JPS63294788A - ベクタ−、遺伝子の検出方法及び蛋白質の発現方法 - Google Patents
ベクタ−、遺伝子の検出方法及び蛋白質の発現方法Info
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- JPS63294788A JPS63294788A JP62130797A JP13079787A JPS63294788A JP S63294788 A JPS63294788 A JP S63294788A JP 62130797 A JP62130797 A JP 62130797A JP 13079787 A JP13079787 A JP 13079787A JP S63294788 A JPS63294788 A JP S63294788A
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- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
[産業上の利用分野]
本発明はベクター、遺伝子の検出方法及び蛋白質の発現
方法に関する。
方法に関する。
ここでいう蛋白質とは、アミノ酸を複数個含むポリペプ
チドを指すものである。
チドを指すものである。
[従来の技術]
遺伝子工学的手法による蛋白質の発現や、蛋白工学等の
バイオテクノロジー利用技術の開発が盛んに行なわれる
ようになってきた今日、より優れた技術開発が大いに期
待されている0以上の蛋白工学の中でも、蛋白質(酵素
)の改良や解析は重要な役割を有しており、今後益々の
発展が期待されている。
バイオテクノロジー利用技術の開発が盛んに行なわれる
ようになってきた今日、より優れた技術開発が大いに期
待されている0以上の蛋白工学の中でも、蛋白質(酵素
)の改良や解析は重要な役割を有しており、今後益々の
発展が期待されている。
従来、外来遺伝子のクローニングおよび蛋白質の発現用
として、大腸菌を宿主とするpUCベクターが市販され
ている。このpUCベクターは第2図に示すように、複
製開始信号(Ori) 、アンピシリン耐性遺伝子、ラ
クトースプロモーター、オペレーター、β−ガラクトシ
ダーゼ遺伝子(l acZ′)およびマルチクローニン
グサイトより構成されている。このpUCベクターは、
ジデオキシ法によるDNAシークエンシングに適したプ
ラスミドベクターであり、n acZ ’領域内にマル
チクローニングサイトを持っており、イソプロピルβ−
チオ−ガラクトピラノシド(IPTG)と5−ブロモ−
4−クロロ−3−インドリル−ガラクトサイド(X−g
afL)を含むプレート上で、外来DNA(目的とする
DNA)の挿入の有無を容易に色の変化(青→白)によ
って判別することかできるものである。また、ラクトー
スプロモーターを利用して外来遺伝子を発現することも
できるものである。
として、大腸菌を宿主とするpUCベクターが市販され
ている。このpUCベクターは第2図に示すように、複
製開始信号(Ori) 、アンピシリン耐性遺伝子、ラ
クトースプロモーター、オペレーター、β−ガラクトシ
ダーゼ遺伝子(l acZ′)およびマルチクローニン
グサイトより構成されている。このpUCベクターは、
ジデオキシ法によるDNAシークエンシングに適したプ
ラスミドベクターであり、n acZ ’領域内にマル
チクローニングサイトを持っており、イソプロピルβ−
チオ−ガラクトピラノシド(IPTG)と5−ブロモ−
4−クロロ−3−インドリル−ガラクトサイド(X−g
afL)を含むプレート上で、外来DNA(目的とする
DNA)の挿入の有無を容易に色の変化(青→白)によ
って判別することかできるものである。また、ラクトー
スプロモーターを利用して外来遺伝子を発現することも
できるものである。
[発明が解決しようとする問題点]
しかしながら、pUCベクターのうち、pUC8−1,
8−2,9−1,9−2によって外来遺伝子を発現させ
た場合には、DNA塩基配列のパリンドローム(回文)
が長くなり、2次構造を形成することとなり、ジデオキ
シ法DNAシーケンシング時に正確に読み難くなるほか
、発現効率が低下するという問題があった。
8−2,9−1,9−2によって外来遺伝子を発現させ
た場合には、DNA塩基配列のパリンドローム(回文)
が長くなり、2次構造を形成することとなり、ジデオキ
シ法DNAシーケンシング時に正確に読み難くなるほか
、発現効率が低下するという問題があった。
[問題点を解決するための手段]
本発明は上記従来における問題点を解決した。
新規なベクターとそれを用いた遺伝子の検出方法を提供
することを目的とする。そして、その目的は1本発明に
よれば、複製開始信号、アンピシリン耐性遺伝子、ラク
トースプロモーター、オペレーター、β−ガラクトシダ
ーゼ遺伝子及び制限酵素器ndm 、PstI 、 S
@l I 、Accl、HincII 、Bag旧、5
llaI 、EcoRIの各切断部位を持つマルチクロ
ーニングサイトを有してなるベクター(第1発明)、複
製開始信号、アンピシリン耐性遺伝子、ラクトースプロ
モーター、オペレーター、β−ガラクトシダーゼ遺伝子
及び制限酵素器ndm 、PstI 、 5afL I
、Accl、HincII 、Bag旧、SmaI 、
EcoRIの各切断部位を持つマルチクローニングサイ
トを有してなるベクター3種類からなるベクターシリー
ズであって、該ベクターシリーズは前記切断部位のアミ
ノ酸に対応するフレームを3種類すべて有するものであ
るベクターシリーズ(第2発明)、複製開始信号、アン
ピシリン耐性遺伝子、ラクトースプロモーター、オペレ
ーター、β−ガラクトシダーゼ遺伝子及び制限酵素器n
dm 、PstI 、 Sal I 、Accl、旧n
cII、Ram旧、3maI 、EcoRIの各切断部
位を持つマルチクローニングサイトを有してなるベクタ
ー3種類からなるベクターシリーズであって、該ベクタ
ーシリーズは前記切断部位のアミノ酸に対応するフレー
ムを3種類すべて有するものであるベクターシリーズの
中から所望のベクターを選択し、そのベクターおよび蛋
白質をコードしている遺伝子を所定の制限酵素にて切り
出した後両者を結合することにより、色の変化を判別し
て蛋白質をコードしている遺伝子を検出することを特徴
とする特許遺伝子の検出方法(第3発明)、および複製
開始信号、アンピシリン耐性遺伝子、ラクトースプロモ
ーター、オペレーター、β−ガラクトシダーゼ遺伝子及
び制限酵素器ndm 、PstI 、 5aiI 、A
ccl。
することを目的とする。そして、その目的は1本発明に
よれば、複製開始信号、アンピシリン耐性遺伝子、ラク
トースプロモーター、オペレーター、β−ガラクトシダ
ーゼ遺伝子及び制限酵素器ndm 、PstI 、 S
@l I 、Accl、HincII 、Bag旧、5
llaI 、EcoRIの各切断部位を持つマルチクロ
ーニングサイトを有してなるベクター(第1発明)、複
製開始信号、アンピシリン耐性遺伝子、ラクトースプロ
モーター、オペレーター、β−ガラクトシダーゼ遺伝子
及び制限酵素器ndm 、PstI 、 5afL I
、Accl、HincII 、Bag旧、SmaI 、
EcoRIの各切断部位を持つマルチクローニングサイ
トを有してなるベクター3種類からなるベクターシリー
ズであって、該ベクターシリーズは前記切断部位のアミ
ノ酸に対応するフレームを3種類すべて有するものであ
るベクターシリーズ(第2発明)、複製開始信号、アン
ピシリン耐性遺伝子、ラクトースプロモーター、オペレ
ーター、β−ガラクトシダーゼ遺伝子及び制限酵素器n
dm 、PstI 、 Sal I 、Accl、旧n
cII、Ram旧、3maI 、EcoRIの各切断部
位を持つマルチクローニングサイトを有してなるベクタ
ー3種類からなるベクターシリーズであって、該ベクタ
ーシリーズは前記切断部位のアミノ酸に対応するフレー
ムを3種類すべて有するものであるベクターシリーズの
中から所望のベクターを選択し、そのベクターおよび蛋
白質をコードしている遺伝子を所定の制限酵素にて切り
出した後両者を結合することにより、色の変化を判別し
て蛋白質をコードしている遺伝子を検出することを特徴
とする特許遺伝子の検出方法(第3発明)、および複製
開始信号、アンピシリン耐性遺伝子、ラクトースプロモ
ーター、オペレーター、β−ガラクトシダーゼ遺伝子及
び制限酵素器ndm 、PstI 、 5aiI 、A
ccl。
HincH、Bag旧、SmaI 、EcoRIの各切
断部位を持つマルチクローニングサイトを有してなるベ
クター3種類からなるベクターシリーズてあって、該ベ
クターシリーズは前記切断部位のアミノ酸に対応するフ
レームを3種類すべて有するものであるベクターシリー
ズの中から蛋白質をコードしている遺伝子の5′末端の
フレームの合うベクターを選択し、所定の制限酵素にて
切り出した後両者を結合し、大腸菌に導入し、蛋白質を
発現することを特徴とする特定蛋白質の発現方法(第4
発明)、により達成することができる。
断部位を持つマルチクローニングサイトを有してなるベ
クター3種類からなるベクターシリーズてあって、該ベ
クターシリーズは前記切断部位のアミノ酸に対応するフ
レームを3種類すべて有するものであるベクターシリー
ズの中から蛋白質をコードしている遺伝子の5′末端の
フレームの合うベクターを選択し、所定の制限酵素にて
切り出した後両者を結合し、大腸菌に導入し、蛋白質を
発現することを特徴とする特定蛋白質の発現方法(第4
発明)、により達成することができる。
本発明のベクターの特徴は、クローニングサイトとして
制限酵素器ndIII 、PstI 、 Sa、i I
、Accl。
制限酵素器ndIII 、PstI 、 Sa、i I
、Accl。
HincII 、Bag旧、5saI 、EcoRIの
各切断部位の塩基配列を有していることである。
各切断部位の塩基配列を有していることである。
このベクターの一例は、第1図に示す如く、複りトース
プロモーター、オペレーター、β−ガラクトシダーゼ遺
伝子(iacZ’)及びクローニングサイトとしての制
限酵素器ndm * Ps t I + Sa l I
、Accl、HincII 、Ram旧、SmaI 、
EcoRrの各切断部位の塩基配列から構成されている
ものである。
プロモーター、オペレーター、β−ガラクトシダーゼ遺
伝子(iacZ’)及びクローニングサイトとしての制
限酵素器ndm * Ps t I + Sa l I
、Accl、HincII 、Ram旧、SmaI 、
EcoRrの各切断部位の塩基配列から構成されている
ものである。
本発明のベクター(下記の如く、pUc81゜82およ
びpUc91.92)は、従来公知のpUc8/pUC
9ベクター(宝酒造■販売)のマルチクローニングサイ
トのアミノ酸のフレームを1塩基(−1)欠失させたも
の、さらに2塩基(−2)欠失させたものである。これ
らベクターのマルチクローニングサイトを第1表に示す
。
びpUc91.92)は、従来公知のpUc8/pUC
9ベクター(宝酒造■販売)のマルチクローニングサイ
トのアミノ酸のフレームを1塩基(−1)欠失させたも
の、さらに2塩基(−2)欠失させたものである。これ
らベクターのマルチクローニングサイトを第1表に示す
。
(以下、余白)
本発明のベクターは、前記の通り、マルチクローニング
サイトとして制限酵素旧ndm 、PstI 。
サイトとして制限酵素旧ndm 、PstI 。
Sal I 、Accl、HincII 、Ram旧、
SmaI 、EcoRIの各切断部位の塩基配列を有し
ており、また、前記切断部位のアミノ酸に対応するフレ
ームを公知のPuO2およびpUC9を含めて3種類す
べて取り揃えてベクターシリーズとし、且ついずれのベ
クターにおいてもマルチクローニングサイト内に終止コ
ドンを有しないことを特徴としている。
SmaI 、EcoRIの各切断部位の塩基配列を有し
ており、また、前記切断部位のアミノ酸に対応するフレ
ームを公知のPuO2およびpUC9を含めて3種類す
べて取り揃えてベクターシリーズとし、且ついずれのベ
クターにおいてもマルチクローニングサイト内に終止コ
ドンを有しないことを特徴としている。
[発明の効果]
このベクターおよびベクターシリーズを用いることによ
り、蛋白質をコードしている遺伝子を検出することがで
きる。すなわち、ベクターシリーズの中から所望のベク
ターを選択し、そのベクター及び目的の蛋白質をコード
する遺伝子を所定の制限酵素により切断し、DNAリガ
ー ゼ等の連結酵素により結合すると、色の変化を判別
すること、例えば白→青により蛋白質をコードしている
遺伝子を検出することができる。
り、蛋白質をコードしている遺伝子を検出することがで
きる。すなわち、ベクターシリーズの中から所望のベク
ターを選択し、そのベクター及び目的の蛋白質をコード
する遺伝子を所定の制限酵素により切断し、DNAリガ
ー ゼ等の連結酵素により結合すると、色の変化を判別
すること、例えば白→青により蛋白質をコードしている
遺伝子を検出することができる。
さらに、本発明のベクターおよびベクターシリーズによ
れば、蛋白質をコードしている遺伝子の5′末端のフレ
ームの合うベクターを前記ベクターシリーズから選択し
、所定の制限酵素にて切り出した後、両者を結合し、大
腸菌に導入することにより蛋白質を発現させることが可
能になるという利点を有する。
れば、蛋白質をコードしている遺伝子の5′末端のフレ
ームの合うベクターを前記ベクターシリーズから選択し
、所定の制限酵素にて切り出した後、両者を結合し、大
腸菌に導入することにより蛋白質を発現させることが可
能になるという利点を有する。
[実施例コ
以下、本発明を実施例に基いて、詳細に説明する。
まず1本発明のベクターの作成方法から説明する。
■pUc1090の作成方法
1)プラスミドpUC9(宝酒造■販売)lOILgを
制限酵素EcoRI (50単位)及び旧ndm(5
0単位)を用いて37°Cにて1時間反応させた後、分
解産物を0.7%アガロース電気泳動を用いて分離しE
coRI切断部位から旧ndm切断部位までのポリリン
カー断片(30塩基対)をゲルより切り出し、フェノー
ル処理を行なうことにより精製した。
制限酵素EcoRI (50単位)及び旧ndm(5
0単位)を用いて37°Cにて1時間反応させた後、分
解産物を0.7%アガロース電気泳動を用いて分離しE
coRI切断部位から旧ndm切断部位までのポリリン
カー断片(30塩基対)をゲルより切り出し、フェノー
ル処理を行なうことにより精製した。
2)プラスミドpUc119(宝酒造■販売) 10I
Lgを制限酵素EcoRI (50単位)及び旧nd
m(50単位)を用いて37℃にて1時間反応させた後
、分解産物を0.7%アガロース電気泳動を用いて分離
しEcoRI切断部位から旧ndm切断部位までのポリ
リンカ一部分を含まない断片(約3,100塩基対)を
ゲルより切り出し、フェノール処理を行なうことにより
精製した。
Lgを制限酵素EcoRI (50単位)及び旧nd
m(50単位)を用いて37℃にて1時間反応させた後
、分解産物を0.7%アガロース電気泳動を用いて分離
しEcoRI切断部位から旧ndm切断部位までのポリ
リンカ一部分を含まない断片(約3,100塩基対)を
ゲルより切り出し、フェノール処理を行なうことにより
精製した。
3)■)で得られたポリリンカー断片0.01#Lgと
2)で得られたポリリンカーを含まない断片0.1ルg
を混合し、T4DNAリガーゼ(2単位)を用いて4℃
にて一昼夜反応させることにより連結反応を行なった。
2)で得られたポリリンカーを含まない断片0.1ルg
を混合し、T4DNAリガーゼ(2単位)を用いて4℃
にて一昼夜反応させることにより連結反応を行なった。
4)3)で得られた反応生成物を、大腸菌JM83株(
arasΔ(1ac−proAB) 、rpsL、φ8
G、1acZΔMIs)を用いて形質転換を行なった後
、受容菌を寒天1.5%及びアンピシリンを1mfL当
り100gg含むし寒天培地(組成:1u当りトリプト
ンlOg、イーストエキス5g、食塩10g、PH7−
5)に塗布し、37°Cにて一昼夜培養を行ないいくつ
かのコロニー(形質転換体)を得た。
arasΔ(1ac−proAB) 、rpsL、φ8
G、1acZΔMIs)を用いて形質転換を行なった後
、受容菌を寒天1.5%及びアンピシリンを1mfL当
り100gg含むし寒天培地(組成:1u当りトリプト
ンlOg、イーストエキス5g、食塩10g、PH7−
5)に塗布し、37°Cにて一昼夜培養を行ないいくつ
かのコロニー(形質転換体)を得た。
5):r口二一の一つをアンピシリンをl m 5Lあ
たりlooILg含むL液体培地10 m 41に移植
し、37℃にて12時間振とう培養を行ない、アルカリ
−5DS法によりプラスミドDNAを分離し、プラスミ
ドpUc1090を得た。
たりlooILg含むL液体培地10 m 41に移植
し、37℃にて12時間振とう培養を行ない、アルカリ
−5DS法によりプラスミドDNAを分離し、プラスミ
ドpUc1090を得た。
■ UC1080の 法
■pUc1090の作成方法のうち、1)のプラスミド
DNAとしてpucsを、又2)のプラスミドDNAと
してpUc118を用いることにより、同様の操作を経
て、プラスミドpUc1080を作成した。
DNAとしてpucsを、又2)のプラスミドDNAと
してpUc118を用いることにより、同様の操作を経
て、プラスミドpUc1080を作成した。
次いで、pUc1091の作成方法を説明するが、まず
PUC1090とpUc1091.puC1092の関
係をいうと、pUc1090のポリリンカ一部分をはさ
んで、前部で1塩基、後部で2塩基欠失させたものがp
Uc1091て、pUC1090のポリリンカ一部分を
はさんで、前部で2塩基、後部で1塩基欠失させたもの
がpuC1092である。また、pUc1080とpU
C1081,pUc1082の関係も、上記と同様であ
る。
PUC1090とpUc1091.puC1092の関
係をいうと、pUc1090のポリリンカ一部分をはさ
んで、前部で1塩基、後部で2塩基欠失させたものがp
Uc1091て、pUC1090のポリリンカ一部分を
はさんで、前部で2塩基、後部で1塩基欠失させたもの
がpuC1092である。また、pUc1080とpU
C1081,pUc1082の関係も、上記と同様であ
る。
■pUc1091の作成
pUc1091は次の段階にわけて作成した。
1)pUc1090より一本鎖DNAの作成2)ポリリ
ンカ一部位の前部より一塩基欠いたオリゴヌクレオチド
の合成 3) 1)2)を用いた突然変異体の作成4)突然変
異体より一本鎖DNAの作成5)ポリリンカ一部位の後
部より2塩基欠いたオリゴヌクレオチドの合成 6) 4)5)を用いた再突然変異体の作成(pUC
■−1) pUc1090より一本鎖DNAの作成■pUc109
0を大腸菌MV1184株(ara。
ンカ一部位の前部より一塩基欠いたオリゴヌクレオチド
の合成 3) 1)2)を用いた突然変異体の作成4)突然変
異体より一本鎖DNAの作成5)ポリリンカ一部位の後
部より2塩基欠いたオリゴヌクレオチドの合成 6) 4)5)を用いた再突然変異体の作成(pUC
■−1) pUc1090より一本鎖DNAの作成■pUc109
0を大腸菌MV1184株(ara。
△(Iac−pro)、5trA、thi、(φ80.
IacZ 6M15)、△(srl−recA):1
06::TnlO(Let’)、F’ :traD
:16.proAB。
IacZ 6M15)、△(srl−recA):1
06::TnlO(Let’)、F’ :traD
:16.proAB。
1aclqZ△M15)を用いて形質転換を行なった。
■形質転換体を、アンピシリンを1snjL当り110
0JL含む2xYT液体培地(組成:l見当りトリプト
ン16g、イーストエキスlOg、食塩5g、pH7,
6)lOnJLに植菌し、37℃にて12時時間上う培
養を行なった。
0JL含む2xYT液体培地(組成:l見当りトリプト
ン16g、イーストエキスlOg、食塩5g、pH7,
6)lOnJLに植菌し、37℃にて12時時間上う培
養を行なった。
■ ■て得られた培養液lOOル見に、M13に07由
来のへルバーファージ液(10”pfu/m fL)を
加え、37℃で30分間静置した後、アンピシリンをl
m fL当り150gg、カナマイシンを1mi当り
70ILg、チアミンを0.01%含む2xYT液体培
地10 m fLに加え、37℃にて24時時間上う培
養を行なった。
来のへルバーファージ液(10”pfu/m fL)を
加え、37℃で30分間静置した後、アンピシリンをl
m fL当り150gg、カナマイシンを1mi当り
70ILg、チアミンを0.01%含む2xYT液体培
地10 m fLに加え、37℃にて24時時間上う培
養を行なった。
■培養液1mjLを取り、遠心分離により菌体な除いた
後、20%PEG6000及び2.5MNaC1混合溶
液を2001LJL加え遠心分離を行なうことにより、
ファージ粒子を沈殿させた。以下、フェノール処理、ク
ロロホルム処理、エタノール沈殿処理を行なうことによ
り、1本鎖DNAを分離精製し、最終的に501L9.
のTE溶液(10mM トリス塩酸、1mM ED
TA、pH8,0の溶液)に溶解させた。
後、20%PEG6000及び2.5MNaC1混合溶
液を2001LJL加え遠心分離を行なうことにより、
ファージ粒子を沈殿させた。以下、フェノール処理、ク
ロロホルム処理、エタノール沈殿処理を行なうことによ
り、1本鎖DNAを分離精製し、最終的に501L9.
のTE溶液(10mM トリス塩酸、1mM ED
TA、pH8,0の溶液)に溶解させた。
収量は約2〜loILg程度であった。
■−2)
変異部)を む合 DNAの
DNA合成機を用いて第2表に示すNo、9−1−5な
る配列を有するオリゴヌクレオチドを合成し、T4DN
Aキナーゼ(2単位)を用いて37°Cにて1時間反応
を行ない、5′末端部分をリン酸化させ、ブライマーD
NAとした。
る配列を有するオリゴヌクレオチドを合成し、T4DN
Aキナーゼ(2単位)を用いて37°Cにて1時間反応
を行ない、5′末端部分をリン酸化させ、ブライマーD
NAとした。
■−3)
ポリリンカー前部に変異を有する突然変異体の主成
■−1)で得られた一水銀DNAI終gと、■−2)で
得られたブライマーDNA 20pmoJLを混合し
て60°Cで30分間、引続き37℃で30分間保温し
、アニーリングさせた後、dATP、dCTP、dGT
P及びTTPを最終濃度が各々0.5mMとなるように
加え、およびATPを25pmou加え、クレノー(K
LENOW)酵素(4単位)及びT4DNAリガーゼ(
1単位)を用いて37℃にて3時間反応を行ない、突然
変異部分を含む2本鎖DNAを合成した。
得られたブライマーDNA 20pmoJLを混合し
て60°Cで30分間、引続き37℃で30分間保温し
、アニーリングさせた後、dATP、dCTP、dGT
P及びTTPを最終濃度が各々0.5mMとなるように
加え、およびATPを25pmou加え、クレノー(K
LENOW)酵素(4単位)及びT4DNAリガーゼ(
1単位)を用いて37℃にて3時間反応を行ない、突然
変異部分を含む2本鎖DNAを合成した。
次に1反応生成物の一部(約0− IJLg)を大腸菌
JM83株を用いて形質転換を行なった後、受容菌を1
.5%寒天、アンピシリンを1m文当り100.g及び
X−gagをo、oos%含むL寒天培地に塗布し、3
7℃にて一昼夜培養を行ナイ、出現したコロニーの内、
白色コロニーヲ選択した。白色コロニーの出現率は5〜
10%程度であった。
JM83株を用いて形質転換を行なった後、受容菌を1
.5%寒天、アンピシリンを1m文当り100.g及び
X−gagをo、oos%含むL寒天培地に塗布し、3
7℃にて一昼夜培養を行ナイ、出現したコロニーの内、
白色コロニーヲ選択した。白色コロニーの出現率は5〜
10%程度であった。
次いで、白色コロニーを、アンピシリンを1m文当り1
00gg含むL液体培地10mJlに移植し、37℃に
て12時時間上う培養を行ない、常法によりプラスミド
DNAを回収した。回収したプラスミドDNAを再び大
腸菌MV1184株を用いて形質転換を行なった後、受
容菌を寒天1゜5%、アンピシリンを1 m 5L当り
toopg、X−galを0.005%及びI PTG
を1mM含むし寒天培地に塗布し、37°Cにて一昼夜
培養を行ない、白色コロニーを選択し、アンピシリンを
1m見当り100終g含むL液体培地10 m lに移
植し、37℃にて12時時間上う培養を行ない、常法に
よりプラスミドDNAを分離した。
00gg含むL液体培地10mJlに移植し、37℃に
て12時時間上う培養を行ない、常法によりプラスミド
DNAを回収した。回収したプラスミドDNAを再び大
腸菌MV1184株を用いて形質転換を行なった後、受
容菌を寒天1゜5%、アンピシリンを1 m 5L当り
toopg、X−galを0.005%及びI PTG
を1mM含むし寒天培地に塗布し、37°Cにて一昼夜
培養を行ない、白色コロニーを選択し、アンピシリンを
1m見当り100終g含むL液体培地10 m lに移
植し、37℃にて12時時間上う培養を行ない、常法に
よりプラスミドDNAを分離した。
■−4)1、 一本@DNAの作
■−3)で得られた突然変異体プラスミドを有する大@
cIiMV1184株ヨリ、■−1)ト全<同シ方法を
用いて突然変異を有する一本鎖DNAを得た。
cIiMV1184株ヨリ、■−1)ト全<同シ方法を
用いて突然変異を有する一本鎖DNAを得た。
■−5)ポリリンカー 部に・ を有する合成りNAの
作成 ■−2)と同じ方法を用いて第2表のNo、9−2−5
なる塩基配列を有する合成りNAを作成し、リン酸化を
行ないプライマーDNAを作成した。
作成 ■−2)と同じ方法を用いて第2表のNo、9−2−5
なる塩基配列を有する合成りNAを作成し、リン酸化を
行ないプライマーDNAを作成した。
■−6)再突然変異体の作成
■−3)と同じ方法を用いて、■−4)で得られた一本
鎖DNA及び■−5)で得られたブライマーDNAより
二本鎖DNAを合成、大腸菌JM83株を用いて形質転
換を行なうことにより青色コロニーを得た。これよりプ
ラスミドDNAを回収し、再び大腸菌MV1184株を
用いて形質転換を行なうことにより青色コロニーを出現
させた。これよりプラスミドDNAを回収することによ
り、ポリリンカ一部分の前後2個所に合計3塩基対欠失
したプラスミドpUc1091を得た。
鎖DNA及び■−5)で得られたブライマーDNAより
二本鎖DNAを合成、大腸菌JM83株を用いて形質転
換を行なうことにより青色コロニーを得た。これよりプ
ラスミドDNAを回収し、再び大腸菌MV1184株を
用いて形質転換を行なうことにより青色コロニーを出現
させた。これよりプラスミドDNAを回収することによ
り、ポリリンカ一部分の前後2個所に合計3塩基対欠失
したプラスミドpUc1091を得た。
■pUc1092の作成方法
プラスミドpUc1092の作成は、前記■のプラスミ
ドPUC1091の作成例に準して行なった。変更点は
次の通りである。
ドPUC1091の作成例に準して行なった。変更点は
次の通りである。
(1)■−2)の塩基配列をWIz表のNo、9−1−
3とする。
3とする。
(2)■−5)の塩基配列を第2表のNo、9−1−5
とする。
とする。
これによりプラスミドpUc1090よりポリリンカ一
部分の前部を2塩基、後部を1塩基、合計3塩基欠いた
突然変異プラスミドpUc1092を得た。
部分の前部を2塩基、後部を1塩基、合計3塩基欠いた
突然変異プラスミドpUc1092を得た。
■PUC1081% UC1082の 戒 法前記■■
■と同様に、プラスミドpUc1080を基本としてポ
リリンカ一部分を1塩基および2塩基ずらした突然変異
プラスミドpuctoa1、pUc1082を作成した
。
■と同様に、プラスミドpUc1080を基本としてポ
リリンカ一部分を1塩基および2塩基ずらした突然変異
プラスミドpuctoa1、pUc1082を作成した
。
変更点は次の通りである。
(1)pUc1081.pUc1082共に、■−1)
のプラスミドとしてpUc1080を用いた。
のプラスミドとしてpUc1080を用いた。
(2)■−2)の合成りNAとして、pUc1081に
おいては第2表のNo、8−1−5、pUC1082に
おいてはNo、8−2−5を用いた。
おいては第2表のNo、8−1−5、pUC1082に
おいてはNo、8−2−5を用いた。
(3)■−5)の合成りNAとして、pUc1081に
おいては第2表のNo、8−1−3、ptrc1082
においてはNo、8−1−5を用いた。
おいては第2表のNo、8−1−3、ptrc1082
においてはNo、8−1−5を用いた。
以上、基本となるプラスミドpUc1090、pUc1
080及び作成した突然変異プラスミドpUc1091
.pUc1092、puctosl及びpUc1082
の間の関係についてまとめると、第3表のとおりとなる
。
080及び作成した突然変異プラスミドpUc1091
.pUc1092、puctosl及びpUc1082
の間の関係についてまとめると、第3表のとおりとなる
。
(以下、余白)
第 2 表
合成りNAの塩基配列表
変異部分を含むDNA塩基配列
5’ GCCAAGCTTGCGTAATCATG3’
5’ AGCCAAGCTTCGTAATCATG3’
5’ ACGACGGCCAGAATTCCCGG3’
5’ CGACGGCCAGGAATTCCCGG3’
5’ CCGGGAATTCTAATCATGGT3’
5’ CCGGGAATTCAATCATGGTC3’
5’ ACGGCCAGTGAAGCTTGGCT3’
5’ CGGCCAGTGCAAGCTTGGCT3’
第 3 表 ■プラスミドpUc81.82.91.92の作成 1)既に作成したプラスミドpuctost、pUC1
082,pUc1091及びpUc1092夫々5JL
gを、制限酵素Pvull(18単位)を用いて37°
C,1時間反応させた後、分解産物を0.7%アガロー
ス電気泳動にて分離を行ない、ポリリンカ一部分を含む
DNA断片(約300塩基対)を切り出し、フェノール
処理を行なうことにより精製した。
5’ AGCCAAGCTTCGTAATCATG3’
5’ ACGACGGCCAGAATTCCCGG3’
5’ CGACGGCCAGGAATTCCCGG3’
5’ CCGGGAATTCTAATCATGGT3’
5’ CCGGGAATTCAATCATGGTC3’
5’ ACGGCCAGTGAAGCTTGGCT3’
5’ CGGCCAGTGCAAGCTTGGCT3’
第 3 表 ■プラスミドpUc81.82.91.92の作成 1)既に作成したプラスミドpuctost、pUC1
082,pUc1091及びpUc1092夫々5JL
gを、制限酵素Pvull(18単位)を用いて37°
C,1時間反応させた後、分解産物を0.7%アガロー
ス電気泳動にて分離を行ない、ポリリンカ一部分を含む
DNA断片(約300塩基対)を切り出し、フェノール
処理を行なうことにより精製した。
2)プラスミドpUc9 5終gを制限酵素Pvu■(
24単位)を用いて37℃にて1時間反応させた後、分
解産物を0.7%アガロース電気泳動にて分離を行ない
、ポリリンカ一部分を含まないDNA!ifI片(約2
300塩基対)を切り出し、フェノール処理を行なうこ
とにより精製した。
24単位)を用いて37℃にて1時間反応させた後、分
解産物を0.7%アガロース電気泳動にて分離を行ない
、ポリリンカ一部分を含まないDNA!ifI片(約2
300塩基対)を切り出し、フェノール処理を行なうこ
とにより精製した。
3)I)で得られたPUC1081由来のDNA断片0
.05終gと、2)で得られたpUc9由来のDNAl
tyr片0.21Lgを混合し、T4DNAリガーゼ(
2単位)を用いて4°C,12時間連結反応を行なった
。次に反応液の一部(約0.1p−g)を大腸菌JM8
3株を用いて形質転換を行ない、受容菌を寒天1.5%
、アンピシリンを1mMちりloogg含むし寒天培地
に塗布し、37℃にて一昼夜培養を行ない形質転換体コ
ロニーを得た。コロニーを、アンピシリンを1 m l
当り1100JL含むL液体培地に植菌し、37°C
にて12時間振どう培養を行ない、常法によりプラスミ
ドDNAを分離し、プラスミドpUc81を得た。
.05終gと、2)で得られたpUc9由来のDNAl
tyr片0.21Lgを混合し、T4DNAリガーゼ(
2単位)を用いて4°C,12時間連結反応を行なった
。次に反応液の一部(約0.1p−g)を大腸菌JM8
3株を用いて形質転換を行ない、受容菌を寒天1.5%
、アンピシリンを1mMちりloogg含むし寒天培地
に塗布し、37℃にて一昼夜培養を行ない形質転換体コ
ロニーを得た。コロニーを、アンピシリンを1 m l
当り1100JL含むL液体培地に植菌し、37°C
にて12時間振どう培養を行ない、常法によりプラスミ
ドDNAを分離し、プラスミドpUc81を得た。
4)同様の操作を行なうことにより、プラスミドpUc
1082よりプラスミドpUC82、プラスミドpUc
1091よりプラスミドpUc91、及びプラスミドp
Uc1092よりプラスミドpUC92を作成した。
1082よりプラスミドpUC82、プラスミドpUc
1091よりプラスミドpUc91、及びプラスミドp
Uc1092よりプラスミドpUC92を作成した。
次に、本発明のPUCベクターシリーズを用いて大腸菌
のβ−ガラクトシダーゼ遺伝子を発現させる場合の実施
例を説明する。
のβ−ガラクトシダーゼ遺伝子を発現させる場合の実施
例を説明する。
(実施例)
l)大腸菌のβ−ガラクトシダーゼをコードする遺伝子
を有するプラスミドpMc1871(ファルマシア■販
売)lOpgを、制限酵素EcoRI (lO単位)
及びPstl (10単位)を用いて、37℃にて1時
間反応を行ない、分解産物を0.7%アガロース電気泳
動を用いて分離し、ゲルより大腸菌のβ−ガラクトシダ
ーゼをコードする遺伝子のうち制限酵素EcoR[サイ
トよりPstlサイトまでのDNA断片(約3000塩
基対)を切り出し、フェノール処理を行なうことにより
精製した。
を有するプラスミドpMc1871(ファルマシア■販
売)lOpgを、制限酵素EcoRI (lO単位)
及びPstl (10単位)を用いて、37℃にて1時
間反応を行ない、分解産物を0.7%アガロース電気泳
動を用いて分離し、ゲルより大腸菌のβ−ガラクトシダ
ーゼをコードする遺伝子のうち制限酵素EcoR[サイ
トよりPstlサイトまでのDNA断片(約3000塩
基対)を切り出し、フェノール処理を行なうことにより
精製した。
2)プラスミドpUc81 10ILgを制限酵素Ec
oRI (10単位)及びPstl (10単位)を
用いて、37℃にて1時間反応を行ない1分解産物を0
.7%アガロース電気泳動を用いて分離し、ゲルより制
限酵素EcoRIサイトよりPstlサイトまでの大き
い方のDNA断片(約2700塩基対)を切り出し、フ
ェノール処理を行なうことにより精製した。
oRI (10単位)及びPstl (10単位)を
用いて、37℃にて1時間反応を行ない1分解産物を0
.7%アガロース電気泳動を用いて分離し、ゲルより制
限酵素EcoRIサイトよりPstlサイトまでの大き
い方のDNA断片(約2700塩基対)を切り出し、フ
ェノール処理を行なうことにより精製した。
3)次ニ、1)テ得られたDNA断片0.tJj−gと
2)テ得られたDNA断片0− IJLgを混合し、T
4DNAリガーゼ(2単位)を用いて48C,12時間
連結反応を行なった後、反応液の一部を大腸菌C5H2
6(ラクトースマイナス)株に形質転換を行なった。受
容菌を1.5%寒天、アンピシリンを1m文当り100
ルg及びX−ga文を0.005%含むし寒天培地に塗
布し、37℃にて一昼夜培養を行ない、青色の形質転換
体コロニーを得た。
2)テ得られたDNA断片0− IJLgを混合し、T
4DNAリガーゼ(2単位)を用いて48C,12時間
連結反応を行なった後、反応液の一部を大腸菌C5H2
6(ラクトースマイナス)株に形質転換を行なった。受
容菌を1.5%寒天、アンピシリンを1m文当り100
ルg及びX−ga文を0.005%含むし寒天培地に塗
布し、37℃にて一昼夜培養を行ない、青色の形質転換
体コロニーを得た。
本形質転換体コロニーは、大腸菌のβ−ガラクトシダー
ゼ遺伝子かプラスミドpUc81の所定の制限酵素サイ
トに連結され、フレームか一致することにより大腸菌の
β−ガラクトシダーゼ遺伝子を欠いた宿主大腸菌C3H
26(ラクトースマイナス)棟内において大腸菌のβ−
ガラクトシダーゼが発現し、培地中のX−ga文か分解
され、コロニーか青色を呈したものである。
ゼ遺伝子かプラスミドpUc81の所定の制限酵素サイ
トに連結され、フレームか一致することにより大腸菌の
β−ガラクトシダーゼ遺伝子を欠いた宿主大腸菌C3H
26(ラクトースマイナス)棟内において大腸菌のβ−
ガラクトシダーゼが発現し、培地中のX−ga文か分解
され、コロニーか青色を呈したものである。
以上の実施例の結果より、プラスミドpUC81を用い
ることにより大腸菌のβ−ガラクトシダーゼ遺伝子を容
易に発現させることかできることがわかった。
ることにより大腸菌のβ−ガラクトシダーゼ遺伝子を容
易に発現させることかできることがわかった。
第1図は本発明に係るベクターの一例の遺伝子地図、第
2図は従来のベクターの遺伝子地図、を夫々示すもので
ある。
2図は従来のベクターの遺伝子地図、を夫々示すもので
ある。
Claims (4)
- (1)複製開始信号、アンピシリン耐性遺伝子、ラクト
ースプロモーター、オペレーター、β−ガラクトシダー
ゼ遺伝子及び制限酵素HindIII、Pst I 、Sal
I 、Acc I 、HincII、BamH I 、Sma I
、EcoR I の各切断部位を持つマルチクローニング
サイトを有してなるベクター。 - (2)複製開始信号、アンピシリン耐性遺伝子、ラクト
ースプロモーター、オペレーター、β−ガラクトシダー
ゼ遺伝子及び制限酵素HindIII、Pst I 、Sal
I 、Acc I 、HincII、BamH I 、Sma I
、EcoR I の各切断部位を持つマルチクローニング
サイトを有してなるベクター3種類からなるベクターシ
リーズであって、該ベクターシリーズは前記切断部位の
アミノ酸に対応するフレームを3種類すべて有するもの
であるベクターシリーズ。 - (3)複製開始信号、アンピシリン耐性遺伝子、ラクト
ースプロモーター、オペレーター、β−ガラクトシダー
ゼ遺伝子及び制限酵素HindIII、Pst I 、Sal
I 、Acc I 、HincII、BamH I 、Sma I
、EcoR I の各切断部位を持つマルチクローニング
サイトを有してなるベクター3種類からなるベクターシ
リーズであって、該ベクターシリーズは前記切断部位の
アミノ酸に対応するフレームを3種類すべて有するもの
であるベクターシリーズの中から所望のベクターを選択
し、そのベクターおよび蛋白質をコードしている遺伝子
を所定の制限酵素にて切り出した後両者を結合すること
により、色の変化を判別して蛋白質をコードしている遺
伝子を検出することを特徴とする特定遺伝子の検出方法
。 - (4)複製開始信号、アンピシリン耐性遺伝子、ラクト
ースプロモーター、オペレーター、β−ガラクトシダー
ゼ遺伝子及び制限酵素HindIII、Pst I 、Sal
I 、Acc I 、HincII、BamH I 、Sma I
、EcoR I の各切断部位を持つマルチクローニング
サイトを有してなるベクター3種類からなるベクターシ
リーズであって、該ベクターシリーズは前記切断部位の
アミノ酸に対応するフレームを3種類すべて有するもの
であるベクターシリーズの中から蛋白質をコードしてい
る遺伝子の5′末端のフレームの合うベクターを選択し
、所定の制限酵素にて切り出した後両者を結合し、大腸
菌に導入し、蛋白質を発現することを特徴とする特定蛋
白質の発現方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP62130797A JPS63294788A (ja) | 1987-05-27 | 1987-05-27 | ベクタ−、遺伝子の検出方法及び蛋白質の発現方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP62130797A JPS63294788A (ja) | 1987-05-27 | 1987-05-27 | ベクタ−、遺伝子の検出方法及び蛋白質の発現方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS63294788A true JPS63294788A (ja) | 1988-12-01 |
Family
ID=15042926
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP62130797A Pending JPS63294788A (ja) | 1987-05-27 | 1987-05-27 | ベクタ−、遺伝子の検出方法及び蛋白質の発現方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS63294788A (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH04281793A (ja) * | 1991-03-08 | 1992-10-07 | Hagiwara Yoshihide | 新規プラスミド |
JPH06133782A (ja) * | 1992-07-23 | 1994-05-17 | Higeta Shoyu Co Ltd | 高発現ベクタ−及び該高発現ベクタ−を 保有する微生物並びに該微生物を用いる 有用物質の製造法 |
-
1987
- 1987-05-27 JP JP62130797A patent/JPS63294788A/ja active Pending
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH04281793A (ja) * | 1991-03-08 | 1992-10-07 | Hagiwara Yoshihide | 新規プラスミド |
JPH06133782A (ja) * | 1992-07-23 | 1994-05-17 | Higeta Shoyu Co Ltd | 高発現ベクタ−及び該高発現ベクタ−を 保有する微生物並びに該微生物を用いる 有用物質の製造法 |
JP2727391B2 (ja) * | 1992-07-23 | 1998-03-11 | ヒゲタ醤油株式会社 | 高発現ベクター及び該高発現ベクターを保有する微生物並びに該微生物を用いる有用物質の製造法 |
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