JPWO2007069755A1 - 人工リンパ節を用いた効率的な抗原特異的ハイブリドーマの作成法 - Google Patents
人工リンパ節を用いた効率的な抗原特異的ハイブリドーマの作成法 Download PDFInfo
- Publication number
- JPWO2007069755A1 JPWO2007069755A1 JP2007550257A JP2007550257A JPWO2007069755A1 JP WO2007069755 A1 JPWO2007069755 A1 JP WO2007069755A1 JP 2007550257 A JP2007550257 A JP 2007550257A JP 2007550257 A JP2007550257 A JP 2007550257A JP WO2007069755 A1 JPWO2007069755 A1 JP WO2007069755A1
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- cells
- antigen
- producing
- cell
- human animal
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Abandoned
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61D—VETERINARY INSTRUMENTS, IMPLEMENTS, TOOLS, OR METHODS
- A61D7/00—Devices or methods for introducing solid, liquid, or gaseous remedies or other materials into or onto the bodies of animals
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K16/00—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K16/00—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
- C07K16/44—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material not provided for elsewhere, e.g. haptens, metals, DNA, RNA, amino acids
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/10—Cells modified by introduction of foreign genetic material
- C12N5/12—Fused cells, e.g. hybridomas
- C12N5/16—Animal cells
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Immunology (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Public Health (AREA)
- Microbiology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
人工リンパ節を用いて効率よく特異的抗体産生ハイブリドーマを作成する方法の提供。以下の工程を含む抗原特異的モノクローナル抗体を作製する方法：（ａ） 抗原で非ヒト動物を免疫し、免疫した非ヒト動物にサイトカインを産生するストローマ細胞を含む高分子生体材料を移植し、前記非ヒト動物に人工リンパ節を形成させる工程；（ｂ） 工程（ａ）で形成された人工リンパ節を回収し、免疫不全非ヒト動物に移植する工程；（ｃ） 工程（ｂ）で人工リンパ節を移植した免疫不全非ヒト動物を前記工程（ａ）の抗原で免疫する工程；（ｄ） 工程（ｃ）で免疫した免疫不全非ヒト動物より脾細胞を採取する工程；ならびに（ｅ） 工程（ｄ）で採取した脾細胞をミエローマ細胞と融合させて抗体産生ハイブリドーマを形成させる工程。
Description
本発明は、人工リンパ節を用いて抗原特異的ハイブリドーマを作成する方法に関する。
モノクローナル抗体を作製するためには、マウス等の動物を抗原で免疫し、抗原産生形質細胞を生成させる。次いで、免疫動物から抗原産生形質細胞を多く含む脾臓細胞を採取し、該脾臓細胞とミエローマ細胞を融合することによりハイブリドーマを形成させる。さらに、多数のハイブリドーマの中から目的の抗体を産生するハイブリドーマをスクリーニングし、得られたハイブリドーマにモノクローナル抗体を産生させる（Ｋｏｌｌｅｒ Ｇ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ，２５６，４９５（１９７５）等）。
モノクローナル抗体の作製において、電気融合法を用いた細胞融合により細胞融合効率を高める等、目的の抗体を産生するハイブリドーマを多く得るための種々の検討がなされてきた。しかしながら、動物にマウスを用いた場合、ハイブリドーマが形成してくるのは脾細胞２〜４×１０４個に１個であり、一般には一頭のマウスからは５００個程度のハイブリドーマしか増殖してこない。従って、目的とする特異抗体を産生する細胞が脾細胞中に１０５個以下しか存在しない場合には、目的とするハイブリドーマを得ることは困難であった。脾臓中の特異的抗体を産生する細胞の数は、用いる抗原の種類等で異なるが、目的の抗体産生ハイブリドーマは、一般的に増殖してきたハイブリドーマの数％であった。分子量の小さい抗原や種間で構造が比較的保存されているタンパク質等、抗原によっては抗体が生成されにくく、従来のハイブリドーマ法でモノクローナル抗体を得るのは困難であった。
動物の免疫にはリンパ節が深く関わっており、リンパ節は高度に組織化された三次元構造をとることにより、リンパ球が抗原及び抗原提示細胞と相互作用して抗原特異的な免疫反応を開始する場所であり、外来微生物等外来の異種抗原に対して生体を防御するための必須の器官である。本発明者等は、先にストローマ細胞およびサイトカインを高分子生体材料から構成される三次元構造に組み込み、これをマウスの腎被膜下に移植することによって、人工リンパ節が構築できること、さらに上記組合せに骨髄由来の活性化樹状細胞を加えることにより効率よく人工リンパ節を構築できることを報告した（特許文献１参照）。
特開２００４−２５５１１０号公報
モノクローナル抗体の作製において、電気融合法を用いた細胞融合により細胞融合効率を高める等、目的の抗体を産生するハイブリドーマを多く得るための種々の検討がなされてきた。しかしながら、動物にマウスを用いた場合、ハイブリドーマが形成してくるのは脾細胞２〜４×１０４個に１個であり、一般には一頭のマウスからは５００個程度のハイブリドーマしか増殖してこない。従って、目的とする特異抗体を産生する細胞が脾細胞中に１０５個以下しか存在しない場合には、目的とするハイブリドーマを得ることは困難であった。脾臓中の特異的抗体を産生する細胞の数は、用いる抗原の種類等で異なるが、目的の抗体産生ハイブリドーマは、一般的に増殖してきたハイブリドーマの数％であった。分子量の小さい抗原や種間で構造が比較的保存されているタンパク質等、抗原によっては抗体が生成されにくく、従来のハイブリドーマ法でモノクローナル抗体を得るのは困難であった。
動物の免疫にはリンパ節が深く関わっており、リンパ節は高度に組織化された三次元構造をとることにより、リンパ球が抗原及び抗原提示細胞と相互作用して抗原特異的な免疫反応を開始する場所であり、外来微生物等外来の異種抗原に対して生体を防御するための必須の器官である。本発明者等は、先にストローマ細胞およびサイトカインを高分子生体材料から構成される三次元構造に組み込み、これをマウスの腎被膜下に移植することによって、人工リンパ節が構築できること、さらに上記組合せに骨髄由来の活性化樹状細胞を加えることにより効率よく人工リンパ節を構築できることを報告した（特許文献１参照）。
本発明は、人工リンパ節を用いて効率よく特異的抗体産生ハイブリドーマを作成する方法を提供する。
従来の細胞融合法によるハイブリドーマの作成法では、必ずしも特異的抗体産生ハイブリドーマの形成効率は高くなかった。本発明者等は先に開発した人工リンパ節の構築方法と組合せてハイブリドーマを作成する方法について鋭意検討を行った。抗原を投与したマウスの腎被膜下で抗原でパルスした活性化樹状細胞を用いて構築した人工リンパ節を免疫不全マウスに再移植し、該免疫不全マウスを抗原で免疫し、脾細胞を採取しハイブリドーマを作成することにより、特異的抗体産生ハイブリドーマの形成率が著しく上昇することを見出し、本発明を完成させるに至った。
すなわち、本発明は以下のとおりである。
［１］ 以下の工程を含む抗原特異的ハイブリドーマを作成する方法：
（ａ） 抗原で非ヒト動物を免疫し、免疫した非ヒト動物にサイトカインを産生するストローマ細胞を含む高分子生体材料を移植し、前記非ヒト動物に人工リンパ節を形成させる工程；
（ｂ） 工程（ａ）で形成された人工リンパ節を回収し、免疫不全非ヒト動物に移植する工程；
（ｃ） 工程（ｂ）で人工リンパ節を移植した免疫不全非ヒト動物を前記工程（ａ）の抗原で免疫する工程；
（ｄ） 工程（ｃ）で免疫した免疫不全非ヒト動物より脾細胞を採取する工程；ならびに
（ｅ） 工程（ｄ）で採取した脾細胞をミエローマ細胞と融合させて抗体産生ハイブリドーマを形成させる工程。
［２］ 高分子材料がさらに［１］の工程（ａ）の抗原でパルスした活性化樹状細胞を含む［１］の方法。
［３］ ストローマ細胞が、ＴＥＬ−２細胞である［１］または［２］の方法。
［４］ 高分子材料がコラーゲンスポンジである［１］〜［３］のいずれかの方法。
［５］ サイトカインが、リンホトキシンおよび／またはケモカインである［１］〜［４］のいずれかの方法。
［６］ 非ヒト動物がマウスである［１］〜［５］のいずれかの方法。
［７］ 免疫不全動物が免疫不全マウスである［１］〜［６］のいずれかの方法。
［８］ 免疫不全マウスがＳＣＩＤマウスまたはＲＡＧ２遺伝子欠損マウスである［１］〜［７］のいずれかの方法。
［９］ 以下を含む、抗原特異的なハイブリドーマを作成するためのキット：
（ａ） サイトカイン発現ベクターおよびストローマ細胞、またはサイトカイン発現ベクターが導入されたストローマ細胞；
（ｂ） 高分子生体材料；ならびに
（ｃ） 活性化樹状細胞。
［１０］ 以下をさらに含む［９］の抗原特異的なハイブリドーマを作成するためのキット：
（ｄ） 人工リンパ節形成用マウス；および
（ｅ） 免疫不全マウス。
［１１］ さらに、抗原を含み活性化樹状細胞が該抗原でパルスされている、［９］または［１０］の抗原特異的なハイブリドーマを作成するためのキット。
本明細書は本願の優先権の基礎である日本国特許出願２００５−３５７９４９号の明細書および／または図面に記載される内容を包含する。
従来の細胞融合法によるハイブリドーマの作成法では、必ずしも特異的抗体産生ハイブリドーマの形成効率は高くなかった。本発明者等は先に開発した人工リンパ節の構築方法と組合せてハイブリドーマを作成する方法について鋭意検討を行った。抗原を投与したマウスの腎被膜下で抗原でパルスした活性化樹状細胞を用いて構築した人工リンパ節を免疫不全マウスに再移植し、該免疫不全マウスを抗原で免疫し、脾細胞を採取しハイブリドーマを作成することにより、特異的抗体産生ハイブリドーマの形成率が著しく上昇することを見出し、本発明を完成させるに至った。
すなわち、本発明は以下のとおりである。
［１］ 以下の工程を含む抗原特異的ハイブリドーマを作成する方法：
（ａ） 抗原で非ヒト動物を免疫し、免疫した非ヒト動物にサイトカインを産生するストローマ細胞を含む高分子生体材料を移植し、前記非ヒト動物に人工リンパ節を形成させる工程；
（ｂ） 工程（ａ）で形成された人工リンパ節を回収し、免疫不全非ヒト動物に移植する工程；
（ｃ） 工程（ｂ）で人工リンパ節を移植した免疫不全非ヒト動物を前記工程（ａ）の抗原で免疫する工程；
（ｄ） 工程（ｃ）で免疫した免疫不全非ヒト動物より脾細胞を採取する工程；ならびに
（ｅ） 工程（ｄ）で採取した脾細胞をミエローマ細胞と融合させて抗体産生ハイブリドーマを形成させる工程。
［２］ 高分子材料がさらに［１］の工程（ａ）の抗原でパルスした活性化樹状細胞を含む［１］の方法。
［３］ ストローマ細胞が、ＴＥＬ−２細胞である［１］または［２］の方法。
［４］ 高分子材料がコラーゲンスポンジである［１］〜［３］のいずれかの方法。
［５］ サイトカインが、リンホトキシンおよび／またはケモカインである［１］〜［４］のいずれかの方法。
［６］ 非ヒト動物がマウスである［１］〜［５］のいずれかの方法。
［７］ 免疫不全動物が免疫不全マウスである［１］〜［６］のいずれかの方法。
［８］ 免疫不全マウスがＳＣＩＤマウスまたはＲＡＧ２遺伝子欠損マウスである［１］〜［７］のいずれかの方法。
［９］ 以下を含む、抗原特異的なハイブリドーマを作成するためのキット：
（ａ） サイトカイン発現ベクターおよびストローマ細胞、またはサイトカイン発現ベクターが導入されたストローマ細胞；
（ｂ） 高分子生体材料；ならびに
（ｃ） 活性化樹状細胞。
［１０］ 以下をさらに含む［９］の抗原特異的なハイブリドーマを作成するためのキット：
（ｄ） 人工リンパ節形成用マウス；および
（ｅ） 免疫不全マウス。
［１１］ さらに、抗原を含み活性化樹状細胞が該抗原でパルスされている、［９］または［１０］の抗原特異的なハイブリドーマを作成するためのキット。
本明細書は本願の優先権の基礎である日本国特許出願２００５−３５７９４９号の明細書および／または図面に記載される内容を包含する。
図１は、人工リンパ節構築の模式図である。
図２は、人工リンパ節を構築し、免疫不全マウスに再移植して免疫細胞を得るまでの本発明の方法の概要を示す図である。
図３は、人工リンパ節の構築時およびＳＣＩＤマウスの免疫時の条件を変えた場合のマウス血清中の特異的ＩｇＧ抗体量を示す図である。
図４は、得られたハイブリドーマの各ウェルの培養液中の特異的抗体を測定した結果を示す図である。
図２は、人工リンパ節を構築し、免疫不全マウスに再移植して免疫細胞を得るまでの本発明の方法の概要を示す図である。
図３は、人工リンパ節の構築時およびＳＣＩＤマウスの免疫時の条件を変えた場合のマウス血清中の特異的ＩｇＧ抗体量を示す図である。
図４は、得られたハイブリドーマの各ウェルの培養液中の特異的抗体を測定した結果を示す図である。
本発明の方法において、人工リンパ節は特開２００４−２５５１１０号公報に記載の方法に従って作成することができる。図１に人工リンパ節構築の模式図を示す。
リンパ節とは、リンパ系組織（リンパ球が非リンパ系細胞と相互作用する組織）であって、リンパ球系の細胞の成熟や適応免疫応答に重要な役割を果たす組織器官である。リンパ系組織は一次リンパ組織と二次リンパ組織に分類することができる。一次リンパ組織はリンパ球産生の場所であり、骨髄と胸腺がこれに含まれる。また、二次リンパ組織は、抗原を補足するための特殊な構造をしており、適応免疫応答が開始される場所である。二次リンパ組織（末梢リンパ組織とも呼ば
れる）には、脾臓、リンパ節、粘膜関連リンパ性組織（扁桃、気管関連リンパ性組織、腸管関連リンパ性組織、パイエル板（Ｐｅｙｅｒ’ｓ ｐａｔｃｈｅｓ）（ＰＰ）、その他のリンパ球系細胞の凝集塊）が含まれる。
本発明の抗原特異的ハイブリドーマの作成に用いる抗原特異的抗体産生人工リンパ節は、以下の三要素を組み合わせて、動物に移植することにより構築され得る：
（ａ） リンパ節の形成に重要であるストローマ細胞を代替する細胞；
（ｂ） リンパ節の形成に重要であるサイトカイン；および
（ｃ） 生体適合性高分子材料から構成される三次元構造骨格。
本発明の抗原特異的ハイブリドーマの作成に用いる特異抗体産生人工リンパ節は、以下に挙げる、抗原特異的な免疫反応を起こす場として必須であると考えられるリンパ節の基本構造を備える。
［１］ 明確に区別されるＴ細胞領域とＢ細胞領域を有する。
正常リンパ組織と同様、本発明の特異抗体産生人工リンパ節においてもＴ細胞とＢ細胞の領域は明確に分かれており、それぞれ「Ｔ細胞領域」、「Ｂ細胞領域」と呼ぶ。特にＢ細胞集団は「濾胞（ｆｏｌｌｉｃｌｅ）」とも呼ばれる。
［２］ Ｔ細胞およびＢ細胞と共に、免疫反応において重要な役割を果たす樹状細胞が存在する。
［３］ 中心部に濾胞樹状細胞のネットワークを含むＢ細胞領域が存在する。
濾胞樹状細胞（ＦＤＣ：ｆｏｌｌｉｃｕｌａｒ ｄｅｎｄｒｉｔｉｃ ｃｅｌｌ）は、「濾胞中心部に存在する樹状の突起を持つ特殊な細胞」を意味し、濾胞中心部でネットワークを形成している（ＦＤＣ ｎｅｔｗｏｒｋという）。ＦＤＣは、樹状細胞（ｄｅｎｄｒｉｔｉｃ ｃｅｌｌ）とは別の種類の細胞である。
［４］ 胚中心Ｂ細胞様のＰＮＡ（ｐｅａｎｕｔ ａｇｇｌｕｔｉｎｉｎ）強陽性Ｂ細胞が存在する。
抗原刺激による抗体産生に先立って、濾胞の中心部でＢ細胞の活発な増殖と形質細胞（抗体産生細胞）への分化が起きる。この部位を胚中心（ＧＣ：ｇｅｒｍｉｎａｌ ｃｅｎｔｅｒ）と呼ぶが、この胚中心で活発に増殖するＢ細胞は、胚中心Ｂ細胞（ｇｅｒｍｉｎａｌ ｃｅｎｔｅｒ Ｂ ｃｅｌｌ）と称する。胚中心Ｂ細胞はＰＮＡとよく結合する性質を持つため、ＰＮＡで染色した時にＰＮＡ強陽性（ＰＮＡｈｉｇｈ＋）となることが知られている。
［５］ 抗体産生細胞である形質細胞が存在する。
抗体産生細胞は、Ｂ細胞が最終段階まで分化した細胞であり、これを形質細胞と呼ぶ。
［６］ リンパ節へのリンパ球の侵入門戸となるＨＥＶ様の血管構造が存在する。
高内皮細静脈（ＨＥＶ）は、リンパ節、パイエル板などの二次リンパ組織に特異的に観察される特殊な血管構造であり、一般的な血管とは異なり、背の高い（壁が分厚い）内皮細胞を有する。このＨＥＶは、ある種の接着因子やケモカインを発現しており、リンパ球が血流からこれらの二次リンパ組織に遊走して入ってくる時の入り口となっている。
サイトカインとは、各種の血球細胞の増殖と分化を制御するタンパク質性の生理活性物質の総称を意味し、さらには、非免疫系細胞を含む細胞の増殖因子および増殖抑制因子をいうこともある。作用の特性から、インターロイキン、コロニー刺激因子、インターフェロン、ケモカイン、リンホカイン、腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）などに分類される。本発明において使用されるインターロイキンは、特に限定されず、ＩＬ−１〜ＩＬ−１８の中から任意に選択することができる。コロニー刺激因子としては、例えば、Ｇ−ＣＳＦ、Ｍ−ＣＳＦ、ＧＭ−ＣＳＦなどが使用され得る。インターフェロン（ＩＦＮ）としては、例えば、ＩＦＮ−α、ＩＦＮ−β、ＩＦＮ−γなどが使用され得る。ケモカインとしては、例えば、ＣＣＬ２１（ＳＬＣ（ｓｅｃｏｎｄａｒｙ ｌｙｍｐｈｏｉｄ ｔｉｓｓｕｅ ｃｈｅｍｏｋｉｎｅ）ともいう）、ＣＸＣＬ１３（ＢＬＣ（Ｂ ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅ ｃｈｅｍｏａｔｔｒａｃｔａｎｔ）ともいう）、ＣＣＬ１９（ＥＬＣ（Ｅｐｓｔｅｉｎ−Ｂａｒｒ ｖｉｒｕｓ−ｉｎｄｕｃｅｄ ｍｏｌｅｃｕｌｅ １ ｌｉｇａｎｄ ｃｈｅｍｏｋｉｎｅ）ともいう）などが使用され得る。ＴＮＦとしては、例えば、ＴＮＦ−α、ＴＮＦ−βなどが使用され得る。ＴＮＦ−βは、リンホトキシンα（ＬＴα）ともいわれる。ＬＴαは、リンパ節（ＬＮ）およびパイエル板（ＰＰ）の器官形成のために、ならびに正常な脾臓組織構造の形成のために必須であることが見出された最初の分子である。リンホトキシンには、ＬＴαの他に、ＬＴβが存在する。これらのリンホトキシンもまた、本発明に使用され得る。
本発明において使用されるサイトカインは、好ましくは、リンホトキシンおよび／またはケモカインであり、より好ましくは、ＬＴα、ＣＣＬ２１、ＣＸＣＬ１３、および／またはＣＣＬ１９である。これらのサイトカインは市販されており、容易に入手することが可能である。
ストローマ細胞とは、腺あるいは器官に特異的な固有の機能を持つ様々な細胞（実質細胞）を取り巻く微小環境を構成する細胞の総称であり、「支質細胞」ともいう。この「支質細胞」は、文字どおり実質の細胞を物理的に支持するとともに、細胞同士の相互作用により相手の細胞に何らかの作用を及ぼすという意味での支持機能も果たしていると考えられている。ストローマ細胞はまた、「支持細胞」あるいは「間質細胞」ともいう。
本発明において使用されるストローマ細胞としては、例えば、２週齢のＢａｌｂ／ｃマウス胸腺から樹立されたＴＥＬ−２ストローマ細胞（Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ ２０：４７−５３，１９９０）が挙げられる。このＴＥＬ−２細胞は、１０％の非働化したＦＣＳおよび５０μＭの２−メルカプトエタノールを補充したＲＰＭＩ−１６４０培地で培養することによって、維持および継代することができる。例えば、培養している細胞を、３日毎に、Ｔｒｙｐｓｉｎ−ＥＤＴＡ溶液で培養用ディッシュから収集し、１／１０〜１／２０に希釈して継代することができる。
本発明に用いられる、サイトカインを産生するストローマ細胞は、サイトカインをコードする遺伝子を含む発現ベクター（サイトカイン発現ベクターともいう）を構築し、この発現ベクターを、公知の遺伝子導入技術によって、ストローマ細胞に導入することにより作製することができる。種々のサイトカインに関する遺伝子情報は公知であり、例えば、ＧｅｎＢａｎｋなどの公に利用可能な遺伝子データベースから入手可能である。
例えば、ＴＥＬ−２ストローマ細胞において、上述のサイトカインまたはケモカインを産生させるには、それらをコードする遺伝子を含む発現ベクターをリポフェクション法などにより導入し、Ｇ４１８（５００μｇ／ｍｌ）を添加した選択培地で１０日から２週間培養して、薬剤耐性細胞株を得ることができる。導入遺伝子の発現は、細胞培養上清の生物活性を測定して確認することができる。生物活性の測定には、例えば、ケモカインの場合であれば、Ｔ細胞またはＢ細胞に対する遊走活性を測定するｃｈｅｍｏｔａｘｉｓ ａｓｓａｙを用いることができる。
本発明において使用される高分子生体材料としては、三次元構造骨格を有する生体適合性高分子材料が使用され得る。本発明において「三次元構造骨格」とは「ストローマ細胞と、リンパ球や樹状細胞などのリンパ節構成細胞とを、三次元的に組織化させるための足場（ｓｃａｆｆｏｌｄ）」を意味する。また、「生体適合性高分子材料」とは、「生体に何らかの方法で適用した時、生体が異物としてそれを排除しようとする反応を極力低く抑えるようにされた、様々な高分子から構成される材料」のことを意味する。
このような高分子生体材料としては、例えば、コラーゲン、グリコサミノグリカン、ポリグリコール酸、ポリ−Ｌ−乳酸などが挙げられる。また、ナイロン、ポリエステル、ポリウレタンまたはエチレンビニルアセテートなどの非生体分解性の材料も、単独で、または適宜組み合わせて用いることができる。
コラーゲンスポンジは、生体の構成成分であり、炎症反応や免疫反応を低く抑えられる点で、高分子生体材料として好ましい。「コラーゲンスポンジ」とは、コラーゲンを含むスポンジ構造を有する多孔性材料を意味し、例えば、ウシアキレス腱の不溶性コラーゲンを凍結乾燥することにより、多孔性のスポンジ状にした、三次元組織培養用コラーゲンなどが本発明に利用可能である。
本発明で使用される高分子生体材料は、それが生体分解性であっても、非生体性分解性であってもよく、生体へ移植した際に、それ自身の抗原性による免疫反応および／または物理的刺激による炎症反応を起こしにくい素材である限り、任意の素材を用いることができる。ただし、ストローマ細胞と免疫担当細胞が三次元的に組織化され、人工リンパ節として機能するためには、例えば、多孔性の高分子材料であれば、人工リンパ節の構築に適した孔径（ポアサイズ）、または、移植する高分子材料全体の大きさを選択する必要がある。このような移植物の孔径および大きさは、当業者により適宜決定され得る。
樹状細胞とは、造血幹細胞由来の樹枝状形態をとる細胞群の総称であり、リンパ系器官のみならず、リンパ系器官以外にも広く分布している。樹状細胞は、活性化の際に、Ｔ細胞およびＢ細胞の有効な刺激因子となり、免疫応答の開始に重要な役割を果たしている。
本発明に用いる樹状細胞は、その前駆細胞を培養することによって得ることができる。樹状細胞の前駆細胞は、骨髄、臍帯血、末梢血由来の造血幹細胞、末梢血由来の単球細胞などを起源とする。樹状細胞の前駆細胞は、採取した骨髄液、臍帯血、あるいは末梢血液などの懸濁液から必要に応じて分離精製することができる。
樹状細胞の前駆細胞を含む細胞群を増殖させ、さらに成熟／活性化樹状細胞へと分化誘導させるには、適切な誘導剤を使用する。誘導剤として、サイトカイン類を選択して使用することができる。サイトカインとしては、例えば、ＧＭ−ＣＳＦ、ＩＬ−１、ＩＬ−４、ＩＦＮ−α、ＴＮＦ−αなどが挙げられ、これらを単独で又は適宜組み合わせて用いることができる。
例えば、樹状細胞を成熟／活性化させるには、５〜２０ｎｇ／ｍｌの上記サイトカインを加えたＲＰＭＩ−１６４０培地、あるいはＭｃＣｏｙ’ｓ培地などを使用し、最終的に活性化させるためには、ＬＰＳ（ｌｉｐｏｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ）などの活性化因子を加えて培養すればよい。
さらに、本発明の方法においては、モノクローナル抗体を作製しようとする抗原を加えて培養することによって、樹状細胞を抗原パルスすることが好ましい。
本発明の抗原特異的ハイブリドーマの作成に用いる特異抗体産生人工リンパ節を構築するには、任意のサイトカインをコードする遺伝子を含む発現ベクターをストローマ細胞に導入して作製した、サイトカイン産生ストローマ細胞を高分子生体材料に付着させた後、この高分子生体材料を、モノクローナル抗体を作製しようとする抗原で免疫した動物の組織に移植すればよい。ストローマ細胞を高分子生体材料に付着させるには、高濃度に調製した細胞浮遊液に浸すか、あるいは、この細胞を、注射針（例えば、２６ゲージ）を装着した注射器を用いて、高分子生体材料に注入する。
好ましくは、この高分子生体材料には、サイトカイン産生ストローマ細胞の他に、樹状細胞が加えられ得る。より好ましくは、動物の免疫に用いたのと同じ抗原（すなわち、モノクローナル抗体を作製しようとする抗原）でパルスした活性化樹状細胞が加えられ得る。
ストローマ細胞（および活性化樹状細胞）を付着させた高分子生体材料の移植の対象となる動物は、ヒトおよび非ヒト動物であり、非ヒト動物は、好ましくは、非ヒト哺乳動物（例えば、サル、ウマ、ウシ、ヤギ、ヒツジ、ブタ、イヌ、ネコ、ウサギ、モルモット、ハムスター、ラット、マウスなど）である。この中でも通常ハイブリドーマ作成に用いられるマウスが好ましい。
これらの動物は、高分子生体材料の移植の前に、モノクローナル抗体を作製しようとする抗原で免疫される。この免疫によって、動物の二次リンパ組織内等の免疫担当細胞（Ｂ細胞、Ｔ細胞など）は抗原刺激され、この抗原に特異的な抗体（好ましくは、ＩｇＧ、ＩｇＡ、および／またはＩｇＭ）を細胞表面等に発現する抗体産生細胞（Ｂ細胞）もしくは抗原特異的Ｔ細胞を生じる。
免疫に用いられる抗原は限定されず、例えば、原虫、真菌、細菌、ウィルスなどの病原微生物が挙げられる。さらに、抗原としては、これらの病原微生物の他、癌、または特定の疾患に関係する、タンパク質、ペプチド、核酸、脂質、糖質なども用いられ得る。
免疫の際、これらの抗原は、好ましくは、アジュバント（例えば、ａｌｕｍ、フロイントの完全もしくは不完全アジュバントなど）と共に動物へ投与される。
リンパ節を構築させる動物の免疫に用いる抗原の量は、使用する動物の種類、年齢、体重、投与の経路などによって異なるが、例えば、成体マウスの場合、ａｌｕｍ中に沈殿させた１０μｇ〜１０００μｇ、好ましくは、１０〜１００μｇの抗原を腹腔内投与すればよい。
さらに、免疫担当細胞（例えば、Ｂ細胞）の抗原刺激を確実にするために、１〜２週間の間隔で、１または数回（例えば、１〜３回）、一次免疫を繰り返してもよい。免疫を繰り返す場合、抗原は、好ましくは、静脈（ｉ．ｖ．）投与される。
高分子生体材料の移植から約３週間後には、動物の体内で本発明の抗原特異的ハイブリドーマの作成に用いる特異抗体産生人工リンパ節が構築され得る。このようにして構築された特異抗体産生人工リンパ節を生体から回収する。回収した人工リンパ節は、適切な保存剤（例えば、１０％ＤＭＳＯ）を添加した培養液中で−８０℃以下の低温にて保存して、使用前に調製して用いることもできる。
回収した人工リンパ節をレシピエントである免疫不全動物に再移植する。該免疫不全動物は、人工リンパ節の構築に用いた動物と同一種であることが好ましい。移植の部位は、人工リンパ節の構築の際に、ストローマ細胞等を含む生体高分子材料を移植する部位と同様でよく、例えば腎臓被膜下に移植すればよい。
回収した人工リンパ節を再移植する免疫不全動物としては、機能的なＴ、Ｂリンパ球を持っていない免疫不全動物が挙げられ、例えば免疫不全マウスがある。免疫不全マウスとしては、ヌードマウス、ＳＣＩＤマウス（重症免疫不全マウス）、ＲＡＧ２遺伝子欠損マウス等を用いることができ、ＳＣＩＤマウスとして、ＮＯＤ／Ｓｈｉマウス、Ｃ．Ｂ−１７／ＩｃｒＣｒｊ−ｓｃｉｄ／ｓｃｉｄ、ＮＯＧマウス（ＮＯＤ／Ｓｈｉ−ｓｃｉｄ／ＩＬ−２γ−／−ｍｏｕｓｅ）等があり、これらのＳＣＩＤマウスは日本クレア株式会社から入手可能である。
再移植の際、２〜４個の人工リンパ節を移植するのが好ましく、片側の腎臓皮膜下に１〜２個ずつ移植すればよい。
免疫不全動物に人工リンパ節を移植した後、免疫不全動物を人工リンパ節を構築する際に用いた抗原で免疫する。この際、免疫は複数回行ってもよい。例えば、１日〜２週間後、好ましくは１〜２日後に免疫し、さらに１〜２週間後、好ましくは１週間から１０日後に免疫すればよい。好ましくは２回免疫する（一次免疫および二次免疫）。この際の免疫方法は、静脈投与が望ましい。抗原投与量は、マウスの場合、１０μｇ〜１０００μｇ、ましくは、１０〜１００μｇであり、２回目の免疫の投与量は１回目の免疫の投与量より少なくてもよく、例えば、１回目の１０分の１量を投与すればよい。一次免疫によって抗原刺激されたＢリンパ球は、移植された人工リンパ節に集まり、その後、一次免疫に用いたのと同じ抗原に曝露されると、人工リンパ節においてクラススイッチを起こし、ＩｇＧ、ＩｇＥ、またはＩｇＡを産生する抗体産生細胞を誘導する。本発明において、抗体産生細胞は、好ましくは、ＩｇＧタイプ（例えば、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４）の抗体を産生する細胞である。
最後の免疫から数日後、好ましくは４〜５日後に、哺乳動物から免疫細胞を採取し、細胞融合を行う。この際、免疫細胞としては、脾細胞を用いるのが好ましい。また、細胞融合を行う前に、免疫不全動物の免疫血清中に所望の抗体レベルが上昇していることをＥＬＩＳＡ、ウエスタンブロッティング等により確認するのが望ましい。
図２に人工リンパ節を構築し、免疫不全マウスに再移植して免疫細胞を得るまでの本発明の概要を示す。
本発明はヒト型の特異抗体産生ハイブリドーマの作成方法をも提供する。この場合、抗原特異的ハイブリドーマの作成に用いるヒト型の特異抗体産生人工リンパ節は、例えば、免疫不全動物（例えば、免疫不全マウス）にヒトリンパ球、ヒトリンパ球前駆体、骨髄細胞、および／または造血幹細胞などを導入して免疫不全動物の生体内にヒト免疫系を構築した後、このヒト免疫系を有する動物を、上記の方法に従って、モノクローナル抗体を作製しようとする抗原で免疫し、ストローマ細胞および／または樹状細胞を付着させた高分子生体材料（人工リンパ節）を移植し、そして、必要に応じて、同じ抗原で二次免疫することによって構築できる。
このようにして構築したヒト型の特異抗体産生人工リンパ節を免疫不全動物に再移植してヒト型モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを作成することができる。
免疫不全動物から採取した免疫細胞と融合する細胞として、哺乳動物のミエローマ細胞を用いる。このミエローマ細胞は、公知の種々の細胞株、例えば、マウス由来細胞の場合、Ｐ３（Ｐ３ｘ６３Ａｇ８．６５３）（Ｊ．Ｉｍｍｎｏｌ．（１９７９）１２３，１５４８−１５５０）、Ｐ３ｘ６３Ａｇ８Ｕ．１（Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｔｏｐｉｃｓ ｉｎ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ（１９７８）８１，１−７）、ＮＳ−１（Ｋｏｈｌｅｒ．Ｇ．ａｎｄ Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，Ｃ．Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．（１９７６）６，５１１−５１９）、ＭＰＣ−１１（Ｍａｒｇｕｌｉｅｓ．Ｄ．Ｈ．ｅｔ ａｌ．，Ｃｅｌｌ（１９７６）８，４０５−４１５）、ＳＰ２／０（Ｓｈｕｌｍａｎ，Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ（１９７８）２７６，２６９−２７０）、ＦＯ（ｄｅ Ｓｔ．Ｇｒｏｔｈ，Ｓ．Ｆ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ（１９８０）３５，１−２１）、Ｓ１９４（Ｔｒｏｗｂｒｉｄｇｅ，Ｉ．Ｓ．Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．（１９７８）１４８，３１３−３２３）、Ｒ２１０（Ｇａｌｆｒｅ，Ｇ．ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ（１９７９）２７７，１３１−１３３）等が好適に使用される。
前記免疫細胞とミエローマ細胞との細胞融合は、ケーラーとミルステインらの方法（Ｋｏｈｌｅｒ．Ｇ．ａｎｄ Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，Ｃ．、Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．（１９８１）７３，３−４６）等の公知の方法により行うことができる。具体的には、前記細胞融合は、例えば細胞融合促進剤の存在下に通常の栄養培養液中で行うことができる。融合促進剤としては、例えばポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、センダイウィルス（ＨＶＪ）等が使用され、融合効率を高めるためにジメチルスルホキシド等の補助剤を添加使用することもできる。また、エレクトロポレーションを用いた電気融合法により融合してもよい。
細胞融合の際のミエローマ細胞と免疫細胞の混合比率は限定されないが、１：１〜１：１０が好ましい。前記細胞融合に用いる培養液としては、例えば、ＲＰＭＩ１６４０培地、ＭＥＭ培地等を用いればよく、牛胎児血清（ＦＣＳ）等の血清補液を混合してもよい。
細胞融合は、例えば、前記免疫細胞とミエローマ細胞を培地中で混合し、予め３７℃程度に加温したＰＥＧ溶液（例えば平均分子量１０００〜６０００程度）を３０〜６０％（ｗ／ｖ）の濃度で添加し、混合することにより行うことができる。次いで、適当な培養液を逐次添加し、遠心して上清を除去する操作を繰り返すことによりハイブリドーマの生育に好ましくない細胞融合剤等を除去する。
このようにして得られたハイブリドーマは、通常の選択培養液、例えばＨＡＴ培養液（ヒポキサンチン、アミノプテリンおよびチミジンを含む培養液）で培養することにより選択される。上記ＨＡＴ培養液での培養は、目的とするハイブリドーマ以外の細胞（非融合細胞）が死滅するのに十分な時間（通常、数日〜数週間）行う。次いで、通常の限界希釈法を実施し、目的とする抗体を産生するハイブリドーマのスクリーニングおよびクローニングを行えばよい。スクリーニングは、ＥＬＩＳＡ、ウエスタンブロッティング等公知の方法で行うことができる。
このようにして作成されるモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマは、通常の培養液中で継代培養することが可能であり、また、液体窒素中で長期保存することが可能である。
当該ハイブリドーマからモノクローナル抗体を取得するには、当該ハイブリドーマを通常の方法に従い培養し、その培養上清として得る方法、あるいはハイブリドーマをこれと適合性がある哺乳動物に投与して増殖させ、その腹水として得る方法などが採用される。前者の方法は、高純度の抗体を得るのに適しており、一方、後者の方法は、抗体の大量生産に適している。
本発明は、抗原特異的ハイブリドーマを作成するためのキットをも包含する。該キットは、サイトカイン発現ベクターおよびストローマ細胞、またはサイトカイン発現ベクターが導入されたストローマ細胞、高分子生体材料、活性化樹状細胞を含み、さらに、人工リンパ節形成用マウスや免疫不全マウスを含んでいてもよい。さらに、ハイブリドーマを作成しようとする抗原を含んでいてもよく、この場合、活性化樹状細胞は、あらかじめ前記抗原でパルスされていてもよい。
本発明を以下の実施例によって具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例によって限定されるものではない。
実施例において使用した培養液、試薬および器具は以下の通りである。
ＲＰＭＩ−１６４０：ＧＩＢＣＯ社
２−メルカプトエタノール：Ｓｉｇｍａ社
ＦＣＳ（ｆｅｔａｌ ｃａｌｆ ｓｅｒｕｍ；ウシ胎仔血清）：Ｃｅｌｌ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社
細胞培養液：１０％の非働化したＦＣＳおよび５０μＭの２−メルカプトエタノールを補充したＲＰＭＩ−１６４０
Ｔｒｙｐｓｉｎ−ＥＤＴＡ溶液：ＧＩＢＣＯ社
Ｇ４１８（ｇｅｎｅｔｉｃｉｎ）：ＧＩＢＣＯ社
リコンビナントマウスＧＭ−ＣＳＦ（ｇｒａｎｕｌｏｃｙｔｅ−ｍａｃｒｏｐｈａｇｅ ｃｏｌｏｎｙ ｓｔｉｍｕｌａｔｉｎｇ ｆａｃｔｏｒ）：ＰｅｐｒｏＴｅｃｈ社
ＬＰＳ（ｌｉｐｏｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ）：Ｓｉｇｍａ社
ＢＳＡ（ｂｏｖｉｎｅ ｓｅｒｕｍ ａｌｂｕｍｉｎ）：Ｓｉｇｍａ社
培養ディッシュ、培養プレート、ペトリディッシュ；全て、ＦＡＬＣＯＮ社製
人工リンパ節の作製
特開２００４−２５５１１０号公報に記載の方法に従って人工リンパ節（ａｒｔｉｆｉｃｉａｌ ｌｙｍｐｈｎｏｄｅｓ）をＢａｌｂ／ｃマウスの腎臓皮膜下で作製した。具体的には以下の方法で作製した。
ストローマ細胞として、２週齢のＢＡＬＢ／ｃマウスの胸腺から樹立したＴＥＬ−２細胞（Ｎａｋａｓｈｉｍａ Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｅｕｒ Ｊ Ｉｍｍｕｎｏｌ．１９９０ Ｊａｎ；２０（１）：４７−５３）を、１０％ウシ胎仔血清および５０μＭ ２−メルカプトエタノールを補充したＲＰＭＩ１６４０中で培養した。マウスのリンホトキシンα（ＬＴα）またはケモカイン（ＣＣＬ２１、ＣＣＬ１９およびＣＸＣＬ１３）ｃＤＮＡを、マウス脾臓ＲＮＡからＲＴ−ＰＣＲ（ｒｅｖｅｒｓｅ ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ−ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ ｃｈａｉｎ ｒｅａｃｔｉｏｎ）によりクローニングした。各ｃＤＮＡを、ｐＣＸＮ２ベクター（Ｎｉｗａ Ｈ，ｅｔ ａｌ．，Ｇｅｎｅ．１９９１ Ｄｅｃ １５；１０８（２）：１９３−９）のＥｃｏＲＩ部位へと挿入した。このベクターは、ニワトリβアクチンプロモーター、ＣＭＶエンハンサー、およびウサギβグロビンスプライシングドナーを有する。得られた発現ベクターをＴＥＬ−２細胞へと導入し、そして安定なトランスフェクタント細胞株を、２週間のＧ４１８選択（５００μｇ／ｍｌ）後に得た。安定なトランスフェクタント細胞株を樹立させた後、全ての細胞株を２００μｇ／ｍｌのＧ４１８を含む培養培地中で培養した。導入された遺伝子の発現を、ＬＴαについては蛍光表示式細胞分取器（ＦＡＣＳ）分析およびケモカインについては走化性アッセイにより確認した。
コラーゲンスポンジ（”Ｃｏｌｌａｇｅｎ Ｓｐｏｎｇｅ”＃ＣＳ−３５，ＫＯＫＥＮ，Ｔｏｋｙｏ，Ｊａｐａｎ）を、一定の形および大きさに小さく切り、４８ウェルプレートのウェルに１片ずつ入れた。上記のように樹立したサイトカイン産生ＴＥＬ−２ストローマ細胞を、Ｔｒｙｐｓｉｎ−ＥＤＴＡ溶液を用いて収集し、培養液で１回洗浄して培養液に浮遊させ、さらに、ＰＢＳ（ｐｈｏｓｐｈａｔｅ ｂｕｆｆｅｒｅｄ ｓａｌｉｎｅ）、０．１％ＢＳＡ／ＰＢＳでそれぞれ１回ずつ洗浄した後、１ｍｌの１％ＢＳＡ／ＰＢＳを加えて細胞浮遊液を作製した。この細胞浮遊液を遠心分離に供して細胞を沈澱させてペレットの状態にし、少量の１％ＢＳＡ／ＰＢＳに細胞を浮遊させて、細胞濃度の非常に濃い、均一な細胞浮遊液を作製した。この細胞浮遊液をコラーゲンスポンジの上に滴下し、スポンジを揉むようにして細胞をコラーゲンスポンジに吸着させた。少量の１％ＢＳＡ／ＰＢＳ溶液に細胞を浮遊させてコラーゲンスポンジに吸着させているので、乾燥させないように注意した。この細胞を吸着させたコラーゲンスポンジを入れた４８ウェルプレートを、マウスの腎皮膜下への移植まで氷上に置いた。
７週齢から１２週齢の雌性ＢＡＬＢ／ｃＡｎＮＣｒｊマウスの大腿骨と脛骨の骨髄腔内を、２６ゲージの注射針を装着した注射器を用いてＰＢＳで洗い出し、骨髄細胞液を得た。この骨髄細胞液をナイロンメッシュでろ過して大きな細胞塊等を除き、培養液で２×１０５ｃｅｌｌｓ／ｍｌの濃度に調製して細胞浮遊液を作製した。なお、細胞浮遊液中には赤血球系の細胞がかなり含まれているが、赤血球系の細胞を無視して細胞の濃度を２×１０５ｃｅｌｌｓ／ｍｌと計算した。この細胞浮遊液を、直径１０ｃｍのプラスチック製ディッシュ（ペトリディッシュ）に、１ディッシュ当たり７ｍｌを移し、リコンビナントマウスＧＭ−ＣＳＦを最終濃度５ｎｇ／ｍｌとなるように添加した。３日又は４日毎に細胞上清を半分捨て、５ｎｇ／ｍｌのＧＭ−ＣＳＦを加えた新しい培養液を加えた。培養８日目または９日目に浮遊細胞を集め、５ｎｇ／ｍｌのＧＭ−ＣＳＦを加えた新しい培養液で２×１０６ｃｅｌｌｓ／ｍｌの細胞浮遊液を作り、１μｇ／ｍｌのＬＰＳ（もしくはＴＮＦ−α）、および、抗原パルスを行う場合、高分子生体材料の移植前にマウスに接種される抗原と同じ抗原を加えて、細胞培養ディッシュで１７〜２０時間培養し、樹状細胞を成熟および活性化させた。
コラーゲンスポンジ（”Ｃｏｌｌａｇｅｎ Ｓｐｏｎｇｅ”＃ＣＳ−３５，ＫＯＫＥＮ，Ｔｏｋｙｏ，Ｊａｐａｎ）を、一定の形および大きさに小さく切り、４８ウェルプレートのウェルに１片ずつ入れた。上記のようにして樹立したサイトカイン産生ＴＥＬ−２ストローマ細胞を、Ｔｒｙｐｓｉｎ−ＥＤＴＡ溶液を用いて収集し、培養液で１回洗浄して培養液に浮遊させ、細胞数を数えて氷上に置いた。上記方法により調製した活性化樹状細胞を、培養液で２回洗浄して培養液に浮遊させて細胞数を数え、氷上に置いた。その際、樹状細胞をＬＰＳで活性化した場合は、ＬＰＳが残らないように丁寧に洗浄した。その後、それぞれの細胞を、ＰＢＳ（ｐｈｏｓｐｈａｔｅ ｂｕｆｆｅｒｅｄ ｓａｌｉｎｅ）、０．１％ＢＳＡ／ＰＢＳでそれぞれ１回ずつ洗浄した後、１ｍｌの１％ＢＳＡ／ＰＢＳを加えて細胞濃度のほぼ同じ均一な細胞浮遊液を作製した。これらの浮遊液を１対１の容量で混合し、遠心分離により細胞を沈澱させてペレットの状態にし、さらに少量の１％ＢＳＡ／ＰＢＳを加えて、非常に細胞濃度の濃い均一な細胞浮遊液を作製した。この細胞浮遊液をコラーゲンスポンジの上に滴下し、スポンジを揉むようにして細胞をコラーゲンスポンジに吸着させた。少量の１％ＢＳＡ／ＰＢＳ溶液に細胞を浮遊させてコラーゲンスポンジに吸着させているので、乾燥させないように注意した。この細胞を吸着させたコラーゲンスポンジを入れた４８ウェルプレートは、細胞を吸着させたコラーゲンスポンジをマウスの腎皮膜下に移植するまで氷上に保った。
８週齢から１４週齢の雌性ＢＡＬＢ／ｃＡｎＮＣｒｊマウス（日本チャールズリバー社、ＳＰＦ環境のマウス飼育室で飼育）に麻酔をし、体表面を７０％エタノールで消毒して右側臥位にした。左季肋部の皮を約１ｃｍ切開し、その真下の筋層もほぼ同じ大きさに切開した。腎周辺の脂肪組織をピンセットでつまみ、腎臓を体外に引き出した。実体顕微鏡下で観察しながら、先の鋭利なピンセットを用いて、腎実質に傷をつけないように注意しながら、腎皮膜を開き、腎皮膜と腎臓の間にコラーゲンスポンジを挿入した。通常、片方の腎臓につき２ケ所（腎上極、下極付近）移植するため、左右の腎臓で一匹のマウスあたり計４つの、ストローマ細胞を付着させたコラーゲンスポンジを移植した。
レシピエントであるＢＡＬＢ／ｃＡｎＮＣｒｊマウスはＮＰ−ｏｖａｌｂｕｍｉｎ（ＮＰ−ＯＶＡ）をａｌｕｍ中に沈殿させた抗原を腹腔内に投与することにより４週間前に免疫しておいた。
移植３週間後に人工リンパ節を回収した。回収した人工リンパ節をＳＣＩＤマウス（Ｃ．Ｂ−１７／ＩｃｒＣｒｊ−ｓｃｉｄ／ｓｃｉｄ）の腎臓皮膜下に移植した。
翌日、ＳＣＩＤマウスをＮＰ−ＯＶＡを用いて免疫した。この際、ＮＰ−ＯＶＡをＰＢＳに溶解し、抗原１００μｇを静脈内投与した。さらに１週間後、同じ抗原で追加免疫行った。抗原量は１回目の１０分の１の１０μｇであった。
２回目の免疫後、４〜５日目にＳＣＩＤマウスから血清を回収するとともに、脾臓を取り出した。回収した血清については、血清中のＩｇＧ抗ＮＰ抗体濃度を測定した。さらに、脾臓中の抗体産生細胞数をＥＬＩＳｐｏｔ法にて測定した。また、脾臓細胞を調製し、細胞培養用培地で細胞浮遊液を調製した。なお、人工リンパ節の構築、人工リンパ節のＳＣＩＤマウスへの再移植およびＳＣＩＤマウスの免疫の工程において人工リンパ節の構築時に用いる樹状細胞の抗原によるパルスの有無および１００μｇの抗原による一次免疫および１０μｇの抗原による二次免疫の有無の条件を変えて行った。さらに、免疫マウスとしてナイーブＢａｌｂ／ｃマウス、ナイーブＳＣＩＤマウス、抗原でプレ免疫したＢａｌｂ／ｃマウスをさらに抗原を用いてｉ．ｖ．により２回再免疫したマウスおよび抗原でプレ免疫したＢａｌｂ／ｃマウスから採取した脾細胞（１×１０７細胞）を静脈注射によりＳＣＩＤマウスに移植し、その後マウスを抗原を用いて２回再免疫したＳＣＩＤマウスを対照として用いた。
表１に人工リンパ節を再移植せずに二次免疫まで行ったＢａｌｂ／ｃマウス、人工リンパ節を再移植して二次免疫を行ったＳＣＩＤマウス（本発明の方法）、人工リンパ節を再移植してその後の免疫を行わなかったＳＣＩＤマウスおよび人工リンパ節を再移植せずに二次免疫まで行ったＳＣＩＤマウスの血清中抗ＮＰ抗体濃度を示す。
表１に示すように、人工リンパ節を移植され、抗原で免疫したＳＣＩＤマウスの血清中には抗原に対して高親和性の抗体（この場合は、ＮＰ６に対する抗体）が大量に含まれていた。実施例では７ｍｇ／ｍｌの抗原特異的なＩｇＧクラスの抗体が含まれていた。通常マウスの血清中の全イムノグロブリンの量は１ｍｇ／ｍｌであるから如何に大量の抗体が産生されているかがわかる。各条件で免疫したＳＣＩＤマウスの血清中のＩｇＧ抗体量を図３に示す。図３より樹状細胞をあらかじめ抗原でパルスしておくこと、静脈内に２回免疫することが重要であることがわかる。また、図３は単純にＳＣＩＤマウスに大量の抗原刺激した正常のリンパ節を静脈内投与して抗原で同様に免疫しても効果を得られないこと、および人工リンパ節を用いないとこのような効果は得られないことを示す。
表２に、人工リンパ節を再移植したＳＣＩＤマウスの脾臓中のＩｇＧクラスの抗ＮＰ特異的抗体産生細胞の数を示す。
表２に示すように、本発明の方法により免疫された（人口リンパ節を移植された）ＳＣＩＤマウスの脾臓細胞を調べてみると、１０万個の脾臓細胞中に３万個以上（約３０％以上）の（ＮＰ）抗原特異的なＩｇＧクラスの抗体を産生している細胞が存在していることがわかる。すなわち、本発明の方法により、リンパ球（脾臓細胞）３〜４個に１個以上が抗原特異的抗体産生細胞である個体を作成することが出来る。
脾臓細胞：骨髄腫細胞（ミエローマ）を１０：１で混合し、融合剤としてポリエチレングリコール１５００（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍ社製）を用いて細胞融合させることにより多数のハイブリドーマを作製した。骨髄腫細胞は、Ｐ３Ｘ６３Ａｇ８Ｕ．１を用いた。ハイブリドーマの選択は、１０％のウシ胎児血清（Ｆｅｔａｌ Ｃａｌｆ Ｓｅｒｕｍ、ＦＣＳ）とヒポキサンチン（Ｈ）、アミノプテリン（Ａ）、チミジン（Ｔ）を含有するＨＡＴ含有ＤＭＥＭ培地（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ社製）中で培養することにより行った。さらに、ＨＴ含有ＤＭＥＭ培地を用いて限界希釈法によりシングルクローンにした。培養は、９６ウェルマイクロタイタープレート中で行い、各ウェルに１０４の細胞を播いて行った。抗ＮＰモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマクローンのスクリーニングは、酵素標識免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）により行った。この際、西洋ワサビペルオキシダーゼ標識抗マウスＩｇＧ抗体を二次抗体として用い、酵素反応後の各ウェルの吸光度をＥＬＩＳＡリーダーを用いて測定した。
図４に各ウェル中のＥＬＩＳＡ測定結果を示す。図４に示すように、本発明の方法でマウス骨髄腫細胞と細胞融合を行うと殆ど全てが抗原特異的な抗体を産生しているハイブリドーマを得ることができた。
リンパ節とは、リンパ系組織（リンパ球が非リンパ系細胞と相互作用する組織）であって、リンパ球系の細胞の成熟や適応免疫応答に重要な役割を果たす組織器官である。リンパ系組織は一次リンパ組織と二次リンパ組織に分類することができる。一次リンパ組織はリンパ球産生の場所であり、骨髄と胸腺がこれに含まれる。また、二次リンパ組織は、抗原を補足するための特殊な構造をしており、適応免疫応答が開始される場所である。二次リンパ組織（末梢リンパ組織とも呼ば
れる）には、脾臓、リンパ節、粘膜関連リンパ性組織（扁桃、気管関連リンパ性組織、腸管関連リンパ性組織、パイエル板（Ｐｅｙｅｒ’ｓ ｐａｔｃｈｅｓ）（ＰＰ）、その他のリンパ球系細胞の凝集塊）が含まれる。
本発明の抗原特異的ハイブリドーマの作成に用いる抗原特異的抗体産生人工リンパ節は、以下の三要素を組み合わせて、動物に移植することにより構築され得る：
（ａ） リンパ節の形成に重要であるストローマ細胞を代替する細胞；
（ｂ） リンパ節の形成に重要であるサイトカイン；および
（ｃ） 生体適合性高分子材料から構成される三次元構造骨格。
本発明の抗原特異的ハイブリドーマの作成に用いる特異抗体産生人工リンパ節は、以下に挙げる、抗原特異的な免疫反応を起こす場として必須であると考えられるリンパ節の基本構造を備える。
［１］ 明確に区別されるＴ細胞領域とＢ細胞領域を有する。
正常リンパ組織と同様、本発明の特異抗体産生人工リンパ節においてもＴ細胞とＢ細胞の領域は明確に分かれており、それぞれ「Ｔ細胞領域」、「Ｂ細胞領域」と呼ぶ。特にＢ細胞集団は「濾胞（ｆｏｌｌｉｃｌｅ）」とも呼ばれる。
［２］ Ｔ細胞およびＢ細胞と共に、免疫反応において重要な役割を果たす樹状細胞が存在する。
［３］ 中心部に濾胞樹状細胞のネットワークを含むＢ細胞領域が存在する。
濾胞樹状細胞（ＦＤＣ：ｆｏｌｌｉｃｕｌａｒ ｄｅｎｄｒｉｔｉｃ ｃｅｌｌ）は、「濾胞中心部に存在する樹状の突起を持つ特殊な細胞」を意味し、濾胞中心部でネットワークを形成している（ＦＤＣ ｎｅｔｗｏｒｋという）。ＦＤＣは、樹状細胞（ｄｅｎｄｒｉｔｉｃ ｃｅｌｌ）とは別の種類の細胞である。
［４］ 胚中心Ｂ細胞様のＰＮＡ（ｐｅａｎｕｔ ａｇｇｌｕｔｉｎｉｎ）強陽性Ｂ細胞が存在する。
抗原刺激による抗体産生に先立って、濾胞の中心部でＢ細胞の活発な増殖と形質細胞（抗体産生細胞）への分化が起きる。この部位を胚中心（ＧＣ：ｇｅｒｍｉｎａｌ ｃｅｎｔｅｒ）と呼ぶが、この胚中心で活発に増殖するＢ細胞は、胚中心Ｂ細胞（ｇｅｒｍｉｎａｌ ｃｅｎｔｅｒ Ｂ ｃｅｌｌ）と称する。胚中心Ｂ細胞はＰＮＡとよく結合する性質を持つため、ＰＮＡで染色した時にＰＮＡ強陽性（ＰＮＡｈｉｇｈ＋）となることが知られている。
［５］ 抗体産生細胞である形質細胞が存在する。
抗体産生細胞は、Ｂ細胞が最終段階まで分化した細胞であり、これを形質細胞と呼ぶ。
［６］ リンパ節へのリンパ球の侵入門戸となるＨＥＶ様の血管構造が存在する。
高内皮細静脈（ＨＥＶ）は、リンパ節、パイエル板などの二次リンパ組織に特異的に観察される特殊な血管構造であり、一般的な血管とは異なり、背の高い（壁が分厚い）内皮細胞を有する。このＨＥＶは、ある種の接着因子やケモカインを発現しており、リンパ球が血流からこれらの二次リンパ組織に遊走して入ってくる時の入り口となっている。
サイトカインとは、各種の血球細胞の増殖と分化を制御するタンパク質性の生理活性物質の総称を意味し、さらには、非免疫系細胞を含む細胞の増殖因子および増殖抑制因子をいうこともある。作用の特性から、インターロイキン、コロニー刺激因子、インターフェロン、ケモカイン、リンホカイン、腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）などに分類される。本発明において使用されるインターロイキンは、特に限定されず、ＩＬ−１〜ＩＬ−１８の中から任意に選択することができる。コロニー刺激因子としては、例えば、Ｇ−ＣＳＦ、Ｍ−ＣＳＦ、ＧＭ−ＣＳＦなどが使用され得る。インターフェロン（ＩＦＮ）としては、例えば、ＩＦＮ−α、ＩＦＮ−β、ＩＦＮ−γなどが使用され得る。ケモカインとしては、例えば、ＣＣＬ２１（ＳＬＣ（ｓｅｃｏｎｄａｒｙ ｌｙｍｐｈｏｉｄ ｔｉｓｓｕｅ ｃｈｅｍｏｋｉｎｅ）ともいう）、ＣＸＣＬ１３（ＢＬＣ（Ｂ ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅ ｃｈｅｍｏａｔｔｒａｃｔａｎｔ）ともいう）、ＣＣＬ１９（ＥＬＣ（Ｅｐｓｔｅｉｎ−Ｂａｒｒ ｖｉｒｕｓ−ｉｎｄｕｃｅｄ ｍｏｌｅｃｕｌｅ １ ｌｉｇａｎｄ ｃｈｅｍｏｋｉｎｅ）ともいう）などが使用され得る。ＴＮＦとしては、例えば、ＴＮＦ−α、ＴＮＦ−βなどが使用され得る。ＴＮＦ−βは、リンホトキシンα（ＬＴα）ともいわれる。ＬＴαは、リンパ節（ＬＮ）およびパイエル板（ＰＰ）の器官形成のために、ならびに正常な脾臓組織構造の形成のために必須であることが見出された最初の分子である。リンホトキシンには、ＬＴαの他に、ＬＴβが存在する。これらのリンホトキシンもまた、本発明に使用され得る。
本発明において使用されるサイトカインは、好ましくは、リンホトキシンおよび／またはケモカインであり、より好ましくは、ＬＴα、ＣＣＬ２１、ＣＸＣＬ１３、および／またはＣＣＬ１９である。これらのサイトカインは市販されており、容易に入手することが可能である。
ストローマ細胞とは、腺あるいは器官に特異的な固有の機能を持つ様々な細胞（実質細胞）を取り巻く微小環境を構成する細胞の総称であり、「支質細胞」ともいう。この「支質細胞」は、文字どおり実質の細胞を物理的に支持するとともに、細胞同士の相互作用により相手の細胞に何らかの作用を及ぼすという意味での支持機能も果たしていると考えられている。ストローマ細胞はまた、「支持細胞」あるいは「間質細胞」ともいう。
本発明において使用されるストローマ細胞としては、例えば、２週齢のＢａｌｂ／ｃマウス胸腺から樹立されたＴＥＬ−２ストローマ細胞（Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ ２０：４７−５３，１９９０）が挙げられる。このＴＥＬ−２細胞は、１０％の非働化したＦＣＳおよび５０μＭの２−メルカプトエタノールを補充したＲＰＭＩ−１６４０培地で培養することによって、維持および継代することができる。例えば、培養している細胞を、３日毎に、Ｔｒｙｐｓｉｎ−ＥＤＴＡ溶液で培養用ディッシュから収集し、１／１０〜１／２０に希釈して継代することができる。
本発明に用いられる、サイトカインを産生するストローマ細胞は、サイトカインをコードする遺伝子を含む発現ベクター（サイトカイン発現ベクターともいう）を構築し、この発現ベクターを、公知の遺伝子導入技術によって、ストローマ細胞に導入することにより作製することができる。種々のサイトカインに関する遺伝子情報は公知であり、例えば、ＧｅｎＢａｎｋなどの公に利用可能な遺伝子データベースから入手可能である。
例えば、ＴＥＬ−２ストローマ細胞において、上述のサイトカインまたはケモカインを産生させるには、それらをコードする遺伝子を含む発現ベクターをリポフェクション法などにより導入し、Ｇ４１８（５００μｇ／ｍｌ）を添加した選択培地で１０日から２週間培養して、薬剤耐性細胞株を得ることができる。導入遺伝子の発現は、細胞培養上清の生物活性を測定して確認することができる。生物活性の測定には、例えば、ケモカインの場合であれば、Ｔ細胞またはＢ細胞に対する遊走活性を測定するｃｈｅｍｏｔａｘｉｓ ａｓｓａｙを用いることができる。
本発明において使用される高分子生体材料としては、三次元構造骨格を有する生体適合性高分子材料が使用され得る。本発明において「三次元構造骨格」とは「ストローマ細胞と、リンパ球や樹状細胞などのリンパ節構成細胞とを、三次元的に組織化させるための足場（ｓｃａｆｆｏｌｄ）」を意味する。また、「生体適合性高分子材料」とは、「生体に何らかの方法で適用した時、生体が異物としてそれを排除しようとする反応を極力低く抑えるようにされた、様々な高分子から構成される材料」のことを意味する。
このような高分子生体材料としては、例えば、コラーゲン、グリコサミノグリカン、ポリグリコール酸、ポリ−Ｌ−乳酸などが挙げられる。また、ナイロン、ポリエステル、ポリウレタンまたはエチレンビニルアセテートなどの非生体分解性の材料も、単独で、または適宜組み合わせて用いることができる。
コラーゲンスポンジは、生体の構成成分であり、炎症反応や免疫反応を低く抑えられる点で、高分子生体材料として好ましい。「コラーゲンスポンジ」とは、コラーゲンを含むスポンジ構造を有する多孔性材料を意味し、例えば、ウシアキレス腱の不溶性コラーゲンを凍結乾燥することにより、多孔性のスポンジ状にした、三次元組織培養用コラーゲンなどが本発明に利用可能である。
本発明で使用される高分子生体材料は、それが生体分解性であっても、非生体性分解性であってもよく、生体へ移植した際に、それ自身の抗原性による免疫反応および／または物理的刺激による炎症反応を起こしにくい素材である限り、任意の素材を用いることができる。ただし、ストローマ細胞と免疫担当細胞が三次元的に組織化され、人工リンパ節として機能するためには、例えば、多孔性の高分子材料であれば、人工リンパ節の構築に適した孔径（ポアサイズ）、または、移植する高分子材料全体の大きさを選択する必要がある。このような移植物の孔径および大きさは、当業者により適宜決定され得る。
樹状細胞とは、造血幹細胞由来の樹枝状形態をとる細胞群の総称であり、リンパ系器官のみならず、リンパ系器官以外にも広く分布している。樹状細胞は、活性化の際に、Ｔ細胞およびＢ細胞の有効な刺激因子となり、免疫応答の開始に重要な役割を果たしている。
本発明に用いる樹状細胞は、その前駆細胞を培養することによって得ることができる。樹状細胞の前駆細胞は、骨髄、臍帯血、末梢血由来の造血幹細胞、末梢血由来の単球細胞などを起源とする。樹状細胞の前駆細胞は、採取した骨髄液、臍帯血、あるいは末梢血液などの懸濁液から必要に応じて分離精製することができる。
樹状細胞の前駆細胞を含む細胞群を増殖させ、さらに成熟／活性化樹状細胞へと分化誘導させるには、適切な誘導剤を使用する。誘導剤として、サイトカイン類を選択して使用することができる。サイトカインとしては、例えば、ＧＭ−ＣＳＦ、ＩＬ−１、ＩＬ−４、ＩＦＮ−α、ＴＮＦ−αなどが挙げられ、これらを単独で又は適宜組み合わせて用いることができる。
例えば、樹状細胞を成熟／活性化させるには、５〜２０ｎｇ／ｍｌの上記サイトカインを加えたＲＰＭＩ−１６４０培地、あるいはＭｃＣｏｙ’ｓ培地などを使用し、最終的に活性化させるためには、ＬＰＳ（ｌｉｐｏｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ）などの活性化因子を加えて培養すればよい。
さらに、本発明の方法においては、モノクローナル抗体を作製しようとする抗原を加えて培養することによって、樹状細胞を抗原パルスすることが好ましい。
本発明の抗原特異的ハイブリドーマの作成に用いる特異抗体産生人工リンパ節を構築するには、任意のサイトカインをコードする遺伝子を含む発現ベクターをストローマ細胞に導入して作製した、サイトカイン産生ストローマ細胞を高分子生体材料に付着させた後、この高分子生体材料を、モノクローナル抗体を作製しようとする抗原で免疫した動物の組織に移植すればよい。ストローマ細胞を高分子生体材料に付着させるには、高濃度に調製した細胞浮遊液に浸すか、あるいは、この細胞を、注射針（例えば、２６ゲージ）を装着した注射器を用いて、高分子生体材料に注入する。
好ましくは、この高分子生体材料には、サイトカイン産生ストローマ細胞の他に、樹状細胞が加えられ得る。より好ましくは、動物の免疫に用いたのと同じ抗原（すなわち、モノクローナル抗体を作製しようとする抗原）でパルスした活性化樹状細胞が加えられ得る。
ストローマ細胞（および活性化樹状細胞）を付着させた高分子生体材料の移植の対象となる動物は、ヒトおよび非ヒト動物であり、非ヒト動物は、好ましくは、非ヒト哺乳動物（例えば、サル、ウマ、ウシ、ヤギ、ヒツジ、ブタ、イヌ、ネコ、ウサギ、モルモット、ハムスター、ラット、マウスなど）である。この中でも通常ハイブリドーマ作成に用いられるマウスが好ましい。
これらの動物は、高分子生体材料の移植の前に、モノクローナル抗体を作製しようとする抗原で免疫される。この免疫によって、動物の二次リンパ組織内等の免疫担当細胞（Ｂ細胞、Ｔ細胞など）は抗原刺激され、この抗原に特異的な抗体（好ましくは、ＩｇＧ、ＩｇＡ、および／またはＩｇＭ）を細胞表面等に発現する抗体産生細胞（Ｂ細胞）もしくは抗原特異的Ｔ細胞を生じる。
免疫に用いられる抗原は限定されず、例えば、原虫、真菌、細菌、ウィルスなどの病原微生物が挙げられる。さらに、抗原としては、これらの病原微生物の他、癌、または特定の疾患に関係する、タンパク質、ペプチド、核酸、脂質、糖質なども用いられ得る。
免疫の際、これらの抗原は、好ましくは、アジュバント（例えば、ａｌｕｍ、フロイントの完全もしくは不完全アジュバントなど）と共に動物へ投与される。
リンパ節を構築させる動物の免疫に用いる抗原の量は、使用する動物の種類、年齢、体重、投与の経路などによって異なるが、例えば、成体マウスの場合、ａｌｕｍ中に沈殿させた１０μｇ〜１０００μｇ、好ましくは、１０〜１００μｇの抗原を腹腔内投与すればよい。
さらに、免疫担当細胞（例えば、Ｂ細胞）の抗原刺激を確実にするために、１〜２週間の間隔で、１または数回（例えば、１〜３回）、一次免疫を繰り返してもよい。免疫を繰り返す場合、抗原は、好ましくは、静脈（ｉ．ｖ．）投与される。
高分子生体材料の移植から約３週間後には、動物の体内で本発明の抗原特異的ハイブリドーマの作成に用いる特異抗体産生人工リンパ節が構築され得る。このようにして構築された特異抗体産生人工リンパ節を生体から回収する。回収した人工リンパ節は、適切な保存剤（例えば、１０％ＤＭＳＯ）を添加した培養液中で−８０℃以下の低温にて保存して、使用前に調製して用いることもできる。
回収した人工リンパ節をレシピエントである免疫不全動物に再移植する。該免疫不全動物は、人工リンパ節の構築に用いた動物と同一種であることが好ましい。移植の部位は、人工リンパ節の構築の際に、ストローマ細胞等を含む生体高分子材料を移植する部位と同様でよく、例えば腎臓被膜下に移植すればよい。
回収した人工リンパ節を再移植する免疫不全動物としては、機能的なＴ、Ｂリンパ球を持っていない免疫不全動物が挙げられ、例えば免疫不全マウスがある。免疫不全マウスとしては、ヌードマウス、ＳＣＩＤマウス（重症免疫不全マウス）、ＲＡＧ２遺伝子欠損マウス等を用いることができ、ＳＣＩＤマウスとして、ＮＯＤ／Ｓｈｉマウス、Ｃ．Ｂ−１７／ＩｃｒＣｒｊ−ｓｃｉｄ／ｓｃｉｄ、ＮＯＧマウス（ＮＯＤ／Ｓｈｉ−ｓｃｉｄ／ＩＬ−２γ−／−ｍｏｕｓｅ）等があり、これらのＳＣＩＤマウスは日本クレア株式会社から入手可能である。
再移植の際、２〜４個の人工リンパ節を移植するのが好ましく、片側の腎臓皮膜下に１〜２個ずつ移植すればよい。
免疫不全動物に人工リンパ節を移植した後、免疫不全動物を人工リンパ節を構築する際に用いた抗原で免疫する。この際、免疫は複数回行ってもよい。例えば、１日〜２週間後、好ましくは１〜２日後に免疫し、さらに１〜２週間後、好ましくは１週間から１０日後に免疫すればよい。好ましくは２回免疫する（一次免疫および二次免疫）。この際の免疫方法は、静脈投与が望ましい。抗原投与量は、マウスの場合、１０μｇ〜１０００μｇ、ましくは、１０〜１００μｇであり、２回目の免疫の投与量は１回目の免疫の投与量より少なくてもよく、例えば、１回目の１０分の１量を投与すればよい。一次免疫によって抗原刺激されたＢリンパ球は、移植された人工リンパ節に集まり、その後、一次免疫に用いたのと同じ抗原に曝露されると、人工リンパ節においてクラススイッチを起こし、ＩｇＧ、ＩｇＥ、またはＩｇＡを産生する抗体産生細胞を誘導する。本発明において、抗体産生細胞は、好ましくは、ＩｇＧタイプ（例えば、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４）の抗体を産生する細胞である。
最後の免疫から数日後、好ましくは４〜５日後に、哺乳動物から免疫細胞を採取し、細胞融合を行う。この際、免疫細胞としては、脾細胞を用いるのが好ましい。また、細胞融合を行う前に、免疫不全動物の免疫血清中に所望の抗体レベルが上昇していることをＥＬＩＳＡ、ウエスタンブロッティング等により確認するのが望ましい。
図２に人工リンパ節を構築し、免疫不全マウスに再移植して免疫細胞を得るまでの本発明の概要を示す。
本発明はヒト型の特異抗体産生ハイブリドーマの作成方法をも提供する。この場合、抗原特異的ハイブリドーマの作成に用いるヒト型の特異抗体産生人工リンパ節は、例えば、免疫不全動物（例えば、免疫不全マウス）にヒトリンパ球、ヒトリンパ球前駆体、骨髄細胞、および／または造血幹細胞などを導入して免疫不全動物の生体内にヒト免疫系を構築した後、このヒト免疫系を有する動物を、上記の方法に従って、モノクローナル抗体を作製しようとする抗原で免疫し、ストローマ細胞および／または樹状細胞を付着させた高分子生体材料（人工リンパ節）を移植し、そして、必要に応じて、同じ抗原で二次免疫することによって構築できる。
このようにして構築したヒト型の特異抗体産生人工リンパ節を免疫不全動物に再移植してヒト型モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを作成することができる。
免疫不全動物から採取した免疫細胞と融合する細胞として、哺乳動物のミエローマ細胞を用いる。このミエローマ細胞は、公知の種々の細胞株、例えば、マウス由来細胞の場合、Ｐ３（Ｐ３ｘ６３Ａｇ８．６５３）（Ｊ．Ｉｍｍｎｏｌ．（１９７９）１２３，１５４８−１５５０）、Ｐ３ｘ６３Ａｇ８Ｕ．１（Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｔｏｐｉｃｓ ｉｎ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ（１９７８）８１，１−７）、ＮＳ−１（Ｋｏｈｌｅｒ．Ｇ．ａｎｄ Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，Ｃ．Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．（１９７６）６，５１１−５１９）、ＭＰＣ−１１（Ｍａｒｇｕｌｉｅｓ．Ｄ．Ｈ．ｅｔ ａｌ．，Ｃｅｌｌ（１９７６）８，４０５−４１５）、ＳＰ２／０（Ｓｈｕｌｍａｎ，Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ（１９７８）２７６，２６９−２７０）、ＦＯ（ｄｅ Ｓｔ．Ｇｒｏｔｈ，Ｓ．Ｆ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ（１９８０）３５，１−２１）、Ｓ１９４（Ｔｒｏｗｂｒｉｄｇｅ，Ｉ．Ｓ．Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．（１９７８）１４８，３１３−３２３）、Ｒ２１０（Ｇａｌｆｒｅ，Ｇ．ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ（１９７９）２７７，１３１−１３３）等が好適に使用される。
前記免疫細胞とミエローマ細胞との細胞融合は、ケーラーとミルステインらの方法（Ｋｏｈｌｅｒ．Ｇ．ａｎｄ Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，Ｃ．、Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．（１９８１）７３，３−４６）等の公知の方法により行うことができる。具体的には、前記細胞融合は、例えば細胞融合促進剤の存在下に通常の栄養培養液中で行うことができる。融合促進剤としては、例えばポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、センダイウィルス（ＨＶＪ）等が使用され、融合効率を高めるためにジメチルスルホキシド等の補助剤を添加使用することもできる。また、エレクトロポレーションを用いた電気融合法により融合してもよい。
細胞融合の際のミエローマ細胞と免疫細胞の混合比率は限定されないが、１：１〜１：１０が好ましい。前記細胞融合に用いる培養液としては、例えば、ＲＰＭＩ１６４０培地、ＭＥＭ培地等を用いればよく、牛胎児血清（ＦＣＳ）等の血清補液を混合してもよい。
細胞融合は、例えば、前記免疫細胞とミエローマ細胞を培地中で混合し、予め３７℃程度に加温したＰＥＧ溶液（例えば平均分子量１０００〜６０００程度）を３０〜６０％（ｗ／ｖ）の濃度で添加し、混合することにより行うことができる。次いで、適当な培養液を逐次添加し、遠心して上清を除去する操作を繰り返すことによりハイブリドーマの生育に好ましくない細胞融合剤等を除去する。
このようにして得られたハイブリドーマは、通常の選択培養液、例えばＨＡＴ培養液（ヒポキサンチン、アミノプテリンおよびチミジンを含む培養液）で培養することにより選択される。上記ＨＡＴ培養液での培養は、目的とするハイブリドーマ以外の細胞（非融合細胞）が死滅するのに十分な時間（通常、数日〜数週間）行う。次いで、通常の限界希釈法を実施し、目的とする抗体を産生するハイブリドーマのスクリーニングおよびクローニングを行えばよい。スクリーニングは、ＥＬＩＳＡ、ウエスタンブロッティング等公知の方法で行うことができる。
このようにして作成されるモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマは、通常の培養液中で継代培養することが可能であり、また、液体窒素中で長期保存することが可能である。
当該ハイブリドーマからモノクローナル抗体を取得するには、当該ハイブリドーマを通常の方法に従い培養し、その培養上清として得る方法、あるいはハイブリドーマをこれと適合性がある哺乳動物に投与して増殖させ、その腹水として得る方法などが採用される。前者の方法は、高純度の抗体を得るのに適しており、一方、後者の方法は、抗体の大量生産に適している。
本発明は、抗原特異的ハイブリドーマを作成するためのキットをも包含する。該キットは、サイトカイン発現ベクターおよびストローマ細胞、またはサイトカイン発現ベクターが導入されたストローマ細胞、高分子生体材料、活性化樹状細胞を含み、さらに、人工リンパ節形成用マウスや免疫不全マウスを含んでいてもよい。さらに、ハイブリドーマを作成しようとする抗原を含んでいてもよく、この場合、活性化樹状細胞は、あらかじめ前記抗原でパルスされていてもよい。
本発明を以下の実施例によって具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例によって限定されるものではない。
実施例において使用した培養液、試薬および器具は以下の通りである。
ＲＰＭＩ−１６４０：ＧＩＢＣＯ社
２−メルカプトエタノール：Ｓｉｇｍａ社
ＦＣＳ（ｆｅｔａｌ ｃａｌｆ ｓｅｒｕｍ；ウシ胎仔血清）：Ｃｅｌｌ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社
細胞培養液：１０％の非働化したＦＣＳおよび５０μＭの２−メルカプトエタノールを補充したＲＰＭＩ−１６４０
Ｔｒｙｐｓｉｎ−ＥＤＴＡ溶液：ＧＩＢＣＯ社
Ｇ４１８（ｇｅｎｅｔｉｃｉｎ）：ＧＩＢＣＯ社
リコンビナントマウスＧＭ−ＣＳＦ（ｇｒａｎｕｌｏｃｙｔｅ−ｍａｃｒｏｐｈａｇｅ ｃｏｌｏｎｙ ｓｔｉｍｕｌａｔｉｎｇ ｆａｃｔｏｒ）：ＰｅｐｒｏＴｅｃｈ社
ＬＰＳ（ｌｉｐｏｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ）：Ｓｉｇｍａ社
ＢＳＡ（ｂｏｖｉｎｅ ｓｅｒｕｍ ａｌｂｕｍｉｎ）：Ｓｉｇｍａ社
培養ディッシュ、培養プレート、ペトリディッシュ；全て、ＦＡＬＣＯＮ社製
人工リンパ節の作製
特開２００４−２５５１１０号公報に記載の方法に従って人工リンパ節（ａｒｔｉｆｉｃｉａｌ ｌｙｍｐｈｎｏｄｅｓ）をＢａｌｂ／ｃマウスの腎臓皮膜下で作製した。具体的には以下の方法で作製した。
ストローマ細胞として、２週齢のＢＡＬＢ／ｃマウスの胸腺から樹立したＴＥＬ−２細胞（Ｎａｋａｓｈｉｍａ Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｅｕｒ Ｊ Ｉｍｍｕｎｏｌ．１９９０ Ｊａｎ；２０（１）：４７−５３）を、１０％ウシ胎仔血清および５０μＭ ２−メルカプトエタノールを補充したＲＰＭＩ１６４０中で培養した。マウスのリンホトキシンα（ＬＴα）またはケモカイン（ＣＣＬ２１、ＣＣＬ１９およびＣＸＣＬ１３）ｃＤＮＡを、マウス脾臓ＲＮＡからＲＴ−ＰＣＲ（ｒｅｖｅｒｓｅ ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ−ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ ｃｈａｉｎ ｒｅａｃｔｉｏｎ）によりクローニングした。各ｃＤＮＡを、ｐＣＸＮ２ベクター（Ｎｉｗａ Ｈ，ｅｔ ａｌ．，Ｇｅｎｅ．１９９１ Ｄｅｃ １５；１０８（２）：１９３−９）のＥｃｏＲＩ部位へと挿入した。このベクターは、ニワトリβアクチンプロモーター、ＣＭＶエンハンサー、およびウサギβグロビンスプライシングドナーを有する。得られた発現ベクターをＴＥＬ−２細胞へと導入し、そして安定なトランスフェクタント細胞株を、２週間のＧ４１８選択（５００μｇ／ｍｌ）後に得た。安定なトランスフェクタント細胞株を樹立させた後、全ての細胞株を２００μｇ／ｍｌのＧ４１８を含む培養培地中で培養した。導入された遺伝子の発現を、ＬＴαについては蛍光表示式細胞分取器（ＦＡＣＳ）分析およびケモカインについては走化性アッセイにより確認した。
コラーゲンスポンジ（”Ｃｏｌｌａｇｅｎ Ｓｐｏｎｇｅ”＃ＣＳ−３５，ＫＯＫＥＮ，Ｔｏｋｙｏ，Ｊａｐａｎ）を、一定の形および大きさに小さく切り、４８ウェルプレートのウェルに１片ずつ入れた。上記のように樹立したサイトカイン産生ＴＥＬ−２ストローマ細胞を、Ｔｒｙｐｓｉｎ−ＥＤＴＡ溶液を用いて収集し、培養液で１回洗浄して培養液に浮遊させ、さらに、ＰＢＳ（ｐｈｏｓｐｈａｔｅ ｂｕｆｆｅｒｅｄ ｓａｌｉｎｅ）、０．１％ＢＳＡ／ＰＢＳでそれぞれ１回ずつ洗浄した後、１ｍｌの１％ＢＳＡ／ＰＢＳを加えて細胞浮遊液を作製した。この細胞浮遊液を遠心分離に供して細胞を沈澱させてペレットの状態にし、少量の１％ＢＳＡ／ＰＢＳに細胞を浮遊させて、細胞濃度の非常に濃い、均一な細胞浮遊液を作製した。この細胞浮遊液をコラーゲンスポンジの上に滴下し、スポンジを揉むようにして細胞をコラーゲンスポンジに吸着させた。少量の１％ＢＳＡ／ＰＢＳ溶液に細胞を浮遊させてコラーゲンスポンジに吸着させているので、乾燥させないように注意した。この細胞を吸着させたコラーゲンスポンジを入れた４８ウェルプレートを、マウスの腎皮膜下への移植まで氷上に置いた。
７週齢から１２週齢の雌性ＢＡＬＢ／ｃＡｎＮＣｒｊマウスの大腿骨と脛骨の骨髄腔内を、２６ゲージの注射針を装着した注射器を用いてＰＢＳで洗い出し、骨髄細胞液を得た。この骨髄細胞液をナイロンメッシュでろ過して大きな細胞塊等を除き、培養液で２×１０５ｃｅｌｌｓ／ｍｌの濃度に調製して細胞浮遊液を作製した。なお、細胞浮遊液中には赤血球系の細胞がかなり含まれているが、赤血球系の細胞を無視して細胞の濃度を２×１０５ｃｅｌｌｓ／ｍｌと計算した。この細胞浮遊液を、直径１０ｃｍのプラスチック製ディッシュ（ペトリディッシュ）に、１ディッシュ当たり７ｍｌを移し、リコンビナントマウスＧＭ−ＣＳＦを最終濃度５ｎｇ／ｍｌとなるように添加した。３日又は４日毎に細胞上清を半分捨て、５ｎｇ／ｍｌのＧＭ−ＣＳＦを加えた新しい培養液を加えた。培養８日目または９日目に浮遊細胞を集め、５ｎｇ／ｍｌのＧＭ−ＣＳＦを加えた新しい培養液で２×１０６ｃｅｌｌｓ／ｍｌの細胞浮遊液を作り、１μｇ／ｍｌのＬＰＳ（もしくはＴＮＦ−α）、および、抗原パルスを行う場合、高分子生体材料の移植前にマウスに接種される抗原と同じ抗原を加えて、細胞培養ディッシュで１７〜２０時間培養し、樹状細胞を成熟および活性化させた。
コラーゲンスポンジ（”Ｃｏｌｌａｇｅｎ Ｓｐｏｎｇｅ”＃ＣＳ−３５，ＫＯＫＥＮ，Ｔｏｋｙｏ，Ｊａｐａｎ）を、一定の形および大きさに小さく切り、４８ウェルプレートのウェルに１片ずつ入れた。上記のようにして樹立したサイトカイン産生ＴＥＬ−２ストローマ細胞を、Ｔｒｙｐｓｉｎ−ＥＤＴＡ溶液を用いて収集し、培養液で１回洗浄して培養液に浮遊させ、細胞数を数えて氷上に置いた。上記方法により調製した活性化樹状細胞を、培養液で２回洗浄して培養液に浮遊させて細胞数を数え、氷上に置いた。その際、樹状細胞をＬＰＳで活性化した場合は、ＬＰＳが残らないように丁寧に洗浄した。その後、それぞれの細胞を、ＰＢＳ（ｐｈｏｓｐｈａｔｅ ｂｕｆｆｅｒｅｄ ｓａｌｉｎｅ）、０．１％ＢＳＡ／ＰＢＳでそれぞれ１回ずつ洗浄した後、１ｍｌの１％ＢＳＡ／ＰＢＳを加えて細胞濃度のほぼ同じ均一な細胞浮遊液を作製した。これらの浮遊液を１対１の容量で混合し、遠心分離により細胞を沈澱させてペレットの状態にし、さらに少量の１％ＢＳＡ／ＰＢＳを加えて、非常に細胞濃度の濃い均一な細胞浮遊液を作製した。この細胞浮遊液をコラーゲンスポンジの上に滴下し、スポンジを揉むようにして細胞をコラーゲンスポンジに吸着させた。少量の１％ＢＳＡ／ＰＢＳ溶液に細胞を浮遊させてコラーゲンスポンジに吸着させているので、乾燥させないように注意した。この細胞を吸着させたコラーゲンスポンジを入れた４８ウェルプレートは、細胞を吸着させたコラーゲンスポンジをマウスの腎皮膜下に移植するまで氷上に保った。
８週齢から１４週齢の雌性ＢＡＬＢ／ｃＡｎＮＣｒｊマウス（日本チャールズリバー社、ＳＰＦ環境のマウス飼育室で飼育）に麻酔をし、体表面を７０％エタノールで消毒して右側臥位にした。左季肋部の皮を約１ｃｍ切開し、その真下の筋層もほぼ同じ大きさに切開した。腎周辺の脂肪組織をピンセットでつまみ、腎臓を体外に引き出した。実体顕微鏡下で観察しながら、先の鋭利なピンセットを用いて、腎実質に傷をつけないように注意しながら、腎皮膜を開き、腎皮膜と腎臓の間にコラーゲンスポンジを挿入した。通常、片方の腎臓につき２ケ所（腎上極、下極付近）移植するため、左右の腎臓で一匹のマウスあたり計４つの、ストローマ細胞を付着させたコラーゲンスポンジを移植した。
レシピエントであるＢＡＬＢ／ｃＡｎＮＣｒｊマウスはＮＰ−ｏｖａｌｂｕｍｉｎ（ＮＰ−ＯＶＡ）をａｌｕｍ中に沈殿させた抗原を腹腔内に投与することにより４週間前に免疫しておいた。
移植３週間後に人工リンパ節を回収した。回収した人工リンパ節をＳＣＩＤマウス（Ｃ．Ｂ−１７／ＩｃｒＣｒｊ−ｓｃｉｄ／ｓｃｉｄ）の腎臓皮膜下に移植した。
翌日、ＳＣＩＤマウスをＮＰ−ＯＶＡを用いて免疫した。この際、ＮＰ−ＯＶＡをＰＢＳに溶解し、抗原１００μｇを静脈内投与した。さらに１週間後、同じ抗原で追加免疫行った。抗原量は１回目の１０分の１の１０μｇであった。
２回目の免疫後、４〜５日目にＳＣＩＤマウスから血清を回収するとともに、脾臓を取り出した。回収した血清については、血清中のＩｇＧ抗ＮＰ抗体濃度を測定した。さらに、脾臓中の抗体産生細胞数をＥＬＩＳｐｏｔ法にて測定した。また、脾臓細胞を調製し、細胞培養用培地で細胞浮遊液を調製した。なお、人工リンパ節の構築、人工リンパ節のＳＣＩＤマウスへの再移植およびＳＣＩＤマウスの免疫の工程において人工リンパ節の構築時に用いる樹状細胞の抗原によるパルスの有無および１００μｇの抗原による一次免疫および１０μｇの抗原による二次免疫の有無の条件を変えて行った。さらに、免疫マウスとしてナイーブＢａｌｂ／ｃマウス、ナイーブＳＣＩＤマウス、抗原でプレ免疫したＢａｌｂ／ｃマウスをさらに抗原を用いてｉ．ｖ．により２回再免疫したマウスおよび抗原でプレ免疫したＢａｌｂ／ｃマウスから採取した脾細胞（１×１０７細胞）を静脈注射によりＳＣＩＤマウスに移植し、その後マウスを抗原を用いて２回再免疫したＳＣＩＤマウスを対照として用いた。
表１に人工リンパ節を再移植せずに二次免疫まで行ったＢａｌｂ／ｃマウス、人工リンパ節を再移植して二次免疫を行ったＳＣＩＤマウス（本発明の方法）、人工リンパ節を再移植してその後の免疫を行わなかったＳＣＩＤマウスおよび人工リンパ節を再移植せずに二次免疫まで行ったＳＣＩＤマウスの血清中抗ＮＰ抗体濃度を示す。
表２に、人工リンパ節を再移植したＳＣＩＤマウスの脾臓中のＩｇＧクラスの抗ＮＰ特異的抗体産生細胞の数を示す。
脾臓細胞：骨髄腫細胞（ミエローマ）を１０：１で混合し、融合剤としてポリエチレングリコール１５００（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍ社製）を用いて細胞融合させることにより多数のハイブリドーマを作製した。骨髄腫細胞は、Ｐ３Ｘ６３Ａｇ８Ｕ．１を用いた。ハイブリドーマの選択は、１０％のウシ胎児血清（Ｆｅｔａｌ Ｃａｌｆ Ｓｅｒｕｍ、ＦＣＳ）とヒポキサンチン（Ｈ）、アミノプテリン（Ａ）、チミジン（Ｔ）を含有するＨＡＴ含有ＤＭＥＭ培地（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ社製）中で培養することにより行った。さらに、ＨＴ含有ＤＭＥＭ培地を用いて限界希釈法によりシングルクローンにした。培養は、９６ウェルマイクロタイタープレート中で行い、各ウェルに１０４の細胞を播いて行った。抗ＮＰモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマクローンのスクリーニングは、酵素標識免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）により行った。この際、西洋ワサビペルオキシダーゼ標識抗マウスＩｇＧ抗体を二次抗体として用い、酵素反応後の各ウェルの吸光度をＥＬＩＳＡリーダーを用いて測定した。
図４に各ウェル中のＥＬＩＳＡ測定結果を示す。図４に示すように、本発明の方法でマウス骨髄腫細胞と細胞融合を行うと殆ど全てが抗原特異的な抗体を産生しているハイブリドーマを得ることができた。
本発明の方法で用いる人工リンパ節は、迅速かつ大量に抗原特異的な免疫反応を誘導し、有効な抗体産生細胞を効率よく供給することができる。該人工リンパ節を用いてハイブリドーマを作成することにより、高い形成率で抗原特異的ハイブリドーマを作成することができる。特に、免疫原性が低い抗原に対する特異的ハイブリドーマの作成等に有利である。
本明細書で引用した全ての刊行物、特許および特許出願をそのまま参考として本明細書にとり入れるものとする。
本明細書で引用した全ての刊行物、特許および特許出願をそのまま参考として本明細書にとり入れるものとする。
Claims (11)
- 以下の工程を含む抗原特異的ハイブリドーマを作成する方法：
（ａ） 抗原で非ヒト動物を免疫し、免疫した非ヒト動物にサイトカインを産生するストローマ細胞を含む高分子生体材料を移植し、前記非ヒト動物に人工リンパ節を形成させる工程；
（ｂ） 工程（ａ）で形成された人工リンパ節を回収し、工程（ａ）の非ヒト動物と同種の免疫不全非ヒト動物に移植する工程；
（ｃ） 工程（ｂ）で人工リンパ節を移植した免疫不全非ヒト動物を前記工程（ａ）の抗原で免疫する工程；
（ｄ） 工程（ｃ）で免疫した免疫不全非ヒト動物より脾細胞を採取する工程；ならびに
（ｅ） 工程（ｄ）で採取した脾細胞をミエローマ細胞と融合させて抗体産生ハイブリドーマを形成させる工程。 - 高分子材料がさらに請求項１の工程（ａ）の抗原でパルスした活性化樹状細胞を含む請求項１記載の方法。
- ストローマ細胞が、ＴＥＬ−２細胞である請求項１または２に記載の方法。
- 高分子材料がコラーゲンスポンジである請求項１〜３のいずれか１項に記載の方法。
- サイトカインが、リンホトキシンおよび／またはケモカインである請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。
- 非ヒト動物がマウスである請求項１〜５のいずれか１項に記載の方法。
- 免疫不全動物が免疫不全マウスである請求項１〜６のいずれか１項に記載の方法。
- 免疫不全マウスがＳＣＩＤマウスまたはＲＡＧ２遺伝子欠損マウスである請求項１〜７のいずれか１項に記載の方法。
- 以下を含む、抗原特異的なハイブリドーマを作成するためのキット：
（ａ） サイトカイン発現ベクターおよびストローマ細胞、またはサイトカイン発現ベクターが導入されたストローマ細胞；
（ｂ） 高分子生体材料；ならびに
（ｃ） 活性化樹状細胞。 - 以下をさらに含む請求項９記載の抗原特異的なハイブリドーマを作成するためのキット：
（ｄ） 人工リンパ節形成用マウス；および
（ｅ） 免疫不全マウス。 - さらに、抗原を含み活性化樹状細胞が該抗原でパルスされている、請求項９または１０に記載の抗原特異的なハイブリドーマを作成するためのキット
Applications Claiming Priority (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2005357949 | 2005-12-12 | ||
| JP2005357949 | 2005-12-12 | ||
| PCT/JP2006/325137 WO2007069755A1 (ja) | 2005-12-12 | 2006-12-12 | 人工リンパ節を用いた効率的な抗原特異的ハイブリドーマの作成法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPWO2007069755A1 true JPWO2007069755A1 (ja) | 2009-05-28 |
Family
ID=38163056
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2007550257A Abandoned JPWO2007069755A1 (ja) | 2005-12-12 | 2006-12-12 | 人工リンパ節を用いた効率的な抗原特異的ハイブリドーマの作成法 |
Country Status (4)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US20090280563A1 (ja) |
| EP (1) | EP1970444A4 (ja) |
| JP (1) | JPWO2007069755A1 (ja) |
| WO (1) | WO2007069755A1 (ja) |
Families Citing this family (14)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US8071373B2 (en) | 2004-04-28 | 2011-12-06 | Sanofi Pasteur Vaxdesign Corp. | Co-culture lymphoid tissue equivalent (LTE) for an artificial immune system (AIS) |
| US7785883B2 (en) | 2004-04-28 | 2010-08-31 | Vax Design Corp. | Automatable artificial immune system (AIS) |
| US7771999B2 (en) | 2004-04-28 | 2010-08-10 | Vaxdesign Corp. | Disease model incorporation into an artificial immune system (AIS) |
| US8298824B2 (en) | 2004-04-28 | 2012-10-30 | Sanofi Pasteur Vaxdesign Corporation | Methods of evaluating a test agent in a diseased cell model |
| US7709256B2 (en) | 2004-04-28 | 2010-05-04 | Vaxdesign Corp. | Disease model incorporation into an artificial immune system (AIS) |
| US7785806B2 (en) | 2004-04-28 | 2010-08-31 | Vaxdesign Corporation | Method for determining the immunogenicity of an antigen |
| US7855074B2 (en) | 2004-04-28 | 2010-12-21 | Vaxdesign Corp. | Artificial immune system: methods for making and use |
| US8030070B2 (en) | 2004-04-28 | 2011-10-04 | Sanofi Pasteur Vaxdesign Corp. | Artificial lymphoid tissue equivalent |
| US8003387B2 (en) | 2005-12-21 | 2011-08-23 | Sanofi Pasteur Vaxdesign Corp. | In vitro germinal centers |
| AU2007345747A1 (en) | 2006-06-27 | 2008-08-07 | Vaxdesign Corporation | Models for vaccine assessment |
| WO2009048661A1 (en) | 2007-07-16 | 2009-04-16 | Vaxdesign Corporation | Artificial tissue constructs comprising alveolar cells and methods for using the same |
| US20110231944A1 (en) * | 2008-09-04 | 2011-09-22 | Riken | B cell-derived ips cells and application thereof |
| WO2012081657A1 (ja) * | 2010-12-15 | 2012-06-21 | 学校法人北里研究所 | 抗原特異的モノクローナル抗体産生ハイブリドーマの作製方法及び抗原特異的モノクローナル抗体の製造方法 |
| CN107556378A (zh) * | 2017-10-23 | 2018-01-09 | 成都微康生物科技有限公司 | 利用人工淋巴结技术生产单克隆抗体的方法 |
Family Cites Families (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2003030965A2 (de) * | 2001-09-27 | 2003-04-17 | Martin Scholz | Künstlicher lymphknoten |
| JP4097544B2 (ja) * | 2003-02-27 | 2008-06-11 | 独立行政法人理化学研究所 | 人工リンパ節 |
| JP2006129839A (ja) * | 2004-11-09 | 2006-05-25 | Institute Of Physical & Chemical Research | 抗原特異的な抗体を産生する人工リンパ節 |
-
2006
- 2006-12-12 JP JP2007550257A patent/JPWO2007069755A1/ja not_active Abandoned
- 2006-12-12 US US12/097,164 patent/US20090280563A1/en not_active Abandoned
- 2006-12-12 EP EP06834864A patent/EP1970444A4/en not_active Withdrawn
- 2006-12-12 WO PCT/JP2006/325137 patent/WO2007069755A1/ja active Application Filing
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| EP1970444A1 (en) | 2008-09-17 |
| US20090280563A1 (en) | 2009-11-12 |
| EP1970444A4 (en) | 2010-01-20 |
| WO2007069755A1 (ja) | 2007-06-21 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| JPWO2007069755A1 (ja) | 人工リンパ節を用いた効率的な抗原特異的ハイブリドーマの作成法 | |
| Nguyen et al. | Factors affecting early antibody secreting cell maturation into long-lived plasma cells | |
| US5804446A (en) | Blood-borne mesenchymal cells | |
| BR112019023076A2 (pt) | expansão de células t gama delta, composições e métodos de uso das mesmas | |
| CN105008521A (zh) | 调节干细胞的免疫调节作用的方法 | |
| US11642376B2 (en) | Method for generating T cell progenitors | |
| US8815543B2 (en) | Methods of producing antigen-specific B cell populations in the presence of CD40:CD40L, BAFF:BAFF receptor and Fas:FasL stimulation | |
| DE69534595T2 (de) | Methode zur proliferation und differenzierung von b-zellen und verwendungen dafür | |
| WO2008038579A1 (fr) | diffÉrentiation/induction in vitro de lymphocytes À partir de cellules souches dont le gÉnotype rÉsulte d'une reconstitution gÉnÉtique | |
| JP2019170176A (ja) | ケモカインレセプターと細胞接着分子を発現するｃｄ３陰性細胞の集団、およびその利用 | |
| JP2002529509A (ja) | ヒト間葉幹細胞の子宮内移植で胎児を処置し間葉幹細胞を移植し移植器官を調製する方法と調製された雑種器官 | |
| Ishida et al. | Effects of the deregulated expression of human interleukin-2 in transgenic mice | |
| JP5526441B2 (ja) | 癌治療用人工リンパ節 | |
| Tan et al. | Artificial engineering of secondary lymphoid organs | |
| JP2006129839A (ja) | 抗原特異的な抗体を産生する人工リンパ節 | |
| US10781423B2 (en) | Method for producing B cell population | |
| JP4097544B2 (ja) | 人工リンパ節 | |
| JP2012036151A (ja) | 人工リンパ節の作製方法 | |
| JPH06508762A (ja) | 卵黄嚢幹細胞 | |
| MACLENNAN et al. | Cellular immunobiology of lymph nodes and spleen | |
| Shukla | Controlled generation of progenitor T-cells from hematopoietic stem cells and pluripotent stem cells | |
| JPH09510348A (ja) | 血行性間葉細胞 | |
| Kanaan et al. | Porcine antigen presenting cells produce soluble adjuvants that stimulate B cells within and across the species | |
| EA044224B1 (ru) | ЭКСПАНСИЯ γδ-T-КЛЕТОК, КОМПОЗИЦИИ И СПОСОБЫ ИХ ПРИМЕНЕНИЯ | |
| Apte et al. | Establishment and characterization of a novel bone-marrow-derived macrophage-like accessory cell line |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20091211 |
|
| A762 | Written abandonment of application |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A762 Effective date: 20100823 |