JPS62289200A - 酵素標識測定法 - Google Patents
酵素標識測定法Info
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- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
3、発明の詳細な説明
(産業上の利用分野)
本発明は酵素標識測定法に関するものであるが、更に詳
細には、ムターゼ反応を有効に利用した酵素反応に基礎
をおく全く新規にして有用な超微量分析方法に関する。
細には、ムターゼ反応を有効に利用した酵素反応に基礎
をおく全く新規にして有用な超微量分析方法に関する。
本方法は、免疫分析を中心とする診断等医療の技術分野
のみならず、細胞組織学を中心とする生化学の技術分野
、及び酵素化学に基礎をおく酵素産業ないし発酵工業の
技術分野で重用されるものである。
のみならず、細胞組織学を中心とする生化学の技術分野
、及び酵素化学に基礎をおく酵素産業ないし発酵工業の
技術分野で重用されるものである。
(従来の技術)
標識物質を用いて生体物質を定量又は定性分析する方法
としては、免疫測定法のほか、ラジオアイソトープ、酵
素、蛍光物質を標識物質として抗原や抗体に結合せしめ
て、目的とする物質を抗原抗体反応を利用して測定する
方法(RIA、 CIA、蛍光抗体法)等が広く用いら
れている。
としては、免疫測定法のほか、ラジオアイソトープ、酵
素、蛍光物質を標識物質として抗原や抗体に結合せしめ
て、目的とする物質を抗原抗体反応を利用して測定する
方法(RIA、 CIA、蛍光抗体法)等が広く用いら
れている。
酵素免疫測定法(EIA)において、抗原や抗体といっ
た測定対象物質含量が非常に少ない検体を測定する場合
、通常の酵素を使用したときの測定限界はlng/m1
程度といわれている。したがって、これよりも含量の少
ない検体を測定するには、反応時間を極端に延長するか
、酵素反応によって蛍光を発する物質を更に結合したり
するといった処理が不可避である。現在、EIAにおい
て使用されているu lt3としては、例えば、βガラ
クトシダーゼ(EC3,2,1,23)、パーオキシダ
ーゼ(EC1,11゜1.7)、アルカリホスファター
ゼ(EC3,1,3,1)、グルコース6リン酸脱水素
酵累(lEC1,1,1,49)などが主として用いら
れているにすぎない(大原 達ほか著r現代免疫学」朝
倉(昭52−1l−5) p15(1−153)。
た測定対象物質含量が非常に少ない検体を測定する場合
、通常の酵素を使用したときの測定限界はlng/m1
程度といわれている。したがって、これよりも含量の少
ない検体を測定するには、反応時間を極端に延長するか
、酵素反応によって蛍光を発する物質を更に結合したり
するといった処理が不可避である。現在、EIAにおい
て使用されているu lt3としては、例えば、βガラ
クトシダーゼ(EC3,2,1,23)、パーオキシダ
ーゼ(EC1,11゜1.7)、アルカリホスファター
ゼ(EC3,1,3,1)、グルコース6リン酸脱水素
酵累(lEC1,1,1,49)などが主として用いら
れているにすぎない(大原 達ほか著r現代免疫学」朝
倉(昭52−1l−5) p15(1−153)。
このように、酵素として11ターゼの反応を利用して、
検体中にごく?Ii量存在する測定対象物質を箭甲、な
操作で検出、測定する方法は全く知られていないという
のが現状である。
検体中にごく?Ii量存在する測定対象物質を箭甲、な
操作で検出、測定する方法は全く知られていないという
のが現状である。
(発明の目的)
本発明は、このような技術の現状に鑑みてなされたもの
であって、検体中にごく微量しか存在しておらず、しか
も従来の酵素櫃識法では測定不可ないしは極めて困難で
あった測定対象物質を、酵素反応を利用して確実、迅速
に測定できる方法を開発する目的でなされたものである
。
であって、検体中にごく微量しか存在しておらず、しか
も従来の酵素櫃識法では測定不可ないしは極めて困難で
あった測定対象物質を、酵素反応を利用して確実、迅速
に測定できる方法を開発する目的でなされたものである
。
(発明の構成及び効果)
このような現状に鑑みて本発明はなされたものである。
そこで本発明者は、ホスホグルコキナーゼの反応により
グルコース1リン酸(G−1−P)から生成するグルコ
ース1,6ニリン酸(G−1、6−diP)を、G−1
−P とホスホグルコムターゼとを用いてグルコース6
リン酸(G−6−P)とG−1,6−diPに変換し、
生成したG−6−PをNAD(P)とG−6−P脱水素
酵素を用いてNAD(P)IIと6ホスホグルコン酸へ
と変換させる反応に着目し、上記により生成したNAD
(P)IIに由来する340nmにおける吸光度の増大
によってホスホグルコキナーゼ活性を測定できるという
ことを発見した。
グルコース1リン酸(G−1−P)から生成するグルコ
ース1,6ニリン酸(G−1、6−diP)を、G−1
−P とホスホグルコムターゼとを用いてグルコース6
リン酸(G−6−P)とG−1,6−diPに変換し、
生成したG−6−PをNAD(P)とG−6−P脱水素
酵素を用いてNAD(P)IIと6ホスホグルコン酸へ
と変換させる反応に着目し、上記により生成したNAD
(P)IIに由来する340nmにおける吸光度の増大
によってホスホグルコキナーゼ活性を測定できるという
ことを発見した。
しかしながら、この方法では、ホスホグルコキナーゼの
反応生成物であるG−1、6−diPは、ホスホグルコ
ムターゼの触媒として働くために、ホスホグルコキナー
ゼの酵素活性は、1分間当りの吸光度の変化量からの単
純な比例計算では算出することができないという障害に
遭遇した。
反応生成物であるG−1、6−diPは、ホスホグルコ
ムターゼの触媒として働くために、ホスホグルコキナー
ゼの酵素活性は、1分間当りの吸光度の変化量からの単
純な比例計算では算出することができないという障害に
遭遇した。
しかしながら、更に検討を加えた結果、このm位時間当
りの吸光度の変化量を更に時間に対して微分したところ
、この微分値が酵素活性に比例するという新知見を得、
この関係式を用いることによって従来のPK−LDI+
を共役系として用いる方法により100倍程度も低い酵
素活性も検出、 ill’l定可能であることも発見し
た。この新知見を基礎にして更に検討の結果、本発明の
完成に到ったのである。
りの吸光度の変化量を更に時間に対して微分したところ
、この微分値が酵素活性に比例するという新知見を得、
この関係式を用いることによって従来のPK−LDI+
を共役系として用いる方法により100倍程度も低い酵
素活性も検出、 ill’l定可能であることも発見し
た。この新知見を基礎にして更に検討の結果、本発明の
完成に到ったのである。
本発明を実施するには、ホスホグルコキナーゼといった
キナーゼ系酵素を標識酵素として、抗原又は抗体に結合
させた生成物を目的測定物質(抗体又は抗原)と反応さ
せた後、その固体用又は液体相中に、ホスホグルコムタ
ーゼ、G−6−P脱水素酵素、G−1−P、 ATP及
びNAD(P)を添加して、ホスホグルコキナーゼ反応
により生成したG−1、6−diP を触媒としてホス
ホグルコムターゼによりG−1−PをG−6−Pへと転
換せしめ、更にG−6−P脱水素酵素を共役させること
によりNAD(P)IIへと変換せしめ、その際の34
0nmにおける数位時間当りの吸光度の変化量として、
上記固体用又は液体相中の酵素活性を求め、そして更に
この変化量をさらに時間に対して微分し、得られた値か
ら非常に高感度で目的物質を測定するものである。
キナーゼ系酵素を標識酵素として、抗原又は抗体に結合
させた生成物を目的測定物質(抗体又は抗原)と反応さ
せた後、その固体用又は液体相中に、ホスホグルコムタ
ーゼ、G−6−P脱水素酵素、G−1−P、 ATP及
びNAD(P)を添加して、ホスホグルコキナーゼ反応
により生成したG−1、6−diP を触媒としてホス
ホグルコムターゼによりG−1−PをG−6−Pへと転
換せしめ、更にG−6−P脱水素酵素を共役させること
によりNAD(P)IIへと変換せしめ、その際の34
0nmにおける数位時間当りの吸光度の変化量として、
上記固体用又は液体相中の酵素活性を求め、そして更に
この変化量をさらに時間に対して微分し、得られた値か
ら非常に高感度で目的物質を測定するものである。
このムターゼを用いたEIAによれば従来から用いられ
ているβ−ガラクトシダーゼ、パーオキシダーゼ等を標
′R酵素とする従来からのEIAに比べ測定検出限界が
0.1ng/mlと約10倍以下の低濃度まで測定する
ことができるという著効が得られる。
ているβ−ガラクトシダーゼ、パーオキシダーゼ等を標
′R酵素とする従来からのEIAに比べ測定検出限界が
0.1ng/mlと約10倍以下の低濃度まで測定する
ことができるという著効が得られる。
本発明によれば、[EIAに用いる標識酵素に11タ一
ゼ反応の基質であり、その自身ムターゼ反応の触媒とし
て作用する物質を反応生成物とするところの酵素を標識
酵素として用い、反応生成物が共役酵素として用いるム
ターゼの反応の触媒として作用することにより、目的物
質が非常に低濃度でしか存在しなくてもムターゼ反応を
利用することにより短時間に感度よく検出しうるという
著効が得られる。
ゼ反応の基質であり、その自身ムターゼ反応の触媒とし
て作用する物質を反応生成物とするところの酵素を標識
酵素として用い、反応生成物が共役酵素として用いるム
ターゼの反応の触媒として作用することにより、目的物
質が非常に低濃度でしか存在しなくてもムターゼ反応を
利用することにより短時間に感度よく検出しうるという
著効が得られる。
本発明において共役系として用いることのできるムター
ゼとしては、グルコース1,6ニリン酸を基質とするホ
スホグルコムターゼに限らず、2−アセトアミド2デオ
キシD−グルコース1,6ニリン酸を基質とするアセチ
ルグルコサミンホスホムターゼ(EC,2,7,5,2
)、グリセリン2,3ニリン酸を基質とするホスホグリ
セロムターゼ(EC,2,7,5,3)、グルコースを
基質とするホスホグルコムターゼ(グルコース、コファ
クター)(EC,2,7,5,5)、グルコース1,6
ニリン酸を基質とするホスホペントムターゼ(IEC,
2,7,5,6)のようにそれ自身その反応を、触媒す
るような物質を基質とするムターゼであれば。
ゼとしては、グルコース1,6ニリン酸を基質とするホ
スホグルコムターゼに限らず、2−アセトアミド2デオ
キシD−グルコース1,6ニリン酸を基質とするアセチ
ルグルコサミンホスホムターゼ(EC,2,7,5,2
)、グリセリン2,3ニリン酸を基質とするホスホグリ
セロムターゼ(EC,2,7,5,3)、グルコースを
基質とするホスホグルコムターゼ(グルコース、コファ
クター)(EC,2,7,5,5)、グルコース1,6
ニリン酸を基質とするホスホペントムターゼ(IEC,
2,7,5,6)のようにそれ自身その反応を、触媒す
るような物質を基質とするムターゼであれば。
す入てのものが使用できる。それゆえ、抗原あるいは抗
体に結合させるF識酵素としては、ホスホグルコムター
ゼの基質となるグルコース1,6ニリン酸を反応生成物
とするホスホグルコキナーゼや、ホスホグルコキナーゼ
活性を有するホスホフラクトキナーゼ(IEC,2,7
゜1.11)にかぎらず、上記ムターゼの基質であり、
それ自身ムターゼ反応のMi媒として作用する物質を反
応生成物とする酵素であれば、すべてのものが適宜使用
でき、キナーゼ類はその1例である。
体に結合させるF識酵素としては、ホスホグルコムター
ゼの基質となるグルコース1,6ニリン酸を反応生成物
とするホスホグルコキナーゼや、ホスホグルコキナーゼ
活性を有するホスホフラクトキナーゼ(IEC,2,7
゜1.11)にかぎらず、上記ムターゼの基質であり、
それ自身ムターゼ反応のMi媒として作用する物質を反
応生成物とする酵素であれば、すべてのものが適宜使用
でき、キナーゼ類はその1例である。
本発明方法によれば、従来の方法よりも10倍も微量の
物質を測定でき、換言すれば感度が10倍も上昇するの
で、検体の量もごく少量で充分であるし、測定時間も短
くてすみ、吸光度を読みとればよいので測定に失敗や誤
認がなく、不法はきわめてすぐれている。
物質を測定でき、換言すれば感度が10倍も上昇するの
で、検体の量もごく少量で充分であるし、測定時間も短
くてすみ、吸光度を読みとればよいので測定に失敗や誤
認がなく、不法はきわめてすぐれている。
また、本発明はEIAのほか、酵素を用いる他の分析や
、例えば組織病理学において、癌化した細胞の検出、定
量にも利用できるという極めて顕著な効果も奏する。す
なわち、腫瘍細胞の表面抗原に対する抗体にムターゼ反
応の基質であり、またそれ自身ムターゼ反応を触媒する
物質を反応生成物とする酵素(たとえばホスホグルコキ
ナーゼ)で1:”4 TfiL/た抗体を作用させ、そ
の後、共役系酵素として、ホスホグルコムターゼ、グル
コース6リン酸脱水素酵素を用い、 ATP、 NAD
(P)、グルコース1リン酸を作用させ、さらに生じた
NAD(P)、11 をジアホラーゼあるいはフェナジ
ンメタサルフェート等を用いることによりホルマザンの
産生まで導びくことにより、ホルマザン沈着部位より正
常組繊細胞からガン化した細胞を検出することにも利用
できるのである。
、例えば組織病理学において、癌化した細胞の検出、定
量にも利用できるという極めて顕著な効果も奏する。す
なわち、腫瘍細胞の表面抗原に対する抗体にムターゼ反
応の基質であり、またそれ自身ムターゼ反応を触媒する
物質を反応生成物とする酵素(たとえばホスホグルコキ
ナーゼ)で1:”4 TfiL/た抗体を作用させ、そ
の後、共役系酵素として、ホスホグルコムターゼ、グル
コース6リン酸脱水素酵素を用い、 ATP、 NAD
(P)、グルコース1リン酸を作用させ、さらに生じた
NAD(P)、11 をジアホラーゼあるいはフェナジ
ンメタサルフェート等を用いることによりホルマザンの
産生まで導びくことにより、ホルマザン沈着部位より正
常組繊細胞からガン化した細胞を検出することにも利用
できるのである。
<EIAによるフェリチンの定量〉
(1)酵素標識抗体の作成
ヒト胎盤由来の精製フェリチンをウサギに免疫し、抗血
清を採取した後、プロティン−Aセファロースカラムに
よるアフィニティークロマトによりIにG両分を得、さ
らにフェリチン−セファロースカラムによる免疫クロマ
トにより抗フェリチン特異的なIgG画分(以後フェリ
チン特異抗体と呼ぶ)を得る。このI(4G画分をペプ
シン消化した後セファデックスG−150によるゲル濾
過により抗フェリチン特異的なIgGのF(ab’)
2画分を得る。
清を採取した後、プロティン−Aセファロースカラムに
よるアフィニティークロマトによりIにG両分を得、さ
らにフェリチン−セファロースカラムによる免疫クロマ
トにより抗フェリチン特異的なIgG画分(以後フェリ
チン特異抗体と呼ぶ)を得る。このI(4G画分をペプ
シン消化した後セファデックスG−150によるゲル濾
過により抗フェリチン特異的なIgGのF(ab’)
2画分を得る。
、= cb F (ab’ ) zを還元剤にてF a
b’にした後ホスホフラクトキナーゼをマレイミド反応
にて結合させ、抗フェリチン特異的F ab’−ホスホ
フラクトキナーヤ結合体(以後ホスホフラクトキナーゼ
標識抗体と呼ぶ)を得る。一方、比較のために同一操作
により作製したFab’にβ−ガラクトシダーゼを結合
させたβ−ガラクトシダーゼ標識抗体をも調゛整した。
b’にした後ホスホフラクトキナーゼをマレイミド反応
にて結合させ、抗フェリチン特異的F ab’−ホスホ
フラクトキナーヤ結合体(以後ホスホフラクトキナーゼ
標識抗体と呼ぶ)を得る。一方、比較のために同一操作
により作製したFab’にβ−ガラクトシダーゼを結合
させたβ−ガラクトシダーゼ標識抗体をも調゛整した。
(2)フェリチン抗体の固相化
フェリチン特異抗体を5μQ/m Qのa度になるよう
に炭酸、重炭酸バッファー(0,05M、 pH9,6
)にて希釈した溶液をポリスチレンボールに加え、25
°Cにて2時間放置し抗体をポリスチレンボール」二に
吸着させる。そのio、05%tween 20を含む
リン酸バッファー食塩水にて3回ボールの洗浄操作を行
い、フェリチン抗体固相化ボールを得る。作製した抗体
ボールは0.05%tween20と0.1%BSAを
含むリン酸バッファー食塩水に浸漬し、使用するまで4
℃で保存する。
に炭酸、重炭酸バッファー(0,05M、 pH9,6
)にて希釈した溶液をポリスチレンボールに加え、25
°Cにて2時間放置し抗体をポリスチレンボール」二に
吸着させる。そのio、05%tween 20を含む
リン酸バッファー食塩水にて3回ボールの洗浄操作を行
い、フェリチン抗体固相化ボールを得る。作製した抗体
ボールは0.05%tween20と0.1%BSAを
含むリン酸バッファー食塩水に浸漬し、使用するまで4
℃で保存する。
(3)免疫反応
各濃度に調整したフェリチン標準液(500,250゜
100、50.25.10.5.2.5.1.0.5.
0.1 ng/n+Q )20μQずつ反応トレイの各
穴に入れる。次にホスホグルコムターゼ標識抗体液ある
いはβ−ガラクトシダーゼ標識抗体液300μρをトレ
イの各穴に加え、静かに攪拌した後フェリチン抗体同相
化ボールをトレイの各穴にひとつづつ入れ、37°Cに
て3時間インキュベートする。その後反応液を吸引除去
した後ボールを0.05%tween 20を含むリン
酸バーファー食塩水にて5回洗浄した後ボールを酵素反
応用試験管へ移す。
100、50.25.10.5.2.5.1.0.5.
0.1 ng/n+Q )20μQずつ反応トレイの各
穴に入れる。次にホスホグルコムターゼ標識抗体液ある
いはβ−ガラクトシダーゼ標識抗体液300μρをトレ
イの各穴に加え、静かに攪拌した後フェリチン抗体同相
化ボールをトレイの各穴にひとつづつ入れ、37°Cに
て3時間インキュベートする。その後反応液を吸引除去
した後ボールを0.05%tween 20を含むリン
酸バーファー食塩水にて5回洗浄した後ボールを酵素反
応用試験管へ移す。
(4)酵素反応
(A)基質液
ホスホフラクI−キナーゼ標識抗体の場合1−リニタノ
ールアミンバツファ−〇、o8バ、 pH7,6αグ
ルコース−6−リン酸 0.5mM
E D T A
O,85mM塩化マグネシウム
1.6mMN A D
O,22mMATP
1.0mMG−6−PDH3,2U/
mQ α−ホスホグルコムターゼ 0.20
/mQβ−ガラクトシダーゼ標識抗体の場合 リン酸バッファー 0.05
M、 pH7,82−メルカプトエタノール
100mM(B)酵素活性測定 上記基質液IIIIQをボールの入った反応用試験管に
加え、37℃にて10分間(ホスホフラクトキナーゼ標
識抗体の場合)あるいは1時間(β−ガラクトシダーゼ
標識抗体の場合)インキュベートした後ボールを取り出
し、試験管内の反応液の吸光度を340r+m (ホス
ホフラクトキナーゼ[2抗体の場合)あるいは42On
I11(β−ガラクトシダーゼ標識抗体の場合)にて測
定する。
ールアミンバツファ−〇、o8バ、 pH7,6αグ
ルコース−6−リン酸 0.5mM
E D T A
O,85mM塩化マグネシウム
1.6mMN A D
O,22mMATP
1.0mMG−6−PDH3,2U/
mQ α−ホスホグルコムターゼ 0.20
/mQβ−ガラクトシダーゼ標識抗体の場合 リン酸バッファー 0.05
M、 pH7,82−メルカプトエタノール
100mM(B)酵素活性測定 上記基質液IIIIQをボールの入った反応用試験管に
加え、37℃にて10分間(ホスホフラクトキナーゼ標
識抗体の場合)あるいは1時間(β−ガラクトシダーゼ
標識抗体の場合)インキュベートした後ボールを取り出
し、試験管内の反応液の吸光度を340r+m (ホス
ホフラクトキナーゼ[2抗体の場合)あるいは42On
I11(β−ガラクトシダーゼ標識抗体の場合)にて測
定する。
こうして得たホスホフラクトキナーゼ標識抗体を用いて
フェリチンをEIAによって定量し、第1図のような結
果を得た。また一方、比較のために、標識酵素として従
来のようにβ−ガラクトシダーゼを用いた場合のEIA
を行って、第2図のような結果を得た。
フェリチンをEIAによって定量し、第1図のような結
果を得た。また一方、比較のために、標識酵素として従
来のようにβ−ガラクトシダーゼを用いた場合のEIA
を行って、第2図のような結果を得た。
これらの結果から明かなように、本発明のようにホスホ
フラクトキナーゼを標識酵素として用いると、従来法の
ようにβ−ガラクトシダーゼを用いた場合の約1/lo
oの濃度までフェリチンを定量することができた。
フラクトキナーゼを標識酵素として用いると、従来法の
ようにβ−ガラクトシダーゼを用いた場合の約1/lo
oの濃度までフェリチンを定量することができた。
第1図はホスホフラクトキナーゼを標識酵素として用い
た場合の、そして第2図はβ−ガラクトシダーゼを用い
た場合のフェリチン量をそれぞれ図示したものである。 代理人 弁理士 戸 1)親 男 420nm
た場合の、そして第2図はβ−ガラクトシダーゼを用い
た場合のフェリチン量をそれぞれ図示したものである。 代理人 弁理士 戸 1)親 男 420nm
Claims (1)
- ムターゼ反応の基質であり且つそれ自体ムターゼ反応の
触媒として作用する物質を反応生成物とする酵素を、標
識物質として使用することを特徴とする酵素標識測定法
。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP13180986A JPH07114716B2 (ja) | 1986-06-09 | 1986-06-09 | 酵素標識測定法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP13180986A JPH07114716B2 (ja) | 1986-06-09 | 1986-06-09 | 酵素標識測定法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS62289200A true JPS62289200A (ja) | 1987-12-16 |
JPH07114716B2 JPH07114716B2 (ja) | 1995-12-13 |
Family
ID=15066614
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP13180986A Expired - Lifetime JPH07114716B2 (ja) | 1986-06-09 | 1986-06-09 | 酵素標識測定法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH07114716B2 (ja) |
-
1986
- 1986-06-09 JP JP13180986A patent/JPH07114716B2/ja not_active Expired - Lifetime
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH07114716B2 (ja) | 1995-12-13 |
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