JPS62278982A - N−アセチルノイラミン酸リア−ゼの製造法 - Google Patents
N−アセチルノイラミン酸リア−ゼの製造法Info
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- JPS62278982A JPS62278982A JP12183086A JP12183086A JPS62278982A JP S62278982 A JPS62278982 A JP S62278982A JP 12183086 A JP12183086 A JP 12183086A JP 12183086 A JP12183086 A JP 12183086A JP S62278982 A JPS62278982 A JP S62278982A
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- acid lyase
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/88—Lyases (4.)
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
3、発明の詳細な説明
産業上の利用分野
本発明はN−アセチルノイラミン酸リアーゼの製造法に
関する。
関する。
N−アセチルノイラミン酸リアーゼ(EC4,L。
3.3、以下NAリアーゼと略記する)はN−アセチル
ノイラミン酸をN−アセチルマンノサミンとピルビン酸
に分解する酵素である。
ノイラミン酸をN−アセチルマンノサミンとピルビン酸
に分解する酵素である。
このNΔリアーゼは血清などの生体中のシアル酸含有物
質の定量に用いられる。
質の定量に用いられる。
従来技術
NA’Jアーゼは、動物組織およびガス壊療菌(Clo
stridium perfringens)、コレ
ラ菌(Vibri。
stridium perfringens)、コレ
ラ菌(Vibri。
cholerae)などの病原性微生物、および各種の
非病原性微生物などに存在することが知られている。
非病原性微生物などに存在することが知られている。
またNAリアーゼ産生能を有する微生物を用いたNAI
Jアーゼの製造法において、培地中に高価な試薬である
N−アセチルノイラミン酸を大量に存在させるときにの
み本酵素の生産量が上昇することが報告されている(特
公昭56−54153゜特公昭56−51751)。
Jアーゼの製造法において、培地中に高価な試薬である
N−アセチルノイラミン酸を大量に存在させるときにの
み本酵素の生産量が上昇することが報告されている(特
公昭56−54153゜特公昭56−51751)。
また、N−アセチルノイラミン酸を使用しt;いNAリ
アーゼの製造法として、N−アセチルノイラミン酸を必
要としない、エシェリヒア属に属する微生物の変異株を
用いる方法(特開昭6O−184384)、N−アセチ
ルノイラミン酸リアーゼ産生遺伝情報を担うDNAを組
み込んだベクターを導入したエシェリヒア属に属する微
生物を用いる方法(特開昭6l−1384)などが報告
されている。
アーゼの製造法として、N−アセチルノイラミン酸を必
要としない、エシェリヒア属に属する微生物の変異株を
用いる方法(特開昭6O−184384)、N−アセチ
ルノイラミン酸リアーゼ産生遺伝情報を担うDNAを組
み込んだベクターを導入したエシェリヒア属に属する微
生物を用いる方法(特開昭6l−1384)などが報告
されている。
しかしながら、これらの方法ではいずれもNAリアーゼ
の生産量は低い。
の生産量は低い。
発明が解決しようとする問題点
N−アセチルノイラミン酸を用いず、NΔリア−ゼを大
量に生産できる方法の開発が望まれている。
量に生産できる方法の開発が望まれている。
問題点を解決するための手段
本発明者は、工業的に安価にしかも大量にNAリアーゼ
を製造する方法について種々検討した。
を製造する方法について種々検討した。
その結果、NAリアーゼ産生遺伝情報を担うDNAを組
み込んだベクターを導入した工/エリヒア属に属する微
生物を糖蜜、グリセロール、コーンステイープリカーの
いずれか1種以上を含む培地に培養した場合に、著量の
NAIJアーゼが生産されることが見出された。
み込んだベクターを導入した工/エリヒア属に属する微
生物を糖蜜、グリセロール、コーンステイープリカーの
いずれか1種以上を含む培地に培養した場合に、著量の
NAIJアーゼが生産されることが見出された。
以下に本発明の詳細な説明する。
本発明は、N−アセチルノイラミン酸リアーゼ産生遺伝
情報を担うDNAを組み込んだベクターを導入した微生
物を、糖蜜、グリセロールおよびコーンステイー少リカ
ーから選ばれる少なくとも1種を含む栄養培地に培養し
、培養物中にN−アセチルノイラミン酸リアーゼを蓄積
させ、これを採取することを特徴とするN−アセチルノ
イラミン酸リアーゼの製造法を提供する。
情報を担うDNAを組み込んだベクターを導入した微生
物を、糖蜜、グリセロールおよびコーンステイー少リカ
ーから選ばれる少なくとも1種を含む栄養培地に培養し
、培養物中にN−アセチルノイラミン酸リアーゼを蓄積
させ、これを採取することを特徴とするN−アセチルノ
イラミン酸リアーゼの製造法を提供する。
本発明に使用する微生物としては、NAIJアーゼ産生
遺伝情報を担うDNAを組み込んだベクターを導入した
微生物であれば、いずれも使用することができる。好適
な例としては、エシェリヒア・コ リ (Esche
richia coli) H3−4(F ERM
BP−513)があげられる。
遺伝情報を担うDNAを組み込んだベクターを導入した
微生物であれば、いずれも使用することができる。好適
な例としては、エシェリヒア・コ リ (Esche
richia coli) H3−4(F ERM
BP−513)があげられる。
NAリアーゼ産生遺伝情報を担うDNAを組み込んだベ
クターを導入したエンエリヒア属微生物は、特開昭61
−1384号公報に記載の方法に従って得ることができ
る。
クターを導入したエンエリヒア属微生物は、特開昭61
−1384号公報に記載の方法に従って得ることができ
る。
本発明において、著量のNΔリアーゼを生産させるため
に用いられる培地としては、糖蜜、グリセロールおよび
コーンステイープリカーから選ばれる少なくとも1種を
含む栄養培地が用いられる。
に用いられる培地としては、糖蜜、グリセロールおよび
コーンステイープリカーから選ばれる少なくとも1種を
含む栄養培地が用いられる。
その使用量は5〜30g/l程度が好ましい。さらに、
炭素源としての糖蜜、グリセロール、窒素源としてのコ
ーンステイープリカー、ペプトン。
炭素源としての糖蜜、グリセロール、窒素源としてのコ
ーンステイープリカー、ペプトン。
酵母エキスを適当に組み合わせて用いれば、より優れた
結果を得ることができる。
結果を得ることができる。
培養は振とう培養あるいは通気攪拌培養などの好気的条
件下に行われる。培養温度は25〜35℃が好適であり
、培養期間は通常16〜48時間程度で完了する。
件下に行われる。培養温度は25〜35℃が好適であり
、培養期間は通常16〜48時間程度で完了する。
培養物中からのNAIJアーゼの採取は次のように行う
。
。
培tm了後、培養液から遠心分離などの方法で菌体を集
め、得られた菌体を超音波処理、ガラスピーズを用いる
摩砕処理、フレンチプレス処理などによって破砕し、酵
素を抽出する。この抽出液を通常酵素i製に用いられる
方法、例えば塩析。
め、得られた菌体を超音波処理、ガラスピーズを用いる
摩砕処理、フレンチプレス処理などによって破砕し、酵
素を抽出する。この抽出液を通常酵素i製に用いられる
方法、例えば塩析。
有機溶媒沈殿、透析、イオン交換カラムクロマトグラフ
ィー、ゲル濾過、凍結乾燥などの方法にて処理する。こ
のようにして、精製NA’Jアーゼを採取することがで
きる。
ィー、ゲル濾過、凍結乾燥などの方法にて処理する。こ
のようにして、精製NA’Jアーゼを採取することがで
きる。
NAリアーゼの活性の測定は、メソッヅ・イン・エンザ
イモロジイ−(Methods in Enzymol
、)5、391〜394. (1962)に記載の方
法に従って測定する。
イモロジイ−(Methods in Enzymol
、)5、391〜394. (1962)に記載の方
法に従って測定する。
以下、実施例をあげて本発明を具体的に説明する。
実施例1゜
N A IJアーゼ産生遺伝情報を担うDNAを組み込
んだベクターを導入したエシェリヒア・コリ(Esch
erichiacoli) H3−4(FERM
BP−513)(以下H3−4株と略記する)を第1表
に示す各種培地、各々10m1(pH7,0)に接種し
、28℃で18時間振とう培養した。培養終了後、遠心
分離(10,000rpm、 20分)により菌体を集
め、0.85%生理食塩水で洗浄後、菌体を超音波処理
により破砕し、遠心分離(10,0Orpm、 20分
)し、上清液2mlを菌体抽出液として調製した。その
抽出液中のNAIJアーゼ活性を測定した。その結果は
第1表の通りであり、糖蜜。
んだベクターを導入したエシェリヒア・コリ(Esch
erichiacoli) H3−4(FERM
BP−513)(以下H3−4株と略記する)を第1表
に示す各種培地、各々10m1(pH7,0)に接種し
、28℃で18時間振とう培養した。培養終了後、遠心
分離(10,000rpm、 20分)により菌体を集
め、0.85%生理食塩水で洗浄後、菌体を超音波処理
により破砕し、遠心分離(10,0Orpm、 20分
)し、上清液2mlを菌体抽出液として調製した。その
抽出液中のNAIJアーゼ活性を測定した。その結果は
第1表の通りであり、糖蜜。
グリセロール、コーンステイープリカーなどを添加した
培地ではNAIJアーゼの生産看が5〜10倍に増加し
た。
培地ではNAIJアーゼの生産看が5〜10倍に増加し
た。
第 1 表
ブイヨン(2>” 0.
250ブイヨン(2)十 糖蜜(1)
1.95ブイヨン(2)+ グリセロール(0,5>
1.41ブイ ヨ ン(2) + コーン
ステイープリカー (1) 2. 3
2ブイヨン(2)半 ペプトン(1)
0.545ブイヨン(2)十 酵母エキス(1)
0.810実施例2゜ H3−4株を第2表に示す種々の濃度の糖蜜とコーンス
テイープリカーより成る培地各々l Qml(pH7,
0)に接種し、23℃で18時間振とう0 培養した
。培養終了後、実施例1と同様に菌体抽出液を調製し、
その抽出液中のNAIJアーゼ活性を測定した。その結
果は第2表に示す通りであり、適当な濃度の糖蜜とコー
ンステイープリカーより成る培地でNAIJアーゼの生
産量が約24倍増加した。
250ブイヨン(2)十 糖蜜(1)
1.95ブイヨン(2)+ グリセロール(0,5>
1.41ブイ ヨ ン(2) + コーン
ステイープリカー (1) 2. 3
2ブイヨン(2)半 ペプトン(1)
0.545ブイヨン(2)十 酵母エキス(1)
0.810実施例2゜ H3−4株を第2表に示す種々の濃度の糖蜜とコーンス
テイープリカーより成る培地各々l Qml(pH7,
0)に接種し、23℃で18時間振とう0 培養した
。培養終了後、実施例1と同様に菌体抽出液を調製し、
その抽出液中のNAIJアーゼ活性を測定した。その結
果は第2表に示す通りであり、適当な濃度の糖蜜とコー
ンステイープリカーより成る培地でNAIJアーゼの生
産量が約24倍増加した。
第 2 表
ブイヨン(2> 0
.250糖蜜(1) + コーンステイープリカー
(1) 3.2 7糖蜜(
1)+ ペプトン(1) 2.30糖
蜜(1) 十 酵母エキス(1) 2
.56グリセロール(0,5) + コーンステイ
ープリカー(1) 2. 7 3グ
リセロール(0,5) + ペブ ト ン(1)
1. 9 0グリセロール(0
,5) 十 酵母エキス(1)
2. 0 2糖蜜(1) + コーンステイー
プリカー(3) 4. 4
5糖蜜(2) + コーンステイープリカー(2
) 6.0 0糖蜜(3)
+ コーンステイープリカー(1)
1.3 0(注)各培地はすべて0.
002%アンピシリンを含有する。
.250糖蜜(1) + コーンステイープリカー
(1) 3.2 7糖蜜(
1)+ ペプトン(1) 2.30糖
蜜(1) 十 酵母エキス(1) 2
.56グリセロール(0,5) + コーンステイ
ープリカー(1) 2. 7 3グ
リセロール(0,5) + ペブ ト ン(1)
1. 9 0グリセロール(0
,5) 十 酵母エキス(1)
2. 0 2糖蜜(1) + コーンステイー
プリカー(3) 4. 4
5糖蜜(2) + コーンステイープリカー(2
) 6.0 0糖蜜(3)
+ コーンステイープリカー(1)
1.3 0(注)各培地はすべて0.
002%アンピシリンを含有する。
実施例3゜
H3−4株を糖蜜20 g/R、コーンステイープ+)
h−20g/Cアンピシリン20mg/nよりなる培地
(pH7,0) 30 Qmlを含む21xルレンマイ
ヤーフラスコに植菌し、28℃で18時間振とう培養し
た。
h−20g/Cアンピシリン20mg/nよりなる培地
(pH7,0) 30 Qmlを含む21xルレンマイ
ヤーフラスコに植菌し、28℃で18時間振とう培養し
た。
この培養1600m1を上記培地と同じ組成の培地18
1を含む301ジγ−ファーメンタ−に入れ、通気攪拌
(1νvm、 300 rpm) しつつ、28℃で1
8時間培養を行った。
1を含む301ジγ−ファーメンタ−に入れ、通気攪拌
(1νvm、 300 rpm) しつつ、28℃で1
8時間培養を行った。
この培養物18βから遠心分離(8,00Orpm。
20分)にて、菌体を集めた。得られた菌体を0.01
Mリン酸緩衝液(pH7,0> 100 On+lに懸
濁して、D y n o −M i l l (W、A
、Bachofen社製、スイス)にて細胞を破砕し、
菌体内の酵素を抽出した。
Mリン酸緩衝液(pH7,0> 100 On+lに懸
濁して、D y n o −M i l l (W、A
、Bachofen社製、スイス)にて細胞を破砕し、
菌体内の酵素を抽出した。
このときのNAリアーゼ活性を測定したところ、N A
IJアーゼ生産量は、8.2単位/ml−培養液であ
った。
IJアーゼ生産量は、8.2単位/ml−培養液であ
った。
この抽出液に硫酸アンモニウムを加え、硫酸アンモニウ
ム50〜90%飽和で沈澱する部分を採取した。
ム50〜90%飽和で沈澱する部分を採取した。
この沈殿を、約20 Qmlの0.OIMIJン酸緩衝
液(pH7,0)に溶解し、同緩衝液5βで24時間透
析した。透析液を同緩衝液で平衡化した02人εセファ
デックス(111ロ径6cIll)に通塔した。
液(pH7,0)に溶解し、同緩衝液5βで24時間透
析した。透析液を同緩衝液で平衡化した02人εセファ
デックス(111ロ径6cIll)に通塔した。
この操作で、NAリアーゼはDEAε−セファデックス
に吸着された。さらに、同緩衝液約1βで不純蛋白質を
洗い流した。
に吸着された。さらに、同緩衝液約1βで不純蛋白質を
洗い流した。
次に、0゜01Mリン酸緩衝液(pH7,0)から1.
0M塩化す) IJウムを含む同緩衝液までの塩化す)
IJウムの濃度匂配液で、流速約1 ml /min
になるようにして溶出を行った。約201111ずつ分
画し、溶出してくる活性画分約30 Qmlをあわせた
。
0M塩化す) IJウムを含む同緩衝液までの塩化す)
IJウムの濃度匂配液で、流速約1 ml /min
になるようにして溶出を行った。約201111ずつ分
画し、溶出してくる活性画分約30 Qmlをあわせた
。
これに硫酸アンモニウムを加えて、硫酸アンモニウム9
0%飽和で沈澱する部分を遠心分離(12,000Xg
、20分)で集め、0.01Mリン酸緩衝液(pH7,
0) 3 Qmlに溶解した。
0%飽和で沈澱する部分を遠心分離(12,000Xg
、20分)で集め、0.01Mリン酸緩衝液(pH7,
0) 3 Qmlに溶解した。
この溶液を同緩衝液2!で24時間透析した。
透析液を凍結乾燥し、NAIJアーゼの粉末精製酵素標
品約100.000単位(比活性20単位/mg)を得
た。
品約100.000単位(比活性20単位/mg)を得
た。
精製酵素は、細胞抽出液に比べて比活性は約10倍に上
昇し、活性の収率は約70%であった。
昇し、活性の収率は約70%であった。
発明の効果
本発明によれば、工業的に安価に大量にN A ’Jア
ーゼを製造することができる。
ーゼを製造することができる。
Claims (1)
- N−アセチルノイラミン酸リアーゼ産生遺伝情報を担う
DNAを組み込んだベクターを導入した微生物を糖蜜、
グリセロールおよびコーンスティープリカーから選ばれ
る少なくとも1種を含む栄養培地に培養し、培養物中に
N−アセチルノイラミン酸リアーゼを蓄積させ、これを
採取することを特徴とするN−アセチルノイラミン酸リ
アーゼの製造法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP12183086A JPS62278982A (ja) | 1986-05-27 | 1986-05-27 | N−アセチルノイラミン酸リア−ゼの製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP12183086A JPS62278982A (ja) | 1986-05-27 | 1986-05-27 | N−アセチルノイラミン酸リア−ゼの製造法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS62278982A true JPS62278982A (ja) | 1987-12-03 |
Family
ID=14820982
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP12183086A Pending JPS62278982A (ja) | 1986-05-27 | 1986-05-27 | N−アセチルノイラミン酸リア−ゼの製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS62278982A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103881997A (zh) * | 2014-03-31 | 2014-06-25 | 邦泰生物工程(深圳)有限公司 | 燕窝酸醛缩酶突变体及其编码基因和应用 |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS611384A (ja) * | 1984-06-14 | 1986-01-07 | Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd | N−アセチルノイラミン酸リア−ゼの製法 |
JPS6181786A (ja) * | 1984-08-30 | 1986-04-25 | Marukin Shoyu Kk | N―アシルノイラミン酸アルドラーゼ遺伝子を含む組換えプラスミド及び形質転換微生物 |
-
1986
- 1986-05-27 JP JP12183086A patent/JPS62278982A/ja active Pending
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS611384A (ja) * | 1984-06-14 | 1986-01-07 | Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd | N−アセチルノイラミン酸リア−ゼの製法 |
JPS6181786A (ja) * | 1984-08-30 | 1986-04-25 | Marukin Shoyu Kk | N―アシルノイラミン酸アルドラーゼ遺伝子を含む組換えプラスミド及び形質転換微生物 |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103881997A (zh) * | 2014-03-31 | 2014-06-25 | 邦泰生物工程(深圳)有限公司 | 燕窝酸醛缩酶突变体及其编码基因和应用 |
CN103881997B (zh) * | 2014-03-31 | 2016-08-24 | 邦泰生物工程(深圳)有限公司 | 燕窝酸醛缩酶突变体及其编码基因和应用 |
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