JPWO2004087910A1 - 組換えタンパク質が高生産された植物貯蔵器官の生産方法及び新規組換えタンパク質 - Google Patents

Abstract

組換えタンパク質を植物貯蔵器官中に高生産させる方法、及び、ＧＬＰ−１誘導体を提供するものである。組換えタンパク質の遺伝子、サイトカイニン関連遺伝子、薬剤耐性遺伝子及び脱離能を有するＤＮＡ因子を含み、かつ、サイトカイニン関連遺伝子と薬剤耐性遺伝子は脱離能を有するＤＮＡ因子と挙動を一にする位置に存在し、植物の貯蔵器官中に発現させる組換えタンパクは脱離能を有するＤＮＡ因子とは挙動を一にしない位置に存在するベクターを用いて、形質転換することにより、組換えタンパク質が高生産された植物貯蔵器官を得る。該方法によりＧＬＰ−１を生産し、更に酵素の分解作用に対して安定化した誘導体を提供する。

Description

本発明は、組換えタンパク質が高生産された植物の貯蔵器官を生産する方法、及び、ペプチダーゼ耐性化したヒトグルカゴン様ペプチド―１（ＧＬＰ−１）の新規誘導体とその利用に関する。なお、本発明で、「組換えタンパク質」とは、「組換えペプチド及び組換えタンパク質」を包含するものである（以下、「組換えタンパク質」と表示する）。

遺伝子工学技術を利用した医薬品、臨床検査薬や工業原料の生産は、既に実産業において多大の貢献をなしており、中でも、微生物又は哺乳類培養細胞を宿主とした、物質生産系は特に広く利用されている。しかしながら、これらの細胞を培養するには、無菌環境が整った培養設備や培地等が必要であり、さらに、石油エネルギーの消費が避けられないためコスト高となっている。また、哺乳類細胞を宿主として用いると、人体に有害なウイルスの混入リスクが避けられない。
そのため、微生物や哺乳類細胞の培養による物質生産にかわる、安価で安全な物質生産システムとして形質転換植物を用いた物質生産システムの開発が行われている。例えば、生分解性ポリエステル等の高分子化合物（例えば、特開２００２−２６２８８６号公報）、ワクチン（例えば、Ｇ．Ｊａｅｇｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．２５９，４２６，１９９９）やラクトフェリン（Ｄ．Ｃｈｏｎｇ ｅｔ ａｌ．，Ｔｒａｎｓｇｅｎｉｃ．Ｒｅｓ．９，７１，２０００）等のタンパク質、エンケファリン（特開２０００−１０６８９０号公報）等のペプチドを生産する形質転換植物の作製が現在までに報告されている。
形質転換植物の場合、その植物の可食部、例えば、ダイズやイネの種子、野菜の葉などで人体に有益な機能性物質を生産させれば、目的物質の抽出工程を経ることなく、直接人体に経口摂取することが可能である。さらに、種子の場合には、冷蔵装置の完備した設備で保存や輸送を行う必要がなく、室温での安定的な長期保存が可能である。また、目的の物質を抽出する場合にも、種子は葉と異なり、フェノール性物質の混入がほとんどないため、容易に精製することができる。従って、種子は目的の遺伝子産物を生産させる器官として理想的だと考えられ、これまでに、例えば、グリシニン（Ｔ．Ｋａｔｓｕｂｅ ｅｔ ａｌ．，Ｐｌａｎｔ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．１２０，１０６３，１９９９）等のタンパク質、（１，３−１，４）−β−グルカナーゼ（Ｈ．Ｈｏｒｖａｔｈ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｈｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ．，９７，１９１４，２０００）等の酵素、エンケファリン（Ｄ．Ｃｈｏｎｇ ｅｔ ａｌ．，Ｔｒａｎｓｇｅｎｉｃ．Ｒｅｓ．，９，７１，２０００）等のペプチドを生産した種子の作製が報告されている。
しかしながら、形質転換植物による物質生産システムは、前記の優れた特性を持つ反面、現在の主流である微生物や哺乳類細胞培養システムに比較して生産効率が悪く、特に、植物貯蔵器官による生産効率は悪かった。この問題を解決するため、形質転換植物における物質生産能力の増強策が様々に考案されている。例えば、貯蔵器官の一つである種子での物質生産能力を改善するため、導入した目的遺伝子の発現や遺伝子産物の蓄積向上を図る観点から、種子で強力に発現する種子貯蔵タンパク質のプロモーターの利用（例えば、Ｔ．Ｋａｔｓｕｂｅ ｅｔ ａｌ．，Ｐｌａｎｔ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．，１２０，１０６３，１９９９）、このプロモーターとこれに作用して発現を向上させる転写因子との併用（例えば、Ｄ．Ｙａｎｇ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｈｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ．，９８，１１４３８，２００１）、５’非翻訳領域の挿入（例えば、特開２００２−５８４９２号公報）、遺伝子中のＣ＋Ｇ含量の最適化（Ｈ．Ｈｏｒｖａｔｈ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｈｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ．，９７，１９１４，２０００）、小胞体への移行シグナルの付加（例えば、特開２０００−５０４５６７号公報）等に関する研究が、精力的に行われている。また、外来遺伝子を導入する植物体として種子貯蔵タンパク質を欠く突然変異体を用いることにより、外来遺伝子産物の種子での生産量が向上したことも報告されている（特開２００２−５８４９２号公報）。しかしながら、これらの改良だけでは、まだ十分に種子での物質生産能力が増強されたとは言えず、新たな手法の開発が望まれていた。
一方、ＧＬＰ−１（Ｇｌｕｃａｇｏｎ ｌｉｋｅ ｐｅｐｔｉｄｅ−１）は、食物摂取により消化管より分泌され、膵臓に働いて糖依存的なインスリン分泌を刺激するホルモンとして知られている。２型糖尿病患者では、このＧＬＰ−１に対する応答性は維持されているが、量的な不足がいわれている。ＧＬＰ−１剤の開発は、ＧＬＰ−１の不足分を補う、インスリン分泌促進剤としての糖尿病治療薬への応用に期待が持たれている。しかしながら、ＧＬＰ−１の活性本体は、ＧＬＰ−１（７−３６）アミドあるいはＧＬＰ−１（７−３７）のポリペプチドであり、ＧＬＰ−１の経口摂取では消化管内で消化酵素により消化・分解され、十分に吸収されない。このため臨床では、点滴による静脈内注射や皮下注射が試みられているのが現状である。しかも、ＧＬＰ−１は、血中や組織に存在するジペプチジルペプチダーゼＩＶ（ＤＰＰ−ＩＶ）によっても分解を受け、活性半減期が１〜２分と非常に短いことや、腎臓から排泄され易く血中半減期が５分以内であることが報告されており、これらが臨床応用へのネックになっている。
そこで、分解されにくく半減期の長いＧＬＰ−１誘導体の開発が行われている。例えば、８位アミノ酸置換誘導体（Ｄｉａｂｅｔｏｌｏｇｉａ ４１，２７１−２７８，１９９８、Ｂｉｏｃｈｅｍ ４０，２８６０−２８６９，２００１）、Ｎ末端およびＣ末端アミノ酸の修飾体（ＷＯ９８０８８７１など）、３４位をＡｒｇに置換し２６位Ｌｙｓに親油性基を導入した誘導体（ＷＯ０００７６１７）、及び配列全般に渡るアミノ酸置換による誘導体（ＷＯ９９４３７０５、ＷＯ９１１１４５７）等である。また、皮下からの吸収が遅い徐放型注射剤の開発、あるいはＧＬＰ−１様アゴニスト活性をもち、血中半減期の長いトカゲ由来の合成Ｅｘｅｎｄｉｎ−４での注射剤の開発が行われている。しかし、これらは注射剤であり、患者の負担を考慮すると注射以外の経路で投与される新規ＧＬＰ−１誘導体が望まれる。
本発明の課題は、組換えタンパク質が高生産された植物貯蔵器官を生産する方法、該方法により生産された組換えタンパク質が高生産された植物貯蔵器官、及び、ペプチダーゼ耐性化したヒトグルカゴン様ペプチド−１（ＧＬＰ−１）の新規誘導体とその利用を提供することにある。
すなわち、形質転換植物の貯蔵器官における物質生産を増強させるため、前記のような様々な試みがなされている。しかしながら、医薬品等として有用な組換えタンパク質が生産された植物貯蔵器官を食事として摂取し、その十分な機能を体内で発揮させるには、より高度に組換えタンパク質が生産された植物貯蔵器官を生産する方法の開発が必要である。同時に、植物から組換えタンパク質を抽出し、医薬品や機能性食品として加工する場合にも、それらの貯蔵器官に組換えタンパク質が高生産されていることがコスト面で重要である。従って、本発明の目的の一つは、形質転換植物において、組換えタンパク質が高生産された貯蔵器官を生産する新規な方法を提供することにある。
また、前記方法の植物貯蔵器官中で高生産させる組換えタンパク質としてＧＬＰ−１を選択すれば、通常の食事のように果実や米等を摂取するだけで糖尿病治療効果が期待できる。しかし、前記したように、この天然型ＧＬＰ−１は、消化管内で消化酵素により消化・分解されるので、経口的に安定して投与することができず、したがって、現状では注射以外の有効な投与方法がない。そこで、何らかの方法により消化を受けずに胃を通過できれば、小腸で吸収されるのではないかと考えられる。ただし、吸収時には、ＧＬＰ−１は単体として存在しなければならない。その際に、天然型ＧＬＰ−１では、トリプシンなどの酵素により分解を受け失活してしまう。
更に、天然型ＧＬＰ−１は、吸収された後もジペプチジルペプチダーゼＩＶによる分解を受け、作用の持続は期待できない。したがって、ＧＬＰ−１の経口投与によって薬理効果を得るには、アミノ酸置換によってトリプシンやジペプチジルペプチダーゼＩＶによる分解を受けにくく、活性に持続性のあるＧＬＰ−１誘導体をデザインする必要がある。
従って、本発明の他の目的の一つは、トリプシン等の消化酵素に対する耐性をもつ経口投与が可能な新規ＧＬＰ−１誘導体、更に好ましくは、ジペプチジルペプチダーゼＩＶに対する耐性をも合わせもつ新規ＧＬＰ−１誘導体を提供することにある。このためには、食事として摂取された場合に吸収され、薬理効果を示すＧＬＰ−１誘導体を得ることである。

本発明者は、形質転換植物において、組換えタンパク質が高生産された貯蔵器官を生産する方法について、鋭意研究した結果、植物の貯蔵器官中に発現させる組換えタンパク質の遺伝子、サイトカイニン関連遺伝子、薬剤耐性遺伝子及び脱離能を有するＤＮＡ因子を含み、かつ、サイトカイニン関連遺伝子と薬剤耐性遺伝子は脱離能を有するＤＮＡ因子と挙動を一にする位置に存在し、植物の貯蔵器官中に発現させる組換えタンパク質の遺伝子は脱離能を有するＤＮＡ因子とは挙動を一にしない位置に存在するベクターを構築し、該ベクターを細胞中に導入し、該遺伝子が導入された植物の細胞から形質転換体を再分化せしめ、該再分化した形質転換体から貯蔵器官を得ることにより、形質転換植物において、組換えタンパク質が高生産された貯蔵器官を生産することができることを見い出し、本発明を完成するに至った。
また、本発明は、該組換えタンパク質が高生産された植物貯蔵器官を生産する方法を、糖依存的なインスリン分泌を刺激するホルモンとして知られているＧＬＰ−１に適用すると共に、該ＧＬＰ−１の誘導体を作製して、消化酵素等により消化・分解されない、更には、血漿中でも安定なＧＬＰ−１の誘導体を提供するものである。すなわち、本発明者らは、ＧＬＰ−１（７−３６）あるいはそのアミノ酸配列の１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換及び／又は付加された配列からなり、かつＧＬＰ−１活性を有するペプチドにおいて、２６位をグルタミンに、３４位をアスパラギン又はアスパラギン酸に置換したＧＬＰ−１誘導体が、天然型ＧＬＰ−１と同程度の活性を維持し、トリプシンのような消化酵素に対する耐性をもち、小腸からの吸収が可能であることを見い出した。また、更に８位のアラニンをセリン又はグリシンに変更することにより、ジペプチジルペプチダーゼＩＶに対する耐性をも獲得し、血漿中でも安定であることを見い出し本発明をなした。また、従来ペプチドを経口投与した場合胃においてペプシンで分解されてしまうので、ペプチドの経口投与は不可能であった。しかし本発明の植物貯蔵器官で産生させることにより、ペプシン耐性を獲得することができ、経口投与が可能となった。

第１図は、本発明の実施例において、ｐＧｌｂＧＬＰ１３０Ｈｍ作製スキムのうち、ｐＴＬ７からｐＧｌｂＧＬＰの作製までを示す図である。
第２図は、本発明の実施例において、ｐＧｌｂＧＬＰ１３０Ｈｍ作製スキムのうち、ｐＵＣ１８及びｐＮＰＩ１３０からｐＮＰＩ１３０ＰＵＣの作製までを示す図である。
第３図は、本発明の実施例において、ｐＧｌｂＧＬＰ１３０Ｈｍ作製スキムのうち、ｐＮＰＩ１４０及びｐＮＰＩ１３０ＰＵＣからｐＮＰＩ１３０Ｈｍの作製までを示す図である。
第４図は、本発明の実施例において、ｐＧｌｂＧＬＰ及びｐＮＰＩ１３０ＨｍからｐＧｌｂＧＬＰ１３０Ｈｍの作製までを示すと共に、ｐＧｌｂＧＬＰ１３０Ｈｍの制限酵素地図を示す図である。
第５図は、本発明の実施例において、実施例１及び比較例１で得られたイネ完熟種子における、ＧＬＰ−１誘導体融合タンパク質の蓄積レベルを示す図である。
第６図は、本発明の実施例において、従来型ベクターｐＧｌｂＧＬＰ―Ｈｍの制限酵素地図を示す図である。
第７図は、本発明の実施例において、実施例２に示した方法に従って、比較製造例１のＧＬＰ−１（７−３６ａｍｉｄｅ）（天然型ＧＬＰ−１）、比較製造例２の［Ｓｅｒ^８］−ＧＬＰ−１（７−３６ａｍｉｄｅ）、比較製造例３の［Ｇｌｙ^８］−ＧＬＰ−１（７−３６ａｍｉｄｅ）、および製造例１の［Ｇｌｎ^２６，Ａｓｎ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６ａｍｉｄｅ）のサイクリックＡＭＰ産生活性を測定した結果を示す図である。
第８図は、本発明の実施例において、実施例３に示した方法に従って、［Ｇｌｎ^２６，Ａｓｎ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６ａｍｉｄｅ）をトリプシン処理し、トリプシン処理したものと処理なしのものとで、サイクリックＡＭＰ産生活性の濃度依存性を比較した図である。
第９図は、本発明の実施例において、実施例４で示した方法に従い、実施例１で得られたイネ完熟種子の白米及びその粉末由来のＧＬＰ−１誘導体、比較製造例１のＧＬＰ−１（７−３６ａｍｉｄｅ）（天然型ＧＬＰ―１）、製造例２の［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）、製造例３の［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｎ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）を用いて、ペプシンに対する安定性を比較した図である。
第１０図は、本発明の実施例において、実施例５で示した方法に従い、イネ完熟種子から融合タンパクとして［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）を抽出し、この抽出画分のトリプシン処理時間とサイクリックＡＭＰ産生活性の関係を示した図である。
第１１図は、本発明の実施例において、実施例６で示した方法に従い、比較製造例１のＧＬＰ−１（７−３６ａｍｉｄｅ）（天然型ＧＬＰ−１）、製造例２の［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）、製造例３の［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｎ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）を用いて、トリプシン耐性を比較した図である。
第１２図は、本発明の実施例において、実施例７で示した方法に従い、比較製造例１のＧＬＰ−１（７−３６ａｍｉｄｅ）（天然型ＧＬＰ−１）、製造例２の［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）、製造例３の［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｎ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）を用いて、ＤＰＰ−ＩＶ耐性を比較した図である。
第１３図は、本発明の実施例において、実施例８で示した方法に従い、比較製造例１のＧＬＰ−１（７−３６）（天然型ＧＬＰ−１ａｍｉｄｅ）、製造例２の［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）、製造例３の［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｎ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）を用いて、インスリン分泌促進活性を比較した図である。
第１４図は、本発明の実施例において、実施例９で示した方法に従い、比較製造例１のＧＬＰ−１（７−３６ａｍｉｄｅ）（天然型ＧＬＰ−１）、製造例２の［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）、製造例３の［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｎ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）を用いて、マウス経口糖負荷試験における血糖低下効果を比較した図で、図１５の０から１２０分までの血糖値の変動を示すグラフの曲線下面積を、血糖値変化量として示している。
第１５図は、本発明の実施例において、実施例９で示した方法に従い、比較製造例１のＧＬＰ−１（７−３６ａｍｉｄｅ）（天然型ＧＬＰ−１）、製造例２の［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）、製造例３の［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｎ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）を用いて、マウス経口糖負荷試験における血糖低下効果を比較した図で、０から１２０分までの血糖値の経時的な変化を示している。

［組換えタンパク質高生産植物貯蔵器官の生産］
本発明は、組換えタンパク質が高生産された植物貯蔵器官を生産する方法であって、次の過程（Ａ）、（Ｂ）、（Ｃ）からなるものである：（Ａ）植物の貯蔵器官中に発現させる組換えタンパク質遺伝子、サイトカイニン関連遺伝子、薬剤耐性遺伝子及び脱離能を有するＤＮＡ因子を含み、かつ、サイトカイニン関連遺伝子と薬剤耐性遺伝子は脱離能を有するＤＮＡ因子と挙動を一にする位置に存在し、植物の貯蔵器官中に発現させる組換えタンパク質遺伝子は脱離能を有するＤＮＡ因子とは挙動を一にしない位置に存在するベクターを構築し、該ベクターを細胞中に導入する過程、（Ｂ）上記（Ａ）により、ベクターが導入された植物細胞を、薬剤添加培地及び薬剤非添加培地にて培養を行うことにより形質転換体を再分化せしめる過程、（Ｃ）上記（Ｂ）にて再分化した形質転換体から、植物貯蔵器官を得る過程。以下、本発明について詳細に説明する。
（対象植物）
本発明で植物貯蔵器官の生産に用いる対象植物としては、貯蔵器官が形成されるものであれば、特に限定されるものではないが、双子葉植物としては、タバコ、ナタネ、ダイズ等を、単子葉植物としては、イネ、トウモロコシ、オオムギ、コムギ等の穀類やアスパラガス等を、代表的なものとして挙げることができる。また、本発明で組換えタンパク質を高生産させる植物貯蔵器官としては、特に限定されるものではないが、果実、塊根、塊茎、種子等を、代表的なものとして挙げることができる。
（使用する遺伝子）
本発明において使用する遺伝子は、ｃＤＮＡ又はゲノムＤＮＡのクローニングにより得ることができる。また、あらかじめそのＤＮＡ配列が明らかにされているものであれば、これを化学合成して得てもよい。さらに、ＤＮＡ配列が明らかでなくとも、アミノ酸配列が明らかであれば、アミノ酸配列から推定されるＤＮＡ配列を化学合成できる。
本発明において、遺伝子は、必要に応じ、その発現のために必要なプロモーター及び／又はターミネーターの配列と、さらには遺伝子産物を貯蔵器官へ効率的に移行させるシグナル配列とを連結して使用する。これらのプロモーター、ターミネーター及びシグナル配列は、植物において機能するものでありさえすれば、別に制限なく使用することができる。例えば、このようなプロモーターとしては、カリフラワーモザイクウイルスの３５Ｓプロモーター（Ｊ．Ｔ．Ｏｄｅｌｌ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ（Ｌｏｎｄｏｎ），３１３，８１０，１９８５）、ノパリン合成酵素のプロモーター（Ｗ．Ｈ．Ｒ．Ｌａｎｇｒｉｄｇｅ ｅｔ ａｌ．，Ｐｌａｎｔ Ｃｅｌｌ Ｒｅｐ．，４，３５５，１９８５）等を使用することができる。更に、誘導型プロモーターを用いれば、遺伝子発現を制御することができる。
かかる誘導型プロモーターは現在までに数多く知られている。例えば、化学物質に反応して誘導されるものとして、グルタチオン−Ｓ−トランスフェラーゼＩ系遺伝子のプロモーター（特開平５−２６８９６５号公報）、グルタチオン−Ｓ−トランスフェラーゼＩＩ系遺伝子のプロモーター（国際公開ＷＯ９３／０１２９４号公報）、Ｔｅｔリプレッサー融合型カリフラワーモザイクウイルス３５Ｓプロモーター（Ｃ．Ｇａｔｚ ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｌ．Ｇｅｎ．Ｇｅｎｅｔ．，２２７，２２９，１９９１）、Ｌａｃオペレーター／リプレッサー系プロモーター（Ｒ．Ｊ．Ｗｉｌｄｅ ｅｔ ａｌ．，Ｔｈｅ ＥＭＢＯ Ｊｏｕｒｎａｌ，１１，１２５１，１９９２）、ａｌｃＲ／ａｌｃＡ系プロモーター（国際公開ＷＯ９４／０３６１９号公報）、グルココルチコイド系プロモーター（青山卓史、蛋白質核酸酵素、４１：２５５９、１９９６）、ｐａｒ系プロモーター（Ｔ．Ｓａｋａｉ ｅｔ ａｌ．，Ｐｌａｎｔ Ｃｅｌｌ Ｐｈｙｓｉｏｌ．，３７，９０６，１９９６）等が、また光に反応して誘導されるものとしてリブロース２リン酸カルボキシラーゼ小サブユニット遺伝子（ｒｂｃＳ）のプロモーター（Ｒ．Ｆｌｕｈｒ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８３，２３５８，１９８６）、フルクトース−１，６−ビスホスファターゼ遺伝子のプロモーター（特表平７−５０１９２１号公報）、集光性クロロフィルａ／ｂ結合タンパク質遺伝子のプロモーター（特開平５−８９号公報）等が、その他、傷害、温度などのさまざまな外部環境等に反応して誘導されるプロモーターが知られている。
本発明の組換えタンパク質遺伝子のプロモーターとしては、上記のように、３５Ｓプロモーター等の恒常的発現を示すプロモーターや、誘導型プロモーターを用いることもできるが、組換えタンパク質遺伝子を生産させようとする植物貯蔵器官中での発現が保証されている、該植物貯蔵器官特異的プロモーターが特に望ましい。このように植物の特定組織や器官において特異的な発現を促進するプロモーターに関しても、当業者らに広く知られている。例えば、本発明においては、かかるプロモーターとして、イネ種子で外来遺伝子を発現させる種子貯蔵タンパク質遺伝子のプロモーターである、グロブリン遺伝子のプロモーター（Ｍ．Ｎａｋａｓｅ ｅｔ ａｌ．，Ｐｌａｎｔ Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，３３，５１３，１９９７）、グルテリン遺伝子のプロモーター（Ｆ．Ｔａｋａｉｗａ ｅｔ ａｌ．，Ｐｌａｎｔ Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，１７，８７５，１９９１）等を用いることができる。さらに、インゲンマメ、ソラマメ、エンドウ等の豆科作物や、ピーナツ、ゴマ、ナタネ、綿実、ヒマワリ、サフラワー等の油糧用種子作物の種子で外来遺伝子を発現させるプロモーターである、グリシニン遺伝子のプロモーター、グルシフェリン遺伝子のプロモーター（Ｊ．Ｒｏｄｉｎ ｅｔ ａｌ．，Ｐｌａｎｔ Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，２０，５５９，１９９２）等、各作物の主要な種子貯蔵タンパク質遺伝子のプロモーターも用いることができる。
一方、本発明において、ターミネーターとしては、ノパリン合成酵素のターミネーター（Ａ．Ｄｅｐｉｃｋｅｒ ｅｔ ａｌ．、Ｊ．Ｍｏｌ．Ａｐｐｌ．Ｇｅｎ．，１，５６１，１９８２）、オクトピン合成酵素のターミネーター（Ｊ．Ｇｉｅｌｅｎ ｅｔ ａｌ．，ＥＭＢＯ Ｊ．，３，８３５，１９８４）を始め、ＤＮＡデータベースに登録されている植物遺伝子のターミネーター等を種々選択して使用することができる。
本発明において、植物に導入できる組換えタンパク質遺伝子は、人や家畜等の動物の健康に寄与できる機能性ペプチド、医薬用ペプチド等をコードする遺伝子だけでなく、機能未知な任意のペプチド又はタンパク質をコードする遺伝子であってもよい。例えば、本発明の実施例においては、ＧＬＰ−１誘導体をコードする遺伝子を植物に導入し、植物の種子においてＧＬＰ−１誘導体を生産させたが、本発明の手法により植物の貯蔵器官で生産させることができる組換えタンパク質としては、ＧＬＰ−１やその誘導体に限られるものではなく、既に医薬品として使用又は開発されている様々なペプチドやタンパク質（Ｓ．Ｊｏｓｅｐｈｓｏｎ ａｎｄ Ｒ．Ｂｉｓｈｏｐ，ＴＩＢＴＥＣＨ，６，２１８，１９８８）を始め、近年見出されたコレステロール低減化ペプチド（例えば、特開２００１−１１４８００号公報）、ダニや花粉抗原のＴ細胞エピトープペプチド（例えば、米国特許６２６８４９１号、特開平１０−７７００号公報、特開平１０−２５９１９８号公報、特開平１０−５０６８７７号公報、特開平１１−９２４９７号公報、特開２０００−３２７６９９号公報）等、様々なペプチドやタンパク質を本発明の手法により植物貯蔵器官で生産させることができる。
更に、これらのペプチドは、その性質及び目的に応じて適宜改変したものを生産させてもよい。即ち、ＧＬＰ−１について例示すると、本発明はＧＬＰ−１の他、ＧＬＰ−１（７−３６）あるいはそのアミノ酸配列の１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換及び／又は付加された配列からなり、かつＧＬＰ−１活性を有するペプチド、又は、該ペプチドの２６位をグルタミンに、３４位をアスパラギン又はアスパラギン酸に置換したアミノ酸配列を有するＧＬＰ−１誘導体に適用できる。また、本発明は、ＧＬＰ−１（７−３６）或いはそのアミノ酸配列の１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換及び／又は付加された配列からなり、かつＧＬＰ−１活性を有するペプチドが、ＧＬＰ−１（７−３６）、ＧＬＰ−１（７−３７）又はそれらのＣ末端アミドであるＧＬＰ−１誘導体にも適用できる。更に、本発明は、これらのＧＬＰ−１誘導体の８位をセリン又はグリシンに置換したＧＬＰ−１誘導体及び配列番号２に記載のＧＬＰ−１誘導体にも適用できる。
（導入組換えタンパク質遺伝子の構築）
本発明においては、これら組換えタンパク質をコードする遺伝子（ＤＮＡ配列）を、例えば、種子貯蔵タンパク質等、本発明の手法により組換えタンパク質を高生産させようとする植物貯蔵器官で本来発現しているタンパク質の遺伝子中、そのタンパク質の蓄積量等に悪影響を生じさせない可変領域をコードする遺伝子配列に挿入、又は置換した融合遺伝子を用いることができる。例えば、実施例においては、上記ＧＬＰ−１誘導体をコードする遺伝子をグロブリン遺伝子中、タンパク可変領域をコードする位置に挿入し、融合遺伝子として使用した。また、このとき、組換えタンパク質遺伝子とこれを挿入、又は置換した植物貯蔵器官で本来発現している貯蔵タンパク質遺伝子との境界に酵素切断配列を配置することにより、かかる融合遺伝子の発現産物を抽出した後、酵素処理により、目的の組換えタンパク質を切り出し、精製することができる。さらに、トリプシンなどの消化酵素による切断配列をここに配置すれば、本発明の手法により組換えタンパク質が高生産された種子等の植物貯蔵器官を食事として摂取した後、目的のペプチド又はタンパク質が小腸で切り出されて体内へ吸収され、様々な生理機能を発揮することとなる。
なお、種子貯蔵タンパク質とは、主として種子に貯蔵されるタンパク質であり、発芽に必要な栄養素として重要な働きをする（稲学大成第３巻、農山漁村文化協会）。本発明で用いることができる種子貯蔵タンパク質遺伝子の種類は特に限定されるものではなく、例えば、イネのグロブリンや、グルテリン、プロラミン、シロイヌナズナの２Ｓアルブミン（特開２０００−１０６８９０号公報）等の遺伝子を用いることができる。更に、組換えタンパク質遺伝子の挿入位置は、種子貯蔵タンパク質遺伝子が本来コードしているタンパクの特性に変化を生じさせない可変領域であれば、特に限定されるものではない。例えば、本発明の実施例では、イネのグロブリンの１０９番目のアミノ酸部位をコードする位置へＧＬＰ−１誘導体をコードする遺伝子を挿入した。
（導入ベクターの構築）
本発明においては、サイトカイニン関連遺伝子と薬剤耐性遺伝子が、脱離能を有するＤＮＡ因子と挙動を一つにする位置に存在し、また、これとは挙動を一つにすることのない位置に前記組換えタンパク質遺伝子が存在するように構築したベクターにより、植物への遺伝子導入を行う。
ここでサイトカイニン関連遺伝子とは、植物における細胞分裂の促進や植物の組織からの定芽や不定芽の分化等を引き起こす機能を有する、サイトカイニンの生成等に関与する遺伝子のことをいう。
かかるサイトカイニン関連遺伝子としては、例えば、アグロバクテリウム・ツメファシエンス（以下、Ａ．ツメファシエンスと略する。）由来のｉｐｔ遺伝子（Ａ．Ｃ．Ｓｍｉｇｏｃｋｉ、Ｌ．Ｄ．Ｏｗｅｎｓ，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８５，５１３１，１９８８）、ロドコッカス由来のｉｐｔ遺伝子、シロイヌナズナ由来のサイトカイニン合成酵素遺伝子、シュードモナス由来のｐｔｚ遺伝子等のサイトカイニン合成遺伝子の他、不活性型サイトカイニンを活性化する遺伝子である大腸菌由来のβ−ｇｌｕｃｕｒｏｎｉｄａｓｅ遺伝子（Ｍｏｒｔｅｎ Ｊｏｅｒｓｂｏ ａｎｄ Ｆｉｎｎ Ｔ．Ｏｋｋｅｌｓ，Ｐｌａｎｔ Ｃｅｌｌ Ｒｅｐｏｒｔｓ １６，２１９−２２１，１９９６）や、サイトカイニン受容体遺伝子と考えられているシロイヌナズナ由来のＣＫＩ１遺伝子（Ｋａｋｉｍｏｔｏ Ｔ．Ｓｃｉｅｎｃｅ ２７４，９８２−９８５，１９９６）等のサイトカイニン関連遺伝子が、いずれも本発明において使用することができる。
また、本発明において、薬剤耐性遺伝子とは、これが導入された植物細胞に、抗生物質耐性や農薬耐性を付与する遺伝子のことをいう。かかる抗生物質耐性遺伝子としては、例えば、ハイグロマイシン耐性遺伝子（ＨＰＴ：ハイグロマイシンリン酸化酵素遺伝子）やカナマイシン耐性遺伝子（ＮＰＴＩＩ：ネオマイシンリン酸化酵素遺伝子）等を、農薬耐性遺伝子としては、スルフォニルウレア系耐性遺伝子（ＡＬＳ；アセトラクテート合成酵素遺伝子）等を使用することができる。
脱離能を有するＤＮＡ因子とは、これらが存在し、機能する染色体ＤＮＡ等から、それ自身が脱離し得る能力を有するＤＮＡ配列をいう。植物ではこのような因子として、染色体ＤＮＡに存在するトランスポゾンと呼ばれるものが知られており、その構造と働き、そしてその挙動もほぼ判明している。すなわち、トランスポゾンが機能するためには、原則として、その内部にある遺伝子から発現し、それ自身の脱離及び転移を触媒する酵素（転移酵素）と、やはりその内部の末端領域に存在し、この転移酵素が結合し作用するＤＮＡ配列という、２つの構成要素が必要とされる。これらの働きにより、トランスポゾンはその存在する染色体ＤＮＡから脱離し、その後、普通はＤＮＡ上の新たな位置に転移するが、一定の確率で転移できぬままその機能を失い、消失等をする場合も生ずるので、本発明ではこのようなトランスポゾンの転移ミスを利用する。
なおトランスポゾンには、このような自律性トランスポゾン、すなわち、転移酵素とＤＮＡ結合配列という２つの要素を保持していて、トランスポゾン内部から発現する転移酵素が末端領域に存在するＤＮＡ配列に結合して作用することにより、自律的にその存在する染色体上から脱離して転移しうるものの他、非自律性トランスポゾンと呼ばれるタイプもある。この非自律性トランスポゾンとは、転移酵素が結合し作用する末端のＤＮＡ配列は保持しているものの、内部にある転移酵素遺伝子に変異が生じており、転移酵素の発現がないため、自律的に染色体上から脱離することができないものをいう。しかし、非自律性トランスポゾンも、自律性トランスポゾンあるいはこれとは独立して存在する転移酵素遺伝子から転移酵素が供給されると、自律性トランスポゾンと同様の挙動を示すこととなる。
自律性トランスポゾンとしては、トウモロコシより単離されたＡｃとＳｐｍ等がある（Ａ．Ｇｉｅｒｉ ａｎｄ Ｈ．Ｓａｅｄｌｅｒ，Ｐｌａｎｔ Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，１９，３９，１９９２）。とりわけＡｃは、トウモロコシの染色体中、ｗｘ−ｍ７遺伝子座を制限酵素Ｓａｕ３Ａで切り出すことにより得ることができる（Ｕ．Ｂｅｈｒｅｎｓ ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｌ．Ｇｅｎ．Ｇｅｎｅｔ．１９４，３４６，１９８４）、植物トランスポゾンの中では最も解析の進んでいる自律性トランスポゾンであり、そのＤＮＡシーケンスも既に解明されているので（Ｍ．Ｍｕｌｌｅｒ−Ｎｅｕｍａｎｎ ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｌ．Ｇｅｎ．Ｇｅｎｅｔ．，１９８，１９，１９８４）、当業者が容易に取得可能なことから、本発明に使用するＤＮＡ因子として相応しい。また、非自律性トランスポゾンとしては、それぞれＡｃ、Ｓｐｍの内部領域が欠損したものである、ＤｓやｄＳｐｍを始め（Ｈ．−Ｐ．Ｄｏｒｉｎｇ ａｎｄ Ｐ．Ｓｔａｒｌｉｎｇｅｒ，Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｇｅｎｅｔ．２０，１７５，１９８６）、トウモロコシ以外にも、キンギョソウ、アサガオ等の多くの植物から単離されたもの（例えば、Ｙ．Ｉｎａｇａｋｉ ｅｔ ａｌ．，Ｐｌａｎｔ Ｃｅｌｌ，６，３７５，１９９４）が知られている。
因みに、これらのトランスポゾンは、その由来する植物と異なる種類の植物の染色体に導入された場合でも、その能力を発揮して脱離し、転移することが多くの例で知られている（例えば、Ｂ．Ｂａｋｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８３，４８４４，１９８６）。なお、本発明においては、自律性、非自律性のいずれのトランスポゾンを使用することもできる。非自律性のトランスポゾンを用いる場合には、これに加え、自律性トランスポゾン等から取得、または合成した転移酵素遺伝子を導入する必要があるが、その場合は、本発明のベクターにこの非自立性トランスポゾンと共に組込んで導入してもよく、また、全く別個に導入してもよい。
更に、植物以外に存在する脱離能を有するＤＮＡ因子としては、部位特異的組換え系（ｓｉｔｅ−ｓｐｅｃｉｆｉｃ ｒｅｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ ｓｙｓｔｅｍ）に由来するものが知られている。この部位特異的組換え系は、特徴的なＤＮＡ配列を有する組換え部位（本発明の脱離能を有するＤＮＡ因子にあたる。）、及びこのＤＮＡ配列に特異的に結合して、その配列が２以上存在したとき、その配列間の組換えを触媒する酵素、という２つの要素からなり、そして、このＤＮＡ配列が同一ＤＮＡ分子上に、同一方向を向いてある一定の間隔で２か所存在している場合には、これに挟まれた領域がこのＤＮＡ分子（プラスミド、染色体等）から脱離し、またこの配列が対向する方向を向いて２か所存在している場合には、この領域が反転する、という挙動を示す。本発明では、この前者の脱離作用を利用する。なお組換え酵素をコードする遺伝子は、必ず組換え部位と同一のＤＮＡ分子上に存在する必要はなく、これと同一細胞内に存在し、発現していさえすれば、このＤＮＡ配列間の脱離・反転を生ぜしめ得ることが知られている（Ｎ．Ｌ．Ｃｒａｉｇ，Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｇｅｎｅｔ．，２２，７７，１９８８）。
現在、部位特異的組換え系は、ファージ、細菌（例えば大腸菌）、酵母等の微生物から分離されたＣｒｅ／ｌｏｘ系、Ｒ／ＲＳ系、ＦＬＰ系、ｃｅｒ系、ｆｉｍ系等が知られているが（総説として、Ｎ．Ｌ．Ｃｒａｉｇ，Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｇｅｎｅｔ．，２２，１７，１９８８）、高等生物ではまだその存在を知られていない。しかし、これらの微生物から分離された部位特異的組換え系も、国際公開ＷＯ９３／０１２８３号公報において、Ｐ１ファージ由来のＣｒｅ／ｌｏｘ系が植物への遺伝子導入用ベクターに利用されているように、植物等、その由来する生物種と異なる生物種に導入された場合でも、そのそもそもの生物内における挙動と同一の挙動をとることが明らかとなっている。ちなみに本発明の一実施例では、酵母（Ｚｙｇｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｒｏｕｘｉｉ）の部位特異的組換え系であるＲ／ＲＳ系（Ｈ．Ｍａｔｓｕｚａｋｉ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｙ，１７２，６１０，１９９０）を、その組換え部位間に組換え酵素を挿入して利用したが、このＲ／ＲＳ系もまた、高等植物においてその本来の機能を維持することがすでに報告されている（Ｈ．Ｏｎｏｕｃｈｉ ｅｔ ａｌ．，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｒｅｓ．，１９，６３７３，１９９１）。
本発明において、サイトカイニン関連遺伝子と薬剤耐性遺伝子を挿入する場所は、脱離能を有するＤＮＡ因子と共に、これが脱離し得る位置でありさえすればよい。例えば、脱離能を有するＤＮＡ因子として自律性トランスポゾンを用いた場合には、転移酵素遺伝子のプロモーター領域より上流で、この転移酵素が結合する末端領域よりは下流の、トランスポゾンの脱離に影響を及ぼさない位置にこれを挿入することができる。またＲ／ＲＳ系を用いた場合には、組換え部位に挟まれた領域内で、組換え酵素の発現を阻害しない位置でありさえすれば、これをどこにでも挿入することができる。
（構築したベクターの植物細胞への導入）
本発明においては、こうして構築したベクターを植物細胞に導入する。該ベクターを導入する植物としては、前記（対象植物）の項で記載したように、貯蔵器官を形成する植物であれば特に限定はされないが、例えば、単子葉植物であれば、イネ、トウモロコシ、オオムギ、コムギ等の穀類やアスパラガス等を、双子葉植物であれば、タバコ、ナタネ、ダイズ等を代表的な植物として挙げることができる。また、構築したベクターの植物細胞への導入も、公知の方法を使用して行うことができる。例えば、アグロバクテリウム属細菌を介する方法の他、エレクトロポレーション法、ポリエチレングリコール法、パーティクルガン法等、公知の方法をいずれも使用することができ、特に限定されることはない。
例えば、本発明の方法を用いてイネに組換えタンパク質遺伝子を導入する場合には、特許第３１４１０８４号記載の方法を好適に使用することができる。このときイネ種子を播種し、発芽させるための播種培地としては、例えば、Ｎ６Ｃｌ２培地（Ｎ６無機塩類及びビタミン類（Ｃｈｕ Ｃ．Ｃ．，１９７８，Ｐｒｏｃ．Ｓｙｍｐ．，Ｐｌａｎｔ Ｔｉｓｓｕｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ，Ｓｉｅｎｃｅ Ｐｒｅｓｓ Ｐｅｋｉｎｇ，ｐｐ．４３−５０）、３０ｇ／Ｌ シュークロース、２．８ｇ／Ｌ プロリン、０．３ｇ／Ｌ カザミノ酸、１ｍｇ／Ｌ ２，４−Ｄ、４ｇ／Ｌ ゲルライト）等を使用することができる。しかしながら、上記培地組成に特に限定されることはなく、その組成物の種類や濃度を変更することによっても、本発明を実施することができる。
（形質転換体の再分化）
組換えタンパク質遺伝子を導入した植物細胞又は組織からの形質転換体の再分化にあたっては、遺伝子導入処理後の細胞又は組織を薬剤添加培地及び薬剤非添加培地にて、公知の方法を用いて培養すればよい。なお、本発明において、形質転換体とは、定芽、不定芽、不定根等の植物組織又は幼植物体のことを言う。
例えば、本発明により、イネに組換えタンパク質遺伝子を導入して形質転換体を得る場合であれば、前記のようにして構築したベクターを用い、特許第３１４１０８４号記載の方法に従って遺伝子導入処理を行った発芽種子よりイネの胚盤組織を切り出して、この胚盤組織を、例えば、薬剤添加培地Ｎ６Ｃｌ２ＴＣＨ２５培地（Ｎ６無機塩類及びビタミン類、３０ｇ／Ｌ シュークロース、２．８ｇ／Ｌ プロリン、０．３ｇ／Ｌ カザミノ酸、２ｍｇ／Ｌ ２，４−Ｄ、５００ｍｇ／Ｌ カルベニシリン、２５ｍｇ／Ｌ ハイグロマイシン、４ｇ／Ｌ ゲルライト）で１週間培養した後、更に、薬剤添加培地Ｎ６Ｃｌ４ＴＣＨ２５培地（Ｎ６無機塩類及びビタミン類、３０ｇ／Ｌ シュークロース、２．８ｇ／Ｌ プロリン、０．３ｇ／Ｌ カザミノ酸、４ｍｇ／Ｌ ２，４−Ｄ、５００ｍｇ／Ｌ カルベニシリン、２５ｍｇ／Ｌ ハイグロマイシン、４ｇ／Ｌ ゲルライト）で１週間培養し、次に薬剤非添加培地ＭＳＲＣ培地（ＭＳ無機塩類及びビタミン類（Ｍｕｒａｓｈｉｇｅ，Ｔ．ａｎｄ Ｓｋｏｏｇ，Ｆ．，１９６２，Ｐｈｙｓｉｏｌ．Ｐｌａｎｔ．，１５，４７３）、３０ｇ／Ｌ シュークロース、３０ｇ／Ｌ ソルビトール、２ｇ／Ｌ カザミノ酸、５００ｍｇ／Ｌ カルベニシリン、４ｇ／Ｌ ゲルライト）で培養することにより、芽又は幼植物体として形質転換体を得ることができる。もちろん、上記に例示した培養条件は絶対的なものではなく、必要に応じ、培地組成の種類や濃度を変更したり、種々の植物ホルモンや薬剤を添加したり、培養期間を変更することができる。
なお、薬剤添加培地としては、前記のようにして構築し、遺伝子導入に用いたベクターに組込まれた、薬剤耐性遺伝子に対応する薬剤を添加した培地を用いる。例えば、このベクターにハイグロマイシン耐性遺伝子を組込んだ場合はハイグロマイシンを添加した培地を、カナマイシン耐性遺伝子を組込んだ場合はカナマイシンを添加した培地を、スルフォニルウレア系耐性遺伝子を組込んだ場合はスルフォニルウレア系農薬を添加した培地を用いればよい。
（植物貯蔵器官の取得）
本発明において植物貯蔵器官は、組換えタンパク質遺伝子を導入した植物細胞又は組織より、上記のようにして形質転換体を再分化した後、公知の方法を用いてこの形質転換体を生育させることで、取得すればよい。例えば、この形質転換体が不定芽である場合には、公知の方法により、発根処理等を行なって、植物個体を再生し、該植物個体を育成して結実させ、組み換えタンパク質が高生産された植物成熟種子等の貯蔵器官を収穫すればよい。なお、不定芽の発根は、ＭＳ寒天培地に不定芽を挿しつける等の方法を用いて行うことができる。また、形質転換体が幼植物体として得られた場合には、発根処理等を行わずとも形質転換植物を得ることができる。さらに、植物貯蔵器官として塊根や塊茎等を利用する場合には、得られた形質転換体から、植物個体の再生過程を経ることなく、公知の手段により、これらの組織を分化させて取得することも出来る。
（ＧＬＰ−１類の生産）
本発明では、本発明の組換えタンパク質が高生産された植物貯蔵器官を生産する方法を用いて、ＧＬＰ−１類を提供する。ＧＬＰ−１は、糖依存的なインスリン分泌を刺激するホルモンとして知られているもので、ＧＬＰ−１（７−３６）とは、Ｈｉｓ−Ａｌａ−Ｇｌｕ−Ｇｌｙ−Ｔｈｒ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ｓｅｒ−Ａｓｐ−Ｖａｌ−Ｓｅｒ−Ｓｅｒ−Ｔｙｒ−Ｌｅｕ−Ｇｌｕ−Ｇｌｙ−Ｇｌｎ−Ａｌａ−Ａｌａ−Ｌｙｓ−Ｇｌｕ−Ｐｈｅ−Ｉｌｅ−Ａｌａ−Ｔｒｐ−Ｌｅｕ−Ｖａｌ−Ｌｙｓ−Ｇｌｙ−Ａｒｇで示される配列を持つペプチドである。本発明においては、該ＧＬＰ−１（７−３６）のアミノ酸配列をコードする遺伝子、或いは、ＧＬＰ−１（７−３６）のアミノ酸配列の１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換及び／又は付加された配列からなり、かつＧＬＰ−１活性を有するペプチドをコードする遺伝子を、上記組換えタンパク質として本発明において構築したベクターに組込み、該遺伝子を発現させて、ＧＬＰ−１類を生産する。
（ＧＬＰ−１誘導体）
本発明は、上記のようにＧＬＰ−１類の生産方法を提供すると共に、該ＧＬＰ−１の誘導体を作製して、消化酵素等により消化・分解されない、更には、血漿中でも安定なＧＬＰ−１の誘導体を提供するものである。本発明の誘導体は、ＧＬＰ−１（７−３６）或いはそのアミノ酸配列の１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換及び／又は付加された配列からなり、かつＧＬＰ−１活性を有するペプチドにおいて、２６位をグルタミンに、３４位をアスパラギン又はアスパラギン酸に置換して、該ＧＬＰ−１誘導体が、天然型ＧＬＰ−１と同程度のインスリン分泌促進活性を維持し、かつトリプシンのような消化酵素に対する耐性を持たせることによって、小腸からの吸収が可能となるように改変したものである。また、更に８位のアラニンをセリン又はグリシンに変更することにより、ジペプチジルペプチダーゼＩＶに対する耐性をも獲得し、血漿中でも安定であるように改変したものである。
すなわち、本発明のＧＬＰ−１誘導体は、ＧＬＰ−１（７−３６）、或いは、そのアミノ酸配列の１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換及び／又は付加された配列からなり、かつ、ＧＬＰ−１活性を有するペプチドの，２６位をグルタミンに、３４位をアスパラギンもしくはアスパラギン酸に置換したものであるが、ここで、ＧＬＰ−１（７−３６）或いはそのアミノ酸配列の１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換及び／又は付加された配列からなり、かつＧＬＰ−１活性を有するペプチドとは、ＧＬＰ−１の前駆体、類縁体、およびこれらのＣ末端アミド体をも含むものであり、好ましくは、ＧＬＰ−１（７−３６）、ＧＬＰ−１（７−３７）又はそれらのＣ末端アミドである。本発明のＧＬＰ−１誘導体は、更に、８位をセリン又はグリシンに置換するのが、特に好ましい。ジペプチジルペプチダーゼＩＶは、ポリペプチド鎖のＮ末端から２番目のプロリンあるいはアラニンを認識して、そのカルボキシル基側を加水分解する酵素である。そこで、本発明のＧＬＰ−１誘導体は、８位のアラニンをセリンあるいはグリシンに変更することが好ましい。この８位置換体は、天然型ＧＬＰ−１と同程度の活性を維持し、血漿中でも安定である。
上記のとおり、本発明で用いるＧＬＰ−１（７−３６）は、次のアミノ酸配列：Ｈｉｓ−Ａｌａ−Ｇｌｕ−Ｇｌｙ−Ｔｈｒ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ｓｅｒ−Ａｓｐ−Ｖａｌ−Ｓｅｒ−Ｓｅｒ−Ｔｙｒ−Ｌｅｕ−Ｇｌｕ−Ｇｌｙ−Ｇｌｎ−Ａｌａ−Ａｌａ−Ｌｙｓ−Ｇｌｕ−Ｐｈｅ−Ｉｌｅ−Ａｌａ−Ｔｒｐ−Ｌｅｕ−Ｖａｌ−Ｌｙｓ−Ｇｌｙ−Ａｒｇで示される配列を持つペプチドであるが、８位をセリンに改変した［Ｓｅｒ^８］とは、２番目（８位に相当）のＡｌａがＳｅｒに変換されていることを示す。本発明のＧＬＰ−１誘導体は、化学合成あるいは遺伝子組換え技術により、製造することができる。
即ち、ポリペプチドの化学合成の原理は本分野にて周知であり、以下のような本領域の一般のテキストを参考にできる；Ｄｕｇａｓ Ｈ．及びＰｅｎｎｅｙ Ｃ，Ｂｉｏｏｒｇａｎｉｃ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，１９８１，Ｓｐｒｉｎｇｅｒ−Ｖｅｒｌａｇ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，ｐｐ．５４−９２、Ｍｅｒｒｉｆｉｅｌｄｓ ＪＭ，Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ，８５，２１４９，１９６２、Ｓｔｅｗａｒｔ及びＹｏｕｎｇ，Ｓｏｌｉｄ Ｐｈａｓｅ Ｐｅｐｔｉｄｅ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ，ｐｐ．２４−６６，Ｆｒｅｅｍａｎ（Ｓａｎ Ｆｒａｎｃｉｓｃｏ，１９６９）。例えば、４３０Ａペプチド合成機（ＰＥ−Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ Ｉｎｃ，８５０ Ｌｉｎｃｏｌｎ Ｃｅｎｔｅｒ Ｄｒｉｖｅ，Ｆｏｓｔｅｒ Ｃｉｔｙ ＣＡ ９４４０４）及びＰＥ−Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓにより供給された合成サイクルを用いて、固相方法により本発明のペプチドを合成できる。Ｂｏｃアミノ酸及びその他の試薬は、ＰＥ−Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ及び他の薬品供給業者から購入可能である。
本発明のＧＬＰ−１誘導体の遺伝子組換え技術による生産は、ＧＬＰ−１誘導体のＤＮＡを全合成、又はより大きな天然のグルカゴンがコードしているＤＮＡの修飾により得た遺伝子を用いて行うこともできる。合成遺伝子の構築方法は本分野では周知であり、ＢｒｏｗｎらのＭｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，ＮＹ，第６８巻，１０９−１５１頁を参照できる。
また、本発明のＧＬＰ−１誘導体の産生に用いるＤＮＡには、上記の他にも、発現量を高め産物を宿主内に安定的に蓄積させる工夫、生産後の精製を容易にする工夫、あるいは融合タンパク質として生産させ容易にＧＬＰ−１誘導体を切り出す工夫等を施すことができる。例えば、β−ガラクトシダーゼ、β−ラクタマーゼ、プロテインＡ、ＴｒｐＥなどのタンパク質の遺伝子に繋ぎ、融合タンパク質として産生させるといった手法がそれである。これらの場合、例えば、産生後にＧＬＰ−１誘導体を単体として得るには、各遺伝子との間にアミノ酸のメチオニンに対応する遺伝子を入れておき、臭化シアン処理することができる。この場合に、Ｃ末端はＨｓｅ（ホモセリン）になる。また、本発明のＧＬＰ−１誘導体の中には、Ｃ末端のみにアルギニンをもつものがあり、アルギニルエンドペプチダーゼによる酵素処理により、ＧＬＰ−１誘導体の単体を得ることができる。
なお、前記ＧＬＰ−１誘導体をコードする遺伝子は、公知の遺伝子工学技術により、植物以外の細胞に導入して発現させることで、ＧＬＰ−１誘導体を生産することもできる。この場合には、ＧＬＰ−１誘導体をコードする遺伝子を、適切な制限エンドヌクレアーゼを用いて、適切な組換えＤＮＡ発現ベクターに挿入する。ＧＬＰ−１誘導体のための発現ベクターを構築した後、そのベクターを用いて適切な宿主細胞を形質転換させる。宿主細胞には真核性細胞又は原核性細胞のいずれをも使用できる。ベクターの構築及び細胞を形質転換するための技術は本分野において周知であり、一般にはＭａｎｉａｔｉｓらの、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ；Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇｓ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ，ＮＹ，Ｖｏｌ．１−３，１９８９を参照できる。その際、目的の遺伝子の効率的な転写を達成するために、それをプローモーター−オペレーター領域と機能的に結合させる。原核細胞及び真核細胞の形質転換に使用できる種々の発現ベクターは周知であり、Ｔｈｅ Ｐｒｏｍｅｇａ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｐｒｏｄｕｃｔｓ Ｃａｔａｌｏｇｕｅ及びＴｈｅ Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ Ｃｌｏｎｉｎｇ Ｓｙｓｔｅｍｓ Ｃａｔａｌｏｇｕｅが参照できる。本発明のＧＬＰ−１誘導体の生産には、広く用いられている微生物と哺乳類培養細胞を宿主とした物質生産系が利用できる。また、安価で安全な物質生産システムとして、前記のような形質転換植物を用いた物質生産システムも利用できる。
［本発明ＧＬＰ−１誘導体の利用］
本発明で生産されたＧＬＰ−１誘導体は、植物種子等の貯蔵器官の形で、或いは精製、分離して製剤の形で、或いは該成分を添加した飲食品のような形で摂取して、利用することができる。製剤の形で利用する場合はＧＬＰ−１誘導体からなる成分を、製剤的に許容される担体、希釈剤、賦形剤または吸収促進剤と組み合わせて製剤化し、医薬組成物として利用することもできる。本発明のＧＬＰ−１誘導体は、ＧＬＰ−１が関与する各種疾患に有効であり、例えば、インスリン非依存性慢性糖尿病の処置、インスリン依存性慢性糖尿病の処置、肥満の処置、または、食欲抑制のために、使用することができる。

以下、実施例を挙げて本発明を具体的に説明する。しかしながら、本発明は下記実施例に限定されるものではない。なお、以下の実施例において、更に詳細な実験操作は、特に述べる場合を除き、分子生物学的手法についてはＭｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ（Ｓａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ．ａｌ．，１９８９）又は製造業者の取り扱い説明書に従い行われた。

Ｉ．プラスミドｐＧｌｂＧＬＰ１３０Ｈｍの作製
ｐＴＬ７（Ｈ．Ｅｂｉｎｕｍａ ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｍｅｔｈｏｄｓ ｏｆ Ｐｌａｎｔ Ａｎａｌｙｓｉｓ，２２：９５，２００２）のＥｃｏＲＩ−Ｓｓｅ８３８７Ｉ制限酵素部位間に、制限酵素ＥｃｏＲＩとＳｓｅ８３８７Ｉとを用いて切り出したイネグロブリンプロモーター、配列番号１に示す［Ｓｅｒ^８、Ｇｌｎ^２６、Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６ａｍｉｄｅ）をコードする遺伝子が可変領域（１０９番目のアミノ酸部位）に挿入されたイネグロブリン遺伝子、及び、ノパリン合成酵素のポリアデニル化シグナルが連結された遺伝子断片を挿入して、プラスミドｐＧｌｂＧＬＰを得た。なお、［Ｓｅｒ^８、Ｇｌｎ^２６、Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）は、配列番号２に示すように、ＧＬＰ−１の７〜３６番目のアミノ酸からなり、その８位をセリンに、２６位をグルタミンに、３４位をアスパラギンに置換した誘導体であるが、イネグロブリン遺伝子への挿入にあたって、そのＮ末側にリジン残基（ＡＡＧ）を付加している。
一方、制限酵素ＫｐｎＩにて、プラスミドｐＵＣ１８のＫｐｎＩ制限酵素部位を切出し、Ｔ４ポリメラーゼによりその切断末端を平滑化した後、再結合して、プラスミドｐＵＣ１８△ＫｐｎＩを得た。このｐＵＣ１８△ＫｐｎＩのＳｓｅ８３８７Ｉ制限酵素部位に、プラスミドｐＮＰＩ１３０（特開平９−１５４５８０号公報）より、酵母の部位特異的組換え系の組換え配列Ｒｓに挟まれた領域を制限酵素Ｓｓｅ８３８７Ｉで切出して、挿入することにより、プラスミドｐＮＰＩ１３０ＰＵＣを得た。
更に、プラスミドｐＮＰＩ１４０（特開平９−１５４５８０号公報）より、ＣａＭＶ３５Ｓプロモーター、Ｈｍ（ハイグロマイシン耐性）遺伝子及びノパリン合成酵素のポリアデニル化シグナルが連結された遺伝子断片を、制限酵素ＫｐｎＩで切出してｐＮＰＩ１３０ＰＵＣのＫｐｎＩ制限酵素部位に挿入し、プラスミドｐＮＰＩ１３０Ｈｍを得た。
目的とするプラスミドは、このｐＮＰＩ１３０Ｈｍより、酵母の部位特異的組換え系の組換え配列Ｒｓに挟まれた領域を制限酵素Ｓｓｅ８３８７Ｉで切出して、ｐＧｌｂＧＬＰのＳｓｅ８３８７Ｉ制限酵素部位間に挿入することにより得られ、これをプラスミドｐＧｌｂＧＬＰ１３０Ｈｍ（国際寄託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−８３４３）と命名した。このｐＧｌｂＧＬＰ１３０Ｈｍは、植物の貯蔵器官中に発現させる組換えタンパク質遺伝子として、［Ｓｅｒ^８、Ｇｌｎ^２６、Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）をコードする遺伝子が、イネグロブリン遺伝子の可変領域（１０９番目のアミノ酸部位）に挿入された形で存在しており、また、サイトカイニン関連遺伝子としてｉｐｔ遺伝子、薬剤耐性遺伝子としてハイグロマイシン耐性遺伝子を有し、酵母の部位特異的組換え系Ｒ／ＲＳ系を脱離能を有するＤＮＡ因子として使用している。
ｐＧｌｂＧＬＰ１３０Ｈｍの作製スキムを図１〜４に、また、このｐＧｌｂＧＬＰ１３０Ｈｍにおいて植物染色体中に組込まれることとなる領域（Ｔ−ＤＮＡ領域）の制限酵素地図を図４に示す。図１〜４中、Ｇｌｂ−Ｐはイネグロブリン遺伝子のプロモーターを、ＧＬＰは［Ｓｅｒ^８、Ｇｌｎ^２６、Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）をコードする遺伝子を、ｇｌｏｂｕｌｉｎはイネグロブリン遺伝子を、Ｔはノパリンシンターゼ遺伝子のポリアデニル化シグナルを、ｌａはｌａｃＺ’遺伝子の断片を、３５Ｓ−Ｐはカリフラワーモザイクウィルスの３５Ｓプロモーターを、ｉｐｔはｉｐｔ遺伝子を、丸で囲ったＴはｉｐｔ遺伝子自身のポリアデニル化シグナルを、Ｈｍはハイグロマイシン耐性遺伝子を、Ｒは組換え酵素遺伝子を、矩形で囲まれた三角形は組換え配列Ｒｓとその配列方向を、またＲＢとＬＢはＴ−ＤＮＡ領域の境界配列を表している。
ＩＩ．アグロバクテリウムへのｐＧｌｂＧＬＰ１３０Ｈｍの導入
Ａ．ツメファシエンスＥＨＡ１０５株を、１０ｍＬのＹＥＢ液体培地（ビーフエキス５ｇ／Ｌ、酵母エキス１ｇ／Ｌ、ペプトン５ｇ／Ｌ、ショ糖５ｇ／Ｌ、２ｍＭ ＭｇＳＯ_４、２２℃でのｐＨ７．２（以下、特に示さない場合、２２℃でのｐＨとする。））に接種し、ＯＤ６３０が０．４から０．６の範囲に至るまで、２８℃で培養した。培養液を、６９００×ｇ、４℃、１０分間遠心して集菌した後、菌体を２０ｍｌの１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ（ｐＨ８．０）に懸濁して、再度６９００×ｇ、４℃、１０分間遠心して集菌し、次いでこの菌体を２００μｌのＹＥＢ液体培地に懸濁して、これをプラスミド導入用菌液とした。
このプラスミド導入用菌液を用い、アグロバクテリウムへのｐＧ１ｂＧＬＰ１３０Ｈｍの導入を、以下のようにして行った。即ち、０．５ｍｌチューブ内で、上記プラスミド導入用菌液５０μｌとｐＧｌｂＧＬＰ１３０Ｈｍ３μｌを混合した混合液に、ジーンパルサーＩＩシステム［ＢＩＯＲＡＤ社］を用いてエレクトロポーレーションを行い、エレクトロポーレーション処理後の混合液に、２００μｌのＹＥＢ液体培地を加えて２５℃で１時間振とうして培養した後、菌体を、５０ｍｇ／Ｌ カナマイシン添加ＹＥＢ寒天培地（寒天１．５ｗ／ｖ％、他の組成は上記に同じ。）に播種して２８℃で２日間培養した。さらに、得られた菌コロニーをＹＥＢ液体培地に移植して培養し、次いで、その菌体からアルカリ法でプラスミドを抽出して、これらの菌が、ＥＨＡ１０５株にｐＧｌｂＧＬＰ１３０Ｈｍが導入されたものであることを確認し、これらを、ＥＨＡ１０５（ｐＧｌｂＧＬＰ１３０Ｈｍ）とした。
ＩＩＩ．感染材料の調製
遺伝子導入の対象として、イネ品種「日本晴」を用い、その完熟種子の殺菌を、細胞工学別冊 植物細胞工学シリーズ４ モデル植物の実験プロトコール（ｐ９３−９８）の方法に従い行った。殺菌された完熟種子を、Ｎ６Ｃｌ２培地（Ｎ６無機塩類及びビタミン類、３０ｇ／Ｌ シュークロース、２．８ｇ／Ｌ プロリン、０．３ｇ／Ｌ カザミノ酸、１ｍｇ／Ｌ ２，４−Ｄ、４ｇ／Ｌ ゲルライト、ｐＨ＝５．８）に置床し、サージカルテープでシールして２８℃明所で培養して発芽させ、アグロバクテリウムＥＨＡ１０５（ｐＧｌｂＧＬＰ１３０Ｈｍ）による感染材料とした。
ＩＶ．ＥＨＡ１０５（ｐＧｌｂＧＬＰ１３０Ｈｍ）によるイネの形質転換および形質転換イネの作製
ＹＥＢ寒天培地（ビーフエキス５ｇ／Ｌ、酵母エキス１ｇ／Ｌ、ペプトン５ｇ／Ｌ、ショ糖５ｇ／Ｌ、２ｍＭ ＭｇＳＯ_４、１５ｇ／Ｌ バクトアガー）で培養したアグロバクテリウムＥＨＡ１０５（ｐＧｌｂＧＬＰ１３０Ｈｍ）を、ＹＥＢ液体培地に移植して、２５℃、１８０ｒｐｍで一晩培養後、３０００ｒｐｍ、２０分間遠心して集菌し、アセトシリンゴン（１０ｍｇ／Ｌ）を含むＮ６液体培地（Ｎ６無機塩類及びビタミン類、３０ｇ／Ｌ シュークロース、２ｍｇ／Ｌ ２，４−Ｄ、ｐＨ＝５．８）に、ＯＤ_６３０＝０．１５となるように懸濁し、感染用アグロバクテリウム懸濁液とした。
ＩＩＩで調整した発芽種子を５０ｍｌチューブに入れ、そこに上記感染用アグロバクテリウム懸濁液を注ぎ浸漬した。１．５分間の浸漬後、アグロバクテリウム懸濁液を捨て、発芽種子を滅菌したろ紙の上に置いて余分な水分を除去してから、Ｎ６Ｃｌ２培地（Ｎ６無機塩類及びビタミン類、３０ｇ／Ｌ シュークロース、２．８ｇ／Ｌ プロリン、０．３ｇ／Ｌ カザミノ酸、１ｍｇ／Ｌ ２，４−Ｄ、４ｇ／Ｌ ゲルライト、ｐＨ＝５．２）に置床し、サージカルテープでシールして２８℃暗所で３日間共存培養を行い、更にＮ６Ｃｌ２ＴＣＨ２５培地（Ｎ６無機塩類及びビタミン類、３０ｇ／Ｌ シュークロース、２．８ｇ／Ｌ プロリン、０．３ｇ／Ｌ カザミノ酸、２ｍｇ／Ｌ ２，４−Ｄ、５００ｍｇ／Ｌ カルベニシリン、２５ｍｇ／Ｌ ハイグロマイシン、４ｇ／Ｌ ゲルライト）に移植して１週間培養した後、発芽した芽をこの発芽種子の胚盤組織から切除した。
次いで、この胚盤組織をＮ６Ｃｌ４ＴＣＨ２５培地（Ｎ６無機塩類及びビタミン類、３０ｇ／Ｌ シュークロース、２．８ｇ／Ｌ プロリン、０．３ｇ／Ｌ カザミノ酸、４ｍｇ／Ｌ ２，４−Ｄ、５００ｍｇ／Ｌ カルベニシリン、２５ｍｇ／Ｌ ハイグロマイシン、４ｇ／Ｌ ゲルライト）で１週間培養し、更に、ＭＳＲＣ培地（ＭＳ無機塩類及びビタミン類、３０ｇ／Ｌ シュークロース、３０ｇ／Ｌ
ソルビトール、２ｇ／Ｌ カザミノ酸、５００ｍｇ／Ｌ カルベニシリン、４ｇ／Ｌ ゲルライト）で培養したところ、ＥＨＡ１０５（ｐＧｌｂＧＬＰ１３０Ｈｍ）との共存培養後、１ヶ月から２ヶ月の間に芽又は幼植物体が再分化した。再分化した芽又は幼植物体は発根培地に移植して生育させ、背丈２０ｃｍ程度の幼苗を得た。この幼苗より、ＤＮｅａｓｙ ９６ Ｐｌａｎｔ Ｋｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ社）を用いて染色体ＤＮＡを抽出し、ＰＣＲ法にて［Ｓｅｒ^８、Ｇｌｎ^２６、Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）をコードする遺伝子の存在を確認した。
このとき、ＰＣＲプライマーとしては、グロブリン遺伝子の可変領域に挿入された［Ｓｅｒ^８、Ｇｌｎ^２６、Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）をコードする遺伝子を検出するため、プライマー３−１：５’−ＧＧＡＴＣＣＡＴＧＧＣＴＡＧＣＡＡＧＧＴＣＧＴＣ−３’（配列番号３）と３−３：５’−ＧＡＴＣＡＣＴＡＴＣＴＣＧＴＴＧＣＡＴＧＣＡＡＣＡＣ−３’（配列番号４）を用いた。得られたＰＣＲ反応物（約７００ｂｐ）はアガロースゲル電気泳動を用いて分析し、染色体ＤＮＡ中の、［Ｓｅｒ^８、Ｇｌｎ^２６、Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）をコードする遺伝子の存在を確認した。
その結果、アグロバクテリウム感染処理に供したイネ種子の約３％に、上記［Ｓｅｒ^８、Ｇｌｎ^２６、Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）をコードする遺伝子が導入されていることが判明した。
こうして得られ、［Ｓｅｒ^８、Ｇｌｎ^２６、Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）をコードする遺伝子の導入が確認されたイネ幼苗の形質転換体は、土に馴化し、太陽光室にて栽培し、生育させて完熟種子を収穫した。
Ｖ．タンパク解析
ＩＶ．で得られた完熟種子１０ｍｇを、１０％（ｖ／ｖ）グリセロール、０．２５％（ｗ／ｖ）ＳＤＳ、５％ ２−メルカプトエタノールを含む、６２．５ｍＭのＴｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ６．８）抽出バッファー２５０μｌにて、１００℃、５分間処理することにより、これらの種子中の全タンパク質を抽出し、その抽出液をＳＤＳ−ＰＡＧＥに供した。ＳＤＳ−ＰＡＧＥは１５％（ｗ／ｖ）ポリアクリルアミド（アクリルアミド：Ｎ，Ｎ’−メチレンビスアクリルアミド＝３０：０．８）ゲルを用いて行った。
得られたゲル画像を、解析ソフトＩｍａｇｅ Ｇａｕｇｅ（富士写真フィルム）にて解析し、［Ｓｅｒ^８、Ｇｌｎ^２６、Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）をコードする遺伝子がグロブリンの可変領域に挿入された融合タンパク質の蓄積レベルを調査した。その結果を図５に示す。
［比較例１］
イネグロブリンプロモーター、配列番号１に示す［Ｓｅｒ^８、Ｇｌｎ^２６、Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）をコードする遺伝子が可変領域に挿入されたグロブリン遺伝子、及び、ノパリン合成酵素のポリアデニル化シグナルが連結された遺伝子断片からなる、図６記載の従来型ベクターｐＧｌｂＧＬＰ−Ｈｍを用いてイネの完熟種子に遺伝子導入を行った他は、実施例１と同様にして、遺伝子導入を行い、芽又は幼植物体を再分化させ、この芽又は幼植物体から植物個体を再生して形質転換イネを得、完熟種子を収穫して、この完熟種子についてタンパク解析を行った。その結果を図５に示す。
図５より明らかなように、［Ｓｅｒ^８、Ｇｌｎ^２６、Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）をコードする遺伝子がグロブリンの可変領域に挿入された融合タンパク質は、実施例１で生産されたイネ完熟種子中に高蓄積し、比較例１と比較して最高で約６倍のレベルを示した（図５）。

Ｉ．ＧＬＰ−１誘導体の合成
以下に示すＧＬＰ−１誘導体を、Ｍｏｄｅｌ ４３０Ａペプチド合成機（ＰＥ−Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ，Ｆｏｓｔｅｒ Ｃｉｔｙ，ＣＡ）による固相合成によって合成し、ＨＰＬＣにより精製後、マススペクトルにより合成品を確認した。純度は９５％以上のものを使用し、インビトロおよびインビボでの試験に供した。
比較製造例１． ＧＬＰ−１（７−３６ａｍｉｄｅ）
（天然型ＧＬＰ−１）
比較製造例２． ［Ｓｅｒ^８］−ＧＬＰ−１（７−３６ａｍｉｄｅ）
比較製造例３． ［Ｇｌｙ^８］−ＧＬＰ−１（７−３６ａｍｉｄｅ）
製造例１． ［Ｇｌｎ^２６，Ａｓｎ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６ａｍｉｄｅ）
（製造例１の非アミド体のアミノ酸配列を配列番号５に示した）
製造例２． ［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）
製造例３． ［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｎ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）
（製造例３のアミノ酸配列を配列番号６に示した）
ＩＩ．ＧＬＰ−１誘導体のサイクリックＡＭＰ産生活性
ヒトＧＬＰ−１受容体の公表されたＤＮＡ配列（Ｇｒａｚｉａｎｏら、Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｂｉｏｐｈｙｓ Ｒｅｓ Ｃｏｍ，１９６：１４１−１４６，１９９３）に基づき発現ベクターを構築した。チャイニーズハムスター卵巣ＣＨＯ−Ｋ１細胞を当該ベクターで形質転換し、ヒトＧＬＰ−１受容体を発現する組換えＣＨＯ−Ｋ１細胞を得た。このヒトＧＬＰ−１受容体発現細胞を１×１０^４ｃｅｌｌｓ／ｍｌ／ｗｅｌｌで２４ウエルプレートに植え込み、３日後にアッセイに使用した。
アッセイ方法は、前記細胞をＧＬＰ−１誘導体の存在下に緩衝液（ＰＢＳ、５．６ｍＭグルコース、１ｍＭイソブチルメチルキサンチン、２０μＭ Ｒｏ２０−１７２４、０．５％ＢＳＡ、ｐＨ７．４）中で３７℃、３０分間インキュベーションした。５Ｎ塩酸を１０μｌ加えてインキュベーションを停止した。各種ＧＬＰ−１誘導体とＧＬＰ−１受容体との反応により細胞内に形成されるサイクリックＡＭＰを、ｃＡＭＰ−Ｓｃｒｅｅｎ^ＴＭ ｓｙｓｔｅｍ（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）によるエンザイムイムノアッセイにより測定した。図７に各種ＧＬＰ−１誘導体のサイクリックＡＭＰ産生活性を示した。
この結果、［Ｓｅｒ^８］−ＧＬＰ−１（７−３６ａｍｉｄｅ）、［Ｇｌｙ^８］−ＧＬＰ−１（７−３６ａｍｉｄｅ）、および［Ｇｌｎ^２６，Ａｓｎ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６ａｍｉｄｅ）は、天然型ＧＬＰ−１と同等のサイクリックＡＭＰ産生活性を持っていた。

製造例１の［Ｇｌｎ^２６，Ａｓｎ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６ａｍｉｄｅ）について、トリプシン処理後、実施例２と同様にしてサイクリックＡＭＰ生産活性を測定することにより、トリプシン耐性を調査した。
即ち、合成で得た上記ＧＬＰ−１誘導体を、５０ｍＭ炭酸水素アンモニウム溶液（ｐＨ７．８）に５００μｇ／ｍｌの濃度になるように溶解した。この溶液１００μｌに、５００μｇ／ｍｌトリプシン溶液（Ｐｒｏｍｅｇａ社製：Ｃａｔ．Ｎｏ．Ｖ５１１３）を５μｌ加えて、３７℃、１時間反応させた。反応停止は、７１．５％エタノール１２００μｌ（ｆｉｎａｌ ６５％）を加えて行い、４℃で５分間の１５，０００ｒｐｍ遠心により上清を回収し、エバポレーションした。乾固物を蒸留水に溶解し、活性測定に用いた。
図８は、トリプシン処理前と処理後の［Ｇｌｎ^２６，Ａｓｎ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６ａｍｉｄｅ）の活性の濃度依存性を示したものである。［Ｇｌｎ^２６，Ａｓｎ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６ａｍｉｄｅ）は、トリプシン処理前と処理後で活性に違いがなく、トリプシンに対して耐性であることがわかった

イネ完熟種子中のＧＬＰ−１誘導体のペプシンに対する安定性を調べた。
実施例１で得られたイネ完熟種子の白米及びその粉末を使用し、１．９倍量の水を加えて１００℃、１５分間の加熱により炊飯した。粒のものは押しつぶして均一としてから蒸留水で５倍稀釈してサンプルとし、粉末のものはそのまま蒸留水で５倍稀釈してサンプルとした。一方、合成品のＧＬＰ−１（７−３６ａｍｉｄｅ）、［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）、［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｎ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）については、０．２％ＢＳＡ溶液で１０μｇ／ｍｌ溶液を調製し、サンプルとした。
各サンプルに、７．６ｍｇ／ｍｌペプシンを含む１０倍濃度の人工胃液（ｐＨ１．２）を１／１０量加えて、３７℃で１時間反応後、ＮａＯＨで中和した。ＧＬＰ−１（７−３６ａｍｉｄｅ）、［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）、［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｎ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）についてはその後、米由来のものについては、次いでタンパク質を抽出し、トリプシン処理によりＧＬＰ−１単体を得た後、サイクリックＡＭＰ産生にもとづく活性測定を行った。その結果、合成由来のＧＬＰ−１誘導体はペプシンで完全に失活したが、米では、３１〜６５％のＧＬＰ−１活性が残存することが明らかとなった（図９）。
これらのことから、イネ完熟種子に含有されるＧＬＰ−１誘導体は、ペプシン消化を受けくく、胃を通過し小腸に到達することが推察された。

実施例１で得られたイネ完熟種子より、０．０２５Ｍ水酸化ナトリウム溶液により、［Ｓｅｒ^８、Ｇｌｎ^２６、Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）とグロブリンとが融合したタンパク質を抽出し、これを５０ｍＭ炭酸水素アンモニウムｐＨ７．８で１５倍希釈した。この希釈液に、８３μｇ／ｍｌトリプシン溶液（Ｐｒｏｍｅｇａ社製：Ｃａｔ．Ｎｏ．Ｖ５１１３）６μｌを加えて、３７℃で１、２、４、６又は２０時間反応させた後、７１．５％エタノール１２００μｌ（ｆｉｎａｌ ６５％）を加えて反応を停止させ、４℃で５分間の１５，０００ｒｐｍ遠心により上清を回収して、エバポレーションし、その乾固物を蒸留水に溶解し活性測定を行った。
図１０は、イネ完熟種子に発現させ、融合タンパク質として得た［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）のトリプシン処理時間と活性の関係をみたものである。トリプシン処理により初めてサイクリックＡＭＰ産生活性が出現し、またトリプシン処理時間に関係なく、この活性が維持された。これらのことから、イネ完熟種子中で［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）は、活性を持った形で発現されており、かつトリプシン耐性であることがわかった。従って、ＧＬＰ−１誘導体の発現によりイネ完熟種子に含有される［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）は、小腸でトリプシンによる分解を受けることなく吸収されうることが推測された。

［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｎ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）および［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）について、トリプシン処理後、実施例２と同様にしてサイクリックＡＭＰ生産活性を測定することにより、トリプシン耐性を調査した。
即ち、０．２％ウシ血清アルブミン溶液で１０μｇ／ｍｌに稀釈した上記合成ＧＬＰ−１誘導体８μｌ、５０ｍＭ炭酸水素アンモニウム溶液（ｐＨ７．８）を１１２μｌおよび８３μｇ／ｍｌトリプシン溶液（Ｐｒｏｍｅｇａ社製：Ｃａｔ．Ｎｏ．Ｖ５１１３）を６μｌ加えて、３７℃で１時間反応させた。反応停止は、７１．５％エタノール１２００μｌ（ｆｉｎａｌ ６５％）を加えて行い、４℃で５分間の１５，０００ｒｐｍ遠心により上清を回収し、エバポレーションした。乾固物を蒸留水に溶解し、活性測定に用いた。
図１１は、ＧＬＰ−１（７−３６ａｍｉｄｅ）、［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｎ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）および［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）のトリプシン処理時間に対する活性の変動を示したものである。天然型のＧＬＰ−１（７−３６ａｍｉｄｅ）に比較して、［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｎ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）および［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）は、トリプシン処理により活性に変動がなく、トリプシンに対して耐性であることがわかった。

本発明のＧＬＰ−１誘導体が、天然型ＧＬＰ−１と比較し有意なＤＰＰ−ＩＶ耐性を示すかどうかを調べた。ＧＬＰ−１（７−３６ａｎｉｄｅ）（天然型ＧＬＰ−１）を５０００ｐＭ、［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｎ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）を５００ｐＭ、［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｐ^{３ ４}］−ＧＬＰ−１（７−３６）を５０００ｐＭ用いて、それぞれ４０μＵ／μｌのＤＰＰ−ＩＶ（Ｓｉｇｍａ、Ｄ７０５２）と混和し、３７℃にて０、１５、３０、６０分間反応させた後、２倍量のエタノールで抽出し、遠心エバポレーターにて乾固した。得られた乾固物を１％ＢＳＡ含有蒸留水に溶解し、ＧＬＰ−１レセプター発現細胞に作用させてサイクリックＡＭＰ産生量を測定した。図１２にＤＰＰ−ＩＶ処理のない場合を１００％としてサイクリックＡＭＰ産生活性を比較した。ＧＬＰ−１（７−３６ａｍｉｄｅ）に比較して、［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｎ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）および［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）は、明らかなＤＰＰ−ＩＶ耐性が確認された。

本発明のＧＬＰ−１誘導体のインスリン分泌促進活性を調べた。
ＩＣＲマウスの膵臓からコラゲナーゼによりランゲルハンス島を取り出し、２４ウエルプレートにウエルあたり２〜３個のランゲルハンス島を入れて一晩培養した。その後、１６．７ｍＭグルコース、０．２％ＢＳＡおよび１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓを含むクレブス−リンゲル緩衝液に溶解した本発明のＧＬＰ−１誘導体を加え、３７℃に３０分間置き、この上清中のインスリン濃度をエンザイムイムノアッセイキット（シバヤギ製）で測定した。
ＧＬＰ−１（７−３６ａｍｉｄｅ）、［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）および［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｎ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）、のいずれのペプチドにおいても、用量依存的なインスリン分泌促進活性が認められた。特に［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｎ^{３ ４}］−ＧＬＰ−１（７−３６）に高濃度で強いインスリン分泌促進活性が認められた（図１３）。

経口糖負荷試験（ＯＧＴＴ）におけるＧＬＰ−１誘導体皮下投与による血糖低下効果を調べた。
一晩絶食したマウスにグルコース１ｇ／ｋｇを経口投与し、直後にＧＬＰ−１（７−３６ａｍｉｄｅ）、［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｎ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）または［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｐ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）を背部皮下投与（５、２０μｇ／ｋｇ）した。コントロール群には生理食塩水を投与した。グルコース負荷前ならびに２０、６０、１２０分後に眼下静脈叢より経時的に採血を行い、血糖値を測定した。ＧＬＰ−１誘導体において血糖上昇のピーク値が低下する傾向が見られ、［Ｓｅｒ^８，Ｇｌｎ^２６，Ａｓｎ^３４］−ＧＬＰ−１（７−３６）に強い作用が認められた（図１４）。また、その作用は、投与後１２０分まで持続していた（図１５）。ＧＬＰ−１ペプチドの改変により、生体内での血中安定性が飛躍的に上昇し、持続性が確保できたことが明らかになった。

本発明により、遺伝子工学を用いた、安価で安全な、かつ効率的な物質生産システムとして、組換えタンパク質が高生産された植物貯蔵器官の生産方法による物質生産システムが提供される。本発明の方法により、健康増進に役立つ成分を有意に蓄積した食品を提供することを可能とする。また、本発明の方法は、医薬品や工業原料として有用な物質を生産する高付加価値な植物を作製する基礎技術となりうる。
更に、本発明は、食物摂取により消化管より分泌され、膵臓に働いて糖依存的なインスリン分泌を刺激するホルモンとして知られているＧＬＰ−１を本発明の方法により製造することを包含するものである。
更に本発明において提供される新規ＧＬＰ−１誘導体は、その利用に際しての摂取時に問題となるトリプシン等の消化酵素による分解に対し、該酵素に対する耐性をもち、更に、摂取、吸収後の血漿中での安定性に対して問題となるジペプチジルペプチダーゼＩＶによる分解に対し、該酵素に対する耐性を持つという優れた特性を有するものであり、医薬としての利用が期待できるものである。すなわち、本発明のＧＬＰ−１誘導体は、経口摂取された場合においても、薬効発現が可能であり、例えば、本発明方法により植物の貯蔵器官に発現させ、経口的に摂取したような場合でも、分解されることなく小腸から吸収され、薬効を発現することが可能となる。したがって、本発明で提供されるＧＬＰ−１誘導体は、ＧＬＰ−１の臨床応用の可能性を格段に高めるものであり、糖尿病患者及び肥満患者のＱＯＬの改善に役立つものと考えられる。

【配列表】

Claims (22)

1. 組換えタンパク質が高生産された植物貯蔵器官を生産する方法であって、次の過程（Ａ）、（Ｂ）、（Ｃ）、からなることを特徴とする方法。
   （Ａ）植物の貯蔵器官中に発現させる組換えタンパク質遺伝子、サイトカイニン関連遺伝子、薬剤耐性遺伝子及び脱離能を有するＤＮＡ因子を含み、かつ、サイトカイニン関連遺伝子と薬剤耐性遺伝子は脱離能を有するＤＮＡ因子と挙動を一にする位置に存在し、植物の貯蔵器官中に発現させる組換えタンパク質遺伝子は脱離能を有するＤＮＡ因子とは挙動を一にしない位置に存在するベクターを構築し、該ベクターを細胞中に導入する過程。
   （Ｂ）上記（Ａ）により、ベクターが導入された植物細胞を、薬剤添加培地及び薬剤非添加培地にて培養を行うことにより形質転換体を再分化せしめる過程。
   （Ｃ）上記（Ｂ）にて再分化した形質転換体から、植物貯蔵器官を得る過程。
2. ベクターが導入された植物細胞から形質転換体を再分化せしめる過程において、ベクターが導入された植物細胞を植物ホルモン及び薬剤添加培地で培養した後、植物ホルモン及び薬剤非添加培地で培養を行うことを特徴とする、請求項１記載の組換えタンパク質が高生産された植物貯蔵器官を生産する方法。
3. 植物貯蔵器官中に発現させる組換えタンパク質遺伝子が、該植物貯蔵器官特異的プロモーターの制御下にあることを特徴とする、請求項１又は２記載の組換えタンパク質が高生産された植物貯蔵器官を生産する方法。
4. 植物貯蔵器官中に発現させる組換えタンパク質遺伝子が、該植物貯蔵器官で本来発現しているタンパク質遺伝子中、タンパク可変領域をコードする位置に挿入又は置換されていることを特徴とする、請求項１〜３記載の組換えタンパク質が高生産された植物貯蔵器官を生産する方法。
5. 組換えタンパク質遺伝子と植物貯蔵器官で本来発現しているタンパク質遺伝子との境界に、該組換えタンパク質を植物貯蔵器官で本来発現しているタンパク質から切断分離するための酵素切断アミノ酸配列をコードする塩基配列を配置することを特徴とする、請求項４記載の組換えタンパク質が高生産された植物貯蔵器官を生産する方法。
6. 植物貯蔵器官が種子であることを特徴とする、請求項１〜５のいずれかに記載の組換えタンパク質が高生産された植物貯蔵器官を生産する方法。
7. 植物貯蔵器官中に発現させる組換えタンパク質遺伝子を、タンパク可変領域に挿入又は置換する該植物貯蔵器官で本来発現している遺伝子が、種子貯蔵タンパク質遺伝子であることを特徴とする、請求項６に記載の組換えタンパク質が高生産された植物貯蔵器官を生産する方法。
8. サイトカイニン関連遺伝子が、サイトカイニン合成系遺伝子であることを特徴とする、請求項１〜７のいずれかに記載の組換えタンパク質が高生産された植物貯蔵器官を生産する方法。
9. サイトカイニン合成系遺伝子がイソペンテニルトランスフェラーゼ遺伝子であることを特徴とする、請求項８記載の組換えタンパク質が高生産された植物貯蔵器官を生産する方法。
10. 薬剤耐性遺伝子がハイグロマイシン耐性遺伝子であることを特徴とする、請求項１〜９のいずれかに記載の組換えタンパク質が高生産された植物貯蔵器官を生産する方法。
11. 脱離能を有するＤＮＡ因子が、部位特異的組換え系又はトランスポゾンに由来するものであることを特徴とする、請求項１〜１０のいずれかに記載の組換えタンパク質が高生産された植物貯蔵器官を生産する方法。
12. 植物の貯蔵器官中に発現させる組換えタンパク質遺伝子が、ＧＬＰ−１（７−３６）遺伝子、あるいは、ＧＬＰ−１（７−３６）のアミノ酸配列の１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換及び／又は付加された配列からなり、かつＧＬＰ−１活性を有するペプチドをコードする遺伝子であることを特徴とする、請求項１〜１１のいずれかに記載の組換えタンパク質が高生産された植物貯蔵器官を生産する方法。
13. 植物の貯蔵器官中に発現させる組換えタンパク質遺伝子が、ＧＬＰ−１（７−３６）あるいはそのアミノ酸配列の１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換及び／又は付加された配列からなり、かつＧＬＰ−１活性を有するペプチドにおいて、２６位をグルタミンに、３４位をアスパラギン又はアスパラギン酸に置換したＧＬＰ−１誘導体をコードする遺伝子であることを特徴とする、請求項１〜１１のいずれかに記載の組換えタンパク質が高生産された植物貯蔵器官を生産する方法。
14. 植物の貯蔵器官中に発現させる組換えタンパク質遺伝子が、アミノ酸配列の８位をセリン又はグリシンに置換したＧＬＰ−１誘導体をコードする遺伝子であることを特徴とする、請求項１２又は１３に記載の組換えタンパク質が高生産された植物貯蔵器官を生産する方法。
15. 植物の貯蔵器官中に発現させる組換えタンパク質遺伝子が、配列表の配列番号１に記載の遺伝子であることを特徴とする、請求項１４に記載の組換えタンパク質が高生産された植物貯蔵器官を生産する方法。
16. 植物が、単子葉植物であることを特徴とする、請求項１〜１５のいずれかに記載の組換えタンパク質が高生産された植物貯蔵器官を生産する方法。
17. 単子葉植物がイネであることを特徴とする、請求項１６記載の組換えタンパク質が高生産された植物貯蔵器官を生産する方法。
18. 請求項１〜１７のいずれかに記載の生産方法により生産された組換えタンパク質が高生産された植物貯蔵器官又はそれを生産する形質転換植物。
19. ＧＬＰ−１（７−３６）あるいはそのアミノ酸配列の１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換及び／又は付加された配列からなり、かつＧＬＰ−１活性を有するペプチドにおいて、２６位をグルタミンに、３４位をアスパラギン又はアスパラギン酸に置換したアミノ酸配列を有するＧＬＰ−１誘導体。
20. ＧＬＰ−１（７−３６）或いはそのアミノ酸配列の１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換及び／又は付加された配列からなり、かつＧＬＰ−１活性を有するペプチドが、ＧＬＰ−１（７−３６）、ＧＬＰ−１（７−３７）又はそれらのＣ末端アミドである、請求項１９に記載のＧＬＰ−１誘導体。
21. アミノ酸配列の８位をセリン又はグリシンに置換したことを特徴とする、請求項１９又は２０に記載のＧＬＰ−１誘導体。
22. 配列表の配列番号２、５、又は６に記載のアミノ酸配列を有するＧＬＰ−１誘導体。

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