JPWO2012124338A1 - 生体組織分析用プローブ及びその利用法 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、特定の生体成分に結合する2種以上のタンパク質について、前記生体成分結合ドメインをそれぞれ含む2種以上のプローブを用いて、当該プローブに対する生体組織の結合量(アフィニティー)を解析し、その結果を生体組織の分解、細胞や細胞集団の単離に応用するものである。
本発明のプローブセットは、2種類以上のプローブからなり、各プローブは、それぞれ異なる生体成分結合ドメイン(特定の生体成分に結合する2種以上のタンパク質の当該生体成分結合ドメイン)と、蛍光分子、発光分子、及びポジトロン核種を含む放射性同位体から選ばれる可視化分子とを含む。
その他、可視化タンパク質については、多くの技術が知られており(WO01/46694、特表2006−518209号公報、特表2005−525111号公報、特開2008−283959号公報)、これらの公知の技術を利用することもできる。
本発明は、上記した分析方法を用いて生体組織を分析し、その分析結果に基づいて使用する酵素の量比や作用時間を決定し、生体組織から目的とする細胞又は細胞集団を効率よく分離する方法も提供する。
本発明は、上記した生体組織からの細胞又は細胞集団の分離方法に用いるためのキットも提供する。
本発明のキットは、本発明のプローブセットと、生体組織の分離に用いられる酵素であって、その基質結合ドメインがプローブの構成要素となっている酵素、バッファー、など、本発明の生体組織の分離方法に用いられる試薬や器具から選ばれる1又は2以上を構成要素として含む。
[EGFP-ColGCBDプローブの作製]
(1)EGFP-ColGCBDの構築方法
はじめに、EGFPでラベルしたヒストリチクス菌由来のコラゲナーゼGに対するプローブ(EGFP-ColGCBD)の作製について説明する。
培養
pCold2-EGFP-ColGCBDで形質転換した大腸菌 BLR株をオートクレーブにより滅菌した2mlのLB培地に終濃度100μg/mlになるように0.22μmの滅菌済みフィルターで滅菌したアンピシリンを添加した培地に植菌し、37℃で一晩振盪培養し、これを前培養液とした。500ml容のバッフル付き三角フラスコに用意した170mlの同培地に1000分の1量となるように前培養液を植菌し、OD660が0.6〜1.0程度になるまで37℃で振盪培養し、0.22μmの滅菌済みフィルターで滅菌したIPTGを終濃度1mMになるように添加し、15℃で24時間振盪培養した。
培養終了後、10,000g、5分の遠心で菌体を回収した。培養液と等量の0.3M NaClを含む50mM リン酸緩衝液pH8.0に回収した菌体を懸濁し、再び10,000g、5分の遠心で菌体を回収した。同様の操作を更に二度繰り返し、菌体を洗浄した。洗浄した菌体を25mlの同緩衝液で懸濁した後、200Wの出力で1分間、氷中で超音波破砕機によって菌体の破砕を行った。破砕が終了した菌体を10,000g、10分間、4℃で遠心し、上清を回収した。
菌体破砕した上清をCosmosil His-accept(直径2.5×10cm)カラムクロマトグラフィーに供した。0.3M NaClを含む50mM リン酸緩衝液pH8.0にてカラムをよく洗浄した後、10mM イミダゾールを含み0.3M NaClを含む50mM リン酸緩衝液pH8.0をカラムと等量アプライした。ついで20mM イミダゾールを含む同緩衝液、30mM イミダゾールを含む同緩衝液、40mM イミダゾールを含む同緩衝液、50mM イミダゾールを含む同緩衝液、100mM イミダゾールを含む同緩衝液、500mM イミダゾールを含む同緩衝液をアプライし、吸着したタンパク質を溶出した。各溶出画分をSDS-PAGE及び、抗His6 抗体(Santa Cruz)を用いた免疫ブロットによって確認した。その結果、20-30mM イミダゾール溶出画分に目的のタンパク質が確認できたため、これをEGFP-ColGCBDタンパク質とした。ColGCBDを図1の(A)に、EGFP-ColGCBDの塩基配列とアミノ酸配列をそれぞれ配列表の配列番号9及び10に示す。
[DsRed-ColHCBDプローブの作製]
(1)DsRed-ColHCBD の構築方法
つぎに、DsRedでラベルしたヒストリチクス菌由来のコラゲナーゼHに対するプローブ(DsRed-ColHCBD)の作製について説明する。
培養
pCold2-DsRed-ColHCBDで形質転換した大腸菌BLR株をオートクレーブにより滅菌した2mlのLB培地に終濃度100μg/mlになるように0.25μmの滅菌済みフィルターで滅菌したアンピシリンを添加した培地に植菌し、37℃で一晩振盪培養し、これを前培養液とした。500ml容のバッフル付き三角フラスコに用意した170mlの同培地に1000分の1量となるように前培養液を植菌し、OD660が0.6〜1.0程度になるまで37℃で振盪培養し、0.25μmの滅菌済みフィルターで滅菌したIPTGを終濃度1mMになるように添加し、15℃で24時間振盪培養した。
培養終了後、10,000g、5分の遠心で菌体を回収した。培養液と等量の0.3M NaClを含む50mM リン酸緩衝液pH8.0に回収した菌体を懸濁し、再び10,000g、5分の遠心で菌体を回収した。同様の操作を更に二度繰り返し、菌体を洗浄した。洗浄した菌体を25mlの同緩衝液で懸濁した後、200Wの出力で1分間、氷中で超音波破砕機によって菌体の破砕を行った。破砕が終了した菌体を10,000g、10分間、4℃で遠心し、上清を回収した。
菌体破砕した上清をCosmosil His-accept(直径2.5×10cm)カラムクロマトグラフィーに供した。0.3M NaClを含む50mM リン酸緩衝液pH8.0にてカラムをよく洗浄した後、10mM イミダゾールを含み0.3M NaClを含む50mM リン酸緩衝液pH8.0をカラムと等量アプライした。ついで20mM イミダゾールを含む同緩衝液、30mM イミダゾールを含む同緩衝液、40mM イミダゾールを含む同緩衝液、50mM イミダゾールを含む同緩衝液、100mM イミダゾールを含む同緩衝液、500mM イミダゾールを含む同緩衝液をアプライし、吸着したタンパク質を溶出した。各溶出画分をSDS-PAGE及び、抗His6 抗体(Santa Cruz)を用いた免疫ブロットによって確認した。その結果、20-30mM イミダゾール溶出画分に目的のタンパク質が確認できたため、これをDsRed-ColHCBDタンパク質とした。ColHCBDの構造を図1の(B)に、DsRed-ColHCBDの塩基配列とアミノ酸配列をそれぞれ配列表の配列番号の17及び18に示す。
(1)tdTomatoColH CBD DNAの作製と発現ベクターpColdIIの挿入
tdTomato遺伝子の鋳型DNAは、ptdTomato vector(クロンテック社)を用いた。DNA増幅のためのPCRには、N末端のプライマーは、tdTomatoの前にNde I認識サイトを含む配列34base(TomatoF)を使用した。C末端のプライマーには、tdTomatoの後ろに終止コドンの代わりにBamHI認識サイトをもつ34bp(TomatoR)の相補鎖配列を使用した。各プライマーの配列を以下に記載する。
プライマー配列:
TomatoF:5’- CCGGTCGCCcatATGGTGAGCAAGGGCGAGGAGG -3’(配列番号19)
TomatoR:5’- AGAGTCGCGGCGGATCCCTTGTACAGCTCGTCCA -3’(配列番号20)
上記の方法で構築されたtdTomatoColH CBD発現プラスミドで、大腸菌BLRを形質転換した。形質転換は、一般的なヒートッショック法を用いた。100μg/mlのampicillin(Amp)を含んだLBプレートにストリークし、37°Cで一晩培養した。生えてきたコロニーをLB/Amp液体培地に植継ぎ、OD600が0.5-0.7に達するまで37°Cで培養した。培養液を氷上で30分間冷却後、0.1mMとなる様にisopropyl-β-D-thiogalactopyranoside(IPTG)を加え、15°Cで24時間培養を続け、タンパク質の発現を誘導した。
300mM NaCl/50mMリン酸Na buffer(pH8.0)で平衡化したNi-NTA agaroseカラム(φ2.0cm x 5.0cm、カラム容積 15ml、QIAGEN社)に、菌体破砕後の可溶性画分を平衡化bufferで3倍希釈した溶液をアプライした。平衡化bufferで担体に吸着しない素通り画分を洗い流した後、50mM,200mM,500mMイミダゾールを含むbufferで溶出した。各イミダゾール濃度の画分のSDS-PAGEを行い、200mMイミダゾール溶出画分にtdTomatoColH CBDが溶出していることが確認されたため(図3)、その画分を回収し50mM Tris-HCl(pH8.0)に対して透析した。
tdTomatoはDsRedと同じ励起(554nm)、蛍光(581nm)波長を持つとされている。tdTomatoColH CBD精製酵素溶液の励起、蛍光スペクトルを分光蛍光光度計F-2500(日立ハイテク社)を用いて測定した(図5)。スペクトルから、CDBとの融合タンパク質として発現させたことによる蛍光の波長シフトや消光は起きていないことを確認した。また、DsRedを用いたものと比較して、より強い蛍光を発していることが確認された。
[PGV_Col G CBD 及びPGV-Col H CBD(Luciferase-Collagen binding domain fusion protein)プローブの作製方法]
(1)PGV_Col G CBDの構築方法
1)Luciferase-Collagen binding domain fusion protein DNAの作製発現ベクターpCold Iへの挿入
Luciferase遺伝子の鋳型DNAは、ピッカジーンコントロールベクター(PGV_control)のluciferase coding region(PGV)の配列を用いた。DNA増幅のためのPCRには、N末端のプライマーは、PGVの前にNde I認識サイト(CATATG)を含む配列27base(PGVctrl_Nterm)を使用した。C末端のプライマーには、PGVの後ろに終止コドンの代わりにBamHI認識サイト(GGATCC)をもつ30bp(PGV_CF_r)の相補鎖配列を使用した。
PGVとCol G CBD又はCol H CBDの DNAが挿入された発現プラスミドで、大腸菌Rosetta 2(DE3)を形質転換した。形質転換は、一般的なヒートッショック法を用いた。この形質転換株によるLuciferase-Collagen binding domain fusionタンパク質発現誘導をみた。
形質転換株の菌体破砕後の上清(crude)に、ルシフェラーゼ活性を持ったタンパク質が存在していることを確認した。本発明に用いたルシフェラーゼは、550nmに極大値を持つ発光スペクトルを示す。50mM Tris-HCl(pH8.0)とcrudeを混合した後、基質溶液(Tripluc Luciferase Assay Reagent,東洋紡)を加え、直ちに550nmの発光を経時的に測定した。ルシフェラーゼの発光は、基質溶液を加えた直後に最大を示し、その後は減衰していく。発光の減衰が見かけ上、ほぼ定常に達する時間まで測定した。その後に発光スペクトルも測定した(図9)。CBDとのfusion proteinとして発現させても、単独のPGVと同様の発光を示した。破砕直後のcrudeでは、550nmの強い発光が観測された。-80℃で冷凍保存していたcrudeでは、徐々に発光が弱くなったが、4℃や-20℃で保存したものより失活しないことを確認した。
300mM NaCl/50mM リン酸Na buffer(pH8.0)で平衡化したNi-NTA agaroseカラム(直径2.0cm x 5.0cm、カラム容積 15ml、QIAGEN)に、菌体破砕後のcrudeを平衡化bufferで10倍希釈した溶液をアプライした。平衡化bufferで担体に吸着しない素通り画分を洗い流した後、50mM,200mM,500mMイミダゾールを含むbufferで溶出した。各イミダゾール濃度の画分をSDS-PAGEで確認し、200mMイミダゾール溶出画分を精製PGV_ColG CBDまたは、PGV_ColH CBDとした(図10)。
100μlの50mMTris-HCl / 5mM CaCl2(pH7.5)に懸濁したブタの膵臓組織片と精製酵素溶液100μlを混合し、37℃で30分間インキュベートした後、遠心して沈殿と上清(sup.1)に分けた。得られた沈殿を50 mM酢酸バッファー(pH5.0)に懸濁し、室温で20分インキュベートした後、遠心して沈殿と上清(sup.2)に分けた。得られた沈殿と上清のSDS-PAGEを行って、膵臓組織とtdTomatoColH CBDの結合を確認した(図11)。
[生体組成成分の測定方法]
本発明の生体組成成分の測定方法を説明する。
(1)EGFP-ColGCBD及びDsRED-ColHによる生体組成分の測定方法
脱血死後のブタより膵臓を摘出し、5mm2に切除した膵臓断片をOCT コンパウンド(サクラファインテック社製)に包埋し、液体窒素で凍結する。その後、クリオスタットCM 3050S(ライカ社製)にて、厚さ8μmに薄切し、プレパラート(松浪硝子工業株式会社製)に接着させる。カルシウムイオンやマグネシウムイオンを含有しないリン酸緩衝溶液(PBS(-))で10%に調整したホルマリン液(WAKO社製)に浸し、室温で10分間インキュベートし、その後30分間乾燥させる。硝子製のキュベットにPBS(-)を入れ、その中で5分間室温にてインキュベートする。乾燥に気を付けながら、湿潤箱にプレパラートを留置し、切片上に EGFP-ColGCBD 溶液200μlを浸し、37℃で1時間インキュベートした。インキュベート後、PBS(-)にて5分間洗浄を行う。プレパラートを洗浄瓶に入れたPBS(-)で洗い流し、VECTORSHELD(Vector社製)で封入した。その後、蛍光顕微鏡 BIOLEVO BZ 9000(キーエンス社製)で観察し、撮影を行った。
結果を図12に示した。ネガティブコントロールに比べ、EGFP-ColGCBDで染色した組織は、組織の存在する領域を良好に染色した。
(1)観察方法
-80°C保存してあったラットの膵臓組織切片が固定されたプレパラートを、室温で5mM CaCl2 / TBSに10分間浸し、Milli-Qで洗浄した。非特異的結合を抑えるためのブロッキングとして、2% Myoglobin(Myb)を100μl滴下し、37°Cで30分間プレインキュベートし、Milli-Qで洗浄した。タンパク質(GFP control,GFP ColG CBD,tdTomato control,tdTomatoColH CBD)溶液40μlと2% Myb 40μlを混合後、組織切片上に滴下し、37°Cで30分間インキュベートした。各タンパク質溶液の濃度は、GFP control 10mg/ml、GFP ColG CBD 10mg/ml、tdTomato control 5mg/ml、tdTomatoColH CBD 5mg/mlに調整した。
米国のNational Institutes of Healthにより発行された“Guide for the Care and Use of Laboratory Animals(1996年改訂版)”に基づき動物実験を施行した。体重239-268gの雄性 Lewis ラット(Slc、Japan)、体重255-301gの雄性SDラット(Slc、Japan)、体重197-231gの雄性Wistar-Furthラット(Slc、Japan)を使用した。
1)各種ラットの組織切片におけるGFP ColG CBDおよびtdTomatoColH CBDの蛍光輝度の測定結果
各種ラットにおけるColGとColHの2種類のプローブの蛍光輝度およびその比を図13及び表1に記載した。
ColGとColHの2種類のプローブの蛍光輝度比H/G値0.85以上の場合、ColGに比して、ColHの添加量つまり、ColH/G比の最適値で使用する必要があるが、H/G値0.8以下の場合、ColH/G比の影響は少なく、ColG無添加でも膵島収量に大きく影響されないことを見出しており、その数値に従って、各ラット種において、膵島分離に使用するColHおよびColGの含有量比を変えて、膵島分離実験における膵島収量を測定し、その結果を表2に示した。
ラットの膵島分離に使用する2種類のコラゲナーゼの比率(ColH/ColG)を0、0.05、0.1、0.2、0.4と変えて、膵島分離を行った。その結果、収量及び品質を示すATP/DNA、in vitro糖負荷試験及びInsulin/DNA実験において、コラゲナーゼ比率が、0.1から0.2の範囲において、高収量で高品質な膵島を分離できることが確認できた。
配列番号4:オリゴDNA
配列番号5:ColGCBD用フォワ−ドプライマー (プライマー1)
配列番号6:ColGCBD用リバースプライマー (プライマー2)
配列番号7:EGFP用フォワ−ドプライマー (プライマー3)
配列番号8:EGFP用リバースプライマー (プライマー4)
配列番号9:EGFP-ColGCBD
配列番号10:EGFP-ColGCBD
配列番号11:オリゴDNA
配列番号12:オリゴDNA
配列番号13:ColHCBD用フォワ−ドプライマー (プライマー5)
配列番号14:ColHCBD用リバースプライマー (プライマー6)
配列番号15:DsRed用フォワ−ドプライマー (プライマー7)
配列番号16:DsRed用リバースプライマー (プライマー8)
配列番号17:DsRed-ColHCBD
配列番号18:DsRed-ColHCBD
配列番号19:tdTomato遺伝子増幅用フォワ−ドプライマー(TomatoF)
配列番号20:tdTomato遺伝子増幅用リバースプライマー(TomatoR)
Claims (20)
- 特定の生体成分に結合する2種以上のタンパク質について、前記生体成分結合ドメインをそれぞれ含む2種以上のプローブを単離された生体組織に適用し、前記各プローブの生体組織に対する結合量を解析することを特徴とする、生体組織の分析方法。
- プローブが、蛍光分子、発光分子、及びポジトロン核種を含む放射性同位体から選ばれる可視化分子によってラベルされていることを特徴とする、請求項1記載の方法。
- 可視化分子として、GFP、EGFP、YFP、BFP、CFP、DsRED、tdTomato、及びRFPからなる群より選ばれる蛍光分子、及び/又はルシフェラーゼタンパク質を含む、請求項1又は2記載の方法。
- 生体成分結合ドメインと可視化分子が融合タンパク質を構成している、請求項1〜3のいずれか1項に記載の方法。
- 生体成分結合ドメインが酵素あるいは酵素の一部である、請求項1〜4のいずれか1項に記載の方法。
- 生体成分結合ドメインがタンパク質分解酵素のコラーゲン結合ドメインである、請求項1〜4のいずれか1項に記載の方法。
- 2種以上のプローブを別々又は同時に生体組織に作用させ、各プローブの結合量を別々又は同時に測定することを特徴とする、請求項1〜6のいずれか1項に記載の方法。
- 2種以上のプローブを同時に生体組織に作用させ、各プローブの結合量を同時に測定することを特徴とする、請求項1〜7のいずれか1項に記載の方法。
- 生体組織からの細胞又は細胞集団の分離方法であって、請求項1〜8のいずれか1項に記載の方法を用いて生体組織を分析し、前記分析結果に基づいて酵素の量比を決定し、前記量比の酵素を生体組織に適用して細胞又は細胞集団を分離することを特徴とする方法。
- 特定の生体成分に結合する2種以上のタンパク質について、前記生体成分結合ドメインをそれぞれ含む2種類以上のプローブからなる生体組織分析用プローブセットであって、各プローブが、それぞれ異なる蛍光分子、発光分子、及びポジトロン核種を含む放射性同位体から選ばれる可視化分子を含むことを特徴とするプローブセット。
- 可視化分子として、GFP、EGFP、YFP、BFP、CFP、DsRED、tdTomato、及びRFPからなる群より選ばれる蛍光タンパク質及び/又はルシフェラーゼタンパク質を含む、請求項10記載のプローブセット。
- 前記ルシフェラーゼタンパク質が、野生型ルシフェラーゼと異なるピーク波長及び発光強度を有する、請求項10又は11記載のプローブセット。
- 生体成分結合ドメインと可視化分子が融合タンパク質を構成している、請求項10〜12のいずれか1項に記載のプローブセット。
- 生体成分結合ドメインがタンパク質分解酵素のコラーゲン結合ドメインである、請求項10〜13のいずれか1項に記載の方法。
- コラーゲン結合ドメインが、クロストリジウム属(Clostridium)由来のコラゲナーゼ群より選ばれるコラゲナーゼのコラーゲン結合ドメインである、請求項14記載のプローブセット。
- コラーゲン結合ドメインが、ヒストリチクス菌(Clostridium histryticum)由来のコラゲナーゼG及びコラゲナーゼHのコラーゲン結合ドメインである、請求項15記載のプローブセット。
- コラーゲン結合ドメインが、配列番号1に示されるアミノ酸配列、配列番号2に示されるアミノ酸配列、又はその部分配列を含むものである、請求項16記載のプローブセット。
- ルシフェラーゼタンパク質が、GFP、EGFP、YFP、BFP、CFP、DsRED、tdTomato、及びRFPからなる群より選ばれる蛍光分子とリンカーを介して連結されている、請求項10〜17のいずれか1項に記載のプローブセット。
- 前記プローブが、生体成分結合ドメインを1〜20回繰り返し含むものである、請求項10〜18のいずれか1項に記載のプローブセット。
- 請求項10〜19のいずれか1項に記載のプローブセットと酵素とを含む、生体組織分離用キット。
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