば、０．００１〜５０重量％のα−マンゴスチンを含有し；かつ０．０００１〜５０重量％のγ−マンゴスチンを含有する飲食品とすることができる。長期間に亘って健康維持の目的で摂取する場合には、上記範囲より少量であってもよい。

一態様において、本発明の剤が含有するマンゴスチン抽出物は、α−マンゴスチン及びγ−マンゴスチンを、１：０．０１〜１：１００の比で含むことが好ましく、１：０．１〜１：１０の比で含むことがより好ましく、１：０．１〜１：１の比（例えば１：０．２程度）で含むことが更に好ましい。

一態様において、本発明の剤が含有するマンゴスチン抽出物は、α−マンゴスチン、γ−マンゴスチン及び３−イソマンゴスチンからなる群から選択される１以上の化合物を含み、更に、β−マンゴスチン、ガルタニン及び８−デオキシガルタニンからなる群から選択される１以上の化合物を含む。

一態様において、本発明は、運動効果模倣作用剤を提供する。本明細書において、「運動効果模倣作用剤」とは、本来運動を行った時に認められる好ましい生体応答、例えば、脂肪蓄積抑制、熱産生促進、筋肉分化促進、骨格筋重量の増加、運動持久力の向上、骨格筋繊維組成の変化、エネルギー代謝亢進、基礎代謝量の増加、運動器の機能改善、筋萎縮の抑制などを、運動を行うことなく提供するか、又はより少ない運動でより多くの運動で得られるのと同等に提供する作用剤を指す。このような運動効果模倣作用剤としての作用は、例えば後述の実施例４、８及び１０に記載のとおり、ｉｎ ｖｉｖｏで上記の生体応答の１以上が得られるか調べることで確認することができる。また、例えば後述の実施例５、６及び１１に記載のとおり、ｉｎ ｖｉｖｏ又はｉｎ ｖｉｔｒｏで上記の生体応答に関与する遺伝子の発現量を変化させるか調べることでも確認することができる。

一態様において、本発明の運動効果模倣作用剤は、脂肪蓄積抑制剤、熱産生促進剤、筋肉分化促進剤、骨格筋重量増加剤、運動持久力向上剤、骨格筋繊維組成変化剤、エネルギー代謝亢進剤、基礎代謝量増加剤、運動器の機能改善剤又は筋萎縮抑制剤であってもよい。好ましくは、本発明の運動効果模倣作用剤は、熱産生促進剤、筋肉分化促進剤、運動持久力向上剤又は筋萎縮抑制剤であることができる。これらの剤としての作用は、ｉｎ ｖｉｖｏでそれぞれの剤に対応する生体応答が得られるか調べることで確認することができるし、ｉｎ ｖｉｖｏ又はｉｎ ｖｉｔｒｏでそれぞれの剤に対応する生体応答に関与する遺伝子の発現量を変化させるか調べることでも確認することができる。例えば、「熱産生促進剤」としての作用は、後述の実施例５に記載のとおり、熱産生に関わる遺伝子である、ＵＣＰ２及びＵＣＰ３等の発現量が増加するかを調べることで確認することができる。また、「筋肉分化促進剤」としての作用は、例えば後述の実施例５及び６に記載のとおり、筋肉分化に関わる遺伝子である、ＭｙｏＤ、Ｍｙｆ５、Ｍｙｏｇｅｎｉｎ及びＭＲＦ４等の発現量が増加するかを調べることで確認することができる。さらに、「筋萎縮抑制剤」としての作用は、例えば後述の実施例１１に記載のとおり、筋萎縮に関わる遺伝子である、Ａｔｒｏｇｉｎ−１及びＭｕＲＦ−１等の発現量が低下するかを調べることで確認することができる。

本明細書において、「脂肪蓄積抑制剤」とは、新たな脂肪の蓄積を抑制する作用剤のみならず、既に存在する脂肪を減少させる作用剤も指す。「運動持久力向上剤」とは、走行可能時間の延長を可能とする等の運動パフォーマンスの向上を可能とする作用剤を指す。「筋萎縮抑制剤」とは、筋肉量の減少を遅らせる又は予防する作用剤を指す。

一態様において、本発明は、ＡＭＰＫ活性化剤及びＰＰＡＲδ共活性化剤、ＡＭＰＫ活性化剤、ＰＰＡＲα活性化剤、ＰＰＡＲδ活性化剤並びにＰＰＡＲα及びＰＰＡＲδ共活性化剤を提供する。

ＡＭＰＫは、エネルギー代謝調節に極めて重要な役割を担っており、骨格筋運動のように細胞内ＡＭＰ／ＡＴＰ比が上昇するような状況下においてリン酸化されることにより活性化され、糖及び脂質の代謝を促進することが知られる。また、ＰＰＡＲδを有する細胞では、ＡＭＰＫ活性化により運動持久力が向上することが報告されている（非特許文献１等）。したがって、ＡＭＰＫ活性化剤は、上記の効果を発揮する作用剤として用い得る。ＡＭＰＫ活性化剤としての作用は、例えば後述の実施例２を参照して確認することができる。本発明者らは、後述の実施例１で得られたマンゴスチン抽出物（α−マンゴスチン及びγ−マンゴスチンを含む）、α−マンゴスチン及びγ−マンゴスチンが、ＡＭＰＫ活性化剤として作用することを確認している。

ＰＰＡＲは、現在α、γ及びδ（β）の３つのサブタイプが報告されている。ＰＰＡＲ−αは、ペルオキシゾームの増生を通じて血中トリグリセリド濃度の低下を導く。また、脂質代謝関連遺伝子を主な標的遺伝子とするため、高脂血症改善薬開発の標的となっている。したがって、ＰＰＡＲα活性化剤は、上記の効果を発揮する作用剤として用い得る。本発明者らは、後述の実施例１で得られたマンゴスチン抽出物（α−マンゴスチン及びγ−マンゴスチンを含む）が、ＰＰＡＲα活性化剤として作用すること並びにＰＰＡＲα及びＰＰＡＲδ共活性化剤として作用することを確認している。
また、ＰＰＡＲδは、多くの臓器で発現しており、骨格筋代謝の転写調節における役割等がしてきされている。また、ＰＰＡＲδ活性化と運動を組み合わせることで、持久力が向上することが報告されている（非特許文献１等）。したがって、ＰＰＡＲδ活性化剤は、上記の効果を発揮する作用剤として用い得る。本発明者らは、後述の実施例１で得られたマンゴスチン抽出物、α−マンゴスチン、γ−マンゴスチン及び３−イソマンゴスチンが、ＰＰＡＲδ活性化剤として作用することを確認している。
ＰＰＡＲα活性化剤及びＰＰＡＲδ活性化剤としての作用は、例えば後述の実施例３を参照して確認することができる。

ＡＭＰＫの活性化をＰＰＡＲδの活性化と組み合わせることにより、運動持久力の向上など、運動時に認められる好ましい生体応答がもたらされることが報告されているため（非特許文献１）、これらを共に活性化させるＡＭＰＫ及びＰＰＡＲδ共活性化剤は、上記の効果を発揮する作用剤としても用い得る。本発明者らは、後述の実施例１で得られたマンゴスチン抽出物、α−マンゴスチン及びγ−マンゴスチンが、ＡＭＰＫ及びＰＰＡＲδ共活性化剤として作用することを確認している。なお、本明細書中において「ＡＭＰＫ及びＰＰＡＲδ共活性化剤」とは、ＡＭＰＫ活性化作用とＰＰＡＲδ活性化作用をいずれも有する作用剤を指す。同様に、本明細書中において、「ＰＰＡＲα及びＰＰＡＲδ共活性化剤」とは、ＰＰＡＲα活性化作用とＰＰＡＲδ活性化作用をいずれも有する作用剤を指す。また、本明細書中において、「ＡＭＰＫ活性化剤」とは、ＡＭＰＫ活性化用の剤を意味する。他の活性化剤についても同様である。

本発明の剤は、そのまま、ヒトを含む動物等に投与することができるほか、試薬としても利用することができる。また、飲食品、医薬組成物等の素材として、これらに配合して摂取することができる。

上記の飲食品は好ましくは、特定保健用食品、栄養機能食品、健康食品、機能性食品、健康補助食品等である。本発明の剤は、更に食品添加物、例えば、甘味料、着色料、保存料、増粘安定剤、酸化防止剤、苦味料、酸味料、乳化剤、強化剤、製造用剤及び香料などとともに、清涼飲料水等の飲料や他の食品に配合して利用することもできる。

上記の飲食品は、運動効果模倣作用、脂肪蓄積抑制作用、熱産生促進作用、筋肉分化促進作用、骨格筋重量増加作用、運動持久力向上作用、骨格筋繊維組成変化作用、エネルギー代謝亢進作用、基礎代謝量増加作用、運動器の機能改善作用、筋萎縮抑制作用等の作用を有し得るため、これらの作用を有する旨の表示を付した飲食品とすることもできる。

飲食品の好ましい形態としては、飴、ゼリー、錠菓、飲料、スープ、麺、煎餅、和菓子、冷菓、焼き菓子等の食品や飲料が挙げられ、好ましくは、果汁飲料、野菜ジュース、果物野菜ジュース、茶飲料、コーヒー飲料、スポーツドリンク等の容器詰飲料が挙げられる。

また、本発明の剤が有効成分としてマンゴスチン抽出物、α−マンゴスチン、γ−マンゴスチン及び３−イソマンゴスチンのいずれか１以上を含む場合、これらはいずれも特異的な味及び臭いが少ないことから、本発明の剤を、果汁、野菜ジュース、トマト加工飲料、ミックスジュース、豆乳等の飲食品に配合した場合であっても、各飲食品の本来の風味が損なわれることがないばかりか、後述の実施例１３に記載のとおり、これらの飲食品（特に青臭さを有する飲料）の風味や嗜好性を改善する。近年、野菜不足の解消、栄養補給、健康維持、美容などの目的で飲用されているこれらの飲食品は、独特の青臭さ、野菜臭さ、苦味を有するため、飲用に抵抗を持つ人も多いが、本発明の剤を配合することで、風味や嗜好性が改善され、継続摂取に好適な呈味の飲食品となる。したがって、一態様において、本発明の剤は、青臭さを有する飲料に配合することができ、好ましくは果汁、野菜ジュース、トマト加工飲料、ミックスジュース又は豆乳に配合することができ、より好ましくは、野菜ジュース、トマト加工飲料又は豆乳に配合することができる。

また、近年多く発売されるようになったアミノ酸入り飲料は、筋肉疲労軽減やスタミナ維持、代謝亢進などの健康維持を目的として飲用されている。しかし、イソロイシン、ロイシン、バリン、セリン、アスパラギン、グルタミン、アルギニン、リジン、システイン、メチオニン、フェニルアラニン、トリプトファン、ヒスチジン、プロリン等多くのＬ型アミノ酸が、濃度によっては苦味を有することが分かっている。一方、後述の実施例８及び１０に示すように、マンゴスチン抽出物は、ＢＣＡＡ（分岐鎖アミノ酸であるロイシン、イソロイシン及びバリンの組合せ）と同等又はそれ以上の、運動持久力向上作用、脂肪蓄積抑制作用、筋肉量増加作用及び筋萎縮抑制作用を有する。したがって、アミノ酸入り飲料の代替としてマンゴスチン抽出物を含有する本発明の剤を摂取することができる。また、アミノ酸との相加・相乗効果を期待して、アミノ酸入り飲料にマンゴスチン抽出物を含有する本発明の剤を添加することもできる。

例えば、マンゴスチン抽出物を飲料に添加して本発明の剤を配合した飲食品とする場合、マンゴスチン抽出物は、精製度によっても多少異なるが、味や臭いに特異な厭味が少ないことから、比較的広範な濃度で添加することができ、例えば、飲料１，０００ｍＬ当り、乾燥物換算で、好ましくは１０ｍｇ〜２５，０００ｍｇ、より好ましくは１００ｍｇ〜１０，０００ｍｇ添加することができる。

本発明の剤がマンゴスチン抽出物を含み、本発明の剤を飲食品に配合した場合、その摂取量は、用途に応じて適宜調整することができるが、マンゴスチン抽出物の乾燥物換算で、好ましくは１回１０ｍｇ〜２５，０００ｍｇ、より好ましくは１回１００ｍｇ〜１０，０００ｍｇ、更に好ましくは１回１００ｍｇ〜１，０００ｍｇとすることができる。摂取回数は、特に限定されないが、好ましくは１日１〜３回であり、必要に応じて摂取回数を増減してもよい。

本発明の剤を医薬組成物に配合する場合、薬学的に許容可能な賦形剤等とともに公知の手法で製剤化して用いることができる。そのような医薬組成物としては、粉末、顆粒、錠剤等の固形剤、液体、ペースト等の液剤等、公知の剤型のものが挙げられる。医薬組成物は、錠剤、カプセル剤、顆粒剤、細粒剤、散剤、液剤、シロップ剤、チュアブル、トローチ等の経口剤、液剤、軟膏等の塗布剤、湿布剤、貼付剤、注射剤、舌下剤、吸入剤、点眼剤、坐剤等の剤形として用いることができる。本発明の剤を配合しても風味が損なわれないという観点から、医薬組成物を経口剤とすることが好ましい。

本発明の剤がマンゴスチン抽出物を含み、本発明の剤を医薬組成物に配合した場合、その投与量は、個々の薬剤の活性、患者の症状、年齢、体重等の種々の条件により適宜調整することができるが、例えば、マンゴスチン抽出物乾燥物換算で、好ましくは１回１０ｍｇ〜２５，０００ｍｇ、より好ましくは１回１００ｍｇ〜１０，０００ｍｇ、更に好ましくは１回１００ｍｇ〜１，０００ｍｇである。同様に、本発明の剤がα−マンゴスチンを含む医薬組成物である場合、その投与量は、α−マンゴスチン換算で、例えば１回０．１ｍｇ〜２５ｍｇ、好ましくは１回１ｍｇ〜１０ｍｇである。投与回数は、特に限定されないが、好ましくは１日１〜３回であり、必要に応じて投与回数を増減してもよい。本発明の剤は上記の作用を有するため、これを配合した医薬組成物は、上記の本発明の剤の作用が治療又は予防に関連し得る疾患の治療又は予防に用いることができる。そのような疾患としては、例えば、筋力分化促進作用や骨格筋重量増加作用等が治療又は予防に関連し得る、筋ジストロフィー、腰痛、筋萎縮性側索硬化症（ＡＬＳ）及び脊髄性筋萎縮症（ＳＭＡ）等が挙げられる。したがって、本発明は、これらの疾患の治療又は予防方法も提供することができる。

本発明の剤は、運動効果模倣作用、脂肪蓄積抑制作用、熱産生促進作用、筋肉分化促進作用、骨格筋重量増加作用、運動持久力向上作用、骨格筋繊維組成変化作用、エネルギー代謝亢進作用、基礎代謝量増加作用、運動器の機能改善作用、筋萎縮抑制作用等の作用を有し得るため、上記の作用を期待して、動物、中でも哺乳類（イヌ、ネコ、ウシ、ウマなどが挙げられる）に対して使用してもよい。上記の作用を有する本発明の剤は、例えば運動の出来ない高齢者の筋力低下による寝たきり患者の防止、骨折等の入院患者の筋力低下の防止、宇宙（低重力）空間における筋力低下の防止、遺伝的疾患による筋力低下（例えば筋ジストロフィー）の抑制、少ない運動でより効率よく基礎代謝量を向上させることによるダイエットなど、様々な分野において、利用できる可能性がある。

本発明は、また：マンゴスチン抽出物の有効量を対象に投与する工程を含む、運動効果模倣作用を発揮させる方法；マンゴスチン抽出物の有効量を対象に投与する工程を含む、ＡＭＰＫ及びＰＰＡＲδ共活性化方法；γ−マンゴスチンの有効量を対象に投与する工程を含む、運動効果模倣作用を発揮させる方法；α−マンゴスチン及びγ−マンゴスチンの有効量を対象に投与する工程を含む、運動効果模倣作用を発揮させる方法；γ−マンゴスチンの有効量を対象に投与する工程を含む、ＡＭＰＫ及びＰＰＡＲδ共活性化方法；α−マンゴスチンの有効量を対象に投与する工程を含む、ＡＭＰＫ及びＰＰＡＲδ共活性化方法；並びに３−イソマンゴスチンの有効量を対象に投与する工程を含む、ＰＰＡＲδ活性化方法も提供する。これらの方法は、具体的には、上記の本発明の剤に関する記載を参照して行うことができる。

［実施例］
以下、本発明を実施例及び比較例により具体的に説明するが、本発明は、これらの実施例に何ら限定されるものではない。

（１−１）マンゴスチン抽出物１の調製：
タイ産マンゴスチン（Ｇａｒｃｉｎｉａ ｍａｎｇｏｓｔａｎａ）の果実６，０３４ｇから果肉部を２，０３７ｇ採取し、凍結乾燥し、粉砕し、果肉部粉末３６８ｇを得た。この果肉部粉末３６８ｇを２０倍量の１００％エタノールを用いて室温で２時間攪拌し、抽出した。抽出液を濃縮後、凍結乾燥することによりマンゴスチン抽出物１を６０ｇ得た。

（１−２）マンゴスチン抽出物１の分析：
（１−１）で得られたマンゴスチン抽出物１を１０μｇ／ｍＬの濃度でＤＭＳＯに溶解した試料溶液をフィルター（０．４５μｍ）で濾過し、逆相系カラム（Ｃａｐｃｅｌｌ Ｐａｋ Ｃ１８、４．６ｍｍ×２５０ｍｍ、資生堂社製）を装着した高速液体クロマトグラフ（型式６００、Ｗａｔｅｒｓ社製）を用いて分析した。移動相Ａ液は０．１％ギ酸を含有した蒸留水、Ｂ液は０．１％ギ酸を含有したアセトニトリル溶液とし、試料注入量は１０μＬ、検出はフォトダイオードアレイ検出器（型式２９９６、Ｗａｔｅｒｓ社製）により行った。表１に示す化合物の標準物質との比較により、マンゴスチン抽出物１に含まれる化合物を分析した。分析結果を表１に示す。

（１−３）マンゴスチン抽出物１の分析結果：
表１から、（１−１）で得られたマンゴスチン抽出物１は、１００重量部に対し、α−マンゴスチン０．７５重量部、γ−マンゴスチン０．２５重量部及び３−イソマンゴスチン０．０１重量部を含むことが明らかになった。

（２−１）ＡＭＰＫリン酸化の測定方法
Ｃ２Ｃ１２細胞（マウス由来筋芽細胞、ＤＳファーマバイオメディカル社製）を、１０％ＦＢＳを添加したダルベッコ変法イーグル培地（ＤＭＥＭ）を用い、５％ ＣＯ_２インキュベーター内、３７℃で培養した。６０ｍＬ ｄｉｓｈ ｐｌａｔｅに５×１０^４ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌで細胞を播種し、コンフルエントに達した後に２％ＨＳ（Ｈｏｒｓｅ Ｓｅｒｕｍ）を添加したＤＭＥＭ（分化誘導培地）に交換し、筋管への分化誘導を行った。分化誘導３日後に筋管が形成されていることを確認し、無血清のＤＭＥＭに培地交換した。約１６時間後に、サンプル（それぞれＤＭＳＯに溶解させた、実施例１で得たマンゴスチン抽出物１ １００μｇ／ｍＬ、α−マンゴスチン０．７５μｇ／ｍＬ又はγ−マンゴスチン０．２５μｇ／ｍＬ）を添加したＤＭＥＭに交換した。

３０分培養した後、細胞を回収し、以下の手順によりウェスタンブロット用のサンプルを調製した。
細胞を氷冷したＰＢＳで洗浄した後、７００μＬ／ｗｅｌｌのＰＢＳを加え、氷上でセルスクレイパーを用いて細胞を１．５ｍＬチューブに回収した。５，０００ｒｐｍ、４℃で５分間遠心し、上清を吸引した。ペレットにｌｙｓｉｓ ｂｕｆｆｅｒ（１×ＰＢＳ、１％ ＮＰ−４０、０．２５％ｓｏｄｉｕｍ ｄｅｏｘｙｃｈｏｌａｔｅ、０．１％ ＳＤＳ、１ ｍＭ ＰＭＳＦ、１×ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ ｃｏｃｋｔａｉｌ：Ｓｉｇｍａ社製）を５０μＬ加えてボルテックスし、氷上で３０分静置した後、１５，０００ｒｐｍ、４℃で５分間遠心し、上清を回収した。これにＳＤＳ ｓａｍｐｌｅ ｂｕｆｆｅｒ（終濃度 ０．０５Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、１％ ＳＤＳ、１０％ ｇｌｙｃｅｒｏｌ、０．１％ ＢＰＢ、 ０．１Ｍ ＤＴＴ）を加え９５℃、３分間処理したものをＳＤＳ−ＰＡＧＥに供するサンプルとした。

サンプルは７．５％のアクリルアミドゲルにて泳動後ブロッティングを行い、５％ ＢＳＡ−ＰＢＳＴ溶液により室温で６０分間ブロッキングを行った。その後、１次抗体（ａｎｔｉ−ＡＭＰＫ、ａｎｔｉ−ｐｈｏｓｐｈｏ ＡＭＰＫ（Ｔｈｒ１７２）、ａｎｔｉ−ＡＣＣ及びａｎｔｉ−ｐｈｏｓｐｈｏ ＡＣＣ；いずれもＣｅｌｌ ｓｉｇｎａｌｉｎｇ ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ社製）を各々１０００倍に希釈し、４℃で一晩抗体反応を行った。１次抗体反応後、ＰＢＳ−Ｔにてメンブレンを３回洗浄し、２次抗体（ａｎｔｉ−ｒａｂｂｉｔ ＩｇＧ ＨＲＰ ｃｏｎｊｕｇａｔｅ；Ｓｉｇｍａ社製）を５，０００倍に希釈し、室温で１時間抗体反応を行った。２次抗体反応後、ＰＢＳ−Ｔにてメンブレンを３回洗浄し、ＨＲＰ発光基質（Ｉｍｍｏｂｉｌｏｎ社製）と反応させＩｍａｇｅ Ｇａｕｇｅ（Ｆｕｊｉｆｉｌｍ社製）により検出を行った。

（２−２）ＡＭＰＫリン酸化の測定結果
総ＡＭＰＫ（ｔ−ＡＭＰＫ）及びリン酸化されたＡＭＰＫ（ｐ−ＡＭＰＫ）を検出したバンドを図１に示す。Ｃｏｎｔｒｏｌには、サンプルのかわりにｖｅｈｉｃｌｅのＤＭＳＯで同様に処理したものを用いた。
図１から、実施例１で得られたマンゴスチン抽出物１はＡＭＰＫ活性化能を有することが明らかになった。また、マンゴスチン抽出物１に含まれるα−マンゴスチン及びγ−マンゴスチンは、それぞれ単独でＡＭＰＫ活性化能を有することが明らかになった。なお、α−マンゴスチンとγ−マンゴスチンのＡＭＰＫ活性化能は同程度であった。抽出物に含まれるα−マンゴスチン又はγ−マンゴスチン単独よりも、これらをいずれも含むマンゴスチン抽出物１の方が、ＡＭＰＫ活性化能が高く、α−マンゴスチンとγ−マンゴスチンによる相加効果よりも高いＡＭＰＫ活性化能を有すると考えられた。

（３−１）ＰＰＡＲ活性化の測定方法
ヒト胎児腎細胞株（ＨＥＫ２９３、ＡＴＣＣ）を、１０％ＦＢＳを添加したＤＭＥＭを用い、５％ ＣＯ２インキュベーター内、３７℃で培養した。２４ｗｅｌｌ ｐｌａｔｅに５×１０^４ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌで細胞を播種し、１日培養した。Ｇａｌ４のＤＮＡ結合ドメイン（Ｇａｌ−４ＤＢＤ）及びＰＰＡＲα（又はγもしくはδ）のリガンド結合ドメイン（ＰＰＡＲ−ＬＢＤ）のキメラタンパク発現プラスミド（ｐＧａｌ４ＤＢＤ／ＰＰＡＲ ＬＢＤ）、Ｇａｌ４応答配列及びホタルルシフェラーゼ遺伝子を含むプラスミド（ｐＧ５−Ｌｕｃ）、並びにウミシイタケルシフェラーゼ遺伝子の上流にＣＭＶプロモーターを連結したコントロールプラスミド（ｐＲＬ−ＣＭＶ）（いずれもＰｒｏｍｅｇａ社からのプラスミド）を、同時に、各々０．０５μｇ、０．０７５μｇ及び０．０２５μｇ／ｗｅｌｌとなるように、トランスフェクション試薬（Ｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ２０００ Ｒｅａｇｅｎｔ；Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）０．７５μＬ／ｗｅｌｌを加えたＯＰＴＩ−ＭＥＭ（ＧＩＢＣＯ社製）２５０μＬ／ｗｅｌｌに加え、前記の培地を交換し、プラスミドを導入した。４時間後、各ｗｅｌｌに、１０％ＦＢＳを添加したＤＭＥＭを２５０μＬ／ｗｅｌｌずつ加えた。その１日後、サンプル（ＤＭＳＯに溶解させた実施例１で得られたマンゴスチン抽出物１：２、４、１０、４０又は１００μｇ／ｗｅｌｌ；ＤＭＳＯに溶解させたα-マンゴスチン：０．０１５、０．０３、０．０７５、０．３又は０．７５μｇ／ｍＬ；ＤＭＳＯに溶解させたγ-マンゴスチン：０．００５、０．０１、０．０２５、０．１又は０．２５μｇ／ｍＬ；或いはＤＭＳＯに溶解させた３−イソマンゴスチン：０．１、０．５又は１μｇ／ｍＬのいずれか）及び１０％ＦＢＳを添加したＤＭＥＭに交換し、１日培養した。
その後、Ｐａｓｓｉｖｅ ｌｙｓｉｓ ｂｕｆｆｅｒ（Ｐｒｏｍｅｇａ社製）で細胞を溶解し、デュアルルシフェラーゼアッセイシステム（Ｐｒｏｍｅｇａ社製）を用いて、ホタルルシフェラーゼ及びウミシイタケルシフェラーゼ活性を各々測定した。ＰＰＡＲδ依存的な遺伝子の転写活性（ルシフェラーゼ活性）は以下のように定義した：
ＰＰＡＲδ依存的な遺伝子の転写活性（ルシフェラーゼ活性）＝（ｐＧ５−Ｌｕｃによるホタルルシフェラーゼ活性）／（ｐＲＬ−ＣＭＶによるウミシイタケルシフェラーゼ活性）

（３−２）ＰＰＡＲ活性化の測定結果
マンゴスチン抽出物１のＰＰＡＲα（又はγ若しくはδ）の活性化能を表２に示す。表２の値は、コントロール（サンプルの代わりにＤＭＳＯを添加したもの）におけるＰＰＡＲα（若しくはγ又はδ）依存的転写活性を１００とし、それに対する相対値を示す。＊＊はコントロール群に対する各群のＴ検定による危険率１％の有意差を示す。表２より、実施例１で得たマンゴスチン抽出物１がＰＰＡＲα又はδ活性化に有効であることが明らかになった。実施例１で得たマンゴスチン抽出物１は、ＰＰＡＲα活性化作用及びＰＰＡＲδ活性化作用を有するが、ＰＰＡＲγ活性化作用は有しておらず、ＰＰＡＲα及びＰＰＡＲδに対する特異性が高いことが明らかになった。

表３に、様々な濃度のマンゴスチン抽出物１、α−マンゴスチン、γ−マンゴスチン及び３−イソマンゴスチンのＰＰＡＲδ活性化能を示す。表３より、実施例１で得たマンゴスチン抽出物１のみならず、α−マンゴスチン、γ−マンゴスチン及び３−イソマンゴスチンは、いずれもＰＰＡＲδ活性化能を有することが明らかになった。特に、γ−マンゴスチンは、低濃度でもＰＰＡＲδ活性化能を示し、ＰＰＡＲδ活性化能が高いことが明らかになった。マンゴスチン抽出物１のＰＰＡＲδ活性化能については、抽出物中に存在するα−マンゴスチンよりも、γ−マンゴスチンの寄与が大きいと考えられた。

以上のように、マンゴスチン抽出物は、ＰＰＡＲα及びＰＰＡＲδ活性化作用を有する。よって、ＰＰＡＲα活性化作用により、脂肪酸代謝の活性化、高トリグリセリド血症の予防・改善、高コレステロール血症の予防・改善、脂肪肝の予防・改善に有効である可能性が考えられ、また、ＰＰＡＲδ活性化作用により、脂肪酸代謝の活性化、体脂肪の燃焼促進、肥満の予防・改善、基礎代謝の向上に有効であり得ると考えられ、これに伴いインスリン抵抗性や糖尿病の予防・改善、動脈硬化の予防・改善にも有効であり得ると考えられた。

更に、実施例２及び３の結果から、マンゴスチン抽出物、α−マンゴスチン及びγ−マンゴスチンは、いずれもＰＰＡＲδ活性化作用と共にＡＭＰＫ活性化作用を有することが明らかになった。

（４−１）脂肪蓄積抑制作用の測定方法
５週齢の雄のＫＫＡｙマウス（日本クレア株式会社）１６匹を、１週間の予備飼育をした後、２群に分けた（１群８匹）。ＫＫＡｙマウスは、２型糖尿病モデルマウスであり、高脂肪食下で、肥満、インスリン抵抗性及び高脂血症をおこすマウスである。試料として、実施例１で得られたマンゴスチン抽出物１を乾燥物換算で５重量％含む飼料を与える群と、マンゴスチン抽出物を含まない対照飼料を与える群（コントロール）とに分けて４週間、自由摂取により給餌をした。その後、皮下脂肪組織、精巣上体脂肪組織、腸間膜脂肪組織、腎周囲脂肪組織及び腓腹筋を採取し、それぞれについて、脂肪組織重量及び筋肉組織重量を測定後、各個体の体重で割り、体重当たりの各組織量を測定し、両群で比較した。その他、肝臓も採取した。

（４−２）脂肪蓄積抑制作用の測定結果
各組織重量を体重で割って算出した、全体重における各組織の割合を表４に示す。また、精巣上体脂肪組織、腸間膜脂肪組織及び腎周囲脂肪組織の和を腹腔内脂肪重量合計として、これに更に皮下脂肪を足したものを脂肪組織重量合計として、表４に示す。表４中、＊はコントロール群に対する各群のＴ検定による危険率５％の有意差を示す。表４から、マンゴスチン抽出物を投与した場合、全体重に対する脂肪組織の割合が減少することが明らかになり、マンゴスチン抽出物は脂肪蓄積に対する抑制効果を有すると考えられた。なお、肝臓重量についてはコントロールとマンゴスチン抽出物投与群とで優位差が確認されなかったが、肝臓中の脂肪量が減少し、肝臓重量が若干減少したと考えられた。

（４−３）筋肉量増加作用の測定結果
腓腹筋重量を体重で割って算出した、全体重における腓腹筋の割合を表４に示す。表４から、マンゴスチン抽出物を投与した場合、遺伝的に肥満になるＫＫＡｙマウスにおいて、全体重に対する腓腹筋（骨格筋）重量の割合の増加が認められた。積極的な運動をすることなく、マンゴスチン抽出物は筋肉量に対する増加作用を有すると考えられた。なお、マンゴスチン抽出物を投与した場合、脂肪組織重量が減少する一方、筋肉量が増加し、コントロール群と体重差が生じなかったと考えられた。

（５−１）腓腹筋（骨格筋）における、熱産生又は筋肉分化に関わる遺伝子発現の測定方法
上記の実施例４で採取した腓腹筋における、熱産生に関わる遺伝子であるＵＣＰ２及びＵＣＰ３並びに筋肉分化に関わる遺伝子であるＭｙｏＤ、Ｍｙｆ５、Ｍｙｏｇｅｎｉｎ及びＭＲＦ４の遺伝子発現を、リアルタイム定量ＰＣＲ法によって測定した。
腓腹筋約０．１ｇを１，０００μＬのＴＲＩＺＯＬ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）内で破砕した。その後、クロロホルムを２００μＬ加え、攪拌した。遠心分離後、上清を取り、等量の２−イソプロパノールを加え、攪拌した。遠心分離後、上清を捨て、７０％エタノールを加え、攪拌した。遠心分離後、上清を捨て、再び７０％エタノールを加え、攪拌した。その後、遠心分離し、上清を捨て、自然乾燥させ、ＲＮＡを得た。ＰｒｉｍｅＳｃｒｉｐｔ ＲＴ ｒｅａｇｅｎｔ ｋｉｔ（Ｔａｋａｒａ社製）を用い、製品に添付のプロトコールに従い逆転写反応を行い、ｃＤＮＡを得た。得られたｃＤＮＡを用い、ＳＹＢＲ Ｐｒｅｍｉｘ Ｅｘ Ｔａｑ（Ｔａｋａｒａ社製）及びＭＸ３００５Ｐ Ｒｅａｌ Ｔｉｍｅ ＱＰＣＲ Ｓｙｓｔｅｍ（Ａｇｉｌｅｎｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ社製）によりリアルタイム定量ＰＣＲを行った。使用したプライマー配列は以下のとおりである。

ＧＡＰＤＨフォワード：
５’−ＴＧＡＣＡＴＣＡＡＧＡＡＧＧＴＧＧＴＧＡ−３’（配列番号１）
ＧＡＰＤＨリバース：
５’−ＣＣＴＧＴＴＧＣＴＧＴＡＧＣＣＧＴＡＴＴ−３’（配列番号２）
ＵＣＰ２フォワード：
５’−ＡＣＡＧＡＴＧＴＧＧＴＡＡＡＧＧＴＣＣＧ−３’（配列番号３）
ＵＣＰ２リバース：
５’−ＣＡＧＴＴＧＡＣＡＡＴＧＧＣＡＴＴＡＣＧ−３’（配列番号４）
ＵＣＰ３フォワード：
５’−ＴＴＴＧＧＡＧＣＴＧＧＣＴＴＣＴＧＴＧ−３’（配列番号５）
ＵＣＰ３リバース：
５’−ＡＡＧＧＣＣＣＴＣＴＴＣＡＧＴＴＧＣＴＣ−３’（配列番号６）
ＭｙｏＤフォワード：
５’−ＧＡＣＣＴＧＣＧＣＴＴＴＴＴＴＧＡＧＧＡＣＣ−３’（配列番号７）
ＭｙｏＤリバース：
５’−ＣＡＧＧＣＣＣＡＣＡＧＣＡＡＧＣＡＧＣＧＡＣ−３’（配列番号８）
Ｍｙｆ５フォワード：
５’−ＡＧＧＡＡＡＡＧＡＡＧＣＣＣＴＧＡＡＧＣ−３’（配列番号９）
Ｍｙｆ５リバース：
５’−ＧＣＡＡＡＡＡＧＡＡＣＡＧＧＣＡＧＡＧＧ−３’（配列番号１０）
Ｍｙｏｇｅｎｉｎフォワード：
５’−ＡＣＴＣＴＴＣＧＣＣＣＣＣＧＴ−３’（配列番号１１）
Ｍｙｏｇｅｎｉｎリバース：
５’−ＣＣＧＣＣＣＴＧＣＣＡＣＴＣＡＴ−３’（配列番号１２）
ＭＲＦ４フォワード：
５’−ＣＴＡＣＡＴＴＧＡＧＣＧＴＣＴＡＣＡＧＧＡＣＣ−３’（配列番号１３）
ＭＲＦ４リバース：
５’−ＣＴＧＡＡＧＡＣＴＧＣＴＧＧＡＧＧＣＴＧ−３’（配列番号１４）

（５−２）腓腹筋（骨格筋）における、熱産生又は筋肉分化に関わる遺伝子発現の測定結果
熱産生に関わる遺伝子であるＵＣＰ２及びＵＣＰ３の遺伝子発現をリアルタイムＰＣＲで測定した結果を、コントロールの値を１とした相対値で図２に示した。また、筋肉分化に関わる遺伝子であるＭｙｏＤ、Ｍｙｆ５、Ｍｙｏｇｅｎｉｎ及びＭＲＦ４の遺伝子発現をリアルタイムＰＣＲで測定した結果を、コントロールの値を１とした相対値で図３に示した。図２及び３中、＊はコントロール群に対する各群のＴ検定による危険率５％での有意差を示す。

図２から、マンゴスチン抽出物を投与した群で、熱産生に関わる遺伝子であるＵＣＰ２及びＵＣＰ３の遺伝子発現がいずれも上昇していることが明らかになった。
また、図３から、マンゴスチン抽出物を投与した群で、筋肉分化に関わる遺伝子であるＭｙｏＤの遺伝子発現が上昇傾向を示し、Ｍｙｆ５の遺伝子発現が上昇していることが明らかになった。
これらの結果から、マンゴスチン抽出物を摂取することで、積極的に運動することなく、筋肉分化が促進されると共に、筋肉における熱産生が増大することが示唆された。

（６−１）α−マンゴスチンによる筋肉分化促進効果の測定方法
６ｗｅｌｌ ｐｌａｔｅにＣ２Ｃ１２細胞（実施例１で用いたものと同様のマウス由来筋芽細胞）を播種し、１０％ＦＢＳを添加したＤＭＥＭ２ｍＬにて、コンフルエントになるまで培養した。その後、α−マンゴスチンを１０μＭ含む、２％ＨＳを添加したＤＭＥＭ２ｍＬの分化誘導培地にて分化を誘導した。対照として、ＤＭＳＯを培地に加えた細胞を培養した。
分化誘導３日後、培地を全て取り除き、ＴＲＩＺＯＬ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）を１ｍＬ加え、細胞を回収した。その後、実施例５と同様の手法を用いて、ＲＮＡの抽出、逆転写反応、ＰＣＲ等を行い、筋肉分化に関わる遺伝子であるＭｙｏＤ、Ｍｙｆ５、Ｍｙｏｇｅｎｉｎ及びＭＲＦ４の遺伝子発現をリアルタイムＰＣＲで測定した。なお、プライマーも実施例４と同一のものを使用した。

（６−２）α−マンゴスチンによる筋肉分化促進効果の測定結果
筋肉分化に関わる遺伝子であるＭｙｏＤ、Ｍｙｆ５、Ｍｙｏｇｅｎｉｎ及びＭＲＦ４の遺伝子発現をリアルタイムＰＣＲで測定した結果を、コントロールの値を１とした相対値で図４に示した。図４中、＊はコントロール群に対する各群のＴ検定による危険率５％での有意差を示す。
図４から、α−マンゴスチンを添加して筋芽細胞を培養及び分化させるとことで、筋肉分化に関わる遺伝子であるＭｙｆ５及びＭＲＦ４の遺伝子発現が上昇することが明らかになった。また、目視にて、明らかな筋管形成の促進が観察された。これらのことから、α−マンゴスチンは筋肉分化促進効果が確認された。

マンゴスチン抽出物２（マンゴスチン果皮抽出物）の調製：
タイ産マンゴスチンの果実１１，８２４ｇから果皮を８，２１０ｇ採取し、凍結乾燥した後、粉砕し、果皮粉末２，７０１ｇを得た。この果皮部粉末５００ｇを１０倍量の７０％エタノールを用いて室温で２時間攪拌し、抽出した。抽出液を濃縮後、凍結乾燥することによりマンゴスチン抽出物２を２２４．９６ｇ得た。このマンゴスチン抽出物２について、実施例（１−２）と同様の手法を用いてγ−マンゴスチン及びα−マンゴスチンの含有量を分析した結果を表５に示す。果皮由来のマンゴスチン抽出物２には、果肉部由来のマンゴスチン抽出物１よりも高濃度のキサントン類が含まれていた。

（８―１）運動持久力向上作用の測定方法：
３週齢の雄ＩＣＲマウス（日本クレア株式会社）６０匹について、１週間の予備飼育及び表６の条件でのトレッドミル走行への馴化を行った。トレッドミルはＫＮ−７３（夏目製作所社製）を用いた。馴化期間終了後、表７のプログラムにて運動できなくなるまでの時間を測定することで、運動持久力評価を行った。６０匹の運動持久力を評価し、走行時間について上下２５%に該当する個体を除外し、運動持久力及び体重にて３群に分けた（１群１０匹）。

飼料として：実施例７で得られたマンゴスチン抽出物２を乾燥物換算で０．５重量％含む飼料（α−マンゴスチン０．０５重量％及びγ−マンゴスチン０．０１重量％を飼料中に含む）を与える群；ＢＣＡＡ（ロイシン：イソロイシン：バリンを２：１：１の比率で調製したもの）を乾燥物換算で５重量％含む飼料を与える群（ポジティブコントロール）；並びにマンゴスチン抽出物及びＢＣＡＡをいずれも含まない対照飼料を与える群（コントロール）；に分けて、８週間、自由摂取により給餌した。
動物の運動持久力測定は２週に１度実施し、測定を行った後に１週間の回復期間を設け、次回の測定を行った。また、測定の間の期間（回復期間）はマウスのトレッドミル馴化性維持のため、２日に１回の頻度で、１５ｍ／分で３０分間走行させた。

（８−２）運動持久力の測定結果：
０週間後、６週間後及び８週間後に最大走行時間を測定した結果を、図５に示した。６週目、８週目の測定では各回共にマンゴスチン群、及びポジティブコントロールのＢＣＡＡ群で走行可能時間が再現良く延長しており、マンゴスチンは運動持久力を増加させることが示唆された。

（８−３）脂肪蓄積抑制作用及び筋肉量増加作用の測定方法
上記（８−１）の８週間の試験後、肝臓、皮下脂肪組織、精巣上体脂肪組織、腸間膜脂肪組織、腎周囲脂肪組織、腓腹筋、ヒラメ筋、大腿筋及び脛骨筋を採取し、それぞれについて、脂肪組織重量及び筋肉組織重量を測定後、各個体の体重で割り、体重当たりの各組織量を測定し、各群で比較した。

（８−４）脂肪蓄積抑制作用の測定結果
各組織重量を体重で割って算出した、体重当たりの各組織の割合を表８に示す。マンゴスチン抽出物を投与した場合、体重当たりの脂肪組織の割合が減少することが明らかになり、その効果はマンゴスチン抽出物の１０倍量投与したＢＣＡＡ群と同等又はそれ以上であった。適度な運動を行った場合において、マンゴスチン抽出物は脂肪蓄積に対する抑制作用を有すると考えられた。

（８−５）筋肉量増加作用の測定結果
各筋肉重量を体重で割って算出した、体重当たりの各筋肉の割合を表８に示す。表８から、マンゴスチン抽出物を投与した場合、腓腹筋、ヒラメ筋、大腿筋及び脛骨筋のいずれも、体重あたりの割合の増加が認められた。その効果はマンゴスチン抽出物の１０倍量投与したＢＣＡＡ群と同等又はそれ以上であった。適度な運動を行った場合において、マンゴスチン抽出物は筋肉量に対する増加作用を有すると考えられた。

マンゴスチン抽出物３（マンゴスチン果皮抽出物）の調製：
新たに購入したタイ産マンゴスチンの果実から果皮を採取し、凍結乾燥した後、粉砕し、果皮粉末を得た。この果皮部粉末１，０００ｇを１０倍量の７０％エタノールを用いて室温で２時間攪拌し、抽出した。抽出液を濃縮後、凍結乾燥することによりマンゴスチン抽出物３（マンゴスチン果皮抽出物）を２８８．６３ｇ得た。このマンゴスチン抽出物３について、実施例（１−２）と同様の手法を用いてγ−マンゴスチン及びα−マンゴスチンの含有量を分析した結果を表９に示す。果皮由来のマンゴスチン抽出物３には、果肉部由来のマンゴスチン抽出物１よりも高濃度のキサントン類が含まれていた。

（１０―１）廃用性筋萎縮抑制作用の測定方法
３週齢の雄のＣ５７／ＢＬマウス（日本クレア株式会社）３０匹を、１週間の予備飼育をした後、３群に分けた（１群１０匹）。飼料として：実施例９で得られたマンゴスチン抽出物３を乾燥物換算で０．３重量％含む飼料（α―マンゴスチン０．０５重量％、γ−マンゴスチン０．０１重量％飼料中に含む）を与える群；ＢＣＡＡ（ロイシン：イソロイシン：バリンが２：１：１の比率で調製したもの）を乾燥物換算で５重量％含む飼料を与える群（ポジティブコントロール）；並びにマンゴスチン果皮抽出物及びＢＣＡＡをいずれも含まない対照飼料を与える群（コントロール）；とに分けて、３週間、自由摂取により給餌した。
３週間後、廃用性筋萎縮を誘導する坐骨神経切除を行った。Ｃ５７／ＢＬマウスをペントバルビタール腹腔投与で麻酔し、消炎鎮痛剤（メタカム（登録商標））を皮下投与した。両後肢の臀部を切開し、左後肢の坐骨神経を切除し、右後肢はコントロールとして無処置とした。縫合後、ヨードチンキで消毒し、３７℃の保温シート上で回復させてケージに戻し、通常通り飼育を行った。施術後５日間廃用性筋萎縮を誘導し、骨格筋重量を測定した。筋萎縮の程度は右足の筋重量に対する左足の筋重量で評価した。

（１０―２）廃用性筋萎縮抑制作用の測定結果
各骨格筋における筋萎縮の割合を、右肢の筋重量に対する左肢の筋重量で算出した結果を図６に示す。コントロールの各骨格筋において、右肢（偽手術）に対する左肢（神経切除）の筋重量が小さいことから、廃用性筋萎縮の誘導が確実に起こっていることが分かる。マンゴスチン抽出物を投与した場合、ヒラメ筋及び脛骨筋の萎縮が低減され、ＢＣＡＡ（ポジティブコントロール）を投与した場合、ヒラメ筋及び脛骨筋の萎縮が低減された。マンゴスチン抽出物は、廃用性筋萎縮抑制作用を有すると考えられた。

（１１―１）廃用性筋萎縮に関わる遺伝子発現の測定方法
３週齢の雄のＩＣＲマウス（日本クレア株式会社）３０匹を１週間の予備飼育をした後、３群に分けた（１群１０匹）。飼料として：実施例９で得られたマンゴスチン抽出物３を乾燥物換算で０．３重量％含む飼料（α―マンゴスチン０．０５重量％、γ−マンゴスチン０．０１重量％飼料中に含む）を与える群；ＢＣＡＡ（ロイシン：イソロイシン：バリンが２：１：１の比率で調製したもの）を乾燥物換算で５重量％含む飼料を与える群；並びにマンゴスチン果皮抽出物及びＢＣＡＡをいずれも含まない対照飼料を与える群（コントロール）；に分けて、３週間、自由摂取により給餌した。上記（１０−１）と同様に、廃用性筋萎縮を誘導する坐骨神経切除を行った。施術後５日間廃用性筋萎縮を誘導し、腓腹筋を採取し、筋萎縮に関わる遺伝子であるＡｔｒｏｇｉｎ−１及びＭｕＲＦ−１の遺伝子発現を、リアルタイム定量ＰＣＲ法によって測定した。使用したプライマー配列は以下のとおりである。

Ａｔｒｏｇｉｎ−１フォワード：
５’−ＡＣＣＴＧＣＣＴＧＴＧＴＧＣＴＴＡＣＡＡ−３’（配列番号１５）
Ａｔｒｏｇｉｎ−１リバース：
５’−ＴＣＴＣＴＴＣＣＡＣＡＧＴＡＧＣＣＧＧＴ−３’（配列番号１６）
ＭｕＲＦ−１フォワード：
５’−ＴＣＣＴＧＡＴＧＧＡＡＡＣＧＣＴＡＴＧＧＡ−３’（配列番号１７）
ＭｕＲＦ−１リバース：
５’−ＡＴＴＣＧＣＡＧＣＣＴＧＧＡＡＧＡＴＧＴ−３’（配列番号１８）

（１１―２）廃用性筋萎縮に関わる遺伝子発現抑制作用の測定結果
廃用性筋萎縮に関わる遺伝子であるＡｔｒｏｇｉｎ−１及びＭｕＲＦ−１の遺伝子発現をリアルタイムＰＣＲで測定した結果を、コントロール群の偽手術（右肢）を１とした相対値で図７及び図８に示した。
図７及び図８から、対照群の右肢（偽手術）に比べ、左肢（神経切除）のＡｔｒｏｇｉｎ−１及びＭｕＲＦ−１の発現量が増加していたことから、廃用性筋萎縮の誘導が確実に行われていることが分かる。図７から、対照群の右肢（偽手術）と比べマンゴスチン果皮抽出物群の右肢（偽手術）のＡｔｒｏｇｉｎ−１の発現が低下しており、左肢（神経切除）でも同様であった。図８から、ＭｕＲＦ−１でも同様の傾向がみられ、マンゴスチン抽出物を摂取することで、廃用性筋萎縮が抑制されることが示唆された。

マンゴスチン抽出物４及び５（マンゴスチンジュース抽出物）の製造
タイから１００％果肉部を含むマンゴスチンジュース（以下、１００％果肉部マンゴスチンジュース）及び７０％果肉部３０％果皮抽出物を含むマンゴスチンジュース（以下、７０％果肉部マンゴスチンジュース）を輸入した。果皮抽出物は、マンゴスチン果実を洗浄し、マンゴスチン果実ジュースを得る過程で発生した果皮を熱水で抽出した後、濾過して得られた果皮の熱水抽出液である。
それぞれ１Ｌのジュースに、４倍量の９９．５％エタノールを加え、室温で２時間攪拌後、濾紙を用いて濾過し、液層をエバポレーターにより濃縮し、凍結乾燥することで、１００％果肉部マンゴスチンジュースでは１９６ｇの抽出物（マンゴスチン抽出物４）、７０％果肉部マンゴスチンジュースでは１４２．７ｇの抽出物（マンゴスチン抽出物５）を得た。
得られたマンゴスチン抽出物４及び５について、実施例１と同様の手法を用いて分析した結果を表１０に示す。

マンゴスチン抽出物を含有する飲料及び食品の官能評価
市販の野菜ジュース（食塩無添加）、トマト加工飲料（食塩無添加）又は豆乳（無調製）に、上記実施例１２で得たマンゴスチン抽出物４又はマンゴスチン抽出物５を１重量％含有する飲料をそれぞれ作製し、嗜好性及び青臭さ（トマト臭さ、豆臭さを含む）に関してパネラー１０又は１１名による官能評価を行った。
抽出物を添加しない飲料（対照）の嗜好性及び青臭さの強さを５段階中３としたときの、各飲料の嗜好性及び青臭さの強さを５段階で評価し、パネラー１０又は１１名の評価の平均を算出した。結果を表１１〜１３に示す。＊はコントロール群に対する各群のＴｕｋｅｙ法による有意差を示す。

マンゴスチン抽出物４又は５を添加することで、野菜ジュース、トマト加工飲料及び豆乳のいずれにおいても甘みが増加した。マンゴスチン抽出物４を添加することで、野菜ジュースの青臭さが低減され、嗜好性が向上した飲料となった。トマトジュースでは、マンゴスチン抽出物４又は５を添加することで、トマトジュースの青臭さ（トマト臭さ）が低減され、嗜好性が向上した。豆乳では、マンゴスチン抽出物４を添加することで、青臭さ（豆臭さ）が低減し、嗜好性が向上した。マンゴスチン抽出物を飲食品（特に青臭さを有する飲料）に添加すると、呈味が改善され、継続摂取しやすい飲食品が得られると考えられた。

（キサントン類を含有する飲食品の製造）
以下にキサントン類を原料の一部として使用する飲食品（マンゴスチン加工飲食品）の製造例を示す。

（１４−１）マンゴスチンジュース
シーズンパックマンゴスチンジュースの製造方法には、マンゴスチン洗浄、選別、破砕、加熱、搾汁、調合、脱気、殺菌、充填、冷却及び箱詰め工程がある。このうち調合工程で、搾汁したマンゴスチンジュースにマンゴスチン抽出物を添加して調合し、有塩の場合のみ食塩が加えられ、窒素ガスを混合して減圧脱気して、溶存酸素濃度を３ｐｐｍ以下とした後、１２１℃、約１分の加熱殺菌をして、９０℃まで冷却され、缶に充填される。
また、濃縮還元品の製造方法は、開けだし工程で、マンゴスチン濃縮物を開けだし、規定の無塩可溶性固形分（４．５以上）に水希釈する。その後、マンゴスチン抽出物を添加して調合し、脱気、殺菌、充填、冷却及び箱詰め工程を経て製造される。
原材料として用いるマンゴスチン抽出物は、例えば実施例１、７、９又は１２に記載の手法を参照して製造することができる。

（１４−２）野菜ミックスジュース
搾汁したマンゴスチンジュース、或いは、マンゴスチン濃縮物を規定の無塩可溶性固形分（４．５以上）に水希釈して得たマンゴスチンジュースに、各種野菜汁及びキサントン類を添加して調合し、脱気、殺菌、充填、冷却及び箱詰め工程を経て製造される。
原材料として用いるキサントン類としては、例えば、α−マンゴスチン、β−マンゴスチン、γ−マンゴスチン、ガルタニン、イソマンゴスチン、デソキシガルタニン、カラバキサントン、ヒドロキシカラバキサントン、ガルシノン、マンゴスタノールなどが挙げられる。

本出願は、２０１２年２月２８日に出願された日本国特許出願第２０１２−４２０６７号に基づく優先権を主張するものであり、この内容はここに参照として組み込まれる。

本発明によれば、ＡＭＰＫ及びＰＰＡＲδを共に活性化することができ、安全性の高い共活性化剤を提供することができる。本発明によれば、本来運動を行った時に認められる好ましい生体応答を、運動を行うことなく、又はより少ない運動で得ることができる、安全性及び効果の高い運動効果模倣作用剤を提供することもできる。また、本発明によれば、上記の剤を、継続摂取に好適な呈味の飲食品として提供することもできる。更に、本発明によれば、効果の高い上記の剤を、マンゴスチンの果皮等より容易に効率よく得ることができるため、廃棄物の有効利用が可能である。本発明は、飲食品、医薬品及び試薬等の分野において産業上の利用可能性を有する。

Claims (13)

1. マンゴスチン抽出物を含有する運動効果模倣作用剤。
2. マンゴスチン抽出物を含有するＡＭＰＫ及びＰＰＡＲδ共活性化剤。
3. 脂肪蓄積抑制剤、熱産生促進剤、筋肉分化促進剤、運動持久力向上剤又は筋萎縮抑制剤である、請求項１に記載の作用剤。
4. マンゴスチン抽出物が、下記式（Ｉ）
   （式中、
   Ｒ^１及びＲ^４は、互いに独立してＣ_１〜Ｃ_５−アルキル又はアルケニルであり；
   Ｒ^２及びＲ^３は、互いに独立してヒドロキシ又はＣ_１〜Ｃ_６−アルコキシであり；
   ここで、Ｒ^１とＲ^２は、互いに結合して、環原子として、炭素原子に加えて酸素原子を含む５〜８員環を形成してもよい。）
   で表される化合物を含有する、請求項１〜３のいずれか１項に記載の剤。
5. マンゴスチン抽出物が、α−マンゴスチン、γ−マンゴスチン及び３−イソマンゴスチンからなる群から選択される１以上の化合物を含有する、請求項１〜４のいずれか１項に記載の剤。
6. 請求項１〜５のいずれか１項に記載の剤を配合した飲食品であって、マンゴスチン抽出物の含有量が、０．００１〜１０重量％である飲食品。
7. 請求項５に記載の剤を配合した飲食品であって、
   ０．００１〜５０重量％のα−マンゴスチンを含有し；かつ
   ０．０００１〜５０重量％のγ−マンゴスチンを含有する；
   飲食品。
8. 果汁、野菜ジュース、トマト加工飲料、ミックスジュース又は豆乳である、請求項６又は７に記載の飲食品。
9. γ−マンゴスチンを含有する運動効果模倣作用剤。
10. α−マンゴスチン及びγ−マンゴスチンを含有する運動効果模倣作用剤。
11. γ−マンゴスチンを含有するＡＭＰＫ及びＰＰＡＲδ共活性化剤。
12. α−マンゴスチンを含有するＡＭＰＫ及びＰＰＡＲδ共活性化剤。
13. ３−イソマンゴスチンを含有するＰＰＡＲδ活性化剤。